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• Einführung
• Ribozyme I
• Ribozyme II
• Ribozyme III, In vitro Evolution
• in vitro Evolution neuer Ribozyme
• SELEX
• Display-Techniken:
In vitro Evolution von Proteinen
• RNA-basierte Regulation: Riboswitches
• RNA Interferenz
• small noncoding RNA
• Influenza – ein RNA-Virus
MSc-Modul RNA-Biochemie
RNA Biochemie 06/1
Isolierung der
gewünschten RNA
RT/PCR
Mutagenese
(PCR)
Systematic Evolution of Ligands
by Exponential amplification
RNA Biochemie 06/2
SELEX
Heydenreich et al., 1993
spezifische Bindungstaschen in Proteinen:
RNA Biochemie 06/3
SELEX
tRNA-
Synthetase
Komplex
RNA Biochemie 06/4
SELEX
Faltung
Protein RNA
RNA Biochemie 06/5
SELEX
randomisiertT7 Promotor
Säule
Anlagerung
in vitroTranskription
RNA Pool
Sequenzpool: 1013-1015
(sequence space: 1024)
RT/PCR
RNA Biochemie 06/6
SELEX
lat. „aptus“, passend
Selektierte RNA Moleküle, die andere Moleküle spezifisch binden:
Aptamere
RNA Biochemie 06/7
SELEX
target
target
target
target
PCR mutagenesis
RNA Biochemie 06/8
SELEX
KD-Werte von Aptameren:
90.03hairpin1130mod.
RNA
Vascular
Endothelial
Growth Factor
111bulge1032RNAHIV rev Protein
1410G-
quartet1740ssDNAElastase
13100hairpin1530mod.
RNAElastase
10700bulge8120RNAATP
?18 000?7120RNAD-Tryptophan
FreqKD [nM]MotifRdsNtsLibraryTarget
RNA Biochemie 06/9
SELEX
Agarose-O-C(NH)NH-(CH2)6-NH
Agarose-Säule
ATP
Anfangskomplexität:
1014 RNA-Moleküle
RNA Biochemie 06/10
SELEX: ATP-Aptamer
Agarose-O-C(NH)NH-(CH2)6-NH
RNA
Säulen-Matrix= Säulenbinder
RNA Biochemie 06/11
SELEX: ATP-Aptamer
1. Inkubation von RNA
mit Säulenmatrix
RNA
vorselektierte
RNA
2. Inkubation von RNA
mit immobilisiertem
Zielmolekül
Selektion
selektierte RNA (Aptamer)
RNA Biochemie 06/12
SELEX: ATP-Aptamer
ATP
gebundene RNA auf der Säule
Agarose-O-C(NH)NH-(CH2)6-NH
ATP
ATP
ATP
RNA
RNA
RNA
kompetitive Elution
RNA Biochemie 06/13
SELEX: ATP-Aptamer
Agarose-O-C(NH)NH-(CH2)6-NH
Agarose-Säule
ATP
RNA-Pool
flow through:
ungebundene RNA
Affinitätschromatographie
mit ungebundenem ATP
reverse Transkription
PCR
in vitro Transkription
Analyse
RNA Biochemie 06/14
SELEX: ATP-Aptamer
Consensus-Motiv
Sassanfar & Szostak, 1993
RNA Biochemie 06/15
SELEX: ATP-Aptamer
Consensus-Motiv und Consensus-Struktur:
Sassanfar & Szostak, 1993
RNA Biochemie 06/16
SELEX: ATP-Aptamer
• KD < 50 µM (später: 700 nM)
• Bestimmung der Ligand-Spezifität
durch modifizierte Elution
• Keine Bindung bei Methylierungen
an Positionen 1, 2, 3 und 6 an der
Base bzw. am 3‘OH der Ribose
• Entfernen der Aminogruppe an
Position 6 oder der 2‘OH-Gruppe
interferiert mit Bindung
• N7 und C8 sind nicht beteiligt
• Anzahl der Phosphate ist irrelevant
Sassanfar & Szostak, 1993
RNA Biochemie 06/17
SELEX: ATP-Aptamer
die Base wird erkannt!
ATP-Bindung: induced fit
Kethoxal
• Kethoxal interagiert mit N1
und N2 von ungepaarten
Guanosin-Resten
• Abwesenheit von ATP:
keine Modifikation
• Anwesenheit von ATP:
Konformationswechsel im
Aptamer: G6, G7, G17 im
Loop werden modifiziert
Sassanfar & Szostak, 1993
RNA Biochemie 06/18
SELEX: ATP-Aptamer
• Purin-reicher Loop bildet Bindungstasche
• Ausbildung von G-G Hoogsteen-Basenpaaren
• AMP interkaliert zwischen A10 und G11
• H-Brücken zwischen AMP und G8, A12
NMR-Struktur:
Jiang et al., 1996
Jhaveri et al., 2000
RNA Biochemie 06/19
SELEX: ATP-Aptamer
Base Stacking H-Brücken
Jiang et al., 1996
RNA Biochemie 06/20
SELEX: ATP-Aptamer
RNA-Aptamer
ATP
DNA-Aptamer
Hermann & Patel, 2000
RNA Biochemie 06/21
SELEX: ATP-Aptamer
Theophyllin
randomisiertT7 Promotor
Säule
Anlagerung
in vitroTranskription
RNA Pool
Sequenzpool: 1013-1015
(sequence space: 1024)
RT/PCR
RNA Biochemie 06/22
Theophyllin-Aptamer
10.0000-fach schlechtere Bindung!
Hermann & Patel, 2000
Theophyllin-Aptamer:
RNA Biochemie 06/23
Spezifität von Aptameren
Test auf Spezifität: kompetitive Bindungsexperimente
Jenison et al., 1994
RNA Biochemie 06/24
Spezifität von Aptameren
randomisiertT7 Promotor
Säule
Anlagerung
in vitroTranskription
RNA Pool
Sequenzpool: 1013-1015
(sequence space: 1024)
RT/PCR
Arginin
RNA Biochemie 06/25
Aptamere gegen Aminosäuren
Arginin Citrullin
Hermann & Patel, 2000
Arginin-Aptamer Citrullin-Aptamer
RNA Biochemie 06/26
Aptamere gegen Aminosäuren
RNA Biochemie 06/27
Aptamere gegen Aminosäuren
Knight & Landweber, 2000
CGA
CGG
CGC
CGU
AGAAGG
R-Codons sind prädestiniert für R-Bindung!
Ähnliche Codon-Anreicherung für:
Phe, Ile, Leu, His, Gln, Tyr, Trp (Ausnahme: Glu)
RNA Biochemie 06/28
Aptamere gegen Aminosäuren
Evolution des Genetischen Codes:
• zufällige Festlegung der Codons
• funktionale Festlegung der Codons
RNA Biochemie 06/29
Aptamere gegen Aminosäuren
Evolution des Genetischen Codes:
Carl Woese(1928 – 2012)
Gruppe 1: Phe, Leu, Ile, Met, Val
Gruppe2: Ser, Pro, Thr, Ala
Gruppe 3: Cys, Arg, Ser, Gly
TLC
RNA Biochemie 06/30
Aptamere gegen Aminosäuren
Laufverhalten der Aminosäuren
korreliert mit Codon Assignment!
Evolution des Genetischen Codes:
Knight & Landweber, 2000
RNA Biochemie 06/31
Aptamere gegen Aminosäuren
Evolution des Genetischen Codes:
Wolf & Koonin, 2007
RNA Biochemie 06/32
Aptamere gegen Aminosäuren
Evolution des Genetischen Codes:
Wolf & Koonin, 2007
= primitives Ribosom
RNA Biochemie 06/33
Aptamere gegen Aminosäuren
• Aromatische Verbindungen
• Aminosäuren
• Oligosaccharide (Antibiotika)
• Peptide/Proteine
RNA Biochemie 06/34
SELEX: Liganden
• Alternative zu Antikörpern
• Vorteile:
- leichter herzustellen
- z. T. höhere Spezifität
• Nachteile:
- geringe Stabilität in der Zelle
RNA Biochemie 06/35
Anwendungen
Que-Gewirth & Sullenger, 2007
RNA Biochemie 06/36
Anwendung: Targeting
Que-Gewirth & Sullenger, 2007
RNA Biochemie 06/37
Anwendung: Targeting
Macugen (Pegaptanib: PEGylated aptamer inhibitor):
Macula-Degeneration:
Ng et al., 2006
RNA Biochemie 06/38
Anwendung: Targeting
RNA Biochemie 06/39
Anwendung: Targeting
RNA in humanem Serum:
0 sec 60 sec
original Länge
Abbau-Produkt
RNA Biochemie 06/40
Problem: RNA Degradation
+
RNA Hydrolyse:
His
His
RNA Biochemie 06/41
Problem: RNA Degradation
RNA Hydrolyse:
RNA Biochemie 06/42
Problem: RNA Degradation
RNA Hydrolyse:
RNA Biochemie 06/43
Problem: RNA Degradation
RNA ist im Alkalischen sehr instabil
RNA wird durch RNasen schnell zerstört
+
RNA Hydrolyse:
H2‘-Deoxy-NTPs
DNA-Aptamere
RNA Biochemie 06/44
Problem: RNA Degradation
+
RNA Hydrolyse:
• funktionelle OH-Gruppe fehlt: Faltung
• teuer
• nicht alle modifizierten NTPs werden
von RNA Polymerase akzeptiert
• geringere Ausbeute bei TranskriptionRNA Biochemie 06/45
Problem: RNA Degradation
unmodifizierte RNA:
0 sec 60 sec0 h 48 h
2‘-Amino-modifizierte RNA:
RNA Biochemie 06/46
Problem: RNA Degradation
Enantiomere:
all-D-Proteine:
Protease-resistent
all-L-RNA:
RNase-resistent
RNA Biochemie 06/47
Spiegelmere
Inkubation in humanem Serum:
Klussmann et al., 1996
RNA Biochemie 06/48
Spiegelmere
Spiegelmere (L-RNA):
• stabil in biologischen Systemen
mit neutralem pH
• instabil im Alkalischen
Enantiomere:
Noxxon Pharma AG
RNA Biochemie 06/49
Spiegelmere
Klussmann et al., 1996
erkennt Target,
ist aber instabil
ist stabil,
erkennt aber nur Spiegelbild des Targets
RNA Polymerase kann nur D-RNA synthetisieren, aber keine L-RNA (Spiegelmer)
RNA Biochemie 06/50
Spiegelmere
Vater & Klussmann, 2003
RNA Biochemie 06/51
Spiegelmere
RNA als Informationsspeicher: zu instabil!
1. 2‘OH-Gruppe der RNA: Hydrolyse-Risiko
Uracil (U)
(Ribose)
Austausch
gegen
2‘H-Gruppe
RNA Biochemie 06/52
Stabilisierung des Erbguts
RNA als Informationsspeicher: mutationsanfällig!
2. Uracil: Desaminierungsprodukt von Cytosin
Uracil (U)
(Ribose)
Uracil (U)
Desaminierung
Austausch
Uracil gegen
Thymin
RNA Biochemie 06/53
Stabilisierung des Erbguts
RNA als Informationsspeicher: zu instabil!
Uracil (U)
(Ribose)
Ein
führu
ng d
es D
oppels
trangs
3. Einzelstrangbruch: Informationsverlust
RNA Biochemie 06/54
Stabilisierung des Erbguts
RNA als Informationsspeicher: zu instabil!
Reparaturenzyme
RNA Biochemie 06/55
Stabilisierung des Erbguts
3. Einzelstrangbruch: Informationsverlust
2‘OH-Gruppe 2‘H-Gruppe
Uracil Thymin
Einzelstrang Doppelstrang
RNA Biochemie 06/56
DNA ersetzte RNA als Erbgut
Nimjee et al., 2005
RNA Biochemie 06/57
Aptamere