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Efecto de la Suplementación Nitrogenada de Bagazo de Caña de Azúcar sobre el Incremento de los Rendimientos del Hongo Ostra Pleurotus
ostreatus (AGARICALES: TRICHOLOMATACEAE)
Edwin Gudiel Morales Cutzal
Proyecto de Graduación
para obtener el título de
Ingeniero Agrónomo
con el grado académico de
Licenciatura en Ciencias Agrícolas
Guácimo, Limón, Costa Rica
2009
iii
La Universidad EARTH certifica que el Proyecto de Graduación titulado
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre el Incremento de los Rendimientos del Hongo Ostra
Pleurotus ostreatus (AGARICALES: TRICHOLOMATACEAE)
Presentado por
Edwin Gudiel Morales Cutzal
Reúne las condiciones para obtener el título de Ingeniero Agrónomo
con el grado académico de Licenciatura
Decano de Asuntos Académicos
Manuel Cerrato, Ph.D.
Asesor
Fritz Elango, Ph. D
Diciembre 2009
v
Dedicatoria
Este documento se lo dedico al señor Jesucristo, ser maravilloso y el motivo de mi vivir. A mi
querida madre Francisca Cutzal y hermanos que han sido mi inspiración para luchar cada día.
Agradecimiento
Agradezco al señor todopoderoso, quién por su gracia me ha dado esta vida y de permitirme
lograr mis sueños, a él le agradezco infinitamente todo.
Al Grupo Cristiano de la EARTH (JOCRER) por darme la oportunidad de convivir y aprender
sobre la vida y desarrollar mi vida espiritual.
A mi querida madre, por haberme apoyado en todo momento en mi vida académica, en lo
emocional y espiritual.
Agradezco a mis hermanos que me han enseñado a vivir y aprender de ellos.
Agradezco a mi asesor Fritz Elango quien me brindó incondicionalmente su apoyo durante la
investigación.
A mis amigos, amigas, compañeros y compañeras de la EARTH por apoyarme en diferentes
momentos de mi vida en la universidad.
vii
Resumen
Con el propósito de mejorar el rendimiento (eficiencia biológica) del hongo ostra Pleurotus
ostreatus producido a partir del bagazo de caña de azúcar, el presente estudio evaluó
diferentes niveles de suplementación nitrogenada orgánica (semolina de arroz) e inorgánica
(nitrato de amonio). En la primera prueba, se comparó la eficiencia biológica (E. B.) de 4 niveles
de semolina de arroz y cuatro del nitrato de amonio. Los rendimientos no demostraron
diferencias estadísticamente significativas entre los diferentes niveles de ambos suplementos.
La segunda prueba evaluó tres niveles de ambos tipos de suplementos en bagazo de caña
composteado y no composteado. No se encontró diferencias estadísticamente significativas con
sustratos composteados, a diferencia del sustrato no composteado que si presentó diferencias
entre los niveles de suplementación. 20 % de semolina en bagazo de caña no composteado
aumentó los rendimientos con una eficiencia biológica de 50,5 %, pero con más altos niveles de
contaminación por el hongo Trichoderma sp.,y Neurospora spp., principalmente. Por otro lado,
el 0,5 % de nitrato de amonio presentó una E. B. significativa de 46,6 %.
Palabras clave: Hongo ostra, bagazo de caña, suplementación, nitrato de amonio, semolina de
arroz, eficiencia biológica, sustrato composteado.
viii
Abstract
With the aim of increasing oyster mushroom yields produced from sugarcane bagasse, the
present study evaluated different levels of organic (rice bran) and inorganic (ammonium nitrate)
nitrogen supplements. The first trial evaluated four levels of rice bran and four levels of
ammonium nitrate supplements. No statistically significant yield differences were obtained by
both types of supplements. The second trial evaluated levels of both types of supplements in
composted and non-composted sugarcane bagasse. No statistically significant differences were
found among the treatments of the composted substrate, whereas statistically significant yield
differences were obtained in the non-composted treatments. The non-composted bagasse
supplemented with 20 % rice bran gave the highest yield increases with a biological efficiency
(B. E.) of 50,5 %, but the inorganic supplement caused an increase in fungal contamination by
Trichoderma sp., and Neurospora spp. On the other hand, a 0,5 % of ammonium nitrate
supplement gave the highest statistically significant yield increase with a biological efficiency of
46,6 %.
Key words: Oyster mushroom, sugarcane bagasse, supplements, ammonium nitrate, rice bran,
biological efficiency, composted substrate.
ix
Lista de Contenido
Página
Dedicatoria ................................................................................................................................... v
Agradecimiento ............................................................................................................................ v
Resumen ..................................................................................................................................... vii
Abstract ..................................................................................................................................... viii
Lista de Contenido ..................................................................................................................... ix
1 Introducción ........................................................................................................................... 1
2 Objetivos ................................................................................................................................. 7
2.1 Objetivos Específicos ................................................................................................... 7
3 Materiales y Métodos ............................................................................................................. 8
3.1 Ubicación del Proyecto ................................................................................................ 8 3.2 Obtención y Preparación del Cultivo Puro ................................................................... 8 3.3 Preparación de la Semilla del Hongo o Spawn ............................................................ 8 3.4 Obtención y Preparación del Sustrato ......................................................................... 9 3.5 Pasteurización del Sustrato ....................................................................................... 11 3.6 Inoculación de los Sustratos ...................................................................................... 11 3.7 Colonización y Fructificación ...................................................................................... 12
3.7.1 Primera Prueba .............................................................................................. 12 3.7.2 Segunda Prueba ............................................................................................ 13
3.8 Recolección de Datos y Criterios de Evaluación ....................................................... 14
4 Resultados y Discusión ...................................................................................................... 15
4.1 Resultados de la Primera Prueba .............................................................................. 15 4.2 Resultados de la Segunda Prueba ............................................................................ 17
4.2.1 Colonización de los tratamientos ................................................................... 18 4.2.2 Contaminación de los tratamientos ................................................................ 21 4.2.3 Eficiencia biológica de los tratamientos ......................................................... 22 4.2.4 Eficiencia biológica entre los tratamientos composteados y no composteados
....................................................................................................................... 24 4.3 Conclusiones y Recomendaciones Finales ............................................................... 25
5 Lista de Referencias Bibliográficas ................................................................................... 27
6 Anexos .................................................................................................................................. 29
6.1 Anexo 1. Termómetro de Máximos y Mínimos Usado para la Medición de la Temperatura ............................................................................................................... 29
6.2 Anexo 2. Medidor de Humedad y Temperatura Modelo TH4-7F, de la Marca DICKSON Utilizado para la Medición de la Humedad y Temperatura del Cuarto de Producción de Hongos ............................................................................................... 29
x
6.3 Anexo 3. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Eficiencia Biológica (%) de los Tratamientos de la Primera Prueba ................................................................. 29
6.4 Anexo 4. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Colonización (%) a los 6 Días de los Tratamientos Composteados de la Segunda Prueba ............................. 30
6.5 Anexo 4. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Colonización (%) a los 12 Días de los Tratamientos Composteados de la Segunda Prueba ............................. 30
6.6 Anexo 5. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Colonización (%) a los 6 Días de los Tratamientos No Composteados de la Segunda Prueba ........................ 30
6.7 Anexo 5. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Colonización (%) a los 12 Días de los Tratamientos No Composteados de la Segunda Prueba ........................ 31
6.8 Anexo 6. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Eficiencia Biológica (%) de los Tratamientos de la Segunda Prueba ............................................................... 31
6.9 Anexo 7. Resultado de los análisis de varianza de las variables evaluadas ............. 32 6.10 Anexo 8. Test de tukey para las medias de la variable eficiencia biológica de los
tratamientos no composteados .................................................................................. 32
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
1
1 Introducción
El cultivo de los hongos comestibles se ha venido desarrollando desde más de 200 años en
Europa con el cultivo del champiñón Agaricus bisporus y en Asia con la especie Lentinula
edodes y Auricularia spp. En América fue iniciado como una actividad de interés durante la
segunda mitad del siglo XX (Sánchez y Royse, 2001).
A nivel mundial la producción de hongos comestibles se ha incrementado más de 35 veces,
desde las 24 000 t en 1962 a 8 500 000 t en el 2002. Además, se han observado cambios en
las especies cultivadas. En 1997 la especie más cultivada fue el champiñón A. bisporus que
representaba el 31,8 % de la producción mundial, siguiendo la especie L. edodes con un 25,4 %
y P. ostreatus representando el 14,2 % de la producción mundial de hongos comestibles
(Rodríguez, 2007).
En 1994 China era el país de mayor productor de Pleurotus spp., representando el 82,0 % de la
producción mundial de esta especie. Mientras que en los países de América en 1998 el mayor
productor era México con un 47,53 % de la producción de Pleurotus spp., siguiendo Estados
Unidos, Canadá y Brasil con 23,65 %, 14,79 % y 11,72 % respectivamente (Sánchez y Royse,
2001). El Pleurotus ostreatus es uno de los hongos mas cultivados, sus características
nutricionales lo hacen importante por presentar un contenido rico en proteínas, fibra, hidratos de
carbono, vitaminas y minerales, además de poseer un sabor y olor únicos. En general el hongo
ostra se considera de importancia medicinal por llevar a cabo actividades antibacteriales,
antiviral, anti tumores, hematológicas y ayuda a la reducción de los niveles de colesterol
(Rodríguez, 2005).
Sánchez y Royse (2001) afirman que el hongo ostra, es un cultivo con una ventaja apreciable
por crecer en una amplia variedad de materias primas; por ejemplo, en el trópico se utiliza el
aserrín, rastrojo de arroz, aserrín mezclado con hojas de guaje Leucaena spp., y combinaciones
de olote de maíz, cáscara de semilla y ramas de algodón, bagazo y hojas de caña, tallos y
hojas de maíz, pastos, cascara de arroz, lirio acuático y entre otros como la pulpa de café que
es utilizado en países cafetaleros tal es el caso de México (Chang y Quimio, 1982 ), su
capacidad de crecer en una amplia biodiversidad de materiales y por las propiedades
medicinales son razones por la que es una de las especies más producidas a nivel mundial.
Los hongos pertenecen al grupo de los microorganismos heterótrofos que no poseen clorofila y
no son capaces de sintetizar los hidratos de carbono para su nutrición. Sin embargo, los
obtienen a partir de los organismos muertos, razón por la cual son llamados también
organismos saprofitos (Vedder, 1991). La base de obtener los nutrientes de los organismos
muertos es la capacidad oxidativa e hidrolítica que les confiere la secreción de un amplio
espectro de enzimas. Así es como el sustrato escogido para la producción de hongos
comestibles debe contener una fuente de carbono y una fuente de nitrógeno que suplan las
necesidades nutritivas para el desarrollo del hongo.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
2
Debido a la diversidad de materiales que se pueden utilizar como substrato, el material a usar
dependerá de la disponibilidad en el lugar de producción. Costa Rica es un país con una
producción de caña para la fabricación de azúcar de aproximadamente 56 200 hectáreas y se
asegura que se siembra este cultivo casi en todo el país, el bagazo de caña como residuo de la
industria azucarera es utilizada también para diversos motivos como; producción de
biocombustible, alimentación animal, abonos y entre otros (Chaves, 2008).
Sánchez y Royse (2001) estiman que de 1000 kg de caña de azúcar se genera 231 kg de
bagazo, tomando en cuenta la alta producción de caña de azúcar en Costa Rica, existe una
gran oportunidad de utilizar este residuo para la producción de hongos comestibles, dando de
esta forma un valor agregado a un material que podría ser desechado por los productores
azucareros y además se contribuye a evitar problemas ambientales. Es así como el bagazo de
caña es un material de interés para la producción del hongo P. ostreatus.
Chang y Quimio (1982) confirman que un proceso de compostaje de los sustratos que se
utilizan para el crecimiento y producción de los hongos pueden dar mejores resultados. Sin
embargo, menciona también que para el caso del bagazo de caña de azúcar, este puede ser o
no ser composteado.
Mientras Sánchez y Royse (2001) de igual manera mencionan que para la producción del
hongo ostra no se requiere de un proceso de composteo complejo y prolongado. Sin embargo,
afirman buenos resultados al tratar al bagazo de caña alrededor de 15 días de fermentación
(Cuadro 1), mientras otros materiales como la pulpa de café que también muestra rendimientos
aceptables si se hacen mezclas con materiales orgánicos con 2 % de cal y de 2 a 3 días de
composteo a una temperatura de 50 oC a 60 oC.
En general, Chang y Quimio (1982) afirman que los sustratos pueden ser composteados de 6 a
30 días y para una descomposición rápida se le puede dar de 3 a 4 días, dependiendo del tipo
de sustrato. Además, encontraron que en Puerto Rico utilizaban el bagazo de caña sin ningún
proceso de composteo.
Moda et al. (2005) evaluaron el lavado de bagazo de caña en agua con flujo continuo durante
una hora como reemplazo del proceso de compostaje y pasteurización en agua caliente a 80 oC
durante dos horas del bagazo. Los resultados dieron que para el lavado del bagazo se
encuentra una eficiencia biológica de 19,6 % y 44 % de contaminación, para el caso de la
pasteurización del bagazo la eficiencia biológica fue de 13,86 %, con 70 % de contaminación.
Moda et al. (2005) concluyeron que no hay diferencias estadísticas entre ambos resultados, por
lo tanto recomiendan utilizar el lavado en agua a temperatura ambiente del bagazo para reducir
costos. Además que, el grado de contaminación resultó ser menor en comparación al método
de pasteurización.
En el Cuadro 1 se muestra la eficiencia biológica (E. B.) que representa la mediación porcentual
del rendimiento fresco de carpóforos a partir del peso seco del sustrato pasteurizado (Stamets,
2000) en algunas mezclas de sustratos de bagazo de caña con otros materiales. Así como la
eficiencia biológica de otros sustratos. Sánchez (1997) demostró que el bagazo de caña dio
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
3
mejores resultados que el desecho de palmito y paja de arroz, dando como rendimiento un
promedio de 15,5 Kg/m2 de sustrato, sin señalar la E. B. de los materiales.
Cuadro 1. Ejemplos de la eficiencia biológica de algunas mezclas de sustrato a base de bagazo de caña y otros tipos de sustratos para P. ostreatus. †
Sustrato Eficiencia biológica (%)
Bagazo de caña de azúcar (50%) Pulpa de Café (50%) 96,9
Bagazo de caña de azúcar (50%) Paja de cebada (50%) 66,0
Bagazo de caña de azúcar (66,6%) (15 días fermentado) Espiga de maíz (33,3%) 105,0
Cascarilla de arroz Harina de avena (2%) 38,0
Paja de arroz 79,2
Cascarilla de arroz 56,1 Aserrín de pino (suplementados con salvado de arroz) 44,8
Residuo de algodón 92,0
Pulpa de café (5 días de fermentación) 175,8
Jacinto de agua 125,7 † Sánchez y Royse (2001).
Sánchez y Royse (2001) señalan al bagazo de caña como un subproducto de la industria
azucarera mus utilizado para la producción de hongos, presentando un contenido de 0,18 % de
nitrógeno y una relación C:N (carbono:nitrógeno) de 314:1 (Sánchez y Royse, 2001.),
encontrándose este ultimo valor por arriba de 40:1 que es la relación optima determinado por
estos mismos autores.
Por otro lado, Arias y Flores (2006) confirman que la relación de C:N entre 30:1 a 300:1 en los
sustratos son aceptables para la colonización del micelio, y que además, confirman que
notificaron por medio de colonización in vitro (en cajas petri de cristal) que las relaciones C:N
entre los 100 a 200 fueron los que presentaron mejores resultados de colonización en
comparación con los de baja relación de C:N.
Se ha observado que para la especie Pleurotus ostreatus, es muy frecuente utilizar en el
bagazo de caña de azúcar algún tipo de suplemento nitrogenado para aumentar el nivel de este
elemento y además para mejorar la relación carbono-nitrógeno en la mezcla. En otras
investigaciones aseguran que la suplementación de harinas de girasol, algodón y soja en paja
de arroz ha incrementado de 50 % a 100 % los rendimientos en comparación de los sustratos
no suplementados (Sánchez y Royse, 2001).
Moda et al. (2005) evaluaron el bagazo de caña para el cultivo de Pleurotus sajor caju con dos
tipos de suplementos nutricionales. El primero consistió en harina de maíz (suplemento
orgánico), aplicando un 10 % del peso húmedo del sustrato. El segundo fue una aplicación de
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
4
un suplemento mineral, obtenido de un cultivo hidropónico de lechuga con la siguiente
composición en 200 mL de agua destilada: 7,5 nitrato de calcio, 5,0 g de nitrato de potasio; 1,5
g de fosfato mono amonio; 4,0 g de sulfato de magnesio, 0,25 mL de hierro EDTA; y 1,0 mL de
una solución de micronutrientes. La aplicación de esta solución mineral se realizó 10 días
después del inicio de la incubación a una concentración de 10 mL por bolsa de sustrato que
contiene 465 g de bagazo de caña húmedo.
El resultado favoreció a la suplementación mineral ya que dio una diferencia estadística a
comparación a la suplementación orgánica, al dar una eficiencia biológica de 30,03 %, mientras
que para la suplementación orgánica se encontró una eficiencia biológica de 15,66 %. Además,
hubo un tercer tratamiento (control) sin ninguna suplementación, dando como resultado un
26,62 % de eficiencia biológica. Los datos obtenidos para determinar la eficiencia biológica fue
de la recolección de datos durante un período de 50 días de cosecha (Moda et al., 2005).
El uso de los suplementos nutricionales fortalece el contenido de grasa y fibra, pero se usa
principalmente por el aumento del contenido de nitrógeno en los sustratos (Cuadro 2), entre
ellos están los suplementos orgánicos, llamados de liberación lenta y los suplementos
inorgánicos.
Existe comercialmente un suplemento nutricional de liberación lenta, compuesta por soya
entera con una cobertura de parafina o soya desnaturalizada y harinas de plumas. Estas son
agregadas en rangos de 3 % a 6 % del peso del sustrato seco. El uso de este suplemento han
demostrado que al utilizar el rango de 6 %, el rendimiento aumenta arriba del 90 %, además su
aplicación en rango de 3 % durante la colonización del sustrato permite que la producción
reduzca de 2 a 3 días. Confirman además que el uso de suplementos nutricionales puede
causar sobrecalentamiento de los sustratos. Sin embargo, para evitar problemas en el sustrato
como contaminación, los productores necesitan tener un sistema adecuado de aeración o
regulación de temperatura (CAS, 2003).
Tomando en cuenta que en costa Rica hay una producción considerable del cultivo de arroz, de
la cual como producto secundario se obtiene la semolina o harina a partir del proceso industrial
de este producto, se hace fácil la disponibilidad de este material para usarse como suplemento
nutricional para la producción de hongos, siendo este un producto orgánico que se considera
que el efecto de la liberación de los nutrientes actuará lentamente a lo largo del proceso de
colonización y fructificación del hongo. La cantidad de este material a utilizar depende del tipo
de sustrato que se está utilizando. En el bagazo de caña es muy común utilizar semolina de
arroz desde un rango de 10 % a 20 % sobre el peso seco del sustrato (Chang y Quimio, 1982).
Resultados obtenidos por Viteri (2003) al evaluar la semolina de arroz en bagazo de caña
encontró que, una combinación del 80 % de bagazo y un 20 % de semolina de arroz se obtiene
una eficiencia biológica de 7,37 %.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
5
Cuadro 2. Composición química del salvado de arroz (%, sms). †
Material
Materia Orgánica
N Total
Grasa Bruta
Fibra Bruta
Extracto libre de N
Cenizas
C:N
Salvado de arroz (entero) 88,5 2,32 18,3 11,8 43,9 11,5 22,1 † Sánchez y Royse (2001).
Por otro lado, para determinar el efecto de un suplemento de liberación lenta, se evalúa también
el comportamiento del nitrato de amonio (NH4NO3) como suplemento inorgánico de liberación a
corto plazo.
Zadrazil (1980) demostró en una investigación el efecto del nitrato de amonio como suplemento
del sustrato de paja de trigo para la especie Pleurotus sajor caju, comprobando tres niveles de
nitrato de amonio en solución con agua, siendo estos; 0,75 %, 2,25 % y 3,75 % del peso seco
de la paja de trigo, dando como resultado en los dos primeros niveles rendimientos por encima
del control (sustrato sin nitrato de amonio), mientras que el nivel más alto de nitrato de amonio
dio un rendimiento por debajo del control. Los rendimientos encontrados para los tres niveles de
nitrato de amonio son; 4,69 %, 5,03 % y 2,93 %, respectivamente.
En la misma investigación, Zadrazil (1980) demostró que la suplementación de la paja de trigo
con material orgánico (Harina de soya y harina de alfalfa) aumenta la eficiencia biológica en un
300 % y con la suplementación inorgánica (nitrato de amonio) incrementa un 50 %.
Es importante considerar que las fuentes de nitrógeno puede influir en el cambio del pH del
medio, en el caso del genero Pleurotus spp., acidifica el medio al degradar el amonio presente
en el sustrato, tomando en cuenta que el hongo Pleurotus spp., se desarrolla adecuadamente
entre pH 5 y 6. Además, la mayoría de los contaminantes que se encuentran durante el proceso
del cultivo de hongos encuentran condiciones adecuadas para su desarrollo en valores bajos de
pH.
El Trichoderma hamatum es uno de los principales contaminantes del Pleurotus spp., éste
reduce notablemente su crecimiento a pH 7, y es totalmente inhibida a pH de 8,5 (Sánchez y
Royse, 2001). Considerando estos puntos, parte de la evaluación del nitrato de amonio en el
bagazo de caña fue determinar su efecto sobre la contaminación del sustrato.
Diferentes técnicas y tipos de materiales que se utilizan para la producción del cultivo del hongo
ostra han sido mencionados anteriormente, de tal forma que existe información que sirve como
guía a los productores de hongos para trabajar con el cultivo. Sin embargo, se cree que algunos
métodos como por ejemplo la pasteurización, la forma de empleo y cantidad de suplementos
nutricionales, compostajes y entre otras técnicas, pueden ser un factor importante para los
costos de producción, además de que algunos métodos de producción que utilizan equipos
difícilmente disponibles para pequeños productores pueden afectar sus crecimientos en el
ámbito empresarial (Chang et al., 1993).
El cultivo de ostra es considerablemente fácil de producir, es tercero a nivel mundial en
producción, pero los rendimientos no siempre son rentables (Chang et al., 1993). Además,
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
6
señala que las producciones de algunos sectores de Europa no han tenido aumentos
considerables en su producción, y se cree que es por los bajos rendimientos encontrados y el
costo principalmente de labores, materiales y el uso de la energía que se emplea durante los
procesos de producción. Por lo que se cree que aún existe la forma de mejorar técnicas de
producción, tomando en cuenta que en cada región existen factores ambientales, disponibilidad
de materias primas y de equipos que pueden influir sobre los métodos de producción a utilizar
en el cultivo.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
7
2 Objetivos
Evaluar el efecto de la suplementación nitrogenada del bagazo de caña para el incremento de
la productividad del hongo ostra.
2.1 Objetivos Específicos
Evaluar niveles de suplemento nutricional orgánico e inorgánico sobre la colonización,
contaminación y rendimiento en el cultivo del hongo P. ostreatus.
Determinar el efecto del composteado del bagazo de caña sobre la producción del hongo P.
ostreatus.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
8
3 Materiales y Métodos
3.1 Ubicación del Proyecto
La evaluación de los métodos de producción del hongo Pleurotus ostreatus fue realizado en las
instalaciones de la universidad EARTH, ubicada en Las Mercedes, Guácimo, Limón, Costa
Rica. El clima de la región es de Trópico Húmedo y la zona de vida, de acuerdo con el Sistema
de Holdridge, es Bosque Húmedo Tropical, con una temperatura promedio anual de 27 oC, con
86 % de humedad relativa en promedio y la precipitación media anual es de aproximadamente
3400 mm.
3.2 Obtención y Preparación del Cultivo Puro
El cultivo puro de P. ostreatus proveniente de Sara Buri, Tailandia fue extraída de un medio
inclinado de Agar Papa Dextrosa (APD) para ser transferido y multiplicado por medio del tejido
micelial a cajas petri que también contenían medios de APD (Figura 1). Este proceso se llevó a
cabo en el Laboratorio de Ciencias Naturales de la Universidad EARTH, con la debida asepsia
que se debe controlar para evitar las posibles contaminaciones del medio de cultivo. Desde el
momento de la transferencia del cultivo puro a las cajas petri con APD, se esperaron 7 días y el
micelio fue utilizado en la inoculación del sustrato para la obtención de la semilla del hongo.
Figura 1. Medios de agar papa dextrosa con el micelio del hongo ostra.
3.3 Preparación de la Semilla del Hongo o Spawn
La semilla del hongo que comúnmente llamado Spawn fue preparada en el Laboratorio de
Ciencias Naturales de la Universidad EARTH, en esta fase se preparó semilla de grano a base
de sorgo, para ello fue necesario limpiar y lavar debidamente la semilla y darle un proceso de
cocción durante 25 minutos, aproximadamente. Después de la cocción de la semilla, se escurrió
el agua por un minuto por medio de un colador de plástico, enseguida se extendió sobre papel
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
9
periódico, se secaron las semillas durante una hora para darle la humedad adecuada (60% a
70%) que requiere el hongo para desarrollarse adecuadamente en el sustrato.
Después del secado de la semilla, se le mezcló 1 % de carbonato de calcio (CaCO3) y 1 % de
yeso (CaSO4) del peso total del grano. Se procedió a embolsar semilla en bolsas de polietileno
de alta densidad, de 25 cm de ancho por 35 cm de largo, con una cantidad de 200 g de semilla
de sorgo por bolsa. Estas bolsas fueron dobladas y engrapadas para asegurar que estén bien
cerradas, posteriormente se procedió a autoclavarlas por 25 minutos, a 121 oC y una presión de
1,05 kg/cm2.
Al encontrarse la semilla de sorgo a temperatura ambiente (27 0C) después de la esterilización
en el autoclave, se procedió a inocular con el micelio del hongo reproducido anteriormente en el
medio de cultivo APD, colocando en la semilla de sorgo esterilizado de 4 a 5 porciones de
aproximadamente 1 cm2 del micelio del hongo (Figura 2). Quince días después de la
inoculación del hongo a la semilla de sorgo, el spawn con un 100 % de colonización quedó listo
para ser utilizado en la inoculación del sustrato en bagazo de caña. Durante este tiempo, el
“spawn” fue incubado en el laboratorio de Ciencias Naturales de la Universidad EARTH, a una
temperatura promedio de 28 oC, estando dentro del rango 24 oC a 29 oC recomendado por Arias
y Flores (2006) para la fase de incubación.
Figura 2. Preparación del spawn con semilla de sorgo.
3.4 Obtención y Preparación del Sustrato
El bagazo de caña evaluado fue obtenido en dos diferentes lugares, que para el caso de la
primera prueba, el bagazo de caña se obtuvo de los ingenios azucareros de la zona de
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
10
Guanacaste. Mientras para la segunda prueba de la investigación, el bagazo de caña de azúcar
fue adquirido de la Hacienda Juan Viñas, de la zona de Turrialba de Costa Rica.
Según el Cuadro 3, el bagazo de caña de azúcar se evaluó en dos condiciones, el primero sin
ningún proceso de composteo, mientras la segunda con un proceso de composteo que duró 6
días. El composteo que se le dio al bagazo de caña fue un proceso simple y corto, que
básicamente consistió en el humedecimiento del material hasta llevarla a un porcentaje de
humedad alrededor del 70 %, posteriormente dicho material fue amonticulado sobre un piso de
concreto bajo techo, y con una cobertura plástica durante los 6 días. Además, durante este
tiempo el montículo recibió dos volteos, para su debida homogenización.
Después de compostear el sustrato, se procedió a hacer las mezclas tanto del material
composteado como del no composteado. Las mezclas fueron hechas según los niveles de
suplementación que se observa en el Cuadro 3, en este proceso el nitrato de amonio fue
aplicado en el materia en solución con agua, de tal forma que este ingrediente fuese
homogéneo en todas las partes. Las diferentes mezclas fueron llevadas a una humedad
aproximado de 70 %, con el fin de darle las condiciones adecuadas al hongo para su
crecimiento y desarrollo. En este proceso un tratamiento como testigo fue importante tomar en
cuenta durante el proceso de evaluación, es por eso que se dejó un control para el material
composteado y uno para el material no composteado, teniendo como resultado dos
tratamientos de control.
Con el sustrato ya preparado, se procedió a llenar las bolsas de polietileno de alta densidad (25
cm X 35 cm), resistentes al calor, asegurando que el sustrato quede bien compactado para no
dejar espacios vacios, ya que esto puede impedir la buena colonización del hongo en el
sustrato. La bolsas fueron cerradas con una boquilla de PVC de un largo de 3 cm, que a la vez
es asegurada con una liga de hule para evitar la remoción de la misma, finalmente se colocó
dentro del tubo PVC una porción de algodón para sellar la bolsa. El proceso de preparación del
sustrato se puede ver en la Figura 3.
Figura 3. Preparación de los tratamientos.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
11
3.5 Pasteurización del Sustrato
La pasteurización del sustrato es importante para evitar posible desarrollo de algún
microorganismo presente en el sustrato que pueda competir con el hongo P. ostreatus, por tal
razón este proceso es clave para el éxito del cultivo. Para la pasteurización (Figura 4), se
utilizaron estañónes de metales con un aproximado de 15 % de agua con respecto al volumen
total del estañon (calderas), esto con el fin de que el vapor del agua calentado por medio de
madera pasteurice el sustrato contenido en ello, proceso que llevó alrededor de 3 horas donde
logró elevar la temperatura interna a 90 oC, la cual fue medida por medio de un termómetro de
suelo.
Figura 4. Proceso de la pasteurización de los sustratos.
3.6 Inoculación de los Sustratos
La actividad seguida de la pasteurización consiste en la inoculación de los sustratos
pasteurizado, estos, se inocularon con el spawn preparado anteriormente en el laboratorio con
21 días de preparación previa, almacenadas a temperatura de ambiente (26 oC a 28 oC). Cada
unidad experimental o bolsas de sustrato fueron inoculadas con el spawn a razón de 2 % a 3 %
del peso del sustrato pasteurizado. El algodón que tapaba el orificio del tubo PVC fue quitado
para la incorporación del spawn de semilla de sorgo colonizado por el micelio de hongo,
quedando así esta semilla por encima del sustrato donde el hongo empieza la fase de
colonización, al finalizar la inoculación se procede nuevamente a tapar el orificio con la misma
porción de algodón.
Durante el proceso de inoculación se utilizaron guantes, mascarilla, mechero y una tijera
debidamente esterilizadas con alcohol al 70 %, siendo este un proceso que necesita de la
mayor asepsia posible para evitar cualquier fuente de contaminación.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
12
3.7 Colonización y Fructificación
La metodología y condiciones de la fase de colonización y fructificación se describirán según la
prueba, debido a que para la obtención de resultados se realizaron dos experimentos en
diferentes tiempos que a continuación se detallan.
3.7.1 Primera Prueba
Se realizo una primera prueba de los tratamientos para tomar los primeros datos a analizar. Y
además, tomando en cuenta los resultados de la primera prueba se diseño el experimento de la
segunda prueba. Para ello, se tomaron en cuenta los siguientes factores.
Niveles de suplementación orgánica e inorgánica.
Comportamiento del nitrato de amonio como factor de contaminación de otros tipos de
hongos.
Dosis de agua utilizada en el momento de la mezcla del sustrato para una humedad
aproximado de 70 %.
La primera prueba consistió en la evaluación del sustrato de bagazo de caña no composteado
en 4 niveles de concentración de nitrato de amonio y 4 niveles de semolina de arroz (Cuadro 3),
mas el control (sin suplementación) siendo en total 9 tratamientos con 6 repeticiones.
Desarrollando un diseño experimental de bloques completamente al azar. Siendo la unidad
experimental una bolsa con 1000 g de sustrato húmedo. El análisis de los resultados se realizó
con la ayuda de un software estadístico, en la que se incluyó un análisis de varianza para
determinar diferencias significativas entre medias utilizando la prueba de Tukey (Grupo InfoStat,
2009).
Esta primera prueba fue realizada en el cuarto de producción de hongos de la Finca Orgánica
de la Universidad EARTH. En dicho lugar fueron colocadas las bolsas para el proceso de
colonización hasta la cosecha.
Ya con el sustrato debidamente inoculado, las bolsas fueron colocadas al cuarto de
colonización donde se brindaron las condiciones apropiadas de luz, temperatura y humedad. La
temperatura se mantuvo a lo largo del periodo de colonización aproximadamente entre 25 oC a
30 oC, y con una humedad relativa alrededor del 75 %. Estas condiciones permite la
colonización adecuada del hongo del género Pleurotus, ya que se desarrolla a una temperatura
entre 0 oC a 35 oC y un optimo de 30 oC. Por otro lado, este hongo se desarrolla a una humedad
entre 60 % a 100 %, aunque la humedad optima encontrada para este género es de 85 % a 100
% (Sánchez y Royse, 2001).
En promedio el tiempo de colonización de los sustratos fue llevado a cabo durante 20 días.
Después de este período de tiempo, las bolsas fueron colocadas en el cuarto que cuenta con
sistema de riego, la cual fue importante para regular la temperatura y humedad durante la fase
de desarrollo de primordios y producción. La temperatura medida a través de un termómetro de
mínimos y máximos (Anexo 1) mostró una temperatura que va desde 25 oC a 28 oC y una
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
13
humedad relativa muy variada que va desde los 80 % al 100 %, tomando en cuenta que el
sistema de riego se activaba durante 15 a 30 minutos, dos veces por día.
Cuadro 3. Tratamientos de la primera prueba del bagazo de caña con suplementación orgánica e inorgánica.
Tratamiento Componentes del sustrato de bagazo de caña no composteado
T1 (control) Bagazo de caña de azúcar + sin suplemento
T2 Bagazo de caña de azúcar + 0,5 % de NH4NO3
T3 Bagazo de caña de azúcar + 1 % de NH4NO3
T4 Bagazo de caña de azúcar + 1,5 % de NH4NO3
T5 Bagazo de caña de azúcar + 2,0 % de NH4NO3
T6 Bagazo de caña de azúcar + 5 % de Semolina de arroz
T7 Bagazo de caña de azúcar + 10 % de Semolina de arroz
T8 Bagazo de caña de azúcar + 15 % de Semolina de arroz
T9 Bagazo de caña de azúcar + 20 % de Semolina de arroz
3.7.2 Segunda Prueba
Según los resultados generados en la primera prueba de esta evaluación, se realizó una
segunda prueba tomando en cuenta las variables y factores analizados anteriormente. La
segunda prueba consistió en 14 tratamientos con 7 repeticiones cada uno, tal como se puede
apreciar en el Cuadro 4. En este experimento se utilizaron 4 niveles de suplementación
correspondientes a materiales orgánicos e inorgánicos, utilizando para ello 0 %, 10 %, 15 % y
20 % de semolina de arroz y 0 %, 0,5 %, 1 % y 1,5 % de nitrato de amonio, respectivamente,
siendo estos porcentajes en base al peso seco del bagazo de caña.
A diferencia de la primera prueba, esta segunda varía en que cada tratamiento se evaluó el
bagazo en dos diferentes condiciones, siendo el primero en un sustrato composteado y el
segundo en un sustrato no composteado.
Esta segunda prueba fue hecha en un cuarto diferente a la primera prueba; esta fue, bajo las
instalaciones hecha de madera y cubierta con material de sarán, ubicada en el jardín de plantas
ornamentales de la Universidad EARTH.
La temperatura y humedad del cuarto de producción durante la fase de colonización estuvo
entre 24 oC a 32 oC y de 80% a 95 % de humedad relativa. Esta fase de colonización duró en
promedio 18 días. Enseguida de esta fase, al mismo cuarto se le dio las condiciones de
temperatura y humedad adecuada para el inicio de la productividad. En la fase de cosecha la
temperatura estaba entre 23 oC a 32 oC, y una media de 29 oC, mientras la humedad relativa
variaba de 75 % a 100 %. Estas condiciones ambientales se aproximan del rango recomendado
por Sánchez y Royse (2001), donde el rango de temperatura para Pleurotus es de 0 oC a 35 oC,
y una humedad entre 85 % a 100 %.Tanto la temperatura como la humedad fue medida a
través de un lector de temperatura y humedad modelo TH4-7F, de la marca DICKSON
(Anexo 2).
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
14
Cuadro 4. Tratamientos de la segunda prueba del bagazo de caña con suplementación orgánica e inorgánica.
Tratamiento Componentes del sustrato de bagazo de caña composteado
T1 (Control 1) Bagazo de caña de azúcar + sin suplemento
T2 Bagazo de caña de azúcar + 0,5 % de NH4NO3
T3 Bagazo de caña de azúcar + 1 % de NH4NO3
T4 Bagazo de caña de azúcar + 1,5 % de NH4NO3
T5 Bagazo de caña de azúcar + 10 % de Semolina de arroz
T6 Bagazo de caña de azúcar + 15 % de Semolina de arroz
T7 Bagazo de caña de azúcar + 20 % de Semolina de arroz
Tratamiento Componentes del sustrato de bagazo de caña no composteado
T8 (Control 2) Bagazo de caña de azúcar + sin suplemento
T9 Bagazo de caña de azúcar + 0,5 % de NH4NO3
T10 Bagazo de caña de azúcar + 1 % de NH4NO3
T11 Bagazo de caña de azúcar + 1,5 % de NH4NO33
T12 Bagazo de caña de azúcar + 10 % de Semolina de arroz
T13 Bagazo de caña de azúcar + 15 % de Semolina de arroz
T14 Bagazo de caña de azúcar + 20 % de Semolina de arroz
3.8 Recolección de Datos y Criterios de Evaluación
Los indicadores para determinar el efecto de los factores sobre los tratamientos son las
siguientes variables: porcentaje de contaminación del sustrato, tiempo de colonización del
sustrato y la eficiencia biológica (rendimiento en peso del hongo comestible sobre el peso seco
del sustrato pasteurizado)
La recolección de los datos se realizó durante la fase de colonización y fructificación del hongo,
los datos recolectados para este proyecto se encuentran las siguientes variables:
Colonización de los sustratos por tratamiento (%)
Contaminación de los sustratos (%)
Eficiencia biológica (%)
Para la eficiencia biológica, se utilizó la siguiente ecuación para su determinación:
Eficiencia biológica %R
P 100 (1)
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
15
4 Resultados y Discusión
4.1 Resultados de la Primera Prueba
Los resultados obtenidos de la primera prueba fueron principalmente de la eficiencia biológica
de cada uno de los tratamientos y repeticiones (Cuadro 3), Los resultados obtenidos fueron
convertidos a eficiencia biológica según la Ecuación 1.
Cuadro 5. Eficiencia biológica de los tratamientos.
Tratamiento Componentes del sustrato de bagazo de caña sin compostear E. B. (%)
T1 Bagazo de caña de azúcar + sin suplemento 0,00
T2 Bagazo de caña de azúcar + 0,5 % de NH4NO3 0,00
T3 Bagazo de caña de azúcar + 1 % de NH4NO3 C†
T4 Bagazo de caña de azúcar + 1,5 % de NH4NO3 C†
T5 Bagazo de caña de azúcar + 2,0 % de NH4NO3 C†
T6 Bagazo de caña de azúcar + 5 % de Semolina de arroz 30,93
T7 Bagazo de caña de azúcar + 10 % de Semolina de arroz 44,15
T8 Bagazo de caña de azúcar + 15 % de Semolina de arroz 60,67
T9 Bagazo de caña de azúcar + 20 % de Semolina de arroz 47,34 † Tratamiento contaminado.
Los resultados mostrados en el Cuadro 5 son las cosechas realizadas en un período de 30
días. Además, el período de cosecha se inició 2 semanas después de la colonización de los
sustratos. Los tratamientos T3, T4, y T5 que consiste en los niveles altos de nitrato de amonio
tuvieron una contaminación en un 100 %, principalmente del hongo Trichoderma sp y
Neurospora spp., dicha contaminación fue observada entre la primera y segunda semana de
haber inoculado los sustratos, por lo tanto estos tratamientos fueron retirados del cuarto de
producción, por esta razón no hubo cosecha en estos tratamientos.
En el Cuadro 5 se observan las variaciones de eficiencia biológicas entre tratamientos, es
notable según esta gráfica, la no presencia de producción de los tratamientos 1 y 2, que
corresponden a 0 % y 0,5 % de suplemento inorgánico (nitrato de amonio). Ambos tratamientos
tuvieron una colonización total, con cero contaminación. Sin embargo, durante el tiempo de
toma de datos, estos tratamientos no tuvieron producción de hongos.
Según Sánchez y Royse (2001), la relación de carbono nitrógeno del bagazo de caña es de
314:1, y el optimo para el hongo ostra es de 40:1. Por lo tanto, al no haber suplementado el
bagazo de caña o suplementar con nitrato de amonio un nivel bajo (0,5 %), siendo estos
suplementos para enriquecer el contenido de nitrógeno en el sustrato y mejorar las relación
carbono nitrógeno, estos tratamientos pudieron no haber mejorado estas condiciones, dando
como resultado dificultades para el desarrollo de primordios y por ende las producción de
hongos en el sustrato.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
16
Figura 5. Eficiencia biológica de los tratamientos evaluados en la primera prueba.
Por otro lado, los tratamientos de 6 a 9, que corresponden a los sustratos con suplementación
orgánica (semolina de arroz), presentaron variaciones en eficiencia biológica según se muestra
en el Cuadro 5. Además, estos mismos valores se pueden apreciar de mejor manera en la
Figura 5, donde los tratamientos 1 a 5 no presentan ninguna barra en la grafica debido a que no
hubo producción en estos, mientras los tratamientos 6 en adelante presentan claramente su
producción expresado en eficiencia biológica. Sin embargo, el análisis estadístico entre los
tratamientos 6 a 9 (Cuadro 6), indica que no existen diferencias significativas de las medias de
los tratamientos, ya que el análisis de varianza indica que el valor “p” de los tratamientos es
mayor a 0,05 (p > 0,05).
Cuadro 6. Análisis de varianza (SC tipo III)† de la eficiencia biológica de la primera prueba.
F.V. SC gl CM F p-valor
Modelo 1975,90 8 246,99 0,34 0,9385
Tratamiento 998,76 3 332,92 0,45 0,7196
Repetición 977,15 5 195,43 0,27 0,9251
Error 11046,01 15 736,40
Total 13021,91 23 † Grupo InfoStat (2009).
A partir de los resultados de la primera prueba se concluye lo siguiente:
Según los resultados de los tratamientos T3, T4 y T5, que son suplementados por altas
concentraciones de nitrato de amonio pudo haber influido en el 100 % de la contaminación
del sustrato.
El factor pasteurización, en este caso no se considera haber influido en la contaminación,
debido a que este factor fue constante en cada una de los tratamientos, y por no haber
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
17
encontrado contaminación en los demás tratamientos, se omite el efecto de esto en el
resultado sobre la contaminación. Además, Quimio et al. 1990., indica una duración de
pasteurización de 4 a 6 horas, con una temperatura de 65 oC, de tal forma que, la
temperatura de 90 oC durante más de 3 horas que se le dio al sustrato utilizado en esta
prueba, pudo haber sido suficiente para la descontaminación.
Además, en esta primera prueba la aplicación del nitrato de amonio en el sustrato no fue
hecha en dilución con agua, sino fue aplicada en forma de grano en el material, por lo tanto
se considera que no se logró una mezcla totalmente homogénea en el sustrato, es decir,
que fue posible que en algunas partes de la mezcla tuvieron altas concentraciones de nitrato
de amonio que pudo haber influido en el crecimiento de otros microorganismos, además
estos tipos de suplementos pueden causar calentamiento en el sustrato y la contaminación
del mimo (CAS, 2003).
A partir de la contaminación de los tratamientos mencionados, en la segunda prueba se
tomó los niveles 0,5 %, 1 % y 1,5 % de nitrato de amonio para realizar la segunda
evaluación de estos tratamientos, de esta manera el 2 % de nitrato amonio que es el nivel
más alto de este material fue excluido del experimento.
También a partir de estos resultados, la aplicación del nitrato de amonio en la segunda
prueba se realizó por medio de la dilución de este suplemento inorgánico en agua, con el fin
de ver el efecto de una mayor homogenización del nitrato de amonio en el sustrato.
Parte de los tratamientos y métodos considerados en la segunda prueba se debe a los
resultados obtenidos en esta primera prueba.
4.2 Resultados de la Segunda Prueba
En la segunda prueba, el bagazo de caña composteado durante un período de 6 días tuvo un
cambio de pH de 6,04 a 5,80. De acuerdo con Sánchez y Royse (2001), Los resultados están
dentro del rango óptimo de pH requerido por el género Pleurotus, que va de un pH de 6 a 7.
El pH de la mezcla de los sustratos de cada tratamiento fue determinado antes de la inoculación
del hongo y después de la cosecha. Los resultados obtenidos indican que el pH de todos los
tratamientos se situaron entre los 5,5 a 6,1. Tomando en cuenta lo recomendado por Sánchez y
Royse (2001), estos valores están dentro del rango optimo; Además, el hongo puede también
tolerar un rango mayor a este, que está entre 4 y 7 (Sánchez y Royse, 2001). De tal manera,
que este factor no tuvo efecto sobre la colonización y fructificación del hongo en ninguno de los
tratamientos.
Una de las variables a evaluar tal como se describió anteriormente, es la colonización de los
sustratos, del cual en esta segunda prueba se encontraron resultados de colonización a los 6
días y 12 días después de inoculación o de haber iniciado el proceso de colonización. Así
también, la contaminación de las repeticiones en los tratamientos fueron evaluados, y el
rendimiento de la producción de hongo en el sustrato representado en porcentaje de eficiencia
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
18
biológica (% E.B.) fue determinado para cada uno de los tratamientos. Los resultados de las
variables mencionados se observan en el Cuadro 7, según tratamiento y variable.
Cuadro 7. Resultados de las variables medidos durante el período de evaluación de los tratamientos.
Tratamiento Colonización A los 6 días (%)
Colonización a los 12 días (%)
Contaminación (%)
Eficiencia biológica
(%)
T1 (Control 1) 33,5 88,6 28,6 24,10
T2 37,7 76,6 28,6 30,70
T3 38,2 93,4 28,6 43,62
T4 30,5 81,0 0,0 38,77
T5 45,7 98,1 0,0 30,11
T6 41,9 86,5 14,3 40,85
T7 35,7 85,5 0,0 41,67
T8 (Control 2) 37,4 77,7 14,3 15,70
T9 36,8 83,9 14,3 46,60
T10 33,9 73,8 0,0 36,75
T11 22,1 61,0 14,3 26,21
T12 28,9 75,8 0,0 28,52
T13 35,8 71,4 0,0 32,77
T14 31,6 74,3 28,6 50,48
4.2.1 Colonización de los tratamientos
A los 6 días y 12 días de haber inoculado los tratamientos con el hongo ostra, se procedió a la
toma de datos para determinar el porcentaje de colonización de cada repetición, dando los
resultados mostrados en el Cuadro 7, así también la colonización se puede observar en la
Figura 6.
El tiempo en promedio encontrado para todos los tratamientos incluyendo el sustrato
composteado y no composteado fue de 18 días, después de este período los tratamientos
fueron manejados según la condiciones de la fase de fructificación.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
19
Figura 6. Colonización de los tratamientos evaluados a los 6 y 7 días después del inicio de la colonización o spawn run.
En la Figura 6, están distribuidos todos los tratamientos, incluyendo los diferentes niveles de
suplementación orgánica e inorgánica, y también los tratamientos composteados y no
composteados. Además, la grafica muestra los resultados del porcentaje de colonización a los 6
y 12 días después de la inoculación del hongo.
Tanto a los 6 días como a los 12 días, los tratamientos varían entre sí en cuanto al porcentaje
de colonización. Sin embargo, para visualizar diferencias estadísticas significativas entre
tratamiento, fue necesario realizar un análisis de varianza para su determinación.
Según los análisis de varianza para los tratamientos composteados (Cuadro 8), el valor de “p”
es mayor a 0,05 (p > 0,05), por lo que se considera que no existe estadísticamente diferencias
significativas en el porcentaje de colonización entre los tratamientos evaluados a los 6 días.
Esto indica que las condiciones tanto ambientales como de manejo fueron homogéneos para
todos los tratamientos. Y que además, el factor suplementación tuvo un efecto igual en los
diferentes niveles aportados.
Cuadro 8. Análisis de varianza (SC tipo III) † para la variable colonización a los 6 días de los tratamientos composteados.
F.V. SC gl CM F p-valor Modelo 3070,46 12 255,87 0,92 0,5365 Tratamiento 1086,22 6 181,04 0,65 0,6884 Repetición 1984,24 6 330,71 1,19 0,3333 Error 9998,22 36 277,73 Total 13068,68 48 † Grupo InfoStat (2009).
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
20
El porcentaje de colonización a los 12 días después de la inoculación del hongo de los
tratamientos composteados, no tuvieron diferencias estadísticamente significativas, ya que
según el Cuadro 9, el valor de “p” es mayor a 0,05 (p > 0,05).
Cuadro 9. Análisis de varianza (SC tipo III)† de la colonización a los 12 días de los tratamientos composteados.
F.V. SC gl CM F p-valor
Modelo 4784,48 12 398,71 1,51 0,1654
Tratamiento 2192,03 6 365,34 1,38 0,2474
Repetición 2592,45 6 432,07 1,64 0,1653
Error 9499,89 36 263,89
Total 14284,37 48 † Grupo InfoStat (2009).
El Cuadro 10 muestra el análisis de varianza de la colonización a los 6 días para los
tratamientos no composteados, encontrando un valor de “p” mayor a 0,05 (p > 0,05), indicando
de esta manera que no existe diferencias estadísticamente significativas del porcentaje de
colonización entre tratamientos a los 6 días de colonización. Por lo tanto se considera que los
tratamientos composteados en esta prueba aportaron las mismas condiciones al hongo para su
desarrollo durante la fase de colonización.
Cuadro 10. Análisis de varianza (SC tipo I)† para la variable colonización a los 6 días de los tratamientos no composteados.
F.V. SC gl CM F p-valor Modelo 3891,71 12 324,31 1,50 0,1720 Tratamiento 1109,97 6 185,00 0,86 0,5366 Repetición 2781,74 6 463,62 2,15 0,0733 Error 7347,02 34 216,09 Total 11238,73 46 † Grupo InfoStat (2009).
Por otro lado, los porcentajes de colonización a los 12 de días de los tratamientos “no
composteados” también fueron evaluados por un análisis de varianza (Cuadro 11), dando un
valor de “p” mayor a 0,05 (p > 0,05). Por lo tanto, se considera que estadísticamente no hay
diferencias significativas entre los tratamientos para esta variable.
Cuadro 11. Análisis de varianza (SC tipo III)† para la variable colonización a los 12 días de los tratamientos no composteados.
F.V. SC gl CM F p-valor Modelo 6120,34 12 510,03 1,97 0,0594 Tratamiento 1858,06 6 309,68 1,20 0,3306 Repetición 4262,28 6 710,38 2,75 0,0275 Error 8782,08 34 258,30 Total 14902,42 46 † Grupo InfoStat (2009).
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
21
4.2.2 Contaminación de los tratamientos
La contaminación se evaluó entre la semana 1 y 2 después del inicio de la colonización del
hongo, es representado por medio de la Figura 7, donde se pueden observar los 14
tratamientos, incluyendo el tratamiento control del bagazo de caña composteado y el control del
bagazo de caña no composteado.
Figura 7. Contaminación de los tratamientos a los 15 días del inicio de la colonización.
Según la Figura 7, los tratamientos T1 control (tratamiento composteado sin suplementación),
T2 y T3, tuvieron el porcentaje de contaminación más alto, que corresponde a un 28 % (2 de 7
repeticiones) de contaminación, mientras que los tratamientos T6, T8 control 2, T9 y T11
tuvieron una sola contaminada, es decir un 14 % de contaminación en estos tratamientos.
La contaminación en esta segunda prueba no presenta el mismo efecto de contaminación como
en la primera prueba, ya que en este caso el porcentaje de contaminación para los tratamientos
contaminados fueron menores; además, la contaminación ocurrió tanto en tratamientos
suplementados con nitrato de amonio, así como en tratamientos suplementados con semolina
de arroz. A diferencia de la primera prueba, donde la contaminación ocurrió en un 100 %
únicamente en los tratamientos suplementados con nitrato de amonio.
Una de las razones por la cual se cree que los tratamientos con nitrato de amonio no tuvieron
altos porcentajes de contaminación y que además en esta segunda prueba la contaminación
ocurrió también en la suplementación orgánica, es que en esta prueba, a diferencia de la
primera, se aplicó el nitrato de amonio en solución con agua. Por lo tanto, realizando este
proceso, el nitrato de amonio tuvo una mejor distribución en el sustrato, evitando de esta
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
22
manera altas concentraciones en partes específicas del sustrato y por ende se evita el
calentamiento de esas zonas de acumulación, impidiendo así, posibles contaminaciones del
sustrato (CAS, 2003).
Por otro lado, es importante mencionar que el proceso de pasteurización que se le dio a cada
tratamiento, fue homogéneo y suficiente, debido a que en este proceso se logró una
temperatura alrededor de 90 oC, durante un periodo de 3 o 4 horas, siendo una temperatura
adecuada ya que está por encima de lo recomendado por Quimio et al., 1990, donde
recomiendan de 4 a 5 horas y una temperatura mayor a 65 oC.
4.2.3 Eficiencia biológica de los tratamientos
En la eficiencia biológica se tomo en cuenta la ecuación que considera el peso seco del sustrato
y el peso de la producción del hongo (Ecuación 1) El resultado encontrado está descrito para
cada uno de los tratamientos en el cuadro 8 y representados en la Figura 8. En esta última, se
observan gráficamente las medias de las 7 repeticiones de cada tratamiento, mostrando de esta
manera variaciones entre tratamientos. Sin embargo, fue necesario el análisis estadístico para
determinar diferencias significativas.
Figura 8. Eficiencia biológica de los tratamientos composteados y no composteados.
Se realizó el análisis de varianza de los tratamientos composteados y no composteados en los
diferentes niveles de suplementación con nitrato de amonio y semolina de arroz. Sin embargo,
se realizó un análisis de varianza por aparte para todos los tratamientos composteados y por
aparte los tratamientos no composteados.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
23
Para el caso de los tratamientos composteados, el análisis de varianza descrita en el
Cuadro 12, demuestra un valor de “p” mayor a 0,05 (p > 0,05). Por lo tanto, considerando este
resultado, los tratamientos con diferentes niveles de suplementación con nitrato de amonio y
semolina de arroz con un proceso de compostaje, no presentan diferencias estadísticamente
significativas.
Cuadro 12. Análisis de varianza (SC tipo I) † para la variable eficiencia biológica para los tratamientos composteados.
F.V. SC gl CM F p-valor
Modelo 7353,55 12 612,80 2,94 0,0087
Tratamiento 1770,22 6 295,04 1,42 0,2427
Repetición 5583,33 6 930,55 4,46 0,0026
Error 6046,67 29 208,51
Total 13400,22 41 † Grupo InfoStat (2009).
Según el análisis estadístico para la variable eficiencia biológica para los tratamientos no
composteados (Cuadro 13), existen diferencias estadísticas entre los tratamientos evaluados,
ya que para los resultados de los tratamientos se encontró un valor de “p” mayor a 0,05 (p >
0,05), indicando de esta forma que existe al menos un tratamiento con diferencia
estadísticamente significativa con otros tratamientos.
Cuadro 13. Análisis de varianza (SC tipo I) † para la variable eficiencia biológica para los tratamientos no composteados.
F.V. SC gl CM F p-valor
Modelo 5608,21 12 467,35 1,91 0,0710
Tratamiento 5004,79 6 834,13 3,41 0,0102
Repetición 603,41 6 100,57 0,41 0,8658
Error 7819,96 32 244,37
Total 13428,17 44 † Grupo InfoStat (2009).
A partir del resultado encontrado según el Cuadro 13, el cual indica que existe diferencia
estadísticamente significativa entre los tratamientos evaluados para la variable eficiencia
biológica, se hizo un análisis de varianza para las medias para determinar cual o cuales
tratamientos fueron estadísticamente diferentes.
De acuerdo a los resultados mostrados en el Cuadro 14, del análisis de varianza de las medias
de la variable eficiencia biológica, indica que existe diferencias estadísticamente significativas
entre el tratamiento T8 con los tratamientos T9 y T4, mientras entre los tratamientos restantes
no existe diferencias significativas.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
24
Cuadro 14. Análisis estadístico de las medias (Test: Tukey)† de la eficiencia biológica de los
tratamientos no composteados.
Tratamiento Medias n
T8 15,70 6 A
T11 26,21 7 A B
T12 28,52 7 A B
T13 32,77 7 A B
T10 36,75 7 A B
T9 46,60 6 B
T14 50,48 5 B † Letras distintas indican diferencias significativas (p<= 0,05).
El T8 corresponde al tratamiento con sustratos no composteados y con 0 % de suplementación
(control), que aunque este tratamiento no tuvo diferencias significativas con los dos tratamientos
con niveles más altos de nitrato de amonio (1,0 % y 1,5 %) y tampoco con los dos tratamientos
con los niveles más bajo de semolina de arroz (10 % y 15 %), si lo tuvo con el tratamiento con el
nivel más bajo de nitrato de amonio (0,5 %) y con el nivel más alto de semolina de arroz (20 %).
Con estas diferencias estadísticamente significativas encontradas, se analizan algunos posibles
factores que afectaron los tratamientos para este resultado. Para ellos es importante recordar
que altos contenidos de suplementos inorgánicos pueden causar otros efectos, principalmente
el sobrecalentamiento del sustrato (CAS, 2003). Este efecto pudo haber influido en los
tratamientos evaluados, ya que los tratamientos con mayor contenido de nitrato de amonio no
dieron mayores rendimientos, tomando en cuenta que el menor nivel de suplemento si logró un
mayor resultado.
Por otro lado, los tratamientos con semolina de arroz (suplemento orgánico) tuvo mayor efecto y
con diferencias estadísticamente significativa con el control (sin suplementación), en este caso
el efecto fue contrario a la de nitrato de amonio, ya que fue el tratamiento con mayor nivel de
suplementación (20 %) el que tuvo diferencia con el control. Indicando de esta forma que el
suplemento orgánico puede comportase de manera diferente con respecto a suplementos
inorgánicos en cuanto a los rendimientos del hongo.
4.2.4 Eficiencia biológica entre los tratamientos composteados y no composteados
Tomando los mismos promedios de la eficiencia biológica de los tratamientos evaluados
(Cuadro 7), se calculó el promedió general de los tratamientos composteados y no
composteados, dando como resultado un promedio de 36,92 % de eficiencia biológica para los
tratamientos composteados, siendo este un valor mayor a 33,10 % de eficiencia biológica que
corresponde al promedio de los tratamientos no composteados (Cuadro 15).
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
25
Cuadro 15. Promedio de la eficiencia biológica de los tratamientos composteados y no composteados.
Tratamiento Eficiencia biológica (%)
Composteado 36,92
no composteado 33,10
Para los tratamientos composteados y no composteados, se procedió a realizar el análisis de
varianza (Cuadro 16), dando como resultado que para los tratamientos el valor de “p” es mayor
a 0,05 (p > 0,05), determinando de esta manera que no existe diferencias entre ambos
tratamientos, por lo que se considera que el efecto de los 6 días de compostaje no tuvo
mayores efectos estadísticos sobre el rendimiento del hongo, aun cuando este diera una
eficiencia mayor a la eficiencia de los sustratos sin ningún proceso de compostaje.
Cuadro 16. Análisis de varianza (SC tipo I)† de la eficiencia biológica de los tratamientos composteados y no composteados.
F.V. SC gl CM F p-valor
Modelo 19121,08 47 406,83 1,98 0,0154
Tratamiento 317,94 1 317,94 1,55 0,2213
Repetición 18803,14 46 408,76 1,99 0,0151
Error 8025,25 39 205,78
Total 27146,33 86 † Grupo InfoStat (2009).
Tomando en cuenta estos resultados y según lo que mencionan Chang y Quimio (1982) que los
sustratos composteados pueden mejorar el rendimiento del hongo, y para el caso del bagazo de
caña este puede ser o no composteado. No existe en realidad necesidad de compostear este
material, ya que también esto implica costos en mano de obra y materiales. Aunque es
importante considerar que el proceso de compostaje puede recibir otro tipo de manejo para
mejorar los diferentes contenidos y condiciones del sustrato, principalmente en la relación de
carbono nitrógeno, ya que este componente del sustrato es mejorado cuando se le hace un
proceso de compostaje, teniendo a principio un valor alto y logrando obtener al final del proceso
una relación más baja (Vedder, 1991).
4.3 Conclusiones y Recomendaciones Finales
Los resultados de la variable eficiencia biológica de los tratamientos no composteados en la
primera prueba con la segunda prueba, fueron diferentes, ya que en la primera no hubo ningún
tratamiento estadísticamente diferente y significativo, mientras en la segunda prueba si
hubieron diferencias significativas, por lo que indica que esta diferencia entre pruebas puede
haber sido por el manejo de algún factor determinante como; método de aplicación de los
suplementos, calidad de la semilla de hongo, calidad del bagazo de caña o las diferencias entre
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
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condiciones climáticas (temperatura y humedad). Por lo tanto, se recomienda seguir realizando
pruebas con los mismos tratamientos evaluados en la segunda prueba
La contaminación que es un factor importante para lograr rendimientos altos en la producción
de hongos, fueron evaluados en las dos pruebas realizadas. En la primera prueba el nitrato de
amonio mostró un efecto directo sobre la contaminación de los sustratos. Sin embargo, se
considera que el método de aplicación de este suplemento no fue la más apropiada, ya que al
realizar la segunda prueba, el nitrato de amonio fue diluido en agua antes de aplicarlo, dando
este método mejores resultados, de tal manera que se recomienda para otras pruebas, el uso
del nitrato de amonio en dilución con agua, para lograr una mayor homogeneidad en el sustrato.
Se recomienda utilizar un 20 % de semolina de arroz como suplemento orgánico, ya que los
resultados de la segunda prueba para los tratamientos no composteados el tratamiento con
este porcentaje de semolina de arroz dio el mayor promedio de eficiencia biológica y
estadísticamente diferente a los demás tratamientos, con excepción al tratamiento con 0,5 % de
nitrato de amonio.
El compostaje da mayor rendimiento (36,92 % de E. B.) que el sustrato no composteado (33,10
% de E. B.). Sin embargo, no es significativamente diferente según el análisis estadístico, por lo
cual, se recomienda continuar realizando pruebas con estos tratamientos con el fin de seguir
analizando mayores resultados.
Un alto contenido de nitrato de amonio puede arriesgar a generar efectos secundarios en el
sustrato, principalmente en la contaminación de los sustratos. Además, menor concentración de
este suplemento, es capaz de mejorar el rendimiento que los niveles altos. Por otro lado, en la
segunda prueba donde los tratamientos no fueron composteados, el contenido alto de semolina
de arroz (20 %) logró buenos resultados a pesar de haber encontrado uno de los niveles altos
de contaminación (28,6 %) con relación a los otros tratamientos con semolina.
De tal manera que es posible realizar combinaciones de suplementos (orgánicos con
inorgánicos) para mejorar las condiciones y disponibilidad de nutrientes en el sustrato, por lo
que se recomienda realizar estas pruebas como parte del objetivo que trata de incrementar el
rendimiento del hongo ostra, utilizando el bagazo de caña, como materia reutilizable con un
gran potencial para su uso en el cultivo de hongos comestibles.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
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5 Lista de Referencias Bibliográficas
Arias, N. y Flores, JC. 2006. Efecto de microorganismos eficaces (EM) sobre la producción de hongo ostra Pleurotus ostreatus (Agaricales: tricholomataceae) a partir de remanentes agrícolas. [Proyecto de Graduación Lic. Ing. Agr.], Guácimo (CR) : Universidad EARTH. 55 p.
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Chang, S.; Buswell, JA. y Chiu, S. 1993. Mushroom biology and mushroom products. 1a ed. Hong Kong (HK) : The Chinese University Press. 370 p. ISBN 962-201-610-3.
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Rodríguez Rosario, KJ. 2005. Eficacia del hongo Pleurotus ostreatus como Bio-rremediador de suelos contaminados con metales pesados [Tesis Maestro en Ciencias en Biología]. Puerto Rico (PR) : Universidad de Puerto Rico. 83 p.
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Sánchez, J. y Royse, D. 2001. La biología y el cultivo de Pleurotus spp. 1a ed. Chiapas (MX) : ECOSUR. 290 p.
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Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
28
Zadrazil, F. 1980. Influence of ammonium nitrate and organic supplements on the yield of Pleurotus sajor caju (Fr.) Sing. European Journal of Applied microbiology and biotechnology. [en línea]. Septiembre, Vol. 9 [consultado 15 Junio 2009] p. 31-35. Disponible en el World Wide Web: http://www.springerlink.com/content/ug70125867313850/
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
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6 Anexos
6.1 Anexo 1. Termómetro de Máximos y Mínimos Usado para la Medición de la Temperatura
6.2 Anexo 2. Medidor de Humedad y Temperatura Modelo TH4-7F, de la Marca DICKSON Utilizado para la Medición de la Humedad y Temperatura del Cuarto de Producción de Hongos
6.3 Anexo 3. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Eficiencia Biológica (%) de los Tratamientos de la Primera Prueba
Tratamientos
Repeticiones
1 2 3 4 5 6
T6 29,60 40,80 50,52 64,68 45,60 48,20
T7 26,40 25,98 55,72 52,05 33,60 71,16
T8 76,78 73,92 106,80 21,60 34,09 50,82
T9 20,68 41,80 4,68 66,34 87,44 63,13
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
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6.4 Anexo 4. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Colonización (%) a los 6 Días de los Tratamientos Composteados de la Segunda Prueba
Tratamientos
Repeticiones
1 2 3 4 5 6 7
T1 42,1 50,0 18,2 18,2 40,0 30,9 34,8
T2 47,6 20,0 35,0 35,0 31,6 52,4 42,1
T3 0,0 10,0 42,1 55,0 50,0 50,0 60,0
T4 0,0 31,8 38,9 33,3 12,0 55,6 42,1
T5 75,0 36,8 21,1 35,0 37,5 44,4 70,0
T6 47,4 33,3 33,3 55,0 46,0 33,3 45,0
T7 30,0 63,6 0,0 31,8 40,9 38,1 45,5
6.5 Anexo 4. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Colonización (%) a los 12 Días de los Tratamientos Composteados de la Segunda Prueba
Tratamientos
Repeticiones
1 2 3 4 5 6 7
T1 100,0 100,0 90,9 61,8 90,0 100,0 77,4
T2 71,4 70,0 80,0 80,0 94,7 100,0 94,7
T3 73,7 100,0 100,0 100,0 80,0 100,0 100,0
T4 42,9 72,7 72,2 100,0 85,0 94,4 100,0
T5 100,0 100,0 91,6 100,0 100,0 100,0 95,0
T6 81,1 100,0 57,1 90,0 82,0 100,0 95,0
T7 85,0 100,0 63,6 54,5 95,5 100,0 100,0
6.6 Anexo 5. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Colonización (%) a los 6 Días de los Tratamientos No Composteados de la Segunda Prueba
Tratamientos
Repeticiones
1 2 3 4 5 6 7
T8 54,5 26,1 31,8 C† 39,1 29,6 43,5
T9 61,9 30,0 29,4 10,0 46,7 36,0 43,5
T10 52,4 30,0 22,7 0,0 36,4 28,2 67,8
T11 0,0 31,8 26,1 0,0 48,7 26,1 C†
T12 41,7 14,3 26,1 28,0 37,4 23,6 31,3
T13 58,3 18,2 63,6 27,3 25,0 27,2 31,3
T14 43,5 33,3 13,0 52,0 26,1 26,1 27,3
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
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6.7 Anexo 5. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Colonización (%) a los 12 Días de los Tratamientos No Composteados de la Segunda Prueba
Tratamientos
Repeticiones
1 2 3 4 5 6 7
T8 81,8 80,0 100,0 C† 65,2 65,2 73,9
T9 95,2 92,0 100,0 35,0 100,0 65,0 100,0
T10 95,2 65,0 54,5 33,0 81,8 100,0 87,0
T11 47,3 56,4 76,5 36,0 78,3 71,3 C†
T12 87,5 66,7 87,0 68,0 60,9 100,0 60,9
T13 77,1 75,5 59,1 68,2 87,5 76,0 56,5
T14 60,9 100,0 87,0 56,0 73,9 71,3 70,9
† Sustratos eliminados por contaminación.
6.8 Anexo 6. Datos Utilizados para el Análisis Estadístico de la Eficiencia Biológica (%) de los Tratamientos de la Segunda Prueba
Tratamientos
Repeticiones
1 2 3 4 5 6 7
T1 18,00 C† 15,54 C† 25,00 37,82 35,00
T2 13,22 C† 32,16 C† 19,93 18,58 69,60
T3 C† 40,00 C† 61,37 11,62 41,40 68,35
T4 39,00 39,76 42,00 27,10 29,12 32,35 81,29
T5 19,56 27,71 26,04 23,16 27,00 20,01 69,39
T6 28,00 27,55 C† 59,23 15,58 65,60 52,00
T7 38,00 42,00 49,92 46,20 20,91 65,52 29,10
T8 10,50 19,20 13,60 C† 17,60 15,34 14,90
T9 48,80 43,60 56,80 C† 46,00 11,05 70,31
T10 23,36 21,72 26,32 34,00 38,00 37,80 76,02
T11 20,20 20,40 29,50 32,50 29,50 28,40 23,00
T12 25,00 28,60 33,20 54,16 28,00 9,58 21,09
T13 32,00 34,20 34,00 23,87 23,36 45,48 36,44
T14 50,40 28,39 C† 45,43 C† 94,66 33,06
† Sustratos eliminados por contaminación.
Efecto de la Suplementación Nitrogenada del Bagazo de Caña de Azúcar sobre los Rendimientos del Hongo Ostra
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6.9 Anexo 7. Resultado de los análisis de varianza de las variables evaluadas
Variable para el análisis de varianza N R² R² Aj CV Eficiencia biológica de la primera prueba 24 0,15 0,00 54,62 Colonización a los 6 días de los tratamientos composteados 49 0,23 0,00 44,34 Colonización a los 12 días de los tratamientos composteados 49 0,33 0,11 18,65 Colonización a los 6 días de los tratamientos no composteados 47 0,35 0,12 45,25 Colonización a los 12 días de los tratamientos no composteados 47 0,41 0,20 21,67 Eficiencia biológica para los tratamientos composteados 42 0,55 0,36 39,11 Eficiencia biológica para los tratamientos no composteados 45 0,42 0,20 47,23 Eficiencia biológica de los tratamientos composteados y no composteados 87 0,70 0,35 41,05
6.10 Anexo 8. Test de tukey para las medias de la variable eficiencia biológica de los tratamientos no composteados
Variable Alfa DMS Error gl Eficiencia biológica de los tratamientos no composteados 0,05 27,52295 244,3739 32