BAB I PENDAHULUAN A. LATAR BELAKANG Salah satu komoditas
unggulan ikan hias air laut adalah ikan badut (Amphiprion
ocellaris) yang hidup di perairan terumbu karang dan habitat
aslinya ikan ini bersimbiosis dengan anemon. Ikan badut merupakan
salah satu jenis produk ikan hias air laut yang paling banyak
diminati terutama di pasar luar negeri karena bentuknya yang
eksotis dan unik. Peningkatan penjualan ikan ini terbesar terjadi
pada tahun 2004 sebesar 18,5 %, hal ini dikarenakan beredarnya film
kartun Finding Nemo yang bintang utamanya ikan badut (Pitaloka,
2007). Para eksportir ikan hias biasanya membeli ikan badut dari
para nelayan sehingga penyediaannya masih bergantung pada
penangkapan. Kegiatan penangkapan ikan hias di daerah karang
biasanya menggunakan bahan kimia potassium. Bahan tersebut dapat
berdampak buruk bagi biota lainnya dan apabila terakumulasi maka
akan merusak ekosistem terumbu karang di perairan tersebut.
Kegiatan budidaya merupakan solusi dalam mengurangi kegiatan
penangkapan di alam. Teknologi rekayasa ikan diharapkan dapat
terus
berkembang sehingga dapat menjadikan ikan badut sebagai salah
satu komoditas budidaya unggulan bagi negara Indonesia di masa yang
akan datang. Kegiatan pembenihan ikan badut menjadi salah satu
pilihan untuk memperdalam wawasan dan keterampilan di bidang
pembenihan dan telah dimemiliki fasilitas yang cukup mendukung
dalam menunjang kegiatan tersebut. Ikan badut adalah ikan dari anak
suku Amphiprioninae dalam suku Pomacentridae. Ada dua puluh delapan
spesies yang biasa dikenali, salah satunya adalah genus Premnas,
sementara sisanya termasuk dalam genus Amphiprion. Mereka tersebar
di lautan Pasifik, Laut Merah, lautan India, dan karang besar
Australia. Di alam bebas mereka bersimbiosis dengan anemon laut.
Anemon akan melindungi Ikan badut dari pemangsa dan Ikan badut akan
membersihkan Anemon dengan memakan sisa - sisa makanan Anemon.
BAB II PEMBAHASAN A. Klasifikasi ikan badut yaitu Klasifikasi
Ilmiah : Kerajaan : Animalia Filum Kelas Ordo Famili : : : :
Chordata Actinopterygii Perciformes Pomacentridae Amphiprioninae
Amphiprion Premnas Seluruh jenis ini merupakan famili dari
Pomacentridae. Dengan
Upafamili : Genera :
demikian, apabila ditelusuri mereka masih saudara dengan
golongan damselfish seperti Chromis, Chrysiptera, dan Dascyllus.
Tabel 1. Kerabat Ikan Badut Amphiprion akallopisos Amphiprion
akindynos Amphiprion allardi Amphiprion bicinctus Amphiprion
chagosensi Amphiprion chrysogaster Amphiprion chrysoptarus
Amphiprion clarkia Amphiprion ephippium Amphiprion frenatus
Amphiprion fuscocaudatus Amphiprion mccullochi Amphiprion melanopus
Amphiprion nigrisep Amphiprion ocellaris Amphiprion omanensis
Amphiprion percula Amphiprion perideraion Amphiprion polymnus
Amphiprion rubrocintus Amphiprion sandraracinos Amphiprion
sebae
Amphiprion latezonatus Amphiprion latifasciatus Amphiprion
leukokranos
Amphiprion thiellei Amphiprion tricinctus Premnas
biaculeatus
B. Pemeliharaan Calon Induk Calon induk ikan badut (Amphiprion
ocellaris) yang dipelihara di BBPBL Lampung merupakan hasil
rekayasa pada kegiatan pendahuluan pada tahun 2007. Calon induk
dipelihara di akuarium kaca ukuran 80 cm x 45cm x 50 cm dengan
padat penebaran 3-4 ekor/ liter. Akuarium calon induk berjumlah dua
buah yang masing-masing berisi 100 ekor calon induk dengan kode
masing-masing G-2 dan G-21. Calon induk pada G-2 merupakan hasil
dari persilangan induk F1 x F1 dengan F1 merupakan hasil dari
perkawinan induk dari alam (F0) yang dipijahkan di BBPBL Lampung.
Calon induk G-21 berasal dari persilangan induk F0 x F1 dengan F0
merupakan induk yang diperoleh dari alam (Wahyuni, 2008). Selain
itu, di dalam akuarium ditambahkan paralon ataupun anemon untuk
tempat persembunyian ikan badut. Pemeliharaan calon induk dilakukan
bertujuan untuk menyiapkan induk dengan kualitas yang baik kemudian
siap untuk dilakukan proses penjodohan. Sistem pemeliharaan
menerapkan flow through system dengan pergantian air sebesar 200%
setiap harinya. Kegiatan pemeliharaan induk yang dapat diikuti di
BBPBL Lampung yaitu pemberian pakan, pencegahan hama dan penyakit,
serta pengelolaan kualitas air. Secara umum, kegiatan ini hampir
sama dengan pemeliharaan induk ikan badut hanya berbeda pada
pemberian pakan saja. Kegiatan persiapan wadah tidak dilakukan
karena calon induk sudah tersedia sejak lama.
Gambar 1 dan 2. Pemeliharaan calon induk Pakan yang diberikan
untuk calon induk berupa pakan beku dan pakan buatan. Pakan beku
yang diberikan berupa udang jambret yang biasanya selama ini
dianggap sebagai hama di tambak. Pakan buatan yang digunakan untuk
calon induk ikan badut berupa pelet untuk larva kerapu dengan merk
Love Larva nomor 7 ukuran 1500-1700 mm yang telah disesuaikan
dengan bukaan mulutnya. Selain pelet tersebut, di BBPBL Lampung
juga mencoba pelet komersial khusus ikan hias dengan merk Sera
Marin sebagai asupan tambahan. Pakan beku maupun pelet diberikan
secara at satiation. Metode pemberian pakan beku yaitu pakan beku
yang dibungkus dalam plastik kecil diambil dari freezer kemudian
diletakkan di potongan gelas plastik dan di dalam gelas tersebut
diisi air untuk mempercepat pencairan pakan tersebut. Setelah
ditunggu selama 15 menit, pakan beku siap diberikan pada calon
induk dengan menggunakan sumpit untuk memudahkan pengambilan pakan
beku dan pemberiannya kepada calon induk (Gambar 18). Lebih baik
pakan beku ditambahkan cairan fermentasi sebanyak 5 ml sebagai
bahan pengkaya karena mengandung bakteri probiotik yang baik bagi
tubuh ikan badut. Respon ikan badut sangat agresif dalam mengambil
makanan dan cenderung bergerombol ke permukaan. Pakan diberikan
sedikit demi sedikit sampai dimakan ikan kemudian diberikan lagi
dan begitu seterusnya sampai ikan tersebut berenang ke dasar dan
tidak merespon lagi. Pada
saat pemberian pakan harus dihindari gerakan tiba-tiba yang
dapat mengagetkan ikan tersebut karena dengan gerakan tersebut akan
mengurangi nafsu makannya. Pakan beku diberikan satu kali sehari
yaitu pukul 11.00. Pemberian pelet dilakukan dengan menaburkan
pelet sedikit demi sedikit hingga ikan tersebut tidak merespon lagi
yang menandakan ikan tersebut kenyang. Apabila ada sisa pakan yang
mengendap di dasar harus segera di sipon agar tidak mempengaruhi
kualitas air. Pelet diberikan sebanyak dua kali sehari yaitu pukul
08.00 dan pukul 15.00. Pelet diberikan secara bergantian antara LL7
dan pelet ikan hias di waktu yang sama. C. Pemeliharaan Induk Induk
ikan badut (Amphiprion ocellaris) di BBPBL Lampung berjumlah 7
pasang yang dipelihara pada akuarium berukuran 40 cm x 60 cm x 50
cm. Setiap akuarium diisi oleh induk jantan dan betina yang sudah
berpasangan dan siap memijah. Akuarium pemeliharaan induk tersusun
sejajar di pojok ruangan. Selain itu, masing-masing akuarium induk
diisi dengan anemon laut (Radianthus sp.) yang ditempelkan pada
substrat genteng lalu diletakkan di atas paralon.
. Gambar 3 dan 4. Kondisi akuarium pemeliharaan induk
Setiap akuarium memiliki kode masing-masing yang menunjukkan
asal induk yang susunannya dapat dilihat pada tabel 6. Induk yang
telah berhasil
memijah bersumber dari para pengumpul ikan hias air laut, hasil
tangkapan alam, dan keturunan (F1) dari hasil kegiatan perekayasaan
pendahuluan (tahun 2007) di BBPBL Lampung. Pihak BBPBL Lampung
melakukan beberapa kegiatan persilangan yaitu menyilangkan antara
induk dari alam dengan induk hasil budidaya, induk alam dengan
induk alam, dan induk budidaya dengan induk budidaya. Sistem
pemeliharaan induk menggunakan flow through system dengan
pergantian air 200 % setiap harinya. Sistem tersebut diterapkan
dengan tujuan menciptakan kondisi seperti di alam sebagai habitat
asli anemon dan memudahkan sirkulasi udara. Setiap akuarium terdiri
1 inlet dilengkapi dengan stopkran dan 1 outlet berupa pipa 1 inci
dengan posisi di sisi samping bagian bawah akuarium. Setiap
akuarium diberi penutup di bagian atas untuk mengurangi intensitas
cahaya yang masuk ke dalam akuarium dan menghindari kotoran masuk
secara langsung ke dalam akuarium. Kegiatan pemeliharaan induk yang
dapat diikuti di BBPBL Lampung yaitu pemberian pakan, pemijahan,
penetasan telur, pencegahan hama dan penyakit, serta pengelolaan
kualitas air. 1. Pemberian Pakan Pakan yang diberikan untuk induk
berupa pakan hidup (Life food), pakan beku (frozen food), maupun
pelet. Pakan hidup yang dapat diberikan yaitu Artemia dewasa, udang
jambret, dan blood worm. Pakan hidup diberikan kepada induk dan
calon induk sebagai penunjang protein yang dibutuhkan untuk
memperbaiki kualitas dan kuantitas dalam proses pemijahan. Selain
itu pakan hidup juga diberikan secara ad libitum agar ketersediaan
pakan di dalam akuarium induk tetap ada. Artemia dewasa diperoleh
dari bak kultur yang dilakukan mandiri oleh Laboratorium Ikan Hias,
sedangkan bloodworm diperoleh dari hasil sampingan kultur Artemia
saat penyiponan berlangsung. Pakan hidup hanya diberikan dua kali
sehari yaitu pada siang hari pukul 12.00 dan pukul 16.00.
Pemberian pakan hidup diutamakan untuk induk sedangkan untuk
calon induk hanya diberikan pakan beku dan pelet saja karena
populasinya banyak. Pakan hidup berupa Artemia dewasa diambil dari
bak kultur dengan menggunakan saringan. Sebelumnya telah disiapkan
baskom yang berisi air laut. Artemia yang berhasil disaring
kemudian segera dikumpulkan di dalam baskom dan ditambahkan cairan
fermentasi sebanyak 20 ml sebagai bahan pengkaya. Setiap pasang
induk diberikan 10-15 ekor Artemia pada pukul 12.00 dan pukul
16.00. Artemia diberikan menggunakan gelas plastik dan dituangkan
ke masingmasing akuarium induk. Pakan hidup berupa blood worm
diperoleh dari hasil penyiponan bak kultur Artemia. Biasanya
sebelum digunakan, blood worm dipisahkan dulu dari kotoran yang ada
dengan cara mengendapkan kotoran di dalam baskom yang besar.
Setelah 15 menit, blood worm yang bergerak bebas dan berenang di
permukaan langsung disipon menggunakan selang sipon berdiameter 1
cm dan dialirkan ke wadah lainnya. Sipon dilakukan perlahan-lahan
agar tidak terjadi pengadukan. Apabila jumlah blood worm telah
terpisah dari kotorannya sudah cukup banyak maka dapat dibilas
dengan air laut kemudian siap diberikan untuk induk dengan waktu
yang sama saat pemberian artemia dewasa. Lebih baik blood worm yang
tersisa di dalam endapan harus tetap dipisahkan dengan cara
menambahkan air ke dalam baskom agar kotoran yang mengendap terurai
kembali. Kemudian ditunggu hingga mengendap dan disipon kembali.
Hal tersebut dapat dilakukan hingga blood worm dalam endapan
tersebut habis. Induk ikan badut diberikan pelet untuk larva kerapu
dengan merk dagang Love Larva bernomor 6 yang berukuran 1.100-1.300
mm. Pelet diberikan 2 kali/hari yaitu pada pukul 08.00 dan pukul
14.00 secara at satiation.
2. Pengelolaan Kualitas Air Pengelolaan kualitas air pada
pemeliharaan induk meliputi penyiponan dan pengurangan air.
Penyiponan dilakukan setiap sebelum dan sesudah pemberian pakan.
Penyiponan yang dilakukan sebelum pemberian pakan bertujuan untuk
membersihkan sisa-sisa kotoran yang mengendap setelah proses
metabolisme malam hari sedangkan penyiponan sesudah pemberian pakan
bertujuan untuk membuang sisa-sisa pakan yang mengendap di dasar
dan tidak termakan. Proses tersebut dilakukan untuk menjaga air
tetap jernih. Setiap pagi dan sore hari pengurangan air dilakukan
hingga 70% volume akuarium. Selang sipon yang digunakan berbahan
plastik dan diameternya cukup besar sekitar 1 inchi. Pada ujung
selang biasanya ada yang ditambahkan pipa berbentuk T untuk
memudahkan pembersihan dinding akuarium saat penyiponan. Apabila
hanya menyipon sisa pakan dan feses saja biasanya tidak perlu
menggunakan sipon T.
Gambar 5. Selang sipon Setiap akuarium diberikan pelindung
diatasnya berupa jaring ataupun styrofoam yang berguna untuk
mengurangi intensitas cahaya matahari yang masuk ke dalam akuarium,
sehingga dapat menghambat pertumbuhan lumut yang terdapat di dalam
akuarium.
3. Pencegahan dan Pengobatan Penyakit Pencegahan dan pengobatan
penyakit pada pemeliharaan induk dan calon induk ikan badut
(Amphiprion ocellaris) menggunakan Methylene blue (MB) dan
Akriflavin dengan dosis 5 ppm. Biasanya MB digunakan untuk
pencegahan sedangkan Akriflavin digunakan untuk pengobatan.
Methylene blue (MB) diberikan secara tidak langsung ke dalam
akuarium induk dan calon induk. Pemberian bahan tersebut dengan
cara diberikan bersamaan saat dilakukan pembersihan dinding
akuarium dari alga dan benthik yang menempel pada saat pemeliharaan
induk ikan badut. Apabila ditambahkan MB ke dalam air maka air akan
berubah warna menjadi biru sedangkan akriflavin merubah warna air
menjadi kuning terang. Metode pemberian MB dilakukan dengan cara
air tawar disiapkan menggunakan baskom kecil berukuran 3 L.
Kemudian bahan tersebut ditambahkan sebanyak 5 ppm ke dalamnya.
Pembersihan dinding akuarium dapat menggunakan lap ataupun wipper
yang dicelupkan ke dalam larutan air tawar dan MB. Seluruh dinding
akuarium dibersihkan dan pipa outlet juga dibersihkan dari lumut
yang menempel. Metode pencucian dinding akuarium dapat dilihat pada
Gambar 21. Pengobatan yang dilakukan terhadap ikan badut yang sakit
yaitu individu yang sakit dipisahkan dari populasinya kemudian
diletakkan di wadah lain yang sudah diisi air laut dan ditambahkan
Akriflavin sebanyak 5 ppm. Ikan tersebut direndam dalam larutan
tersebut hingga kondisinya sehat kembali. Penerapan biosekuritas
juga mulai dilakukan dengan mencuci setiap alat setelah selesai
digunakan dan mencuci tangan dan kaki setiap baru datang ke
laboratorium ikan hias. Selain itu peralatan ikan yang sakit dan
ikan yang sehat dibedakan dan diletakkan di tempat terpisah untuk
mencegah penyebaran penyakit pada individu yang sehat. Ikan yang
terdeteksi tidak nafsu makan dan warnanya mulai memudar akan
langsung diangkat dari akuarium dan direndam
dengan akriflavin dosis 5 ppm di wadah kecil yang terpisah
sampai ikan tersebut normal kembali dan bisa merespon pakan dengan
baik. D. Penjodohan Ikan badut Amphiprion ocellaris bersifat
hermaprodit protandri yaitu saat dilahirkan semua individu
berkelamin jantan kemudian pada usia dewasa dapat terdiferensiasi
menjadi betina. Perubahan kelamin tersebut menjadikan proses
pemijahan ikan badut cukup unik. Pada saat pemijahan, ikan tersebut
harus dilakukan proses penjodohan terlebih dahulu hingga
mendapatkan satu pasang induk yang cocok dan ikan badut bersifat
monogami yang hanya setia pada pasangannya. Menurut Wahyuni (2008)
proses penjodohan diawali dengan menyeleksi calon induk yang sudah
mulai terdiferensiasi. Penjodohan dilakukan dengan menebar 6 ekor
calon induk dengan rasio 1:1 pada akuarium bervolume 100 L yang
dilengkapi dengan anemon. Umumnya jantan dan betina sulit dibedakan
namun secara visual dapat dilihat bahwa jantan berukuran lebih
kecil dan ramping daripada betina yang lebih besar dengan perut
yang agak membuncit. Proses penjodohan berlangsung selama 3-4
minggu. Pada minggu pertama, salah satu induk menguasai anemon.
Ikan yang cepat beradaptasi menguasai anemon kemudian menyeleksi
calon pasangannya. Jika sudah mendapatkan pasangan, ikan lainnya
akan diserang untuk itu ikan lainnya harus segera dikeluarkan.
Setelah itu diperlukan waktu 3-6 bulan sampai pasangan tersebut
memijah tergantung dari umur, kematangan gonad, dan penanganan.
Apabila induk betina yang telah berpasangan itu mati maka pernah
dimasukkan induk baru tanpa proses penjodohan kembali kemudian
pasangan dari ikan yang mati tersebut akan berubah menjadi betina
namun tidak dapat memijah dengan induk baru yang dimasukkan secara
paksa ke dalam akuarium tersebut. Masa rematurasi induk ikan badut
berkisar antara 8-9 hari.
Gambar 6 dan 7 Penjodohan induk E. Pemijahan Induk Pemijahan
ikan badut Amphiprion ocellaris dilakukan setelah induk sudah
berpasangan. Induk tersebut diletakkan dalam satu wadah yang telah
dilengkapi substrat anemon dan genteng. Pemijahan terjadi pada
waktu siang hari dan pemijahan secara alami. Sehari sebelum
memijah, induk terlihat membersihkan sarangnya. Pemijahan dilakukan
dengan induk jantan terlihat merangsang induk betina untuk
mengeluarkan telur dengan cara meliukkan badannya seperti melakukan
tarian pemijahan dan saling berkejaran. Apabila induk betina sudah
mengeluarkan telurnya maka telur tersebut langsung ditempelkan ke
substrat dan posisinya diatur kemudian dibuahi oleh jantan.
Pemijahan terjadi antara pukul 11.00-15.00 dan sifat telur menempel
pada substrat di sekitar anemon. Telur ikan badut berbentuk agak
lonjong dengan tinggi 1 mm dan diameter 0,3 mm. F. Penetasan Telur
Masa perawatan telur ikan badut Amphiprion ocellaris selama 7-8
hari yang dilakukan oleh kedua induk. Induk menyembulkan mulutnya
dan
mengibaskan siripnya ke arah telur selama perawatan. Induk ikan
badut bersifat parental care dengan induk jantan lebih agresif
merawat telur sedangkan induk betina menjaga telur dari serangan
luar.
Telur menetas pada pagi hari yaitu pukul 05.00-09.00 dengan suhu
media berkisar 26-28oC kemudian larva dipindahkan ke bak fiber
dengan selang waktu 1-2 jam setelah telur menetas. Induk akan
memijah kembali 1-2 hari setelah telur menetas. Proses penetasan
dilakukan dengan cukup unik yaitu induk mengibaskan sirip ventral
ke arah telur hingga lepas dari substrat, kemudian telur yang lepas
dimasukkan kedalam mulut induk tersebut dan disembulkan keluar
sudah dalam bentuk larva yang dapat berenang bebas. Hal tersebut
dilakukan berulang kali hingga telur menetas semua menjadi larva.
Proses penetasan tersebut terjadi secara bertahap. Selama masa
pengeraman, telur mengalami perubahan warna setiap harinya. Tabel
7. Pengamatan Telur Amphiprion ocellaris Hari Ke1 2 3 4 5 6 7 8
Putih agak transparan Putih Kekuningan Keabu-abuan Hitam Hitam
Metalik Metalik Menetas menjadi larva Biasanya jika terdapat sisa
telur yang belum menetas saat pemanenan larva sudah dilakukan maka
sisa telur tersebut akan dimakan oleh induk jantan. Hal tersebut
dapat dikarenakan induk yang stress pada saat pemanenan larva
berlangsung. Apabila pada pagi hari terlihat telur sudah menetas
maka aliran air pada inlet dimatikan dan aerasi dikeluarkan. Larva
yang telah menetas dipanen dengan menggunakan metode sipon. Cara
yang dilakukan dengan menggunakan Terlihat bintik mata menjadi
hitam Terlihat bintik mata berwarna putih Warna Telur
Keterangan
ember 10 L yang diisi air laut 1 L dan diletakkan di tempat yang
lebih tinggi untuk mengurangi tekanan saat penyiponan larva
sehingga larva tidak terlempar dan mengurangi stress saat
pemanenan. Selang sipon yang digunakan berdiameter inchi dengan
panjang 2 m yang diikat pada kayu panjang untuk memudahkan
penyiponan. Larva disipon sambil dihitung ke dalam ember. Pengisian
air ke dalam ember tidak boleh penuh agar air tidak tumpah saat
dibawa ke bak pemeliharaan larva. G. Pemeliharaan Larva Kegiatan
pemeliharaan larva dilakukan sesaat setelah pemanenan larva dari
akuarium induk hingga ikan mencapai bentuk yang definitif. Pada
saat garis tubuh sudah lengkap dan semua sirip telah tumbuh
sempurna maka larva tersebut telah berubah menjadi benih yang siap
dipelihara ke tahap selanjutnya. 1. Persiapan Wadah Wadah
pemeliharaan larva ikan badut (Amphiprion ocellaris) di BBPBL
Lampung adalah bak fiber volume 500 L. Namun pada saat produksi
larva meningkat maka dapat digunakan wadah tambahan yang berupa
akuarium kaca volume 100 Liter. Wahyuni (2008) dalam penelitiannya
menyebutkan bahwa dengan menggunakan kedua wadah tersebut,
pertumbuhan ikan badut tidak menunjukkan perbedaan berarti.
Kegiatan persiapan wadah meliputi pencucian bak, pembilasan,
pemberian kaporit, pengeringan, dan pengisian air. Proses
pembersihan bak dilakukan dengan cara mengelap dinding dan dasar
bak dengan tujuan membersihkan lumut dan kotoran yang menempel bak
fiber tersebut. Setelah proses pencucian dilanjutkan pembilasan
dengan air laut. Kemudian dilanjutkan dengan proses sterilisasi
wadah dengan menggunakan kaporit yang dilarutkan dalam air dengan
dosis 5-10 ppm kemudian disiramkan pada bagian dinding dan dasar
bak. Setelah
diberikan kaporit maka didiamkan selama 1 hari kemudian dibilas
kembali dengan air tawar hingga bersih. Bak fiber didiamkan selama
2-3 hari. Sebelum digunakan, bak fiber harus dibilas kembali untuk
menghilangkan sisa-sisa kaporit yang dapat membahayakan larva
dengan kondisi yang masih rentan. Selain itu dilakukan pembersihan
pada komponen lainnya seperti selang aerasi, batu aerasi, dan pipa
outlet. Selang aerasi dan batu aerasi direndam dalam air tawar yang
dicampurkan Akriflavin dengan dosis 5 ppm sebagai tindakan
desinfeksi peralatan. Setelah proses pembersihan wadah dilakukan
maka dilanjutkan dengan proses pengisian air laut melalui
penyaringan pada pipa inlet sampai volume bak mencapai 300-400 L
lalu diberi aerasi dan dimasukkan fitoplankton sebelum larva
dipindahkan. Filter pada inlet cukup sederhana berupa filter fisik
dan kimia. Filter fisik terdiri dari kapas dan kain kassa yang
berguna untuk menyaring substrat seperti pasir dan lumpur. Filter
kimia yang digunakan yaitu arang aktif yang dibungkus dengan kain
kassa berfungsi menetralisir bahanbahan kimia berbahaya pada air
laut sebelum masuk ke dalam bak pemeliharaan. 2. Penebaran Larva
Larva yang telah dipanen segera ditebar di bak pemeliharaan larva.
Sebelum penebaran larva, dipastikan bak sudah terisi air laut
300-400 Liter dan telah dimasukkan fitoplankton. Sistem aerasi
telah terpasang pada bak pemeliharaan. Pada saat penebaran, sistem
aerasi dimatikan terlebih dahulu untuk memudahkan pada saat
aklimatisasi larva. Padat tebar larva berkisar 2-3 ekor/L atau
disesuaikan dengan jumlah larva yang ada. Penebaran larva
menggunakan ember yang sudah berisi larva diapungkan ke bak
pemeliharaan larva. Sebelum dimasukkan ke dalam bak, ujung bawah
ember dicelupkan ke air tawar terlebih dahulu sebagai tindakan
biosecurity. Larva ditebar bertahap dengan cara ember dimiringkan
kemudian air dari bak dimasukkan ke dalam ember perlahan-lahan
untuk menyesuaikan kondisi
lingkungan pada larva. Setelah itu larva dibiarkan berenang ke
dalam bak fiber dengan sendirinya. Aerasi dihidupkan kembali dengan
kekuatan kecil selama 24 jam.
3. Pemberian Pakan Pakan yang diberikan pada larva cukup
bervariasi tergantung umur dan disesuaikan dengan bukaan mulutnya.
Jenis pakan yang diberikan adalah pakan hidup dan pakan buatan.
Pakan hidup berupa rotifera, kopepoda, naupli Artemia, dan
Diaphanosoma. Pakan hidup tersebut ditunjang dengan pemberian
fitoplankton yang terdiri dari Nannochloropsis, Chaetoceros, dan
Tetraselmis. Pemberian fitoplankton bertujuan untuk mengurangi
intensitas cahaya yang masuk ke dalam bak larva (sebagai shadow)
dan sebagai pakan bagi rotifera namun bila pemberiannya berlebihan
akan menyebabkan blooming alga dalam bak dan dapat menyebabkan
kematian pada larva karena terjadi kompetisi oksigen dalam bak
pemeliharaan larva tersebut. Fitoplankton dapat diberikan secara
tunggal maupun mix. Berdasarkan penelitian yang dilakukan di BBPBL
Lampung tentang aplikasi berbagai fitoplankton pada pemeliharaan
larva ikan badut maka dapat disimpulkan pemberian Nannochloropsis
dan Chaetocheros merupakan kombinasi terbaik yang dapat diberikan
ke dalam bak larva terkait kelengkapan nutrisi yang terkandung
dalam kedua jenis fitoplankton tersebut. Pemberian pakan hidup ke
dalam bak larva dengan metode ad libitum yaitu pakan diusahakan
selalu tersedia dalam media pemeliharaan dengan kepadatan populasi
senantiasa disesuaikan dengan ketentuan yang ada. Jenis pakan yang
diberikan disesuaikan dengan ukuran bukaan mulut larva yang dapat
dilihat pada tabel 8.
Tabel 8. Jadwal pemberian pakan pada larva Umur D1 D5 D10
Rotifera Rotifera + naupli kopepoda Rotifera + np. Artemia +
kopepoda D15 D20 Kopepoda + np. Artemia Kopepoda + np. Artemia +
Pellet LL2 Setiap pemberian pakan hidup selalu dilakukan pengecekan
kepadatan setiap 2 jam sekali dengan cara mengambil air dalam bak
larva menggunakan gelas plastik bervolume 250 ml dan dihitung
kepadatannya. Pipet dapat digunakan untuk memudahkan penghitungan
plankton. Apabila perhitungan kepadatan berkurang maka ditambahkan
sampai kepadatannya sesuai dengan ketentuan. Kepadatan pakan hidup
dapat dilihat pada tabel 9. Tabel 9. Jumlah pemberian pakan hidup
Jenis Rotifera Kepadatan 3-5 ekor/ ml 5-10 ekor/ml 10-20 ekor/ml
Kopepoda Naupli Artemia Diaphanosoma Pelet Fitoplankton 200
ekor/liter 300 ekor/liter 200 ekor/liter At satiation 2-4105 sel/ml
D1 D3 D4 D6 > D7 D7 D30 D6 D30 D30 D60 > D20 D1 D18 Pemberian
Pada D8 mulai diberi np. Artemia sedikit. Overlap rotifera 1-2 hari
Belajar diberikan pelet mulai dari D 16 Pakan Keterangan
Pakan buatan mulai diberikan pada D20 namun tahap
pembelajarannya sejak D18. Strategi pembelajaran pelet pada larva
dengan dipancing menggunakan naupli Artemia terlebih dahulu, baru
diberi pelet sedikit demi sedikit. Pembelajaran pelet dapat lebih
mudah dengan menggunakan metode continous feeding yaitu pemberian
naupli Artemia secara berkelanjutan sedikit demi sedikit dengan
menggunakan alat bantu berupa wadah berbentuk botol plastik yang
dihubungkan dengan selang aerasi. Penyiapan alat continous feeding
yaitu botol minuman ringan volume 1,5 L dipotong pada bagian
dasarnya membentuk seperti gantungan. Tutup botol dilubangi dan
dipasang selang aerasi dengan stop kran diujungnya. Botol tersebut
digantungkan di atas bak pemeliharaan larva kemudian ujung selang
aerasi ditempelkan di dinding bak. Naupli Artemia dan air laut
dimasukkan sebanyak 1 L ke dalam botol tersebut. Naupli Artemia
akan mengalir melalui selang aerasi menuju bak larva. Debit aliran
tersebut diatur sedemikian rupa sehingga berupa tetesan. Larva akan
berkumpul pada tetesan nauplii Artemia tersebut. Saat larva sudah
terlatih berkumpul di satu titik maka dapat mulai diberikan pelet
menggunakan pipet tetes. Jenis pakan buatan yang diberikan yaitu
pakan untuk larva kerapu dengan merk dagang Love Larva nomor 2
dengan diameter pelet 198 308 mm setara dengan ukuran naupli
Artemia. Sebelum pelet diberikan, dicampur sedikit demi sedikit
dengan air untuk memudahkan pemberiannya pada larva. Pelet
diberikan dengan metode at satiation (sekenyangnya) sebanyak dua
kali sehari yaitu pada pukul 09.00 dan pukul 15.00. Pelet diberikan
dengan mengamati respon makan dari larva. Apabila larva sudah
berenang menjauh maka pemberian pelet dihentikan dan dilakukan
penyiponan untuk membersihkan sisasisa pakan yang terbuang. 4.
Pengelolaan Kualitas Air Ikan badut Amphiprion oceellaris pada fase
larva merupakan fase yang paling rentan terhadap perubahan kualitas
air yang mendadak sehingga diperlukan
pengelolaan air yang baik dalam pemeliharaannya. Pada saat
mengalirkan air laut ke dalam bak pemeliharaan larva untuk
pengisian air harus dipasang filter fisik dan kimia pada bagian
inlet. Filter fisik berupa filter wool yang bagian ujung pipa
dilapisi dengan kain kassa yang bertujuan untuk menyaring kotoran
yang terdapat pada air laut, yang akan dialirkan ke dalam bak
larva, sedangkan filter kimia digunakan arang aktif yang terbungkus
kain kassa dengan tujuan menyerap zatzat kimia berbahaya yang
terkandung dalam air laut yang digunakan sebagai media pemeliharaan
larva. Pipa yang berisi bahan filter harus dicuci terlebih dahulu
sebelum digunakan. Setelah itu dipasang instalasi inlet yang
terdiri dari pipa berbahan PVC dengan ukuran inci, inci, 1 inci dan
pipa filter yang disambungkan dengan pipa berbentuk T maupun L dan
disusun sedemikian rupa kemudian diujungnya dipasangkan stop kran
untuk mengatur aliran air. Pipa inlet juga dapat disusun secara
paralel untuk pengisian air pada dua bak fiber sekaligus. Pengisian
air laut di awal pemeliharaan dan setelah penyiponan dipasang pipa
inlet yang bersifat sementara. Pipa inlet digunakan terus menerus
apabila pemeliharaan sudah menggunakan flow through system mulai
D10 dengan debit yang sangat kecil. Penyiponan bak larva dilakukan
setelah 3 hari pertama pemeliharaan dengan cara aerasi diangkat
kemudian dilakukan penyiponan menggunakan selang sipon berdiameter
1 inchi yang bagian ujungnya diberikan pipa T agar volume air dalam
bak tidak cepat habis. Selang sipon dialirkan ke dalam ember 20 L
yang telah diletakkan saringan mikron dengan tujuan menyaring pakan
hidup dan larva yang terbawa pada saat proses penyiponan
berlangsung. Aerasi harus dimasukkan kembali setelah penyiponan
selesai. Apabila ada larva yang mati ditampung dalam baskom kecil
kemudian dihitung jumlahnya. Proses penampungan menggunakan selang
sipon berdiameter inci. Penyiponan dilakukan minimal 2 hari sekali
untuk membersihkan endapan fitoplankton dan zooplankton yang mati
di dasar bak.
Pergantian air dilakukan setelah 5 hari pertama pemeliharaan
dengan cara menyurutkan volume air sebanyak 70% dari volume bak
Flow through system baru dapat digunakan setelah larva berumur
lebih dari 10 hari saat larva sudah mulai kuat melawan arus. Debit
air dialirkan 25 ml/detik dengan pergantian air 50-70% setiap
harinya. Debit air mulai ditambahkan menjadi 50 ml/detik setelah
larva mulai mendapat pelet yaitu dengan pergantian air 70-100%
setiap harinya. Kegiatan pengelolaan kualitas air didukung dengan
pengukuran parameter kualitas air untuk mengetahui kondisi air pada
bak larva. Parameter yang diukur antara lain DO, salinitas, suhu,
dan pH. Sistem pengecekan kualitas air di BBPBL Lampung dilakukan
setiap minggunya secara bergantian pada wadah yang berbeda. Hasil
pengukuran kualitas air pada bak pemeliharaan larva dapat dilihat
pada tabel 10. Tabel 10. Pengukuran kualitas air pada bak
pemeliharaan larva Kode Bak F2 27 Juli 2009 30 Juli 2009 F6 27 Juli
2009 Tanggal DO (mg) 4.71 4.89 4.36 27 28.3 27.5 T (oC) Salinitas
(ppt) 32 32 32 7.874 pH
Data kualitas air pada tabel 10 terlihat bahwa salinitas air
laut stabil pada nilai 32 ppt dengan kisaran DO 4,34,8 mg/L dan
kisaran suhu 2729 oC. Kondisi air laut pada bak larva memiliki pH
78 . Kisaran nilai dari berbagai parameter kualitas air tersebut
menggambarkan kondisi air yang cukup stabil dan masih layak sebagai
media pemeliharaan larva ikan badut. 5. Pencegahan dan Pengobatan
Penyakit Biasanya pada fase larva ikan badut masih rentan terhadap
penggunaan dosis antibiotik yang tinggi. Pemberian methylene blue
(MB) ataupun akriflavin
hanya digunakan apabila terjadi kematian massal di dalam bak
larva dan adanya indikasi larva yang terkena jamur. Kematian massal
dapat diakibatkan oleh beberapa faktor diantaranya pada saat fase
pergantian jenis pakan diakibatkan ukuran pakan masih terlalu besar
bagi bukaan mulut larva, setelah penyiponan aerasi tidak dimasukkan
kembali yang dapat menyebabkan larva stress akibat DO berkurang,
serta kemungkinan terjadinya blooming alga (fitoplankton) di bak
larva karena pemberian fitoplankton yang berlebihan. Selain itu air
laut terkadang mengandung lumpur yang tidak tersaring pada filter
sehingga berdampak buruk bagi larva. Kematian massal diatasi dengan
pemberian akriflavin dosis 10 ppm dan MB diberikan apabila larva
terkena jamur dengan ciri terdapat bintik-bintik putih di permukaan
tubuh larva. saat diberikan treatment tersebut maka langsung
digunakan flow through system untuk memperlancar sirkulasi air dan
mengurangi stress larva akibat pemberian antibiotik. 6. Sampling
Pertumbuhan Kegiatan sampling pertumbuhan larva dilakukan setiap
lima hari sekali dengan jumlah sampel sebanyak 10-20 ekor namun
pada sampling D1 dan D5 biasanya hanya berjumlah 5 ekor karena
larva masih sangat rentan. Parameter yang diamati adalah
pertumbuhan panjang dan perkembangan morfologis dari larva
tersebut. Data pertumbuhan panjang bersifat kuantitatif sedangkan
perkembangan morfologis bersifat kualitatif misalnya perubahan
warna tubuh, jumlah garis tubuh, dan perkembangan sirip dari larva
ikan badut. Pengamatan perkemabangan morfologis biasanya diperlukan
saat menyeleksi bakal calon induk unggul sejak dini dan
mengantisipasi kemungkinan abnormalitas. Alat yang digunakan untuk
sampling pertumbuhan panjang antara lain penggaris dan milimeter
blok. Kertas milimeter blok yang telah dilapisi plastik digunakan
untuk mengukur larva yang masih berukuran kecil dan masih dalam
kondisi rentan.
Gambar 8. Sampling pertumbuhan panjang larva ikan badut Metode
sampling dilakukan dengan cara larva diambil menggunakan seser
sebanyak 10-20 ekor dan seser dibiarkan mengambang di permukaan
bak. Larva dari dalam seser diambil menggunakan potongan gelas
plastik lalu diletakkan pada milimeter blok ataupun penggaris yang
terdapat dalam potongan pipa dan dihitung panjang totalnya kemudian
dicatat. Kondisi larva saat penghitungan panjang diusahakan tidak
kering dan selalu terkena air walaupun sedikit. Larva yang sudah
dihitung dikembalikan ke dalam bak dan tidak dicampurkan ke dalam
seser kembali. Larva ikan badut yang telah mencapai umur D25 dapat
dipanen dan dipindahkan ke wadah pemeliharaan berupa akuarium namun
larva yang layak dipanen yaitu yang sudah merespon baik pelet.
Apabila diamati perkembangan morfologinya mulai muncul garis putih
ke-3 di pangkal ekor walaupun masih samar. Sebelum pemindahan
dilakukan grading terlebih dahulu. Hal ini dilakukan dengan tujuan
menyeragamkan ukuran larva pada saat ditempatkan di akuarium
sehingga kompetisi makan pada larva berukuran kecil dan besar dapat
dihindari. Ikan badut tidak bersifat kanibal sehingga penyeragaman
ukuran bukan untuk tujuan menghindari kanibalisme. Larva dipanen
dengan cara air disurutkan sampai 30% dari volumenya. Larva diambil
dengan menggunakan saringan kemudian ditampung di baskom kecil dan
diletakkan sementara pada wadah untuk digrading yang menggunakan
styrofoam yang telah diisi air laut. Pemanenan larva dilakukan
dengan
menyertakan air media pemeliharaan karena larva belum terlalu
kuat apabila kontak langsung dengan udara. Larva tersebut digrading
berdasarkan panjang dan morfologinya. Ukuran 1,5 cm dimasukkan ke
dalam akuarium sedangkan apabila < 1,5 cm dimasukkan ke dalam
bak pemeliharaan larva kembali. Larva digrading kemudian dihitung
jumlahnya untuk mengetahui sintasan selama pemeliharaan larva di
bak fiber. Tingkat kelangsungan hidup pada larva ikan badut yang
dipelihara di bak fiber F5 sebesar 97,57% dengan penebaran awal
sebanyak 1064 ekor larva berasal dari 3 pasang induk (Ioc3 = 584
ekor, Ioc5 = 320 ekor, Ioc7 = 150 ekor), sedangkan kematian selama
pemeliharaan 25 hari sebanyak 26 ekor. Pemberian metode continous
feeding bisa melatih pemberian pelet ke larva dengan mudah dan
meningkatkan SR larva ikan badut. H. Pemeliharaan Benih
Pemeliharaan benih dapat dilakukan di wadah akuarium berukuran 80
cm x 45 cm x 50 cm. Pada wadah ini, benih dipelihara hingga
berukuran 2-3 cm. Pakan yang diberikan berupa naupli Artemia,
kopepoda, dan pelet. Jenis pelet yang diberikan yaitu Love Larva
nomor 3 dan nomor 4. Pada ukuran 2-3 cm, benih sudah memiliki
perkembangan morfologi yang lengkap dan sudah definitif. Waktu
pemeliharaan yang dibutuhkan untuk mencapai ukuran tersebut yaitu
sekitar 2-3 bulan dari saat menetas. Pada ukuran tersebut juga
dapat dilakukan grading untuk tahap pembesaran hingga mencapai
ukuran 4-5 cm yang dipelihara di kolam beton bervolume 100 m3.
Grading dengan cara ikan yang berukuran 2,7 cm siap ditebar ke
kolam sedangkan kurang dari ukuran tersebut maka masih tetap
dipelihara di akuarium. Pada ukuran 4-5 cm, ikan badut telah
berumur 4-5 bulan. Setelah mencapai ukuran tersebut, ikan badut
dapat dikatakan dewasa dan siap untuk dijual atau digunakan sebagai
calon induk. Kegiatan pemeliharaan benih ukuran 2-3 cm dan 3-4 cm
yang dilakukan yaitu mengikuti pemberian pakan dan penyiponan.
Secara umum metode pemberian pakannya sama dengan saat larva.
Frekuensi pemberian pakan yaitu
pelet 2 kali/hari dan pakan hidup 2 kali/hari. Balai Besar
Pengembangan Balai Laut Lampung sedang melakukan penelitian tentang
pemeliharaan benih dengan akuarium yang disusun secara berseri.
Benih yang digunakan berukuran 2 cm. Sistem pemeliharaan berseri
dilakukan dengan cara benih dipelihara pada empat akuarium yang
berbeda namun hanya terdiri dari 1 inlet dan 1 outlet sedangkan
keempat akuarium tersebut dihubungkan dengan pipa untuk membentuk
sistem resirkulasi kemudian pada akuarium ke-4 air dibuang.
Kelebihan sistem ini yaitu air pemeliharaan dapat digunakan 3-4
kali sebelum dibuang. Flow through system pada pemeliharaan ini
dapat menghemat air laut yang digunakan. I. Pengepakan dan
Transportasi Benih Benih ikan badut Amphiprion ocellaris siap jual
pada ukuran 2-3 cm dan 3-4 cm dengan metode pengepakan yang sedikit
berbeda. Pada saat praktek lapang, ada permintaan ikan badut
sebanyak 1500 ekor untuk ukuran 3-4 cm yang akan dikirim ke
Jakarta. Pemanenan ikan yang akan dikirim biasanya seminggu sebelum
pengepakan. Pemuasaan dilakukan selama 3-4 hari pada wadah yang
berbeda dengan wadah pemeliharaan. Ikan digrading sesuai dengan
permintaan konsumen dan dilakukan pada air mengalir. Alat dan bahan
yang digunakan untuk pengepakan benih ikan badut dapat dilihat pada
Tabel 12. Sehari sebelum pengepakan dipersiapkan kantong pastik
yang dibentuk berlapis dua kemudian diikat ujung-ujungnya
menggunakan karet. Hal tersebut bertujuan agar mencegah kebocoran
saat transportasi. Setelah itu kantong plastik dibalik sehingga
posisi ikatan tadi berada di dalam plastik.
Tabel 12. Bahan yang digunakan untuk pengepakan No. 1. 2. 3. 4.
5. 6. 7. 8. 9. 10. Jenis Bahan Kantong plastik ukuran 1030 cm atau
2540 cm Karet Lakban/selotip besar Es batu Oksigen Murni Styrofoam
Potongan gelas plastic Gayung Serokan Rombong Pengepakan dilakukan
pada pagi hari yaitu sekitar pukul 05.00 di laboratorium ikan hias
BBPBL Lampung. Tahap yang dilakukan yaitu plastik berukuran 2540 cm
yang telah berlapis 2 dimasukkan ke dalam ember berukuran 10 L
dalam posisi terbuka. Plastik diisi air sebanyak 2 L. Ikan yang
telah dipanen dan dipuasakan kemudian dihitung menggunakan saringan
teh. Ikan yang sudah dihitung dimasukkan ke dalam baskom kecil yang
sudah diisi air laut sebanyak 1 L. Ikan tersebut kemudian
dimasukkan ke dalam plastik tersebut dengan kepadatan 61 ekor/
kantong. Plastik yang sudah diisi ikan kemudian diberi oksigen.
Pemberian oksigen awalnya disemprotkan ke dalam air untuk
meningkatkan DO kemudian selang oksigen diangkat perlahan sambil
diudarakan ke dalam plastik sampai ruang pada plastik penuh setelah
itu diikat dengan karet berlapis dua. Kemasan tersebut dimasukkan
ke dalam kotak styrofoam dan disusun rapi. Satu kotak styrofoam
dapat diisi 6 bungkus plastik besar. Kemudian dimasukkan es batu di
sela-sela bungkus plastik lalu styrofoam ditutup dengan lakban dan
disusun.
J. Kultur Pakan Alami Kegiatan pembenihan terutama dalam
pemeliharaan larva sangat dipengaruhi oleh ketersediaan pakan
khususnya pakan hidup. Pada stadia larva dibutuhkan pakan hidup
untuk memenuhi kebutuhan nutrisinya. Jenis pakan hidup yang
diberikan pada larva dan benih ikan badut berupa zooplankton.
Menurut Djarijah (2005), kriteria pakan hidup yang baik sebagai
pakan larva adalah ukurannya sesuai dengan bukaan mulut larva,
kandungan sumber nutrisinya tinggi, gerakannya menarik bagi ikan
tetapi tidak terlalu aktif sehingga mudah ditangkap, mudah dicerna
oleh ikan, tidak mengeluarkan senyawa beracun, dan mudah
dibudidayakan. Pakan hidup yang dibutuhkan dalam pembenihan A.
ocellaris yaitu rotifera, kopepoda, naupli Artemia, dan
Diaphanosoma. Sebagai pakan hidup untuk larva adalah Artemia dewasa
dan blood worm. Kultur zooplankton dilakukan di laboratorium
zooplankton sedangkan kultur Artemia dewasa dilakukan mandiri oleh
laboratorium ikan hias. Blood worm biasanya merupakan hasil samping
dari kultur Artemia tersebut. Kultur Artemia dewasa sangat
ditunjang oleh fermentasi sebagai asupan nutrisi dan bahan pengkaya
karena mengandung probiotik. Selain itu juga dilakukan penetasan
siste Artemia setiap hari di laboratorium ikan hias untuk menunjang
kebutuhan pakan larva dan benih ikan badut. 1. Penetasan Siste
Artemia Penetasan siste Artemia menggunakan wadah dengan kapasitas
20 L yang sudah dibersihkan sebelumnya. Media yang digunakan untuk
penetasan siste Artemia adalah air laut dan air tawar dengan
perbandingan 3:1 kemudian aerasi dihidupkan. Setelah itu siste
Artemia ditambahkan sebanyak 30 gram dan didiamkan selama 24
jam.
Panen naupli Artemia dilakukan pada pagi hari sekitar pukul
08.00-09.00 dengan mengangkat aerasi terlebih dahulu. Artemia dalam
wadah kemudian disaring dengan menggunakan plankton net lalu
dibilas dan ditempatkan dalam wadah berupa baskom. Kemudian
dimasukkan ke dalam wadah berupa botol plastik bekas yang sudah
dirancang untuk pemisahan antara naupli Artemia dengan cangkangnya.
Setelah itu diamkan selama 15 menit hingga cangkang artemia
mengapung dan naupli Artemia mengumpul di dasar wadah. Naupli yang
terkumpul di dasar wadah dibuka kran airnya lalu langsung dialirkan
ke dalam wadah baskom terlebih dahulu. Setelah pemisahan diulang
sebanyak dua kali baru naupli dimasukkan ke wadah penampungan
berupa ember yang berkapasitas 20 L. Ember tersebut dalam keadaan
bersih dan telah berisi air laut yang diberi aerasi. Pada tahap
pemanenan naupli harus diperhatikan benar agar cangkang tidak
terbawa ke dalam wadah penampungan dan agar ketika diberikan pada
larva tidak termakan karena dapat membahayakan organ pencernaan
larva. Setelah itu langsung disiapkan kembali untuk penetasan
selanjutnya. Penetasan naupli Artemia dilakukan setiap hari. Naupli
Artemia yang telah dipanen digunakan untuk pakan larva dan benih.
Naupli Artemia dapat dipelihara sampai ukuran tertentu untuk
diberikan pada induk ikan badut. Untuk memenuhi jumlah Artemia
sampai kebutuhan untuk induk ikan badut maka pada saat penetasan
siste Artemia ditambahkan 15 gram dari dosis semula. 2. Kultur
Artemia Dewasa Siste Artemia yang sudah menetas menjadi naupli
dapat dilanjutkan dengan proses pemeliharaan artemia sampai menjadi
artemia dewasa. Tahapantahapannya yaitu dengan memasukkan naupli
Artemia ke dalam wadah berupa bak fiber dengan kapasitas 2 m3 yang
telah diisi dengan air laut dan fitoplankton lalu diaerasi. Setiap
harinya pada bak tersebut harus diberikan fermentasi sebagai asupan
nutrisi untuk Artemia dan diberikan 2 kali sehari yaitu pagi dan
sore.
Setelah 2-3 minggu pemeliharaan maka Artemia siap diberikan
sebagai pakan induk.
Gambar 9 dan 10. Bak kultur dan bentuk Artemia dewasa
3. Pembuatan Fermentasi Fermentasi merupakan pakan yang
diberikan untuk kultur Artemia. Komposisi dalam pembuatan
fermentasi dapat dilihat pada Tabel 13. Tabel 13. Komposisi
Fermentasi Bahan Tepung Beras Pakan Udang / Dedak Molase Probiotik
Air Laut Dosis 1 kg 50-100 g 250 ml 250 ml 5L
Pembuatan fermentasi dilakukan dengan mencampur tepung beras
dengan air laut sebanyak 5 L dalam wadah ember berkapasitas 20 L
yang sudah bersih. Kemudian campuran tersebut disaring menggunakan
saringan 150 m lalu
ditambahkan 50-100 gram pakan udang atau dedak. Setelah itu
disaring lagi dengan saringan 150 m dan ditambahkan molase sebanyak
125 ml lalu disaring lagi dengan saringan 150 m dan ditambahkan
probiotik sebanyak 150 ml. Semua bahan dipastikan tercampur dengan
baik lalu diendapkan selama 5-7 hari. Hasil endapan dari campuran
bahan tersebut disaring kembali dengan saringan 30 m lalu
ditambahkan lagi molase sebanyak 125 ml dan bakteri sebanyak 100
ml. Penambahan molase sebanyak 2 kali agar lebih efektif. Setelah
semua tercampur, tahap terakhir yaitu dimasukkan ke dalam
botol-botol bekas agar memudahkan dalam penggunaannya dan siap
diberikan untuk pakan Artemia dan pakan hidup lainnya. Biasanya
fermentasi diberikan pada kultur Artemia sebanyak 375 L setiap 2
kali sehari.
BAB III PENUTUP A. Kesimpulan Ikan badut adalah ikan dari anak
suku Amphiprioninae dalam suku Pomacentridae. Ada dua puluh delapan
spesies yang biasa dikenali, salah satunya adalah genus Premnas,
sementara sisanya termasuk dalam genus Amphiprion. Mereka tersebar
di lautan Pasifik, Laut Merah, lautan India, dan karang besar
Australia. Dimana dalam kegiatan teknik pemijahan ikan badut
(Amphiprion), yaitu sebagai berikut: Pemeliharaan calon induk
Pemeliharaan Induk terdiri dari: pemebrian pakan, Pengelolaan KA,
dan Pencegahan hama dan penyakit Penjodohan Pemijahan Induk
Penetasan Telur Pemeliharaan larva: persiapan wadah, penebaran
larva, pemberian pakan, penngelolaan KA, pencegahan hama dan
penyakit, sampling Pemeliharaan Benih Panen dan Pengepakan serta
transportasi Kultur Pakan Alami
B. Saran Sebaiknya dilakukan penguasaan teknik pembenihan ikan
badut sehingga dapat melakukan pembenihan ikan badut dengan baik.
Sehingga para eksportir ikan hias tidak bergantung pada
penangkapan. Kegiatan budidaya merupakan solusi dalam mengurangi
kegiatan penangkapan di alam. Teknologi rekayasa ikan diharapkan
dapat terus
berkembang sehingga dapat menjadikan ikan badut sebagai salah
satu komoditas budidaya unggulan bagi negara Indonesia di masa yang
akan datang.
DAFTAR PUSTAKA
http://dheaprof.wordpress.com/2010/02/12/kegiatan-pembenihan-ikan-badut-dibbpbl-lampung/
MODUL DOSEN
: TEKNIK PEMBENIHAN IKAN BADUT (Amphiprion ) : Ir. Hj. Hasniar,
M.P
OLEH KETUA :HASNI 0924015
ANGGOTA : A.CITRA NIANTISARI 0924001 AYU INDAH SARI IMANUEL
SIDANG 0924006 0924018
MUHAMMAD HAMZAH 0924029 MUH. LUTFHI 0924028
JURUSAN BUDIDAYA PERIKANAN
POLITEKNIK PERTANIAN NEGERI PANGKEP 2011
