Enfermedades de las musáceas: aspectos generales con ... · Cavendish en subtrópicos Mal de Panamá (Fusarium oxysporum sp. cubense); estreses abióticos (temperaturas bajas) Monocultivo

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Enfermedades de las musáceas: aspectos generales con énfasis en

patógenos cuarentenarios.

Luis Pérez VicenteInstituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal (INISAV)Investigador Honorario Bioversity International

Luis Pérez VicenteInstituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal (INISAV)Investigador Honorario Bioversity International

Curso de Capacitación sobre Diagnóstico y Manejo del Mal de Panamá de las Musáceas (Fusarium oxysporum f. sp. cubense): Creando Capacidades para

la Prevención de la Entrada y Detección Temprana de la Raza 4 TropicalQuevedo, Ecuador Diciembre 10-14, 2013

Curso de Capacitación sobre Diagnóstico y Manejo del Mal de Panamá de las Musáceas (Fusarium oxysporum f. sp. cubense): Creando Capacidades para

la Prevención de la Entrada y Detección Temprana de la Raza 4 TropicalQuevedo, Ecuador Diciembre 10-14, 2013

Principales limitantes a la producción en AL&CSistemas de producción Principales limitantes.

Cavendish intensivo tropical para exportación

Sigatoka negra , nematodos, marchitez bacteriana o moko (R. solanacearum); regulaciones ambientales y de seguridad laboral; estreses abióticos (huracanes, inundaciones/sequía)

Producción orgánica de Cavendish Sigatoka negra, nematodos; trips de los frutos; BSVCavendish en subtrópicos Mal de Panamá (Fusarium oxysporum sp. cubense);

estreses abióticos (temperaturas bajas)Monocultivo de plátanos Sigatoka negra, nematodos, Cosmopolites sordidus,

Banana streak badnavirus (BSV), pudriciones del pseudotallo y rizoma por Dickeya spp., pudrición suave del rizoma por Pectobacterium carotovorum, marchitez bacteriana o moko (R. solanacearum)

Cultivos mixtos de musáceas con cacao, cocoteros, forestales , café, etc.

Sigatoka negra, Mal de Panamá

Cultivos mixtos/ monocultivo de bananos y plátanos en pequeñas parcelas (para consumo del hogar o mercado local)

Sigatoka negra; Mal de Panamá; Marchitez bacteriana o moko.

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LAS MANCHAS TIPO SIGATOKA EN Musa spp.

Mycosphaerella musicola Leach ex Mulder (Sigatoka amarilla).Pseudocercospora musae (Zimm). Deighton

Mycosphaerella fijiensis Morelet (Sigatoka negra / Raya negra).Pseudocercospora fijiensis (Morelet) Deighton

Mycosphaerella eumusae (Mancha tipo Sigatoka eumusae) *Pseudocercospora eumusae

Mycosphaerella musae Speg. (Peca de la hoja).Stenella sp..

Mycosphaerella minima Stahel. (Peca de la hoja).

* No presente en América

ESPECIES DE Mycosphaerella ASOCIADAS a Musa spp.

Sigatoka amarilla - Mycosphaerella musicola(Pseudocercospora musae)

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Sigatoka Mycosphaerella musicola(Pseudocercospora musae)


IV V

I y II III

Foto L. Pérez-Vicente



Foto Liberato et al. (2009)

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Característica de las epidemias y factores de distribución e impacto.Característica de las epidemias y factores de distribución e impacto.

9 En el Caribe y Centro América, un gran número de informes de primera presencia en los años 30.

9 La epidemias en el Caribe y la mayoría de los países ocurrieron dos años después de la entrada del patógeno.

9 Ausencia de regulaciones cuarentenarias. Los estudios con marcadores moleculares han permitido establecer que la dispersión ha sido debida a introducciones de material vegetativo infectado (Hayden, 2005).

9 Gran uniformidad genética debido a grandes superficies de cultivo de los clones Gros Michel y Cavendish (AAA) susceptibles

9 Se inició el uso de fungicidas y las inversiones en equipos de aspersión en la producción bananera

9 En el Caribe y Centro América, un gran número de informes de primera presencia en los años 30.

9 La epidemias en el Caribe y la mayoría de los países ocurrieron dos años después de la entrada del patógeno.

9 Ausencia de regulaciones cuarentenarias. Los estudios con marcadores moleculares han permitido establecer que la dispersión ha sido debida a introducciones de material vegetativo infectado (Hayden, 2005).

9 Gran uniformidad genética debido a grandes superficies de cultivo de los clones Gros Michel y Cavendish (AAA) susceptibles

9 Se inició el uso de fungicidas y las inversiones en equipos de aspersión en la producción bananera

Sigatoka negra Mycosphaerella fijiensis(Pseudocercospora fijiensis)

Sigatoka negra Mycosphaerella fijiensis(Pseudocercospora fijiensis)

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Historia de la pandemia de Sigatoka negra en América

Bo, 1996

Estados de evolución de los síntomas de Sigatoka negra y efectos sobre la maduración

Foto L. Perez Vicente

Foto: L. Perez Vicente

Foto: L. Perez Vicente

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Morfología de M. fijiensis

M. fijiensis: ciclo de la enfermedad

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Impacto de Sigatoka negra en producción y maduración(Ramsey, 1996)

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Matrix de correlaciones entre variables climáticas y el estado de evolución de SN en bananos y plátanos. Empresa La Cuba

Ciego de Avila Province.Variabledepend.

Estado de evolución (semanas)Gran enano (AAA) CEMSA 3/4 (AAB)

3 4 5 6 4 5 6 7Ll 7

(mm)0.56**

* 0.61*** 0.74*** 0.41* 0.48** 0.60*** 0.58*** 0.55*

DLl 7 (min.) 0.45** 0.48** 0.77*** 0.52** 0.39 * 0.64 *** 0.55** 0.54*

LL 10 (mm)

0.54*** 0.80*** 0.71*** n.s. 0.59*** 0.74*** 0.62*** 0.40*

DLl 10 (min.) 0.39 * 0.74*** 0.73*** n.s. 0.50** 0.74*** 0.57*** 0.38*

LL14 (mm)

0.64*** 0.77*** 0.69*** n.s. 0.65*** 0.74*** 0.64*** 0.39*

DLl14 (min.) 0.51** 0.75*** 0.73*** n.s. 0.58*** 0.72*** 0.62*** 0.38*

H7 (mm) n.s. 0.72** 0.71** 0.53* 0.66* 0.54* 0.54* n.s.

H 10 (mm) n.s. 0.79 ** 0.70 ** n.s. 0.81*** 0.55* n.s. n.s

H14 (mm) n.s. 0.83 ** 0.68 * n.s. n.s. 0.81*** 0.55* n.s.

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Relación entre la lluvia acumulada durante 14 días y la velocidad de evolution de Sigatoka negra en diferentes

plantaciones de Cuba, Costa Rica y Ecuador

050

100150

200250300350400450

1 6 11 16 21 26 31 36 41 46 51weeks

Rai

nfal

l

0

200

400

600

800

1000

1200

SE

Daily rainfall accumulated 14 days SE

0

500

1000

1500

2 000

2 500

47 50 1 4 7 10 13 16 19 22 25 28 31 34 37 50Weeks

Rai

nfal

l

020 040 060 080 010 0012 0014 0016 0018 0020 00

SE

D aily ra infa ll a cum ula te d 14 days SE

El Colono, Costa Rica 2000

020406080

100120140160180

1 6 11 16 21 26 31 36 41 46 51Weeks

Rai

nfal

l

0

100

200

300

400

500

600

700

Daily accumulated rainfall SE

Primo BananoEl Guayas, Ecuador, 1998

0

50

100

150

200

250

1 6 11 16 21 26 31 36 41 46 51 4 9 14Weeks

Ra

infa

ll

0200400600800100012001400160018002000

Daily rainfall accumulated for 14 days SE

ECV La Cuba, Ciego de Avila, Cuba, 1995

Probanano, El Oro, Ecuador, 2001- 2002

Manejo de Sigatoka negra con aviso bioclimáticos en dos fincas plantadas de Gran enano; 1992 y 1993

14 cyclesYLS threshold

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Comparación del número de aplicaciones por avisos bioclimáticos y por ciclos programados y costos de la protección contra Sigatoka negra en

diferentes plantaciones de bananos Cavendish en CubaPLANTACION APLICACIONES POR PROGRAMA APLICACIONES POR AVISOS

AÑ0 NUMERO DE COSTO AÑO NUMERO DE COSTO CICLOS TOTAL/HA CICLOS TOTAL/HA

LA CUBA 1991 21 801.241992 23 619.66 1993 15 568.74

1994 13 303.291995 12 299.331996 12 269.52

LIMONCITO 1994 22 476.19 1995 13 246.481996 13 288.72

QUEMADO 1994 SN NO PRESENTE 1995 8 172.39DE GUINES 1996 9 193.21

MENENDEZ 1994 18 412.09 1995 23 518.49

SOLA 1994 11 221.561995 12 282.781996 11 237.31

NUEVA PAZ 1994 23 599.66 1996 13 326.56

GUINES 1994 SN NO PRESENTE 1995 13 308.961996 10 (HURACÁN) 219.78

Grupos químicos utilizados en el manejo de Sigatoka negra: lanzamiento al mercado, pérdida de sensibilidad, resistencia

Lanzamiento Pérdida sensibilidad Resistencia1965 1970 1975 1980 1985 1990 1995 2000 2005

AminasAminas

DMI’s azolesDMI’s azoles

EstrobilurinasEstrobilurinas

Anilino-pyrimidinasAnilino-pyrimidinas

5 modos de acción Frecuencia de resistencia : 60% (3 de 5) Lag fase media: 9± 7 años5 modos de acción Frecuencia de resistencia : 60% (3 de 5) Lag fase media: 9± 7 años

BenzimidazolesBenzimidazoles

Pyrazole- carboxamidesPyrazole- carboxamides

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Manejo integrado de Sigatoka negra

Eliminación de fuentes de

inóculo (campos abandonados)

Saneamiento cirugía, despuntes, deshoje temprano,

Uso de clones resistentes.

Mejoramiento convencional y transgénesis

Monitoreo de la evolución y

sistemas de aviso bioclimático

Control químico. Fungicidas y monitoreo de sensibilidad a

fungicidas

Generalización del control a nivel regional Prácticas culturales que

potencien tasas altas de emergencia de hojas y creen condiciones desfavorables a

la enfermedadTecnologías

de aplicación y aspersión

¿Biocontrol? .Otros métodos

alternativos al control químico

Mancha , tizón foliar y punta negra de los frutos(Deightoniella torulosa)

L. P

erez

Vice

nte

Afecta hojas y frutos

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Punta negra de plátanos AAB y moteado de frutos (D. torulosa)

L. Perez Vicente

Pudrición de la corona y antracnosis

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Punta de cigarro por Verticillium theobromae y Trachysphaeria fructigena

Trachysphaeria fructigena

Manejo de enfermedades de los frutos

Cosecha

Pre-cosecha

Post-cosecha

9 Eliminación de bellotas, brácteas, hojas viejas y flores.

9 Destrucción de residuos

9 Embolse temprano y uso de almohadillas para separación de manos.

9 Eliminación de bellotas, brácteas, hojas viejas y flores.

9 Destrucción de residuos

9 Embolse temprano y uso de almohadillas para separación de manos.

9 Manipulación cuidadosa

9 Manipulación cuidadosa

9 Inhibidores de maduración9 Enfriar la fruta a 14ͼC en el

menor tiempo posible9 Atmosfera controlada

9 Inhibidores de maduración9 Enfriar la fruta a 14ͼC en el

menor tiempo posible9 Atmosfera controlada

9 Lavado con agua corriente y cloro9 Uso de fungicidas (benzimidazoles,

imidazoles, estrobilurinas, productos orgánicos)

9 Lavado con agua corriente y cloro9 Uso de fungicidas (benzimidazoles,

imidazoles, estrobilurinas, productos orgánicos)

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Estructura de las poblaciones de Fusarium oxysporum f.sp. cubense.

ClonesRazas Gros Michel Bluggoe Cavendish

1 + - -2 - + -4 + + +

(Ploetz y Pegg, 2000)

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No existen diferencias de síntomas de diferentes “razas” de la marchitez por Fusarium

Marchitez o Mal de Panamá por Fusarium oxysporum f. sp. cubense. Transmisión.

• La principal vía de dispersión es la semilla infectada

• El patógeno sobrevive en los suelos como clamidosporas y en residuos infectados por más de 20 años.

• Tiene un largo período de latencia

• Las variedades susceptibles plantadas en estos suelos presentan invariablemente el ataque de la enfermedad.

• Los suelos de mal drenaje interno predisponen a la infección aún en variedades con resistencia.

Ciclo adaptado de Hwang, (2002)

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Factores de impacto 9 Síntomas similares a los de las demás razas y largo período de

latencia; 9 Pobre conocimiento y conciencia entre los productores del impacto

de la enfermedad, su ciclo infectivo y las tácticas de manejo; falta de programas de vigilancia en muchos países a pesar de estar incluido en listas de plagas reguladas.

9 Falta de acceso de los productores a semilla limpia certificada, 9 Desconocimiento de la estructura de las poblaciones de Foc a nivel

de países, 9 Posibilidades relativamente limitadas de medidas de control en áreas

infectadas, salvo el uso de clones con resistencia a Foc.9 Insuficientes fondos para investigación y extensión sobre biocontrol y

manejo integrado de la enfermedad.

Foc RT4: preparación y prevención; impedir el ingreso a LA&C de Foc RT4

9 Actividades de alerta en eventos científicos– Acorbat 2004 , México; Acorbat 2010 Ecuador, Reunión de Grupos

de Interés sobre la raza 4 tropical de Foc en OIRSA, El Salvador, Reuniónes de MUSALAC en David, Panamá y en Perú

9 Cursos de capacitación en identificación de la enfermedad y diagnóstico:– Costa Rica, Cuba, México, Ecuador, Venezuela, Colombia.

9 Documentos técnicos normativos:

– Programa de erradicación de un brote de Foc RT 4 en la región del OIRSA

9 Desarrollo de sistemas diagnóstico moleculares

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Diagnostico por PCR (Dita et al., 2010, 2011)

Diagnostico por PCR (Pérez et al. 2013)

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Marchitez bacteriana (Moko) Ralstonia solanacearum

L. Perez Vicente C.R .2009

Marchitez bacteriana (Moko) Ralstonia solanacearum

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Características de aislamientos de R. solanacearumasociados con la enfermedad del Moko (Jones, 2000)

Aislamiento/ Distribución Rango de hospederos y ecología

B (rápido marchitamiento) Centro y Sur América AAA/AAB/ABB: HHeliconia: M /Insectos: L-M/ Suelo: M

D (Distorsión) Costa Rica, Surinam, Guyana

AAA/AAB/ABB: L-MHeliconia: L/Insectos: ND/ Suelo: L

H (Heliconia) Costa Rica AAA/AAB: LHeliconia: L/Insectos:H?/suelo: L?

R (Colonias rojas) Costa Rica AAA/AAB: L /ABB: NDHeliconia: ND/ Insectos:ND/ Suelo:ND

SFR/ SFR-C (pequeña, fluida y redondeada)

C. América, Sur del Caribe, Venezuela, Colombia

AAA/ABB: H/ ABB: M-HHeliconia: ND/Insectos:H/ Suelo: ND

A (Amazónico)Selva amazónica (Brasil, Colombia, Perú)

AAA/AAB/ABB: HHeliconia: ND/ Insectos: H/ Suelo: ND

AFV (afluido avirulento) Honduras AAA: L/ AAB/ABB: L?Insectos: ND/ Suelo: ND

T (Tomate, raza 1, biovar 1) AméricaPatogénico en algunas especies de Musa, no patogénico en banano y HeliconiaInsectos: ND/ Suelo: H

Los�aislamientos��relacionados�con�el�Moko��pertenecen�al�

filotipo 2�sequevares III,�IV��y�VI(Fegan y�Prior,�2005�,�2006)

Los�aislamientos��relacionados�con�el�Moko��pertenecen�al�

filotipo 2�sequevares III,�IV��y�VI(Fegan y�Prior,�2005�,�2006)

OmnipresenteOmnipresente

PapaPapa

Bananos�plátanos�yheliconiasBananos�plátanos�yheliconias

Omnipresente

Papa

Bananos�plátanos�yheliconias

Filotipo 1�“Asiáticum”BV:�3,�4�y�5

Filotipo 1�“Asiáticum”BV:�3,�4�y�5

Filotipo�4�“Tropical”BV�:�1,�2A�y�2TFilotipo�4�“Tropical”BV�:�1,�2A�y�2T

Filotipo 3�“Africano”BV:�1�y�2T�

Filotipo 3�“Africano”BV:�1�y�2T�

Diferentes�cepasP.�syzygii

BDB�(Ralstonia��spp.)

Filotipo 2�“Americanum”BV1,�2A�y�2T

Filotipo 2�“Americanum”BV1,�2A�y�2T

Raza�3�papa

Moko�SFR/A�

Moko�H/B

Bv 1�americano

Filotipos de R. solanacearum (Fegan y Prior, 2005)Secuenciación de genes egl (endoglucanasas) y mutS (harp)

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Marchitez bacteriana (Matooke) por Xanthomonas campestris pv. musacearum


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Transmisión por abejasDr. W. Tushemereirwe

Dr. W. Tushemereirwe

Dr. R.C. Ploetz



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Manejo de las marchiteces bacterianas9 Exclusión y cuarentena evitar que ingrese a zonas libres.9 Erradicación: la única medida efectiva cuando la enfermedad

aparece.9 Limitación de accesos a áreas infectadas y regulación de

movimiento de aguas superficiales y drenajes9 Prácticas culturales: se ha determinado que, sin suficientes

precauciones fitosanitarias, el 97 % de los casos de moko se debena esta causa (Wardlaw 1972).

9 Eliminación de las flores masculinas del raquis con horquetas paraevitar diseminación con insectos.

9 Desinfección herramientas y equipos9 Uso de Tagetes patula y frijol de terciopelo (Moko)9 Variedades resistentes transgénesis .

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Síntomas en Ensete ventricosumDr. S. Eden -Green

Marchitez bacteriana (Matooke) por Xanthomonas campestris pv. musacearum.

Síntomas en Ensete ventricosum

Distribución global de la marchitez bacteriana por Xanthomonas campestris pv. musacearum

EnseteCamerún

Ensete Etiopía

Musa spp.El Congo

Musa spp., Uganda,

Musa spp., Tanzania,

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(Teycheney, 2013)

(Teycheney, 2013)

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Mosaico o clorosis infecciosa por el Cucumis mosaic cucumovirus (CMV)

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La secuenciación del ADN viral ha permitido diferenciar secuencias que han coevolucionado desde el origen de las musáceas en el genoma de Musa. Algunas tienen suficientes diferencias en su genoma como para que se consideren especies de virus diferentes:

BS Obino l’Ewai virus (BSOEV) * BS Cavendish virus (BSCavV) BS Goldfinger virus (BSGFV) * BS Mysore virus (BSMysV) *BS Imove virus (BSImV) * BS acuminata Viet Nam virus (BSAcVNV)BS Uganda A virus (BSUgAV) BS Uganda I virus (BSUgIV),BS Uganda J virus (BSUgJV) BS Uganda K virus (BSUgKV),BS Uganda L virus (BSUgLV)* = Presencia confirmada en Cuba (Javer et al., 2008)

Banana streak badnavirus (BSV). Variabilidad

Diversidad molecular y prevalencia de las especies de BSVDiversidad molecular y prevalencia de las especies de BSV

Análisis de Southern blot reveló falsos positivos en genotipos híbridos Análisis de Southern blot reveló falsos positivos en genotipos híbridos

L 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10111213141 516171819 20

Southern Blot of Musa DNA.Probe Im127: RT/RNaseH fragment of BSIMVL:1Kb;1-16 accessions ABB positives to BSIMV in M-IC-PCR;17-18 : uninfected ABB 19-20: UninfectedGrand enano.

Position of Viral DNA

BSGFV> BSOLV >Mixed infections >BSMYV >BVSIMV

25,2%

38,7%12,4%

3,6%20,1%Global�prevalence

BSOLV

BSGFV

BSMYV

BSIMV

Mixed�Infections

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Activación de BSV integrado(Adaptado de Thomas, 2013)

EJ.:• cultivo. de

tejidos• hibridación• frío• seca

PaPlantas libres de virus Salida

AAAA c/s eBSV

Híbrido AAA con eBSV

Plantas infectadas de novo

No virus

Bb (PKW) con eBSV

Híbrido AAA con eBSV

Ensayos de detección de BSVANÁLISIS VENTAJAS DESVENTAJASSíntomas Fácil No confiable

ELISA Fácil Baja sensibilidadAmplia diversidad serológica

Antisueros escazos PCR Fácil

Mayor sensibilidadFalsos positivos con BSV integrado

Diversidad genómicaLos primers degenerados no tienen

sensibilidad IC-PCR (DNase) Fácil

Mayor sensibilidadEvita el BSV integrado

Amplia diversidad genómica Los primers degenerados no tienen

sensibilidad

Miniprep/ISEM Evita el BSV integradoAmplia especificidad

Resultados inequívocos

Consume mucho tiempoPuede perder sensibilidad

Se requiere ME y ultracentriífugaRCA Evita el BSV integrado Consume tiempo

Non-specific amplificationAmplificaciones no específicas

Complicado por infecciones mixtas

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Banana bunchy top nanovirus

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Banana bunchy top virus in Australia

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(Teycheney, 2013)

El áfido adquiere el virus en las primeras 4 horas de alimentación y lo transmite por 20 días

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Epidemiology of BBTVTrabajos importantes de Magee (1920s – 1940s) y Allen

(1970s-1980s)

9 No hay hospedantes fuera de las Musaceae9 Transmisión persistente por áfidos9 Distancia de dispersión por áfidos (av. 15.2m, 99% < 86m)9 Período latente de la enfermedad (3.7 hojas nuevas)9 El plantón completo se infecta sistémicamente 9 Se desarrollaron simulaciones para modelar las epidemias

por Allen

Programa de Erradicación y Control en Australia(Thomas, 2013)

9 Control basado en Cuarentena, legislación, inspección y erradicación

9 El Programa de Control que incluye 4 semanas (4 hojas) inspecciones, dirigido a reducción de las áreas afectadas y los focos calientes

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¿Latencia?

Los áfidos del banano pueden alimentarse alrededor del nivel del suelo en el pseudotallo/cormo.

¿Se alimentan e infectan puntos de crecimiento en dormancia que se vuelven activos meses/años después y solamente entonces exhiben los síntomas de virus?

¿Infecciones prolongadas?

Método antiguo de erradicación

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¿Infecciones prolongadas?

Planta de banano 4 semanas después de la inyección con Glyphosato/ Imidacloprid en invierno en el Sudeste de Queensland

¾ Verano – Transmisión 1 día después de la inyección; tejido verde por 28 días

¾ Invierno- Transmisión por 7 días después de la inyección, tejido verde durante 57 days

Conclusions - BBTV

9 Sigue siendo una amenaza internacional

9 La exclusión es el mejor control

9 La erradicación requiere un esfuerzo intenso y soporte legislativo

9 Las estrategias de erradicación y las técnicas para realizarlas son aspectos críticos

9 La latencia puede causar problemas

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Mosaico de la bráctea del banano por el Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV)


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CPC 2004; Jones et al., 2000

Distribución global del Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV).

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Mosaico de la bráctea del banano por el Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV).

Transmisión y control

• El BBrMV pertenece al grupo de los potyvirus

• La enfermedad ha causado pérdidas severas de rendimiento.

• Los estudios indican que lo transmite Rophalosiphum maydis de forma no persistente.

• Se transmite a través de material de plantación enfermo.

• Hay antecedentes de su transmisión en vitroplantas y que se encuentra presente en colecciones in vitro internacionales

• El control se refiere al uso de material libre del virus y la eliminación de plantas enfermas.

Clima 25%Clima 25%

Técnicas Agrícolas

9%

Técnicas Agrícolas

9%

Introducciones56%

Introducciones56%

Perturbaciones del hábitat 1%Perturbaciones del hábitat 1%

Recombinaciones 2%Recombinaciones 2%

Cambios de poblaciones de vectores 7%Cambios de poblaciones de vectores 7%

Factores que determinan las EIE en plantas según encuesta realizada de informes de ProMED.

(modificado de Anderson et al., 2004)

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Patógenos de musáceas transmitidos en material de propagación

9 Fusarium oxysporum f. sp. cubense 9 Ralstonia solanacearum (Marchitez bacteriana o

Moko)9 Dickeya paradisiaca9 Xanthomonas campestris pv. musacearum

(Marchitez por Xanthomonas)9 Cucumis mosaic cucumovirus (CMV)9 Banana streak badnavirus (BSV)9 Banana bunchy top nanovirus (BBTV)9 Banana mild mosaic virus (BMMV)9 Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV).

Procedimiento completo para la producción de vitroplantas certificadas libres de virus

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El germoplasma de banano no debe nunca ser movido entre regiones como hijos, sino como vitroplantas provenientes de donantes

indexados libre de patógenos.

Gracias!

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