نهال أحمد ملحم

الجمهورية العربية السورية

وزارة التعميم العالي جامعة تشرين

الزراعية الهندسة كمية اإلنتاج الحيوانيقسم

جودة نطاف الدجاج البلدي أثناء الحفظ على فًتأثٌر مضادات األكسدة

الدرجة +o4

رسالة أعدّت لنيل شهادة املاجستري يف اهلندسة الزراعية

)مجترات+ دواجن( حيوانيإنتاج اختصاص

إعداد:

نهال أحمد ملحم

2018

الجمهورية العربية السورية

وزارة التعميم العالي جامعة تشرين

الزراعية الهندسة كمية اإلنتاج الحيوانيقسم

رسالة أعدّت لنيل شهادة املاجستري يف اهلندسة الزراعية

)مجترات+ دواجن( إنتاج حيوانياختصاص

إعداد:

نهال أحمد ملحم

إشراف محسن حمٌشة الدكتور زهٌر جبورالدكتور

اإلنتاج الحيوانيفي قسم أستاذ اإلنتاج الحيوانيفي قسم مساعد ستاذأ

جامعة تشرين –كلية الزراعة جامعة تشرين –كلية الزرعة

2018

تفويضص إنتاج حيواني من كمية اقدمت هذه الرسالة استكمااًل لمتطمبات نيل درجة الماجستير في اختص

الزراعة في جامعة تشرين

This thesis has been submitted

as a practical fulfillment of the requirement for

the degree of Master in animal production at the faculty of

agriculture ,Tishreen University

كلمة شكر

الدكتور بسام حسن باألستاذأتقدم بالشكر لرئاسة جامعة تشرٌن ممثلة

والنائب ،باألستاذ الدكتور جرجس مخولوإلى عمادة كلٌة الزراعة ممثلة

أتوجه بجزٌل الشكر واالمتنان والمحبة ، ومحمود عليو الدكتور اإلداري

.النائب العلمًلألستاذة الدكتورة سوسن هيفا

برئٌس قسم اإلنتاج الحٌوانً ممثلا ل والعرفان أتقدم بجزٌل الشكركما

على ، والسادة أعضاء الهٌئة التدرٌسٌة جمٌعاا زهير جبورالدكتور القسم

.دعمهم الدائم وعدم التردد فً تقدٌم أي مساعدة

الدكتور :جه بعظٌم الشكر واالمتنان واالحترام لألستاذٌن المشرفٌنوكما أ

لما تفضل به من جهد محسن حميشة واألستاذ الدكتورزهير جبور

ولما قدماه من إرشادات ،وتوجٌه ولصبرهم الجمٌل ونصائحهم القٌمة

.علمٌة فً سبٌل إنجاح هذا العمل

األستاذ الدكتور الكرام،لجنة الحكم السادة أعضاءبالشكر كما أخص

زهير جبورالدكتور ، ألستاذ الدكتور فهيم عبد العزيزا، توفيق دلا

طروحتً ولجهودهم الكبٌرة فً تصوٌب هفواته.أبول تحكٌم لتشرفهم بق

وسيم الدكتورحسان خوجة ولألستاذ الدكتور واالمتنانكما أتوجه بالشكر

على مؤازرتهم الدائمة فً إنجاز هذا البحث. سلهب

فهرس المحتويات

الصفحة عنوان الفقرة الممخص بالمغة العربية

1 والدراسة المرجعيةالفصل األول: المقدمة وأهمية البحث وأهدافه 2 المقدمة-1 3 أهمية البحث وأهدافه-2 3 أهمية البحث 2-1 3 البحث أهداف 2-2 4 المرجعية الدراسة-3 4 حفظ السائل المنوي 3-1

5 الفوائد واالضرار المتعددة لتقانة حفظ السائل المنوي :3-2

5 : فوائد حفظ السائل المنوي3-2-1

6 لسائل المنويأضرار حفظ ا 2- 3-2 7 جمع السائل المنوي :3-3

7 الجمع ق: طر 3-3-1

7 : طريقة المساج البطني3-3-1-1 7 : طريقة القذف الكهربائي 3-3-1-2

8 العوامل المؤثرة عمى السائل المنوي عند الجمع :3-3-2 9 : تكرار عممية جمع السائل المنوي3-3-3 9 اإلضاءة 3-4 9 السائل المنوي : تقييم نوعية3-5 9 : تقييم المون3-5-1 11 : حجم القذفة3-5-2 11 الحيوانات المنوية: تقييم حركية 3-5-3 11 : تركيز السائل المنوي3-5-4 11 الحية والميتة الحيوانات المنوية: تقييم 3-5-5 11 : تمديد السائل المنوي 3-6 11 االجهاد التأكسدي -3-7 11 نالده اكسدة-3-7-1 12 البروتينات أكسدة-3-7-2

12 أكسدة الحمض النووي-3-7-3 12 االجهاد التأكسدي عمى الخصية تأثير-3-7-4 13 سدي عمى وظيفة الحيوانات المنويةاالجهاد التأك تأثير-3-7-5

13 الجذور الحرة 3-7-6 14 مبية لمجذور الحرة التأثيرات اإليجابية والس 3-7-6-1

14 أثير األنواع المختمفة من الجذور الحرة عمى جودة السائل المنوي والخصوبةت 3-7-2-6

15 األكسدة: مضادات 3-8

16 : تصنيف مضادات األكسدة3-8-1

16 : مضادات أكسدة أنزيمية3-8-1-1

SOD 16 أنزيم-3-8-1-1-1

Catalase)) 16( CATالكاتاالز): 3-8-1-1-2

16 (GSH) ونأنزيم الجموتاثي: 3-8-1-1-3

16 : مضادات أكسدة غير أنزيمية3-8-1-2

E 17فيتامين-3-8-1-2-1

18 ()حمض االسكوربيك Cفيتامين -3-8-1-2-2

19 عنصر السيمينوم-3-8-1-2-3

19 لمضادة لألكسدة في السائل المنويليات الحماية اآ 3-8-2

21 المختمفة مى الخصوبة عند األنواعتأثير بعض مضادات االكسدة ع 3-8-3

21 عمى الخصوبة Eتأثير فيتامين 3-8-3-1

22 عمى الخصوبة C تأثير فيتامين 3-8-3-2 22 تأثير الكاتالز عمى الخصوبة 3-8-3-3 23 تأثير السيمينوم عمى الخصوبة 3-8-3-4

26 مواد البحث وطرائقه الفصل الثاني 27 مواد البحث وطرائقه-4 27 الطيور المدروسة 4-1

27 مضادات االكسدة المضافة 4-2

27 تربيةطريقة ال 4-3

29 نظام التغذية 4-4

29 تجهيز الطيور لمبدء بالتجربة 4-6

31 عمر النضج الجنسي 4-7

31 طريقة جمع السائل المنوي 4-8

31 طريقة فحص السائل المنوي 4-9

31 الفحص البصري 4-9-1

31 فحص المون 4-9-1-1 31 حجم القذفة 4-9-1-2 4

32 الفحص المجهري 4-9-2

32 تركيز السائل المنوي 1- 4-9-2

33 النسبة المئوية لمحيوانات المنوية المتحركة: 4-9-2-2

34 النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة: 4-9-2-3

34 السائل المنويطريقة تمديد 4-11

قبل الحفظ Tris-Fructose-Egg Yolkالممدد طريقة إضافة مضادات األكسدة الى 4-11 ⁰م 4عمى الدرجة

35

35 والسيمينوم Eإضافة فيتامين 4-11-1

36 )حمض االسكوربيك( Cإضافة فيتامين 4-11-2

CAT 36)إضافة أنزيم الكاتاالز ) 4-11-3

36 إضافة مزيج من مضادات األكسدة 4-11-4

36 التحميل اإلحصائي 4-12 37 النتائج والمناقشة الث:الفصل الث

38 النتائج والمناقشة -5

38 نتائج تقييم السائل المنوي لديوك التجربة: 5-1

38 تقييم المون 5-1-1

38 تقييم حجم القذفة 5-1-2

39 في السائل المنوي الطازج هاوتركيز المنوية عدد الحيوانات 5-1-3

41 %حركية الحيوانات المنوية 5-1-4

41 حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي الطازج 5-1-4-1

42 ساعة 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي الطازج والمبرد لمدة -5-1-4-2

ساعة بعد إضافة 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة -5-1-4-3 Cتراكيز مختمفة من فيتامين

44

ساعة بعد إضافة 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة -5-1-4-4 Eتراكيز مختمفة من فيتامين

46

ساعة بعد إضافة 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة -5-1-4-5 Se+ Eمختمفة من فيتامين تراكيز

48

48و 24لمدة ⁰م 4ت المنوية في السائل المنوي المبرد عمى الدرجة حركية الحيوانا-5-1-4-6 ساعة بعد أضافة تراكيز مختمفة من الكاتاالز

51

ساعة بعد إضافة 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة -5-1-4-7 مزيج من مضادات األكسدة

52

54 المنوية الميتةلمئوية لمحيوانات : تقدير النسبة ا5-1-5

54 الميتة في السائل المنوي الطازج : النسبة المئوية لمحيوانات المنوية5-1-5-1

55 والمبرد: : النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج الممدد5-1-5-2

المبرد بعد إضافة تراكيز : النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي 5-1-5-3 Cمختمفة من فيتامين

56

: النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز 5-1-5-4 Eمختمفة من فيتامين

57

: النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز 5-1-5-5 E+Seفة من فيتامين مختم

58

: النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز 5-1-5-6 مختمفة من فيتامين كاتاالز

59

: النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة مزيج 5-1-5-7 من مضادات األكسدة

61

ساعة بعد إضافة أنواع 48و 24لمدة ⁰م 4: صفات السائل المنوي المبرد عمى الدرجة 5-1-6 مختمفة من مضادات األكسدة

62

36 : صفات السائل المنوي الطازج لممجموعات المدروسة5-1-7

64 الفصل الرابع: االستنتاجات والتوصيات

65 والمقترحاتاالستنتاجات -6

65 االستنتاجات 6-1 65 المقترحات 6-2

66 الفصل الخامس: المراجع 67 المراجع-7 67 المراجع العربية 7-1 67 األجنبية المراجع 7-3

الممخص بالمغة اإلنكميزية

قائمة األشكال

الصفحة عنوان الشكل الشكل

28 التربية األرضية لمديوك بعمر ثالثة أشهر. 2-1

28 تة أشهر.التربية بأقفاص بعمر س 2-2

31 أدوات مستخدمة في التجربة 2-3

31 بروز الحميمات من المجمع 2-4

31 لحظة تدفق السائل المنوي من المجمع 2-5

32 أنبوب أبندورف بداخمه سائل منوي 2-6

32 األنسولين بداخمه سائل منوي محقن 2-7

33 بالمجهر الضوئيفحص العينات 2-8

X 34 41الحيوانات المنوية تحت المجهر الضوئي بتكبير 2-9

35 حمام مائي 2-11

قائمة الجداول الصفحة عنوان الجدول الجدول

27 مواصفات مضادات االكسدة المضافة 2-1

29 المواد الغذائية الداخمة في تركيب الخمطة العمفية نسب 2-2

38 ط حجوم قذفات مجموعات الديوك المدروسة مقدرة ب ملمتوس 3-3

41 لمجموعات الديوك المدروسة هاوتركيز لمنويةمتوسط عدد الحيوانات ا 3-4

41 حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي الطازج % 3-5

3-6 48و 24مدة ل ⁰م4حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي الطازج والمبرد عمى الدرجة

43 ساعة%

3-7 ساعة بعد إضافة تراكيز مختمفة 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة

C .% 44من فيتامين

3-8 ساعة بعد إضافة تراكيز مختمفة 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة

E% .من فيتامين46

ساعة بعد إضافة تراكيز مختمفة 48و 24الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة حركية 3-9 Se+ E 48% من فيتامين

3-11 ساعة بعد 48و 24لمدة ⁰م 4حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد عمى الدرجة

51 تراكيز مختمفة من الكاتاالز%. إضافة

3-11 ساعة بعد إضافة مزيج من 48و 24ات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة حركية الحيوان

53 مضادات األكسدة %.

54 النسبة المئوية لمتوسط الحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج. 3-12

3-13 48و 24متوسط % لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج الممدد والمبرد لمدة

55 ساعة

3-14 ساعة 48و 24متوسط النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد لمدة

Cبعد إضافة تراكيز مختمفة من فيتامين 56

3-15 48و 24متوسط النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج والمبرد لمدة

Eفة تراكيز مختمفة من فيتامين ساعة بعد إضا57

3-16 النسبة المئوية لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز مختمفة من

Se +Eفيتامين 58

3-17 لمدة ⁰م 4متوسط % لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج والمبرد عمى الدرجة

59 اكيز مختمفة من أنزيم الكاتاالز.د إضافة تر ساعة بع 48و 24

3-18 24لمدة ⁰م4متوسط % لمحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج والمبرد عمى الدرجة

61 ساعة بعد إضافة مزيج من مضادات األكسدة 48و

62 % ساعة 48و 24موت( المبرد بعد الحفظ لمدة -صفات السائل المنوي )حركية 3-19

63 المدروسة صفات السائل المنوي الطازج لممجموعات 3-21

المصطلحات المستخدمة في متن األطروحة

االختصارات االسم العربي Abbreviation

English name

C Ascorbic acid االسكوربيك( حمض) Cفيتامين

CAT Catalase كاتاالز Chelating - استخالب

DHA Docoahexaenoic acid حمض دوكي هكسايونيك

E Tocopherol ()توكوفيرول Eفيتامين GnRH اتلمجونادوتروبينالهرمون المطمق

Gonadotropin-releasing hormone

GPx Glutathion peroxidase جموتاثيون بيروكسيداز GR Glutathion reductase جموتاثيون ريدوكتاز

GSH Glutathion جموتاثيون H2O2 Hydrogen peroxide )الماء األوكسجيني(بيروكسيد الهيدوجين

LOO جذر البيروكسيل-

Pyroxyl

LPO Lipid peroxidation الدهنبيروكسيدية

MDA Malondialdehyde مالونيك ألدهيد NADPH Nicotinamide adenine dinucleotide phosphate ديوكميوتيدالفوسفات انزيم نيكوتيناميدأدنين

NO Nitric oxide جذر أوكسيد النتريك

1 اوكسجين أحاديO2 Singlet oxygen

O2 جذر فوق األكاسيد-

Superoxid anion

OH جذر الهيدروكسيل-

hydroxyl

perfringens Clostridium - المطثية الحاطمة

polymorphonuclear - )المحّببات( كريات بيضاء متعددة النوى PUFA PolyunSaturated Faity acids أحماض دهنية غير مشبعة

ROS Reactive oxygen species األنواع األوكسجينية النشطة

SOD Superoxide dismutase سوبر أوكسيد دسميوتاز

Spermation - انطاف

VPA acid Valproic حمض الفالبوريك

الممخصالتابع لكمية الزراعة في جامعة تشرين ،بفديوأجري هذا البحث في مركز بحوث اإلنتاج الحيواني

بعض خصائص ومخابر الكمية بهدف دراسة تأثير إضافة تراكيز مختمفة من مضادات األكسدة عمى .ساعة 48و 44لمدة ⁰م 4عند الحفظ عمى الدرجة السائل المنوي لمنمط البني من الديك السوري

لمحيوانات المنوية المتحركة عند% متوسطلقيمة أعمى بمغ Cفيتامين إضافة عند هأنأظهرت النتائج عمى التوالي %8.0.74% و850.48بمغ إذ ،/ مل ممغ 5بالتركيز نفسها الفترتين الزمنيتينالحفظ

.التوالي %عمى680799% و.7807بمغ إذ ممغ/مل،..بالمقارنة مع التركيز

% 89087ممغ/ مل، إذ بمغ ..عند إضافته بتركيز أعمى قيمة كانت Eوعند إضافة فيتامين .%عمى التوالي8404% و86058ممغ /مل حيث بمغ 5% عمى التوالي بالمقارنة مع التركيز 84066و

% 9.08 ما يقارب من( E +.06 Seممغ 5) بالتركيزبمغ أعمى قيمة E +Seوعند إضافة فيتامين % 88078 ما يقارب منالذي بمغ (E+.06 Seممغ ..%عمى التوالي بالمقارنة مع التركيز )87087و .عمى التوالي%78084و

% 87057و% 9.074 ، إذ بمغ/ ملU ...التركيز باستخدامأعمى قيمة كانت عند إضافة الكاتاالزو %عمى التوالي.88056و% 88064 الذي بمغ قيمته ،/ ملU .4بالمقارنة مع التركيز

عند التراكيز لهذا المتوسطأعمى قيمة توعند إضافة مزيج من مضادات االكسدة السابقة فكان % عمى 9.049و% .9808 بمغ إذ ، (كاتاالز مل U / .4/مل+ Se ممغ E +.08 ممغ C+5 ممغ/مل5)

إذ (كاتاالز مل U / .4/مل+ Se ممغ E +.08 ممغ C +5 ممغ /مل ..)بالمقارنة مع التركيز التوالي، .% عمى التوالي880.8% و85075بمغ

% أعمى بالمقارنة 970548 ما يقارب منوكانت قيم هذا المتوسط في السائل المنوي الطازج والذي بمغ % عمى التوالي. 880557% و880648، إذ بمغ ساعة 48و 44لمدة مع المبرد

حركة الكاتاالز، ، السيمينوم، أنزيم C ، فيتامينEالكممات المفتاحية: ديك بمدي، سائل منوي، فيتامين .الحيوانات المنوية، الحيوانات المنوية الميتة

Abstract

This Study was carried out at the center of Animal production in Fedio

belonging to the Faculty of Agriculture, Tishreen University and Faculty

Laboratory in order to evaluate the effect addition different

concentrations of antioxidants on some Semen characteristics of the

brown types of Syrian local roster when stored at 4 c⁰ for 24 and 48

hours.

The results showed that the addition vitamin C highest value of the

average percent of motility sperm when storage for the same tow time

periods at a concentration of 5 mg/ml with 85.023% and 8.174%

respectively, compared to the 10 mg/ml with 73.71% and 68.799%

respectively. Our results also have showed that addition vitamin E the

highest value at concentration 10 mg//ml with 89.87% and 84.66%

respectively compared of 5mg/ml with 86.58% and 82.2% respectively.

The addition vitamin E+ Se had the highest value at concentration (5mg

E+0.6 Se) with 91.8% and 87.87% respectively, compared with (10 mg

E+ 0.6Se) with 83.73% and 78.82% respectively.

Also the addition of Catalase, had the highest value at concentration (100

u/ml) with 90.72% and 87.57% respectively, compared with (20u/ml)

with 88.64% and 83.56 % respectively.

However, the addition of the mixture of antioxidant's, had the

highest value at concentration (5 mg/ml C+ 5 mg +0.3 mg

Se/ml+20u/ml CAT), where it was 93.81% and 91.29% respectively,

compared with (10 mg/ml C+ 5 mg +0.3 mg Se/ml+20u/ml CAT) with

85.75% and 83.13% respectively.

Our results also showed that the average of fresh semen had the highest

value of sperm motility with 97.548% compared to those stored for 24

and 48 hours with 88.643% and 83.557% respectively.

Key word: Local poultry, Semen, Vitamin E, Vitamin C, Selenium,

Catalase enzyme, sperm motility, Dead sperm.

78من 1الصفحة

الفصل األول

المقدمة

أهمية واهداف البحث

الدراسة المرجعية


Introduction مقدمة-1

، ل األنواع الحيوانيةلتناسالتقنيات الحيوية إحدىلألنواع الحيوانية بطريقة التبريدتعد عملية حفظ السائل المنوي وانتخاب إدارة التلقيح االصطناعي،ن تحسإذ تستخدم للحفاظ على األصول الوراثية واألنواع المهددة باالنقراض، كما

.(Andrabi and Maxwell 2007السالالت المتفوقة وراثيًا، والوقاية من األمراض )هذا ما يجعلها و ،نسبة عالية من األحماض الدهنية غير المشبعة طويلة السلسلة بامتالكهاتتميز الحيوانات المنوية

يتسبب في هرم الحيوانات المنوية وتقصير مدة حياتها، كما يؤثر على الذي أكثر عرضة للضرر التأكسدي،قدرة على الحركة لحفظ السائل المنوي، و يسبب تغيرات في بنية الحيوان المنوي وخاصة في الجسم الطرفي وفقدان ا

((Jones et al., 1979. من الضروري تمديد السائل المنوي قبل أي عملية حفظ لضمان الحصول على فإنهلذا ,Donoghue and Wishartفي نهاية عملية الحفظ ) اإلخصابأعلى نسبة من الحيوانات المنوية القادرة على

ساعة دون أن يؤثر ذلك على القدرة 24إذ وجد أنه من الممكن حفظ السائل المنوي الممدد للطيور لمدة ،(2000، بالمقابل تبين أن قدرة الحيوان المنوي على االخصاب Lak and Ravie, 1979)على االخصاب و الحركة )

(، كما Dumpala et al., 2006 )تمديد من دون والحركة تنخفض خالل ساعة واحدة من حفظ السائل المنوي وتجنب ،لحراري ا و اإلجهادالفيزيولوجي لإلجهادلتخفيف التأثيرات السلبية األكسدةضافة بعض مضادات إيفضل يج اإلخصابية، كما أن إضافة مز و قدرتها الحيوانات المنويةالحفاظ على جودة ومن ثم األوكسجيني الماءتشكل

نجاح في ب ذلك وقد استخدم ،في السنوات األخيرة ت فائدتهتممددات السائل المنوي، أثبكسدة الى من مضادات األ .( Foote et al., 2002; Roca et al., 2005) والخنازير ممددات السائل المنوي للثيران

ممددات السائل المنوي إلىس هذا البحث لدراسة إضافة بعض مضادات األكسدة بتراكيز مختلفة كر ولذلك من ثم و على خصائص السائل المنوي بغرض الحفاظ جراء عملية الحفظ بالتبريد إللدجاج السوري المحلي قبل كسدة ألمضاد ا واختيار، وذلك بتخفيض تشكل الجذور الحرةألطول فترة ممكنة الحفاظ على القدرة اإلخصابية

.والتركيز األكثر فعالية


Importanc and Objectives of the studyالبحث وأهدافه أهمية-2

:Importanc of the study البحثأهمية :2-1

على الخصوبة اتقنية حفظ السائل المنوي ومدى تأثيرهبدراسة ُعينتالدراسات التي غياب منتأتي أهمية البحث يور مناسبة لحفظ السائل المنوي للط ةقيطر إليجادعند الدجاج السوري المحلي، لذا يعد هذا البحث المحاولة األولى

بعد اب على اإلخصوقدرتها المنوية الحيوانات النخفاض حيوية ، نظراً هلعدة أيام دون أن يؤثر ذلك على خصائص ساعة واحدة من جمع السائل المنوي.

:Objectives of the study أهداف البحث :2-2

ند الدجاج ع في بعض خصائص السائل المنوي تتركز أهداف البحث في دراسة تأثير تقنية حفظ السائل المنوي السوري المحلي من خالل:

،Vitamin -C ،Vitamin -Eدراسة تأثير إضافة تراكيز مختلفة من مضادات األكسدة ) .1Vitamin –E+Se ،Catalase) السوري البلدي قبل إجراء عملية للدجاجممددات السائل المنوي إلى

.على بعض خصائصه ،حفظه بالتبريد

د عنخصائص السائل المنوي بعض تحديد قدرة مضادات األكسدة المضافة في الحفاظ على .2 .الطيور

.األكثر فعالية والتركيز تحديد مضاد األكسدة .3


Literature Review المرجعية الدراسة-3

:conservationemen Sالسائل المنوي حفظ: 3-1

، إذ تم الحصول علىاً عام ثمانين ما يقرب منلحفظ السائل المنوي في الدواجن منذ عديدة أجريت محاوالت Shaffnerالجنين على قيد الحياة يبقىبيضة مخصبة من دجاجة ملقحة بسائل منوي مذاب بعد التجميد، دون أن

et) al., 1941،) لتحسين طرق حفظ السائل المنوي للكثير من األنواع الحيوانية عديدة دراسات أجريتوبعد ذلكزالت األبحاث مستمرة حتى األن وما(، Donoghue and Wishart, 2000)للطيور، بما فيها السائل المنوي

.المختلفة من حيوانات المزرعة لما يخص األنواعلتحديد مدة الحفظ ودرجة الحرارة المناسبة لعملية الحفظ

لساللة منها ما هو مرتبط با ،أثناء الحفظ في تبين أن هناك عوامل عديدة تؤثر على جودة السائل المنوي و لقد )بالممدد المستخدم ودرجة حرارة الحفظ والذوبان من جهة أخرى منها ما هو مرتبط والنوع من جهة، و

Lukaszewicz, 2006). لف للحفظ بالتبريد والتجميد تخت الدواجنأن قدرة تحمل الحيوانات المنوية عند إذ تبينبسبب %30-60كما أن حركة الحيوانات المنوية بعد حفظ السائل المنوي بالتبريد تنخفض بنسبة الساللة، باختالف

حركية على اً سلبي اً الميكروبي تأثير للتلوثوكذلك وجد أن .((Blesbois, 2007 نخفاض قدرتها على انتاج الطاقةإوذلك ،(Najee et al., 2012والصفات المورفولوجية ومختلف معايير جودة السائل المنوي ) الحيوانات المنوية

(. Yaniz et al., 2010نتيجة التنافس على المواد الغذائية أو بسبب التأثير المباشر على الحيوانات المنوية ) granulocytesو Macrophages إنناج إلىالتلوث الميكروبي للسائل المنوي المجمد يؤدي

polymorphonuclear ية النشطة وكسجينوهذه الخاليا تولد الصيغ األ ،(أو المحب بات )كريات بيضاء متعددة النوىتغلب عليه عن وهذا يمكن ال والتي بدورها تضعف القدرة الوظيفية للحيوانات المنوية وتقلل من قدرتها االخصابية،

من البكتريا الموجودة %05على إزالة ةقادر ال ،(KMno4 ( )Morrell, 2006طريق إضافة برمنغنات البوتاسيوم )وبات ونسبة من الميكر والتقليلالحفاظ على جودة السائل المنوي ومن ثم يد في السائل المنوي عند الحفظ بالتبر

الغشاء و والحفاظ على سالمة االكروسوم تهاوحيوي الحيوانات المنويةحركية وزيادة ات المنوية المشوهة ،الحيوانال ينصح إال أنه، ⁰م 691-و التجميد على الدرجة ⁰م 4الخلوي في السائل المنوي المخزن بالتبريد على الدرجة +

التأثير و نضوب الطاقة بسرعة ما يؤدي إلىكمحفز قوي للحركة عمل ت ابزيادة كمية برمنغنات البوتاسيوم، ألنهالمضادة والبيبتيداتالكاتاالز( , E , C)فيتامين األكسدةعلى جودة السائل المنوي، لذا يفضل إضافة مضادات

اإلخصابيةلقدرة لتحسين او ،حفظ بالتبريدالممددات السائل المنوي للحد من التلوث الميكروبي عند إلىللميكروبات وجود ىإلمن المضادات الحيوية ، ألنها تؤدي للحيوانات المنوية والحفاظ على خصائص السائل المنوي ، بدالً

المطثية الحاطمة) ( مثل (tetracyclineمقاومة للتتراسكلين هناك سالالتوجد أن فمثالً .أنواع مقاومةperfringens (Clostridium (Vickram et al., 2017.) الدجاج الرومي اهتمامًا كبيرًا، نالوفي هذا المجال


على تحديد الممدد األمثل وتحسين ظروف الحفظ التي تنظم تركيب البالزما المنوية فقد تمت دراسات عديدة، ركزت لتحسين جودة السائل المنوي المخزن ،مضادات االكسدة باستخدام المنوية، الحيوانات عندومتطلبات االستقالب (.Donoghue and Wishart, 2000; Long and Kramer, 2003والقدرة االخصابية )

ند ن هذه الطريقة ليست ناجحة عأإال ،من التقدم في حفظ السائل المنوي بالتجميد عند الماشية وعلى الرغم انخفاضو مقارنة مع أسعار الصيصان بال وتخزينهعداد السائل المنوي إ بسبب ارتفاع تكاليف ،أنواع الطيوربعض لمذاب المجمد وا عليها باستخدام السائل المنوي يمكن الحصولالسائل المنوي ومستويات الخصوبة التي جودة

(Blesbois ,2007 باإلضافة الى ،)درة االخصابية للحيوانات المنوية المخزنةبيولوجيا التناسل تؤثر على الق أن (.Blesbois and Brilliard , 2007)للطيور

وية حساسية لضرر الحفظ بالمقارنة مع الحيوانات المن أكثر ،الحيوانات المنوية للديك الرومي تفيد الدراسات بأنالحيوانات جودةبين أنواع الدواجن لمعرفة المقارنة عندتبين و(، Blesbois, 2007; Wishart, 2009للدجاج )

دلة أهناك إذ أن أن معدالت الخصوبة أقل في الدجاج الرومي بالمقارنة مع دجاج اللحم، المنوية بعد الحفظ بالتبريدألخرى اجراء التجميد للسائل المنوي في نوع ما من الطيور قد ال يؤدي الى نجاح األنواع إن نجاح أقوية تثبت

(Blesbois and Brillard, 2007; Blesbois, 2011).

الفوائد واالضرار المتعددة لتقانة حفظ السائل المنوي :3-2

Multiple benefits and damage of semen storage technique of semen storage : Benefits : فوائد حفظ السائل المنوي 3-2-1

نتاجإالتلقيح االصطناعي فوائد عديدة على في ،المخزن السائل المنوي الستخدام أنبعض الدراسات وجدت صب خالديك الرومي، ألنه الوحيد من أنواع الدواجن التجارية التي تعتمد على التلقيح االصطناعي إلنتاج البيض ال

ةعبص إمكانية التزاوج الطبيعي بالديك الرومي ما يجعلوهذا ،بين الذكور واالناثبسبب الفرق الكبير في الحجم (Donoghue and Wishart, 2000; Iaffaldano et al., 2010). معدالت الخصوبة للديك أنو تبين

%1453الى 1051التلقيح االصطناعي باستخدام السائل المنوي المجمد والمذاب تتراوح بين إجراءالرومي عند تجميد لوهذه النسبة غير جيدة نتيجة عدم قدرة الحيوانات المنوية للديك الرومي على البقاء على قيد الحياة بعد ا

نشاء، الرومي للديك ويةللحيوانات المننه البد من وجود أوساط تجميد فعالة ألذلك وجد ،والذوبان لتخزين بنك وا الطريقة الفعالة وه حفظ السائل المنوي بالتجميد أنالسائل المنوي والحفاظ على التنوع الوراثي لهذا الطائر، كما وجد

Blesbois, 2011; Kowalczyk andالوحيدة لتخزين الخاليا التناسلية للحفاظ على التنوع الوراثي في الطيور )

Lukaszewicz, 2015 نشاء بنوك للسائل المنوي الحيوانات إنجاح تقنية حفظ السائل المنوي ساعد على أن(، و (.Blesbois, 2007; Blanco et al., 2009; Kowalczyk et al., 2012) المختلفةالبرية وأنواع الدواجن


على د ويساعمما يؤدي الى زيادة إنتاجية القطيع بسرعة، يمكن من توزيع الجينات المرغوبة زراعياً أنهكما ويحافظدية، المع األمراض انتشارتجنب حدوث أي كارثة، كما يمنع بعض المسببات المرضية و انتقالالسيطرة على بنقل ويسمح ،ويسهل تقنية اختبار الجنسين يشجع التبادل العالميع الصحي للقطيع، ويعزز خصوبته، و على الوض

تخدامه ساعد اس إن ، إذ ممارسة تقنية التلقيح االصطناعي ينات وانشاء بنك للجينات الوراثية، كما يساعد علىالج .(Blesbois,2007في التحكم بالمصادر الوراثية للطيور )

Damage of semen storageضرار حفظ السائل المنوي أ: 3-2-2

الناجمة عن الحفظ، األول متعلق بضرر الغشاء من األضرار( نموذجين من 1662) Storeyو Alvarezوجد ووجد .المتشكل خالل الحفظ اإلجهاد تهشم الغشاء نتيجة واآلخر Lipid peroxidation (LPO،) خالل تأثير

Brouwers وجدو .بدرجة كبيرة يتمضرر الغشاء بسبب االجهاد في حينفي ضرر الحفظ يساهم قليالً LPOن أبعد التجميد نسبياً نوضرر الغشاء مستقال LPOن الضرر الناجم عن أفي اآلونة األخيرة ( 2550) خرون آو

يوانات حساسية الحها؛ والذوبان للحيوانات المنوية للثديات، باإلضافة الى وجود العديد من االضرار األخرى ومنضرار القاتلة وشبه األ، و (Bailey et al., 2003المنوية لدرجات الحرارة المنخفضة ولعمليات التجميد والذوبان )

، كما (Watson, 2000خصوبة الحيوانات المنوية المحفوظة ) انخفاض ومن ثمالقاتلة لهيكل الحيوانات المنوية بسبب ،عند الحفظ على وظائف الحيوانات المنوية وقدرتها االخصابية أن هناك أنواعًا من األوكسجين النشط تؤثر

حماض الدهنية غير المشبعة في الغشاء البالزمي ومستوى منخفض من مضادات االكسدة وجود نسبة عالية من اال(، ووجدت بعض الدراسات Chatterjee and Gagnon, 2001) لألكسدةفي السيتوبالزم مما يجعلها أكثر عرضة

األضرارأكثر أهمية من ( (ROS Reactive oxygene species ضرار الحفظ الناجمة عن تشكل أأن ذا ه أنحركية الحيوانات المنوية عند الحفظ، وتبين كذلك تنخفضو .(Guthrie and Welch, 2012األخرى )

عنناجم الكيمائي والفيزيائي ال اإلجهادضعف وظيفة الميتكوندريا بسبب بـلكن يرتبط ، LPO بـالضرر ال يرتبط في والماء األوكسجيني ROSال يوجد أي عالقة بين حركية الحيوانات المنوية و أنهوجد إذالتجميد والذوبان،

الحمض تخريب إلى ⁰م 0. يؤدي الحفظ أيضًا عند الدرجة +( al etKadirvel,. 2009السائل المجمد والمذاب )(، ووجدت ,Linfor and Mayers 2002مختلفة وذلك عند الخنازير والخيول ) ممدداتحتى بعد استخدام النووي

وهذا ،الحمض النووي يسبقه خلل شديد في وظيفة الميتكوندريا والغشاء الميتكوندري تخريب أنبعض الدراسات ن الحفظ لم يتسبب أدراسات أخرى وجد في و (، Henkel et al., 2004نتاج أنواع االوكسجين النشطة )إيرتبط مع

Kadirvel et( والجاموس ) (Martin et al., 2004بأي ضرر للحمض النووي للحيوانات المنوية في الثيران

al., 2009) في األغشية والخاليا )البالزما والميتكوندريا( وفي النواة ) أضرار، كما يؤدي الحفظ إلىBlesbois,

دينوسين ثالثي أ) ATPعلى مستويات تؤثر والتي ،تقالبضرار الناتجة عن االساأل، إضافة إلى (2007جودة السائل في اً إنخفاض، ويسبب الحفظ (Long, 2006ضروري لحركة الحيوانات المنوية )الالفوسفات( وهو

شارك في التفاعل االكروسومي ي الذي، (Acrosin) األكروسينأنزيم تغيرات في نتيجة حدوثالمنوي (Slowinska et al., 2012)ودة ج إنخفاض إلى أدىكروسين الحيوانات المنوية للديك الرومي أفي ، فاإلضطراب


وتتأثر بشكل خاص .(Kotlowska et al., 2007; Slowinska et al., 2012السائل المنوي خالل التخزين )الدهنية ألحماضلالفوسفولبيدات في الحيوانات المنوية عند التخزين في المختبر نتيجة عمليات االستقالب الغذائي

الماءل دهون الفوسفورية وتشكتحلل الو يسبب عدم استقرار الغشاءاألمر الذي ،الفوسفاتية في الغشاء الخلوي (.Kotlowska et al., 2007) األوكسجيني

Semen Collectionجمع السائل المنوي :3-3

Collection Methodالجمع ق : طر3-3-1

Abdominal Massage المساج البطني: طريقة 3-3-1-1

طريقة جمع السائل المنوي للطيور وقد أوصى باتخاذ مجموعة من Qunin (1937 ) و Burrows وصف عزل الذكور عن االناث من أجل زيادة كمية السائل المنوي، عملية جمع السائل المنوي وأهمها:اإلجراءات قبل

يقة تعتمد هذه الطر ، و بالزرق تلوث السائل المنوي لتجنب ،ساعة من عملية الجمع 12للطيور قبل العلفتقديم وعدم إذ يتم التدليك بلطف باليد اليمنى حول عظم العانة للقسم (،Abdominal Massage )على مبدأ المساج البطني

اللين من البطن والمجمع وباليد اليسرى على طول الظهر من قاعدة الجناح حتى حدود الذيل، وذلك بعد تثبيت ثانية، ويحدث خاللها 15-30أرجل الطير بين ركبتي الفني وظهره لألعلى ورأسه فوق اليد اليسرى. يستمر التدليك

،بالضغط بلطف على المجمع حيث تبرز الحليمات انتصاب العضو الذكري وبروزه من المجمع، عندها يقوم الفني ,Zhang and Zheng)وعند إتمام البروز يتم عصر الحليمات ويجمع السائل المنوي في وعاء زجاجي معقم

ي همال السائل المنو إ في حال عدم الحصول على السائل المنوي بعد دقيقة واحدة من بدء المساج يجب (، و 2002(Zhang, 2006وأشار ،) Gill الجمعالى ضرورة تدريب الطيور في عمر مبكر كي تعتاد على (1999) وآخرون ،

( Tabatabaei et al., 2011ة)ويمكن للمربي أن يخلط السائل المنوي لعدة ديوك للحصول على عينة مشترك

Electro-Ejaculationطريقة القذف الكهربائي : 3-3-1-2

، وهذه التقنية (Kono and Hiura, 1983)تستخدم عند الطيور األكثر عدوانية ، و نتشاراً إأقل ُتعد هذه الطريقة ,.Escobar et al) كما أنها ال تحتاج لتدريب الطيور قبل الجمع ،تتطلب تخدير الطير قبل جمع السائل المنوي

قص الريش و بعد تثبيت الديوك هومنخفضالتوتر ، وتتم هذه العملية عن طريق التحفيز الكهربائي عالي (2011وذلك باستخدام مسبر ثنائي القطب موصول إلى جهاز كهربائي منظمحول فتحة المجمع وغسلها بمحلول ملحي

يوية حول الح الصاداتثالثي األقطاب ثم يتم جمع السائل المنوي في أنابيب موجودة في نهاية كل قطب وتوضع دقيقة. 45فتحة المجمع، و تستغرق هذه الطريقة حوالي

في دراسة أجريت للمقارنة بين تقنيتي جمع السائل المنوي بطريقة المساج البطني والقذف الكهربائي عند الدجاج ( بأنه ال يوجد فرق معنوي في خصائص السائل المنوي بين الطريقتين ولكن هناك (2004خرون آو Geeوجد


( أن تركيز 2012خرون)آو Kanatiyanontضرورة إلجراء التخدير بطريقة القذف الكهربائي ،وبالمقابل وجد الحيوانات المنوية بطريقة المساج البطني أعلى بالمقارنة مع طريقة القذف الكهربائي وأن القدرة على الحركة متشابهة

Setioko andالجمع ) عند البط اختالف في خصائص السائل المنوي بين طريقتي يوجد بينما بين الطريقتين،

(Hetzel, 1984 .

العوامل المؤثرة على السائل المنوي عند الجمع :3-3-2

Effecting Factors on semen when collected:

ففصل السنة يؤثر على جودة السائل .وجد أن هناك مجموعة من العوامل تؤثر على السائل المنوي عند الجمعة الميتة وتزداد نسبة الحيوانات المنوي .ذ يتم جمع أكبر كمية من السائل المنوي في الربيع وبداية الصيفإ المنوي،

راب عند اقتته وكمي (، وعند طيور غينيا تزداد نوعية السائل المنوي Bonato, 2014والمشوهة خالل فصل الشتاء)موسم التكاثر )فصل االمطار( وتتناقص مع بداية موسم الجفاف، لذلك يجب عدم جمع السائل المنوي خالل موسم

مطار والعمر وتغيرات الظروف (، كما أن الضوء ودرجة الحرارة وهطول األNwakalor et al., 1988الجفاف )على الغشاء فترة اإلضاءة لها تأثير إن التربية، إذالبيئة تؤثر على خصائص السائل المنوي عند الطيور في موسم

الحفظ انات المنوية لألضرار المرتبطة بالخلوي للحيوانات المنوية وتكوين البالزما المنوية مما يزيد من مقاومة الحيو في السائل المنوي الذي تم جمعه أكبر الحيوانات المنوية تبقىن حيوية أو ، (Deichsela et al., 2016 )والتبريد

ساعة بالمقارنة مع السائل الذي جمع من 125ضاءة طويل عند الحفظ بالتبريد لمدة إمن حيوان معرض لبرنامج نما كان حجم بي ،على تركيز للحيوانات المنوية كان في شهر حزيرانأ ن أ، و ضاءة قصيرإرنامج الحيوان المعرض لب

Elagib، ولكن وجد Bah et al., 2001))على في شهر تموزأ للحيوانات المنوية ةاإلجمالي والحركةالسائل المنوي ن حجم السائل المنوي للطيور وأ( أن درجة الحرارة المرتفعة تخفض تركيز الحيوانات المنوية، 2512)وآخرون

ل لحفظ األفض ُيعد ن فصل الربيع وأشهر الخريف، أشهر الصيف بالمقارنة مع أخالل اً المعمرة يكون منخفضالسائل المنوي بالتبريد والتجميد للحفاظ على خصائص السائل المنوي وذلك في سالالت دجاج البحر األبيض

ن تركيز الحيوانات المنوية عند الديك التركي ينخفض أ وتبين .( Santiago-Moreno et al., 2011المتوسط )ة على تكوين البالزما المنوية وخاص سلباً التغيرات الموسمية تؤثرن أ و ،أسبوع( 01الى 31من )بالعمر مع التقدم

( والدهون Leahy et al., 2010; Barranco et al., 2013) لألكسدةالبروتينات وعلى الخصائص المضادة المنوية على استقرار الحمض النووي للحيوانات ( وكذلكArgov et al., 2007الدهنية ) األحماضوتركيب

(Lopez-Fernandez et al., 2011 . )


Frequency of Collection : تكرار عملية جمع السائل المنوي 3-3-3

، إذ تشير الدراسات إلى أن تكرار جمع السائل قد يؤثر على خصائص السائل المنوي إن تكرار عملية الجمع مرتين جمع السائل المنوي وأن، المنوي أكثر من مرتين باألسبوع له تأثير سلبي على خصائص السائل المنوي

Ghonim ) مليون نطفة تزيد الخصوبة وذلك عند البط الدمياطي 20وجرعة تلقيح 1:1 تمديدأسبوعيا" بمعدل

et al., 2009). بالمقابل وجد أن ذكور الدجاج الرومي تنتج كمية أكبر من السائل المنوي كلما ازداد تكرار جمع (.Noirault et al., 1999السائل )

Lighting : اإلضاءة3-4تلعب اإلضاءة دورًا هامًا في التأثير على منطقة الهيبوتالمس عند الطير، األمر الذي يؤدي الحقًا الى زيادة

( الذي يحفز الغدة النخامية GnRHفراز هرمون )إ( من خالل Berry, 2003عند الذكر ) الحيوانات المنويةنتاج إ ومن ثم فراز الهرمونات الجنسية في المبايض والخصى إ( المسؤولين عن FSH( و )LHنتاج هرموني )إعلى

(.Ottinger and Bakst, 1995والبويضات ) للحيوانات المنويةالتأثير على الخاليا المولدة

Semen Evaluation: تقييم نوعية السائل المنوي 3-5

لتلقيح بسائل ا يمكن من تحديد جودة السائل، ألن يعتبر تقييم خصائص السائل المنوي بعد تخزينه ضروري فهو (.Thursto, 1995نخفاض الخصوبة )ا منوي ذي نوعية رديئة يؤدي الى زيادة نسبة النفوق و

ويتم اجراء عملية التقييم على مرحلتين:

أوال": الفحص البصري لتقييم اللون وحجم القذفة.

ركيتها.وح الحيوانات المنويةومورفولوجيا نات المنويةالحيواثانيا": الفحص المجهري لتحديد عدد وتركيز

Color Evaluation: تقييم اللون 3-5-1

Petersعلى كثافته، فعند الدجاج يكون السائل المنوي بلون أبيض حليبي شفاف اً لون السائل المنوي مؤشر ُيعد

et al., 2008)) أخضر أو بني ا لونه يكون الزرق واللون مؤشر لحدوث التلوث، فعند التلوث بالبول أو (Lake,

. ويختلف اللون حسب نوع الطير ولكن بشكل عامطير أثناء عملية الجمعجهاد الإ(، وقد يتلوث بالدم نتيجة 1983، (Cole and Cupps, 1977يدل على تركيز عالي للحيوانات المنوية )فإن ذلك اً وجد أنه عندما يكون قوامه دهني

(.Gee, 1983السائل المنوي مائي المظهر يقل عدد الحيوانات المنوية فيه )وعندما يكون لون


:Ejaculate Volume : حجم القذفة3-5-2

وذكر .(Cole and Cupps, 1977) مل0.6بُالمتوسط ،مل بالقذفة الواحدة 1.5-0.1ينتج الديك بين Gordon (2005أن متوسط حجم القذفة باستخدام المساج البطني ) د مل ،بينما وج 0.25 بلغBah خرون آو

مل، ووجد أن حجم القذفة عند الطيور تختلف باختالف نوع الطير 0.28±0.14( أن متوسط حجم القذفة 2001)لجمع ومهارة الشخص، ويقل حجم السائل المنوي وعدد الحيوانات المنوية عند ا واالستجابة لعملية التدليك وطرق

كما وجد أن وزن الجسم والعوامل الوراثية تؤثر ،(Gumulka and Kapkowska, 2005تقدم الطيور في العمر)يزداد حجم السائل المنوي عند السالالت الثقيلة مع انخفاض في تركيز الحيوانات إذ ،على حجم السائل المنوي

الحيوانات المنوية على ، وكلما ازداد حجم السائل المنوي تزداد قدرة Donoghue and Wishart, 2000) )المنويةد تحدي يمكن(. ومن خالل معرفة حجم السائل المنوي وتركيز الحيوانات المنوية Peters et al., 2008 (الحركة

(.Senger, 2003وبالتالي تحديد جرعة التلقيح المطلوبة ) ،العدد الكلي للحيوانات المنوية في القذفة

:Sperm motility Evaluation الحيوانات المنوية: تقييم حركية 3-5-3

تدل على جودة الحيوانات المنوية ونوعية كما الدواجن،لمحدد األساسي للخصوبة عند القدرة على الحركة ا ُتعد وعندما يكون تركيز الحيوانات المنوية عاليًا يصعب ، (10x)بقوة تكبير السائل المنوي ويتم تقييم الحركة مجهرياً

,Hafez B and Hafez E)تحديد الحركة الفردية للحيوان المنوي، لذلك يفضل تمديد السائل قبل تقييم الحركية

وهناك عالقة طردية بين حجم السائل المنوي وقدرة الحيوانات المنوية على الحركة بسبب اختالف محتوى .( 2000 (.Kennedy et al., 2003البالزما المنوية وخلية الحيوان المنوي من البروستاغالندين )

:Sperm Concentration: تركيز السائل المنوي 3-5-4

Hafez B andمليار نطفة / مل ) 7-3من الحيوانات المنوية عال السائل المنوي للطيور بتركيزيتميز

Hafez E, 2000( وهناك عالقة عكسية بين حجم السائل المنوي وتركيز الحيوانات المنوية ،)Uchechukwu

et al., 2015.) لدجاج ( مليار نطفة/ مل بالنسبة 3-2.8في السائل المنوي بين ) الحيوانات المنويةيتراوح تركيز( مليار نطفة /مل بالنسبة للدجاج الرومي 9-0( مليار نطفة / مل بالنسبة لدجاج البيض وبين )3.0-3اللحم وبين )

(Blesbois et al., 2007.)

:Evaluation Dead and Live Sperm الحية والميتة الحيوانات المنوية: تقييم 3-5-5

ون الحيوانات المنوية ، إذ تتلللصبغاتللخاليا الجرثومية الميتة على مبدأ نفاذية الغشاء البالزمي هذا التقييم يعتمدالمعدودة لمنويةللحيوانات اكنسبة مئوية من العدد الكلي وتحسب ،لوردي عند استخدام صبغة االيوسينالميتة باللون ا

(Yahaya et al., 2013).


:Dilution of Semen: تمديد السائل المنوي 3-6

التلوث، ية ويمنعوالكيمائيفضل تمديد السائل المنوي ألنه يحمي خاليا الحيوانات المنوية من التغيرات الفيزيائية ويؤمن تمديد السائل المنوي زيادة .( (Chulhong and Chapman, 2005 أفضل لإلخصاب اً و يوفر ظروف

Mian etالتعامل مع السائل المنوي وتأمين لزوجة مناسبة ) وسهولةاإلناث، وتلقيح عدد أكبر من ، القذفة كمية

al., 1990،) وان اذ تنخفض قدرة الحي خصائصه،تمديد السائل المنوي قبل حفظه للحفاظ على ومن الضروري Dumpalaخالل ساعة واحدة من جمع السائل ) الممددالمنوي على االخصاب والحركة في السائل المنوي غير

et al., 2006.) يعطي نسبة إخصاب عالية، وبالمقابل وجد أن 2:1أو 1:1تمديد السائل بنسبة وقد وجد أنلالنشاط االستقالبي من زيدإذ يثير سلبي على الحيوانات المنوية تأ له 1:4التمديد بنسبة أعلى من القدرة على لويق

,Cecil and Bakst)المنوي في الغشاء الخلوي للحيوان الماء األوكسجينيمعدل يرفع أنه االخصاب، كما

اء جر إي درجة حرارة السائل المنوي عند تكون درجة حرارة الممدد تساو ألنوقد تبين أن هناك ضرورة .(1993جراء التمديد ضمن حمام إ إذ يفضلوذلك لضمان عدم حدوث صدمة حرارية للحيوانات المنوية، ، عملية التمديد

Donoghueالمتضررة التي تؤدي زيادتها الى التأثير على نسبة االخصاب ) الحيوانات المنويةلتقليل نسبة ،مائي

and Wishart, 2000). المستخدمة في تمديد السائل المنوي، اذ يستخدم صفار المخففاتوهناك العديد من .(Aboagla and terada, 2004) البيض في تمديدات السائل المنوي لحماية الحيوانات المنوية من صدمة البرد

-الستريكحمض -فركتوز–من هيدروكسي ميتيل أمينو الميتان Tris-fructose-egg yolkالممدد يتكون (.Azawi and Hussein, 2013صفار البيض )-بنسلين-ستربتومايسين

:Oxidative stress جهاد التأكسدي: اإل3-7

ي التوازن بين ف باختاللويتمثل ،جهاد التأكسدي من التفاعالت االستقالبية التي تستخدم األوكسجيناإل ُيعد و أسدة كد الى اإلنتاج المفرط لمولدات األوهذا االختالل يعو ،كسدة في الكائن الحيكسدة ومضادات األمولدات األ

( واإلنتاج المفرط لألنواع االوكسجينية والجزيئات المؤكسدة Kirschvink et al., 2000كسدة )نقص مضادات األوجية بالجزيئات البيول إذ تلحق أضراراً ،(Tunez et al., 2011سبب أضرارًا خلوية ونسيجية غالبا غير عكسية )ي

( Sachdev and Davies, 2008وخاصة اللبيدات بما في ذلك الكوليسترول الغشائي واألحماض الدهنية ) .DNA (Avouac et al., 2010 )( وNegre- Salvayre et al., 2008والبروتينات )

:oxidation Fatالدهن كسدةأ-3-7-1

تحتوي األغشية الخلوية على كميات كبيرة من البروتينات الدهنية وفوسفولبيدات غنية باألحماض الدهنية غير (. ويمكن Pratt et al., 2011) للدهن فائقة الى حدوث أكسدة التي تؤديالمشبعة والتي تكون عرضة للجذور الحرة

Maiaلكسر السلسلة، ) Eبتدخل مركب مضاد لألكسدة مثل فيتامين للدهن األكسدة الفائقةتفاعالت عملية إيقاف


et al., 2010العديد من تغير وظائف ومنتغيرات في نفاذية األغشية الخلوية للدهن األكسدة الفائقة (. كما تسبب (.Cazzola et al., 2004الخلوية ) اتالمستقبالت والنواقل ونقل اإلشار

:Oxidation proteins : أكسدة البروتينات3-7-2

لذا فهي هدف من أهداف الجذور الحرة، إذ تطرأ على الجزيئات ،البروتينات من المكونات السائدة في الخلية ُتعد Negre- Salvayre et) األمينية األحماضالبروتينية تغيرات جوهرية من خالل تفاعالت األكسدة التي تستهدف

al., 2008 األحماض ن إ إذ لها،المكونة األمينية األحماض(. ترتبط حساسية البروتينات تجاه الجذور الحرة بأنواع SHبحيث تؤدي أكسدة مجاميع لألكسدة،العطرية أكثر عرضة األمينيةواألحماض Thiol( SHالحاملة للوظيفة )

تشكل جذور ثنائية الكبريت، كما تؤدي التغيرات التأكسدية في األحماض األمينية العطرية الى قطع السالسل إلىتؤدي أكسدة البروتينات الى حجب مجموعة األمين المؤينة أو إظهار . (Ghezzi et al., 2005عديدات البيبتيد )

Lipofuscins ـليبيدية تعرف ب –بروتينية حبيباتهذا التغيير يؤدي الى تشكل ، المناطق الكارهة للماء المركزية(Hutter et al., 2007 كما أن البروتينات المتعرضة لألكسدة تفقد نشاطها وخصائصها البيولوجية و )صبح أكثر ت

(.Szwed et al., 2002)للبروتينات نزيمات الحالة األ بوساطةعرضة للتحلل

:DNA oxidationأكسدة الحمض النووي :3-7-3

فإن مكوناتها تكون أكثر عرضة لألكسدة بما زمن ثم ،(ROSللجذور الحرة ) تمثل الميتكوندريا المصدر الرئيستتعرض القواعد .(Avouac et al., 2010النووي( ) DNAمن مرات أكثر 15الميتكوندري )حوالي DNA فيها

Oxo adenine-8 الغوانين الى األكسدة مؤدية الى تشكيل قواعد متغيرة منها:خاصة و DNA ـلالمكونة

,uracile وFormamido 8و-Oxoguanine formamido pyrimidine 8و-nitro guanine Lagadu et al., 2010)) يبي الر ى قطع الرابطة الموجودة بين القاعدة والسكرإلالتأكسدي اإلجهاد، وقد يؤدي

(.Chiu et al., 2011مواقع ال قاعدية ) مشكالً

Effect of oxidative stress on the التأكسدي على الخصية اإلجهاد: تأثير 3-7-4

testis:

انقساممعدالت ارتفاعن ا و ،حيوان منوي في الثانية 1555اج إذ يتم انت الحيوانات المنوية بشكل مستمر،تتشكل الخاليا في هذه العملية تستهلك معدالت عالية من األوكسجين الميتكوندري من قبل الخاليا الظهارية الجرثومية ،

عنصٌر هام تبين أن نسيج الخصية ونتيجة ألن خاليا ليديغ والحيوانات المنوية أكثر عرضة لالجهاد التأكسدي فقد زيمات على مجموعة من األن انفة الى أن الخصيتين تحتويلتحمي الخصية نفسها من ضرر الجذور الحرة ، باإلضا

المضادة لألكسدة و الكانسة للجذور الحرة ،للحفاظ على وظيفة الخصية في إنتاج الحيوانات المنوية ، وعدم تأثرها ألن الضرر أهمية كبيرة ، ذانظام الدفاع المضاد لألكسدة وُيعد . (Chen et al., 2005التأكسدي ) باإلجهاد


،ي بيئة الخصيةف لألوكسجينالمستوى المنخفض وبالرغم من ،أحد أسباب ضعف وظائف الخصية ُيعد البيروكسيدي ROSتوليد مستمر ل ومن ثم وجود أحماض دهنية غير مشبعة، ل نظراً لألكسدة،أكثر عرضة تظل فإنها(Kumagai et al., 2002).

التأكسدي على وظيفة الحيوانات المنوية اإلجهاد تأثير :3-7-5

Effect of oxidative stress on sperm function:

وأن ،(Sub-fertilityوجد أن تدهور وظيفة الحيوانات المنوية يسبب العقم عند الذكور وانخفاض الخصوبة )الطبيعية جيةالفيزيولو في وظيفة الحيوانات المنوية يتوقف على الحالة الً التي تسبب خل ROSالتحكم في مستويات

لذلك وجد أنه من الضروري الحفاظ على التوازن بين إزالة الجذور كروسومي،اإلللحيوانات المنوية وعلى التفاعل اختالل إن ة ، إذ نويضرورية لوظيفة الحيوانات الم تعد التي منها، ية المنخفضةالحرة وبين المستويات الفسيولوج

نتاج الجذور الحرة وانخفاض مستوى األنزيمات المضادة لألكسدة يؤدي إلى انخفاض في إفي فراط التوازن واإلجة وزيادة الحيوانات المنوية الشاذة، وذلك نتي ،حركية الحيوانات المنوية والنسبة المئوية للحيوانات المنوية الحية

أن االجهاد التأكسدي يسبب ضررًا في وظيفة الحيوانات المنوية كما .ألكسدة البروتينات والدهون والحمض النووي خصاب البويوقدرتها هناك عالقة ارتباط قوية بين وظيفة الحيوانات المنوية إن إذ وحركتها، ضة على الحركة وا

(Sidhu et al., 1998.) وقد وجدTwigg ( وآخرونa 1661) أن حماية الحمض النووي للحيوان المنوي يتمومضادات األكسدة الموجودة في البالزما المنوية. وقد النووي،المحكم المميز للحمض هما: التغليفليتين آوفق

الحمض يبتخر بينت الدراسات أن الحيوانات المنوية التي تتعرض إلنتاج الجذور الحرة أدت الى زيادة كبيرة في ,Aitken and Krauszالنووي وتعديل شكل جميع القواعد وكسر الروابط المفردة والمزدوجة للحمض النووي )

2001).

:Free Radical: الجذور الحرة 3-7-6

.خارجيحر في المدار ال ،أو أكثر اً تمتلك إلكترون جزيئات(تعرف الجذور الحرة بأنها أنواع كيميائية )ذرات أو ذ تتفاعل بسرعة إ (.Jomova et al., 2010) فعاليةوجود إلكترون حر يجعل هذه األنواع غير مستقرة وأكثر إن و

ئات المهاجمة وتتحول الجزي .رونات لتصل الى الثبات الكيميائيللحصول على ما ينقصها من الكتمع مركبات أخرى خلية فتحدث سلسلة من التفاعالت تتفاقم لتهاجم غشاء ال ،الى جذور حرة باحثة عن االستقرار اً والتي فقدت الكترون

رية ك من خالل تفاعلها مع الدهون الفوسفو وذل ،طريق كسر الحاجز الواقي الذي يحيط بالخاليا ومكوناتها عنالحية اد المؤكسدة نتج الخاليا المو تُ . لكترون المفقوداليا الجسم وأنسجته لتحصل على اإلبخ واندماجهاالخلوية لألغشية

ز دفاعي مضاد جها بوساطةويكون هذا اإلنتاج منظمًا االستقالبية،واألنواع النشطة بتراكيز ضعيفة خالل العمليات ,.Valko et al)هذه األنواع يجعل من الصعب مراقبتها في األوساط البيولوجية استقراريةوعدم لألكسدة. إن


و المستقبل الجزيئي ه بأكسدة مواد التفاعل يكون فيها األوكسجين البيولوجية تقوموكثير من التفاعالت .(2007 Reactive oxygene( ROSاألوكسجينية النشطة )لكترونات، الذي يدخل في تشكيل األنواع النهائي لإل

species ( 2011والتي يمكن أن تكون جذرية أو غير جذرية ,et al.Medow .) 2-ومن أهم أنواعهاO، O21 ، H2O2، OH ، NO عة تتسبب األش إذ وأخرى خارجية، ،األغشية الميتوكوندرية ،، وهناك مصادر داخلية منها

. O2،O2 1، -OH- فوق البنفسجية في انتاج

: التأثيرات اإليجابية والسلبية للجذور الحرة 3-7-6-1

Positive and negative effects of free radicals:

العديد من الدراسات الى يشيرذ إ ،(Valko et al., 2007مزدوج )ضار ونافع( )ال بتأثيرهاالحرة تتميز الجذور ضراراً أسبب ينتاج الجذور الحرة إفي اإلفراطولكن ،تلعب دورًا هامًا في وظائف الحيوانات المنوية ROSأن

بين ت وقد .وتمنع قدرتها على الحركة ،وتصبح شديدة السمية ألغشية الحيوانات المنوية خطيرة على السائل المنوي،وخاصة التي تعاني من تشوهات الذيل ، في السائل المنوي ROSنتاج إزيد من يأن وجود حيوانات منوية شاذة

(Aziz et al., 2004) منوية مع الحيوانات ال منه مقارنةالحيوانات المنوية غير الناضجة كمية كبيرة تنتج وكذلكتنتج كميات كبيرة من ةالنضج المختلفة للحيوانات المنوي، وخالل مراحل (Brouwers et al., 2005الطبيعية )

-Glucose-6)مثل نزيمات هذا بنشاط عالي من األ يرتبط ( ُربماGil-Guzman et al., 2001الجذور الحرة )

phosphate-dehydrogenase)، نتاج إإذ تشارك فيROS (Aziz et al., 2004). الجذور الحرة دوراً تلعب (، وتستخدم إلنتاج الطاقة Valko et al., 2007األمراض المعدية والتخلص من الجراثيم )في الدفاع ضد

(Ridnour et al., 2005،) ( كما أنها تحافظ على توازن األكسدة واالختزال والتحكم بهم في الجسم الحيDroge,

ة عند زيادة تراكيزها عن مستويات قدر أمامنخفضة، ال إلى تراكيزهاالمفيدة للجذور الحرة األثار وترجع ،(2002 .(Ridnour et al., 2005جهاد التأكسدي )ذ تسبب اإلإ ،تصبح أكثر خطورةفإنها ،الجسم على التعامل معها

تأثير األنواع المختلفة من الجذور الحرة على جودة السائل المنوي والخصوبة :3-7-2-6

Effect of different types of free radicals on semen quality and fertility:

ضرر على حركة الحيوانات المنوية من أكثر ضرراً الماء األوكسجينيأن وجد ،بالتبريدالمنوي حفظ السائلعند Hedroxyl، ن سالمة الغشاء البالزمي واالكروسوم والنشاط الميتوكوندري والحمض النووي تأثرت فقط بجذور أووبة بشكل كبير من خص ضانوجذر الهيدروكسيل يخف الماء األوكسجيني(، كما تبين أن (Hydroxylالهيدروكسيل

يسبب حين في، خصابيةجمالي القدرة اإلإ ويخفضان ،ة للدجاجعلى جودة الحيوانات المنوي سلباً ويؤثرانالبيض، Superoxid وMalondialdehyde (MDA) ووجد أن جذور الهيدروكسيل .في الخصوبة اً طفيف اً نخفاضإ

Chen et)األمينية واألحماضالنووية والدهون واألحماضتؤثر بشكل كبير على مكونات الخاليا والكربوهيدرات


al., 2013; Agarwal et al., 2014) ، يسبب بل اإلجماليةوهذا ال يؤثر فقط على انخفاض حاد في الحركةالحديدوز في السائل المنوي للدجاج يحث على وناتأيوجود أن تبين الحضانة، كمافقدان الخصوبة خالل فترة

انخفاض حركة الحيوانات المنوية وحيويتها يتسبب في وهذا ما جهاد التأكسدييحرض اإل، و MDAزيادة تراكم (. ووجدت بعض الدراسات ان الحيوانات المنوية للطيور Guthrie et al., 2012) وذلك عند الثيران والخنازير

أنإذ تبين ،في المقاومة ضد صدمة البرد و لكن أيضاً ،فحسب تختلف عن الثديات ليس في تكوين الغشاء الدهني Docoahexaenoicحمض ويعود ذلك إلى، التبريد السريع أثناءاومة للضرر مق أكثرالحيوانات المنوية للديك

(DHA, 22:6n-3 هو )ي ففي الحيوانات المنوية للعديد من الثديات ، توافراً الدهنية غير المشبعة األحماض أكثر Surai) لدى الطيوردهنية غير مشبعة ال أهم األحماض Docosatetraenoic and Arachidonic ُيعد حين

et al., 2001).

Antioxidants :األكسدة: مضادات 3-8

على ويعمل ،فعالية ضد األضرار التأكسدية ذييطلق مصطلح مضادات األكسدة على كل مادة أو مركب وتكون .أنزيمات معادن، فيتامينات، أمينية، اً أحماضأن تكون لمضادات األكسدة ، ويمكنمن الجذور الحرة الوقاية ألحماضا الفالفونويد،) البوليفينول مثل الكاروتينات، أو خارجية المنشأ SOD ،CAT ،GPxالمنشأ مثل داخليةبان في الماء مثل حمض قابل للذو األكسدةكما أن بعض مضادات .Seومعدن ،Cو Eوفيتامين ،(الفينولية

وهذه المضادات تمنع الضرر الخلوي من خالل قدرتها ،polyphenolبوليفينول ،حمض اليوريك ،األسكوربيكزر ع ذلك تتآمو ، الحرةلى مواجهة معظم هذه الجذور قادرة عوهي أقل كفاءة، ألنها غير ،على كنس الجذور الحرة

ومنها ما هو قابل للذوبان في الدهون وهذه المجموعة .تجديدهالمحبة للدهون وتعمل على كسدة امع مضادات األ(، كما تمتلك النباتات (Ursini et al.,1982الجذور الحرة بكفاءة عالية كنستتراكم في دهن البالزما وتعمل على

همها المركبات الفينولية بما في ذلك الفالفونيد والعفص أ و ،لها خصائص مضادة لألكسدة ،فعالية أكثرمركبات في المركبات لألكسدةالقدرة المضادة وتعود .(Ogunlesi et al., 2009; Carlsen et al., 2010المائي )الدهن أكسدة تيجةنلى جذور البيروكسيد المتولدة إالهيدروجين بأيون وخاصة قدرتها على التبرع ،بنيتها إلىالفينولية

(Bisby et al., 2008.) مراض ح العقم وتستخدم بشكل سريع ضد األوتكاف اإلندروجينالنباتات أيضا على تحتوي ولى جانب هذه (.Dobrzynska et al., 2004) التناسلية الحيوانية النباتات العشبية الطبيعية هناك بعض وا

امتالك وعلى الرغم من الحيوانات،غنية بمضادات االكسدة ولها أهمية في التناسل عند وهي ،الخضراوات والفاكهةا ُتسب ب ة لألكسدة فإنه ,Knight and Walterتناسلية في ذكور الحيوانات ) أضراراً بعض النباتات مواد ُمضاد

لماء اعديدة وجد ومنذ سنوات ،ور الحرة من خالل مضادات األكسدةثار الضارة للجذتقليل من اآلويمكن ال (.2004 .( Jones et al., 1979)التأكسدي اإلجهادفي الحيوانات المنوية للثديات نتيجة األوكسجيني


Classification of antioxidants: تصنيف مضادات األكسدة -3-8-1

أنزيمية ومضادات أكسدة غير أنزيمية أكسدةوتصنف مضادات األكسدة إلى مضادات

Enzymatic Antioxidantsنزيمية األ كسدة األ : مضادات 3-8-1-1

من أهمها:

من األنزيمات التي تدخل في تحليل النواتج ُيعد SOD (Superoxide dismutase :) : أنزيم3-8-1-1-1ماء أوكسجيني وذلك بتسريع تحوله الى ،2O (Superoxide)- السامة للميتابوليزم الخلوي، فهو يقوم بإزالة الجذر

((H2O2 بمساعدة بعض المعادن مثل السيلينيوم والنحاس والزنك ) واألكسجينFukai and Ushio-Fukai,

والتي تختلف حسب توزعها الخلوي والمعادن المرتبطة الثدييات عند SOD(. يوجد ثالث نظائر أنزيمية ل 2011 EC-SODشكل أما ال ،يتواجد في الميتكوندريا Mn-SOD بينما يتواجد ،في النواة CU/Zn-SOD . يتواجدبها

Extracellular superoxide) dismutase )ف( يتواجد خارج الخليةYen et al., 2009.)

تحت وحدات، وتحتوي كل تحت وحدة على يتكون من أربع (:(Catalase( CATالكاتاالز): 3-8-1-1-2في أغلب الكائنات الحية وفي CATيوجد أنزيم (.Odajima et al., 2010مجموعة هيم مرتبطة بالموقع النشط )

ويتركز خاصة في الكبد وكريات الدم الحمراء والكلى وبكميات قليلة في المخ والقلب والعضالت ،كل األعضاءوذلك بتحوله ، H2O2(. يعمل الكاتاالز على التخلص من Day, 2009تواجد في الميتكوندريا )يكما ،الهيكلية o2 (Odajima et al., 2010 .)و H2Oالى

Glutathion peroxidase (GPX / )Glutathion (:GSH) أنزيم الجلوتاثيون : 3-8-1-1-3

reductase(GR)

نظمة من أهم األ وُيعد أنحيث يتمركزان في الميتكوندريا ،في العديد من األنواع الخلوية GRو GPXيتواجد ة عن لناتجاالهيدروبيروكسيدات الحرة و الجذور ، وذلك لقدرتهما على إزاحة عدد من لألكسدةالمضادة األنزيمية

.حماض الدهنيةأكسدة الكوليسترول واأل

ي :( جلوتاثيون بيروكسيدازGPXأنزيم ) الى يالماء األوكسجينكمضاد أكسدة عن طريق تحويل اً هام اً دور يؤد ,.Herbette et alالمنوية )ضد بيروكسيد الدهن عند حفظ الحيوانات اً هام اً دور يؤدي، كما مكونات أقل ضرراً

2007)

Non-enzymatic Antioxidantsنزيمية غير األ األكسدةمضادات : 3-8-1-2

ات سدة كأهم مضادات األاألكسدة غير األنزيمية على دراسة ستقتصر هذه الدراسة على الرغم من تعدد مضاد التي تم استخدامها في هذا البحث.


:Eفيتامين-3-8-1-2-1 وتم اكتشافه في السائل المنوي للديك ،سمى هذا الفيتامين بمضاد العقموي 1625اكتشافه ألول مرة عام تم

من % 11هذا الفيتامين يشكل وبعد ذلك وجد في السائل المنوي لذكور الدجاج ، و 1611الرومي منذ عام (، ويبلغ تركيزه في السائل المنوي Khan et al., 2012في السائل المنوي للدجاج ) لألكسدةالقدرة المضادة

ميكروغرام /مل عند اضافته الى 1.54وتصل هذه النسبة الى ، بشكل طبيعيميكروغرام /مل 5549للدجاج ن (،Surai et al., 1997ملغ/كغ ) 255عليقة الدجاج بنسبة أقل في السائل المنوي للدجاج والبط نسبته وا

Suraiوجد .(Surai and Ionou, 1992) اإلوزعند وهذه الكمية منخفضة كثيراً ،بالمقارنة مع الديك الروميأقل Eحتوي على كمية منخفضة من فيتامين توية والبالزما المنوية عند البط ( أن الحيوانات المن2555خرون )آو Eفيتامين د ُويع. األوكسجينيالماء ضعاف بالمقارنة مع الدجاج وهذه الكمية المنخفضة تهيئ الى تشكل أأربعة ـب

، وهناك ثمانية Eلفيتامين اً مشابه اً نشاط الهم إن ، إذ Tocotrienols و Tocopherolلكل من مصطلحًا عامًا (األخرى تنتمي الى األربعةأم ا و Tocotrienols تنتمي الى مجموعة اأربعة منه، Eأشكال من فيتامين

Tocopherols Traber and Stevens, 2011،) وُيعد Tocopherol α الهامة األكسدة من مضادات، ويحمي ،كسدازعن طريق جلوتاثيون بيرو لألكسدةويقوم بوظائف مضادة وهو من الفيتامينات الذوابة بالدهن

ومن ،نالده أكسدةكسدة عن طريق التفاعل مع الجذور الحرة المنتجة في سلسلة تفاعالت أغشية الخاليا من األ Tocopherol α (، وجذور (Herrera, 2001االستمراركسدة من ويمنع تفاعالت األ، الجذور الحرةإزالة ثم

جاعها من ر إخرى الى مضادات أكسدة فعالة عند يمكن أن تتحول مرة أ ،التي تم أكسدتها في هذه العملية ،المنتجة أغشية في Tocopherol α ، كما يندمج Ascorbate,Ubiquinol,Retinolقبل مضادات أكسدة أخرى مثل:

(، و يعمل على حماية Traber and Stevens, 2011يحمي الخاليا من ضرر األكسدة ) ومن ثم الخاليا ,Polyun Saturated Fatty acids( )Mullerويمنع أكسدة األحماض الدهنية غير المشبعة ) ،الدهون

هذه الجذور ( Chelating)يعمل على استخالب انتشارها، حيثيتفاعل مع الجذور الليبيدية ويمنع إذ (،2010 LOO ( .,et alNaziroglu-بالمقارنة مع جذر البيروكسيل اً نشاط أقل غير أنه جذر حر إلىويتحول بدوره

،الدهنية غير المشبعة واألحماضالمكونات الغذائية بما في ذلك السيلينوم العديد من يتفاعل مع و (،2010 كسدةأللى الفيتامينات والمعادن ومضادات اإباإلضافة ،التي تحتوي على الكبريت األمينية واألحماضلى انخفاض كبير في بيروكسيد الدهن إداخل السائل المنوي Eنسبة فيتامين ، كما تؤدي زيادةاالصطناعية

(Lin et al., 2005) يتميز فيتامين . وE بقدرته على إزالة تأثير حمضValproic Acid(VPA)، ن هذا إإذيقلل من م ومن ث ،جهاد التأكسدي وتأكسد الدهون والبروتيناتالضعف التناسلي عن طريق زيادة اإلالحمض يعزز

فإن ومن ثم ،في الخصيتين والبربخ لألكسدةجمالي القدرة المضادة إ ويخفضقدرة الحيوانات المنوية على الحركة .(Ourique et al., 2016الناجمة عنه ويحافظ على القدرة التناسلية عند العالج به )ضرار يمنع األ Eفيتامين


ليتين:آوفق Eويعمل فيتامين

ذ رسل إشارات للجذور الحرة، إي الذيكنس الجذور الحرة بشكل مباشر من خالل تعديل التعبير الجينية غير دهنيحماض المن أكسدة األالماء األوكسجيني في أغشية الخاليا عن طريق تشكيل اً تسبب تلف

لتشكيل جذور الجذور الحرة من خالل التفاعل معهنتشار اإ E ويمنع فيتامينالخلية، المشبعة في غشاء Tocopheryl ، ين من قبل فيتامهيدروجين كتسابه إالحالة المختزلة عن طريق إلىثم يعود بعد ذلكC.

يزيد فيتامينE كسدة مثل لألنزيمات المضادة من نشاط األGlutathion peroxidas, Superoxidas

dismutase,Glutathion reductase,catalase, Nicotinamide adenine dinucleotide

phosphate(NADPH) الخاليا ضد الضرر التأكسدي وتحمينزيمات تعمل ضد الجذور الحرة وهذه األ(Vertuani et al., 2004.)

Ascorbic acid :)حمض االسكوربيك( Cفيتامين -3-8-1-2-2

يوجد بمستويات و ، وهو قابل للذوبان في الماء، Hu et al., 2010))كسدة القوية من مضادات األ Cفيتامين ُيعد وجد أنه ال قدو الثدييات،الكبد عند بعض والزواحف وفيالكلى عند الطيور وينتج في ،عالية في السائل المنوي

عدم تأمين ومن ثم(، Gursu et al., 2004) لإلجهاد تعرض الطيوريمكن تركيب حمض االسكوربيك عند ووجد أنه من .C (Neuman et al., 2002)عن طريق إضافة فيتامين ذلكتجنب يمكن و ، متطلبات االستقالب

االحتياجات من هذا الفيتامين تتجاوز القدرة على ألن، اإلجهادلى عالئق الدواجن لتخفيف إ إضافتهالضروري من أجل عمليات التمثيل الغذائي وتركيب Cالدجاج يتطلب فيتامين إن (، إذ Gous and Morris, 2005) تركيبه

خصوبة الدواجن، كما يحسن ،الفيتامين األساسي لألداء التناسلي لذكور الطيور وُيعد .الهرمونات مثل التستوستيرون ROSإذ يعمل على تحييد من القدرة المضادة لألكسدة في البالزما المنوية، % 90و يساهم بنسبة أعلى من

ضافته الى ممددات السائل المنوي يحمي الحمض النووي من الضرر إوعند ،الماء األوكسجينيمثل ل هتقليو الناتجة عن االستقالب -O2- ،OH - , NO جذور أن يقوم بإزاحة كل من Cالتأكسدي ، كما يمكن لفيتامين

( Agglutination) ويمنع تراص ، كما أنه قادر على التفاعل معها، (Agarwal and Sekhon, 2010الخلوي )المعادن استخالبويعمل على ، E، كما يعزز دور فيتامين(Michael et al., 2008 ) الحيوانات المنوية

(Chelating ومنع أكسدة الدهون )Traber, 2007) في البالزما لألكسدةمن القدرة المضادة % 90(، ويساهم بالمنوية في البالزما الهام مما يدل على دوره البيولوجي ،المنوية وهو ما يقارب عشرة أضعاف بالمقارنة مع المصل

(Nowaczewski and Kontecka, 2005). السائل المنوي للدواجن عند الحفظ بتراكيز أعلى الى إضافتهولكن ;Jabbar et al., 2015)العالية في التراكيز بسبب التأثير السام لحمض اإلسكوربيك يحدث ضرراً % 1.5من

Tabatabaei, 2012.)


:Selenium elementعنصر السيلينوم -3-8-1-2-3

في اً تكميلي اً لهما دور إن ذ إويحافظ على تماسك الخاليا، كسدةفي منع األ Eيعمل السيلينوم الى جانب فيتامين يعود اذوه ،لى الخصائص التناسلية للحيواناتالحفاظ ع ومن ثمكسدة الدهون والجذور الحرة أحماية الخلية ضد

الى النظام الغذائي يحسن جودة وكمية السائل اضافتهمإإن إذ ، Eفيتامين دوردور السيلينوم في تعزيز إلى من خالل قدرته على تأمين ظروف (، كما يأتي دوره اإليجابي أيضاً Jerysz and Lukaszewicz (2013 ,المنوي

من جلوتاثيون اً ءويشكل جز ،قل للدهون من خاليا الحيوانات المنوية عند التخزين لفترة طويلةأضل للتخزين وتحرر أفلحماية اً كسدة ممتاز أمضاد ُيعد ن الجذور الحرة ، إذ نزيم المسؤول عن حماية الغشاء الخلوي مكسيداز وهو األبيرو

بين مستوى السيلينوم في البالزما المنوية وسالمة الحيوانات اً إيجابي اً ن هناك ارتباطأكما وجد الغشاء الخلوي،تقلل من ، إذ تؤثر على الخصوبة األكسدةمضادات أن أيضاً وقد تبين .(Dimitrove et al., 2007) المنويةب إتمام إذ تزيد الخصوبة بسب ،الثديياتالوالدة وذلك عند المشيمة والتهابات الرحم التي قد تحصل عند احتباس

حماية البويضة ، وكذلك تعمل على (Lopez-Gatius et al., 2006الحمل وتقليل االضطرابات بعد إجراء التلقيح )، كما أنها تحسن الجهاز (Schwarz et al., 2008والجنين إذ يكونا أكثر عرضة للضرر من قبل الجذور الحرة )

.(Moss et al., 2009التناسلي في فترة ما بعد الوالدة )

ليات الحماية المضادة لألكسدة في السائل المنوي آ: 3-8-2

Antioxidant protection mechanisms in semen:

ذ تحتوي إ، O2-لحماية الحيوانات المنوية من لألكسدةليات دفاع مضادة آنوية بمجموعة من البالزما المتتميز وجلوتاثيون GPXوجلوتاثيون بيروكسيداز Superoxide dismutaseنزيمية مثل ألكسدة امن مضادات األ اً عدد

لى ذلك تحتوي البالزما المنوية مجموعة متنوعة من إ، وباإلضافة والكاتالز Glutathion reductaseريدوكتاز والتوكوفيرول والبيروفات والجلوتاثيون ((Urateنزيمية مثل االسكوربات واليورات غير األ لألكسدةالمواد المضادة

تؤثر على بنية ومن ثم Hypotaurine ( Alvarez and Storety, 1983، )والهيبوتاورين Taurineوالتاورين ي ف للحركة مثبطةالعوامل الو ، العديد من منشطات الحركة امتالكها، بسبب ووظيفتها الحيوانات المنوية

المكونات ذات نأ ووجد .(Mohan et al., 1995الطيور )في و ،(Reyes-Moreno et al., 2002)اتيالثدي يًا.مختبر الوزن الجزيئي العالي في البالزما المنوية تحسن القدرة االخصابية للحيوانات المنوية للدجاج

رنة مع كسدة االجمالية بالمقانسبة عالية من مضادات األ تحتوي وقد تبين أن البالزما المنوية للذكور الخصبة كفاءة مضادات نخفاضوا ، ROSنسبة عالية من باحتوائه السائل المنوي للذكور العقيمة حيث يتميزالذكور العقيمة،

هناك ن إ إذ والبالزما المنوية، الحيوانات المنوية أن هناك عالقة بين تكوين ، كما كسدة في البالزما المنوية األالتي تحمي العديد من لألكسدةارتفاع قدرتها المضادة أهمها؛ومن خصائص هامة في البالزما المنوية للطيور


ل تنظيم الكوليسترول ونق دورها في، إضافة إلى الدهنية غير المشبعة في غشاء الحيوانات المنوية األحماضالبالزما المنوية تؤثر على تكوين الدهون أنهذه األسباب على تدل و (.Therien et al., 2001الفوسفولبيدات )

ي حماية ف اً هام دوراً نؤديبالرغم من أن البالزما المنوية و ر.المنوية خالل التخزين في المختبالحيوانات في غشاء تأثير سلبي ذوبعض مكوناتها أنإال (،Surai et al., 1998كسدة )ثارها المضادة لألآالحيوانات المنوية بسبب

.(Iaffaldano and Meluzzi, 2003على تخزين الحيوانات المنوية للدجاج والديك الرومي )

كسدة على الخصوبة عند األنواع المختلفةتأثير بعض مضادات األ : -3-8-3

Effect of some antioxidants on fertility in different species:

على الخصوبة Eتأثير فيتامين : 3-8-3-1

Effect of vitamin E on fertility:

ى لمضادات األكسدة الطبيعية القادرة عمن الفيتامينات التي تؤثر على الخصوبة، وهو من Eيعد فيتامين وتبين أنه عند .(Khan et al., 2012) الحيوانات المنوية، كما يزيد من تركيز تحسين جودة الحيوانات المنوية

يؤدي Eن فيتامين أ ، كما وجدLH (Leska and Dusza, 2007)و FSHإضافته تزداد نسبة كل من هرمون هرمون إفراز ( من الغدة النخامية للفئران، ويزيد من GnRH) اتللجونادوتروبين المطلقنتاج الهرمون إفي هاماً دوراً

Eوفيتامين ،نمو الخصية الطيور في تشكيل الحيوانات المنوية ويحفز هذا الهرمون فيأن يساهم إذ البروالكتين،حرير الهرمونات الضرورية لتحسين ، إذ يعمل على تLHو FSH على هرمونات التناسل وخاصةً هام له تأثير

لمنوية عن يحسن حركة الحيوانات ا Eفيتامين وتبين أن .(Khan et al., 2013) للدجاجنتاج السائل المنوي إدمية ترتبط بشكل المنوية التقن حركة الحيوانات أوجد وقد(، Liu et al., 2015كسدة )طريق تعزيز مضادات األ

سيولة الغشاء تعتمد و (،Blesbois et al., 2005; Waterhouse et al., 2006الغشاء) إيجابي مع سيولة ر المشبعةغي حماض الدهنية ذات السلسلة القصيرةاألإضافة إن الدهنية، إذ حماض بشكل أساسي على تركيب األ

N-3 Polyun Saturated Fatty acids (PUFA ) الى العالئق يحسن نوعية الحيوانات المنوية عن طريق(، وهذا الفيتامين يعزز نشاط Lin et al., 2005زيادة سيولة الغشاء ) ومن ثم تعديل تكوين دهون الحيوانات المنوية

LPOضد األولينزيم نظام الدفاع هذا األ وُيعد ،يةفي الحيوانات المنو SOD) سوبر أكسيد دسموتاز) نزيمأ(Roca et al., 2005) .وب ين Biswas ( أن الخصوبة عند الطيور تنخفض في غياب فيتامين 2552خرون )آو

E منوي ائل الأي أن خصوبة الذكور تتعلق بخصائص الس ضافته يتم استعادة الخصوبة،إوعند ،في الغذاءكسدة أه الخصائص عن طريق إضافة مضادات يمكن الحفاظ على هذو . خصابتها على اإلقدر والحيوانات المنوية و

من الماء محتوى السائل المنوي يقلل من إنه إذ ، (Rengaraj et al., 2015 الماء األوكسجيني)لتجنب تشكل له القدرة على Eوخصوبة الذكور، ألن فيتامين E، وهناك ارتباط بين فيتامين (Lin et al., 2005) األوكسجيني


Golzarخصاب )على اإل وقدرتهما اضمان حركتهم ومن ثم حماية الحيوانات المنوية من الضرر التأكسدي

Adabi et al., 2011)، ( كما أنه يؤمن االستقرار البيولوجي للغشاء البالزمي للحيوانات المنويةSurai et al.,

في صفار Eفي المكمالت الغذائية لإلناث أدى الى زيادة في تركيز فيتامين Eأن زيادة فيتامين ووجد .(2000( ويمنع حساسية الغشاء الخلوي Surai et al., 2016جهاد التأكسدي )سجة الجنينية وزيادة مقاومتها لإلنالبيض واأل

;Panda and Cherian, 2014) عند الذكور للجذور الحرة ، كما يعزز حركية الحيوانات المنوية وحيويتها

Rengaraj and Hong, 2015) ،( ويزيد من النسبة المئوية للحيوانات المنوية الحية للطيورCerolini et al.,

قدرتها على ،تركيز الحيوانات المنوية، ( و يدعم بشكل كبير وظائف التكاثر بما في ذلك حجم السائل المنوي 2006 Khan et al., 2012; Rengaraj andوذلك عند أنواع الطيور المختلفة ) الحيوانات المنويةالحركة وزيادة حيوية

Hong, 2015) ، إلجهادادوره الكبير كمضاد أكسدة لمنع ل نظراً وجد أن له أهمية كبيرة في تغذية الدواجن، ومن ثم حسين ت ومن ثم كما يؤدي الى انخفاض نسبة الحيوانات المنوية الشاذة والميتة ، (Dhama et al., 2014التأكسدي )

Dikmen (2514) و Ipek ( ، كما بين Biswas et al.,2009ى عالئق الفراخ)إل ضافتهإخصوبة الذكور عند يؤثر بشكل كبير على النضج الجنسي وزيادة معدل الفقس وكمية البيض في طيور العالئقضافته الى إأنه عند

الحراري، و هو ضروري لتطوير وظيفة األنسجة التناسلية للذكور اإلجهادتربيتها تحت ظروف تالسمان التي تم( ، Tufarelli and Laudadio, 2016) لألكسدة، ربما بسبب دورها الرئيسي في تعديل التوازن المضاد واإلناثتمنع بشكل فعال من التغيرات E( أن مستويات عالية من فيتامين 2555خرون )آو Marin-Guzmanكما بين

Umesiobiكما بين .كسدة داخل الخالياأيعمل كمضاد ألنه، الكروسومفي الصفات المورفولوجية وعيوب اوسالمة االكروسوم، و أن زيادة كميته في Spermation )) الحيوانات المنويةيعزز E( أن فيتامين 2556)

ومن الممكن التغلب على .كسدة الدهون أللحث على 2Fe+الحيوانات المنوية للدجاج ارتبط مع انخفاض في قابلية الى وسط Eتامين في الحرة بإضافةوالتي سببها الجذور أثناء الحفظ بالتبريد في حركة الحيوانات المنوية انخفاضكسدة في غشاء الحيوانات سدة يعمل على كسر السلسلة الرئيسة لتفاعالت األمضاد أك Eفيتامين ألن الحفظ،

خصابية هو األفضل للحفاظ على القدرة اإل Eمن فيتامين ووجد أن مستوى معتدالً .(Surai et al., 2000المنوية )لى السائل إضافته إكما وجد أن .(Biswas et al., 2009; Biswas et al., 2007) في ذكور الدجاج والسمان

ة الحيوانات ويقلل من نسب ،المنوي لذكور الدجاج يزيد النسبة المئوية للحيوانات المنوية الحية وقدرتها على الحركةيسبب ضعف الخصوبة عند Eبالمقابل تبين أن نقص فيتامين . (Tabatabaei et al., 2011المنوية الشاذة ) واألنسجة ،سبب اضطرابات في الجهاز التناسليكما ي، وخاصة عند الدواجن ية المخزنة في المختبرالحيوانات المنو

( الجنين resorption) رتشافا خصاب البيوض و إويؤدي الى تشوهات الحيوانات المنوية عند الذكور وعدم ، الدهنية وكسجين النشطة مما يسبب العقم عنداألية للطيور بأنها حساسة ألنواع إذ تتميز الحيوانات المنو ناث ،عند اإل

رط وهذا ش ،الذكور، ولكن إضافة المواد المضادة لألكسدة يزيد من حجم السائل المنوي وعدد الحيوانات المنوية (.Surai et al.,2000; Zaniboni et al., 2006رئيسي للوقاية من العقم عند الذكور )


:Effect of vitamin C on fertilityعلى الخصوبة C تأثير فيتامين: 3-8-3-2

بقار ألعند ا % 95إذ تبين أنه يحافظ على الحمل بنسبة الخصوبة،من الفيتامينات الهامة للحفاظ على ُيعد ي ضافته الى عالئق الثيران ويحسن خصائص السائل المنو إكما يعالج العقم عند المتكرر، لإلجهاضالتي تعرضت

(. ووجدت بعض and Doane, 1989) Hurleyقدرة الحيوانات المنوية على الحركةويحافظ على لزوجته ويزيد على الخصوبة ونسبة اً إيجابي اً ( تأثير L-Ascorbic-acide)( )L-AAسكوربيك ضافة حمض اإلإلالدراسات أن

( ، ووجد أنNowaczewski and Kontecka, 2005( والديك )Kontecka et al., 2001الفقس عند البط )وي حافظ على خصائص السائل المنتسائل المنوي قبل الحفظ بالتجميد لى ممددات الإسكوربيك إضافة حمض اإل

عن Eدوره هذا مرتبط بقدرته على تجديد فيتامين إن ( ،إذ Beconi et al., 1993للثيران بعد ذوبان الجليد )ت للغشاء قدرته على منح الكتروناب و، واالختزالكسدة خالل دورة األ Tocopheroxylطريق الحد من جذور كسدة وتحسين خصائص ر أكثر فعالية لتثبيط تفاعالت األلى مياه الشرب بتراكيز عالية يعتبإالبالزمي، وأن إضافته

نه أ( 2553خرون )آو Yousef، كما بين (Castellini ، 2553الحيوانات المنوية الطازجة والمخزنة لألرانب )ات ى منه الى ممددأن إضافة الكمية المثل، و لألرانبحسين نوعية السائل المنوي يجذور الحرة و نتاج الإيحد من

أثناء التخزين والحماية من الجذور الحرة في ساعد في حماية الحيوانات المنوية من األضرارتالسائل المنوي (Foote et al., 2002)، وجد فيما Dawra (أن فيتامين 1613خرون )آوC ضرر التأكسدي للحيوانات يعزز ال

منع التأثير الضار للرصاص على في Cو Eفيتامين دور كل من إلى ( 2512خرون )آو Ayinde وأشار المنوية.منوية بشكل ة الحيوانات المن حرك كما يزيد ،الوظائف التناسلية لذكور الفئران وزيادة محتوى الزنك في الخصيتين

المضادة يماتاألنز ويثبطجهاد التأكسدي الرصاص يسبب اإل أنإذ الشاذة،نسبة الحيوانات المنوية اضخفيكبير و وهذا صاص،للر الزنك من خصية الحيوانات المعرضة ويستنزفمستوى هرمون التستوستيرون ويخفض لألكسدة .ربط الرصاص وتجديد نشاط الجلوتاثيون وتركيز الزنك في الخصية القدرة علىبسبب

على تحييد اقدرتهمل ، وذلكالى النظام الغذائي للدواجن معاً C و Eإضافة فيتامين هميةوال بد من اإلشارة إلى أ (.Ramnath et al., 2008الحراري ) لإلجهادثناء التعرض أالجذور الحرة

:Effect of Catalase on fertilityتأثير الكاتالز على الخصوبة : 3-8-3-3

يحمي ومن ثم O2و H2O( إلى H2O2) الماء األوكسجينييقوم بتفكيك ،أنزيم مضاد لألكسدةهو عبارة عن ي ويقلل من إنتاج الجذور الحرة عند حفظ السائل المنو األوكسجينيللماء خاليا الحيوانات المنوية من التأثير السام

في الحيوانات المنوية األنزيمويوجد هذا .(Chi et al., 2008)بالتبريد ويحمي الحيوانات المنوية من التجميد ات أهمية إضافة الدراس وبينت بعض (.Upreti et al., 1998( والكباش )(Bilodeau et al., 2001للثيران

ضافته الى إ إن إذ ، (Bilodeau et al., 2002) كسدة في ممددات السائل المنوي المخزن أالكاتاالز كمضاد ميتة للكباش في الحيوانات المنوية الحية وال الماء االوكسجينيممددات السائل المنوي قبل الحفظ بالتبريد يمنع تشكل


خرون آو ELSISYفقد وجد .(Alomar et al., 2016خصابية للحيوانات المنوية )على القدرة اإلويحافظ ات في غشاء الحيوان الماء األوكسجينيالسائل المنوي يساهم في الحد من ممددلى إن إضافة الكاتاالز أ( 2551)

لى إإضافة الكاتاالز بتراكيز مناسبة أن( 2511خرون )آو Sicherlكما وجد المنوي،المنوية عند حفظ السائل يوجد تأثير إيجابي أنه( 2519) وآخرون Alomar ووجد الحرة.الجذور كنسيساعد في السائل المنوي للكباش

.في ظروف المختبر الماء األوكسجينيللكاتاالز في تثبيط توليد

ه غير تبين أن ،بالتجميدلى ممدات السائل المنوي للثيران قبل الحفظ إضافة الكاتاالز إوفي دراسات للمقارنة بين ى إلضافته إحركة الحيوانات المنوية عند مع ازديادضافته الى سترات صفار البيض، إفعال في زيادة الحركة عند خرون وآ Fernandez -Santosووجد .(Asadpour and Nasrabadi, 2011الممدد ترس صفار البيض )

د يلى ممددات السائل المنوي يزيد النسبة المئوية للحيوانات المنوية الحية بعد التجمإ CAT( أن إضافة 2552) Bilodeau) نالثيرا ية المجمدة بعد الذوبان وذلك عندحسن حركية الحيوانات المنو ي و، والذوبان عند الغزالن الحمراء

et al., 2001 ) ، نسبة الحيوانات المنوية الحية تحت ظروف ويخفضالحمض النووي تخريبكما يمنع زيادةضافته الى ممددات إالعديد من الدراسات أهمية بي ن(، إذ (Fernandez –Santos, 2008التأكسدي اإلجهاد

في السائل المنوي والحفاظ على قدرة الحيوانات المنوية على الحركة لألكسدةالسائل المنوي لتحسين القدرة المضادة ( 2555خرون )آو Krzyzosiakوفسر .(Maia et al., 2009; Bilodeau et al., 2002بعد التجميد والذوبان )

عطيل ت يعود إلىلى ممددات السائل المنوي إعند عدم إضافة الكاتاالز لمنويةن سبب انخفاض حركية الحيوانات اأكما وجد أنه بغض .(Marti et al., 2008في السائل المنوي للطيور ) والريدوكتاز الموجودجلوتاثيون بيروكسيداز

يحسن بدرجة كبيرة من نسبة أو كل منهما على حدة معاً CATو SODالنظر عن التراكيز المستخدمة فإن إضافة إضافة فيتامين و تعزز .(Roca et al., 2005بعد التجميد والذوبان ) اإلجماليةالحيوانات المنوية الحية والحركة

C كسدة لحماية الحيوانات المنوية ضد تأثير مضادات األوالكاتاالز معاROS في حسن جودة السائل المنوي توتاين شودة السائل المنوي في عجول الهولالى تحسين ج أدتترس الممددالى معاً اضافتهمإن أو الحفظ،ناء أث(Eidan, 2016).

تأثير الكاتاالز على السائل المنوي عند الطيور تكاد تكون نادرة. أن دراسات ومن الجدير بالذكر

:Effect of Seleinum on fertilityتأثير السيلينوم على الخصوبة : 3-8-3-4

يعزز من نواتج االستقالب السامة و الخلوي للحيوانات المنويةإذ يحمي الغشاء كسدة،لأل اً السيلينوم مضاد ًيعد بينت و . (Ebeid, 2009)لخصوبة الذكور هاماً عنصراً ًيعد كما ،نوعية السائل المنوي والقدرة االخصابية للدجاج

يؤدي الى ، إذحفظه أثناءبعض الدراسات أهمية السيلينوم في الحفاظ على نوعية السائل المنوي للديك الرومي بلغ معدل قد و .المنوية عند تخزين السائل المنوي الحيوانات بالزماالدهون والفوسفولبيدات في إجمالي إنخفاض

م ا، %65.0 سيلينوم إليهاالخصوبة في الحيوانات المنوية المضاف كانفليها سيلينوم إالعينات التي لم يضف في وا


ن إضافة السيلينوم العضوي أ Ebeid (2556)وجد وأيضاً .(Dimitrov et al., 2007) % 11معدل الخصوبة الخصائص النوعية للسائل المنوي مثل تركيز الحيوانات المنوية و يزيد حركية الحيوانات المنوية الغذاء يحسنلى إ

وقد تبين ،البالزما المنوية لذكور الدجاجويقلل من نسبة الحيوانات المنوية الميتة ويعزز دور مضادات االكسدة في ل وبالتالي زيادة معدل التفاع مونياالحد من تراكم األفي هاماً يلعبان دوراً Eوفيتامين Seleno-L-methionineن أ

يساهمان فيكما . (et al., 2010) Tareq لوكوز من قبل الحيوانات المنوية كروسومي واالستفادة من الجاألعية السائل المنوي عند نو وفي تحسين ، نيبيبات المنوية وتركيب التستوستيرون في الجهاز التناسلي للذكورحماية اإل

-Luberda ضجها )ون المنويةالحيوانات نتاج والسيلينوم ضروري إل .((Slowinska et al., 2011 الديك الرومي

Bienkowska and Majewska, 2010 ،) ـل اً إيجابي اً ن هناك تأثير أكما Se على تركيز الحيوانات المنوية .(Speight et al., 2012والخصائص المورفولوجية عند أنواع الحيوانات المختلفة )

لحيوانات ا يسبب تلف اممنه الزيادةن أال إوالسيلينوم لتحسين نوعية السائل المنوي Eوبالرغم من أهمية فيتامين خاليا ل مرة من االحتياجات اليومية يسبب ضرراً 25على ب أ بجرعة Eن إضافة فيتامين أالمنوية ، إذ وجد

معاً ا( ان إضافتهم2512) وآخرون Zubair ( ، وبين (Danikowski et al., 2002 الحيوانات المنوية للديك م ومن ثعلى حدة يحسن القدرة على الحفاظ على جودة السائل المنوي امنهم و كل ألى ممددات السائل المنوي إ

الى النظام عاً م اإضافتهم وأنوكسجين النشطة، نتاج أنواع األإعلى منع ابسبب قدرتهم ،يعزز التلقيح االصطناعيعلى افي السائل المنوي بالمقارنة مع إضافة كل منهم الماء األوكسجينيفضل ضد أالغذائي للدجاج يوفر حماية

كما تبين أنه من الممكن تحسين جودة السائل المنوي في النظام الغذائي (. (Adebiyi et al., 2014 حدة Kramerو Longوجد (، و (E Edens et al., 2009 لدجاج اللحم عن طريق إضافة سيلينيوم مع فيتامين

بمفرده لم يكن Eفيتامين وأنخصابية للحيوانات المنوية للديك الرومي يؤثر على المقدرة اإل LPO( أن 2553)مع السيلينوم Eخالل تخزين السائل المنوي للديك الرومي، ولكن وجد أن فيتامين األوكسجيني الماء تشكل لمنع كافياً هرمون إفرازقدرتهم على ل (Hezarjaribi et al., 2016في زيادة الخصوبة في طيور اللحم ) هاماً دوراً ُيؤد ي

.( Testosterone)( )Jerysz and Lukaszewicz, 2013التستوستيرون

لخصوبة إنتاج البيض وا انخفاضما يسبب قل جودة أو بالمقارنة مع الدجاج يتميز السائل المنوي لإلوز بأنه يزداد حجم السائل المنوي Eولكن عند تغذية ذكور االوز على عالئق تحتوي سيلينوم و فيتامين ،ومعدالت الفقس

Jerysz and Lukaszewicz) الماء األوكسجينيوتنخفض مستويات ،وتركيز الحيوانات المنوية بشكل ملحوظ

نخفضة، إذ م التناسليةعند بعض أنواع الطيور التي تكون لديها القدرة التناسلية(، كما يعززان الوظائف 2013 ,عد يُ عند تغذية الدواجن على غذاء يحتوي على الدهون ، ولكن فقط كسدة ليست مهمة ن إضافة مضادات األأتبين Edensوبين ، (Lin et al., 2005جل الحفاظ على الخصوبة )أفي أي نظام غذائي قاعدي من اً أساسي اً شرط

ن إضافة السيلينوم العضوي في عليقة ذكور الدجاج يزيد النسبة المئوية للحيوانات المنوية السليمة ، أ( 2552)


النسبة المئوية للحيوانات وتقللحركة الحيوانات المنوية تعززن إضافته أEbeid (2556 )وباإلضافة لذلك وجد والحفاظ ،الماء األوكسجينيوقدرته على التقليل من سدةلألكالمنوية المشوهة ، وذلك بسبب خصائصه المضادة

التخزين، ووجد أن إضافته الى العالئق يحسن من خصائص السائل المنوي في أثناءعلى خاليا الحيوانات المنوية الدهون من الحيوانات المنوية الى البالزما المنوية خالل التخزين تفكك ويخفضالمخزن للطيور ويزيد من حركتها

(Dimitrove et al., 2007 )، ويحد من تشكل الجذور الحرةAgarwal et al., 2006) ). ووجدDimitrove ى النظام الغذائي للديك الرومي له تأثير إيجابي على تكوين السائل المنوي إلن إضافة السيلينوم ( أ2552وآخرون )

إضافة ن أ( 2550خرون )آو Barberن بي و .وتحسين القدرة على تشكل حيوانات منوية ذات قدرة اخصابية عاليةكما تبين جودتها، ؤثر علىيالمنوية و ضررًا للحيوانات عال يسبب اللحم بتركيزالمنوي لدجاج السيلينوم الى السائل

ن م أن هذا المعدن داخل الجسم الحي يحسن نوعية السائل المنوي خالل تشكل الحيوانات المنوية بشكل مباشر بدالً يخفضن نقص السيلينوم أ( 1661) وآخرون Suraiومن ناحية أخرى بين المنوية.وضعه مباشرة" عل الحيوانات ة السليمة وقدرتها على الحركة والقدرة االخصابية وذلك عند الدجاج والديك الرومي النسبة المئوية للحيوانات المنوي

رمون نتاج الحيوانات المنوية وهضرورية إل أنهاوالبط، كما يؤدي الى انخفاض خاليا سيرتولي وخاليا ليديغ، إذ ى مشاكل تناسلية وانخفاض جودة الحيوانات المنوية إلتؤدي و ،(Edens et al., 2009التستوستيرون على التوالي )

لى إ ؤدي أيضاً تكما ، (Baiomy et al., 2009عند الجرذان والفئران والدجاج والخنازير والكباش و الثيران ) ن ل جودة السائل المنوي، ألل(، وتقBarber et al., 2005نخفاض خصوبة الذكور عند الدجاج واألداء التناسلي )إ

Seleno protein ( يساهم في استقرار الحيوانات المنويةLeonhard, 2000 . )


الفصل الثاني

مواد البحث وطرائقه


:Materials and Methodsمواد البحث وطرائقه -4

خابر منجز هذا البحث في مركز بحوث اإلنتاج الحيواني في فديو التابع لكلية الزراعة بجامعة تشرين، وفي أ .2511وحتى شهر نيسان من العام 2512فيزيولوجيا الحيوان في كلية الزراعة في الفترة من شهر أذار من العام

المدروسة: الطيور: 4-1أخضعت للبحث ديوك من النمط البني السوري المحلي. وقد تم اختيار أفراد متجانسة من حيث العمر واللون

الجسم، إذ تم جمع خمسين ديكًا بعمر ثالثة أشهر من القرى المجاورة لبانياس، وتم البني الكامل للريش الذي يغطي انتخاب الديوك المتماثلة في الوزن، وسليمة القوام والهيكل عند بلوغها ستة أشهر.

:المضافة كسدةاأل مضادات : 4-2 كسدة المضافة األ ( مواصفات مضادات1-2)جدول

تركيزال الصيغة الكيمائية Assay)) النقاوة مضاد االكسدة

- C 66.5% O8H6Cفيتامين

- E 61% 3O52H31Cفيتامين

وحدة دولية/ملغ 0555-2555 - - أنزيم الكاتاالز

- - %66.0 السيلينوم

: طريقة التربية:4-3نشارة واستخدمت فرشة من . (1-2تمت تربية الديوك بطريقة الرعاية األرضية حتى عمر ستة أشهر، شكل رقم )

سم، في حين ربيت الديوك بعمر أكثر من ستة أشهر تربية فردية ضمن أقفاص مرقمة، شكل 0الخشب بسماكة (، وذلك ليتسنى تدريب الديوك على عملية الجمع ودراسة خصائص السائل المنوي لكل ديك على حدة.2-2رقم )


عمر ثالثة أشهر.(: التربية األرضية للديوك ب1-2الشكل )

(: التربية بأقفاص بعمر ستة أشهر.2- 2ل )الشك


: نظام التغذية:4-4غرامًا لكل طير/يوم حتى بلوغ النضج الجنسي، وبعد 125قدمت خلطة علفية متوازنة للديوك المدروسة بواقع

الغذائية ( يبين نسب المواد 1-2غرامًا / طير/يوم. والجدول ) 195بلوغ النضج الجنسي تم زيادة الحصة العلفية إلى الداخلة في تركيب الخلطات العلفية المذكورة.

المواد الغذائية الداخلة في تركيب الخلطة العلفية. نسب(: 2-2الجدول )

النسبة المئوية% المادة

93 ذرة صفراء

19 (%44كسبة صويا )

2 شعير علفي

2 نخالة قمح

15 مركز

2 نحاتة

Kcal/Kg 2024الطاقة االستقالبية

14.62 البروتين الخام %

للبدء بالتجربة: الطيور: تجهيز 4-5افة في السائل المنوي المبرد بعد إض تم وضع الديوك في أقفاص فردية بعمر ستة أشهر ضمن ثالثة مكررات

ة كل مجموع ،وضمن أربع مجموعات في السائل المنوي الطازج ، أربعة ديوك كل مكرر يحتوي ، ،مضادات أكسدةلتسهيل تدريب الديوك على عملية استخراج السائل المنوي بطريقة المساج ورفع درجة وذلك ،ديوكتحتوي ثالثة

باحًا والثانية بعد الثامنة ص)مرتين يوميًا في نفس التوقيت تدريب الديوكإذ تم استجابة الديوك تدريجيًا في كل مرة، ابيع، وهذا ما ساهم بتشكيل منعكس بافلوف العصبي لدى الديوك، األمر أسأربعة (، وبنفس اللباس، لمدةالظهر

تم الحفاظ على النظافة خالل عملية الجمع، لمنع الذي أدى لحدوث استجابة بمجرد الدخول للقيام بعملية الجمع. و ائل المنوي الس، وذلك لضمان عدم تلوث قص الريش حول فتحة المجمع المنوي بمراعاة النقاط التالية: تلوث السائل

19ن العلف والماء، إذ تم سحب العلف مساًء وحتى الصباح لمدة حرمان الطيور مأثناء عملية الجمع، كما تم إضاءة ظاموتم الحفاظ على ن، لتجنب تلوث السائل المنوي بالزرق الذي يؤثر على نوعيتهساعة قبل عملية الجمع،


امداستختم كما واحدة صباحًا حتى الخامسة مساًء، من الساعة الكافة وذلك ساعة يوميًا خالل مراحل البحث 19 .(3- 2)الشكل أو أمبوالت أبندورف للحفظ الشفطأدوات معقمة جيدًا سواء محاقن

(: أدوات مستخدمة في التجربة3- 2الشكل )

: عمر النضج الجنسي: 4-6

ات للحصول على سائل منوي بنوعية مطابقة للمواصف المحتاجةتم تحديد عمر النضج الجنسي للديوك بعدد األيام (.1611الفيزيولوجية المطلوبة )الحركة المتقدمة، الحيوية، الصفات المورفولوجية( )بوغولوبسكي ،

: طريقة جمع السائل المنوي:4-7بوضع راحة اليد اليسرى على الجزء Abdominal Massage تمت عملية الجمع بطريقة المساج البطني

للخلف، وتثبيت األصابع اإلبهام والسبابة حول المجمع، لتكون قريبة لعصر الذيلاللحمي من الذيل، مع إبقاء ريش الحليمات عند بروزها، ثم القيام بعملية التدليك باليد اليمنى على جانبي الجزء الرخو من البطن، لضمان حدوث

، (0-2كما في الشكل ) تدفق السائل المنوي وي( 4 -2الشكل ) ى تبرز الحليمات من المجمع، االستجابة، أي حتثم تم شفط السائل المنوي باستخدام محقن األنسولين، وتمت عملية الجمع ،( ثانية35-10وتستمر عملية التدليك )

(Tarif et al ,2013; fan et al.,2004).المراجع وفق بعض مرتين أسبوعياً


(: لحظة تدفق السائل المنوي من المجمع5- 2(: بروز الحليمات من المجمع شكل )4- 2)شكل

: طريقة فحص السائل المنوي:4-8

: الفحص البصري:4-8-1

: فحص اللون:4-8-1-1

ثانية من التدليك 35تم الحصول على سائل منوي ذي نوعية جيدة بلون أبيض لؤلؤي وغير شفاف وبقوام لزج، بعد السريع والمستمر، كما تم استبعاد السائل المنوي في حال عدم الحصول عليه بعد دقيقة واحدة من بدء المساج وذلك

(.Zhang,2006حسب )ب

: حجم القذفة:4-8-1-2

( تم وضع السائل 9- 2لى السائل المنوي من الديوك المدروسة بواسطة محقن األنسولين الشكل )بعد الحصول عماصات ميكروية، بوساطة( ثم تم قياس حجم السائل المنوي الطازج 2- 2المنوي في أنابيب أبندورف شكل رقم )


عينة لكل ديك خالل 19م تقييم وتسجيل قيمة حجم القذفة لكل ديك على حدة، في كل عملية جمع للسائل المنوي. وت التجربة، ومن ثم حساب متوسط كل مكرر )أربعة ديوك(.

محقن األنسولين بداخله سائل منوي (: 7- 2شكل ) (: أنبوب أبندورف بداخله سائل منوي 6- 2شكل )

: الفحص المجهري:4-8-2

: تركيز السائل المنوي:1- 4-8-2

( مل 4( مل من السائل المنوي، الذي تم الحصول عليه وأضيف برفق إلى حجم )5.51أخذ )لمعرفة التركيز تم (، 455: 1حتى تمام السيولة وبذلك تكون نسبة التمديد ) ،ثم تم مزجها برفق كي ال تتشكل رغوة ،من الماء المقطر

منوي المخفف على حافة حيث أن نسبة التمديد = الحجم المأخوذ /الحجم الكلي، وتم وضع قطرة من السائل الدادة، ثم تم شريحة العد ووضع غطاء ساليد على هذه الشريحة وتركت لفترة قصيرة، حتى استقرار المحلول على الع

X (Almahdi et al., 2014 ) 45 بالعدسة ثم التكبير X 15إجراء الفحص المجهري باستخدام العدسة الشيئية حيث تم العد في خمسة مربعات: المربع األوسط والمربعان ،ريات الحمراءاختيرت منطقة عد الك (.1- 2شكل رقم )

. استخدمت هذه الطريقة (Breininger et al., 2004)العلويان األيمن واأليسر والمربعان السفليان األيمن واأليسر


(. وبعد عد الحيوانات المنوية Chaudhari et al., 2001( وفق بعض المراجع )haemocytometerفي العد ) ( بحسب المعادلة التالية:Hafez, 1987مقدرًا ب مليار نطفة / مل وفق ) الحيوانات المنويةُحسب تركيز

X /15 *455 *455 *1555 *15التركيز مليار نطفة/ مل =

( مربعًا صغيرًا.15التي يتم عدها في ) الحيوانات المنوية: عدد Xحيث:

اً مربع 19مربعات متوسطة مضروب في 0) الحيوانات المنويةلتي حسبت فيها ا: عدد المربعات الصغيرة 15 (.اً صغير

: عدد المربعات الصغيرة الكلية في المربع المركزي )الخاص لعد الكريات الحمراء( لشريحة العد.455

: مقدار التمديد عند الفحص.455

( 5.1حيث أن العدد السابق محسوب ضمن ) 3ملم 1في الحيوانات المنوية : يضرب الناتج بعشرة لحساب عدد15 . 3ملم

حيث أن العدد السابق محسوب ضمن 3( سم1في ) الحيوانات المنوية: يضرب الناتج بألف لحساب تركيز 1555 .3( ملم1)

: فحص العينات بالمجهر الضوئي(8- 2الشكل )

: النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة: 4-8-2-2

ضافة لمنوي الطازج، والمبرد قبل إحساب متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة في السائل ا تم ، وذلك بعد حساب قيمة هذا المؤشر لكل ديك على حدة، إذ تم وبعدها مضادات األكسدة المراد دراستها لكل مكرر

X 45حيوانات المنوية المتحركة )حركة سريعة، وبطيئة، واهتزازية( باستخدام المجهر الضوئي على العدسة عد ال


( يوضح شكل الحيوانات 6- 2وحساب كل منها كنسبة مئوية من العدد الكلي للحيوانات المنوية المعدودة والشكل ) .X 45المنوية تحت المجهر بتكبير

X 44(: الحيوانات المنوية تحت المجهر الضوئي بتكبير 9- 2شكل )

: النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة:4-8-2-3

4حساب متوسط النسبة المئوية الحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج، والمبرد على الدرجة تم 20ميكرو ليتر من السائل المنوي مع 15م ذلك بعد مزج وت ضافة مضادات األكسدة المدروسة ،قبل وبعد إ ⁰م

ميكرو ليتر من محلول صبغة األيوسين، ومن ثم أخذت قطرة من المزيج لصنع مسحة على شريحة زجاجية معقمة بالكحول ومجففة، وتم تثبيت المسحة بتحريك الشريحة بسرعة لتجف هوائيًا قبل وضع الساترة لتجنب انتشار اللون

ما يسبب صعوبة في الفحص المجهري، كذلك تمت مراعاة صنع مسحة رقيقة، ألن ،دي للصبغة فوق المسحةالور اصطباغ حيوانات منوية جديدة باللون الوردي للصبغة ومن ثم استخدام مسحة سميكة يسبب تكسر الغشاء

(Chaudhari et al., 2001 ،)45فحصت على العدسة الشيئية إذ X. المئوية للحيوانات وتم حساب النسبةالمنوية الميتة بعد الحيوانات المنوية المصبوغة باللون الوردي وحسابها كنسبة مئوية من العدد الكلي للحيوانات

المنوية المعدودة، وذلك لكل مكرر بعد حساب قيمة هذا المؤشر لكل ديك على حدة.

: طريقة تمديد السائل المنوي:4-9

االلتزام بنسبة التمديد األدنى لدى تمديد السائل المنوي للديك، وذلك للحفاظ على لزوجة مناسبة، إذ يمكن تم أو 1:1الحصول على خصوبة مثالية في حال استخدام سائل منوي طازج ممدد وسائل منوي محفوظ وممدد بنسبة

(Blanco et al., 2009كحد أقصى عند الدجاج ) 2: 1


-فركتوز–الذي يتكون من هيدروكسي ميتيل أمينو الميتان ،Tris-fructose-egg yolkمدد تم استخدام الم (.Azawi and Hussein, 2013صفار البيض )-بنسلين -ستربتومايسين -حمض الستريك

(، وذلك بوضع العينات ⁰م 32، إذ تم التمديد على درجة حرارة ثابتة )1:1نسبة التمديد المستخدمة في التجربة (.15- 2حمام مائي الشكل )في

(: حمام مائي 14- 2الشكل )

قبل الحفظ Tris-Fructose-Egg Yolk: طريقة إضافة مضادات األكسدة الى الممدد 4-14 :⁰م 4على الدرجة

والسيلينوم: E: إضافة فيتامين 4-14-1

مل ممدد ، 1إلى Eملغ من فيتامين 0، وذلك بإضافة E)3O52H31(Cتم تحضير تركيزين من فيتامين مع السيلينوم ، وذلك Eمل ممدد ؛ كما تم تحضير تركيزين من مزيج فيتامين 1الى Eملغ من فيتامين 15و

مل ممدد ، 1الى Seملغ E+5.9ملغ فيتامين 15مل ممدد ، و1الى Seملغ E +5.9ملغ فيتامين 0بإضافة لمدة ربع نفسها درجة الحرارةثم وضعت العينات في حمام مائي على ⁰م 32درجة حرارة وتم المزج بهدوء على

لذي ا مع الممدد ، وبعد ذلك تم مزج كمية من السائل المنوي جيدًا لى نصف ساعة ليتم تفاعل مضادات األكسدة إلكل طير مع كمية مماثلة من بعد الجمع و درجة مئوية 32تم وضعه في حمام مائي مضبوط على الدرجة

،لسابقةا على نفس درجة الحرارة و السيلينوم( لكل تركيز من التراكيز المدروسة + Eو المزيج )فيتامين Eتامين فيو تم المزج بتحريك اإلمبولة بهدوء في راحة اليد حتى إتمام المزج، و وضعهم في الحمام المائي، ثم تخفيض درجة

، وتم والتاإلمبلغرفة، عندها نقلت إلى المبرد ووضعت بحامل حرارة الحمام تدريجيًا حتى الوصول إلى درجة حرارة اوبعد .ساعة 41عة ، و سا 24درجة مئوية، وتركت في المبرد لمدة 4تخفيض درجة الحرارة تدريجيًا وصواًل الى

الوصول الى حتى المدروسة تدريجياً مضي الفترة المحددة من الحفظ بالتبريد تم من جديد رفع درجة حرارة العينات


ونسبة وية،المنالمختلفة للحيوانات الحركاتفي الحمام المائي وبعد ذلك تم تقييم اإلمبوالتبوضع ،⁰م32الدرجة .الميتة الحيوانات المنوية

)حمض االسكوربيك(: C: إضافة فيتامين 4-14-2

15و ممدد،مل 1الفيتامين إلى ملغ من 0، وذلك بإضافة C (O8H6(Cتم تحضير تركيزين من فيتامين ودرست المؤشرات السابقة نفسها. تفسها ثم اتبعت اإلجراءات ممدد،مل 1 الى Cمن فيتامين ملغ

:CAT): إضافة أنزيم الكاتاالز )4-14-3

من 155Uو ممدد،مل 1إلى الكاتاالز من U 25أنزيم الكاتاالز، وذلك بإضافة تم تحضير تركيزين من ثم اتبعت نفس اإلجراءات ودرست المؤشرات السابقة نفسها. ممدد،مل 1 الى الكاتاالز

: إضافة مزيج من مضادات األكسدة:4-14-4

Cملغ من فيتامين 0كسدة المراد دراستها؛ المزيج األول: تم بإضافة تحضير تركيزين من مزيج مضادات األتم مل 1من الكاتاالز الى U 25مل ممدد، و 1الى Seملغ E +5.9ملغ من فيتامين 0مل ممدد، و 1الى

Seملغ E +5.9من فيتامين ملغ 0ومل ممدد، 1الى Cملغ من فيتامين 15ممدد. والمزيج الثاني: تم بإضافة ودرست المؤشرات السابقة نفسها مل ممدد، ثم اتبعت اإلجراءات1من الكاتاالز الى U 25ومل ممدد، 1الى

نفسها.

لمدة ⁰م 4الدرجة والحفظ على مقارنة كل مؤشر من المؤشرات المدروسة بعد إضافة مضادات االكسدةتم حيث .مع عينة شاهد ساعة 41و 24

: التحليل اإلحصائي:4-11 تخدام عاملين(، ثم تم اس-تم تصميم التجربة وفق القطاعات العشوائية الكاملة بالتجارب العاملية )عامل واحد

وفق اختبار L.S.R، وحساب أقل مدى معنوي ANOVA)لتحليل التباين ) Genstat-12البرنامج اإلحصائي لتحديد الفروق المعنوية بين المعامالت المدروسة. Duncan`s)دانكان )


الفصل الثالث

النتائج والمناقشة


:Results and Discussionالنتائج والمناقشة -5

: نتائج تقييم السائل المنوي لديوك التجربة:5-1

: تقييم اللون:5-1-1

ون السائل لبينت الدراسة تشابه لون السائل المنوي لألفراد المدروسة وهو بلون أبيض لؤلؤي، وهذا يتطابق مع (، في حين نجد أنه بلون حليبي عند الدجاج الماليزي 2510المنوي للنمط األسود من الديك السوري )شعبان وجبور،

(، وبلون أبيض حليبي Yahaya et al., 2013(، والدجاج الرومي في نيجيريا )Haron et al., 2010المحلي ) Naked Neck(، والدجاج Almahdi et al., 2014( المحلي اإلندونيسي )Lingnanعند دجاج لينغنان )

Tswana وBlack Australorp (.(Mothibedi et al., 2016

: تقييم حجم القذفة: 5-1-2

( يوضح 3-3على نوعيته، والجدول ) يدل الذيمن خصائص السائل المنوي تم قياس حجم القذفة باعتباره واحداً مجموعة )ثالثة ديوك( بعد قياس حجم السائل المنوي لكل ديك على حدة، متوسط النسبة المئوية لحجوم قذفات كل

كما يبين عدم وجود فروقات معنوية بين هذه المتوسطات.

قذفات مجموعات الديوك المدروسة مقدرة ب مل. حجوم( متوسط 3- 3) جدول

حجم القذفة/ مل المجموعات

A 0.64 a

B 0.69 a

C 0.68 a

D 0.67 a

0.67 اإلجماليالمتوسط

(.p >0.05*الحروف المتشابهة بجانب المتوسطات تعني عدم وجود فروق معنوية )

0.69قيمته تبلغإذ ، B( أن متوسط حجم القذفة األكبر سجل عند المجموعة 33- يتضح من الجدول رقم )

مل، في حين أن قيمة هذا المتوسط عند 5.94حوالي تبلغ إذ ، A مل، وأقل قيمة لهذا المتوسط عند المجموعةوبالمقارنة مع نتائج الدراسات األخرى، نجد أن على التوالي. مل 5.92مل و 0.68بلغت Dو Cالمجموعة

مل، وهو يفوق متوسط حجم القذفة عند النمط 5.92متوسط حجم القذفة للديوك في المجموعات المدروسة بلغ أعلى من متوسط حجوم القذفات عند كان( ، و 2510مل )شعبان وجبور، 5.06والذي بلغ األسود للديك السوري


(، والديك المحلي في المنطقة الساحلية لنيجيريا Sonseeda et al., 2013مل ) 5.3الديك المحلي التايالندي قذفة عند الليجهورن حجم ال أنوبالمقارنة مع الهجن العالمية نجد .((Chaudhari et al., 2001 مل 5.21

AlSamarai(، بينما وجد (Lee,1999( مل بحسب 5.20-5.41األبيض )الساللة البياضة( يتراوح بين )، في حين بلغ متوسط ( مل5.3-5.2تتراوح بين ) عند الساللة البياضة السابقة أن هذه القيمة ( 2556)وآخرون

Modupe(، بينما وجد Shanoon, 2011مل ) 5.2حجم القذفة عند الهبرد )المتخصص بإنتاج اللحم( حوالي ( أن 2550وآخرون ) Bilcik ، وبين% 5.00( أن متوسط حجم القذفة عند الديك السابق بلغ2513وآخرون )

( مل، وعليه فإن ديوك التجربة تتقارب من الساللة 5.06 – 5.34هذه القيمة تراوحت عند دجاج التسمين بين ) البياضة من حيث صفة حجم القذفة.

ربما يعود السبب في تباين حجم القذفة إلى اختالف ظروف التجربة مثل ساللة الطير، العمر، الفرد، الموسم، و ربما يعود الى العمليات ، Donoghue et al., 2000)اإلضاءة، طريقة الرعاية، والعوامل البيئية األخرى)

لى االستجابة لعملية التدليك عند جمع السائل المنوي) الفسيولوجية التي تنظم Tarifعملية إنتاج الحيوانات المنوية، وا

et al., 2013 ،)وطرق الجمع ومهارة الشخص (القائم بعملية الجمعLake and Ravie, 1981)إذ وجد ، Gordon بينما وجد مل، 0.25 بلغ حجم القذفة باستخدام المساج البطني ( أن متوسط2005خرون )آوBah

.مل 0.28±0.14بلغ باستخدام طريقة الجمع السابقة متوسط هذا ال( أن 2001خرون )آو

في السائل المنوي الطازج: وتركيزها : عدد الحيوانات المنوية5-1-3

في كل مرة تم فيها جمع السائل المنوي وحساب ،أظهرت نتائج البحث بعد عد الحيوانات المنوية لكل ديكذا التعداد وبما أن ه المنوية بين المجموعات المدروسة. متوسط هذا العدد لكل ثالثة ديوك، تقاربًا في عدد الحيوانات

يدخل في معادلة حساب تركيز السائل المنوي فهناك تقارب في متوسط تركيز الحيوانات المنوية لهذه المجموعات. .( النتائج التي تم التوصل إليها4-3ضمن الجدول )ويت

تميزت بالقيم األعلى لمتوسط تعداد الحيوانات المنوية و متوسط A( أن المجموعة 4-3يتضح من الجدول رقم )( مليار نطفة / مل على التوالي. في حين سجلت القيم األقل لهذه (5.86( نطفة و263.2تركيزها، إذ بلغت )كانت في حين( مليار نطفة / مل على التوالي، 0.14( نطفة و )262.5بلغت ) إذ، Bلمجموعة المتوسطات في ا

( مليار نطفة / مل على التوالي، وعند 5.85( نطفة و )(292.6حوالي Cقيم هذه المتوسطات عند المجموعة .الترتيب( مليار نطفة / مل على 5.86)( نطفة و (293.1حوالي Dالمجموعة


لمجموعات الديوك المدروسة. هاوتركيز (: متوسط عدد الحيوانات المنوية 4-3الجدول)

التركيز مليار نطفة/مل العدد نطفة المجموعات

A 293.2 a 5.86 a

B 292.0 a 5.84 a

C 292.6 a 5.85 a

D 293.1 a 5.86 a

0.10 262.20 المتوسط اإلجمالي

(p >0.05تعني عدم وجود فروق معنوية )*الحروف المتشابهة بجانب متوسطات كل عمود

مليار نطفة 0.10 لي لتركيز الحيوانات المنوية بلغوبالمقارنة مع نتائج دراسات أخرى فإن المتوسط اإلجمامليار 4.903 ألسود من الديك السوري والذي بلغ/مل ، وهو أعلى من متوسط تركيز الحيوانات المنوية للنمط ا

Sonseeda) ( مليار نطفة / مل 4.325 ) (، و من الديك المحلي التايالندي2510نطفة / مل )شعبان وجبور،

et al., 2013 مليار نطفة/ مل 2.295(، وأعلى بكثير من الدجاج المحلي في المنطقة الساحلية لنيجيريا((Chaudhari, 2001(مليار نطفة / مل 2.32 ) ، ومن ديك مازاندران اإليراني (Sayyahzadeh et al.,

Serel(، ومن ديك Fan et al., 2004) (مليار نطفة / مل 2.0 )لديك التايواني المحلي (، ومن ا 2010 Bar Plymouth Rock (BPR )( 2536دجاج ومن(، Tuncer et al., 2008) (مليار نطفة /مل 2.42)

Light Sussex (SU )و (مليار نطفة / مل 1506 ) Rhode Island Red (RIR )و ( مليار نطفة / مل (. في حين انه أقل من متوسط تركيز الحيوانات المنوية عند Denisa et al., 2015) (مليار نطفة / مل 2539)

من سالالت أقل ، و (Mphaphathi et al., 2016) (مليار نطفة/مل 9.1)قيمته ت، والذي بلغVendaديك Sasso وSynthetic و Whiterock ( 6.9 مليار نطفة / مل على التوالي 1.2و 6.5و) (Tarif et

al., 2013). دجاج غينياوتتقارب قيم هذا المتوسط عند سالالت مختلفة من (Guinea ) حيث بلغ عند ساللة ،Pearl مليار نطفة /مل ، وساللة 1.215حواليWhite (2.151، مليار نطفة /مل ) وساللة White

breasted (2.462 مليار نطفة /مل ، وساللة )Lavender (2.239 (مليار نطفة /مل )Keerthy et al.,

Rossن تركيز الحيوانات المنوية في السائل المنوي للهجين أوبالمقارنة مع الهجن العالمية نجد (.2016تركيز تراوح(، حين Parker and McDaniel, 2006مليار نطفة / مل ) 9.2 بلغالمتخصص بإنتاج اللحم

Lake andمليار نطفة / مل ) 0.0و 4.0الحيوانات المنوية في السائل المنوي للديك من الساللة البياضة بين

Ravie, 1981 ،)مليار نطفة / مل 3.03بلغ إذ لليجهورن عند ديك ا وكان أقلTuncer et al., 2008) ،)


Tuncer etمليار نطفة / مل ) 3.30بلغ الذيديك النيوهامبشير )ثنائي الغرض( ويقترب األخير من متوسط

al., 2006; 2008; Peters et al., 2008.)

أي أن ديوك البحث المحلية شغلت مركزًا متقدمًا من حيث تركيز الحيوانات المنوية مقارنة مع سالالت الدجاج بلدان أخرى.المية وسالالت محلية في البياض الع

:%حركية الحيوانات المنوية: 5-1-4

:الطازجفي السائل المنوي حركية الحيوانات المنوية-5-1-4-1

أظهرت نتائج البحث عدم وجود فروق معنوية بين المجموعات المدروسة من حيث متوسط النسبة المئوية ( يوضح النتائج التي تم التوصل إليها.4-3والجدول )(. p > 0.05للحيوانات المنوية المتحركة )

حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي الطازج %.( 5-3)جدول

متوسط الحركة االجمالية % الحركية% المجموعات

االهتزازية البطيئة السريعة

A 81.11 a 11.26 a 4.85 a 62.22

B 81.29 a 11.43 a 4.69 a 97.41

C 81.92 a 10.78 a 4.53 a 97.23

D 81.03 a 10.88 a 4.61 a 96.52

97.09 4.67 11.09 81.33 المتوسط العام للحركة%

(.p >0.05*الحروف المتشابهة بجانب متوسطات كل عمود تعني عدم وجود فروق معنوية )

ة المنوية المتحركة حركة سريع النسبة المئوية للحيوانات ( أن أعلى قيمة لمتوسط 0-3يتضح من الجدول رقم ) D، في حين سجلت أقل قيمة في المجموعة ) % 81.92( وبلغت قيمة هذا المتوسط (Cسجلت في المجموعة

على التوالي، %81.29و B ، )%81.11( و ) (Aوبلغت هذه القيم في المجموعة ، % 81.03( والتي بلغت %11.43بلغت قيمتها ، إذ B)وية المتحركة حركة بطيئة في المجموعة )الحيوانات المن لنسبةكما سجلت أعلى قيمة

( (Aهذه القيم في المجموعتين، و بلغت %10.78(، والتي بلغت Cفي المجموعة ) حين سجلت أقل قيمة ، في .على التوالي % 10.88و % 11.26(، Dو )

(، Aة )في المجموع اهتزازية كانويتبين من الجدول ان أعلى قيمة لمتوسط الحيوانات المنوية المتحركة حركة هذه القيم في وكانت، % 4.53(، إذ بلغت C)، في حين سجلت أقل قيمة في المجموعة % 4.85إذ بلغت

على التوالي. وسجلت أعلى قيمة لمتوسط الحركة اإلجمالية في %4.61و D 4.69% )( و ) B)المجموعات


(، وبلغت هذه القيم في % 62.22) Aأقل قيمة في المجموعة سجلت (، في حين% 96.52) Dالمجموعة ( على التوالي.%62.23( و )62.41%) Cو Bالمجموعة

مقارنة نتائج هذه الدراسة مع دراسات وب.%62.56وبلغ المتوسط العام للحركة االجمالية للمجموعات المدروسة متوسط لاأخرى من حيث متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة في السائل المنوي الطازج، تبين أن

العام للحركة االجمالية في السائل المنوي الطازج أعلى بالمقارنة مع نتائج دراسات أخرى، إذ بلغ متوسط الحركة ) شعبان %16.19يوانات المنوية في السائل المنوي الطازج الممدد للنمط األسود من الديك السوري االجمالية للح

ما يقرب Giriraga (، وبلغت قيمة متوسط الحركة االجمالية في السائل المنوي الطازج لدجاج 2510وجبور، ، و % 23522حوالي Frizzled feathered ، و %1250حوالي White leghornو ،%92500 من

Naked Neck 12530 % و ،Normal feathered 12530 % وAlpha 12505 % (Peters et al,2008 ،)حوالي Pearl، حيث بلغ عند ساللة Guinea)كما تختلف قيم هذا المتوسط عند سالالت مختلفة من دجاج غينيا)

Lavender (11536% )و White breasted (12505%،)(، و%22519حوالي ) White(، و13542%)(Keerthy et al., 2016 كما بلغ هذا المتوسط عند سالالت ،)Dominant Brown وIsa white و

Yoruba Ecotype و Eulani Ecotype، 23.33 على التوالي ) 99.92و 99.92و 24.12وAmeen

et al., 2014،) 2150الرومي الديكوبلغ عند% (Dimitrov et al., 2007). وجد كماRoushdy وآخرون ترس السائل المنوي الطازج للديك بعد التمديد ب المتحركة فيمتوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية أن ( 2514)

، وعند % EI-Salam 02511، وبلغت قيمة هذا المتوسط عند ساللة الدجاج % 01559البيض صفار (. أما في السالالت Tuncer et al., 2006)Denizli 2253%، وعند ديك % Dokki-4 01554ساللة

، وعند ديك % 1352لغت قيمة هذا المتوسط ب( فقد White Leghorn) المتخصصة بإنتاج البيض، وعند الهبرد )إنتاج لحم( Tuncer et al., 2008))%2259( )ثنائي الغرض( New Hampshireنيوهامبشير)

23% (Shanoon , 2011).

لي الدجاج البياض المح مقارنة مع التقدميةحيث الحركة أي أن الديوك المدروسة في البحث سجلت تفوقًا من البياض العالمية. سالالت الدجاجو

ساعة: 48و 24في السائل المنوي الطازج والمبرد لمدة حركية الحيوانات المنوية-5-1-4-2

، أدى إلى انخفاض في النسبة المئوية ⁰م 4أظهرت نتائج البحث أن حفظ السائل المنوي المبرد على الدرجة عة بالمقارنة سا 41للحيوانات المنوية المتحركة حركة سريعة وبطيئة، وكان هذا االنخفاض أكبر عند الحفظ لمدة

ساعة. 41ذه الزيادة أعلى عند الحفظ لمدة الحركة االهتزازية، وكانت ه ساعة، في حين ازدادت نسبة 24مع ( يبين النتائج التي تم التوصل إليها.9-3والجدول )


ساعة% 48و 24لمدة ⁰م4حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي الطازج والمبرد على الدرجة ( 6-3جدول )

الحركات المختلفة للحيوانات المنوية% المعامالت

إجمالية اهتزازية بطيئة سريعة

a 11.088 a 5.33 a 62.041 81.13 طازج

b 9.733 b 20.14 b 11.943 58.77 ساعة 24المبرد لمدة

c 6.817 c 23.14 c 13.002 53.60 ساعة 41المبرد لمدة

(.p< 0.05بجانب المتوسطات في األعمدة تعني وجود فروق معنوية ) المتباينة*الحروف

ساعة، أدى إلى انخفاض 24لمدة ⁰م 4( أن حفظ السائل المنوي على الدرجة 9-3)يتضح من الجدول رقم ، %01.22في السائل المنوي الطازج إلى %81.13في النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة حركة سريعة من

، %6.233إلى %11.511، كما انخفضت النسبة المئوية في حالة الحركة البطيئة من %22.39أي بفارق قدره ، أي %25.14إلى %0.33، أما في حالة الحركة االهتزازية فقد زادت هذه النسبة من %1.300أي بفارق قدره

.%14.11بفارق قدره

ساعة وبالمقارنة مع السائل المنوي 41لمدة ⁰م 4حفظ السائل المنوي الممدد على الدرجة أن ويبين الجدول أي % 53.60الطازج والممدد، أدى إلى انخفاض في النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة حركة سريعة إلى

، في حين %4.221، أي بفارق %9.112، وانخفاض هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة إلى %22.03بفارق .%12.11، أي بمقدار %23.14حالة الحركة االهتزازية إلى ازدادت هذه النسبة في

( أن متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية في حالة الحركة االجمالية 9-3ويتضح من معطيات الجدول رقم )على التوالي %13.002و %11.943انخفضت إلى ساعة 41وساعة 24لمدة ⁰م 4عند الحفظ على الدرجة

، أي بفارق %62.041مقارنة مع الحيوانات المنوية في السائل المنوي الطازج الممدد الذي بلغ هذا المتوسط عنده على التوالي. %13.661و 1.650%

وبمقارنة نتائج هذه الدراسة مع دراسات أخرى من حيث متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة في رد أعلى السائل المنوي الطازج والمب والسريعة فيجمالية ، تبين أن متوسط الحركة اإلوالمبردمنوي الطازج السائل ال

متوسط الحركة االجمالية كان (2010) وآخرون Asmarawati دراسةبالمقارنة مع نتائج دراسات أخرى، ففي نتائج ساعة بلغ 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4الدرجة ، وعند الحفظ على %15.55في السائل المنوي الطازج للديك

( و Aseelللديك )في السائل المنوي الطازج ، بينما بلغت قيمة هذا المتوسط على التوالي %02.55و 96.55%وأن قيمة هذا ، (Jabbar et al., 2015التوالي )على %23و %22ساعة 24لمدة ⁰م 4بعد الحفظ على الدرجة

، (Tabatabaei et al., 2011) 19.12%ساعة بلغ 24بالتبريد لمدة للديك المنوي المتوسط عند حفظ السائل


%10.21(، إذ وجد أن هذه القيمة بلغت 2513) وآخرين Jafari Ahangariوهذه النتيجة متقاربة مع نتائج ساعة. 24عند حفظ السائل المنوي بالتبريد لمدة

ساعة بعد إضافة تراكيز 48و 24في السائل المنوي المبرد لمدة حركية الحيوانات المنوية-5-1-4-3 :Cمختلفة من فيتامين

24لمدة ⁰م 4الدرجة إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على Cأظهرت نتائج البحث أن إضافة فيتامين لى انخفاض في الحركة االهتزازية عند إضافته بتركيز ساعة، أدت إلى زيادة في الحركة 41و ملغ/مل، 0السريعة وا

البطيئة فقد ازدادت عند الحركة ما يخص ملغ/مل، أما 15في حين تم حدوث العكس عند زيادة هذا التركيز إلى ا.يبين النتائج التي تم التوصل إليه (2-3. والجدول )Cاستخدام التركيزين السابقين من فيتامين

ساعة بعد إضافة تراكيز مختلفة من 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة (: 3- 7جدول ) .% Cفيتامين

41 24 مدة الحفظ / ساعة

%الحركية

المعامالت

إجمالية اهتزازية بطيئة سريعة إجمالية اهتزازية بطيئة سريعة

54.10b 9.971c 17.44 b 81.511 47.23 e 7.833 e 22.47c 22.033 الشاهد

C 58.97a 11.793a 14.26 a 85.023 52.07 c 10.124bc 18.98b 11.124ملغ 0

C 41.00e 10.260b 22.45 c 73.71 29.94 f 8.249 d 30.61d 91.266ملغ 15

(.p<0.001بجانب المتوسطات في األعمدة تعني وجود فروق معنوية ) المتباينة*الحروف

⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة Cملغ/مل من فيتامين 0من الجدول أن إضافة إذ ساعة، أدت إلى زيادة النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة حركة سريعة بالمقارنة مع الشاهد من 24لمدة

%6.621المئوية في حالة الحركة البطيئة من ، كما ارتفعت النسبة %4.12، بفارق قدره % 01.62إلى 04.15% .%1.122، أي بمقدار %11.263إلى

. %3.11، بفارق قدره %14.29إلى %12.44أما في حالة الحركة االهتزازية فقد انخفضت هذه النسبة من ⁰م 4رجة إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الد Cويبين الجدول أن إضافة التركيز السابق من فيتامين

إلى %42.23ساعة أدت وبالمقارنة مع الشاهد إلى زيادة النسبة المئوية في حالة الحركة السريعة من 41لمدة 15.124إلى %7.833، كما ارتفعت النسبة المئوية في حالة الحركة البطيئة من %4.14، بفارق قدره 02.52%

، بفارق %18.98إلى %22.47، في حين انخفضت في حالة الحركة االهتزازية من %2.261، أي بمقدار %


⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة Cملغ / مل من فيتامين 15إضافة ( أن3- 7ويبين الجدول رقم ) .%3.46قدره بة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة حركة ساعة، وبالمقارنة مع الشاهد، أدت إلى انخفاض في النس 24لمدة

، في حين ازدادت في حالة الحركة البطيئة من %13.1، أي بفارق قدره %41.00إلى %54.10سريعة من ، كما ازدادت النسبة المئوية في حالة الحركة االهتزازية من %5.216، أي بمقدار %10.260إلى 9.971%إلى ممددات السائل Cإضافة التركيز السابق من فيتامين وتبين أن. %0.51أي بمقدار %22.45إلى 17.44%

ساعة أدت وبالمقارنة مع الشاهد، إلى انخفاض في النسبة المئوية 41لمدة ⁰م 4المنوي قبل الحفظ على الدرجة دت في ، في حين ازدا%17.29أي بفارق %29.94إلى %47.23للحيوانات المنوية المتحركة حركة سريعة من

، كما ازدادت النسبة المئوية في حالة %5.419أي بمقدار %8.249إلى %7.833حالة الحركة البطيئة من .%1.14أي بمقدار %30.61إلى %22.47الحركة االهتزازية من

غ/مل مل 0أما بالنسبة لمتوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية في حالة الحركة اإلجمالية عند استخدام التركيز على %11.124و %10.523ساعة، فقد ارتفع إلى 41و 24لمدة ⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة Cمن فيتامين

%3.012، أي بفارق قدره %22.033و %11.011التوالي بالمقارنة مع الشاهد الذي بلغ هذا المتوسط عنده نفسهما نيتين الفترتين الزم وفيالمتوسط السابق في حالة الحركة اإلجمالية انخفضعلى التوالي. في حين %3.94و

%1.234و %2.151، أي بفارق قدره على التوالي %91.266و %23.21 إلىملغ / مل، 15عند إضافة التركيز ت السائل ملغ /مل إلى ممددا 0 بتركيز C. ويفسر سبب زيادة الحركة اإلجمالية عند إضافة فيتامين الترتيبعلى

بفاعليته في الحد من الضرر التأكسدي عند إضافته ساعة، 41و 24لمدة ⁰م4المنوي قبل الحفظ على الدرجة لى ممددات السائل المنوي يساعد في حماية إ Cبكمية مناسبة، إذ تبين أن إضافة الكمية المثلى من فيتامين

، إذ يعمل على Foote et al., 2002)ن الجذور الحرة )الحيوانات المنوية من األضرار أثناء التخزين والحماية م ,.Michael et al)المنوية ( الحيوانات Agglutination، ويمنع تراص )كما أنه قادر على التفاعل معها ،كنسها

ر االنخفاض في الحركة االجمالية عند إضافة فيتامين (. 2008 ملغ /مل إلى ممددات 15بتركيز Cفي حين يفس يعزز الضرر ،Cفيتامين العالي ل بأن التركيزساعة 41و 24لمدة ⁰م4السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة

الى أن إضافته باإلضافة إلى تأثيره السام، إذ وجدت نتائج بعض الدراسات، ،(Dawra et al., 1983)التأكسدي بسبب التأثير السام لحمض ضرراً يسبب قبل حفظه % 1.5بتراكيز أعلى من السائل المنوي للدواجن

(. (Jabbar et al., 2015; Tabatabaei, 2012اإلسكوربيك

مع انخفاض في الحركة ،عند عدم إضافته بكمية مناسبة C ومن حيث ارتباط التأثير الضار لفيتامين( والتي Asmarawati et al., 2010)نتائج دراسة مع تتفق نتائج هذه الدراسة فإن ،اإلجمالية للحيوانات المنوية

/ مل قبل الحفظ ملغ 2.0 – 0 -2.0إلى ممددات السائل المنوي للدجاج بتراكيز Cبينت أنه عند إضافة فيتامين %99.55، و % 92.45، و % 92.95، بلغت النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة حركة إجمالية 24لمدة


أنه عند إضافة التراكيز هذه الدراسة ، كما بينت% 96.55على التوالي، في حين كانت هذه القيمة في عينة الشاهد قيم الحركة فإنساعة 41لمدة ⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة Cالسابقة من فيتامين

. %02.55على التوالي، بينما كانت قيمتها في عينة الشاهد %32.45، و %32.55، و %31.95 بلغت اإلجمالية كنسفي Cعلى حركية الحيوانات المنوية تعزى إلى الدور المزدوج لفيتامين Cهذه االختالفات في تأثير فيتامين

ربة بين المناسب وضبط شروط التج األمر الذي يتوقف على معرفة التركيز آن معًا،الجذور الحرة وفي تشكيلها في مكان وآخر.

ساعة بعد إضافة 48و 24في السائل المنوي المبرد لمدة حركية الحيوانات المنوية-5-1-4-4 :Eتراكيز مختلفة من فيتامين

24لمدة ⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة Eأظهرت نتائج البحث أن إضافة فيتامين نخفاضساعة أدت إلى زيادة في الحركة السريعة والبطيئة للحيوانات المنوية، 41و ة )الحركة في الحركة االهتزازي وا

( النتائج التي تم التوصل إليها.1-3الخفيفة في المكان(. ويتضمن الجدول رقم )

تراكيز مختلفة من ساعة بعد إضافة 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة (: 8-3جدول ) E% .فيتامين

(.p<0.001*الحروف المتباينة بجانب المتوسطات في األعمدة تعني وجود فروق معنوية )

24لمدة ⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة Eملغ/مل من فيتامين 0تبين أن إضافة إذ عند الشاهد إلى %04.41ساعة، أدت الى زيادة النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة حركة سريعة من

%11.24إلى %6.32، كما ارتفعت النسبة المئوية في حالة الحركة البطيئة من %0.53، بفارق قدره 06.44%

مدة الحفظ / ساعة

24 41

الحركية%

المعامالت


04.41f 6.32ef 16.52 e 82.8 46.15 h 0.41 i 23.02g 78.15 الشاهد

ملغ/ مل 0

06.44c

11.24d

19.12 c

86.85

04.61ef

1.26 g

11.43de

82.2

92.91b 12.76c 14.43 b 89.87 02.95 d 6.19 e 12.20cd 84.71 ملغ/ مل 15


بفارق % 19.12عند الشاهد إلى %16.52. أما الحركة االهتزازية فقد انخفضت نسبتها من %1.12بمقدار أي إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على E. ويبين الجدول أن إضافة التركيز السابق من فيتامين %2.10قدره

لنسبة المئوية في حالة الحركة السريعة من ساعة أدت وبالمقارنة مع الشاهد، إلى زيادة ا 41لمدة ⁰م 4الدرجة % 1.26إلى % 0.41، وزيادة هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة من %0.11، بفارق %04.61إلى 46.1%أي بمقدار %11.43إلى %23.02، في حين انخفضت النسبة في حالة الحركة االهتزازية من %3.31بفارق ساعة، وبالمقارنة مع 24لمدة ⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة Eفيتامين ملغ/ مل من 15. وعند إضافة 0.14%

، كما ارتفعت %1.22بفارق قدره %92.91الشاهد، ارتفعت النسبة المئوية المدروسة في حالة الحركة السريعة إلى ركة ، في حين انخفضت في حالة الح%3.36بزيادة قدرها %12.29هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة إلى

.%4.06أي بمقدار %14.43االهتزازية إلى

41لمدة ⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة Eملغ/مل من فيتامين 15أنه عند إضافة (1-3) كما يتبين من الجدولساعة وبالمقارنة مع الشاهد، فإن النسبة المئوية المدروسة قد ارتفعت في حالتي الحركة السريعة والبطيئة إلى

على التوالي، وانخفضت في حالة الحركة االهتزازية إلى %4.31و %1.0أي بفارق قدره ، %6.19و 02.9% .%9.32، بفارق قدره 12.20%

أما بالنسبة لمتوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية في حالة الحركة اإلجمالية، فقد ارتفع عند استخدام التركيز %12.2و %19.01ساعة إلى 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة Eملغ/ مل من فيتامين 0

%4.50و %3.21أي بفارق قدره % 21.10و %12.1على التوالي مقارنة مع الشاهد الذي بلغ هذا المتوسط عنده فترتين ال وفيملغ/مل فقد بلغ المتوسط السابق في حالة الحركة اإلجمالية 15على التوالي. أما عند استخدام التركيز

على التوالي مقارنة مع %9.01و %2.52على الترتيب، أي بزيادة قدرها %14.99و %16.12 نفسهما يتينالزمنقبل حفظه بالتبريد E الشاهد. ومن حيث ارتباط زيادة الحركة االجمالية للحيوانات المنوية مع إضافة فيتامين

(، والتي بينت أن إضافة 2515وآخرين ) Asmarawatiوبالمقارنة مع الشاهد، تتفق نتائج هذه الدراسة مع دراسة 5.1 m M -5.3 m M-5.0 m M من فيتامين E إلى ممددات السائل المنوي للدجاج المحلي قبل الحفظ

، %23.55ساعة أدت إلى زيادة متوسط الحركة االجمالية حيث بلغ هذا المتوسط 24م لمدة 4على الدرجة ، كما بلغ قيمة هذا المتوسط %96.55بلغت قيمته في عينة الشاهد على التوالي، في حين96.95%، 90.95%

، %01.55، و %91.45ساعة 41لمدة نفسها قبل الحفظ على الدرجة Eبعد إضافة التراكيز السابقة من فيتامين وآخرين Moghbeli، كما تتفق نتائج الدراسة مع %02.55على التوالي، و كان في عينة الشاهد %06.55و مليار 5.4إلى ممددات السائل المنوي ذوي التركيز Eميكروغرام /مل من فيتامين 0(، إذ وجد أن إضافة 2519)

. ويفسر تحسن الحركة %11.19كة بلغ متوسط هذه الحر إذنطفة / مل أدت إلى تحسن في الحركة االجمالية ، الى ممددات السائل المنوي قبل حفظه بالتبريد بفعاليته في الحد من التغيرات في Eجمالية عند إضافة فيتامين اإل


لى ممددات إ Eقدرته المضادة لألكسدة، إذ تبين بوضوح، التأثير المفيد إلضافة فيتامين لخاليا الحيوانات المنوية في الغشاء الماء األوكسجينين تشكل السائل المنوي للديوك، على حركية الحيوانات المنوية وجودتها، كما أنه ُيحد م

Eid(، ويعمل على إزالة األنواع األوكسجينية النشطة) (Tabatabaei et al., 2011البالزمي للحيوانات المنوية

et al., 2006; Zaniboni et al., 2006; Khan, 2011 وكذلك الحد بشكل فعال من التغيرات في الصفات ،) (. Marin-Guzman et al., 2000وسوم عند وجوده بتراكيز عالية) المورفولوجية واختالالت االكر

ساعة بعد إضافة 48و 24في السائل المنوي المبرد لمدة حركية الحيوانات المنوية-5-1-4-5 :Se+ Eتراكيز مختلفة من فيتامين

الحفظ على الدرجة ( إلى ممددات السائل المنوي قبل Seوالسيلينوم) Eأظهرت نتائج البحث أن إضافة فيتامين نخفاض في الحركة 41و 24لمدة ⁰م 4 ساعة أدت إلى زيادة في الحركة السريعة والبطيئة للحيوانات المنوية، وا

.( النتائج التي تم التوصل إليها6-3االهتزازية )الحركة الخفيفة في المكان(. ويتضمن الجدول رقم )

ساعة بعد إضافة تراكيز مختلفة من 48و 24حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد لمدة (: 9-3جدول ) .Se+ E% فيتامين

(.p<0.001المتباينة بجانب المتوسطات في األعمدة تعني وجود فروق معنوية )*الحروف

مدة الحفظ / ساعة

24 41

الحركية%

المعامالت

سريعة

بطيئة

اهتزازية

إجمالية

سريعة

بطيئة

هتزازيةا

إجمالية

04.41f 6.32ef 16.52 e 82.8 46.15 h 0.41 i 23.02g 21.10 الشاهد

.E+5ملغ0

/ملSملغ 9

90.59a

12.90 a

6.56 a

91.8

06.19 c

10.10b

12.19b

12.12 E+5ملغ15 /ملSeملغ9

09.21d

6.35fg

11.22de

83.73

01.69 g

9.22 h

25.94f

21.12


Seملغ 5.9مع Eملغ/مل من فيتامين 0( أن إضافة 6-3تظهر نتائج البحث من خالل معطيات الجدول )و

ارتفاعأدت إلى ساعة وبالمقارنة مع الشاهد، 24لمدة ⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة ، كما ارتفعت في الحركة % 15.90بفارق قدره % 90.59النسبة المئوية المدروسة في حالة الحركة السريعة إلى

أي % 6.56، في حين انخفضت في حالة الحركة االهتزازية إلى %1.21بزيادة قدرها %12.90البطيئة إلى إلى ممددات السائل Se وE لسابق من فيتامين . كما يتبين من الجدول أنه عند إضافة التركيز ا% 6.63بمقدار

ساعة، أدت وبالمقارنة مع الشاهد، إلى ارتفاع النسبة المئوية المدروسة 41لمدة ⁰م 4المنوي قبل الحفظ على الدرجة %15.32و %15.59على التوالي أي بفارق قدره %10.10و %06.19في حالتي الحركة السريعة والبطيئة إلى

.كما يتبين من الجدول % 15.21، بفارق قدره%12.19نخفضت في حالة الحركة االهتزازية إلى على الترتيب واإلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة Se ملغ 5.9مع Eملغ/مل من فيتامين 15أنه عند إضافة

09.21لة الحركة السريعة إلى ساعة وبالمقارنة مع الشاهد، ارتفعت النسبة المئوية المدروسة في حا 24لمدة ⁰م 4أي بفارق قدره % 6.35، في حين انخفضت هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة إلى %1.1أي بفارق قدره %

.%5.1أي بمقدار %11.22، كما انخفضت في حالة الحركة االهتزازية إلى 5.52%

ممددات السائل المنوي قبل الحفظ إلى Seو Eكما يتبين من الجدول أنه عند إضافة التركيز السابق من فيتامين ساعة وبالمقارنة مع الشاهد، ارتفعت النسبة المئوية المدروسة في حالة الحركة السريعة 41لمدة ⁰م 4على الدرجة

أي بزيادة %9.22، كما ارتفعت هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة إلى % 2.19أي بفارق قدره %01.69إلى .%2.63أي بمقدار %25.94حين انخفضت هذه النسبة في حالة الحركة االهتزازية إلى ، في%5.24قدرها

أن متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية في حالة الحركة اإلجمالية، عند استخدام أظهرت نتائج البحثو ساعة 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة Se ملغ 5.9مع Eملغ/ مل من فيتامين 0التركيز

على التوالي. أما %6.22و %6على الترتيب أي بفارق قدره %12.12و %61.1وبالمقارنة مع الشاهد ارتفع إلى ساعة 24لمدة ⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة Se ملغ 5.9مع Eملغ/مل من فيتامين 15عند استخدام التركيز ، في حين انخفض عند الحفظ %5.63أي بفارق قدره %13.23إلى سطهذا المتو ارتفع فقد وبالمقارنة مع الشاهد

.%5.92أي بفارق قدره %21.12ساعة إلى 41لمدة

إلى ممددات السائل Eويفسر سبب زيادة الحركة االجمالية للحيوانات المنوية عند إضافة السيلينوم مع فيتامين عن Eبمفرده إلى دور السيلينوم في تعزيز دور فيتامين E المنوي قبل حفظه بالتبريد بالمقارنة مع إضافة فيتامين

,.Surai et alوالحد من حساسية الحيوانات المنوية ألكسدة الدهون) ،طريق زيادة نشاط جلوتاثيون البيروكسيداز

E (0 عند إضافة فيتامين الماء األوكسجينيانخفاض نسبة ذا ما ذكرته بعض الدراسات التي سجلت(، وه1998µg /ml ( مع السيلينوم )معًا تأثير على حفظ السائل المنوي للديك وتحسين جودة إلضافتهما(، كما أن %1

,.Safa et al., 2016; Amini et alعن طريق تعزيز حركة الحيوانات المنوية وحيويتها ) ،الحيوانات المنوية


2015a ; Moghbeli et al., 2016 ،)وجد كماLong وKramer (2553 أن )يؤثر على الماء األوكسجيني ينياألوكسج الماءتشكل بمفرده لم يكن كافياً لمنع Eالمقدرة االخصابية للحيوانات المنوية للديك الرومي وان فيتامين

في زيادة الخصوبة في اً هام اً مع السيلينوم دور Eولكن وجد أن لفيتامين خزين السائل المنوي للديك الرومي.خالل ت(، كما أكدت دراسات أخرى أن إضافة كميات قليلة من السيلينوم Hezarjaribi et al., 2016طيور اللحم )

أكثر فعالية في الحفاظ على جودة الحيوانات المنوية والخصائص المورفولوجية بالمقارنة مع كان معاً Eوفيتامين الى ممددات Se) من %1/مل + Eمن فيتامين 0gµعند إضافة) إضافة كل منهما على حدة، إذ وجد أنه

E/ مل فيتامين gµ 0(، وعند إضافة) %26.21السائل المنوي للديك بلغت الحركة االجمالية للحيوانات المنوية) +2%Se) (، وعند إضافة %92.92) بلغت قيمتها(15gµ/ مل من فيتامينE +2% Se كانت قيمتها )دون السيلينوم تبين أن النسبة المئوية للحيوانات المتحركة Eمل من فيتامين /gµ 0(، أما عند إضافة 99.35%)

(، %24.94دون السيلينوم بلغت ) Eمل من فيتامين /gµ 15(، وعند إضافة %25.16حركة إجمالية بلغت ) (.et Safa ) (al., 2016 %04.51الحركة االجمالية في عينة الشاهد) نسبةبينما بلغت

ساعة 48و 24لمدة ⁰م 4حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي المبرد على الدرجة -5-1-4-6 بعد أضافة تراكيز مختلفة من الكاتاالز

24لمدة ⁰م 4أظهرت نتائج البحث أن إضافة الكاتاالز إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة U 155ساعة، أدت إلى زيادة في الحركة السريعة والبطيئة وكانت هذه الزيادة أكبر عند استخدام التركيز 41و

24/ مل لمدة 25U/مل، كما زادت الحركة االهتزازية قلياًل عند إضافته بتركيز U 25/مل بالمقارنة مع التركيز ساعة. 41و 24/ مل لمدة U 155وعند إضافة التركيز ساعة، 41ساعة، في حين انخفضت عند الحفظ لمدة

( يوضح النتائج التي تم التوصل إليها. 15- 3)والجدول

24لمدة ⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة CAT/ مل من U 25أن إضافة تبين إذ %58.77ساعة، أدت وبالمقارنة مع الشاهد إلى زيادة النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة حركة سريعة من

إلى %9.73، كما ارتفعت النسبة المئوية في حالة الحركة البطيئة من %5.22، بفارق قدره %06.46إلى ية للحيوانات المنوية المتحركة حركة اهتزازية من ، باإلضافة إلى زيادة النسبة المئو %5.12، بفارق 10.55% .%5.12، بفارق قدره %20.31إلى 20.14%

( أن إضافة التركيز السابق من الكاتاالز إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ 15- 3كما يبين الجدول رقم )ساعة أدت وبالمقارنة مع الشاهد إلى زيادة النسبة المئوية في حالة الحركة السريعة من 41لمدة ⁰م 4على الدرجة

، %7.98إلى %6.82، وزيادة هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة من %5.3أي بفارق %53.90إلى 53.60%، بفارق %22.92إلى %23.14. أما في حالة الحركة االهتزازية فقد انخفضت هذه النسبة من %1.19أي بمقدار

. %5.22قدره


إضافةساعة بعد 48و 24لمدة ⁰م 4في السائل المنوي المبرد على الدرجة حركية الحيوانات المنوية(: 14- 3جدول ) . %تراكيز مختلفة من الكاتاالز

(.p<0.001األعمدة تعني وجود فروق معنوية ) *الحروف المتباينة بجانب المتوسطات في

⁰م 4/ مل من أنزيم الكاتاالز قبل الحفظ على الدرجة U 155إضافة ه عند( أن15- 3يبين الجدول رقم )و % 94.10ساعة، وبالمقارنة مع الشاهد، ارتفعت النسبة المئوية المدروسة في حالة الحركة السريعة إلى 24لمدة

، في %4.32، بزيادة قدرها %14.10، كما ارتفعت هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة إلى %0.31بفارق قدره كما يتبين من الجدول أنه عند .% 2.92قدره ، بفارق % 12.47حين انخفضت في حالة الحركة االهتزازية إلى

ساعة وبالمقارنة مع الشاهد، فإن النسبة 41لمدة ⁰م 4/ مل من الكاتاالز قبل الحفظ على الدرجة U 155إضافة أي بفارق ،على التوالي %12.12و %95.22المئوية المدروسة قد ارتفعت في حالتي الحركة السريعة والبطيئة إلى

.% 1.41بفارق قدره ،14.73 %، وانخفضت في حالة الحركة االهتزازية إلى الترتيبعلى %0.3و %2.12قدره

أن متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية في حالة الحركة اإلجمالية، عند استخدام أظهرت نتائج البحثارتفع إلى ساعة 41وساعة 24لمدة ⁰م 4/ مل من أنزيم الكاتاالز قبل الحفظ على الدرجة U 25التركيز ، أي بفارق %13.09و %11.94على التوالي مقارنة مع الشاهد الذي بلغ هذا المتوسط عنده %14.1و 65.30%/ مل فقد بلغ المتوسط السابق في حالة U 155على التوالي. أما عند استخدام التركيز %1.24و %1.21قدره

على %4.51و %2.51على الترتيب، أي بفارق قدره %12.02و %65.22الحركة االجمالية ولنفس الفترتين ويفسر سبب زيادة الحركة االجمالية للحيوانات المنوية عند إضافة الكاتاالز إلى ممددات السائل المنوي قبل التوالي.

نه يقلل ، كما أنيللماء األوكسجيبفاعليته في حماية الحيوانات المنوية من التأثير السام ⁰م 4حفظه على الدرجة الحمض النووي ويقلل نسبة الحيوانات المنوية الميتة تخريبيمنع ، و (Chi et al., 2008)من إنتاج الجذور الحرة

.(Fernandez – Santos, 2008) تحت ظروف االجهاد التأكسدي


المعامالت

الحركية


c 9.23d 20.14c 88.64 53.60 d 6.82 f 23.14d 83.56 58.77 الشاهد

25U مل/CAT 59.49 c 10.55 c 20.31c 90.35 53.90 d 7.98 e 22.92d 84.8

155Uمل/

CAT

94.10 a 14.10 a 12.47a 90.72 95.22 b 12.12 b 14.73b 87.57


وبمقارنة نتائج هذا البحث مع نتائج دراسات أخرى تبين أن متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية المتحركة ساعة 41و 24درجة مئوية لمدة 4/ مل من الكاتاالز والحفظ على الدرجة U 155حركة إجمالية عند إضافة أن متوسط الحركة هذه الدراسة(، إذ بينت نتائج Partyka et al., 2015) نتائج دراسةكانت أعلى بالمقارنة مع 24لمدة ⁰م 0/مل إلى ممددات السائل المنوي للدجاج قبل حفظه على الدرجة U 155االجمالية عند إضافة

على %95.6و %90.6بينما بلغت هذه القيم في عينة الشاهد الترتيبعلى % 9052و% 22.1 ، بلغساعة 41وجمالية عند إضافة الكمية السابقة إلى ممددات السائل المنوي ات أخرى ان الحركة اإلنتائج دراس التوالي. ووجدت

(.(Moghbeli et al., 2016 %26531للديك قبل حفظه بالتجميد بلغت

ساعة بعد إضافة مزيج من 48و 24في السائل المنوي المبرد لمدة حركية الحيوانات المنوية-5-1-4-7 مضادات األكسدة:

ضافة كمية من مزيج )مزج السائل المنوي لديكة كل مكرر عمليةأظهرت نتائج البحث بعد أربعة ديوك( وا ( وحفظها Cوالسيلينوم +الكاتاالز + فيتامين Eالسائل المنوي مع كمية مماثلة من مزيج مضادات األكسدة )فيتامين

وكانت هذه الزيادة .إلى زيادة في الحركة السريعة والبطيئة ساعة، أدت 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4على الدرجة ملغ/مل( بالمقارنة مع المزيج الذي يحتوي الفيتامين 0) Cأعلى في المزيج الذي يحتوي كمية قليلة من فيتامين

وي تاالهتزازية فقط عند إضافة المزيج الذي يح في الحركةملغ /مل(، بينما أدت إلى زيادة 15السابق بتركيز ) ( يوضح النتائج التي تم التوصل إليها.11-3) ساعة. والجدول 41لمدة وقبل حفظه Cفيتامين التركيز السابق من

( كاتاالز مل U / 25/مل + Se ملغ E +5.9 ملغ C+0 ملغ/مل0) يتضح من الجدول أن إضافة المزيجحيث ساعة، أدت إلى زيادة النسبة المئوية للحيوانات 24لمدة ⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة

، كما ارتفعت النسبة %14.00، بفارق قدره %73.03عند الشاهد إلى %58.48المنوية المتحركة حركة سريعة من ، أما في حالة الحركة االهتزازية %4.16أي بمقدار %13.79إلى %9.60المئوية في حالة الحركة البطيئة من

.%1.39، أي بفارق %6.99إلى %10.30خفضت هذه النسبة من فقد ان

4أن إضافة التركيز السابق من المزيج إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة الجدول وتبين منإلى % 53.77ساعة أدت وبالمقارنة مع الشاهد إلى زيادة النسبة المئوية في حالة الحركة السريعة من 41لمدة ⁰م

11.33إلى % 7.68، كما ارتفعت النسبة المئوية في حالة الحركة البطيئة من %19.40بفارق قدره % 70.22

، بفارق قدره %9.74إلى %18.82، في حين انخفضت النسبة في حالة الحركة االهتزازية من %3.90، بفارق %6.51%.


عد إضافة مزيج من ساعة ب 48و 24برد لمدة حركية الحيوانات المنوية في السائل المنوي الم(: 11-3جدول ) مضادات األكسدة %.

(.p<0.001بجانب المتوسطات في األعمدة تعني وجود فروق معنوية ) المتباينة*الحروف

مل كاتاالز( U / 25/مل + Se ملغ E +5.9 ملغ C+0 ملغ/مل10إضافة المزيج )أن (11-3بين الجدول)ويساعة، وبالمقارنة مع الشاهد، ارتفعت النسبة المئوية المدروسة في حالة 24لمدة ⁰م4قبل الحفظ على الدرجة

، %11.52، كما ارتفعت هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة إلى %3.6، بفارق قدره %62.38الحركة السريعة إلى .%3.0 ، بفارق قدره11.85، في حين انخفضت في حالة الحركة االهتزازية إلى %1.62بفارق قدره

41لمدة ⁰م 4إضافة التركيز السابق من المزيج قبل الحفظ على الدرجة ه عند( أن11-3كما يتبين الجدول)، بفارق %56.14ساعة وبالمقارنة مع الشاهد، ارتفعت النسبة المئوية المدروسة في حالة الحركة السريعة إلى

، باإلضافة إلى ارتفاع في %5.53بفارق %7.71، كما ارتفعت هذه النسبة في حالة الحركة البطيئة إلى 2.32% .%5.49بفارق %19.28 لتصبحالحركة االهتزازية

متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية ( أن11- 3كما أظهرت نتائج البحث استنادًا إلى معطيات الجدول ) U / 25/مل+ Se ملغ E +5.9 ملغ C+0 ملغ/مل0ة الحركة اإلجمالية، عند استخدام المزيج بالتركيز )في حال

على التوالي %61.26و %63.11ارتفع إلى ساعة 41وساعة 24لمدة ⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة (كاتاالز ملعلى %11.52و %15.31، أي بفارق %15.22و %13.43مقارنة مع الشاهد الذي بلغ هذا المتوسط عنده

( من المزيج مل كاتاالز U /25/مل + Se ملغ E +5.9 ملغ C+0 ملغ/مل10أما عند استخدام التركيز ) التوالي.


الحركية%

المعامالت


58.48d 9.60c 15.35d 83.43 53.77f 7.68 d 18.82e 80.27 الشاهد

E ملغ C+0 ملغ/مل0

/مل Se ملغ 5.9+ +25 U / ملCAT

73.03 a

13.79a

6.99 a

93.81

70.22b

11.33b

9.74 b

91.29

E ملغC+0 ملغ/مل15

25/مل+ Se ملغ 5.9+

U/ ملCAT

62.38 c

11.52b

11.85c

85.75

56.14e

7.71 d

19.28e

83.13


، بفارق %13.13و %10.20 نفسهما الفترتين الزمنيتينو فقد بلغ المتوسط السابق في حالة الحركة االجمالية ة مع الشاهد.على التوالي مقارن%2.19و 2.32%

فسر زيادة الحركة اإلجمالية عند إضافة مزيج من مضادات األكسدة إلى ممددات السائل المنوي قبل حفظه وت( بضرورة 2510خرون )آو Hlungwaniري بين مضادات االكسدة المختلفة ، حيث أوصى التآز بالتبريد إلى الفعل

( أن 2512) Ebeidإضافة مزيج من مضادات األكسدة لمنع حدوث تشوهات في الحيوانات المنوية ، إذ بين مع السيلينوم يعزز نشاط جلوتاثيون بيروكسيداز في البالزما المنوية عند التعرض لإلجهاد Cمن فيتامين اً مزيج

معًا يخفف التأثير السلبي لإلجهاد التأكسدي Cو Eأن إضافة فيتامين الحراري وذلك عند ذكور الدجاج، كما تبين -aوذلك بإرجاع الجذر Eعلى زيادة فعالية فيتامين C(، إذ يعمل فيتامينMin et al,2016عند الديك )

tocopherol (a-TO( )Ryan et al., 2010.)

: تقدير النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة:0-1-5

: النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج:5-1-5-1

( عدم وجود فروق معنوية في متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة بين المجموعات 12-3يبين الجدول ) (.P>0.05المدروسة )

في السائل المنوي الطازج.( النسبة المئوية لمتوسط الحيوانات المنوية الميتة 12-3جدول)

نسبة الحيوانات المنوية الميتة% المجموعات

A 2.798 a

B 2.771 a

C 2.522 a

D 2.748 a

2.25 المتوسط العام

(P>0.05*الحروف المتشابهة بجانب المتوسطات تدل على عدم وجود فروق معنوية )

، إذ بلغت Aحيث يتضح أن أعلى قيمة لمتوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة سجلت في المجموعة ، وبلغت قيم %2.022 ما ًيقرب منبلغت إذ، C، في حين سجلت أقل قيمة في المجموعة %2.261 ما ي قرب من

ا بلغ قيمة المتوسط العام للنسبة ( على التوالي. كم%2.748( و )2.771%) Dو Bهذا المتوسط في المجموعات .% 2.25المئوية للحيوانات المنوية الميتة


نوية من متوسط النسبة المئوية للحيوانات الموبالمقارنة مع نتائج دراسات أخرى تبين أن قيمة هذا المتوسط أقل أقل من اكما أنه، (Zahraddeen et al., 2005( )%19.12الميتة في السائل المنوي الطازج للديك الرومي )

White breasted (14.03% ،)(، و% 12.09) White(، و% 11.62) Pearlسالالت مختلفة من دجاج غينيا، (. Lavender 12.16% )Keerthy et) al.,2016 (و

د:والمبر الممدد : النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج5-1-5-2

لتأثير حفظ السائل المنوي الممدد بالتبريد على نسبة الحيوانات المنوية الميتة، فقد أظهرت نتائج أما بالنسبة إلى زيادة في نسبة الحيوانات ساعة أدى 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4البحث أن حفظ السائل المنوي على الدرجة

( 12-3ساعة. ويتضمن الجدول ) 24مع ساعة بالمقارنة 41المنوية الميتة، وكانت الزيادة أكبر عند الحفظ لمدة النتائج التي تم التوصل إليها.

ساعة. 48و 24والمبرد لمدة الممدد الطازج(: متوسط % للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي 13-3جدول)

الحيوانات المنوية الميتة% المعامالت

a 2.75 طازج

b 11.35 ساعة 24المبرد لمدة

c 16.59 ساعة 41لمدة المبرد

(.P<0.001بجانب كل متوسط تدل على وجود فروق معنوية ) المتباينة*الحروف

ساعة، أدى 24لمدة ⁰م 4أن حفظ السائل المنوي الممدد على الدرجة (13-3)يتضح من الجدول رقم إذ ، % 11.30إلى %2.20إلى زيادة في نسبة الحيوانات المنوية الميتة من الطازج،وبالمقارنة مع السائل المنوي

ساعة إلى زيادة 41ولمدة على درجة الحرارة نفسها، كما أدى حفظ السائل المنوي الممدد %1.9أي بفارق قدره ازج الممدد.بالمقارنة مع السائل المنوي الط %13.14، أي بفارق %19.06نسبة الحيوانات المنوية الميتة إلى

وبمقارنة نتائج هذه الدراسة مع نتائج دراسات أخرى تبين أن نسبة الحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي قيمة هذا المتوسط في السائل المنوي للدجاج عند الحفظ بلغت، حيث الطازج والمبرد أقل بالمقارنة مع دراسات أخرى

لكل ا المتوسطبلغت قيمة هذ(، و Partyka et al., 2015) % 15.2ساعة حوالي 24لمدة ⁰م 0على الدرجة %15.94من الديك السوري األسودساعة للنمط 41لمدة ⁰م4والمبرد على الدرجة ،المنوي الطازج السائل من . (2510على التوالي )شعبان وجبور، %19.16و

نوي المبرد الميتة في السائل الم للحيوانات المنويةالزيادة في النسبة المئوية أن كميةتبين من خالل هذا البحث أكده وهذا ما ،التوالي( على %13.14و %1.9) ساعة بلغت 41و 24مدة الحفظ ل الطازج عندبالمقارنة مع


Dumpala ن يعند الهج %0حوالي بلغتالزيادة هذهقيمة و أن وجد إذ ( في دراستهم، 2559) وآخرونRoss ، (.2510)شعبان وجبور،%9.23األسود للديك السوري في النمطبلغت بينما

: النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز 5-1-5-3 :Cمختلفة من فيتامين

إلى Cعلى نسبة الحيوانات المنوية الميتة، أن إضافة فيتامين Cأظهرت نتائج البحث بالنسبة لتأثير فيتامين ساعة أدت إلى انخفاض في نسبة الحيوانات 41و 24لمدة ⁰م 4ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة

لغ /مل م 15ملغ /مل، في حين ارتفعت هذه النسبة عند زيادة التركيز إلى 0المنوية الميتة، عند إضافته بالتركيز ( يوضح النتائج التي تم التوصل إليها.14-3والجدول رقم )

ساعة بعد 48و 24(: متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد لمدة 14-3جدول) .Cإضافة تراكيز مختلفة من فيتامين


الميتة المعامالت %للنطاف

18.63 b 22.67 c

الشاهد

C 14.95 a 19.10 b / ململغ 0

C/ ململغ 1523.81 c

32.54 d

((P<0.001بجانب كل متوسط تدل على وجود فروق معنوية المتباينة*الحروف

إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ Cملغ / مل من فيتامين 0( أن إضافة 14-3يتضح من الجدول رقم )ساعة أدت وبالمقارنة مع الشاهد، إلى انخفاض في نسبة الحيوانات المنوية الميتة من 24لمدة ⁰م 4على الدرجة

إلى C، كما يتبين من الجدول أن إضافة التركيز السابق من فيتامين %3.91، بفارق %14.95إلى % 18.63ساعة أدت إلى انخفاض في نسبة الحيوانات 41لمدة على درجة الحرارة نفسهاالحفظ ممددات السائل المنوي قبل

.%3.02، أي بفارق % 19.10إلى % 22.67المنوية الميتة من

ساعة، ازدادت 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4قبل الحفظ على الدرجة Cملغ /مل من فيتامين 15أما عند إضافة الترتيبعلى %6.12و %0.11التوالي، أي بفارق على 32.04و % 23.81 نسبة الحيوانات المنوية الميتة إلى

ير تتوافق نتائج ارتباط التأث .عند إضافته بتراكيز عالية Cوهذا يعود إلى التأثير الضار لفيتامين مقارنة مع الشاهدمع زيادة نسبة الحيوانات المنوية الميتة مع نتائج دراسة ،عند عدم إضافته بكمية مناسبة Cالضار لفيتامين Asmarawati أنه عند إضافة فيتامين دو(، حيث وج 2515) وآخرينC إلى ممددات السائل المنوي للدجاج


، و % 12.04بلغت نسبة الحيوانات المنوية الميتة ،ساعة 24/ مل قبل الحفظ لمدة ملغ 2.0 –0 -2.0بتراكيز ، كما بينت أنه عند %15.29على التوالي، في حين انخفضت قيمتها في عينة الشاهد إلى %13.1، و 11.61%

ساعة 41لمدة ⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة Cإضافة التراكيز السابقة من فيتامين لقيمة في على التوالي، بينما انخفضت هذه ا %24.14، %24.0، %29.24يوانات المنوية الميتة بلغت نسبة الح

.%22.99عينة الشاهد إلى

: النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز 5-1-5-4 :Eمختلفة من فيتامين

إلى Eعلى نسبة الحيوانات المنوية الميتة، أن إضافة فيتامين Eأظهرت نتائج البحث بالنسبة لتأثير فيتامين ساعة أدت إلى انخفاض في نسبة الحيوانات 41و 24لمدة ⁰م 4ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة . والجدول رقم ملغ /مل 0غ /مل بالمقارنة مع التركيز مل 15التركيز المنوية الميتة، وكان هذا االنخفاض أكبر عند

( يوضح النتائج التي تم التوصل إليها.3-10)

48و 24( متوسط النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج والمبرد لمدة 15-3جدول) . Eساعة بعد إضافة تراكيز مختلفة من فيتامين


للنطاف الميتة% المعامالت

17.19 g

21.86 j الشاهد

ملغ/ مل 0 13.18 d 17.80 h

ملغ/ مل 15 10.22 b 14.41 e

.(P<0.001بجانب المتوسطات تدل على وجود فروق معنوية ) المتباينةلحروف *ا

إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ Eملغ/ مل من فيتامين 0( أن إضافة 10-3يتضح من الجدول رقم)أدت وبالمقارنة مع الشاهد، إلى انخفاض في نسبة الحيوانات المنوية الميتة من ،ساعة 24لمدة ⁰م 4على الدرجة

إلى E، كما يتبين من الجدول أن إضافة التركيز السابق من فيتامين % 4.51، بفارق % 13.11إلى % 12.16إلى انخفاض في نسبة الحيوانات ، أدتساعة 41لمدة على درجة الحرارة نفسهاممددات السائل المنوي قبل الحفظ

بل ق Eملغ/ مل من فيتامين 15. وعند إضافة % 4.59، أي بفارق %12.15إلى % 21.19المنوية الميتة من %15.22ساعة، انخفضت نسبة الحيوانات المنوية الميتة إلى 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4الحفظ على الدرجة

مقارنة مع الشاهد. الترتيبعلى % 2.40و % 9.62على التوالي، أي بفارق %14.41و


ل المنوي قبل إلى ممددات السائ Eوتتفق نتائج انخفاض نسبة الحيوانات المنوية الميتة عند إضافة فيتامين أن عند إضافة وجدوا حيث(، 2515) وآخرين Asmarawatiالحفظ بالتبريد وبالمقارنة مع الشاهد مع دراسة

( إلى ممددات السائل المنوي للدجاج قبل الحفظ m M ،5.3 m M ،5.0 m M 5.1بالتراكيز ) Eفيتامين %11.91، و %22.16، و %16.91بلغت نسبة الحيوانات المنوية الميتة ،ساعة 41لمدة ⁰م 4على الدرجة

.%22.99على التوالي، بينما بلغت هذه القيمة في عينة الشاهد

: النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز 5-1-5-5 :E+Seمختلفة من فيتامين

Eعلى نسبة الحيوانات المنوية الميتة، أن إضافة فيتامين E +Seأظهرت نتائج البحث بالنسبة لتأثير فيتامين +Se ساعة أدت إلى انخفاض في نسبة 41و 24لمدة ⁰م 4إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة

/ مل(، Seملغ E +5.9ملغ 0)بالتركيز همإضافتالحيوانات المنوية الميتة، وكان هذا االنخفاض أكبر عند ( يوضح النتائج التي تم التوصل إليها.19-3. والجدول رقم )/ مل(Seملغ E +5.9ملغ 15بالمقارنة مع المزيج )

المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز النسبة (16- 3جدول ) :+ ESeمختلفة من فيتامين


للنطاف الميتة%المعامالت

17.19 g

21.86 j الشاهد

a 12.13 c 8.26 / مل Seملغ E +5.9ملغ 0

f 20.97 i 16.27 ملSe/ ملغ E +5.9 ملغ 10

.(P<0.001لحروف المتباينة بجانب المتوسطات تدل على وجود فروق معنوية )*ا

/ مل( إلى Seملغ E +5.9ملغ 0( أن إضافة )19-3نتائج البحث أيضًا من خالل معطيات جدول )وتظهر ساعة، أدت وبالمقارنة مع الشاهد إلى انخفاض 41و 24لمدة ⁰م 4ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة

%1.63رتيب، بفارق قدره على الت % 12.13و %1.29في نسبة الحيوانات المنوية الميتة التي بلغت قيمتهامل( فقد بلغت نسبة الحيوانات المنوية Se/ملغ E +5.9ملغ (10على الترتيب. أما عند استخدام التركيز %6.23و

على التوالي %5.16و %5.62على التوالي، أي بفارق %20.97و %16.27الميتة ولنفس الفترتين الزمنيتين مقارنة مع الشاهد.


إلى ممددات السائل المنوي Eنسبة الحيوانات المنوية الميتة عند إضافة السيلينوم مع فيتامين تتفق نتائج انخفاض (، التي 2519وآخرين ) Safaمن دون السيلينوم مع نتائج دراسة Eقبل حفظه بالتبريد بالمقارنة مع إضافة فيتامين

مددات السائل المنوي قبل حفظه، بلغت سيلينوم إلى م E +1%ملغ / مل من فيتامين 5.550بينت أنه عند إضافة . و يفسر سبب زيادة %36.42، بينما بلغت هذه القيمة في عينة الشاهد %11.04نسبة الحيوانات المنوية الميتة

Seملغ 5.9مع Eملغ من فيتامين 15ساعة من الحفظ عند مزج 41و 24نسبة الحيوانات المنوية الميتة خالل ن أ المنخفضة، بأن إضافتهما معًا بشكل فائض سببت تلفًا في الحيوانات المنوية، كما تبينبالمقارنة مع التراكيز

إضافة السيلينوم إلى السائل المنوي لذكور دجاج اللحم بتراكيز عالية سببت ضررًا في الحيوانات المنوية وأثرت على المنوي خالل تشكل الحيوانات المنوية جودتها، كما وجد أن هذا المعدن داخل الجسم الحي يحسن نوعية السائل

(.Barber et al., 2005بشكل مباشر، بداًل من إضافته مباشرًة إلى الحيوانات المنوية)

: النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة تراكيز 5-1-5-6 مختلفة من فيتامين كاتاالز:

ة لتأثير الكاتاالز على نسبة الحيوانات المنوية الميتة أن إضافة أنزيم الكاتاالز إلى أظهرت نتائج البحث بالنسبساعة، أدت إلى انخفاض في نسبة الحيوانات 41و 24لمدة ⁰م 4ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة

( يبين النتائج 17-3والجدول رقم )/ مل الكاتاالز. U 155المنوية الميتة، وكان هذا االنخفاض أكبر عند إضافة التي تم التوصل إليها.

48و 24لمدة ⁰م 4(: متوسط % للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج والمبرد على الدرجة 17-3جدول) ساعة بعد إضافة تراكيز مختلفة من أنزيم الكاتاالز.


الميتة للنطاف% المعامالت

11.35 b 16.59 d الشاهد

25 U 9.65 / مل كاتاالز a 15.20 c

155 U مل كاتاالز / 9.15 a 12.02 b

(P<0.001بجانب المتوسطات تدل على وجود فروق معنوية ) المتباينة*الحروف

/ مل من الكاتاالز إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ U 25( أن إضافة 12-3يتضح من الجدول رقم )أدت وبالمقارنة مع الشاهد، إلى انخفاض في نسبة الحيوانات المنوية الميتة من ،ساعة 24م لمدة 4على الدرجة

، كما يتبين من الجدول أن إضافة التركيز السابق من أنزيم الكاتاالز إلى %1.2، بفارق % 9.65إلى 11.35%


أدت إلى انخفاض في نسبة الحيوانات المنوية ،ساعة 41لمدة نفسها ددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة مم .%1.36، أي بفارق % 15.20إلى % 16.59الميتة من

ساعة، 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4/ مل من الكاتاالز قبل الحفظ على الدرجة U 155أما عند استخدام التركيز %2.2على التوالي، أي بفارق % 12.52و % 9.15سبة الحيوانات المنوية الميتة إلى انخفضت نفقد سبة تبين أن ن ،وبمقارنة نتائج هذا البحث مع نتائج دراسات أخرى مقارنة مع الشاهد. الترتيبعلى %4.02و

41و 24درجة مئوية لمدة 4/ مل من الكاتاالز والحفظ على الدرجة U 155الحيوانات المنوية الميتة عند إضافة أن نسبة الحيوانات هذه الدراسة(، إذ وجدت نتائج Partyka et al., 2015ساعة كانت أقل بالمقارنة مع دراسة )

24مدة ل ⁰م 0/مل إلى ممددات السائل المنوي للديك قبل حفظه على الدرجة U 155المنوية الميتة عند إضافة على %19.1و %15.2على التوالي بينما بلغت هذه القيم في عينة الشاهد % 6.2و % 2.2ساعة بلغت 41و

. ووجدت نتائج دراسات أخرى ان نسبة الحيوانات المنوية الميتة بلغت عند إضافة الكمية السابقة إلى ممددات الترتيب (.(Moghbeli et al., 2016 %25.92السائل المنوي للديك قبل حفظه بالتجميد بلغت

: النسبة المئوية للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي المبرد بعد إضافة مزيج من 5-1-5-7 مضادات األكسدة:

4أظهرت نتائج البحث أن إضافة مزيج مضادات األكسدة إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة لغ عندما باالنخفاض أكبر وكان هذا ، الميتةة الحيوانات المنوية انخفاض نسب ساعة أدت، إلى 41و 24لمدة ⁰م

.إليها ( النتائج التي تم التوصل11-3ملغ /مل. ويتضمن الجدول ) 0في المزيج Cتركيز فيتامين

48و 24لمدة ⁰م4( متوسط % للحيوانات المنوية الميتة في السائل المنوي الطازج والمبرد على الدرجة 18-3جدول) ساعة بعد إضافة مزيج من مضادات األكسدة.

مل U / 25/مل + Se ملغ E +5.9 ملغ C+0 ملغ/مل0أن إضافة المزيج ) (11-3)يتضح من الجدول رقم

ساعة، أدت 24لمدة ⁰م 4( من مضادات األكسدة إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على الدرجة كاتاالز، %15.11، بفارق % 5.80إلى % 15.98وبالمقارنة مع الشاهد إلى انخفاض نسبة الحيوانات المنوية الميتة من


المعامالت %للنطاف الميتة 15.98 d 19.26 f

الشاهد

a 8.94 b 5.80 /مل كاتاالزU 25/مل + Se ملغ E +5.9 ملغ C+0 ملغ/مل0

c 17.12 e 14.26 مل كاتاالز U/ 25/مل+ Se ملغ E +5.9 ملغ C+0 ملغ/مل15


كما يتبين أن إضافة التركيز السابق من المزيج إلى ممددات السائل المنوي قبل الحفظ على نفس درجة الحرارة لمدة ، أي بفارق قدره % 8.94إلى % 19.26حيوانات المنوية الميتة من في نسبة ال إنخفاضساعة أدت إلى 41

E +5.9 ملغ C+0 ملغ/مل10عند إضافة المزيج بالتراكيز )أنه (11-3و يتبين من الجدول رقم ) .15.32%

ساعة، انخفضت نسبة 41ساعة و 24لمدة ⁰م 4( قبل الحفظ على الدرجة مل كاتاالز/ U 25/مل + Se ملغعلى % 2.14و %1.22على التوالي، أي بفارق قدره % 17.12و % 14.26الحيوانات المنوية الميتة إلى

ومن حيث ارتباط تحسن خصاص السائل المنوي وانخفاض نسبة الحيوانات المنوية الميتة بإضافة مزيج .الترتيبوجد أنه من الضروري إذ(، 2512) رينوآخ Vickram مع نتائجج هذه الدراسة من مضادات االكسدة، تتوافق نتائ

الكاتاالز( مع البيبتيدات المضادة للميكروبات الى ممددات , E , Cإضافة مزيج من مضادات االكسدة )فيتامين السائل المنوي قبل حفظه لتحسين القدرة االخصابية، والحد من نسبة الحيوانات المنوية الميتة ومن التلوث الميكروبي

.والحفاظ على خصائص السائل المنوي


بعد إضافة أنواع مختلفة من ساعة 48و 24لمدة ⁰م 4السائل المنوي المبرد على الدرجة صفات: 5-1-6 :مضادات األكسدة

.%ساعة 48و 24لمدة الحفظبعد موت( المبرد-)حركية السائل المنوي صفات(: 19-3لجدول)ا

الصفات

المعامالت

ساعة 24الزمن ساعة 41الزمن

نسبة الحركية %النطاف الميتة%

نسبة الحركية %النطاف الميتة%

اهتزازية بطيئة سريعة اهتزازية بطيئة سريعة

E

mg/ml

0 59.4c 11.24d 16.17c 13.1d 54.98ef

8.79 g

18.43ed

17.8h

15 62.68b 12.76c 14.43b 10.2b 57.60d 9.86 e 17.25d 14.4e

E+Se

mg/

ml

0E+5.9 Se 65.06a 17.65a 9.09 a 8.26a 59.16c 15.85b 12.86b 12.1c

0E+5.9 Se 56.21d 9.30fg 18.22de 16.2f 51.96g 6.22 h 20.64f 20.97i

C

mg/ml

5 58.97a 11.79a 14.26a 14.9a 52.07c 10.12bc 18.98b 19.1b

10 41.00e 10.26b 22.45c 23.8c 29.94 f 8.249d 30.61d 32.5d

CAT

U/ml 25 59.49c 10.55c 20.31c 9.65a 53.90 d 7.98 e 22.92d 15.2c

155 64.15a 14.10a 12.47a 9.15a 60.72 b 12.12b 14.73b 12.0b

المزيج

mg/

ml

0C+0E+ +Se0.625

U CAT

73.03a

13.79a

6.99 a

5.80a 70.22 b 11.33b 9.74 b

8.94 b

15C+0E+ +Se0.625

U CAT

62.38c 11.52b 11.85c 14.26c

56.14 e 7.71d 19.28e 17.12e


:صفات السائل المنوي الطازج للمجموعات المدروسة: 5-1-7

المدروسة .صفات السائل المنوي الطازج للمجموعات (: 24- 3)الجدول

(.P>0.05* الحروف المتشابهة بجانب المتوسطات في العمود تعني عدم وجود فروق معنوية )

عند )ومن الجدير بالذكر أنه لم تالحظ أية فروق معنوية داخل أو بين المكررات في كافة المؤشرات المدروسة تثبيت التركيز وزمن الحفظ(، كما أنه لم يالحظ أية فروق معنوية بين المجموعات المدروسة وهو أمر طبيعي وسليم

باينة.طالما أن جميع الديوك ال تنتمي إلى سالالت أو مجموعات مت

الصفات

المجموعات

حجم القذفة

مل

اللون

عدد النطاف

نطفة/مل

تركيز النطاف

مليار نطفة

ب مل

النطاف الميتة

%

الحركية%

اإلجمالية االهتزازية بطيئة سريعة

A 0.64a أبيض

لؤلؤي

293.2 a 5.864a 2.798a 76.77a 8.216a 6.882a 91.868

B 0.69a أبيض

لؤلؤي

292.0 a 5.84a 2.771a 76.37a 8.214a 7.210a 91.794

C 0.68a أبيض

لؤلؤي

292.6a 5.852a 2.522a 76.35a 7.776a 7.943a 92.069

D 0.67a أبيض

لؤلؤي

293.1a 5.862a 2.748a 76.42a 8.125a 7.290a 91.835

المتوسط اإلجمالي

أبيض 0.67

لؤلؤي

292.75 5.8545a 2.70 76.47 8.08 7.33 91.89


الفصــــــــــــــل الرابـــــــــــــــــع

والمقترحاتاالستنتاجات


Conclusions and Suggestions والمقترحاتاالستنتاجات -6

:Conclusions االستنتاجات: 6-1

ركة الشاهد على الحالتأثير اإليجابي إلضافة مضادات األكسدة إلى ممددات السائل المنوي بالمقارنة مع اإلجمالية، وانخفاض نسبة الحيوانات المنوية الميتة.

إضافة مضادات األكسدة كمزيج كان له األثر األفضل في جودة السائل المنوي، علمًا بأن إضافة فيتامينE .مع السيلينوم أعطت نتيجة مقاربة للمزيج، لذلك يفضل االستغناء عن المزيج توفيرًا للكلفة والزمن

لمدة ⁰م 4أفضل مدة زمنية للحفاظ على جودة السائل المنوي المخزن كانت عند التخزين على الدرجة ساعة. 24

⁰م 4تفوق السائل المنوي الطازج الممدد في خصائصه على السائل المنوي الممدد المبرد على الدرجة

:Suggestions المقترحات 6-2

منها على حدة الى ممددات السائل المنوي قبل حفظه بالتبريد.إضافة مضادات األكسدة كمزيج وليس كل

.االستمرارية في دراسة تأثير مضادات األكسدة األخرى على الحيوانات المنوية

البحث عن طرق أخرى إلضافة مضادات االكسدة لالستفادة من جودتها في الحد من اإلجهاد التأكسدي للحيوانات المنوية.

في أعمار مبكرة لتعويدها على الجمع وبالتالي تجنب تعرضها لإلجهاد، للحفاظ ضرورة تدريب الديوك على جودة السائل المنوي.

منوي على صفات السائل ال لتفوقه فيإيالء االهتمام باألبحاث التي تتناول الدجاج السوري المحلي نظرًا نظيره في العديد من البلدان األخرى.


المراجع


Reference المراجع-7

: المراجع العربية7-1تأثير استخدام التلقيح الصناعي على الخصوبة عند الدجاج . 2510 -2519، ميسون؛ جبور، زهير. شعبان-1

ص. 99 تشرين،رسالة ماجستير، كلية الزراعة، جامعة السوري المحلي.

: المراجع األجنبية:2 -71- ABOAGLA, E. M. and TERADA, T. (2004). Effects of egg yolk during the freezing

step preservation on the viability of goat spermatozoa. Theriogenology. 62: 1160-1172.

2- ADEBIYI, O. A; ALIU, O. T; MAJEKODUNMI, B. C. and ADENIJI, O. A. (2014).

Effect of vitamin E and selenium on fertility, hatchability and survivability of turkeys. J

Anim Sci Adv. 4: 955.

3- AGARWAL, A; GUPTA, S. and SIKKA, S. (2006). The role of free radicals and

antioxidants in reproduction. Current Opinion in Obstet and Gyn.18:325-332.

4- AGARWAL, A. and SEKHON, L. H. (2010). The role of antioxidant therapy in the

treatment of male infertility. Hum. Fertil.13: 217–255. 5- AGARWAL, A; VIRK, G; ONG, C. and DUPLESSIS, S. S. (2014). Effect of

oxidative stress on male reproduction. The world journal of men's health.32: 1-17.

6- AITKEN, R. J. and KRAUSZ, C. (2001). Oxidative stress, DNA damage and the Y

chromosome. Reproductio.122:497 -506.

7- AlMahdi, A. B; ONDHO, Y. S. and SUTOPO, S. A. (2014). Comparative Studies of

semen Quality on Different Breed of Chicken in Poultry Breeding Center Temanggung-

Central Java. International Refereed Journal of Engineering and Science (IRJES). 3(2):

94-103.

8- ALOMAR, M; ALZOABI, M. and ZARKAWI, M. (2016). Kinetics of hydrogen

peroxide generated from live and dead ram spermatozoa and the effects of catalase and

oxidase substrates addition. Czech J. Anim. Sci. 61 (1): 1–7.

9- ALSAMARAI, F. R; AL-GANABI, T. K; AL-NEDAWI, A. M. and AL-SOUDI, K.

A. (2009). Geneyic Evaluation of Roosters According to Semen Index for Hatchability

Fertility and Individul Semen Traits. Journal of Agricultural and Biological Science.

4(4).

10- ALVAREZ, J. G. and STOREY, B. T. (1983). Taurine, hypotaurine,epinephrine

and albumin inhibit lipid peroxidation in rabbit spermatozoa and protect against loss

of motility. Biol Repro. 29: 548 -555.


11- ALVAREZ, J. G. and STOREY, B. T. (1992). Evidence for increased lipid

peroxidative damage and loss of superoxide dismutase activity as a mode of sub-lethal

cryodamage to human sperm during cryopreservation. J Androl. 13: 232-241.

12- AMEEN, S. A; OPAYEMI, O. S. AJAYI, J. A. and ADEDIWURA, M. A. (2014).

Evaluation of Semen Quality of Five Different Cockerel Breed used in Poultry Industry

in Nigeria. Journal of Environmental Issues and Agriculture in Developing Countries.

6(1). 30-36.

13-AMINI, M. R; KOHRAM, H; ZARE SHAHANEH, A; ZHANDI, M; SHARIDEH,

H. and NABI, M. M. (2015a). The effects of different levels of vitamin E and vitamin C

in modified Beltsville extender on rooster post-thawed sperm quality. Cell Tissue

Banking.16: 587-592.

14- ANDRABI, S. and MAXWELL, W. (2007). A review on reproductive

biotechnologies for conservation of endangered mammalian species. Anim Reprod Sci.

99:223–43.

15- ARGOV, N; SKLAN, D; ZERON, Y. and ROTH, Z. (2007). Association

betweenseasonal changes in fatty-acid composition, expression of VLDLreceptor and

bovine sperm quality. Theriogenology. 67: 878–885.

16- ASADPOUR, R. J. and NASRABADI, H. T. (2011). Influence of added vitamin C

andvitamin E on frozen-thawed bovine sperm cryopreserved in citrateand Tris-based

extenders. Vet. Res. Forum 2: 37–44.

17- ASMARAWATI, W; ISMAYA, Y. and UWANTA, T. (2010). The effect of adding

vitamin C and E in native chicken semen extender storage at temperature 4 C0 on semen

quality and egg fertility .Faculty of animal science, Universitas Gadjah mada. 308-313.

18- AVOUAC, J; BORDERIE, D; EKINDJIAN, O. G; KAHAN, A. and ALLANORE,

Y. (2010). High DNA oxidative damage in systemic sclerosis. J Rheumatol. 37: 2540-

2547.

19- AYINDE, O. A; OGUNNOWO, S. and OGEDEGBE, R. A. (2012). Influence of

Vitamin C and Vitamin E on testicular zinc content and testicular toxicity in lead

exposed albino rats. BMC Pharmacology and Toxicology.13 (17): 1-8.

20- AZAWI, O. I. and HUSSEIN, E. K. (2013). Effect of vitamin C or E

supplementation to tris diluent on the semen quality of Awassi rams preserved at 5oc.

Journa Llistvet Res. 4(3): 157-160. 21- AZIZ, N; SALEH, R. A; SHARMA, R. K; LEWIS-JONES, I; ESFANDIARI, N.

and THOMAS, A. J. (2004). Novel association between sperm reactive oxygen species

production, sperm morphological defects and the sperm deformity index. Fertil.

Steril.81: 349-354.


22- BAH, G. S; CHAUGHARI, S. U. R. and Al-Amin, J. D. (2001). Semen

characteristics of local breeder cocks in the Sahel region of Nigeria. Revue delevageet

de medecine veterinaire des pays tropicaux. 54: 153-158.

23- BAILEY, J. L; MORRIE, A. and CORMIER, N. (2003). Semen cryopreservation:

success and persistent in farm species. Canadian J. Anim. Sci.83: 393−401.

24- BAIOMY, A. A; MOHAMED, A. E. A. and MOTTELIB, A. A. (2009). Effect of

dietary selenium and vitamin E supplementation on productive and reproductive

performance in rams. Bs Vet Med J. 19:39-43.

25- BARBER, S. J; PARKER, H. M. and MCDANIEL, C. D. (2005). Broiler Breeder

Semen quality as affected by trace minerals in Vitro. Poultry Science. 84: 100-105.

26- BARRANCO, I; ORTEGA, M. D; MARTINEZ-ALBORCIA, M. J; VAZQUEZ, J.

M; MARTINEZ, E. A. and ROCA, J. (2013). Season of Ejaculate Collection

Influencesthe Freezability of Boar Spermatozoa. Cryobiology. 67: 299–304.

27- BECONI, M. T; FRANCIA, C. R; MORA, N. G. and AFFRANCHINO, M. A.

(1993). Effect of natural antioxidants on frozen bovine semen preservation.

Theriogenology.40: 841-851.

28- BERRY, w. r. (2003). The physiology of Induced Molting. Poultry Science. 28: 971-

980.

29- BILCIK, B; ESTEVEZ, I. and RUSSEK-COHEN, E. (2005). Reproductive success

of broiler breeders in natural mating systems: The effect of male-male competition,

sperm quality and, morphological characteristics. Poult. Sci., 84: 1453-1462.

30- BILODEAU, J. F; BLANCHETTE, S; CORMIER, N. and SIRARD, M.A. (2002).

Reactive oxygen species-mediated loss of bovine sperm motility in egg yolk Tris

extender: protection by pyruvate, metal chelators and bovine liver or oviductal fluid

catalase. Theriogenology. 57: 1105-1122.

31- BILODEAU, J.F; BLANCHETTE, S. and GAGNON, C. (2001). Thiols prevent

H2O2-mediated loss of sperm motility in cryopreserved bull semen. Theriogenology.

56: 275–286.

32- BISBY, R. H; BROOKE, R. and NAVARATNAM, S. (2008). Effect of antioxidant

oxidation potential in the oxygen radical absorption capacity (ORAC) assay. Food

Chemistry. 108: 1002-1007.

33- BISWAS, A; MOHANA, J. and SASTRYA, K. V. H. (2009). Effect of higher

dietary vitamin E concentrations on physical and biochemical characteristics of semen

in Kadaknath cockerels. Br Poult Sci. 50: 733–8.

34- BISWAS, A; MOHAN, J; SASTRY, K.V. and TYAGI, J.S. (2007). Effect of dietary

vitamin E on the cloacal gland, foam and semen characteristics of male Japanese

quail. Theriogenology. 67: 259–263.


35- BLESBOIS, E. (2007). Status in Avian Semen Cryopreservation. World’s Poultry

Sci. 63: 213-222.

36- BLESBOIS, E. (2011). Freezing avian semen. Avian Biol Res. 4: 52-58.

37- BLESBOIS, E. and BRILLIARD, J. P. (2007). Specific features of in Vivo and in

Vitro Sperm Storage in Birds. Animal.1 (1472) 290-1484.

38- BLANCO, J. M; WILDT, D. E; HOFLE, U; VOELKER, W. and DONOGHUE, A.

M. (2009). Implementing artificial insemination as an effective tool for ex situ

conservation of endangered avian species. Theriogenology. 71: 200–213.

39- BLESBOIS, E. and GRASSEAU, I. (2002). Seminal plasma affects liquid storage

and cryopreservation of turkey sperm. Proc. 38th Meeting of the Society for

Cryobiology, Edinburgh, UK. 103.

40- BLESBOIS, E; GRASSEAU, I. and SEIGNEURIN, F. 2005. Membrane

fluidity and the ability of domestic bird spermatozoa to survive cryopreservation.

Reproduction. 129: 371-378.

41- BLESBOIS, E; SEIGNEURIN, F; GRASSEAU, I; LIMOUZIN, C; BESNARD, J;

GOURICHON, D; COQUERELLE, G; RAULT, P. and TIXIER-BOICHARD, M.

(2007). Semen cryopreservation for ex situ management of genetic diversity in chicken:

Creation of the French avian cryobank. Poult. Sci. 86:555–564.

42-BONATO, M; MALECKI, I. A; RYBOIK-TRZASKOWSKA, K. R;

CORNWALLIS, C. K. and CLOETE, S. W. P. (2014). Predicting Ejaculate Quality and

Libido in Male Ostriches Effect of Season and Age. Animal Reproduction Science. 151:

49-55.

43- BREININGER, E; BEORLEGUI, N. B. and IAHERTY, C. M. (2004). Alpha-

Tocopherol improves biochemical and dynamic parameters in Cryopreserved boar

Semen. Theriogenology. 63: 2126-2135.

44- BROUWERS, J. F; SILVA, P. F .N. and GADELLA, B. M. (2005). New assays for

detection and localization of endogenous lipid peroxidation products in living boar

sperm after BTS dilution or after freeze- thawing. Theriogenology. 63: 458-469.

45- BURROWS, W.H. and QUINN, J. P. (1937). The collection of spermatozoa from

the domestic fowl and turkey. Poultry Science. 26 (1): 19-24.

46- CARLSEN, M. H; HALVORSEN, B. L; HOLTE, K; BOHN, S. K; DRAGLAND,

S; SAMPSON, L; WILLEY, L; SENOO, H; UMEZONO, Y. and SANADA, C. (2010).

The total antioxidant content of more than 3100 foods, beverages, spices, herbs and

supplements used worldwide. Nutrition Journal.9 (3).

47- CASTELLINI, C. (2003). Oxidative status and semen characteristics of rabbit buck

as affected by dietary vitamin E, C and n-3 fatty acids (Abstract). Reprod Nutr Dev.

43(1): 91-103.


48- CAZZOLA, R; RONDANELLI, M; RUSSO-VOLPE, S; FERRARI, E. and

CESTARO, B. (2004). Decreased membrane fluidity and altered susceptibility to

peroxidation and lipid composition in overweight and obese female erythrocytes. J Lipid

Res. 45: 1846-1851.

49- CECIL, H. C. and BAKST, M.R. (1993). In vitro lipid peroxidation of turkey

spermatozoa. Poult. Sci.72: 1370-1378.

50- CEROLINI, S; ZANIBONI, L; MALDJIAN, A. and GLIOZZI, T. (2006). Effect of

docosahexaenoic acid and α-tocopherol enrichment in chicken sperm on semen quality,

sperm lipid composition and susceptibility to peroxidation. Theriogenology. 66:877–

886.

51- CHATTERJEE, S. and GAGNON, C. (2001). Production of reactive oxygen species

by spermatozoa undergoing cooling, freezing and thawing. Mol Reprod Dev. 59:451-

458.

52- CHAUDHARI, S. U. R; BAH, G. S. and AL-AMIN, J. D. (2001). Semen

Characteristics of Local Breeder Cocks in the Sahel Region of Nigeria.54 (2): 153-158.

53- CHEN, S.J; ALLAM, J.P; DUAN, Y.G. and HAIDL, G. (2013). Influence of

reactive oxygen species on human sperm functions and fertilizing capacity including

therapeutical approaches. Archives of gynecology and obstetrics. 288: 191-9.

54- CHEN, H; LOU, J. and LUO, L. (2005). Vitamin E, ageing and leydig cell

steroidogensis. Experimental Gerontology. 40: 728-736.

55- Chi, H. J; Kim, J. H. and Ryu, C. S. (2008). Protective effect of antioxidant

supplementation in sperm-preparation medium against oxidative stress in human

spermatozoa. Hum Reprod.23: 1023–1028.

56- CHIU, L. Y; HO, F. M; SHIAH, S. G; CHANG, Y. and LIN, W. W.(2011).

Oxidative stress initiates DNA damager MNNG-induced poly (ADP-ribose)

polymerase-1-dependent parthanatos cell death. Biochem Pharmacol. 81: 459-470.

57- CHULHONG, P and CHAPMAN, F. A. (2005). An Extender Solution for the Short-

Term Storage of Sturgeon Semen. Nigerian Agricultural Journal Aquaculture, 67: 52-

57.

58- COLE, H. H. and CUPPS, P. T. (1977). Reproduction in domestic animals. 3 rd Ed.

New York. Academic press. pp. 195.

59- DANIKOWSKI, S; SALLMANN, H. P; HALLE, I. and FLACHOWSKY, G.

(2002). Influence of high levels of vitamin E on semen parameters of cocks. J Anim

Physiol Anim Nutr. 86: 376–382.

60- DAWRA, R. K; SHARMA, O. P. and MAKKAR, H. P. (1983). Lipid peroxidation

in bovine semen. Int J Fertil.28: 231–234.


61- DAY, B. J. (2009). Catalase and glutathione peroxidase mimics. Biochem

Pharmacol.77: 285-296.

62- DEICHSELA, K; SCHRAMMEL, N; AURICH, J. and AURICH, C. (2016). Effects

of a long- day light programme on the motility andmembrane integrity of cooled-stored

and cyropreservedsemen in Shetland pony stallions. Animal Reproduction Science. 2-6.

63- DENISA, V; RADEK, F. and LADISLAV, M. (2015). Assessment of Ejaculate

Quality in Roosters of Three Laying Lines. MENDELNET. 147-177.

64- DHAMA, K; TIWARI, R; KHAN, R. U; CHAKRABORTY, S; GOPI, M;

KARTHIK, K; SAMINATHAN, M; DESINGU, P. A. and SUNKARA, L. T. (2014).

Growth promoters and novel feed additives improving poultry production and health,

bioactive principles and beneficial applications: The trends and advances- A Review.

International Journal of Pharmacology. 10: 129-159.

65- DIMITROVE, S. G; ATANASOVE, V. K; SURAI, P.F. and DENEV, S.A.

(2007). Effect of organic selenium on turkey semen quality during liquid storage.

Animal Reproduction Science.100: 311-317.

66- DOBRZYNSKA, M. M; BAUMGARTNER, A. and ANDERSON1, D. (2004).

Antioxidants modulate thyroid hormone- and noradrenaline-induced DNA damage in

human sperm. Mutagenesis. 19:325-330.

67- DONOGHUE, A. M. and WISHART, G. J. (2000). Storage of poultry semen.

Animal Reproductive Science.62: 213-232.

68- DROGE, W, (2002). Free radicals in the physiological1` control of cell function.

Physiol. Rev. 82: 47-95.

69- DUMPALA, P. R; PARKER, H. M. and MCDANIEL, C.D. (2006). The effect of

semen storage temperature and diluent type on the sperm quality index of broiler

breeder semen. Poultry Science. 5: 838-845.

70- EBEID, T. A. (2009). Organic selenium enhances the antioxidative status and

quality of cockerel semen under high ambient temperature. British Poultry Science.50:

641-647.

71- EBEID, T. A. (2012). Vitamin E and organic selenium enhances the antioxidative

status and quality of chicken semen under high ambient temperature. British Poultry

Science.53: 708-714. doi:10.1080/00071668.2012.722192.

72- EDENS, F. W. (2002). Practical applications for selenomethionine: broiler breeder

reproduction. In: Lyons, TP & Jacques, T. A. (Eds).Nutritional biotechnology in the feed

and food industries. Proceedings of 18 th alltechs Annual Symposium. Nottingham

University Press. Nottingham, UK. 29-42.

73- EDENS, F. W; SEFTON, A. E. AND PLEX, S.E.L. (2009). Improves Spermatozoa

Morphology in Broiler Breedermales. Int J Poult Sci. 8: 853.


74- EID, Y; EBEID, T. and YOUNIS, H. (2006). Vitamin E supplementation reduces

dexamethasone-induced oxidative stress in chicken semen. Br Poult Sci. 47: 350–356.

75- EIDAN, S. M. (2016). Effect on post-cryopreserved semen characteristics

ofHolstein bulls of adding combinations of vitamin C and eithercatalase or reduced

glutathione to Tris extender. Animal Reproduction Science.167: 1-7.

76- ELAGIB, H. A. A; MUSHARAF, N. A; MAKAWI, S. A. and MOHAMED, H. E.

(2012). The effects of age and season on semen characteristics of white leghorncocks

under Sudan conditions. Int. J. Poult. Sci. 11: 47–49.

77- ELSISY, G.A; EL-NATTAT, W. S. and EL-SHESHTAWY, R. I. (2008). Effect of

superoxide dismutase and catalase on viability of cryopreserved Buffalo spermatozoa.

Global Veterinaria.2: 56–61.

78- ESCOBAR, A; THIESEN, R; VITALIANO, S.N; BELMONTE, E. A; WERTHER,

K. and VALADAO, C. A. A. (2011).Cardiorespiratory effects of isofurane anesthesian

in crested Caracarus (Caracarus plancus). J Zoo Wildl Med. 42(1): 12-17.

79- FAN, Y. K; JU, J. C; LEE, S. L; CHEN, C. F; PEH, H. C; HSU, J. C. and LEE, Y.

P. (2004). High Ejaculation Frequency Enhances Semen Production in Taiwan Country

Chickens. Asian – Aust. J. Anim. Sci. V. 17(7): 924-929.

80- FERNANDEZ-SANTOS, M. R; DOMINGUEZ-REBOLLEDO, A. E. and

ESTESO, M.C. (2008). Catalase supplementation on thawed bull spermatozoa

abolishes the detrimental effect of oxidative stress on motility and DNA integrity.

International Journal of Andrology.32: 353–359.

81- FERNANDEZ-SANTOS, M. R; MARTINEZ-PASTOR, F. and GARCIA-

MACIAS, V. (2007). Sperm characteristics and DNA integrity of Iberian red deer

(Cervus elaphus hispanicus) epididymal spermatozoa frozen in the presence of

enzymatic and nonenzymatic antioxidants. Journal of Andrology . 28: 294–305.

82- FOOTE, R. H; BROCKETT, C. C. and KAPROTH, M. T. (2002). Motility and

fertility of bull sperm in whole milk extender containing antioxidants. Anim. Reprod.

Sci. 71: 13-23.

83- FUKAI, T. and USHIO-FUKAI, M. (2011). Superoxide Dismutases: role in redox

signaling, vascular function, and diseases. Antioxid Redox Signal. 15: 1583-1606.

84- Gee, G. F. (1983). Avian artificial insemination and semen preservation. North

Hollywood, California, International Foundation for the Conservation of Birds. 622(1);

375-398.

85- Gee, G.F; Bertschinger, H; Donoghue, A. M; Blanco, J. and Soley, J. (2004)

Reproduction in nondomestic birds: Physiology, semen collection, artificial

insemination and cryopreservation. Avian Poult Biol Rev. 15(2):47-101.


86- GHEZZI, P; BONETTO, V. and FRATELLI M. (2005). Thiol-disulfide balance:

from the concept of oxidative stress to that of redox regulation. Antioxid Redox

Signal.7: 964-972.

87- GHONIM, A. I. A; AWAD, A. L; EL-SAWY, M. A; FATOUH, M. H. and

IBRAHIEM, Z. A. (2009). Effect of Frequency of Semen Collection, Dilution Rate and

insemination dose on Semen Characteristics and Fertility of Domyati Ducks. Egypt.

Poult. Sci.29:1023-1045.

88- GIL-GUZMAN, E; OLLERO, M; LOPEZ, M. C; SHARMA, R. K; ALVAREZ, J.

G. and THOMAS, A. J. (2001). Differential production of reactive oxygen species by

subsets of human spermatozoa at different stages of maturation. Hum. Reprod. 16;

1922-1930.

89- GILL, S. P; HAMMERSTEDT, R. H. and AMANN, R. P. (1999). Poultry artificial

insemination: Procedures, status and future needs. In: Proc. Annu. Mtg. Soc.

Theriogenology, Nashville, TN. 353–362.

90- GOLZAR ADABI, S. H; COOPER, R.G; KAMALI, M.A. and HAJBABAEI, A.

(2011). The influence of inclusions of vitamin E and corn oil on semen traits of Japanese

quail (Coturnix coturnix japonica). Anim. Reprod. Sci. 123: 119–125.

91- GORDON, I. (2005). Reproductive technologies in farm animals. CABI Publishing

UK. Chapter.1: 16-28.

92- GOUS, R. M. and MORRIS, T. R. (2005). Nutritional interventions in alleviating

the effects of high temperatures in broiler production. World's Poultry Science Journal.

61: 463-475.

93- GUMULKA, M and KAPKOWSKA, E. (2005). Age effect of broiler breeders on

fertility and sperm penetration of the perivitelline layer of the ovum. Anim. Reprod. Sci.

90 (1-2): 135-148.

94- GURSU, M.F; ONDERCI, M; GULCU, F. and SAHIN, K. (2004). Effects of vitamin

C and folic acid supplementation on serum paraoxonase activity and metabolites

induced by heat stress in vivo. Nutrition Research. 24(2):157-164.

95-GUTHRIE, H. D. and WELCH, G.R. (2012). Effects of reactive oxygen species

action on sperm function in spermatozoa. Theriogenology. 78(8):1700-1708.

96- HAFEZ, E. S. E. (1987). Techniques for Improving Reproductive Efficiency. In:

Reproduction in farm animals. 5 th End. Philadelphia, PA USA, Lea and Febiger. 455-

497.

97- HAFEZ, B and HAFEZ, E. S. E. (2000). Reproduction in Farm Animals. 7 th Ed.

New York. Lippincott Williams and Wilkins, USA.

98- HARADA, K, and ASAI, T. (2010). Role of Antimicrobial Selective Pressure and

Secondary Factors on Antimicrobial Resistance Prevalence in Escherichia Coli from


Food-Producing Animals in Japan. Journal of Biomedicine and

Biotechnology.vol.2010:12.

99- HARON, A. W. and SUBRAMANIAM, N. W. (2010). Semen Evaluation in Jungle

Fowl, Domestic Chicken and Ayam Serama.Veterinary Sciences. 5-8.

100- HENKEL, R; HAJIMOHAMMAD, M; STALF, T; HOOGENDIJK, C;

MEHNERT, C. and MENKVELD, R. (2004). Influence of deoxyribonucleic acid

damage on fertilization and pregnancy. Fertil. Steril. 81: 965–972.

101- HERBETTE, S; ROECKEL-DREVET, P. and DREVET, J. R. (2007). Seleno-

independent glutathione peroxidases more than simple antioxidant scavengers. FEBS J.

274: 2163-2180. 102- HERRERA, B. C. (2001). Vitamin E: action, metabolism and perspectives. Journal

of Physiology and Biochemistry. 57(2): 43–56.

103- HEZARJARIBI, A; REZAEIPOUR, V. and ABDOLLAHPOUR, R. (2016).

Effects of intramuscular injections of vitamin E-selenium and a gonadotropin releasing

hormone analogue (GnRHa) on reproductive performance and blood metabolites of

post-molt male broiler breeders. Asian Pacific Journal of Reproduction.10:1016.

104- HLUNGWANI, C; SIEBRITS, F. K; NEDAMBALE, T. L. (2015). Effects of

Inclusion of Polyunsaturated Fatty Acids and Antioxidants on Spermatozoa Morphology

of Potchefstroom Koekoek Cockerels. Open Journal of Animal Sciences. 5: 157-162

105- HU, J; TIAN, W; ZHAO, L; WANG, H; LI, Q. and XIN, Y. (2010). The

cryoprotective effects of ascorbic acid supplementation on bovin semen quality. Anim

Reprod Sci. 121: 72-77.

106- HURLEY, W. L. and DOANE, R. M. (1989). Recent developments in the roles of

vitamins and minerals in reproduction. J Dairy Sci. 72 (3): 784-804.

107- HUTTER, E; SKOVBRO, M; LENER, B; PRATS, C; RABOL, R; DELA, F. and

JANSEN-DURR, P. (2007). Oxidative stress and mitochondrial impairment canbe

separated from lipofuscin accumulation in aged human skeletal muscle. Aging Cell. 6:

245-256.

108- IAFFALDANO, N. and MELUZZI, A. (2003). Effect of dialysis on quality

characteristics of turkey semen during liquid storage. Theriogenology. 60: 421–427.

109- IAFFALDANO, N; ROSATO, M. P; PAVENTI, G; PIZZUTO, R;

GAMBACORTA, M; MANCHISI, A. and PASSARELLA, S. (2010). The irradiation

of rabbit sperm cells with He-Ne laser prevents there in vitro liquid storage dependent

damage. Anim. Reprod. Sci.119: 123–129.

110- IPEK, A. and DIKMEN, B.Y. (2014). The effects of vitamin E and vitamin C on

sexual maturity body weight and hatching characteristics of Japanese quails (Coturnix


coturnix japonica) reared under heat stress. Animal Science Papers and Reports. 32 (3):

261-268.

111- JABBAR, A; ABASS, W; RIAZ, A; SATTAR, A. and AKRAM, M. (2015). Effect

of different concentration of Ascorbic on semen quality and hatchability of indigenous

Aseel chicken. The journal of animal & plant, sciences. 25(5): 1222-1226.

112-JAFARI AHANGARI, Y., PARIZADIAN, B. and ZAMANI, M. (2013). The

Impact of Organic Selenium Supplementation on Rooster Semen Quality in Liquid

Condition. Poultry Science Journal. 1(1): 23-31.

113- Jerysz, A; Lukaszewicz, E. (2013). Effect of dietary selenium and vitamin E on

ganders’ response to semen collection and ejaculate characteristics. Biol Trace Elem

Res. 153: 196.

114- JOMOVA, K; VONDRAKOVA, D; LAWSON, M. and VALKO, M. (2010).

Metals, oxidative stress and neurodegenerative disorders. Mol Cell Biochem. 345: 91-

104.

115- JONES, R; MANN, T. and SHERINS, R. J. (1979). Peroxidative breakdown of

phospholipids in human spermatozoa: Spermicidal effect of fatty acid peroxides and

protective action of seminal plasma. Fertility and Sterility. 31: 531-537.

116- Kadirvel, G; Satish, K. and Kumaresan, A. (2009). Lipid peroxidation,

mitochondrial membrane potential and DNA integrity of spermatozoa in relation to

intracellular reactive oxygen species in liquid and frozen-thawed buffalo semen. Anim

Reprod Sci. 114(1-3): 125-134.

117- KANATIYANONT, N; KORNKAEWRAT, K; SUTHANMAPINUNT, P. and

PINYOPUMMIN, A. (2012).Effect of Semen Collection Techniqus on Semen Quality

and Sperm Motility Parameters in Siamese Fighting Cock (Gallus). Artical in the

veterinary medicine. 42(4):439-445.

118- KEERTHY, A. J; OMPRAKASH,A. V; CHURCHIL, R.R. and HUDSON,G.H.

(2016). Effect of Semen Diluents, Dilution Rates, and Storage Periods on Spermatozoa

Motility of Different Varieties of Guinea Fowl. Journal of Veterinary. 7(6): 1-6.

119- KENNEDY, J. H; KORN, N. and THURSTON, R. J. (2003). Prostaglandin Levels

in Seminal Plasma and Sperm Extracts of the Domestic Turkey, and the Effects of

Cyclooxygenase inhibitors on Sperm Mobility. Reprod. Biol. Endocrinol. 1: 74.

120- KHAN, R.U; NAZ, S; NIKOUSEFAT, Z; TUFARELLI, V; JAVDANI, M;

RANA, N. and LAUDADIO, V. (2011). Effect of vitamin E in heat-stressed poultry.

World's Poultry Science Journal. 67: 469-478.

121- KHAN, R.U; RAHMAN, Z; JAVED, I. and MUHAMMAD, F. (2013).

Supplementation of vitamins, protein and probiotics on semen traits and

immunohistochemical study of pituitary hormones in zincinduced molted broiler

breeders. Acta Histochem. 115: 698.


122- KHAN, R.U; RAHMAN, Z.U; NIKOUSEFAT, Z; JAVDANI, M; LAUDADIO,

V. and TUFARELLI, V. (2012). Vitamin E: pharmaceutical role in poultry male

fecundity. World's Poultry Science Journal. 68: 63-70.

123- Kirschvink, N; de Moffarts, B. and Lekeux, P. (2000) .The oxidant/antioxidant

equilibrium in horses.Vet J. 177: 178-191.

124- KNIGHT, A. P. and WALTER, R. G. (2004). Plant Associated with Congenital

Defects and Reproductive Failure. International Veterinary Information Service, Ithaca,

NY, USA.

125- KONO, K. and HIURA, Y. (1983). Semen collection by rectal electro-ejaculation

in the domestic fowl. Jpn Poult Sci. 20: 267-270.

126- KONTECKA, H; KSIĄŻKIEWICZ, J; NOWACZEWSKI, S; KISIEL, T. and

KRYSTIANIAK, S. (2001). Effect of feed supplementation with vitamin C on

reproduction results in Pekin ducks. Proceedings of 9 th International symposium on

current problems of breeding, health and production of poultry. Ceske Budejovice,

Czech Republic. 6-7.

127- KOTLOWSKA, M; DIETRICH, G; WOJTCZAK, M; KAROL, H. and

CIERESZKO, A. (2007). Effects of liquid storage on amidase activity, DNA

fragmentation and motility of turkey spermatozoa. Theriogenology. 67: 276–286.

128- KOWALCZYK, A. and LUKASZEWICZ, E. (2015). Simple and effective methods

of freezing capercaillie (Tetrao urogallus L.) semen. PLoS ONE. 10: 1–11.

129- KOWALCZYK, A; LUKASZEWICZ, E. and RZONCA Z. (2012). Successful

preservation of capercaillie (Tetrao urogallus L.) semen in liquid and frozen states.

Theriogenology. 77: 899–907.

130- KRZYZOSIAK, J; EVENSON, D; PITT, C; JOST, L; MOLAN, P; and

VISHWANATH, R. (2000). Changes in susceptibility of bovine sperm to in situ DNA

denaturation, during prolonged incubation at ambient temperature under conditions of

exposure to reactive oxygen species and nuclease inhibitor. Reprod Fertil Dev. 12: 251-

261.

131- KUMAGAI, A; KODAMA, H. and KUMAGAI, J. (2002). Xanthine oxidase

inhibitors in testes,germ cell apoptosis induced by experimental cryptorchidism.

Molecular human reproduction. 8: 118-123.

132- LAGADU, S; LECHEVREL, M; SICHEL, F; BRETON, J; POTTIER, D;

COUDERC, R; MOUSSA, F. and PREVOST, V. (2010). 8- oxo-7, 8-dihydro-2'-

deoxyguanosine as a biomarker of oxidative damage in oesophageal cancer patients:

lack of association with antioxidant vitamins and polymorphism of hOGG1 and GST. J

Exp Clin Cancer Res. 29: 157-169.

133- LAKE, P. E. and RAVIE, O. (1979). The effect on fertility of storing fowl semen

for 24 h at 5°C in fluids of different pH. J. Reprod. Fertil. 57: 149–155.


134- LAKE, P. E. (1983). Factors affecting the fertility level in poultry, with special

reference to artificial insemination. Agricultural Research Council. 39(2): 106-117.

135- LAKE, P.E. and RAVIE, E. (1981). An attempt to improve the Fertility of Stored

Fowl Semen with Certain additives in basic diluents. Poultry Research Center, U. K.V.

21(6): 1077-1084.

136- LEAHY, T; MARTI, J. I; EVANS, G. and MAXWELL, W. M. C. (2010). Seasonal

variationin the protective effect of seminal plasma on frozen-thawed ramspermatozoa.

Anim. Reprod. Sci. 119: 147–153.

137- LEE, Y. P; LEE, S. L; HO, Y. J. and CHEN, T. L. (1999). Behavioural responses

of Cockerels to Semen Collection and their influence on Semen Characteristics,

Indivddual Semen Traits. Journal of Agricultural and Biological Science. (4) 4.

138- LEONHARD, M.S. (2000). Why do trace elements have an influence on fertility?

Tierarztl Prax. 28: 60-65.

139- LESKA, A. and DUSZA, L. (2007). Seasonal changes in the hypothalamo-

pituitarygonadal axis in birds. Reprod Biol. 7:99–126.

140- LIN, Y.F; CHANG, S. J; YANG, J. R; LEE, Y.P. and HSU, A. L. (2005). Effects

of supplemental vitamin E during the mature period on the reproduction performance

of Taiwan native chicken cockerels. Br. Poult. Sci. 46: 366–373.

141- LIN, Y.F; TSAI, H.L; LEE, Y.C. and CHANG, S.J. (2005). Maternal vitamin E

supplementation affects the antioxidant capability and oxidative status of hatching

chicks. The Journal of Nutrition. 135: 2457-2461.

142- LINFOR, J. J. and MEYERS, S. A. (2002). Detection of DNA damage in response

to cooling injury in equine spermatozoa using single cell gel electrophoresis. J. Androl.

23: 107–113.

143- LIU, Q; ZHOU, Y. F; DUAN, R. J; WEI, H. K; JIANG, S. W. and PENG, J. (2015).

Effects of dietary n-6: n-3 fatty acid ratio and vitamin E on semen quality, fatty acid

composition and antioxidant status in boars. Animal Reproduction Science. 162: 11-19.

144- Long, J.A. (2006). Avian semen cryopreservation: what are the biological

challenges? Poult Sci. 85: 232-236.

145- LONG, J.A. and KRAMER, M. (2003). Effect of vitamin D on lipid peroxidation

and fertility after artificial insemination with liquid-stored turkey semen. Poult Sci. 82:

1802-1807.

146- LOPEZ-FERNANDEZ, C; JOHNSTON, S. D; GOSALBEZ, A. and GOSALVEZ,

J. (2011). Seasonal changes in sperm DNA fragmentation ofMurciano-Granadina

goats: the compelling case for dynamicassessment. Small Ruminant Res. 100: 50–53.


147- LOPEZ-GATIUS, F; GARCIA-ISPIERTO, I; SANTOLARIA, P; YANIZ, J;

NOGAREDA, C. and LOPEZ-BEJAR, M. (2006). Screening for high fertility in high-

producing dairy cows. Theriogenology. 65:1678-1689.

148- LUBERDA-BIENKOWSKA, Z. and MAJEWSKA, A. (2010). Wpływ selenui

niskocząsteczkowych antyoksydantow na jakosc nasienia zwierząt gospodarskich. Post

Nauk Rol. 4: 81–90.

149- LUKASZEWICZ, E. (2006). Charecteristics of fresh gander semen and its

susceptibility to cryopreservation in six generations derived from geese inseminated

with frozen-thawed semen. Cryo Lett. 27: 51-58.

150- MAIA, M. S; BICUDO, S. D; AZEVEDO, H.C; SICHERLE, C. C; SOUSA, D.

B. and RODELLO, L. (2009). Motility and viability of ram sperm cryopreserved in a

Tris-egg yolk extender supplemented with anti-oxidants. Small Rumin Res. 85: 85-90.

151- MAIA, M. S; BICUDO, S. D; SICHERLE, C. C; RODELLO, L. and GALLEGO,

I. C. (2010). Lipid peroxidation and generation of hydrogen peroxide in frozen-thawed

ram semen cryopreserved in extenders with antioxidants. Anim Reprod Sci. 122: 118-

123.

152- MARIN-GUZMAN, J; MAHAN, D. C; and PATE, J. L. (2000). Effect of Dietary

Selenium and Vitamin E on Spermatogenic Development in Boars. J. Anim. Sci. 78:

1537-1543.

153-MARTI, E; MARTI, J. I; MUINO-BLANCO, T. and CEBRIAN-PEREZ, J. A.

(2008). Effect of the cryopreservation process on the activity and immunolocalization

of antioxidant enzimas in ram spermatozoa. J Androl. 29: 459-467.

154- MARTIN, G; SABIDO, O. DURAND, P. and LEVY, R. (2004). Cryopreservation

induces an apoptosis-like mechanism in bull sperm. Biol. Reprod. 71, 28–37.

155-MEDOW, M. S; BAMJI, N; CLARKE, D; OCON, A. J. and STEWART, J. M.

(2011). Reactive oxygen species (ROS) from NADPH and xanthine oxidase modulate

the cutaneous local heating response in healthy humans. J Appl Physiol. 301: 763-768.

156- MIAN, Z; NASIM, A; SHAKOOR, A. and QURESHI, M. S. (1990). Effect of

dilution of fowl semen with normal saline on the fertility of RIR hens through Artificial

Insemination. Pakistan Journal of Agriculture, 11(3): 201-204.

157- MICHAEL, A; ALEXOPOULOS, C. and PONTIKI, E. (2008). Quality and

reactive oxygen species of extended canine semen after vitamin C supplementation.

Theriogenology.70: 827–835.

158- MIN, Y; SUN, T; NIU, Z. and LIU, F. (2016). Vitamin C and vitamin E

supplementation alleviates oxidative stress induced by dexamethasone and improves

fertility of breeder roosters. Animal Reproduction Science. 22: 1-22.


159- Modupe, O; Livinus, A. C. and Ifeany, N. B. (2013). Semen Quality

Characteristics and Effect of Mating Ratio on Reproductive Performance of Hubbard

Broiler Breeders. Journal of Agricultural Science. 5(1): 154-159.

160- MOGHBELI, M; KOHRAM, H; ZARE-SHAHANEH, A; ZHANDI, M;

SHARIDEH, H. and SHARAFI, M. (2016). Effect of sperm concentration on

characteristics and fertilization capacity of rooster sperm frozen in the presence of the

antioxidants catalase and vitamin E. Theriogenology. 1-6.

161- MOGHBELI, M; KOHRAM, H; ZARE-SHAHANEH, A; ZHANDI, M;

SHARAFI, M; NABI, M.M; ZAHED, V. and SHARIDEH, H. (2016). Are the optimum

levels of the catalase and vitamin E in rooster semen extender after freezing - thawing

influenced by sperm concentration? Cryobiology. 10:1016.

162- MOHAN, J; SAINI, M. and JOSHI, P. (1995). Isolation of a spermatozoa motility-

inhibiting factor from chicken seminal plasma with antibacterial property. Biochim

Biophys Acta. 1245: 407–13.

163- MORRELL, J.M. (2006). Update on semen technologies for animal breeding.

Reprod Domest Anim. 41: 63-67.

164- MOSS, J. I; PONTES, E. and HANSEN, P. J. (2009). Insulin-like growth factor-1

protects preimplantation embryos from anti-developmental actions of menadione. Arch

Toxicol. 83:1001-1007.

165- MOTHIBEDI, K; NSOSO, S. J; WAUGH, E. E. and KGWATALALA, P.M.

(2016). Semen Characteristics of Purebred Naked Neck Tswana and Black Australorp

X Naked Neck Tswana Crossbred Chickens under An Intensive Management System in

Botswana. American Journal of Research Communication. 4 (10):38-47.

166- MPHAPHATHI, M. L; SESHOKA, M. M; LUSEBA, D; SUTHERLAND, B. and

NEDAMBALE, T. L. (2016).The characterisation and cryopreservation of Venda

chicken semen. Asian Pacific Journal of Reproduction. 5(2): 132–139.

167- Muller, D.P. (2010). Vitamin E and neurological function. Review. Molecular

Nutritional and Food Research. 54 (5): 710–718.

168- NAJEE, H. B; AL-SHAWII, A. M. and ABD-AL RAHMAN, L.Y. (2012).

Bacterial contamination of imported bulls frozen semen. Al-Anbar J Vet Sci. 5: 1999-

6527.

169- NAZIROGLU, M; AKKUS, S; SOYUPEK, F; YALMAN, K; CELIK, O; ERIS,

S. and USLUSOY, G. A.(2010). Vitamins C and E treatment combined with exercise

modulates oxidative stress markers in blood of patients with fibromyalgia. A controlled

clinical pilot study. Stress.13: 498-505.

170- NEGRE-SALVAYRE, A; COATRIEUX, C; INGUENEAU, C. and SALVAYRE,

R. (2008). Advanced lipid peroxidationend products in oxidative damage to proteins.


potential role in diseases and therapeutic prospects for the inhibitors. Br J Pharmacol.

153: 6-20.

171- NEUMAN, S. L; ORBAN, J. I; LIN, T. L; LATOUR, M. A. and HESTER, P. Y.

(2002). The effect of dietary ascorbic acid on semen traits and testis histology of male

turkey breeders. Poult. Sci. 81:265-268.

172- NOIRAULT, J. and BRILLARD, J. P. (1999). Effects of Frequency of Semen

Collection on Quantitative and Qualitative characteristics of Semen in Turkey Breeder

Males. Poultry Science. 78: 1034-1039.

173- NOWACZEWSKI, S. and KONTECKA, H. (2005). Effect of dietary vitamin C

supplement on reproductive performance of aviary pheasants. Czech J Anim Sci.

50:208–12.

174- NWAKALOR, L.N; OKEKE, G.C. and NJOKU, D.C. (1988). Semen

characteristics of the guinea fowl Numida meleagris meleagris.

Theriogenology.29:545–554.

175- ODAJIMA, N; BETSUYAKU, T; NAGAI, K; MORIYAMA, C; WANG, D. H;

TAKIGAWA, T; OGINO, K. and NISHIMURA, M. (2010). The role of catalase in

pulmonary fibrosis. Respir Res. 11: 183.

176- OGUNLESI, M; OKIEI, W; OFOR, E; and AWONUGA, O. (2009).

Determination of the Concentrations of Zinc and Vitamin C in Oysters and Some

Medicinal Plants used to Correct Male Factor Infertility. Journal of Natural Products.

2: 89-97.

177- OTTINGER, M. A. and BAKST, M. R. (1995). Endocrinology of the Avian

Reproductive System, Journal of Avian Medicine and Surgery 9(4): 242-250.

178- OURIQUE, G. M; SACCOL, E. M. H; PES,T.S; GLANZNER, W.G;

SCHIEFELBEIN,S. H; WOEHL,V. M; BALDISSEROTTO, B; PAVANATO, M. A;

GONÇALVES, P. B. D; and BARRETO, K. P. (2016). Protective effect of vitamin E on

sperm motility and oxidative stress in valproic acid treated rats. Science Direct. 95:

159-167.

179- PANDA, A. K. and CHERIAN, G. (2014). Role of vitamin E in counteracting

oxidative stress in poultry. Journal of Poultry Science. 51: 109-117.

180- PARKER, H. M. and MCDANIEL, C. D. (2006). The Immediate Impact of Semen

Diluent and Rate of Dilution on the Sperm Quality Index, ATP Utilization, Gas

Exchange, and Ionic Balance of Broiler Breeder Sperm. Poultry Science.85: 106-116.

181- PARTYKA, A; NIŻAŃSKI, W; BRATKOWSKA, M. and MAŚLIKOWSKI, P.

(2015). Effects of N-acetyl-L cysteine and catalase on the viability and motility of

chicken sperm during liquid storage. Science Direct. 149: 1- 4.


182- PETERS, S.O; SHOYEBO, O.D; ILORI, B. M; OZOJE, M.O; IKEOBI C.O.N;

AND ADEBAMBO, O. A. (2008). Semen Quality Traits of Seven Strain of Chickens

Raised in Humid Tropics. International Journal of Poultry Science.7: 949-953.

183- PRATT, D. A; TALLMAN, K. A. and PORTER, N. A. (2011). Free radical

oxidation of polyunsaturated lipids:new mechanistic insights and the development of

peroxyl radical clocks. Acc Chem Res. 44: 458-467.

184- RAMNATH, V; REKHA, P. S. and SUJATHA, K. S. (2008). Amelioration of heat

stress induced disturbances of antioxidant defense system in chicken by Brahma

Rasayana. Evidence- Based Compl Alt Med. 5: 77-84.

185- RENGARAJ, D. and HONG, Y. H. (2015). Effects of Dietary Vitamin E on

Fertility Functions in Poultry Species. International Journal of Molecular Sciences. 16:

9910-9921.

186- REYES-MORENO, C; BOILARD, M; SULLIVAN, R. and SIRAD, M. A.

(2002).Characterization and identification of epididymal factors that protect ejaculated

bovine sperm during in vitro storage. Biol Reprod. 66: 159–66.

187- RIDNOUR, L.A; ISENBERG, J.S; ESPEY, M.G; THOMAS, D.D; ROBERTS,

D.D. and WINK, D. A. (2005). Nitric oxide regulates angiogenesisi through a

functional switch involving thrombospondin. Proc Natl. Acad. Sci. USA.102: 13147-

13152.

188- ROCA, J; RODRIIGUEZ, M. J; GIL, M. A; CARVAJAL, G; GARCIA, E. M;

CUELLO, C; VAZQUEZ, J. M. and MARTINEZ, E .A. (2005) Survival and in Vitro

fertility of Boar Spermatozoa Frozen in the presence of Superoxide dismutase and/or

Catalase. J. Androl. 26: 15–24.

189- ROUSHDY, K H; EL-SHERBIENY, M A; ABDELGANY, F.A. and EL-SAYED,

M. A. (2014). Semen Cryopreservation For Two Local Chicken Strains as a Tool For

Conservation Of Egyptian Local Genetic Resources. Egyptian Poultry Science Journal.

34: 607-618.

190- RYAN M. J; DUDASH H. J; DOCHERTY M; GERONILLA, K. B; BAKER, B.

A; HAFF, G. G; CUTLIP, R. G. and ALWAYS, S. E.(2010). Vitamin E and C

supplementation reduces oxidative stress, improves antioxidant enzymes and positive

muscle work in chronically loaded muscles of aged rats. Exp Gerontol.45: 882-895.

191- SACHDEV, S. and DAVIES, K. J. (2008). Production, detection, and adaptive

responses to free radicals in exercise. Free Radic Biol Med. 44: 215-223.

192- SAFA, S; MOGHADDAM, G; JOZANI, R. J; DAGHIGHKIA, H. and

JANMOHAMMADI, H. (2016). Effect of Vitamin E and Selenium Nanoparticles on

Post-thaw Variables and Oxidative Status of Rooster Semen. Animal Reproduction

Science. 174: 100-106.


193- SANTIAGO-MORENO, J; CASTAÑO, C; TOLEDANO-DÍAZ, A; COLOMA,

M.A; LÓPEZ-SEBASTIAN, A; PRIETO, M.T. and CAMPO, J.L. (2011). Semen

cryopreservation for the creation of a Spanish poultry breeds cryobank: Optimization

of freezing rate and equilibration time. Poult. Sci. 90: 2047–2053.

194- SAYYAHZADEH, H; KHAZAEIKOOHPAR, H. and ANSARI PIRSARAEI, Z.

(2010).Comparing the Natural Mating with Artificial Insemination (A.I) at Mazandran

Native Hen. International Journal of poultry Science. 9 (7): 711-715.

195- SCHWARZ, K. R; PIRES, P. R; ADONA, P. R; CÂMARADEBEM, T.H. and

LEAL, C. L. (2008). Influence of nitric oxide during maturation on bovine oocyte

meiosis and embryo development in vitro. Reprod Fertil Dev. 20: 529-536.

196- SENGER, P. L. (2003). Pathways to pregnancy and Parturition. 2 nd Ed. Pullman,

Washington, USA. 99164-6332.

197- SETIOKO, A. R. and HETZEL, D. J. S. (1984). The effect of collection method

and housing system on semen production and fertility of Alabio drakes. Br Poult Sci.

25: 167-172.

198- SHAFFNER, C.S; HENDERSON, E.W. and CARD, C.G. (1941). Viability of

spermatozoa of the chicken under various environmental conditions. Poultry Science.

20: 259-265.

199- SHANOON, A. K. (2011). Effects of Zingiberofficinale Powder on Semen

Characteristic and Blood Serum Sex Hormones Concentration in Broilers Breeder

Male. International Journal of Poultry Science. 10 (11): 863-866.

200- SICHERLE, C. C; MAIAB, M. S; BICUDO, S. D; RODELLA, L. and AZEVEDO,

H. C. (2011). Lipid peroxidation and generation of hydrogen peroxide infrozen–thawed

ram semen supplemented with catalase or Trolox. Small Rumin. Res. 95:144–149.

201- SIDHU, R. S; SHARMA, R. K; THOMAS, A. J.R. and AGARWAL, A. (1998).

Relationship between creatine kinase activity and semen characteristics in sub-fertile

men. Int J Fertil Womens Med. 43:192 -197.

202- SLOWINSKA, M; JANKOWSKI, J; DIETRICH, G. J; KAROL, H;

LISZEWSKA, E; KOZLOWSKI, K; SARATOWSKA, K. and CIERESZKO, A.

(2011). Effect of organic and inorganic forms of selenium in diets on Turkey semen

quality. Poultry Sci. 90: 181–190.

203- SLOWINSKA, M; LISZEWSKA, E; DIETRICH, G. J. and CIERESZKO, A.

(2012). Characterization of proacrosin acrosin system after liquid storage and

cryopreservation of turkey semen (Meleagris gallopavo). Theriogenology. 78:1065–

1077.

204- SONSEEDA, P; VONGPRALUB, T. and LAOPAIBOON, B. (2013). Effects of

Environmental Factors, Ages and Breeds on Semen Characteristics in Thai Indigenous

Chickens: A One-year Study. Thai J Vet Med. 43 (3): 347-352.


205- SPEIGHT, S. M; ESTIENNE, M. J. and HARPER, A. F. (2012). Effects of dietary

supplementation with an organic source of selenium oncharacteristics of semen quality

and in vitro fertility in boars. J Anim Sci. 90(3):761-770.

206- SURAI, P. E; BLESBOIS, E; GRASSEAU, I; CHALAH, T; BRILLARD, J.P;

WISHART, G. J; CEROLINI, S. and SPARKS, N. H. C. 1998. Fatty acid composition,

glutathione peroxidase and superoxide dismutase activity and total antioxidant activity

of avian semen. Comparative Biochemistry and Physiology Part B. 120: 527-533.

207- SURAI, P.F; BRILLARD, J.P; SPEAKE, B.K; BLESBOIS, E; SEIGNEURIN, F.

and SPARKS, N.H. (2000). Phospholipids fatty acid composition, vitamin E content and

susceptibility to lipid peroxidation of duck spermatozoa. Theriogenology. 53: 1025–

1039.

208- SURAI, P.F; FISININ, V. I. AND KARADAS, F. (2016). Antioxidant Systems in

Chick Embryo Development. Vitamin E, Carotenoids and Selenium. Animal Nutrition.

2(1):1-11.

209- SURAI, P; FUJIHARA, N; SPEAKE, B; BRILLARD, J; WISHART, G. and

SPARKS, N. (2001). Polyunsaturated fatty acids, lipid peroxidation and antioxidant

protection in avian semem. Asian Australasian journal of animal sciences.14:102-450.

210- SURAI, P.F. and IONOV, I. (1992). Vitamin E in goose reproduction. In

Proceedings of the 9 th International Symposium on Waterfowl, Pisa, Italy. 16-18.

211- SURAI, P; KOSTJUK, I; WISHART, G; MACPHERSON, A; SPEAKE, B;

NOBLE, R; IONOV, I. and KUTZ, E. (1998). Effect of Vitamin E and Selenium

Supplementation of Cockerel Diets on Glutathione Peroxidase Activity and Lipid

Peroxidation Susceptibility in Sperm, Testes, and Liver. Biol. Trace Elem. Res. 64: 119-

132.

212- SURAI, P. F; KUTZ, E; WISHART, G. J; NOBLE, R. C. and SPEAKE, B. K.

(1997). The relationship between the dietary provision of α-tocopherol and the

concentration of this vitamin in the semen of chicken: Effects on lipid composition and

susceptibility to peroxidation. J. Reprod.Fertil. 110: 47–51.

213- SURAI, P.F; NOBLE, R.C; SPARKS, N. H. C. and SPEAKE, B. K. (2000). Effect

of long-term supplementation with arachidonic or docosahexaenoic acids on sperm

production in the broiler chicken. J. Reprod. Fertil. 120: 257–264.

214- SZWEDA, P. A; FRIGUET, B. and SZWEDA, L. I. (2002). Proteolysis, free

radicals, and aging. Free Radic Biol Med. 33: 29-36.

215- TABATABAEI, S. (2012). Effect of Ascorbic Acid on Chicken Semen quality

during Liquid Storage. Comp. Clin. Pathol. 21: 621-626.

216- TABATABAEI, S; BATAVANI, R. and AYEN, E. (2011). Effects of Vitamin E

Addition to Chicken Semen on Sperm Quality during in Vitro Storage of Semen.

Veterinary Research Forum.2: 103-111.


217- TAREQ, K. M. A; AKTER, Q. S; TAKAGI, Y; KOHICHI, H; SAWADA, T. and

TSUJII, H. (2010). Effect of selenium and vitamin E on acrosome reaction in porcine

spermatozoa. Reprod Med Biol. 9:7381.

218- TARIF, A.M; BHUIYAN, M. M; FERDOUSY, R.N; JUYENA, S.S; AND

MOLLAH, M.R. (2013). Evaluation of Semen quality among four Chicken Lines. IOSR

Journal of Agriculture and Veterinary Science (IOSR-Javs). 6: 07-13.

219- THERIEN, I; BOUSQUET, D. and MANJUNATH, P. (2001). Effect of seminal

phospholipid-binding proteins and follicular fluid on bovine sperm capacitation. Biol

Reprod.65: 41–51.

220- Thurston, R. J. (1995). Storage of poultry semen above freezing for 24–48 hours.

In: International Symposium on Artificial Insemination in Poultry. Poultry Science

Association, Savoy. 107–122.

221- TRABER, M. G. (2007). Heart disease and single-vitamin supplementation. Am J

Clin Nutr.85 (11): 293- 299.

222- TRABER, M. G. and STEVENS, J.F. (2011). Free Radical Biology and Medicine

Vitamins C and E: Beneficial effects from a mechanistic perspective. Free Radical

Biology and Medicine. 51(5): 1000–1300.

223- TUFARELLI, V. and LAUDADIO, V. (2016). Antioxidant Activity of Vitamin E

and its Role in Avian Reproduction. Journal of Experimental Biology and Agricultural

Sciences. 4(3): 267-272.

224- TUNCER, P. B; KINET, H. and OZDOGAN, N. (2008). Evaluation of Some

Spermatological Characteristics in Gerze Cocks. Ankara University, Veterinary

Fakultesi Dergisi. 55: 99-102.

225- TUNCER, P. B; KINET, H; OZDOGAN, N. and DEMIRAL, O. (2006).

Evaluation of some spermatological characteristics in Denizli cocks. Journal of Factulty

of Veterinary Medicince University, 3(1): 37-42.

226- TUNEZ, I; SANCHEZ-LOPEZ, F; AGUERA, E; FERNANDEZ, R; SANCHEZ,

F. and TASSET, I. (2011). Important role of oxidative stress biomarkers in Huntington's

disease. J Med Chem. 54: 5602-6.

227- TWIGG, J; IRVINE, D.S, and AITKEN, R. J. (1998a). Oxidative damage to DNA

in human spermatozoa does not preclude pronucleus formation at intracytoplasmic

sperm injection. Hum Reprod.13:1864 -1871.

228- UCHECHUKWU, N. V. S; REKWOT, P. I; OGWU, D. and ODIVICHUKWU, E.

O. (2015). Evaluation of Physiological Variables and Semen Characteristics of anak

2000 Broiler Breeder Cocks. Jounal of veterinary advances 5(6): 968-975.


229- UMESIOBI, D. O. 2009. Vitamin E supplementation and effects on fertility rate

and subsequent body development of their weanling piglets. J. Agric. Rural Dev. Tropics

and Subtropics. 110: 155-168.

230- UPRETI, G. C; JENSEN, K; MUNDAY, R; DUGANZICH, D. M;

VISHWANATH, R. and SMITH, J. F. (1998). Studies on aromatic amino acid oxidase

activity in ram spermatozoa: role of pyruvate as an antioxidant. Animal Reproduction

Science.51: 275–287.

231- URSINI, F; MAIORINO, M; VALENTE, M; FERRI, L. and GREGOLIN, C.

(1982). Purification from pig liver of a protein, which protects liposomes and

biomembranes from peroxidative degradation and exhibits glutathione peroxidase

activity on phosphatidylcholine hydroperoxides. Biochem. Biophys. Acta. 710: 197-

211

232- VALKO, M; LEIBFRITZ, D; MONCOL, J; CRONIN, M. T; MAZUR, M. and

TELSER, J. (2007). Free radicals and antioxidants in normal physiological functions

and humandisease. Int JBiochem Cell Biol. 39: 44-84. 233- VERTUANI, S; ANGUSTI, A. and MAFREDINI, S. (2004). The antioxidant and

pro- antioxidant network: An overview. Current Pharmaceutical Design. 10: 1677-1694.

234- VICKRAM, A.S; RAMESH PATHY, M. and SRIDHARAN, T. B. (2017).

Preputial Washing, Addition of Antioxidants and Antimicrobial Peptides in Semen

Extender- For Reducing Microbial Load during Cryopreservation. JSM Invitro Fertil.

2(1): 1009.

235- WATERHOUSE, K.E; HOFMO, P.O; TVERDAL, A. and MILLER, R.R. (2006).

Within and between breed differences in freezing tolerance and plasma membrane fatty

acid composition of boar sperm. Reproduction. 131: 887-894.

236- WATSON, P. F. (2000). The causes of reduced fertility with cryopreserved semen.

Anim. Reprod. Sci. 60(61): 481–492.

237- WISHART, G. J. (2009). Semen quality and semen storage. In: Biology of

breeding poultry, Poultry Science Symposium Series. Hocking P. (e d.). London, UK.

151–178.

238- YAHAYA, M. S; UMARU, A. M. and ALIYU, A. (2013). A preliminary study

on semen collection, evaluation and insemination in Nigerian local turkeys (Meleagris

gallopavo). Sokoto Journal of Veterinary Sciences. 11(2): 67-70.

239- YANIZ, J. L; MARCO-AGUADO, M. A; MATEOS, J. A. and SANTOLARIA,

P. (2010). Bacterial contamination of ram semen, antibiotic sensitivities, and effects on

sperm quality during storage at 15°C. Anim Reprod Sci. 1: 142- 149.

240- YEN, K; PATEL, H. B; LUBLIN, A. L. and MOBBS, C. V. (2009). SOD isoforms

play no role in lifespan in adlib or dietary restricted conditions, but mutational

inactivation of SOD-1 reduces life extension by cold. Mech Ageing Dev. 130: 173-178.


241-YOUSEF, M. I; ABDALLAH, G.A. and KAMEL, K. I.(2003). Effect of ascorbic

acid and Vitamin E supplementation on semen quality and biochemical parameters of

male rabbits [Abstract]. Anim Reprod Sci. 76 (1-2): 99-111.

242-ZAHRADDEEN, D; BUTSWAT, I. S. R; KALLA, D. J. U; SIR, S.M. and

BUKAR, M.T. (2005). Effect of Frequency of Ejaculation on Semen Characteristics in

Two Breeds of Turkeys (Meleagris gallopavo) Raised in a Tropical Environment. Poult.

Sci,V. 84: 833-838.

243- ZANIBONI, L; R. RIZZI. and CEROLINI, S.(2006). Combined effect of DHA and

alpha - tocopherol enrichment on sperm quality and fertility in the turkey. Theriogenol.

65: 1813-1827.

244- ZHANG, Y. Y.2006.Physiology Endocrinology and Reproduction Semen

Characterization and Sperm Storage in Cabotis Tragopan. Poultry. Science. 85: 892-

898.

245- ZHANG, Y. Y. and ZHENG, G. M. (2002). Artificial insemination of Cabot’s

Tragopan. J. Beijing Normal Univ. Nat. Sci. Ed.38:117–122.

246 - ZUBAIR, M; AHMAD, M; GUL, A. S. T; ALI, S. (2017). Effects of Dietary E on

Semen, Hormonal Profile and Testicular Biometry in Teddy Goat Bucks. International

Journal of Animal and Veterinary Sciences. 4(1).

Syrian Arab Republic

Ministry of Higher Education

Tishreen University

Faculty of Agriculture Engineering

Department of Animal Protection

Effect of antioxidant,s on quality of local poultry sperm

during Storage at 4oC

Scientific thesis prepared for the Master`s degree in Agriculture Faculty

Animal Production

(Ruminants+ poultry)

Prepared by:

Nehal Ahmad Melhem

2018

Syrian Arab Republic

Ministry of Higher Education

Tishreen University

Faculty of Agriculture Engineering

Department of Animal Protection

Effect of antioxidant,s on quality of local poultry sperm

during Storage at 4oC

Scientific thesis prepared for the Master`s degree in Agriculture Faculty

Animal Production

(Ruminants+ poultry)

Supervisors by

Dr. Zohair Jabbour Prof. Dr. Mohsen Hmeshe

Associate Professor, Department of Animal Professor, Department of Animal

protection , Faculty of Agriculture protection, Faculty of Agriculture

Tishreen University Tishreen University

2018

Documents

نهال أحمد ملحم