View
3
Download
0
Category
Preview:
Citation preview
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 1 de 65
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 2 de 65
1. OBJETIVO
Asegurar que el muestreo sea representativo para el estudio epidemiológico de la actividad serológica, virológica y bacteriana, según sea el caso, de Influenza Aviar, Newcastle, Laringotraqueitis, Salmonella y Mycoplasma en el país.
2. ALCANCE
Aplica en el ámbito de todas las Direcciones Ejecutivas del Servicio Nacional de Sanidad Agraria – SENASA, en las poblaciones avícolas de los estratos establecidos dentro del estudio.
3. REFERENCIAS
D.S. Nº 029-2007-AG, “Reglamento del Sistema Sanitario Avícola”, Artículo: 19º. D.S. Nº 010-2003-AG, “Reglamento de Control y Erradicación de la enfermedad de Newcastle”. R.J. Nº 230-2002-AG-SENASA, “Plan de acción para la prevención de la enfermedad de Influenza Aviar en el Perú”. PRO-UCDSA-06: Recolección y envío de especímenes/muestras y exámenes solicitados al laboratorio.
4. DEFINICIONES
Confianza: Cuando se trata de demostrar el estatus libre de infección, la confianza es la probabilidad de que el tipo de vigilancia aplicada detecte la presencia de infección si la población está infectada. La confianza depende, entre otros parámetros, del nivel supuesto de infección en una población infectada. El término se refiere a la confianza en la capacidad de detectar la presencia de enfermedad de la vigilancia aplicada y es equivalente a la sensibilidad del sistema de vigilancia. Especificidad: La proporción de unidades verdaderamente negativas que se han identificado correctamente como negativas mediante una prueba. Estudio: Una investigación en la que se recopila información de manera sistemática, que suele llevarse a cabo sobre una muestra de un grupo de población definido, durante un período de tiempo definido. Muestra: El grupo de elementos (unidades de muestreo) tomados de una población en el que se realizan pruebas o se miden parámetros para proporcionar información de vigilancia. Población de estudio: La población de la que se obtienen los datos de vigilancia. Puede ser la misma que la población diana o un subconjunto de ésta. Prueba: Procedimiento utilizado para clasificar una unidad como positiva, o negativa o sospechosa con respecto a una infección o enfermedad. RSSA: Reglamento del Sistema Sanitario Avícola DS Nº 029-2007-AG. Sensibilidad: La proporción de unidades verdaderamente positivas que se han identificado correctamente como positivas mediante una prueba. Sesgo: Tendencia de una estimación a desviarse del valor real en cierta dirección. Sistema de prueba: Combinación de pruebas y reglas de interpretación múltiples que se utilizan para el mismo fin que una prueba.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 3 de 65
Sistema de vigilancia: Un método de vigilancia que puede conllevar una o más actividades componentes y que genera información sobre el estatus con respecto a la salud, enfermedad o zoonosis de las poblaciones animales. Unidades de muestreo: La unidad de la que se toman muestras, en un estudio aleatorio o en una vigilancia no aleatoria. Puede tratarse de un sólo animal o de un grupo de animales (por ejemplo, una unidad epidemiológica). Combinadas, constituyen el marco de muestreo. Vigilancia: La recopilación, el cotejo y el análisis sistemáticos y continuos de datos y la comunicación rápida de la información a quienes la necesiten para que puedan tomar medidas.
5. RESPONSABILIDADES
5.1. El Director de Sanidad Animal es responsable de aprobar el presente documento.
5.2. La Subdirección de Análisis de Riesgo y Vigilancia Epidemiológica, es responsable de actualizar el presente documento de manera coordinada con el Programa Nacional de Sanidad Avícola y de coordinar con la OPDI y la OAD la disponibilidad presupuestaria y el envío de los recursos necesarios, respectivamente, a las Direcciones Ejecutivas para la ejecución del presente procedimiento; asimismo de supervisar la correcta aplicación de este procedimiento a través de la evaluación de los expedientes y documentos que en su cumplimiento y aplicación genera la Dirección Ejecutiva.
5.3. El Director de la Dirección Ejecutiva es el responsable de implementar y monitorear el cumplimiento del presente procedimiento.
5.4. El Jefe de Área de Sanidad Animal de la Dirección Ejecutiva, es el responsable técnico y encargado de coordinar y supervisar el cumplimiento del presente procedimiento.
5.5. El Jefe de Gestión de la Dirección Ejecutiva es responsable de brindar las facilidades logísticas necesarias según corresponda, para el cumplimiento del procedimiento.
5.6. El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, a quien se asigne la función en campo (Vigilancia clínica, serológica y virológica), es responsable de ejecutar el presente procedimiento.
6. DESCRIPCIÓN
La vigilancia zoosanitaria es un componente esencial para detectar enfermedades, llevar a cabo el monitoreo de las tendencias de la enfermedad, luchar contra las enfermedades endémicas y exóticas, apoyar las solicitudes para obtener el estatus libre de enfermedad o infección, proporcionar datos para apoyar el proceso de análisis de riesgos, para fines de salud animal y/o pública, y justificar la lógica de las medidas sanitarias. Los datos de vigilancia respaldan la calidad de los informes sobre el estatus sanitario y deberán satisfacer los requisitos de información para realizar un análisis de riesgo preciso para el comercio internacional, así como para la toma de decisiones internas nacionales.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 4 de 65
6.1. Enfermedades a muestrear:
Influenza aviar
La influenza aviar de declaración obligatoria es una infección de las aves de corral causada por cualquier virus de influenza de tipo A perteneciente al subtipo H5 o H7 o por cualquier virus de influenza aviar con un índice de patogenicidad intravenosa superior a 1,2 (o que cause mortalidad en al menos el 75% de los casos), como se describe más abajo. Los virus de la influenza aviar de declaración obligatoria se dividen en dos categorías: virus de influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena y virus de influenza aviar de declaración obligatoria levemente patógena. Dependiendo de la edad, el tipo de ave y los factores ambientales, la enfermedad muy virulenta puede variar desde una muerte súbita con pocos signos o sin signos patentes, hasta una enfermedad más característica con síntomas respiratorios, exceso de lagrimeo, sinusitis, edema en la cabeza, cianosis de la piel no cubierta de plumas y diarrea.
a. Los virus de la influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena
tienen un índice de patogenicidad intravenosa superior a 1.2 en pollos de 6 semanas de edad, o causan una mortalidad del 75% por lo menos de los pollos de 4 a 8 semanas de edad infectados por vía intravenosa. Los virus H5 y H7 que no tienen un índice de patogenicidad intravenosa superior a 1.2, o que causan una mortalidad inferior al 75% en una prueba de capacidad letal intravenosa deben ser secuenciados para determinar si en el sitio de división de la molécula de hemaglutinina (HA0) se hallan presentes múltiples aminoácidos básicos. Si la secuencia de aminoácidos es la misma que la observada en otros virus de influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena aislados anteriormente, se considerará que se trata de virus de influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena
b. Los virus de la influenza aviar de declaración obligatoria levemente patógena son
todos los virus de influenza de tipo A pertenecientes a los subtipos H5 y H7 que no son virus de la influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena.
Las aves de corral son «todas las aves domesticadas, incluidas las de “traspatio”, que se utilizan para la producción de carne y huevos destinados al consumo, la producción de otros productos comerciales, la repoblación de aves de caza o la reproducción de todas estas categorías de aves, así como los gallos de pelea, independientemente de los fines para los que se utilicen».
Las aves mantenidas en cautividad por motivos distintos de los enumerados en el párrafo anterior, por ejemplo las aves destinadas a espectáculos, carreras, exposiciones, concursos o a la reproducción o la venta de todas estas categorías de aves, así como las aves de compañía, no se considera que sean aves de corral
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 5 de 65
Enfermedad de Newcastle - EN
La variación enorme en la virulencia y en los signos clínicos implica la necesidad de definir cuidadosamente lo que constituye la EN para los propósitos del comercio, políticas y medidas de control. Las cepas del virus de la EN se agrupan en cinco patotipos sobre la base de los signos clínicos observados en los pollos infectados. Estos son: 1. Velogénico viscerotrópico: es muy patogénica en la que se observan frecuentemente lesiones intestinales hemorrágicas; 2. Velogénico neurotrópico: se presenta con mortalidad elevada, habitualmente seguida de signos respiratorios y nerviosos; 3. Mesogénico: se presenta con signos respiratorios y signos nerviosos ocasionales pero baja mortalidad; 4. Lentogénico o respiratorio: se presenta con una infección respiratoria leve o subclínica; 5. Entérico asintomático: normalmente consiste en una infección entérica subclínica. Para la OIE, la enfermedad de Newcastle se define como una infección de aves causada por un virus del serotipo 1 del paramixovirus aviar (APMV-1) que cumple uno de los criterios siguientes de virulencia: a. El virus tiene un índice de patogenicidad intracerebral (IPIC) en polluelos de un
día (Gallus gallus) de 0,7 o superior.
b. Se han demostrado en el virus múltiples aminoácidos básicos (o directamente o por deducción) en el extremo C-terminal de la proteina F2 y un residuo de fenilalanina en la posición 117, la cual está en el extremo N-terminal de la proteina F1. El término “múltiples aminoácidos básicos” se refiere a que existen al menos tres residuos de arginina o lisina entre las posiciones 113 y 116. La imposibilidad de demostrar el modelo característico de residuos de aminoácidos como se ha descrito anteriormente requeriría la caracterización del virus aislado mediante una prueba de IPIC.
Laringotraqueitis
La laringotraqueitis infecciosa aviar (LTI) es una enfermedad respiratoria causada por el herpesvirus tipo 1 de las gallináceas, perteneciente a la familia Herpesviridae. Es, sobre todo, una enfermedad de los pollos, aunque también puede afectar a los faisanes, a las perdices y a los pavos.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 6 de 65
Los signos clínicos y las reacciones patológicas pueden variar desde una gravedad extrema, con muertes de aves por asfixia, hasta una muy leve, no diferenciable de otras enfermedades respiratorias leves de los pollos. La lesión más importante es la traqueitis. El diagnóstico de laboratorio depende del aislamiento del virus, de la demostración de la presencia del virus o de antígenos víricos y de la detección de anticuerpos específicos en el suero. Puede ser valioso el examen histopatológico de la traquea para inclusiones intranucleares características.
Salmonelosis (S. pullorum, S. gallinarum, S. enteritidis)
La pulorosis de los pollos está causada por una Salmonella entérica subspecie entérica serovariedad Pullorum (Salmonella Pullorum)1 y, en su forma aguda, es una enfermedad septicémica prácticamente exclusiva de los polluelos. Sin embargo, el organismo también se puede asociar con la enfermedad en pavipollos. La transmisión ovárica es la ruta principal de propagación de este organismo. Las aves de caza y las de corrales particulares pueden actuar como reservorios de la infección mientras que las aves silvestres pueden funcionar como vectores del organismo y, como tales, son importantes en la epidemiología de la enfermedad. La tifosis aviar en pollos y pavos está causada por S. Gallinarum y se observa con mayor frecuencia en el final del período de crecimiento y en los grupos de aves adultas. Los signos clínicos en polluelos y pavos jóvenes comprenden anorexia, diarrea, deshidratación, debilidad y muerte. En las aves adultas la enfermedad es menos severa, pero puede tener lugar una producción reducida de huevos, una eclosión escasa y algún incremento en la mortalidad. El serovar Enteritidis (así como otras serovariedades de Salmonella spp.) produce un escaso número de bajas en las granjas y la gran mayoría de animales infectados carecen de sintomatología por lo que aparentemente están sanos. El principal problema es que al localizarse en el tracto digestivo de las aves, es fácilmente transmisible a través de las heces a otros animales y a sus producciones (carne y huevos) y, a través de estas, llegar a al ser humano donde, bajo determinadas circunstancias, es capaz de producir enfermedad.
Micoplasmosis (M. gallisepticum, M. synoviae)
La micoplasmosis aviar está causada por varios micoplasmas patógenos de los cuales Mycoplasma gallisepticum (MG) es el más importante y el único que ocasiona una enfermedad de declaración obligatoria según la OIE. Las infecciones por Mycoplasma constituyen uno de los procesos infecciosos más severos en la industria avícola mundial. En la actualidad, se reconocen 20 especies de Micoplasma aviares (Márquez, 1995), destacando las especies M. gallisepticum y
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 7 de 65
M. synoviae, por su mayor importancia económica para la producción avícola en general. Mycoplasma gallisepticum es la causa de una enfermedad respiratoria crónica, especialmente cuando concurre un trato estresante y/o la presencia de otros patógenos respiratorios. La enfermedad se caracteriza por coriza, conjuntivitis, estornudos y sinusitis, particularmente en pavos y aves de caza. Puede originar pérdida de producción y disminución en las aves para carne y en la pérdida de la producción de huevos. Las cepas de MG varían en infectividad y virulencia, y las infecciones pueden ser a veces asintomáticas. El mayor impacto económico de la infección por Mycoplasma synoviae (MS) está referido a gallinas reproductoras y de postura comercial (Ewing et al., 1996; Kleven, 1995). Efectos tales como la disminución marcada de peso y postura, así como la reducción del porcentaje de incubabilidad, aumento de mortalidad embrionaria o la disminución del peso de los pollitos al nacimiento han sido manifestaciones atribuidas a este agente etiológico (Rodríguez-Frías, 1996). La infección por MS tiende a ser muy variable (Kleven, 1990). Este microorganismo puede ingresar vía aerógena y colonizar el tracto respiratorio superior ocasionando dos tipos de manifestaciones infecciosas: sinovitis, por infección vía sanguínea o aerosaculitis, causada como producto de una infección respiratoria crónica. Merece destacar la habilidad de este microorganismo para ser transmitido por vía horizontal y transovárica (Kleven, 1995); sin embargo, se desconocen los patrones de transmisión por el huevo e incluso no se tiene en claro los porcentajes de verticalidad.
6.2. Poblaciones expuestas
Aves: Aves criadas en la industria avícola, crianza de traspatio, aves de riña y aves silvestres (cautiverio y libres - migratorias).
Establecimientos avícolas: Dentro de este concepto se encuentran las granjas avícolas, plantas de incubación, centros de acopio, centros de faenamiento.
6.3. Factores de riesgo existentes
Variables de consideración básica • Granjas tecnificadas: Las granjas tecnificadas son el soporte de la industria
avícola por tanto la población más importante y susceptible (económicamente) a proteger, su movimiento registra entrada de pollos BB de carne, postura o reproducción, y salida de huevos comerciales o para incubación, o aves para beneficio, la aplicación de medidas de bioseguridad esta muy difundida aunque en diferentes escalas. De acuerdo al nivel de bioseguridad las poblaciones más expuestas son las aves de postura comercial por la crianza multiedad que se practica en el país.
• Plantas de Incubación: Constituye un punto obligado de nexo mayormente entre una granja de reproductores que provee de huevos embrionados y otra granja de aves comerciales para huevo o carne que recibe pollos BB, puede darse el caso
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 8 de 65
en menor escala entre reproductores abuelas y reproductoras padres. Las medidas de bioseguridad están muy difundidas.
• Centros de Faenamiento de Aves a gran escala: Establecimiento al que llegan aves vivas para ser faenadas y destinadas al consumo, el movimiento es de ingreso solamente, aunque las unidades móviles que ingresan provienen de granjas y luego van hacia ellas. Las medidas de bioseguridad son compartidas entre el centro de faenamiento y la granja proveedora, cuando se trata del sistema vertical.
• Centros de Acopio de aves: Son una de las variantes de comercialización de aves; genera movimiento de grandes poblaciones de aves a través del ingreso de estas, de diferentes procedencias, y salida de las mismas, vivas, generalmente con destino de los mercados de expendio de pollo fresco que es el más arraigado en el consumo popular. Las medidas de bioseguridad aún están en proceso de difusión y generalización.
• Centros de faenamiento en pequeña escala: Mayormente ingresan aves en pequeñas cantidades, provienen de los centros de acopio y las aves faenadas son para expendio directo al público consumidor o distribución de impacto urbano localizado. No hay bioseguridad. Distribuidos en todo el país.
• Coliseos de Gallos: Centro de reunión obligada de los criadores de aves de combate, ingresan aves para su concurso, generalmente en gallos de navaja el 50% o más de las aves mueren, en gallos de pico puede ser menos el porcentaje; sin embargo hay una fuerte interrelación entre criadores y acarreo de agentes patógenos, pobre bioseguridad, riesgo mayor en los que se celebran peleas de pico que en los de navaja
• Criadores de aves de combate: Distribuidos en todo el país, de poco conocimiento de bases sanitarias y control de enfermedades de aves, de todos los niveles socioeconómico, constituyen una realidad atada a la tradición de la casta gallera, generalmente existe menor cultura sanitaria entre los de pico; dependiendo del interés de los premios y posibilidades de inscripción se presentan a los diferentes eventos gallísticos que se celebran en los coliseos de gallos, suelen realizar encuentros domésticos con motivo de fiestas familiares y de otro tipo. Las medidas de bioseguridad son muy variables, constituyendo en la mayoría de los casos, poblaciones de alto riesgo.
• Criadores de aves de traspatio: Distribuidos igualmente en todos los ámbitos del país. La crianza de aves de traspatio se caracteriza por responder a necesidades de autosostenimiento (constituyendo una fuente de alimentación y eventualmente de dinero por su venta), ocupación laboral, etc. Las medidas de bioseguridad no se aplican en estas poblaciones. Las buenas prácticas de crianza son promovidas a través de actividades de capacitación (Ver afiche de buenas prácticas: Anexo 1)
• Lugares de estancia de aves migratorias: Centros naturales de reunión de aves migratorias de diferentes orígenes algunos intercontinentales, hay pobre información, por antecedentes de trabajos en el mundo científico se sabe que pueden guarecer aves portadoras de influenza aviar, las cuales son asintomáticas.
• Zoocriaderos: Instalaciones para el mantenimiento en cautividad de especimenes de fauna silvestre, para su reproducción y producción de servicios. Las medidas de bioseguridad son variables.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 9 de 65
6.4. Vigilancia clínica:
Se realiza en todas las poblaciones expuestas. La frecuencia de visitas puede variar en función al riesgo de presentación de enfermedad en estas poblaciones, las que son establecidas por la SARVE y el PRONASA.
6.4.1. Para granjas de aves (reproductoras, postura comercial o broilers) o Planta de Incubación:
a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva (D.E.), basado en información del SIGSA, elabora un cronograma de visitas para la inspección de las granjas o planta de incubación activos (inspección basada en el cumplimiento del RSSA, que incluye: evaluación de bioseguridad del establecimiento y de la condición sanitaria de las aves), con una frecuencia SEMESTRAL.
b) Previamente coordina con las empresas avícolas, a fin de asegurar que durante la inspección la granja se encuentre cargada con aves y se respete el periodo de cuarentena de 48 hrs. mínimo, entre establecimientos de diferentes productores; en caso de establecimientos de un mismo productor puede ser menor dependiendo del sistema de crianza y riesgo epidemiológico.
c) Este cronograma de visitas es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA), quien verifica que estén incluidos el 100 % de establecimientos operativos. Información que guarda relación con el SIGSA.
d) El Especialista de sanidad animal, cada inicio de mes enviará el bloque de las visitas del mes, a las empresas vía correo electrónico o coordinará telefónicamente.
e) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan los medios de comunicación necesarios (teléfono fijo, celular, nextel, fax, etc.) para que el especialista de sanidad animal realice las coordinaciones e inspección. Asimismo y de ser el caso se otorgan los viáticos y movilidad según corresponda.
f) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2).
g) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal realiza la inspección en la granja aplicando el acta de inspección REG-SARVE-10 en caso que la inspección sea a una granja avícola o REG-SARVE-11 en caso la inspección sea a una planta de incubación.
h) La inspección inicia con la verificación de los registros de los parámetros de producción de los lotes correspondientes a las semanas anteriores hasta la fecha de inspección, los hallazgos relevantes compatibles con procesos de mortalidad o morbilidad, baja de postura, baja de consumo de alimento, disminución de la tasa de crecimiento, etc. son anotados en el acta de inspección, caso contrario no se indica.
i) Luego, se realiza la inspección ocular del estado sanitario de las aves, respetando las edades de carga (de menor a mayor) en una selección al azar o dirigida en caso se haya detectado alguna irregularidad en los parámetros de producción.
j) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (Anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 10 de 65
k) Si las aves se encuentran aparentemente sanas y la granja avícola no se
encuentra en la lista seleccionada para Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista de sanidad animal, llena el acta de inspección y entrega una copia al responsable de la granja avícola o planta de incubación.
l) Si la granja se encuentra en la lista seleccionada para Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista sigue lo indicado en el item 6.8.1.
m) La información obtenida es ingresada al SIGSA según instructivo (Anexo 4). n) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien valida la
información.
6.4.2. Para Centros de Acopio o de Faenamiento de Aves:
a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, basado en información del SIGSA, elabora un cronograma de visitas para la inspección a Centros de Acopio o Faenamiento (inspección basada en el cumplimiento del RSSA, que incluye: evaluación de condiciones mínimas del establecimiento, buenas prácticas de faenamiento y estado sanitario de las aves durante la comercialización o el faenado), con una frecuencia TRIMESTRAL.
b) Este cronograma de visitas es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de establecimientos operativos. Información que guarda relación con el SIGSA.
c) El Especialista de sanidad animal coordina con el responsable del establecimiento avícola la visita al establecimiento.
d) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan los medios de comunicación necesarios (teléfono fijo, celular, nextel, fax, etc.) para que el especialista de sanidad animal realice las coordinaciones e inspección. Asimismo y de ser el caso se otorgan los viáticos y movilidad según corresponda.
e) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2)
f) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal realiza la inspección en el establecimiento avícola aplicando el acta de inspección REG-SARVE-12 en caso que la inspección sea a un centro de faenamiento o REG-SARVE-13 en caso la inspección sea a un centro de acopio.
g) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (Anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.
h) Si las aves se encuentran aparentemente sanas y la granja de procedencia no se encuentra en la lista del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista de sanidad animal, llena el acta de inspección y entrega una copia al responsable del establecimiento.
i) Si la granja de procedencia de las aves, se encuentra en la lista dentro del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista sigue lo indicado en el item 6.8.1.
j) La información colectada es ingresada al SIGSA según instructivo (Anexo 5). k) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien valida la
información.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 11 de 65
6.4.3. Para Aves de Riña o Traspatio:
a) La inspección sanitaria es un requisito previo a la vacunación de las aves. b) Si la Dirección Ejecutiva tiene establecido realizar campaña de vacunación oficial
contra Newcastle (traspatio y combate): i) El especialista de sanidad animal deberá realizar un cronograma de
seguimiento de las inspecciones realizadas por los vacunadores antes y después de la vacunación.
ii) Este cronograma de supervisiones es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA).
c) Si la Dirección Ejecutiva no tiene establecido realizar campaña de vacunación oficial, la vigilancia clínica de las poblaciones avícolas de traspatio y riña, se hará siguiendo el esquema de muestreo ANUAL realizado para la vigilancia serológica.
d) En ambas situaciones, el Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan, de ser el caso, los viáticos y movilidad según corresponda.
e) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2)
f) El Especialista de sanidad animal realiza la inspección en el predio de traspatio o combate aplicando el formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14).
g) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (ver anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.
h) Si las aves se encuentran aparentemente sanas y el predio de traspatio o combate no se encuentra seleccionada en la lista del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista de sanidad animal, llena el formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14 Registro de Vigilancia Activa) y entrega una copia al propietario de las aves.
i) Si el predio de traspatio o combate se encuentra seleccionado en la lista del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista sigue lo indicado en el item 6.8.2.
j) La información colectada es ingresada al SIGSA (Ver anexo, 5). k) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien así valida y
da conformidad a la información cargada.
6.4.4. Para Zoocriaderos:
a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un cronograma de visitas para la inspección de la condición sanitaria de las aves en estos establecimientos, sobre la base de datos de los empadronamientos realizados, con una frecuencia ANUAL. El mismo que debe coincidir con el cronograma de monitoreos (Vigilancia Serológica y Virológica). Considerar un periodo de cuarentena de 48 hrs. mínimo, entre estos establecimientos.
b) Este cronograma de visitas es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de establecimientos operativos. Información que guarda relación con el SIGSA.
c) El Especialista de sanidad animal coordina con el propietario del zoocriadero la visita al establecimiento.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 12 de 65
d) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión
asignan los medios de comunicación necesarios (teléfono fijo, celular, nextel, fax, etc.) para que el especialista de sanidad animal realice las coordinaciones e inspección. Asimismo y de ser el caso se otorgan los viáticos y movilidad según corresponda.
e) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2)
f) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal realiza la inspección en el zoocriadero aplicando el formato de Vigilancia Activa (REG-SARVE-14 Registro de Vigilancia Activa).
g) Realiza la inspección ocular del estado sanitario de las aves, respetando las edades de las aves (de menor a mayor).
h) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (Anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.
i) Si las aves se encuentran aparentemente sanas y el zoocriadero no se encuentra seleccionado en la lista de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista de sanidad animal, llena el acta de inspección y entrega una copia al responsable del zoocriadero.
j) Si el zoocriadero se encuentra dentro de la lista del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista sigue lo indicado en el item 6.8.4.
k) La información obtenida es ingresada al SIGSA (Ver anexo 5). l) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien así valida y
da conformidad a la información cargada.
6.4.5. Para Coliseos de Gallos:
a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un cronograma de visitas para la inspección de la condición sanitaria de las aves en estos establecimientos durante los principales eventos o reuniones gallísticas (asegurar estar presentes en momentos con mayor volumen de afluencia de aves, importante coliseos con mayor cobertura geográfica del evento, etc), sobre la base de datos de los empadronamientos realizados, con una frecuencia ANUAL.
b) Este cronograma de visitas es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de establecimientos operativos. Información que guarda relación con el SIGSA.
c) El Especialista de sanidad animal coordina con el propietario del coliseo de gallos o asentista responsable del evento gallístico, la visita al establecimiento.
d) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan los medios de comunicación necesarios (teléfono fijo, celular, nextel, fax, etc.) para que el especialista de sanidad animal realice las coordinaciones e inspección. Asimismo y de ser el caso se otorgan los viáticos y movilidad según corresponda.
e) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2).
f) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal realiza la inspección en el coliseo de gallos aplicando el acta de inspección REG-SCEE/PRONASA-18 (Acta de Inspección de Requisitos mínimos para realización de eventos gallísticos).
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 13 de 65
g) Realiza la inspección ocular del estado sanitario de las aves, antes del inicio de
las peleas. h) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad
notificable (ver anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.
i) Si las aves se encuentran aparentemente sanas, el especialista de sanidad animal, llena el acta de inspección REG-SCEE/PRONASA-18 y entrega una copia al responsable del evento gallístico o al propietario del coliseo de gallos.
j) La información obtenida es ingresada al SIGSA. k) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien valida y da
conformidad a la información cargada.
6.4.6. Para Perihumedales:
a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, durante la elaboración de su cronograma de visitas para la inspección de la condición sanitaria de las aves en crianzas de aves de traspatio y de riña, incluye a los perihumedales como zonas de vigilancia de aves centinelas (domésticas en zona de exposición o riesgo) y aves silvestres residentes y migratorias.
b) La vigilancia de las aves silvestres en el perihumedal consistirá en la verificación de mortalidad anormal de estas poblaciones en épocas del año donde se realiza la migración, esto es entre los meses de: Octubre a Marzo.
c) Los humedales donde se realzará la vigilancia, son los considerados en el diseño de vigilancia serológica. (ver anexo 7)
d) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2).
e) El especialista de sanidad animal realiza la inspección en el perihumedal, e indaga sobre anormalidades observadas en estas poblaciones, a los pobladores de estos humedales.
f) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (ver anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.
6.5. Vigilancia Serológica:
a) Las aves de granjas de Engorde o Broilers son muestreadas para colección de sangre y obtención de SUERO con el propósito de evaluar la presencia de anticuerpos contra el virus de Influenza Aviar (ELISA), mientras que para el caso de Reproductoras y Ponedoras Comerciales se evalúa la presencia de anticuerpos contra el virus de Influenza Aviar (ELISA) y Mycoplasma (gallisepticum y sinoviae) (ELISA).
b) Las aves de las crianzas de traspatio, traspatio perihumedal y combate, son muestreadas para colección de sangre y obtención de SUERO con el propósito de evaluar la presencia de anticuerpos contra el virus de Influenza Aviar. Se utilizan las siguientes pruebas:
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 14 de 65
Enfermedad Prueba a Realizar
Influenza Aviar ELISA (*)
Mycoplasmosis ELISA
(*) Confirmación con Inmunodifusión en gel de agar
6.6. Vigilancia Virológica o de Identificación de Agente:
En las aves de granjas tecnificadas (reproductoras, postura comercial y broilers o engorde), de combate, de traspatio, de traspatio que se encuentren cercanas al perihumedal y aves de zoocriaderos, se colectará muestras para identificación viral (del virus de Newcastle, Influenza Aviar y Laringotraqueitis) empleando la técnica de PCR. Para el caso específico de Granjas de Reproductores y Ponedoras comerciales, se colectarán, además, hisopos de arrastre de los galpones, para la identificación de Salmonella. Se aplicarán las siguientes técnicas:
Enfermedad Técnica a Realizar
Influenza Aviar PCR
Newcastle PCR
Laringotraqueitis PCR
Salmonellosis Cultivo e Identificación de Salmonella
6.7. Diseño muestral:
6.7.1. Poblaciones a muestrear:
Considerando los objetivos de medición se realizarán muestreos en:
a. Aves de crianza tecnificada b. Aves de crianza familiar en traspatio c. Aves de crianza familiar perihumedal. d. Aves de combate e. Aves silvestres en cautiverio (zoocriaderos)
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 15 de 65
6.7.2. Ámbito del muestreo:
Se realizará en todos los departamentos del Perú distribuidos en las áreas de influencia de las Direcciones Ejecutivas del SENASA.
6.7.3. Tamaño de muestra
La fórmula para determinar el tamaño de muestra es la siguiente (Cannon y Roe, 1982)
Donde:
n = Tamaño de la muestra requerida N = Tamaño de la población d = Número de animales enfermos en la población (para la prevalencia propuesta en %) NC = Nivel de confianza (95%)
6.8. DESCRIPCIÓN:
6.8.1. Para granjas de aves (reproductoras, ponedoras o broilers):
a) Se realiza SEMESTRALMENTE durante los meses de Mayo a Junio y Octubre a
Noviembre. b) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un
cronograma de muestreos en las granjas o planta de incubación. Previa coordinación con las empresas avícolas, a fin que durante el muestreo la granja se encuentra cargada con aves y se respete el periodo de cuarentena de 48 hrs. mínimo, entre establecimientos de diferentes productores.
c) Para elaborar la lista de las granjas seleccionadas al azar, se emplea la información de los registros del SIGSA. Filtrar la información que corresponda sólo a explotaciones comerciales.
d) La edad del ave para el muestreo será el siguiente:
Tipo de Explotación Edad de muestreo Broilers Edad de venta (35-45
dias) Postura Comercial Mayores de 18 sem Reproductoras Mayores de 18 sem.
n = [1- (1 – NC)1/d] x [N – (d-1)] 2
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 16 de 65
e) Este cronograma será diseñado de tal manera que coincida con el cronograma de
vigilancia clínica, sólo para aquellos establecimientos donde se hagan ambas actividades (vigilancia clínica y serológica).
f) El Especialista de sanidad animal coordina con la empresa avícola el muestreo en el establecimiento.
g) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 6)
h) Para granjas de Broilers el muestreo se hará en los Centros de Faenamiento, debiendo para ello coordinar con el productor o responsable de la granja avícola la fecha y lugar donde se faenen las aves.
i) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal acude a la granja de Reproductoras y Ponedoras o centro de faenamiento (para el caso de Broilers) para realizar la toma de muestras.
j) El número de muestras a colectar por tipo de establecimiento es el que se indica en la Tabla Nº 1.
k) De cada granja se toma muestras de sangre de 33 aves para obtención de suero. l) El total de sueros serán remitidos al laboratorio de Patología Aviar, generando
solicitud de diagnóstico en el SIGSA, de sólo 30 de ellos, a fin de que si alguno llega en cantidad insuficiente o en mal estado pueda ser reemplazado por los otros 3 (Prevalencia intragranja: 10% NC: 95%).
m) Las muestras de sangre se toman del tercer galpón de la granja. n) En caso la granja tenga menos de tres galpones, toma 16 aves de cada galpón
(16 x 2= 32 muestras) o las 33 del único galpón. o) Si alguna de las granjas tiene una población extremadamente superior al
promedio excluyéndola (ejemplo: 5 a 10 veces o más de la población promedio) ameritará realizar un muestreo específico de 150 aves, distribuidas en 5 galpones a razón de 30 aves por galpón, los galpones se pueden escoger también de módulos o grupos de galpones, los galpones se elegirán de manera sistemática es decir dividiendo el número total de galpones entre 5, la cifra obtenida será el intervalo entre el cual se elige un galpón a muestrear.
p) La toma de muestra de sangre se realizaran siguiendo lo indicado en el procedimiento de toma y envío de muestras. (PRO-UCDSA-06 y Anexo 7).
q) Las pruebas diagnósticas a solicitar son las que se indican en el Anexo 8. r) La vigilancia virológica consiste en la colecta de hisopos de mucosa traqueal,
para identificación viral por PCR (Influenza Aviar, Newcastle, Laringotraqueitis).
s) De cada granja se colecta 5 hisopados, los cuales son conservados en un tubo con medio de transporte viral, formando un pool.
t) La toma de muestra virológica se realizará siguiendo lo indicado en el instructivo de toma y envío de muestras (PRO-UCDSA-06 y Anexo 7).
u) Para la vigilancia de Salmonella, se colecta 4 hisopados de arrastre: 1 pool de 2 hisopos, en 2 galpones, siguiendo lo indicado en el instructivo de toma y envío de muestras de hisopados de arrastre (Anexo 7)
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 17 de 65
Nro de Granjas Sueros*
Pool de Hisopos Traqueales (5 hisopos x pool)**
Nro de Granjas Sueros*
Pool de Hisopos Traqueales (5 hisopos x pool)**
Pool de Hisopos de arrastre (2 hisopos x pool)***
Nro de Granjas Sueros*
Pool de Hisopos Traqueales (5 hisopos x pool)**
Pool de Hisopos de arrastre (2 hisopos x pool)***
total granjas
Total aves (suero)*
Total pools de hisopos traqueales **
Total de pools de Hisopos de Arrastre
Lima Callao 81 2673 81 10 330 10 20 20 660 20 40 111 3663 111 60La Libertad 26 858 26 13 429 13 26 28 924 28 56 67 2211 67 82Ica 17 561 17 5 165 5 10 24 792 24 48 46 1518 46 58Tacna 24 792 24 1 33 1 2 9 297 9 18 34 1122 34 20Arequipa 15 495 15 2 66 2 4 4 132 4 8 21 693 21 12Loreto 7 231 7 0 0 0 0 2 66 2 4 9 297 9 4Lambayeque 2 66 2 1 33 1 2 3 99 3 6 6 198 6 8San Martín 2 66 2 1 33 1 2 3 99 3 6 6 198 6 8Madre de Dios 3 99 3 1 33 1 2 1 33 1 2 5 165 5 4Ancash 2 66 2 1 33 1 2 0 0 0 0 3 99 3 2Piura 2 66 2 0 0 0 0 1 33 1 2 3 99 3 2Puno 0 0 0 2 66 2 4 1 33 1 2 3 99 3 6Junín 1 33 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 33 1 0Cusco 0 0 0 1 33 1 2 0 0 0 0 1 33 1 2Cajamarca 0 0 0 0 0 0 0 1 33 1 2 1 33 1 2TOTAL 182 6006 182 38 1254 38 76 97 3201 97 194 317 10461 317 270
*** para aislamiento e identificación de Salmonella, sólo para Reproductoras y Ponedoras Comerciales, por SEMESTRE.
Muestreo Granjas Tecnificadas
* para pruebas de ELISA (Influenza Aviar y Micoplasma), por SEMESTRE
** para aislamiento viral DE IA, ENC y LT, por SEMESTRE
Broiler Reproductoras Ponedoras TOTAL
Tabla Nº 1
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 18 de 65
v) El especialista de sanidad animal, recava la información necesaria para realizar
análisis de los resultados obtenidos, empleando formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14).
w) La información recavada, es ingresada al SIGSA, en VIGILANCIA ACTIVA, en el motivo: MUESTREO PRONASA.
x) La información considerada como condicional para el cierre es la siguiente: i. Ubicación Geográfica: Departamento, Provincia, Distrito y datos
georeferenciales. ii. Datos prediales: Nombre del Productor o propietario de las aves,
Tipo de Crianza. iii. Historia Clínica: Sintomatología, Vacunación (CONSIDERAR LAS
ENFERMEDADES A MONITOREAR: Newcastle, Laringotraqueitis, Salmonellas y Micoplasmas)
y) Cada tipo de muestras (sueros, hisopos de mucosa traqueal e hisopo de arrastre)
es ingresada en fichas diferentes, para ello generada una ficha, debe copiar la ficha y sólo cambiar el tipo de muestras a ingresar. Ver instructivo Anexo 5.
z) Una vez generada la solicitud de diagnóstico en el SIGSA, el JASA da la conformidad a la información y CIERRA la ficha.
aa) Las muestras se envían debidamente rotuladas, empacadas y conservadas en refrigeración, al laboratorio de sanidad animal, en el plazo que se indica a continuación:
Tipo de muestra Tiempo máximo de remisión de muestra (*)
Suero sanguíneo refrigerado 1 semana Suero sanguíneo congelado Hasta 1 mes
Hisopo en medio de transporte viral 36 horas Hisopo de arrastre en medio Cary
Blair 5 días
(*) Considerar el tiempo desde la toma de muestra hasta el INGRESO a la UCDSA. bb) El centro de diagnóstico de sanidad animal, recepciona las muestras y entrega
informe de ensayo en el SIGCED, siguiendo lo indicado en el PRO-UCDSA-05. cc) Una vez se cuente con los resultados de laboratorio, estos serán entregados a los
propietarios de las aves.
6.8.2. Para aves de combate y traspatio:
a) Se realiza ANUALMENTE durante los meses de Mayo a Junio. b) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un
cronograma de muestreos en estas crianzas. c) Para elaborar la lista de crianzas de traspatio y combate seleccionadas al azar, se
emplea la información de los registros del SIGSA de las campañas de vacunación. d) Para aquellas direcciones donde no se realice campaña de vacunación oficial, la
información se elabora en base a la información del censo agropecuario o por el histórico en la región, priorizándose los distritos por:
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 19 de 65
a. Población de aves que exista en los distritos o provincias. b. Presencia de granjas tecnificadas de aves. c. Coliseos de gallos. d. El histórico de ocurrencias de enfermedades en aves.
e) La cantidad de aves de riña y traspatio a muestrear por departamento se distribuirá por predio y por distrito, dando preferencia a los distritos que presenten granjas tecnificadas de aves.
f) En caso de departamentos que no presenten granjas tecnificadas, dar preferencia a los distritos con presencia de coliseos de gallos o al histórico de ocurrencias de enfermedades en aves.
g) La cantidad de aves a muestrear por distrito, se obtendrá de la siguiente operación:
a. Seleccionar los distritos con granjas, coliseos de gallos y/o con historial de ocurrencia de enfermedades en aves.
b. Dividir el total de predios asignado a su departamento, entre el número de distritos que cuenta con granjas, coliseos de gallos y/o historial de ocurrencia de enfermedades de aves; la cifra obtenida corresponde a la cantidad de predios a visitar por distrito seleccionado.
c. Aplicar redondeo simple excepto en caso que el valor sea 0, donde se redondeará hacia 1 es decir muestrear al menos en una casa. Ejemplo:
Región X: Cuenta con 25 distritos en total, de los cuales sólo en 13 distritos existen
granjas, coliseos de gallos o tiene historial de ocurrencia de enfermedades en aves, o ambos.
Número de predios asignados de acuerdo al diseño muestral: 10
Cálculo:
d. Redondeando se obtiene un predio por distrito, por lo tanto se muestrea en 13 predios distribuidos en 13 distritos a razón de un predio por distrito.
h) La edad del ave para el muestreo será el siguiente:
Tipo de Explotación Edad de muestreo Aves de combate (♀ o ♂)
Mayores de 8 meses
Crianzas de traspatio Pollos Mayores de 8 semanas Gallinas Mayores de 12 semanas
10 ------ = 0.769 13
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 20 de 65
i) El cronograma de muestreos es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal
(JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de los establecimientos seleccionados para el muestreo.
j) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan, de ser el caso, los viáticos y movilidad según corresponda.
k) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Ver anexo 6).
l) El número de muestras a colectar es el que se indica en la Tabla 2.
Región predios
aves* (13 aves x predio)
Pool de hisopos (5 hisopos por pool)** predios
aves* (13 aves x predio)
Pool de hisopos (5 hisopos por pool)**
Lima Callao 48 624 48 9 117 9La Libertad 29 377 29 0 0 0Ica 19 247 19 0 0 0Tacna 10 130 10 5 65 5Arequipa 10 130 10 0 0 0Loreto 10 130 10 0 0 0Lambayeque 10 130 10 1 13 1San Martín 10 130 10 10 130 10Madre de Dios 10 130 10 10 130 10Ancash 10 130 10 10 130 10Piura 10 130 10 10 130 10Puno 10 130 10 0 0 0Junín 10 130 10 10 130 10Cusco 10 130 10 10 130 10Cajamarca 10 130 10 5 65 5Tumbes 10 130 10 10 130 10Amazonas 10 130 10 10 130 10Huanuco 10 130 10 10 130 10Pasco 10 130 10 10 130 10Huancavelica 10 130 10 10 130 10Ayacucho 10 130 10 10 130 10Apurimac 10 130 10 10 130 10Moquegua 10 130 10 10 130 10Ucayali 10 130 10 10 130 10
306 3978 306 170 2210 170* para pruebas de ELISA (IA)
** para aislamiento viral o PCR (ENC, IA, LT)
Muestreo aves de riña y traspatioriña traspatio
Tabla Nº 2
m) De cada predio o propietario se colecta 13 muestras de sangre (Prevalencia intradomiciliaria: 20%, NC: 95%) para identificación de anticuerpos (ELISA) contra Influenza Aviar y 5 hisopos, los cuales son conservados en un medio de
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 21 de 65
transporte viral, formando un pool, para identificación viral mediante PCR para Newcastle , Influenza Aviar y Laringotraqueitis.
n) La toma de muestra serológica y virológica se realizará siguiendo lo indicado en el instructivo de toma y envío de muestras (PRO-UCDSA-06 y Anexo 7).
o) El especialista de sanidad animal, recava la información necesaria para realizar análisis de los resultados obtenidos, empleando formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14).
p) La información recavada, es ingresada al SIGSA, en VIGILANCIA ACTIVA, en el motivo: MUESTREO PRONASA.
q) La información considerada como condicional para el cierre es la siguiente:
i) Ubicación Geográfica: Departamento, Provincia, Distrito y datos georeferenciales.
ii) Datos prediales: Nombre del Productor o propietario de las aves, Tipo de Crianza.
iii) Historia Clínica: Sintomatología, Vacunación (CONSIDERAR LAS ENFERMEDADES A MONITOREAR: Newcastle, y Laringotraqueitis)
r) Una vez generada la solicitud de diagnóstico en el SIGSA, el JASA da la conformidad a la información y CIERRA la ficha.
s) Las muestras se envían debidamente rotuladas, empacadas y conservadas, al laboratorio de sanidad animal.
t) El centro de diagnóstico de sanidad animal, recepciona las muestras y entrega informe de ensayo en el SIGCED, siguiendo lo indicado en el PRO-UCDSA-05.
u) Una vez se cuente con los resultados de laboratorio, copia de estos serán entregados al propietario de las aves.
6.8.3. Para aves de traspatio perihumedal:
a) Se realiza ANUALMENTE durante los meses de Abril a Mayo. b) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un
cronograma de muestreos en estas crianzas. c) Para elaborar la lista de crianzas de traspatio perihumedal, seleccionadas al azar,
se emplea la información de los registros del SIGSA de las campañas de vacunación. En aquellas regiones donde no se realiza campaña de vacunación, se empleará la información de los anteriores monitoreos.
d) Los humedales que serán vigilados de manera indirecta, son los que se encuentran en el anexo 9.
e) Las aves a muestrear alrededor de cada humedal corresponde a 63 aves por villa ubicada en la periferia del humedal, para detectar anticuerpos contra Influenza Aviar (ELISA) y Newcastle (HI)
f) De estas aves se colecta muestras de sangre para obtención de suero (Prevalencia: 5%, NC: 95%); escoger 7 aves por vivienda, muestrear en 9 viviendas seleccionadas con preferencia a las que se encuentren más cercanas a la orilla.
g) Las aves de traspatio ubicadas alrededor de los humedales, también están sujetas a vigilancia virológica y se realizan hisopados traqueales, para
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 22 de 65
identificación viral por PCR del virus de Newcastle, Influenza Aviar y Laringotraqueitis.
h) Se colecta 5 hisopos traqueales del primer predio a visitar por Villa Perihumedal, formando 1 pool por Villa.
i) En aquellos predios donde existan más de una especie de aves, seleccionar a la especie que se encuentre en mayor porcentaje, dándole mayor importancia a las especies que son mas susceptibles a la Influenza Aviar, siendo el siguiente el orden: pollos, gallinas, gallos, pavos.
j) La edad del ave para el muestreo será el siguiente:
Tipo de Explotación Edad de muestreo Crianzas de traspatio Pollos Mayores de 8 semanas Gallinas Mayores de 12 semanas
k) El cronograma de muestreos es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal
(JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de los establecimientos seleccionados para el muestreo.
l) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan, de ser el caso, los viáticos y movilidad según corresponda.
m) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Ver anexo 6).
n) El número de muestras a colectar es el que se indica en la tabla Nº 3. o) La toma de muestra serológica y virológica se realizará siguiendo lo indicado en el
instructivo de toma y envío de muestras (PRO-UCDSA-06 y Anexo 7). p) El especialista de sanidad animal, recava la información necesaria para realizar
análisis de los resultados obtenidos, empleando formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14).
q) La información recavada, es ingresada al SIGSA, en VIGILANCIA ACTIVA, en el motivo: MUESTREO PRONASA.
r) La información considerada como condicional para el cierre es la siguiente: i. Ubicación Geográfica: Departamento, Provincia, Distrito y datos
georeferenciales. ii. Datos prediales: Nombre del Productor o propietario de las aves,
Tipo de Crianza. iii. Historia Clínica: Sintomatología, Vacunación (CONSIDERAR LAS
ENFERMEDADES A MONITOREAR: Newcastle, y Laringotraqueitis)
s) Una vez generada la solicitud de diagnóstico en el SIGSA, el JASA da la
conformidad a la información y CIERRA la ficha. t) Las muestras se envían debidamente rotuladas, empacadas y conservadas, al
laboratorio de sanidad animal. u) El centro de diagnóstico de sanidad animal, recepciona las muestras y entrega
informe de ensayo en el SIGCED, siguiendo lo indicado en el PRO-UCDSA-05. v) Una vez se cuente con los resultados de laboratorio, copia de estos serán
entregados al propietario de las aves.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 23 de 65
traspatio perihumedal
Regió
n
Muestreo Aves de Traspatio perihumedal
humedales aves*grupos 5 hisopos**
Lima Callao 8 504 8La Libertad 13 819 13Ica 14 882 14Tacna 1 63 1Arequipa 10 630 10Loreto 3 189 3Lambayeque 1 63 1San Martín 0 0 0Madre de Dios 0 0 0Ancash 0 0 0Piura 0 0 0Puno 8 504 8Junín 0 0 0Cusco 0 0 0Cajamarca 1 63 1Tumbes 0 0 0Amazonas 0 0 0Huanuco 0 0 0Pasco 0 0 0Huancavelica 0 0 0Ayacucho 0 0 0Apurimac 0 0 0Moquegua 0 0 0Ucayali 0 0 0
59 3717 59
traspatio perihumedal
Regió
n
** para aislamiento viral o PCR (ENC, IA, LT)
* para pruebas de ELISA (IA)
Tabla Nº 3
6.8.4. Para aves de zoocriaderos:
a) Se realiza ANUALMENTE durante los meses de Abril a Mayo. b) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un
cronograma de muestreos en estas crianzas. c) El muestreo en estas poblaciones se hará en el total de zoocriaderos según
información en Anexo 10. d) El número de muestras a colectar en cada zoocriadero, es de 5 hisopos
traqueales, formando un pool por zoocriadero. e) Si las aves son muy pequeñas, colectar como mínimo, 5 gramos de muestras de
heces frescas de la jaula. La colecta de heces debe hacerse en las primeras horas de la mañana y serán conservadas en el medio de transporte viral.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 24 de 65
f) Previamente coordinar con el propietario a fin de que en las primeras horas de la
mañana, coloque en la base de la jaula papel kraft o papel aluminio, a fin de recolectar las heces más frescas.
g) La vigilancia virológica se realizará para la identificación por PCR del virus de Newcastle e Influenza Aviar.
h) El cronograma de muestreos es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de los establecimientos.
i) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan, de ser el caso, los viáticos y movilidad según corresponda.
j) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad (Ver anexo 7).
k) El número de muestras a colectar es el que se indica:
** para aislamiento viral o PCR (ENC e IA)
l) La toma de muestra virológica se realizará siguiendo lo indicado en el instructivo
de toma y envío de muestras (PRO-UCDSA-06 y Anexo 8). m) El especialista de sanidad animal, recava la información necesaria para realizar
análisis de los resultados obtenidos, empleando formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14).
n) La información recavada, es ingresada al SIGSA, en VIGILANCIA ACTIVA, en el motivo: MUESTREO PRONASA.
o) La información considerada como condicional para el cierre es la siguiente: i. Ubicación Geográfica: Departamento, Provincia, Distrito y datos
georeferenciales. ii. Datos prediales: Nombre del Productor o propietario de las aves,
Tipo de Crianza. iii. Historia Clínica: Sintomatología, Vacunación (CONSIDERAR LAS
ENFERMEDADES A MONITOREAR: Newcastle, y Laringotraqueitis)
p) Una vez generada la solicitud de diagnóstico en el SIGSA, el JASA da la conformidad a la información y CIERRA la ficha.
q) Las muestras se envían debidamente rotuladas, empacadas y conservadas, al laboratorio de sanidad animal.
prediosgrupos 5 hisopos**
Lima Callao 11 11La Libertad 1 1Ica 2 2Tacna 1 1Arequipa 5 5Lambayeque 2 2Cajamarca 2 2Amazonas 1 1Huanuco 1 1
26 26
Regió
nZoocriaderos
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 25 de 65
r) El centro de diagnóstico de sanidad animal, recepciona las muestras y entrega
informe de ensayo en el SIGCED, siguiendo lo indicado en el PRO-UCDSA-05. s) Una vez se cuente con los resultados de laboratorio, copia de estos serán
entregados al propietario de las aves.
7. REGISTROS
REG-DSA/PRONASA-03: Acta de Interdicción. REG-SARVE-10: Acta de Inspección de Bioseguridad en Granjas Avícolas. REG-SARVE-11: Acta de Inspección de Bioseguridad en Plantas de Incubación. REG-SARVE-12: Acta de Inspección de Bioseguridad y Buenas prácticas durante el faenado. REG-SARVE-13: Acta de Inspección de Bioseguridad y Buenas prácticas durante la comercialización de aves vivas. REG-SARVE-14: Registro de Vigilancia Activa. REG-SCEE/PRONASA-18: Acta de Inspección de requisitos mínimos para realización de eventos gallísticos.
8. ANEXOS
Anexo 1: Volante: “Buenas Prácticas de Crianza”. Anexo 2: Materiales y Equipos Necesarios para la Vigilancia Clínica. Anexo 3: Lista de Enfermedades Aviares de Notificación Obligatoria. Anexo 4: Instructivo de Ingreso de Información de Vigilancia Clínica (Inspección de Bioseguridad y Estado Sanitario de Aves) Anexo 5: Relación de Humedales vigilados a nivel nacional. Anexo 6: Instructivo de ingreso de información de vigilancia activa al SIGSA. Anexo 7: Materiales y equipos necesarios para la vigilancia serológica. Anexo 8: Instructivo toma y envío de muestras al laboratorio. Anexo 9: Cuadro de pruebas por tipo de establecimiento. Anexo 20: Lista de zoocriaderos
9. CONTROL DE CAMBIOS
PARRAFO DICE DEBE DECIR
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 26 de 65
REG-DSA/PRONASA-03
ACTA DE INTERDICCIÓN Nro ___________-200_-AG-SENASA-__________ En la ciudad o localidad de ________________________; el ______ de ____________ del dos mil_______; siendo las ______ horas, el suscrito; _______________________________________________________________, Médico Veterinario, Especialista en Sanidad Animal del Servicio Nacional de Sanidad Agraria, se hizo presente en _______________________________________________________________de propiedad del Sr (a): _________________________________________ con DNI _________________ a fin de realizar la siguiente diligencia: ______________________________________________________________________________________________________________________________contando con la participación de : ___________________________________con DNI__________________ y _______________________________________________________________ con DNI _________________ , donde se constató la presencia de aves con sintomatología compatible con Influenza Aviar, razón por la que se procede a interdictar el predio__________________________________________________________, hasta la obtención de los resultados del Laboratorio de Sanidad Animal del Servicio Nacional de Sanidad Agraria. El propietario, Sr.________________________________________ con DNI:________________, se compromete a no movilizar sus aves, productos o subproductos avícolas hasta el levantamiento de la interdicción por el SENASA, salvo autorización de este último. ________________________ ___________________________ Nombre Completo: Nombre Completo: DNI: DNI: ___________________________ ____________________________ Nombre Completo: Nombre Completo: DNI: DNI:
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 27 de 65
REG-SARVE-10 ACTA DE INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD EN GRANJAS AVÍCOLAS
Nº de Acta____________________
Datos de la Granja Avícola01 Nombre de la Granja 02 Número de Registro SENASA
03 Productor Avícola 04 Departamento
05 Provincia 06 Distrito
07 Teléfono 08 Ubicación Geográfica
Norte Este
09 Giro Comercial
Carne Postura Comercial Reproductores de Carne Reproductores de Postura Otros
10 Categoría Animal
Pollos Pavos Patos Gansos Codornices Avestruces
Datos del Responsable de Sanidad de la Granja11 Apellido Paterno 12 Apellido Materno
13 Nombre(s) 14 Nº Colegiatura (CMVP)
Datos del Especialista que realiza la Inspección 15 Apellido Paterno 16 Apellido Materno 17 Nombres
18 Fecha de Inspección:
19 Área Externa
Aislamiento de granja respecto a otras
Aislamiento de granja respecto de centros poblados
Aislam. de granja respecto a Planta de Incubación
Aislam. de granja respecto a Planta de Alimento Balanceado
Aislam. de granja respecto a Centro de Faenamiento
Aislam. de granja respecto a Centro de Acopio
Aislam. de granja respecto a Centros de Lavado (Lavaderos de Camiones y Equipos avícolas)
Aislamiento de Granja respecto a Humedales, bofedales o lagunas.
Distancia de granja a carreteras
Garita de control
Cerco perimétrico o Barreras
Desinfección de vehiculos
Registros de ingreso
Programa con sus vecinos, medidas de bioseguridad conjunta en su zona
20 Área Interna
Duchas para el personal y visitas
Disponibilidad de agua caliente
Viviendas dentro del área de crianza
Instalaciones de fácil higienización
Los galpones se encuentran enmallados de tal manera que eviten el ingreso de aves.(solo si se
encuentra cerca de Humedales)
Cumplimiento
9
9
SI NO9
9
9
9
9
Cambio de ropa para ingreso a granja
Comp. 3ra.
Artículo Condición
Comp. 3ra
Obligación
Obligación
36
Obligación
Bioseguridad
Obligación
Obligación
Obligación
Obligación
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Obligación
Bioseguridad
Dirección Desconcentrada :
Fecha Ejecución :
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 28 de 65
Presencia de aves de edades múltiples
Fumigación de huevos fértiles (sólo reproductoras)
Condiciones adecuadas para almacén de huevos comerciales o fértiles
Presencia de otras aves dentro de granja
Presencia de otras especies dentro del area de crianza
Existe un programa de limpieza y desinfección
Existe un programa de control de plagas
Agua limpia y libre de microrganismos patógenos: Se realiza manejo sanitario o control del agua
Del sistema de abastecimiento: Los reservorios de Agua se encuentran adecuadamente cubiertos.
Mesa de necropsia
Eliminación o manejo de Desechos: Existe infrestructura adecuada para la eliminación de aves
muertas u otros desechos
Existen SSHH para el personal
El personal está capacitado con las buenas prácticas de higiene
Cuenta con un registro de ocurrencias sanitarias
El profesional responsable cuenta con documentación sobre el destino de la producción
Buenas práct icas en el manejo de plumas, guano o productos de desecho, antes de salir de la
granja.
Los materiales utilizados para el transporte de aves vivas y huevos son descartables o
higienizables.
21 Otras Inspecciones
Del Nº de Registro del Establecimientos Avícolas (guías de remisión)
De las condiciones del transporte de huevos
De los equipos empleados para el transporte de aves vivas y huevos
22 Parámetros de Producción
Porcentaje de mortalidad:
Porcentaje de morbilidad:
Causa de la ocurrencia:
Edad y Peso de las aves:
Dest ino de Cama:
Medicación administrada:
23 Calendario Sanitario:
Edad de Aplicación Nombre Comercial de vacuna y Vía de aplicación Lote Nº de Serie Laboratorio
24 Conclusiones
Firma Firma Veterinario Responsable Especialista SENASA
Observaciones (si es no conforme detallar artículos observados)Confomidad
Si No
Obl igación
23
35
33 y 34
36
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Obligación
Obligación
Requisito
Requisito
Bioseguridad
Requisito
Bioseguridad
Bioseguridad
Obligación
Obligación
Obligación
Obligación
24
33 y 34
59
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 29 de 65
REG-SARVE-11 ACTA DE INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD EN PLANTAS DE INCUBACIÓN
Nº de Acta____________________
Datos de la Planta de Incubación01 Nombre de la Planta de Incubación 02 Número de Registro SENASA
03 Productor Avícola 04 Departamento
05 Provincia 06 Distrito
07 Teléfono 08 Ubicación Geográfica
Norte Este
09 Categoría Animal
Pollos Pavos Patos Gansos Codornices Avestruces
Datos del Responsable de Sanidad de la Planta de Incubación10 Apellido Paterno 11 Apellido Materno
12 Nombre(s) 13 Nº Colegiatura (CMVP)
Datos del Especialista que realiza la inspección 14 Apellido Paterno 15 Apellido Materno 16 Nombres
17 Fecha de Inspección:
18 Área Externa
Aislamiento de P. Incubación respecto a otras P Incubación 9Aislamiento de P. Incubación respecto a Granjas 9Aislamiento de P Incubación respecto de centros poblados
Aislam. de P Incubación respecto a Carreteras
Aislam. de P Incubación respecto a Planta de Alimento balanceado 9Aislam. de P Incubación respecto a Centro de Faenamiento 9Aislam. de P Incubación respecto a Centro de Acopio 9Garita de control
Cerco perimétrico o Barreras
Desinfección de vehiculos
Registros de ingreso
19 Área Interna
Duchas y Vestidores
Disponibilidad de indumentaria
Programa de limpieza y desinfección en nacedoras
Programa de limpieza y desinfección en ambientes
Programa de monitoreo microbiológico en Incubadoras
Programa de monitoreo microbiológico en nacedoras
Programa de monitoreo microbiológico en ambientes
Programa de control integral de plagas
Se realiza adecuada eliminación de desechos 34Existen SSHH para el personal
El personal está capacitado con las buenas prácticas de higiene
Realiza control de Ingreso y salida de huevos fértiles y pollitos BB 25Agua limpia y libre de microrganismos patógenos: Se realiza manejo sanitario o control del agua
El personal está capacitado con las buenas prácticas de higiene
Cuenta con un registro de ocurrencias sanitarias
El profesional responsable cuenta con documentación sobre el destino de la producción
Buenas práct icas en el manejo de productos de desecho, antes de salir de planta de incubación
Desagüe adecuado, en forma tal que no afecta a terceros.
CumplimientoArtículo
SI NO
Programa de limpieza y desinfección en Incubadoras 36
36
36
36
36
36
35
23
24
Obligación
Obligación
Obligación
Obligación
Bioseguridad
Bioseguridad
Obligación
Obligación
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Obligación
Obligación
Obligación
Obligación / Requiisto
Bioseguridad
Condición
Bioseguridad
Obligación
Requisito
Bioseguridad
Bioseguridad
Obligación
Obligación
Obligación
Bioseguridad
Obligación
Obligación
Obligación
Requisito
34
Dirección Desconcentrada :
Fecha Ejecución :
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 30 de 65
20 Otras Inspecciones
Del Nº de Registro del Establecimientos Avícolas (en guías de remisión)
De las condiciones del transporte de huevos
De los equipos empleados para el transporte de aves vivas y huevos
21 Estado Sanitario:
Porcentaje de nacimientos:
% de Pollos BB 1ra
% Pollos BB 2da
% de Incubabilidad
% de Descartes
22 Conclusiones
Firma Firma Veterinario Responsable Especialista SENASA
Confomidad Observaciones (si es no conforme detallar artículos observados) y Recomendaciones
Si No
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 31 de 65
REG-SARVE-12 ACTA DE INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD Y BUENAS PRÁCTICAS DURANTE EL FAENADO
Nº de Acta____________________
Datos del Centro de Faenamiento de Aves01 Nombre del Centro de Faenamiento 02 Número de Registro SENASA
03 Propietario del Establecimiento 04 Departamento
05 Provincia 06 Distrito
07 Teléfono 08 Ubicación Geográfica
Norte Este
09 Tipo de aves que se faenan
Pollos Gallinas Pavos Patos Gansos Codornices Avestruces Otros
10 Capacidad de faenamiento por: 11 Número de aves que se benefician por:
Día: Día: Mes: Año:
Datos del Responsable de Sanidad del C. de Faenamiento12 Apellido Paterno 13 Apellido Materno
14 Nombre(s) 15 Nº Colegiatura (CMVP)
Datos del Especialista que realiza la inspección 16 Apellido Paterno 17 Apellido Materno 18 Nombres
19 Fecha de Inspección:
20
Disponibilidad de agua potable
Dispone de suficiente agua a una temperatura mayor de 60ºC y/o vapor de agua.
Sistema que asegura la limpieza en el centro de faenamiento
Del mantenimiento de las instalaciones
Del Sistema de lavado de vehículos, jabas u otros elementos para el transporte
Servicios higiénicos completos y proporcionales.
Zona de despacho
Un sistema adecuado de recolección y eliminación de la basura y el estiércol.
Un sistema que asegure la destrucción de las aves desechadas.
El establecimiento debe realizar una adecuada eliminación, disposición y tratamiento de las aguas
producto de las actividades de faenamiento.
Solo si presta servicio de congelación: Cuenta con infraestructura que asegura enfriamiento óptimo.
La iluminación tiene una intensidad igual o mayor de:
a. 325 lux (30 bujías - pie) en los ambientes en general
b. 540 lux (50 bujías - pie) en la sección de inspección sanitaria
c. La iluminación no afecta los colores y estará dirigida sobre el ave, en forma apropiada.
Del manejo de los productos condenados.
Del sistema de destrucción de lo condenado.
Las mesas de trabajo, el equipo de sangrado y los recipientes para recolectar la sangre son de
material impermeable, inoxidable, de fácil higienización y no contaminante.
CumplimientoArtículo
SI NO
El flujo de aire es de áreas limpias a áreas sucias y no al revés. No se concentran gases ni
malos olores en el área de faenamiento..
Dirección Desconcentrada :
Fecha Ejecución :
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 32 de 65
Cuenta con un Programa de Control Integral de Plagas.
Adecaudo almacenamiento de Plaguicidas
Del personal que interviene en el Faenamiento de las aves y de las buenas prácticas de higiene.
Del Reconocimiento médico del Personal
Del equipo y accesorios empleados durante el faenamiento.
Estado de Salud de las aves e inspección antes del faenamiento
Inspección Post faenamiento
Métodos de insensibilización
Del procedimiento de degüello, sangrado, escaldado y desplume
Del Procedimiento de evisceración
Del Procedimieto de lavado de carcasas
Del manejo de los despojos o de desechos
Presencia de otros animales en el cent ro de faenamiento.
Del beneficio de otras especies aviares.
Personas ajenas no autorizadas estan alejadas de las áreas de faenamiento de aves.
Mantiene Información del faenado de las aves
21 Otras Inspecciones
Control de las Guías de Remisión: Las aves que se transportan disponen de sus respectivas guías
de remisión, en las que se identifica el número de registro vigente de la granja.
22 Conclusiones
Firma Firma
Veterinario Responsable Especialista SENASA
Confomidad Observaciones (si es no conforme detallar art ículos observados) y Recomendaciones
Si No
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 33 de 65
REG-SARVE-13 ACTA DE INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD Y BUENAS PRÁCTICAS DURANTE LA COMERCIALIZACIÓN DE AVES VIVAS (CENTROS DE ACOPIO)
Nº de Acta____________________
Datos del Centro de Acopio de Aves01 Nombre del Centro de Acopio 02 Número de Registro SENASA
03 Propietario del Establecimiento 04 Departamento
05 Provincia 06 Distrito
07 Teléfono 08 Ubicación Geográfica
Norte Este
09 Tipo de aves que se acopian
Pollos Gallinas Pavos Patos Gansos Codornices Avestruces Otros
10 Capacidad de acopio por: 11 Número de aves que se acopian por:
Día: Día: Mes: Año:
Datos del Responsable de Sanidad del C. de Acopio12 Apellido Paterno 13 Apellido Materno
14 Nombre(s) 15 Nº Colegiatura (CMVP)
Datos del Especialista que realiza la inspección 16 Apellido Paterno 17 Apellido Materno 18 Nombres
19 Fecha de Inspección:
20 Requsitos
Disponibilidad de agua potable
Sistema que asegura la limpieza en el centro de acopio
Sistema de lavado de vehícu los, jabas u otros elementos para el transporte
Servicios higiénicos completos y proporcionales.
Zona de despacho
Un sistema que asegure la destrucción de las aves desechadas.
El establecimiento debe realizar una adecuada eliminación, disposición y
tratamiento de las aguas producto de las actividades de comercialización.
Cuenta con un Programa de Control Integral de Plagas.
Inspección del estado de salud de las aves en el centro de acopio21 Otras Inspecciones
Control de las Guías de Remisión: Las aves que se transportan disponen de sus respectivas guías
de remisión, en las que se identifica el número de registro vigente de la granja.
22 Conclusiones
Firma Firma
Veterinario Responsable Especialista SENASA
Cumplimiento ArtículoSI NO
Art. 12
*Art. 12, Anexo 4
*Art. 12, Anexo 4
*Art. 12, Anexo 4
*Art. 12, Anexo 4
*Art. 12, Anexo 4
*Art. 12, Anexo 4
*Art. 35
Art. 40
Confomidad Observaciones (si es no conforme detallar art ículos observados) y Recomendaciones
Si No
Dirección Desconcentrada :
Fecha Ejecución :
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 34 de 65
Ubicación Geográfica 04 Ubigeo Datos Prediales
01 Departamento 11 Propietario de los Animales (Razón Social/Nombre) 12 DNI 13 RUC
02 Provincia 14 Propietario del Predio (Razón Social/Nombre) 15 DNI 16 RUC
03 Distrito 17 Nombre de la Granja/Hato y/o Camal 18 Tipo Explotacion
05 Localidad 06 Este 07 Norte 19 Tipo de Crianza 20 Tecnificada
Intensiva Semi Extensiva Extensiva Trashumante SI NO
08 Altitud 09 Zona Horaria 10 Referencia 21 Ase. Técnico Instalaciones 22 Vías de Acceso 23 Crianza de edades múltiples
Motivo Tec. Maquina. Población SI NO
24 Nº Granjas / Hatos total del lugar
Poblacion Animal Granja/Hato Historia Clínica
25 26 Observación de Sintomatología27 Vacunados 28 Signos Observados
Especie Total Población Animal SI NO SI NO
Bovinos 29 Lesiones Observadas
Ovinos 30 Sospecha de Brote Anterior
Caprinos SI NO
Porcinos 31 Tratamiento y Medicamento 32 Tipo de Alimento y Agua 33 Protocolo Necrópsia
Equinos SI NO
Camélidos Calendario Sanitario
Aves 34 Nº Animales Vacunados 35 Prevención Enfermedad 36 Fecha 37 Nombre y Tipo de Biológico 38 Lote 39 Nº Cert.
Fauna silvestre
REG-SARVE-14 REGISTRO DE VIGILANCIA ACTIVANº de Registro:____________________________
Dirección Ejecutiva : Enfermedades Monitoreadas : 1 2 (Diagnósticos) 3 4
Año : Nº Ficha :
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 35 de 65
Toma de Muestras
40 Código 41 Tipo de 42 Identificación 43 Tipo de 44 45 46 47 48 Fecha 49 Procedencia Animal
de la Muestra Identificación Amimal Muestra Edad Sexo Raza y/o Línea Categoría Colección Local Foraneo
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
Observaciones
Nº
Firma del Responsable
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 36 de 65
REG-SCEE/PRONASA-18 ACTA DE INSPECCIÓN DE REQUISITOS MÍNIMOS PARA REALIZACIÓN DE EVENTOS GALLÍSTICOS
Nº de Acta____________________
Datos Generales del Solicitante01 Razón Social 02 Estado del Solicitante 03 RUC
P. Natural P. Jurídica
04 Apellido Paterno 05 Apellido Materno
06 Nombre(s) 07 Tipo Doc. 08 Nº Doc
DNI CE
Datos del Evento Gallístico09 Nombre del Evento Gallístico 10 Tiempo de duración del evento (meses del año)
De: A:
11 Periodicidad
Anual Mensual Quincenal Semanal Lunes Martes Miércoles Jueves Viernes Sábado Domingo
12 Nombre del Coliseo de Gallos 13 Apellido Paterno y Materno del propietario del Coliseo 14 Nombres del propietario del Coliseo
15 Departamento 16 Provincia
17 Distrito 18 Direccion
19 Teléfono 20 Ubicación Geográfica
Norte Este
21 Capacidad Total para albergar aves 22 Alcance del Evento:
Internacional Nacional Departamental Provincial
Datos del Especialista que realiza la inspección 25 Apellido Paterno 26 Apellido Materno 27 Nombres
28 Fecha de Inspección:
29 Condiciones mínimas
Disponibilidad de Agua Potable
Condiciones para el mantenimiento de Limpieza en el local
Instalaciones para albergue de aves, mantenidas en condiciones higiénicas
Sistema de eliminación de insectos y roedores
Sistema que asegure la eliminación de los desechos generados (aves muertas,guano, plumas,
sacos, etc)
30
Control de Certificados de Vacunación contra Newcastle
31 Observaciones y Recomendaciones
Firma FirmaApellidos y nombres Apellidos y nombresdel Solicitante Especialista SENASADNI: DNI:
CumplimientoSI NO
Otras Inspecciones (no condicionales para la autorización pero si para vigencia) Art. 27 del D.S. Nº 029-2007-AG
Dirección Desconcentrada :
Fecha Ejecución :
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 37 de 65
ANEXO 1 : Buenas Prácticas de Crianza
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 38 de 65
ANEXO 2: MATERIALES Y EQUIPOS NECESARIOS PARA LA VIGILANCIA CLÍNICA
1. Acta de inspección de bioseguridad de Granjas Avícolas (REG-SARVE-10) 2. Acta de inspección de bioseguridad de Plantas de Incubación (REG-SARVE-11) 3. Acta de Interdicción (REG-DSA-PRONASA-03) 4. Botas de Jebe 5. Chaleco 6. Desinfectante 7. Equipo GPS 8. Formatos de Vigilancia Pasiva 9. Lapicero 10. Papel Copia 11. Pilas 12. Protector facial de Poli carbonato incoloro 13. Tableros 14. Unidad de Comunicación (Teléfono, celular, radio, etc)
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 39 de 65
ANEXO 3: LISTA DE ENFERMEDADES AVIARES DE NOTIFICACIÓN
OBLIGATORIA
1. Bronquitis infecciosa aviar 2. Bursitis infecciosa (enfermedad de Gumboro) 3. Clamidiosis aviar 4. Cólera aviar 5. Coriza Infecciosa 6. Enfermedad de Marek 7. Enfermedad de Newcastle 8. Enteritis viral del pato/Peste de los patos 9. Coronaviridae): patos 10. Hepatitis a cuerpos de inclusión 11. Hepatitis viral del pato 12. Influenza aviar altamente patógena e influenza Aviar levemente patógena en aves de
corral de acuerdo con el Capítulo 2.7.12., del Código Sanitario para los Animales Terrestres - OIE
13. Laringotraqueítis infecciosa aviar 14. Micoplasmosis aviar (M. gallisepticum) 15. Micoplasmosis aviar (M. synoviae) 16. Pulorosis 17. Rinotraqueítis del pavo 18. Salmonelosis 19. Tifosis aviar 20. Tuberculosis aviar
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 40 de 65
ANEXO 4: INSTRUCTIVO DE INGRESO DE INFORMACIÓN DE VIGILANCIA
CLÍNICA (INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD Y ESTADO SANITARIO DE AVES) Toda información referida a supervisión sanitaria a Centros de Producción Avícolas, deberá ingresarse por el Módulo de Vigilancia.
1. Ingresar a la opción Centros de Producción y seleccionar: Supervisión Sanitaria.
2. El sistema le mostrará la siguiente ventana :
3. Si se va registrar una ficha nueva, presionar el botón y el sistema le mostrara la siguiente ventana :
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 41 de 65
4. Ingresar la información en Datos Generales: Buscar el Centro de Producción,
por Código, Tipo o Nombre del mismo y seleccionar.
5. El Dato de Productor saldrá por defecto, en vista que esta información ya ha sido ingresada en el Padrón de Productores Pecuarios, toda vez que ya se haya ingresado en el sistema al productor y los predios del productor, condición que debe darse como primera instancia.
6. En la opción de Formato, deberá seleccionar el tipo de Formato empleado en la
Supervisión sanitaria realizada.
7. Seleccionar la Opción: Bioseguridad- Granja o Bioseguridad-Planta de Incubación.
8. Luego, en la opción: Ejecutor, buscar y seleccionar el nombre o código de la
persona que realizó la supervisión y dar aceptar.
9. Digitar la Fecha de ejecución de la supervisión sanitaria.
10. Digitar el Nombre del responsable del Centro de Producción con el que se realizó la inspección o en su defecto, la del Médico Veterinario responsable de la Sanidad de las aves.
11. Digitar el Giro del Centro de Producción.
12. Luego, Grabar esta información y dependiendo del Formato elegido, se mostrará el detalle de items de la ficha de supervisión.
13. Detallar en observaciones, las razones de la inconformidad a cada punto.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 42 de 65
14. En Calendario Sanitario ingresar: a. Edad de inmunización: en días. b. Nombre Comercial de la vacuna aplicada. c. Cepa vacunal empleada. d. Nombre del Laboratorio del biológico.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 43 de 65
15. Cada inmunización será ingresada de manera independiente en CS1, CS2, etc.
(CS1: Calendario Sanitario 1) 16. En información complementaria ingresar los siguientes datos:
a. Edad: en día o meses. b. Mortalidad Acumulada: Expresado en porcentaje, a la fecha de
inspección. c. Causas de mortalidad: Si la mortalidad es insignificante, especificar
causas de mortalidad en campañas anteriores. d. Peso de las aves: Promedio de pesos a la fecha de inspección. e. Conversión alimenticia: Promedio a la fecha de inspección. f. Destino de Cama o yacija: al final de la campaña. g. Niveles de Cloro en agua: en el pozo principal y en el bebedero del último
galpón o galpón más alejado de pozo principal.
17. Si la inspección es a una planta de incubación registrar la siguiente información:
a. Capacidad de carga, por modelo de las incubadoras. b. Capacidad de carga, por modelo de las nacedoras. c. El estado sanitario, expresado en:
i. Porcentaje de nacimientos: a la fecha de inspección. ii. Porcentaje de Pollos BB de 1ra. iii. Porcentaje de Pollos BB de 2da. iv. Porcentaje de Descartes v. Porcentaje de Incubabilidad: a la fecha de inspección.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 44 de 65
18. Por último, ingresar conclusiones finales de la supervisión y GRABAR. 19. Para Obtener el Reporte de la supervisión realizada, seleccionar la opción
Presentación Preliminar y podremos imprimir la Ficha de Supervisión Sanitaria Ejecutada.
20. Para realizar el CAMBIO DE ESTADO seleccionar el botón de Cierre, ya que cuando se inicia el registro esta información esta en estado ABIERTO.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 45 de 65
21. Cuando se concluye con todo el registro y esta conforme se debe cerrar la ficha, de tal manera que solamente se podrá visualizar o consultar, a la misma.
22. Todo Cierre debe tener Conclusiones Finales a la Supervisión, caso contrario no podrá cerrarse dicha ventana.
23. Si no se cierra esta ventana no se podrá visualizar la supervisión realizada en la
consulta de Supervisiones de Centros de Producción.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 46 de 65
ANEXO 5: RELACIÓN DE HUMEDALES VIGILADOS A NIVEL NACIONAL
Región Humedal, Bofedal, Playa, etc.TUMBES Santuario Nacional Manglares de Tumbes (Anexos)
Humedal Albuferas de Medio MundoHumedal Baños de BozaHumedal de VentanillaHumedal El ParaisoHumedal La EncantadaHumedal Puerto ViejoHumedal Santa RosaLago La SalinasPantanos de VillaHumedal Agua SantaHumedal CaucatoHumedal Las TotoritasLagunilla San LuisLagunilla Tupac AmaruPisco PlayaPlaya CanchamanaPlaya Cruz verdePlaya JahuayPlaya Las VioletasPlaya LurinchinchaPlaya ParacasPlaya San andresPlaya San PedroPlaya Las DeliciasPuerto MorinCerro PrietoHumedal Balsares De HuanchacoHumedal Choc ChocHumedal GuañapeHumedal TizalPlaya Buenos AiresPlaya HuanchaquitoHumedal El JaimeHumedal LaramineHumedal POZA DEL GATOLago TiticacaLaguna CoccanLaguna ArapaRivera de Rio AzangaroLago JulyLago UmayoEstuario de VirriláManglares San Pedro de VicePlaya de Paita Represa San LorenzoLaguna ÑapiqueRepresa de LanconesHumedal De IteLago Suches o HuaytiriHumedales y arrozales de CamanaSantuario Nacional Lagunas de MejiaLaguna sulluscochaRepresa gallito ciegoPantano del IlucanLaguna de HuarangoRio San MarquinoParedonesColectorGallitoCienagoEten (pueblo, puerto)San JuanLaguna BoroHumedal ColliqueCaminos de IncaReservorio Tinajones
LAMBAYEQUE
LIMA
ICA
AREQUIPA
CAJAMARCA
LA LIBERTAD
PUNO
PIURA
TACNA
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 47 de 65
ANEXO 6: INSTRUCTIVO DE INGRESO DE INFORMACIÓN DE VIGILANCIA ACTIVA
AL SIGSA Vigilancia Activa Una vez seleccionado el Módulo de Vigilancia, mostrará la siguiente ventana, la cual
permitirá mostrar vía opciones las actividades automatizadas de la actividad de Vigilancia
Activa de la Dirección de Vigilancia Zoosanitaria.
2.1.1 Registro Opción que permitirá registrar la información de los Diagnósticos Situacionales y
Monitoreo Serológicos, desde las Direcciones Ejecutivas, las cuales pertenecen a la
Vigilancia Activa.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 48 de 65
1. Una vez seleccionada la opción de registro, se mostrara la siguiente pantalla:
2. Debiendo especificar el motivo del ingreso de información, en este caso: MUESTREO PRONASA.
3. El Sistema mostrará una ventana en la cual deberán registrar los parámetros
iniciales con lo cual se podrá visualizar las fichas ya registradas. En la ventana se podrá ingresar datos en los siguientes campos: • Dirección, que por defecto es la Dirección en la cual esta inscrito el Usuario.
Solamente cuando se ingresa como Nivel Central podrán seleccionar otras Direcciones Desconcentradas.
• Estado, permitirá seleccionar los diferentes estados de la ficha : Activo, Cerrado, Rechazado o Anulado.
• Motivo, aquí seleccionaran el componente por la cual se lleva la actividad • Año y Mes, es la fecha en la cual se registro la ficha
“Toda actividad generada por la Dirección de Vigilancia en la actividad Vigilancia Activa debe registrarla en el módulo, así como la remisión de muestras por esta actividad la solicitud debe generarse del módulo”
4. Si la Acción es Registrar una Nueva Ficha, seleccionar el icono , con lo cual activará la siguiente ventana:
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 49 de 65
5. Los nombres de los campos que se encuentra en color azul serán ingresados con obligatoriedad.
6. En el campo de Productor, mostrara la relación a Nivel Nacional (%), usando el
ícono: , además existe la opción de mostrar la lista de productores filtrando por nombre.
7. Si el productor no exíste, realizar el registro rápido, usando el ícono: . “Los Datos que se consignan en la ventana esta basado en el Formato de Vigilancia Activa.”
� Datos de la Ficha
• Responsable Registro: Por defecto se registra el nombre del usuario que ingresa su pasword.
• Motivo, Actividad por el cual se originó el registro de la Ficha, en este caso: MUESTREO PRONASA.
• Fecha de Ejecución, Fecha de realización de la actividad. • Fauna Silvestre: Dar check si la actividad se realiza en esta población.
� Ubicación Geográfica
• Básicamente se detalla la localización basándose en el Departamento, Provincia,
Distrito, Localidad y Referencia con respecto al origen de la información, así
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 50 de 65
mismo se debe consignar la información de Georeferenciada a través de los datos de Este, Norte, Zona Horaria y Altitud en valores UTM (GPS).
� Datos Prediales
• Es importante seleccionar al Productor (Propietario de los animales), al cual lo
deben buscar con el botón y si no lo encontrarán deberán registrarlo con el
botón .
• Los Predios que dependan del Productor deberán ser buscados con el botón y
en caso de no encontrarlo deberán presionar para inscribirlos, se debe tener en cuenta que el Predio puede ser de una tercera persona al cual deberá registrarlo como tal.
• La Granja / Hatos depende del Productor, y deberán buscarlo con el botón de
y si no registrarlo con el botón de .
• Así mismo se solicita identificar información adicional como si el Tipo de Crianza: Intensiva, Mixta, Extensiva, Transhumancia.
• El Tipo de Explotación Animal: Aves Silvestres, Aves de Combate, Carne, Crianza Familiar, Postura Comercial, Reproductoras de Carne, Reproductoras de Postura, Zoocriadero.
• Crianza de Edad Múltiple y Número de galpones.
� Población Animales Vivos
1. Animales: Se detallará la población de animales de la Granja / Hato por especie animal.
2. Fauna Silvestre: Especie según base de datos y número de animales capturados.
� Botón Calendario Sanitario
En esta opción, mostrará la siguiente ventana :
En esta ventana se podrá registrar todas las actividades de vacunación realizadas a los
animales de la Granja / Hato, para un mejor control de los productos registrados en SENASA,
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 51 de 65
primero seleccionen Prevención (Enfermedad) y luego en el campo Rg. SENASA, se
visualizarán los productos Biológicos por Enfermedad del Padrón de productos registrados en
la Dirección de Insumos Pecuarios.
� Botón Historia Clínica
En esta opción, mostrará la
siguiente ventana :
Si seleccionan la opción de
SI en Sintomatología, le
permitirá registrar las
Lesiones y Signos en
Animales.
Además podrán registrar algunas características adicionales como si existió Brote
anteriormente de la Enfermedad Monitoreada, Tipo de Alimento y Tratamiento Médico
� Información Complementaria
En este campo se registrará la información adicional del monitoreo que no están contemplados
como campos predefinidos para el registro.
� Botón Cerrar
Permitirá cerrar en forma definitiva la ficha para que solamente se active como consulta, para
ello deberá registrar su Password .
Teniendo como premisa que por una muestra se podrían descartar la presencia de una o mas enfermedades en animales y que por cada enfermedad se pueden correr una o varias Pruebas., se debe registrar en “ENFERMEDADES Y PRUEBAS SOLICITADAS” las Enfermedades ha descartar y las Pruebas que desean correr para ello le mostrará la siguiente ventana:
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 52 de 65
Para Insertar debe presionar el Icono “Añadir” Luego presentará la siguiente ventana:
Esta ventana le permitirá registrar la Enfermedad y la Prueba que desean correr. Para una Próxima Prueba deberán repetir el mismo paso solo cambiando la nueva Prueba. Recuerde que por cada tipo de muestra debe generar una nueva ficha, es decir:
1. Registro para muestras serológicas: � Influenza Aviar: Prueba: ELISA � Enfermedad de Newcastle: Prueba: ELISA para NDV Velogénico. � Micoplasmosis Aviar: ELISA Micoplasma Gallisepticum y Synoviae.
2. Registro para muestras virológicas: � Influenza Aviar: Prueba: PCR � Enfermedad de Newcastle: Prueba: PCR-RT. � Laringotraqueitis: Prueba: PCR
3. Registro para muestras Bacteriológicas: � Salmonelosis: Influenza Aviar: Prueba: Cultivo e Identificación de
Salmonellas. Para registrar las muestras coleccionadas, deberán seleccionar la pestaña de la ventana denominada “DATOS DE MUESTRA”, si esta opción esta en color plomo, significa que no esta activa y que necesita grabar previamente los datos de la primera ventana.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 53 de 65
Tienen dos formas de registrar las muestras:
1. Individualmente, en esta forma presionarán el botón de Insertar y registrarán la información solicitada para el envío de cada muestra.
2. Por Lote, en esta opción se registrará en forma masiva la información de la muestra, para ello deberán presionar el botón “Insertar Lote”, y mostrará la siguiente ventana :
Se solicita la información para el registro de muestra, con la particularidad de que existe un campo “Cantidad”, la cual copiará tantas veces la cantidad.
Concluido con el proceso del registros de muestras y el cierre de la ficha, deberán GENERAR LA SOLICITUD (Paso 1), se insertará automáticamente en el campo Nº Solicitud, el número de Solicitud del Padrón del Laboratorio (Paso 2), por último para visualizar la ficha presiono el icono de visualización (Paso 3), donde se podrá imprimir la solicitud
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 54 de 65
Además existe una opción para la impresión de etiquetas (Paso 4), una vez seleccionada se mostrará una ventana la cual permitirá seleccionar los diferentes tamaños de las etiquetas, se mostrará inicialmente la presentación preliminar, para que puedan ser impresos. Estas etiquetas contienen los códigos generados por el SIGSA, al momento que se registran los datos de las muestras, las cuáles deben ser utilizadas para identificar las muestras, a través del rotulado de viales y/o otros medios utilizados para la remisión de muestras.
Como medio de respaldo a la información registrada en el sistema, existe la opción de consulta e impresión del “Reporte de Monitoreo de Vigilancia Activa”, por cada ficha registrada, el reporte contendrá toda la información registrada por cada ficha, para acceder a esta opción deberán presionar el siguiente botón :
Por último, los resultados de diagnóstico podrán ser vistos e impresos para la entrega al usuario interesado, a través de la opción: Consulta de Resultado de Muestras, requiriendo el Password del Jefe de Sanidad Animal (JASA).
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 55 de 65
Para imprimir los resultados deberá nuevamente ingresar el Password del JASA:
El Informe de Ensayo deberá ser firmado por el Director de la Dirección Ejecutiva.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 56 de 65
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 57 de 65
ANEXO 7: MATERIALES Y EQUIPOS NECESARIOS PARA LA VIGILANCIA SEROLÓGICA
1. Acta de Interdicción (REG-DSA-PRONASA-03) 2. Acta de Notificación 3. Agua peptonada en frascos de 500 ml 4. Agujas Descartables 20 x ½ pulgada 5. Baja lengua 6. Botas de Jebe 7. Bolsas para desechos. 8. Bolsas de plástico de 2 kg. 9. Coolers o cajas de tecnopor. 10. Chaleco 11. Desinfectante 12. Equipo GPS 13. Equipo de necropsia 14. Formatos de Vigilancia Pasiva 15. Frascos o Bolsas para colección de órganos. 16. Geles refrigerantes 17. Guantes de vinil 18. Hisopos de Dacrón 19. Hisopos de Gasa 20. Lapicero 21. Medio de transporte Cary Blair en frascos de boca ancha de 250 ml. 22. Papel Copia 23. Pilas 24. Plumón indeleble 25. Registro de Vigilancia Activa (REG-SARVE-…..) 26. Tableros 27. Tijeras 28. Tubos de polypropileno para colecta de sangre. 29. Tubos com médio de transporte viral. 30. Unidad de Comunicación (Teléfono, celular, radio, etc)
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 58 de 65
ANEXO 8: INSTRUCTIVO TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS AL LABORATORIO
La calidad en la COLECCIÓN, CONSERVACIÓN Y ENVÍO de las muestras al laboratorio son determinantes para obtener un resultado de óptimo. En este sentido, el profesional de campo o encargado, tiene la responsabilidad de seleccionar, recolectar, preservar y enviar adecuadamente las muestras convenientes para el diagnóstico. La flora normal y los contaminantes pueden complicar la colecta de la muestra y afectar la interpretación de resultados.
En este instructivo se indican las técnicas apropiadas para la colección y el manejo de muestras para laboratorio.
TOMA DE MUESTRAS DE SANGRE
1. Las muestras de sangre para obtención de suero, se obtienen de la vena braquial del ave. 2. Para exponer la vena, retire algunas plumas de la superficie ventral de la región humeral
del ala. La vena se observa recorriendo en una depresión entre los músculos bíceps y tríceps braquial. La aplicación de alcohol u otro desinfectante sin color para humedecer la superficie de la zona facilita la observación de la vena. Para facilitar la punción extender ambas alas dorsalmente y sujetarlas conjuntamente en la parte distal con la mano izquierda.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 59 de 65
3. Se debe usar una aguja Nº 20 x ½ ’’ es esencial que el bisel de la aguja este en buenas
condiciones 4. Inserte la aguja dentro de la vena del ala derecha, manteniéndola con la mano derecha, la
aguja debe ser insertada en dirección opuesta al flujo sanguíneo. 5. Colecte aproximadamente 2 ml. a 3 ml. de sangre en un tubo limpio y estéril. 6. Por regla general, es seguro extraer a las aves vivas entre 0,3 cc y 0,6 cc de sangre por
cada 100 g de masa corporal. No obstante, siempre es mejor extraer la menor cantidad de sangre posible para realizar los análisis.
7. Una vez se haya extraído la sangre, se cubrirá el punto de venopunción con una gasa o
algodón y se aplicará presión con los dedos hasta que cese la pérdida de sangre (entre 30 y 60 segundos).
8. Las muestras de sangre nunca deben ser refrigeradas inmediatamente después de la colección, debido a que ello interfiere con el proceso de coagulación.
9. Coloque el Tubo en posición inclinada casi horizontal hasta que la sangre se haya coagulado totalmente a temperatura ambiente.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 60 de 65
10. Después de formado el coagulo el tubo debe retornar a la posición vertical para permitir la
colección del suero en la base del tubo, trasvasar el suero a los viales. 11. El suero de aves adultas puede tener una coloración lechosa debido la presencia de
lípidos. 12. La muestra de suero en los crioviales puede ser congelada para su consolidación y
envío por lotes. Verificar temperatura de congeladora diariamente a fin de asegurar la adecuada conservación.
TOMA DE MUESTRAS DE HISOPADOS TRAQUEALES 1. Las muestras virológicas, se obtendrán de la mucosa traqueal. 2. Retirar el envoltorio de un hisopo de dacrón desde el mango, teniendo cuidado en no tocar
la punta del hisopo. 3. Con la mano derecha sujetar la base del cráneo del ave y hacer presión con el dedo pulgar
y el dedo medio cerca de la comisura del pico a fin de abrirlo. 4. Con la mano izquierda coger el hisopo por el mango e introducir suavemente la punta del
hisopo en la tráquea esperando hasta que el ave respire y el cartílago protector de la tráquea se abra para permitir el paso del aire. Tocar suavemente con la punta del hisopo la parte posterior y los laterales de la tráquea.
5. Retirar el hisopo y soltar al ave. 6. Coger con la mano izquierda, el tubo con medio de transporte viral y con la ayuda del dedo
meñique y la palma de la mano derecha, destapar el tubo. 7. Colocar la punta del hisopo en el medio de transporte aproximadamente a una altura de ¾
hacia el fondo del tubo. 8. Cortar con tijera, el mango del hisopo de forma que éste permanezca en el vial y la tapa
correspondiente pueda enroscarse bien ajustada. 9. Se deberá dejar en el tubo, todo el hisopo y una porción del mango. 10. Cerrar herméticamente e introducirlo en la caja conservadora de frío. 11. Limpiar las tijeras con alcohol al 70 %. TOMA DE MUESTRAS DE HECES FRESCAS 1. Las muestras virológicas para aves exóticas o silvestres de zoocriaderos, se obtendrán de
las heces frescas que se colecten del piso de las jaulas. 2. En las primeras horas de la mañana colocar una bolsa de plástico, papel periódico, kraft o
cartón, a fin de recoger las heces del día. 3. Mínimo deberá recogerse 3 gramos de heces con la ayuda del hisopo de dacrón. 4. Cortar con tijera, el mango del hisopo de forma que éste permanezca en el vial y la tapa
correspondiente pueda enroscarse bien ajustada. 5. Se deberá dejar en el tubo, todo el hisopo y una porción del mango. 6. Cerrar herméticamente e introducirlo en la caja conservadora de frío. 7. Limpiar las tijeras con alcohol al 70 %.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 61 de 65
TOMA DE MUESTRAS DE HISOPADOS DE ARRASTRE 1. Las muestras para cultivo e identificación de Salmonellas, se obtendrán del hisopado de la
yacija o cama mediante hisopados de arrastre. 2. Retirar la envoltura protectora de los hisopos de gasa. 3. Embeber el hisopo con la mitad del contenido del frasco 1 (agua peptonada). 4. Colocar el hisopo humedecido sobre la cama o yacija del galpón seleccionado y arrastrarlo
por entre los comederos y bebederos, dando preferencia a aquellos lugares donde se encuentran concentradas las aves y por ende materia fecal.
5. Escoger un corral representativo del galpón por cada hisopo. 6. Colocar el hisopo con materia fecal dentro del frasco 2 o pote que contiene el medio de
transporte Cary Blair con la ayuda del baja lengua. 7. Tapar herméticamente y cuidando de no contaminar el medio. 8. Repetir la operación en el segundo corral del mismo galpón, desinfectándose las manos
previamente. 9. El hisopo del segundo corral irá dentro del mismo frasco o pote. (2 hisopos por pote o
frasco). 10. Rotular con plumón indeleble, el frasco 2 indicando:
a. Fecha de colección. b. Hora c. Origen: Galpón “X”, de Granja “Y”.
11. Colocar el frasco cerrado herméticamente dentro de la caja conservadora de frío. NORMAS GENERALES
1. Las muestras deben estar apropiadamente identificadas con el código y la etiqueta que
genera el SIGSA. 2. No se procesarán muestras que no cumplan con esta condición. 3. Utilizar siempre el material enviado para estos fines. 4. Tapar herméticamente todo frasco, tubo o vial, antes de introducirlo en la caja
conservadora de frio.
Almacenamiento de muestras
1. Las muestras, incluidas en medio de transporte viral para el aislamiento de virus, deberán mantenerse a 4 °C y transportarse al laboratorio rápidamente.
2. Si las muestras son transportadas al laboratorio en un plazo de dos días, deberán mantenerse a 4 °C; de lo contrario, habrán de congelarse a un máximo de -70 °C hasta que puedan transportarse al laboratorio.
3. Deberán evitarse las congelaciones y descongelaciones repetidas a fin de prevenir la pérdida de infectividad.
4. Los sueros podrán almacenarse a 4 °C durante una semana aproximadamente, pero después habrán de congelarse a -20 °C.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 62 de 65
5. Las muestras para cultivo e identificación de salmonella deberán mantenerse en el medio
de transporte Cary Blair, a temperatura de refrigeración y ser remitidas en un lapso no mayor a 5 días. Tiempo calculado desde la toma de muestras hasta el ingreso a la UCDSA.
TRANSPORTE DE MUESTRAS
Todas las muestras que vayan a ser transportadas deberán envasarse con un triple embalaje formado por tres capas.
1. Colocar en la base de la caja conservadora de frío, suficiente cantidad de geles refrigerantes, a fin de conservar la cadena de frío y dependiendo del tiempo promedio que demoran en llegar las muestras a la UCDSA.
2. Distribuir adecuadamente los frascos y tubos en la caja térmica. Colocarlos previamente en bolsa de plástico.
3. Envolver los recipientes con algodón hidrófilo.
4. Rociar desinfectante sobre la superficie de los recipientes.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 63 de 65
5. Terminar de envolver con el algodón hidrófilo (material absorbente).
6. Tapar la caja hermética, sellando con masking tape. El embalaje estará construido y cerrado de tal manera que se impida toda pérdida de contenido que pudiera producirse en las condiciones normales de transporte, por vibraciones o por cambios de temperatura, humedad o presión.
7. Rotular adecuadamente, indicando remitente y destinatario. Rotular la parte superior de la caja indicando el lado que debe ir hacia arriba.
Por último, remita lo más pronto posible al laboratorio de la UCDSA, acompañando las muestras, siempre, con la solicitud de diagnóstico generada en el SIGSA.
Recuerde que el éxito en el diagnóstico depende de una correcta toma, conservación, remisión e identificación de las muestras.
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 64 de 65
ANEXO 9: Cuadro de pruebas por tipo de establecimiento.
Vig
ilan
cia
Tip
o d
e ex
plo
taci
ón
En
ferm
edad
Lu
gar
de
mu
estr
eoM
ues
tra
Ed
ad d
e m
on
ito
reo
Tes
tT
est
com
ple
men
tari
o
GA
, PI,
CA
, C
F
Est
able
cim
ien
tos
avíc
ola
s:
Insp
ecci
ón d
e al
men
os d
os
galp
ones
o lo
tes
prob
lem
as
iden
tific
ados
en
la e
valu
ació
n de
par
ámet
ros
de p
rodu
cció
n.
Tra
spat
io y
C
omba
te
Tra
spat
io y
Co
mb
ate:
In
spec
ción
del
100
% d
e la
po
blac
ión.
Zoo
cria
dero
sIn
spec
ción
del
100
% d
e la
po
blac
ión
Bro
iler
IAC
F35
- 4
5 dí
asID
GA
IAC
F, G
AM
ycop
lasm
a
(gal
lisep
ticum
y
sino
viae
)
CF
, GA
IAC
F, G
AM
ycop
lasm
a
(gal
lisep
ticum
y
sino
viae
)
CF
, GA
Com
bate
May
or a
los
8 m
eses
Tra
spat
ioP
ollo
s: >
a 8
sem
.
Gal
linas
: > a
12
sem
.
Bro
iler
EN
C,IA
, LT
CF
His
opo
traq
ueal
PC
RA
VE
NC
,IA,L
TC
F, G
AH
isop
o tr
aque
alP
CR
AV
Sal
mon
ella
sp
GA
His
opo
de a
rras
tre
culti
vo e
iden
tific
ació
nbi
oquí
mic
as
EN
C,IA
,LT
CF
, GA
His
opo
traq
ueal
PC
RA
V
Sal
mon
ella
sp
GA
His
opo
de a
rras
tre
culti
vo e
iden
tific
ació
nbi
oquí
mic
as
Tra
spat
io y
C
omba
teE
NC
,IA, L
TT
rasp
atio
y
Com
bate
His
opo
traq
ueal
PC
RA
V
Zoo
cria
dero
sE
NC
, IA
Zoo
cria
dero
sH
eces
fres
cas
PC
RA
V
GA
: G
ran
ja a
víc
ola
; C
A:
cen
tro
de
aco
pio
, C
F: C
en
tro
de
Fae
nam
iento
, P
I: P
lan
ta d
e In
cub
ació
n;
AV
: A
isla
mie
nto
vir
al.
Pos
tura
C
omer
cial
Rep
rodu
ctor
esM
ayor
es d
e 18
sem
anas
Ser
oló
gic
a
IA
Pos
tura
co
mer
cial
Tra
spat
io y
C
omba
te
ELI
SA
AV
AV
AV
Tod
osT
odas
Tod
as
Vir
oló
gic
a/A
gen
te
cau
sal
Las
mis
ma
aves
a la
s qu
e se
re
aliz
a vi
gila
ncia
ser
ológ
ica
Rep
rodu
ctor
es
Eva
luac
ión
Clín
ica
Sue
ro
Clín
ica
DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL
SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y
VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS
ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,
SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.
Revisión: 00
Página: 65 de 65
ANEXO 20: LISTA DE ZOOCRIADEROS
DE
PA
RT
AM
EN
TO
ZO
OC
RIA
DE
RO
TE
LE
FO
NO
/e-m
ail
RE
SP
ON
SA
BL
E D
IRE
CC
ION
ZO
OC
RIA
DE
RO
AM
AZ
ON
AS
TU
NA
AN
TS
jem
pe@
bloc
kbus
ter.
com
.pe
P. C
harle
s P
asca
lD
ihar
ce A
guirr
e, S
.J.Q
da. d
e T
unin
, mar
gen
izq.
Del
Río
Nie
va,
parc
ela
38, S
anta
Mar
ía d
e N
ieva
, Con
dorc
anqu
i - A
maz
onas
AR
EQ
UIP
AC
IRE
S-P
ER
U
( )
5716
41 fa
x (
) 57
1183
, ci
res@
mix
mai
l.com
MS
c. B
ened
icto
Bac
a R
osad
o La
Joy
a I P
rovi
ncia
y d
istr
ito d
e T
ambo
pata
AR
EQ
UIP
AP
ILP
INT
O05
4-44
4821
054
-973
7194
S
r. J
ose
Vill
anue
va B
ustio
sF
undo
San
ta R
osa
Late
ral H
Irrig
ació
n Z
amac
ola
– C
erro
Col
orad
o A
requ
ipa
AR
EQ
UIP
AR
UP
ICO
LA S
.R.L
. (0
54)
2746
76,
cesa
rort
iz74
@ho
tmai
l.com
Sr.
Cés
ar A
dolfo
Ort
iz Z
eval
los
Urb
. San
ta S
ofía
Mz.
A -
6 C
halla
pam
pa, d
istr
ito C
erro
Col
orad
o,
prov
. y D
pto.
Are
quip
a
AR
EQ
UIP
AS
UR
I UN
O
(Ave
stru
ces)
05
4-96
0740
4, F
ax: 0
5223
884
Sr.
Gon
zalo
Flo
res
Cas
tro
Km
996
Pan
amer
ican
a S
ur -
La
Joya
- A
requ
ipa
AR
EQ
UIP
AZ
OO
MU
ND
O
054-
9301
010
054-
9730
390,
sg
m_a
gp@
hotm
ail.c
omS
ra. S
ocor
ro G
arcí
a M
árqu
ez
Bal
near
io d
e Je
sús
S/N
Pau
carp
ata-
Are
quip
a.
CA
JAM
AR
CA
AT
AH
UA
LPA
JE
RU
SA
LEN
(076
)-36
5631
gr
anja
porc
on@
yaho
o.co
m
Coo
pera
tiva
agra
ria "
Ata
hual
pa
Jeru
salé
n" d
e tr
abaj
ador
es L
TD
AK
m 3
5 C
arre
tera
Caj
amar
ca a
Bam
bam
arca
CA
JAM
AR
CA
EL
CA
JAM
AR
QU
EZ
rest
aura
ntel
caja
mar
quez
@ho
tma
il.co
mS
r. M
ario
Pas
co V
arga
s Jr
. Am
azon
as 7
80 C
ajam
arca
HU
AN
UC
OY
AH
UA
R C
ON
DO
R(0
62)
5195
59 S
r. F
ortu
nato
Tib
urci
o F
ano
Fun
do "
Der
repe
nte"
, loc
alid
ad d
e H
uaca
r, d
istr
ito d
e H
uaca
r, p
rov
y de
part
amen
to d
e H
uánu
co
ICA
EL
SA
JIN
O
034-
6036
20
zooc
elsa
jino@
latin
mai
l.com
Sr.
Gui
llerm
o B
aigo
rria
Ch.
Jr. A
brah
am V
alde
lom
ar N
º 45
0 P
isco
, Km
. 235
Pan
. Sur
-Pis
co
ICA
MU
ND
O S
ILV
ES
TR
E w
ww
.mun
do-s
ilves
tre.
com
056
-22
9156
gm
asia
s@vi
abcp
.com
Sr.
Ant
onio
Mas
ias
Fel
ipa
Ex
Fun
do S
anta
Ros
a s/
n-C
achi
che-
Ica
LA L
IBE
RT
AD
WIL
DLI
FE
& F
ISH
2106
16,
6555
50In
és C
lotid
e B
elén
Zar
zosa
C.
Ane
xo C
omun
al V
icto
r R
aul-V
aldi
via
alta
Hua
ncha
co, L
a Li
bert
ad
LAM
BA
YE
QU
EB
AR
BA
RA
D´A
CH
ILLE
cr
acid
ae@
pava
alib
lanc
a.or
g,
cham
aepe
tes@
gmai
l.com
Ing.
Fer
nand
o A
ngul
o P
roto
long
oF
undo
San
Ram
ón, A
ntig
ua P
anam
eric
ana
km 1
03, L
as P
ampa
s -
Lam
baye
que
LAM
BA
YE
QU
EW
ISE
(A
vest
ruce
s P
erú)
(0
74)9
6561
63,
aves
truc
espe
ru@
alte
rn.o
rgS
r. V
ícto
r R
icar
do C
asta
ñeda
W
ise
Sec
tor
Bal
dera
Dis
trito
San
Jos
é, L
amba
yequ
e
LIM
AA
LEJA
ND
RA
9758
090,
368
2357
Dr.
Man
uel C
asta
ñeda
J.
Av.
El L
inde
ro N
º 43
4, L
as L
agun
as L
a M
olin
a
LIM
AC
HA
KR
AS
44
6-95
87 4
7987
39
alfo
nsoe
scaj
adill
o@ya
hoo.
com
Sr.
Alfo
nso
Esc
ajad
illo
O'C
onno
rA
v. T
ambo
Nue
vo s
/n M
z H
, Lot
e 12
Dis
trito
de
Cie
negu
illa
-Lim
a
LIM
AD
AN
Y
5750
499,
cel
. 904
7866
, cel
. 81
1371
6S
r. J
orge
Agu
ena
Nak
ama
Av.
Jos
é C
arlo
s M
aria
tegu
i Nº
1460
Ate
Vita
rte
LIM
AD
OU
GLA
S C
HIO
NG
3710
656
Sr.
Vic
tor
Dou
glas
Chi
ong
Las
Gav
iota
s M
z. P
2 Lo
te L
2 H
uach
ipa
Ate
Vita
rte
LIM
AE
L A
LET
O 4
4732
42/ 9
90-3
0113
, de
nisc
isne
ros@
hotm
ail.c
omS
r. D
enis
Cis
nero
s A
lcáz
ar
Cal
le R
amón
Zav
ala
361,
Mira
flore
s
LIM
AE
L H
UA
YC
O
371-
1588
940
-004
45,
jaot
ero@
viab
cp.c
omS
r. J
osé
Ote
ro C
orbe
ttoC
alle
3 M
z O
Lot
e II,
Hua
chip
a; C
alle
Bal
taza
r La
Tor
re N
º 72
0, S
an
Isid
ro
LIM
AF
ALC
ON
IFO
RM
ES
B
RE
ED
ING
CE
NT
ER
99
4082
820,
no
rman
_qb@
hotm
ail.c
om,
Em
pres
a C
ontr
ol R
apaz
S.A
.C.,
Nor
man
Qui
rós
/ Ser
gio
Qui
rós
Av.
Ric
ardo
Elia
s A
paric
io N
º 50
8 U
rb. C
lub
Cam
pest
re L
as L
agun
as
de L
a M
olin
a, L
a M
olin
a
LIM
AG
OLD
EN
EM
U 4
27-7
522
Eliz
abet
h H
iga
km. 3
0.5,
Car
rete
ra P
anam
eric
ana
Sur
, San
Ped
ro, L
urin
.
LIM
AJE
AN
DE
CO
NIN
CK
DE
W
AE
LLE
9931
787
2512
996
Sr.
Jea
n de
Con
inck
A
v. E
l sol
Nº
953
La C
ampi
ña C
horr
illos
LIM
AO
RN
I 100
47
9091
3 jm
chan
g52@
hotm
ail.c
omS
r. M
igue
l Cha
ng C
astil
lo
Av.
La
Mol
ina
Nº
1441
, Urb
.El S
ol d
e La
Mol
ina
LIM
AS
AF
AR
I JO
HN
47
7-33
97S
r. M
ario
Esp
inoz
a M
onto
ya
Jr. T
acna
Nº
409
Sur
co
TA
CN
AG
US
TA
VO
DE
RIV
ER
O
BU
ST
AM
AN
TE
05
4-41
1432
052
-965
9796
, 054
-65
9796
Dr.
Alo
nso
de R
iver
o B
usta
man
te
Cal
le A
rias
Ara
güez
Nº
180
Tac
na
Fu
en
te IN
RE
NA
, 20
08
Recommended