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ENFERMEDADESDE LA VID.

Ing. Agr. Vivienne Gepp, MSc.Curso de Protección Vegetal Frutícola.

Año 2007.

Fenología de la vid

PERONOSPORA o MILDIU

• Plasmopara viticola • Oomycete

PERONOSPORA o MILDIU

• Plasmopara viticola

PERONOSPORA o MILDIU

• Plasmopara viticola

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PERONOSPORA o MILDIU

• Plasmopara viticola

PERONOSPORA

PERONOSPORA PERONOSPORA

PERONOSPORA PERONOSPORA• Ciclo:

– invierno → oosporas– primavera → zoosporangios → infección primaria

→ inóculo secundario → ciclos secundarios → ... →– verano → ciclos ¿secundarios? → ... →– otoño → ciclos ¿secundarios? → ... → hoja caída

– ¿Oosporas →– zoosporangios en verano?

– 5 - 18 días

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PERONOSPORA

Desarrollo en el espacio, ciclos de la enfermedad

PERONOSPORA

• Condiciones favorables:– invierno húmedo– primavera lluviosa– verano lluvioso

– 22-25ºC

– tejido joven, en activo crecimiento.

PERONOSPORA

• MANEJO DEL CULTIVO– drenaje– primeros focos– poda de verano

PERONOSPORA

• CONTROL QUÍMICO• Objetivos principales

PERONOSPORA

• FUNGICIDAS:• de contacto:

– Cúpricos– Mancozeb, maneb, metiram– Propineb, Ziram, Ferbam– Folpet, Captan– Tolyfluanid– Strobilurinas: Azoxystrobin, Pyraclostrobin, etc.

PERONOSPORA

• FUNGICIDAS SISTÉMICOS:• Fosetil aluminio, Fosfito de potasio• Metalaxil, Benalaxil• Cimoxanil• Dimetomorph

• Restricciones

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POLVILLO, CENIZA u OIDIO

• Uncinula necator • Ascomycete

OIDIO

OIDIOCiclo del OIDIO

YemasBrotes nuevos

HojasSarmientos

RacimosConidios

¿Cleistotecios?

OIDIO• Condiciones:

– 25 - 28ºC– alta humedad, sin lluvias– brotes jóvenes

POLVILLO,CENIZA u OIDIO

• FUNGICIDAS:– Azufre

– Inhibidores de la Biosíntesis del Ergosterol

– Strobilurinas: Azoxystrobin, Pyraclostrobin

– Tolyfluanid

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BOTRYTIS.

• FP: Botryotinia fuckeriana • FI: Botrytis cinerea

• Ascomycete (Deuteromycete)

BOTRYTIS.

BOTRYTIS. BOTRYTIS.

BOTRYTIS.

• Condiciones para la infección:– heridas– grosor de cutícula– variedad (tipo de racimos, tipo y microporos de

piel, composición química, fitoalexinas)– temperatura– humedad

Temperatura (º C) Horas de HR > 90%30 35

26,5 2222,5 1515,5 1810 30

BOTRYTIS.

• MANEJO DEL CULTIVO.evitar: – humedad, – heridas, – inóculo – ¿importancia del inóculo?

• ¿Control biológico?– Trichoderma sp.

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Resistencia a BotrytisRacimos ± compactos Susceptibilidad

Fuente: Ellison, Ash y McDonald. 1997

Resultados en Tannat

Precipitaciones en las dos temporadas

0

20

40

60

80

100

120

140

20 de noviembre - 10 de marzo

mm

llu

via

/ d

ía

2005-06

2006-07

Infecciones latentes 2005-06

0,010,020,030,040,050,060,070,080,0

22/11/05 22/12/05 21/01/06 20/02/06

% b

ayas

con

Bot

rytis

27

1518

21

2021

Mean

Infecciones latentes 2006-07

0,0

10,0

20,0

30,0

40,0

22/11/06 22/12/06 21/01/07 20/02/07% ba

yas

con

Botry

tis

2715

182126121Mean

Severidad de podredumbre 2005-06

0

10

20

30

40

01/01/06 15/01/06 29/01/06 12/02/06 26/02/06

% b

ayas

co

n po

dred

umbr

s

271518212021Mean

Severidad de podredumbres 2006-2007

0

5

10

15

20

01/01/07 15/01/07 29/01/07 12/02/07 26/02/07% ba

yas c

on po

dredu

mbre

2 71 51 829 61 2 1M e an

2006-072005-06

75,2 %77,7 %Humedad relativa

22,1 ºC19,3 ºCTemperatura

Temperatura y humedad relativa media

• Multisitios: captan, folpet• Bencimidazoles, dietofencarb• Dicarboximidas: procimidone, iprodione• Anilopirimidinas: cyprodinil, pyrimetanil, mepanipyrim.• Fenilpirrol: fluodioxonil• Hidroxianilida: fenhexamid • 2,6 dinitro anilina: fluazinam• Imidazoles: procloraz• Sulfamidas: diclofluanida, tolyfluanid

Fungicidas para Botrytis.Benzimidazoles Dicarboximidas acilalaninas

AL- TO (3)

3

6

9

IBEs Strobirulinas

ME- DIO (2)

2 4 6

Cúpricos Dithiocarbamatos Azufrados Captan

BA- JO (1)

1 2 3

BAJO (1) MEDIO (2) ALTO (3) Riesgo del fungicida Riesgo de la enfermedad

Patógenos - suelo.

Sclerotium - tomate

Septoria - trigo

Alternaria - papa

Venturia inaequalis

Botrytis cinerea

Penicillium spp.

Phytophthora infestans

Resistencia a fungicidas

Resistencia de Botrytis cinerea a fungicidas

• Bencimidazoles, dietofencarb• Dicarboximidas: iprodione• Anilopirimidinas: cyprodinil, pyrimetanil,

mepanipyrim• Fenilpirrol: fluodioxonil• Hidroxianilida: fenhexamid• 2,6 dinitro anilina: fluazinam• Imidazoles (IBE clase I): procloraz

Resistencia de Botrytis cinerea a fungicidas

También: • Sulfamidas: diclofluanida, tolyfluanid• Ftalimidas: captan, folpet• Ditiocarbamatos: tiram

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EXCORIOSIS.• Phomopsis viticola

EXCORIOSIS.• Phomopsis viticola

EXCORIOSIS EXCORIOSIS

EXCORIOSIS EXCORIOSIS

• Ciclo:21 -30 días

• Necesita: – frío (23ºC)– lluvias– brotes jóvenes

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EXCORIOSIS

• Poda• Fungicidas:

– Dinitro ortro cresol, arsenito de sodio– brotes 1-3 cm y 6-12 cm

• Captan, Folpet,• Maneb, etc.

ANTRACNOSIS

• Elsinoe ampelina • Sphaceloma ampelinum

ANTRACNOSIS

• Elsinose ampelina • Sphaceloma ampelinum

ANTRACNOSIS

ANTRACNOSIS ANTRACNOSIS

• Ciclo:– primavera:

• esclerotos en bordes de cancros → conidios• bayas caídas → conidios o ascosporas• infeccion de tejido joven

• Condiciones:– precipitaciones– óptimo 24-26ºC → síntomas en 4 días a 32ºC

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ANTRACNOSIS

• MANEJO:• Variedades muy sensibles, ej.: Cardinal,

Italia, Thompson seedless (Sultanina)

• cúpricos, ditiocarbamatos, ftalimidas, tolyfluanid,strobilurinas, diatinon

Enfermedades de la madera

Enfermedades de la madera Enfermedades de la madera

Enfermedades de madera Enfermedades de madera

• Esca• Varios géneros: Stereum, Phellinus, etc.

• Eutipiosis• Eutypa lata = E. armeniacae

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VIRUS DE LA VID.

• ≈ 50 agentes Los más importantes: • Closterovirus - Enrulamiento (Leaf roll)• Nepovirus - Degeneración infecciosa

(Fan leaf, Court noue)

LEAF ROLL o ENRULAMIENTO.

– GLRaV I– GLRaV II – GLRaV III – GLRaV IV

– GLRaV V– GLRaV VI– GLRaV VII– GLRaV VIII

Grapevine leaf roll associated viruses:

GLRaV III - mundial, Uruguay

*

* *

INCIDENCIAS DEL ENRULAMIENTO Y ENROJECIMIENTO FOLIAR SOBRE EL

COMPORTAMIENTO DE VID cv. TANNAT (HARRIAGUE)

Rendimiento/ planta Peso racimo (g)

157 **2164,6 **11,8Montevideo

146 *1793,5 *4,7Montevideo

172 **2623,8 **7,1Canelones

enfermanormalenfermanormal

Spínola, I. 1981. Investigaciones Agronómicas N° 3:10-14.

INCIDENCIAS DEL ENRULAMIENTO Y ENROJECIMIENTO FOLIAR SOBRE EL

COMPORTAMIENTO DE VID cv. TANNAT (HARRIAGUE)

Spínola, I. 1981. Investigaciones Agronómicas N° 3:10-14.

23,5 **36,86,7 **7,9Joanicó 239,0 **85,39,2 **12,0INIA LB45,8 **120,010,1 NS10,2Mdeo

29,8 **62,27,9 **8,9Joanicó 134,799,47,98,7INIALB45,9117,89,412,6INIALB

Kg grado/plantaGrado alcohólico

LEAF ROLL o ENRULAMIENTO.

• No hay cvs totalmente resistentes• Pie americano – tolerante – se mantiene latente

LEAF ROLL o ENRULAMIENTO.

• TRANSMISIÓN:

• prop. vegetativa

• chanchito blancoPlanococcus ficus, Pseudococcus longispinus

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ESTUDIOS DE TRANSMISIÓN DE GLRaV 3 POR CHANCHITO BLANCO EN URUGUAY

• Planococcus ficus plaga en vid.

• Maman y Peyrou (1997) - transmisión en laboratorio.

• Maeso et. al (1999) y (2000) – estudios de transmisión:– confirmó la transmisión en Uruguay.– en laboratorio: 10 insectos pueden transmitir, difícil

adquisición (por lo menos 7 días y % bajo), se transmite rápido (15-30 minutos).

Fuente: Maeso, 2002.

NEPOVIRUSDegeneración progresiva

(Nepovirus europeos):• Grapevine fan leaf

(GFLV)• Arabis mosaic• Strawberry latent

ringspot• Tomato black ring• etc.

Decaimiento (Nepovirusamericanos):

• Peach rosette mosaic• Tomato ringspot• Tobacco ringspot

NEPOVIRUS

• Síntomas:– Deformación,– Reducción de lámina foliar, – Coloraciones anormales,– Acortamiento e irregularidad de entrenudos, nudos

dobles, fasciaciones,– Reducción número y tamaño de racimos,

corrimiento (“millerandage”). Menor calidad y cantidad de rendimiento.

– Menor longevidad, prendimiento, y enraizado.

NEPOVIRUS

• Vides americanas y sus híbridos: muy sensibles a los nepovirus europeos y por esa vía se perjudica a la variedad.

• Vides europeas y sus híbridos: más sensibles a los nepovirus americanos.

FAN LEAF = COURT NOUE

• Grapevine fan leaf nepovirus (GFLV)

Grapevine fan leaf nepovirus

• Transmisión: Xiphinema index• España: en 14% de los viñedos y en 50% de los

con GFLV. Italia: en 15% de los viñedos.• Presente en Uruguay focalizado • 1,3 a 1,5 m/año• restos de raíces

• Resistencia a X. index en Vitis rotundifolia

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SUSCEPTIBILIDAD VARIETAL

• Susceptibles todas las V. vinifera y muy susceptibles V. rupestris.

• V. labrusca se infecta pero muestra pocos síntomas.

• Resistencia varietal: Muscadinia rotundifolia para cruzamientos. Resistencia a transmisión y alimentación de nematodos.

Manejo de virosis

Control de transmisión: • Material de propagación• Vectores:

– presencia– control de nematodos– control de chanchito

Manejo de virosis

Métodos de saneamiento:• Termoterapia.• Cultivo in vitro.• Termoterapia + cultivo in vitro.• Seguidos de comprobación de sanidad:

indicadoras y ELISA.

ABIÓTICAS.

Daño de herbicida DAÑO DE HELADA

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MANEJO INTEGRADO

Cultivar y portainjerto Ubicación del viñedo

Calidad sanitaria

Poda y conducción

Manejo de suelo y fertilización

Antagonistas

Fungicidas:¿cuál producto?¿cuándo aplicarlo?¿cómo aplicarlo?

Modelos de predicción

Fenología del cultivo Condiciones ambientales

MANEJO CULTURAL

• Plantas sanas• Poda y conducción• Fertilización y manejo de suelo

CONTROL BIOLÓGICO• Botrytis

– Trichoderma harzianum36% control, 52% fungicidas

– Ulocladium atrum, Chaetomiun cochliodescolonizan tejido necrótico

• Oidio – AQ10 (Ampelomyces quisqualis)

oidios, alta HR

• Nematodos

CRITERIOS DE SELECCIÓN DE FUNGICIDAS

• Históricamente: • efectividad,• fitotoxicidad,• precio,• compatibilidad,• efecto sobre abejas.

• Efectividad• Fuentes de información:

– INIA – Fungicide and Nematicide Tests– CAB Abstracts– 2000 New York and

Pennsylvania Pest Management Recommendations for Grapes

– 2001 Pest Management Guide for Wine Grapes in Oregon

PRONÓSTICO

• Peronóspora • Excoriosis• Antracnosis• Botrytis

• Criterios: • Fenología• Clima y microclima

http://www.chasque.net/dgsa/Operaciones/servicios_fitosanitarios.htm

Fenología

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Fenología Fenología

BIBLIOGRAFÍA• Arias Giralda, A. et al. 1992. Los parásitos de la vid;

estrategias de protección razonada. M.A.P. y A. 304 p

• Pearson, R.C.; Goheen, A.C. 1988. Compendium of grapevine diseases. APS Press, St. Paul. 93 p

• Flaherty, D.L. et al. 1981. Grape pest management. University of California Publication Nº 4105. 312 p

• Internet IPM Resources on Grapes and Current http://www.ippc.orst.edu/cicp/fruit/grape.html