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Estudio enfocado en la producción de plántulas de Smilax para establecer plantaciones foresles
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UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
CENTRO UNIVERSITARIO DE PETÉN
INGENIERÍA FORESTAL
TRABAJO DE GRADUACIÓN
EVALUACIÓN DE REPRODUCCIÓN VEGETATIVA POR MEDIO DE RIZOMAS DE COCOLMECA (Smilax domingensis Willd.) EN EL MUNICIPIO
DE FLORES, PETÉN, GUATEMALA C.A.
POR
BILLY MCDONALD CRUZ AZUCENA
CARNÉ 98-15220
ASESOR ING. AGR. JOSE FRANCISCO CONTRERAS
SANTA ELENA, FLORES, PETEN, MAYO DE 2014
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
CENTRO UNIVERSITARIO DE PETÉN
INGENIERÍA FORESTAL
EVALUACIÓN DE REPRODUCCIÓN VEGETATIVA POR MEDIO DE RIZOMAS DE COCOLMECA (Smilax domingensis Willd.) EN EL MUNICIPIO
DE FLORES, PETÉN, GUATEMALA C.A.
TRABAJO DE GRADUACIÓN
PRESENTADO AL CONSEJO DIRECTIVO DEL
CENTRO UNIVERSITARIO DE PETÉN
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
POR
BILLY MCDONALD CRUZ AZUCENA
En el acto de investidura como
INGENIERO FORESTAL
EN EL GRADO ACADÉMICO DE LICENCIADO
SANTA ELENA, FLORES, PETÉN, MAYO DE 2014
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
CENTRO UNIVERSITARIO DE PETÉN
CONSEJO DIRECTIVO
PRESIDENTE
Ph. D. Bayron Augusto Milián Vicente
SECRETARIA
Licda. Silvia Lorenzo Zetino
REPRESENTANTE DE CATEDRÁTICOS
M. Sc. Carlos Herman de León
Ing. Agr. Carlos Enrique Más Escalera
REPRESENTANTE DE EGRESADOS
Licda. Karla Marina Góngora López
REPRESENTANTE DE ESTUDIANTES
Prof. Francisco Arturo Barajas Vásquez
Prof. Melver Eoneldo Bin Teni
ACTO QUE DEDICO
A Dios: Por permitirme la vida, los sueños y culminar esta meta académica.
A mis padres: Santiago Cruz y Eva Azucena, gracias por haberme encaminado a
conseguir este logro, que Dios les bendiga.
A mi esposa: Mónica Samayoa por su apoyo incondicional, su amor y ser mi
cómplice en cada reto por enfrentar.
A mis hijas: Analucía y Alejandra para que sueñen y fijen sus metas, alcanzables con
esfuerzo y perseverancia.
A mi familia y
amigos: Que en diversas formas y circunstancias han contribuido, motivado y
apoyado en mi formación como persona, especialmente a Carlos
Samayoa y Carlota Sarceño de Samayoa por su disposición de ayudar.
A Petén: Tierra bendita, por sus bosques, por Tikal y su vasto territorio lleno de
oportunidades, esperando ser un profesional proactivo y contribuir con
un desarrollo sostenible que permita conservar la riqueza natural y
cultural que heredamos.
AGRADECIMIENTOS
A: El Centro Universitario de Petén (CUDEP) de la Universidad de San Carlos de
Guatemala.
Formador de los nuevos profesionales de Petén, con la expectativa y el reto de
contribuir en el desarrollo de nuestra región.
A: Ing. Agr. Jose Contreras, por su apoyo y orientación en la realización de este
documento.
A: Los catedráticos de bosques, por compartir sus conocimientos y desarrollar mis
capacidades, especialmente a los ingenieros: Ramón Morales Cansino, Suamy Aguilar
y Víctor Marroquin, por el apoyo y revisión de este documento.
A TODAS AQUELLAS PERSONAS QUE DE ALGUNA FORMA ME BRINDARON
APOYOPAR REALIZAR Y CONCLUIR ESTE TRABAJO
i
ÍNDICE
1. INTRODUCCIÓN ................................................................................................................... 1
2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ................................................................................ 2
3. JUSTIFICACIÓN .................................................................................................................... 3
4. OBJETIVOS ............................................................................................................................ 4
4.1 Objetivo General ............................................................................................................................ 4
4.2 Objetivos específicos...................................................................................................................... 4
5. HIPÓTESIS ............................................................................................................................. 5
6. MARCO CONCEPTUAL ....................................................................................................... 6
6.1 Historia ........................................................................................................................................... 6
6.2 Taxonomía: .................................................................................................................................... 6
6.3 Distribución y Hábitat: ................................................................................................................... 7
6.4 Especies útiles del género Smilax .................................................................................................. 8
6.5 Clasificación Botánica.................................................................................................................... 9
6.6 Descripción botánica de Smilax domingensis Willd. ..................................................................... 9
6.6.1 Morfología ............................................................................................................................... 9
6.6.3 Tallos ..................................................................................................................................... 10
6.6.4 Hojas ..................................................................................................................................... 10
6.6.5 Inflorescencias ....................................................................................................................... 11
6.7 Métodos de Propagación .............................................................................................................. 12
6.7.1 Reproducción sexual ............................................................................................................. 12
6.7.2 Reproducción asexual ........................................................................................................... 13
6.10 Ecología ...................................................................................................................................... 15
6.10.1 Suelos .................................................................................................................................. 15
ii
6.10.2 Temperatura ........................................................................................................................ 15
6.10.3 Precipitación ........................................................................................................................ 15
6.11 Nombres comunes en Guatemala ............................................................................................... 15
6.12 Usos Medicinales atribuidos ...................................................................................................... 16
6.13 Especies de Smilax en el área de Petén ...................................................................................... 17
6.13.1 Vegetación acompañante donde crece la Smilax en Petén .................................................. 17
6.14 Ventajas de la reproducción vegetativa ...................................................................................... 18
7. MARCO REFERENCIAL .................................................................................................... 22
7.1 Ubicación geográfica.................................................................................................................... 22
7.2 Zona de Vida ................................................................................................................................ 22
7.3 Factores Climáticos ...................................................................................................................... 22
7.4 Geología y Fisiografía .................................................................................................................. 25
7.4.1 Suelos .................................................................................................................................... 25
7.4.2 Topografía y Relieve ............................................................................................................. 25
7.5 Principales trabajos de campo desarrollados a Smilax ........................................................ 25
7.5.1 Caracterización in situ y Manejo de poblaciones de Zarzaparrilla (Smilax) ............................. 26
6.5.2 Caracterización Morfológica y Fenológica de una plantación de Zarzaparrilla (Smilax
Dominguensis Willd.) en el Municipio de Samayc, Suchitepéquez. ................................................. 28
8. METODOLOGÍA .................................................................................................................. 30
8.1 Procedencia del Material Experimental ....................................................................................... 30
8.1.2 Características Físicas y Climáticas ...................................................................................... 30
8.2 Identificación de la Especie.......................................................................................................... 33
8.3 Diseño Experimental para la Reproducción Vegetativa ............................................................... 33
8.3.1 Descripción de los Tratamientos ........................................................................................... 33
8.3.2 Unidad Experimental ............................................................................................................. 34
iii
8.3.4 Variable Respuesta ............................................................................................................... 36
8.4 Manejo del Experimento .............................................................................................................. 36
8.4.1 Manejo de las Unidades Experimentales ............................................................................... 37
8.5 Diseño Experimental .................................................................................................................... 38
8.7 Análisis de la información ........................................................................................................... 38
9. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ........................................................................................... 39
9.1 Porcentaje de brotación ................................................................................................................ 39
9.1.1 Análisis Estadístico .............................................................................................................. 40
9.2 Porcentaje de enraizamiento ......................................................................................................... 42
9.2.1 Análisis Estadístico .............................................................................................................. 43
9.3 Periodo de tiempo de brotación y enraizamiento de los rizomas ................................................. 44
9.3.1 Análisis Estadístico .............................................................................................................. 47
10. CONCLUSIONES ............................................................................................................... 50
11. RECOMENDACIONES ..................................................................................................... 51
12. BIBLIOGRAFÍA ................................................................................................................. 52
13. ANEXOS ............................................................................................................................. 54
iv
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura No. Página
1. Mapa del Sistema de Áreas Protegidas y las unidades de muestreo
del Inventario Forestal Nacional…………………………………. 7
2. Rizoma de Smilax dominguensis…………………………………. 10
3. Hojas de Smilax dominguensis…………………………………… 11
4. Fruto de Smilax dominguensis…………………………………… 12
5. Ubicación geográfica del área experimental, Santa Elena,
Flores, Petén………………………………………………..……... 23
6. Ubicación de UM Uaxactún en la Reserva de la Biosfera Maya…… 32
7. Área de las unidades experimentales y distribución de tratamientos… 34
8. Croquis de las unidades experimentales en el campo………….…… 35
9. Grafica de porcentajes de brotación en la Smilax dominguensis
con los tratamientos y repeticiones…………………………….…… 40
10. Inmersión de los trozos de cocolmeca en los diferentes tratamientos
de AIB puro y sus repeticiones…..…………………………………… 41
11. Porcentajes de enraizamiento con trozos de rizoma de
Smilax dominguensis por tratamiento…..…………………………….. 42
12. Número de rizomas brotados a los 60, 90 y 150 dias………………… 45
13. Brotación de cocolmeca roja, originada de un rizoma con la aplicación
de AIB (1500 ppm) su periodo corresponde a 150 dias…………….... 45
14. Número de rizomas con enraizamiento a los 60, 90 y 150 dias…..…… 46
15. Enraizamiento de cocolmeca roja, utilizando trozos de rizoma
con la aplicación de AIB (1000 ppm) después de 150 dias …………….... 46
v
ÍNDICE DE CUADROS
Cuadro No. Página
1. Nombres comunes de la Smilax en diferentes lugares de Guatemala…………… 16
2. Plantas acompañantes donde crece la Smilax, en San José, Petén………………. 18
3. Descripción de los tratamientos de reproducción vegetativa……………………. 34
4. Porcentaje de brotación con rizomas de cocolmeca roja por cada tratamiento....... 39
5. Análisis de varianza en la brotación de cocolmeca roja.…………………………. 40
6. Prueba de Tukey al 5% para el porcentaje de brotación (tratamientos) …………. 41
7. Porcentajes de enraizamiento con trozos de rizomas ……………………………. 42
8. Análisis de varianza para el porcentaje de enraizamiento……………………….. 43
9. Prueba de Tukey al 5% para el porcentaje de enraizamiento (tratamientos).…….. 43
10. Registro de rizomas con brotación y enraizamiento a los 60, 90 y 150 dias ……. 44
11. Análisis de varianza por brotación y enraizamiento a los periodos de tiempo
estimados (60, 90 y 150 dias) …………………………………………………… 47
12. Prueba de Tukey al 5% para el periodo de brotación……………………….. 47
13. Análisis de varianza por enraizamiento en 60, 90 y 150 dias ……………….. 48
14. Prueba de Tukey al 5% para el porcentaje de enraizamiento ………………… 48
15A. Boleta de resultados obtenidos para las variables de brotación y enraizamiento
de trozos de rizomas de Smilax dominguensis………………………………………….. 55
vi
EVALUACIÓN DE REPRODUCCIÓN VEGETATIVA POR MEDIO DE RIZOMAS DE
COCOLMECA (Smilax dominguensis Willd.) EN EL MUNICIPIO DE FLORES, PETÉN,
GUATEMALA C.A.
RESUMEN
Los bosques de Petén, Guatemala poseen una gran variedad de especies forestales endémicas,
dentro de las cuales se encuentra la cocolmeca roja (Smilax dominguesis Willd.) como se le
conoce localmente, esta planta es un bejuco trepador que crece en los suelos francos arenosos
del bosque tropical húmedo. La raíz es un tubérculo o rizoma la cual ha sido extraída de forma
silvestre durante muchos años para su comercialización al ser considera una planta medicinal
de alto valor con propiedades atribuidas tales como: antiinflamatorias, antisépticas,
gastrointestinales, antirreumáticas, etc. alcanzando precios en el mercado de Q50 a Q150 por
trozos de rizomas de la cocolmeca roja.
La falta de estudios que generen conocimientos para su cultivo y manejo, el cambio del uso
del suelo, la deforestación han provocado la disminución de la densidad de población de esta
especie, corriendo el peligro de desaparecer de esta región.
El presente estudio es una evaluación de reproducción vegetativa por medio de trozos de
rizomas con el principal objetivo de analizar una alternativa de brotación y enraizamiento que
permita reducción del tiempo de germinación natural y proporcione información de manejo
para estudios posteriores.
Se extrajeron de 5 plantas diferentes los rizomas madre, identificados previamente en la
unidad de mejo forestal de Uaxactún. Se efectuaron 4 tratamientos y 3 repeticiones, con un
total de 12 unidades experimentales las cuales tenían 15 individuos cada una y un total de 180
muestras de trozos de rizomas. Utilizamos el ácido indolbutírico (AIB) en tres diferentes
concentraciones (1000, 1500 y 3000 ppm) como regulador de crecimiento, y el testigo sin
ninguna aplicación de enraizador.
vii
Al final del ensayo los resultados en brotación en cada uno de los tratamientos mostró
diferencias significativas, el T1 presento mejores resultados con un porcentaje de brotación del
13.33% pero estadísticamente son igual con el T2 y se descarta el T3 con una dosis de 3000
ppm con 0% de brotación al igual que el tratamiento testigo.
El porcentaje de enraizamiento fué del 66.67% en el T1 y 42.22% con el T2 presentando los
mejores resultados al final de periodo establecido de 150 dias de evaluación. La densidad
promedio de individuos fue de 26 brotes y 58 enraizamientos de las 180 muestras de rizomas
plantadas con la aplicación de los diferentes tratamientos.
Uno de los propósitos de esta investigación fue generar información para demostrar otra forma
de propagación mejorada de esta especie amenazada por la desaparición de los bosques, la
extracción silvestre sin control y su compleja regeneración natural. Dejando un aporte
importante para su manejo y cultivo de forma sostenible, sugiriendo estimar nuevas variables a
evaluar, tales como grosor, profundidad de la siembra y germinación de semilla con nuevos
tratamientos en futuras investigaciones.
1
1. INTRODUCCIÓN
Dentro de la Flora de Guatemala, el género Smilax es representado por 13 especies conocidas
con los nombres de zarzaparrillas y/o cocolmecas, utilizadas desde tiempos remotos, las
especies aludidas desarrollan tallo rizomatoso al cual se le atribuyen propiedades medicinales,
tónicas y estimulantes. En Petén están registradas la S. dominguensis y S. lundellii, siendo
actualmente explotadas en forma irracional, por medio de su simple extracción, para la
elaboración de preparados naturales. Por ser la raíz o rizoma la parte de interés medicinal se
ocasiona la muerte de la planta cuando se aprovecha, situación que deja en riesgo la
conservación y sostenibilidad de las especies. (Contreras, J. 2010)
En 1994 la FAO reconoció a Smilax como un recurso genético altamente degradado en Centro
América y México. Sus poblaciones naturales han venido disminuyendo drásticamente como
producto de la deforestación, así como de la extracción indiscriminada. (FONTAGRO, 2003)
La reproducción o propagación vegetativa puede ser una alternativa viable para esta especie,
dada la lentitud que conlleva la germinación de semillas sexuales. Este tipo de reproducción
también llamada asexual tiene 3 variantes que son: 1) la micro propagación a partir de tejidos
vegetales en cultivo in vitro; 2) la propagación a partir de bulbos, rizomas, estolones,
tubérculos o segmentos (esquejes) de las plantas que conserven la potencialidad de enraizar, y
3) la propagación por injertos de segmentos de la planta sobre tallos de plantas receptivas más
resistentes. (Vasquez Yanez & Orozco, 1997).
Se realizará un ensayo de reproducción vegetativa utilizando trozos de rizomas de Smilax
dominguensis conocida localmente como colcolmeca roja. Con el propósito de contribuir al
conocimiento para su cultivo y manejo. El ensayo se llevará a cabo en Santa Elena, Flores,
Petén, en un área preparada bajo un dosel natural, con las condiciones idóneas para comprobar
la viabilidad de otra alternativa de cultivo.
2
2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Una de las plantas nativas en Petén que ha cobrado importancia entre la población por sus usos
medicinales es la cocolmeca y/o zarzaparrilla, extraída de forma silvestre, sin ningún manejo,
y a esto hay que agregar la deforestación, cambio de uso del suelo, lo que provoca que su
hábitat natural se reduzca año con año, considerablemente.
En la actualidad existe interés en el consumo de las plantas medicinales, tanto en el ámbito
nacional como internacional. Se considera un símbolo porque es una planta nativa y porque su
uso se remonta desde hace más de cuatrocientos años. La cocolmeca tiene un alto potencial
económico y se encuentran distribuidas en varios departamentos de Guatemala, su rizoma es
comercializado, alcanzan valores hasta de tres dólares por kilogramo, pero su explotación ha
sido inadecuada.
La raíz o el rizoma es la parte más utilizada, por lo que al ser aprovechada se daña
completamente la planta, ocasionándole la muerte en la mayor parte. Considerando que esta
especie necesita de 8 a 10 años, para producir un rizoma, es de suponer el daño y la grave
erosión genética que se causa en sus poblaciones, por la falta de conocimientos y técnicas de
producción sostenible, lo cual pone en riesgo la conservación y sostenibilidad de la especie.
Actualmente no existe ningún manejo, ni producción bajo condiciones de cultivo a gran
escala, para abastecer el mercado pese a su creciente demanda. Los volúmenes que se ofertan
provienen del aprovechamiento indiscriminado de poblaciones silvestres, sin manejo alguno.
Ante el desconocimiento de su botánica y manejo, es indispensable realizar estudios de
reproducción, generando información útil, que permita proponer planes de manejo y/o cultivo.
Este estudio de cocolmeca plantea una nueva opción en la producción agrícola y forestal ya
que podría ofrecer otra alternativa como producto no maderable del bosque, generando una
fuente de ingresos y la conservación de su variabilidad. Obtener la regeneración en un menor
tiempo, que la regeneración natural, podría facilitar nuevos planes a futuro en el manejo del
genero Smilax dominguensis.
3
3. JUSTIFICACIÓN
En Petén varias familias tienen como alternativa la utilización de plantas medicinales por su
bajo costo y fácil preparación. La cocolmeca roja es una de las más comercializadas debido a
sus propiedades curativas que ha mostrado: antiinflamatorias, antirreumática, diurética,
cicatrizante, antioxidante entre otras. Esta especie crece en nuestros bosques tropicales de
forma natural y silvestre, tomando en consideración la tasa de deforestación que año con año
reduce el número de hectáreas de bosque y además con la circunstancia agravante que no se
han desarrollado tecnologías específicas para el cultivo de estas plantas.
Los volúmenes de rizoma que se extraen, la deforestación, cambios en el uso de la tierra y
urbanización ha provocado la disminución de la densidad de sus poblaciones. Las dificultades
para la germinación complican el panorama a futuro de esta especie, de 3 a 6 meses toma una
semilla en germinar y hasta el momento no se logrado identificar otra técnica que agilice esté
proceso.
Ante las dificultades inherentes de la propagación sexual y/o natural, la reproducción
vegetativa constituye una vía prometedora para la conservación de la especie y ofrecer nuevas
alternativas que permitan un mejor aprovechamiento.
Por lo anterior es urgente desarrollar estudios y/o evaluaciones que generen información sobre
su botánica, propagación y manejo. El presente trabajo de campo permitirá establecer la
viabilidad de la propagación vegetativa por medio de rizomas de Smilax dominguensis y así
contribuir en el conocimiento agronómico y forestal; y así propiciar su cultivo, domesticación
y consecuentemente darle un manejo sostenido y desestimular la extracción irracional de la
especie en los bosques naturales.
4
4. OBJETIVOS
4.1 Objetivo General
Evaluar la reproducción vegetativa de la Cocolmeca (Smilax dominguensis) por medio de
rizomas con concentración de ácido indolbutírico (AIB).
4.2 Objetivos específicos
Evaluar la brotación de las secciones de rizoma a lo largo del periodo de cultivo de la
cocolmeca.
Determinar el porcentaje de brotacion al final del periodo de estudio.
Determinar el porcentaje de enraizamiento al final del periodo de estudio.
Analizar el efecto de las diferentes concentraciones del ácido indolbutírico (AIB) en el
enraizamiento.
5
5. HIPÓTESIS
No existen diferencias significativas al hacerse el análisis estadístico de los tratamientos de
concentración de ácido indolbutírico (AIB) y el testigo con relación a las variables de
porcentaje de brotación, porcentaje de enraizamiento y periodo de tiempo de brotacion y de
enraizamiento en la evaluación de reproducción vegetativa por medio de rizomas de
cocolmeca roja (Smilax dominguensis Willd.)
6
6. MARCO CONCEPTUAL
6.1 Historia
La zarzaparrilla fue la primera planta medicinal exportada de Centroamérica en el siglo XVI.
Gerard en 1633 la menciona como remedio contra dolores crónicos de articulaciones y cabeza
y contra resfríos. Cáceres (1,994) cita a Xímenez refiriéndose a esta planta en su obra Historia
natural del reino de Guatemala como “... Una de las cosas en que la Divina Omnipotencia
parece que más se esmeró en comunicarle virtudes...”. (Cáceres, A. 1996.)
La zarzaparrilla se usaba para tratamientos de sífilis y una variedad de enfermedades que
requería purificación de sangre, famosos como Dordyce y Cullen en el siglo XVII la
recomendaban. Hacia principios de siglo XVIII dejó de usarse posiblemente por
adulteraciones. En 1850 vuelve a tener importancia al incorporarse a la U.S. Pharmacopoeia
para tratar sífilis hasta 1950. Por una combinación de factores la zarzaparrilla ha tenido
pérdida de popularidad, aunque pareciera seguir siendo una droga útil en el tratamiento de
ciertas enfermedades crónicas. (Cáceres, A. 1996.)
6.2 Taxonomía:
La familia Smilacaceae incluye alrededor de 250 géneros y 4,000 especies, de distribución
mundial, representada ampliamente en regiones tropicales y templadas.
Posee géneros de importancia ornamental, cultivos vegetales y medicinales. De estos 250
géneros, Smilax uno de ellos, está constituido entre 200 a 300 especies de distribución general
en el mundo, de estas 13 se encuentran en Guatemala y varias se emplean por sus raíces y/o
rizomas, como medicinales. El género Smilax estuvo incluido dentro de la familia Liliaceae,
junto con otros 15 géneros botánicos; pero en años recientes se constituyó en el único
representante de una nueva familia: Smilacaceae. Esta decisión fue respaldada por estudios
7
cromosómicos y de la composición de las semillas y por la revisión del género en Brasil.
(Huft, 1994) (Castro C, O; Umaña, E. 1990. Citado por López Salguero, 2004)
6.3 Distribución y Hábitat:
El género Smilax se distribuye en regiones tropicales y templadas. Hay algunas especies que
son nativas de México, las cuales han sido cultivadas extensamente en la parte sur del país,
también han sido propagadas en Guatemala, Honduras, Nicaragua, Costa Rica, Colombia,
Ecuador, Perú y Jamaica. (Ocampo, R. 1982)
Ocampo (1982) menciona que en América Central estas plantas son típicas de regiones
boscosas, donde generalmente aparecen en áreas bien drenadas, aunque de suelos arcillosos,
con un pH entre 5.0 y 5.3; la temperatura promedio anual en esas regiones es de 18 a 23ºC y la
precipitación de 1,700 a 5,600 mm.
Figura 1. Mapa del Sistema Guatemalteco de
Áreas Protegidas y las unidades de muestreo del
Inventario Forestal Nacional. Fuente: CONAP /
IFN. Y áreas de distribución geográfica de la S.
dominguensis en Guatemala.
8
6.4 Especies útiles del género Smilax
Su condición dioica y las diferencias morfológicas (sobre todo de las hojas) entre individuos y
entre estados de madurez han dificultado la clasificación taxonómica de las especies de
Smilax; más si se considera que las colecciones que incluyen órganos florales de ambos sexos
son escasas (Huft, 1994).
La morfología de las hojas de Smilax varía no sólo con la edad de la planta, sino con el
microambiente e incluso dentro del mismo individuo, lo que hace más difícil la clasificación
de las especies a partir de muestras estériles.
En América Central se reconocen popularmente dos tipos de Smilax a las cuales se les
atribuyen propiedades medicinales: Cocolmeca y zarzaparrilla. En Costa Rica y Honduras se
llama Zarzaparrilla a una planta de raíces alargadas de menos de 5 mm de diámetro y
cocolmeca a una planta que forma una especie de rizoma voluminoso y duro de color
anaranjado rojizo y hasta 20 Kg. de peso. En Guatemala estos nombres comunes se usan en
forma una especie de rizoma voluminoso y duro de color anaranjado rojizo y hasta 20 Kg. de
peso. En Guatemala estos nombres comunes se usan en forma inversa, y cocolmeca es la
planta de raíces alargadas.
Para una buena clasificación taxonómica se requieren muestras tanto de las partes juveniles
como maduras de las lianas. Se debe poner el énfasis en la observación de características
claves como: longitud y forma de pecíolo, pubescencia, forma de los aguijones, presencia y
característica del rizoma, forma y tallo (ya sea cuadrangular o redondeado), largo del
pedúnculo floral, color de los frutos y tipo de flores. . (Castro C, O; Umaña, E. 1990. Citado
por López Salguero, 2004)
9
6.5 Clasificación Botánica
REINO: Plantae.
DIVISION: Magnoliophyta.
CLASE: Liliopsida.
SUBCLASE: Liliidae.
SUPERORDEN: Liliiflorae.
ORDEN: Lileales.
SUBORDEN: Dioscoriineae.
FAMILIA: Smilacaceae.
GENERO: Smilax.
ESPECIE: Smilax domingensis Willd.
6.6 Descripción botánica de Smilax domingensis Willd.
6.6.1 Morfología
Son bejucos trepadores, perennes que se extienden sobre los árboles, leñosos o a veces
herbáceos, dioicos, algunas plantas podrían alcanzar entre 20 a 30 metros dependiendo del
soporte, a menudo se les encuentra trepando por zarcillos pareados que nacen de la base
expandida de los pecíolos, cuando joven es cilíndrico, al madurar se torna cuadrangular,
presencia de aristas prominentes y espinas en forma aplastada con su ápice hacia abajo que lo
identifican con facilidad. Todas las especies presentan hojas simples, alternas, glabras o
pubescentes, con un pecíolo bien diferenciado. El pecíolo puede ser recurvado o acanalado,
con o sin acúleos y con dos zarcillos. (Ferrufino & Gómez-Laurito, 2004)
6.6.2 Rizoma
En Guatemala no existen trabajos sobre la organografía del rizoma de Smilax. Según la
morfología externa, el sistema subterráneo se divide en dos tipos: a) con engrosamiento
tuberoso, b) con nudos y entrenudos engrosados. S.domingensis, S. panamensis y S. spissa
10
presentan el primer tipo, que es un rizoma formado por una parte caulinar, de consistencia
leñosa. El sistema caulinar subterráneo está cubierto por catafilos dispuestos dísticamente y
raíces adventicias, que facilitan el enraizamiento. El color del rizoma varía según las
condiciones ambientales. Smilax spinosa, S. vanilliodora y S. mollis presentan el segundo tipo,
que es un rizoma con pequeños engrosamientos en los nudos y entrenudos y las raíces
adventicias pueden ser cilíndricas o cuadrangulares como es el caso de S. vanilliodora.
(Ferrufino & Gómez-Laurito, 2004)
Figura 2. Rizoma S. Dominguesis
6.6.3 Tallos
Tallos terrestres cilíndricos, escasamente armados en la parte inferior, con aguijones robustos
recurvados inermes en la parte posterior. El color del tallo varía según el ambiente donde
crezca la planta. En S. domingensis puede ser rojo a morado en la parte inferior; en la mayoría
de las especies es verde. (Ocampo, R.A. 1994.)
6.6.4 Hojas
Hojas ovadas a lanceoladas simples, alternas, glabras o pubescentes, con un pecíolo bien
diferenciado. El pecíolo puede ser recurvado o acanalado, con o sin acúleos y con dos
zarcillos. La lámina es coriácea o membranácea en la mayoría de los casos; es coriácea en
11
algunos bejucos de S. domingensis. Las hojas son de 6 – 15 cm de longitud por 1.5 – 10 cm de
ancho; 1,4 – 6 veces más larga que anchas; ovada, ovada – lanceoladas o lanceoladas; 5
nervios desde la base, las nervaduras primarias prominentes en el envés, ápice brevicuspidado,
base aguda, margen entero, pecíolo 0.5 a 1cm de longitud, umbela subyacente, subterete.
(Castro C, O; Umaña, E. 1990. Citado por López Salguero, 2004), (Ferrufino & Gómez-
Laurito, 2004)
Figura 3. Hojas de Smilax dominguensis (Foto: Billy Cruz)
6.6.5 Inflorescencias
El androceo está formado por seis estambres libres, alternando con los tépalos. Las anteras son
oblongas, bitecas, basifijas, introrsas, con dehiscencia longitudinal. El tamaño de la antera
varía en cada flor y umbela. Los filamentos son más largos que las anteras en la mayoría de las
especies. Los tépalos de las flores estaminadas de 4 a 6 mm; filamentos de 2 a 4 mm; anteras
de 1 a 2 mm. Tépalos de las flores pistiladas de 4 mm. (Ferrufino & Gómez-Laurito, 2004)
Frutos: Los frutos son bayas globosas, que varían de tamaño entre los bejucos de la misma
especie. El exocarpo es de color morado o rojo en Smilax domingensis, el número de frutos
varía según la infrutescencia. Las semillas son esféricas y varían de 1 a 3 por baya. Las bayas
pueden ser de 7 a 10 mm, de color rojo, púrpura o negro de 1- 3 semillas. Se pueden encontrar
en bosques húmedos y espesuras. (Ferrufino & Gómez-Laurito, 2004)
12
Figura 4. Frutos de Smilax dominguensis (Foto: Andrés Hernández, Panamá)
6.7 Métodos de Propagación
6.7.1 Reproducción sexual
De acuerdo con Ocampo (1982) en forma natural, en el bosque, la zarzaparrilla se reproduce
por medio de semillas sexuales que no presentan dormancia, pero necesitan luz para poder
germinar. En experimentos de germinación de 5 especies brasileñas en relación con la
emergencia de raíz se encontró con que la duración de este período varía entre 39 y 93 días.
Para alcanzar el estado plántula con una hoja desarrollada se necesitaron entre 50 y 190 días y
para establecerse como plántula con cuatro hojas desarrolladas, entre 128 y 341 días. Parece
evidente que el desarrollo de especies de Smilax a partir de semillas sexuales es muy lento, por
lo que puede resultar poco práctico utilizar este método de propagación con fines comerciales.
a) Por semilla: La propagación por semilla se da en forma natural, debido a lo difícil de poder
obtener el material de reproducción en forma silvestre, sin embargo, Herrera y colaboradores
(1994), realizaron pruebas de propagación y evaluaron diferentes métodos de fermentación de
frutos y semillas, de donde se concluyó, primero que el tiempo requerido para la fermentación
de frutos maduros de Smilax spp. es de alrededor de 14 días, segundo, el medio de
13
fermentación de frutos de Smilax spp. que mejor resultado presentó fue el de agua. Se
realizaron pruebas de germinación de semillas, evaluando dos diferentes medios (Broza y
Arena +Broza 1:1), con un proceso de desinfección con H2SO4 al 10% e hipoclorito de sodio
al 90%, de donde se concluyó que no es necesario desinfectar las semillas antes de la siembra
y para la adecuada germinación de semillas de Smilax spp. debe usarse broza como sustrato.
Para realizar estas pruebas se realizaron colectas en Campur, Alta Verapaz, Chuituj, Sololá y
en Erivón, Izabal. (López Salguero, 2004)
6.7.2 Reproducción asexual
La propagación vegetativa en sus diferentes modalidades constituye una herramienta
importante para multiplicar plantas con fines comerciales o de mejoramiento y puede ofrecer
en ambos casos ventajas relativas: bajos costos, facilidad de proceso y calidad del material
obtenido. (Girón, L. 1998).
De acuerdo con Ocampo (1982), los métodos de propagación conocidos para las especies de
Smilax son los siguientes;
b) Por estacas: Se han realizado estudios preliminares obteniendo resultados satisfactorios con
estacas de madera dura, de 20 a 25 cm de largo colocadas en forma inclinada.
c) Por acodo: Se ha observado que en forma natural el bejuco al colocarse en contacto con el
suelo, produce raíces y retoños. Este sistema se puede realizar en el campo al inducir el
contacto del material con la superficie y cubrir con tierra para luego cortar y llevar al sitio de
sombra.
d) Cultivo de tejidos: Se ha estudiado las técnicas de propagación in Vitro de varias especies
de Smilax. En Costa Rica, se emplearon yemas axilares de bejucos de zarzaparrilla en
diferentes medios, y se obtuvo una supervivencia entre 81 y 95 %, a los 120 días después de la
siembra. Las áreas de siembra pueden ser; bosques naturales, o un terreno reforestado,
siempre que exista abundante sombra y humedad adecuada.
14
e) Por hijos o retoños: Se ha observado que a partir del rizoma principal se producen retoños
que pueden separarse de la planta madre y llevarse al sitio definitivo de siembra.
6.8 Agricultura
Este cultivo puede considerarse como orgánico ya que se recomienda sembrarlas en bosques y
su manejo no requiere utilización de productos químicos. La siembra se recomienda en
bosques, latifoliadas junto a árboles que le servirán de sostén y tengan una arquitectura que
facilite que los tallos trepen y los zarcillos se enrollen en ramas delgadas. 5 La cosecha bajo
manejo puede llevarse a cabo a partir de siete años contados a partir del momento en que se
produjeron las plantas de almácigo. La cosecha consiste en extraer los rizomas del suelo. Una
forma que se plantea para no hacer una extracción destructiva es cosechar los rizomas
secundarios, dejando el rizoma principal para mantener la planta madre. Para su cultivo se
requiere suelo bien drenado, caliente a media sombra, abundante humedad y condiciones
boscosas para la enredadera. La propagación puede hacerse por semillas, estacas de madera o
divisiones del rizoma; El rizoma se colecta al final de las lluvias y se seca al sol.
Para el cultivo se requiere suelo bien drenado, caliente a media sombra, abundante humedad y
condiciones boscosas para la enredadera. La propagación puede hacerse por semillas, estacas o
divisiones del rizoma; el rizoma se colecta al final de la época de lluvias y se seca al sol para
su uso comercial. (López Salguero, 2004)
6.9 Fenología
La Organización Meteorológica Mundial (OMM) define la fenología, como el estudio de las
fases de la vida de las plantas y animales en relación con el tiempo y clima. De la fenología se
pueden obtener características importantes relativas a las relaciones de los fenómenos
periódicos de las plantas con el clima y, sobre todo, al microclima, observando la fecha del
comienzo de los diferentes fenómenos vegetativos y reproductivos; la migración de las aves, la
aparición de los primeros insectos, o la floración de árboles y arbustos a lo largo del año.
(Organización Meteorológica Mundial, en línea, www.pluviometro.com)
15
6.10 Ecología
S. domingensis crece en bosques o matorrales húmedos, en donde se le puede encontrar en
forma natural, en Guatemala sé ha encontrado nativa en bosques húmedos hasta 1300 msnm
(S. lundellii), en bosques y malezas hasta 1500 msnm (S. regelli), y en bosques húmedos o
secos hasta 2,800 msnm (S. spinosa). (Caceres, A. 1996)
6.10.1 Suelos
Ocampo (1982), menciona que en Costa Rica se han encontrado en su hábitat natural en suelos
arcillosos, con materia orgánica, bien drenados y con un pH entre 5 y 5.3.
6.10.2 Temperatura
La información de este parámetro es escasa, sin embargo, se encontró información de Ocampo
(1982), cita a Duke, quien menciona una temperatura promedio anual de 18 a 23°C. De
acuerdo con el Instituto Meteorológico Nacional de Costa Rica, en sus mapas de temperatura,
la región en donde crece la zarzaparrilla, presenta los promedios siguientes; mínima: 15°C.,
máxima: 30°C y promedio anual: 20°C.
6.10.3 Precipitación
Ocampo (1982), cita a Duke, quien menciona una precipitación promedio anual de 1700 mm,
aunque las regiones de crecimiento natural en Costa Rica muestran precipitaciones que oscilan
alrededor de 3,865 mm por año.
6.11 Nombres comunes en Guatemala
Las especies del género Smilax son conocidas con una diversidad de nombres, cambiando de
acuerdo al lugar donde se encuentren, en el cuadro 1 se pueden observar los diferentes
nombres.
16
CUADRO 1. Nombres comunes de la Smilax en diferentes lugares de Guatemala.
NOMBRE COMUN LUGAR
Zarzaparrilla, Bejuco de la vida Cerro Gordo, Sta. Rosa de Lima
Zarzaparrilla El Palmar, Sta. Rosa
Curlo San José Pinula, Guatemala
Zarzaparrilla Mataquescuintla, Jalapa
Corona de Cristo Alotenango, Sacatepéquez
Zarzaparrilla Acatenango, Sacatepéquez
Diente de Chucho, Uña de Gato Campur, Alta Verapaz
Palo de la Vida Patulul, Suchitepéquez,
Uña de Gato San Francisco Zapotitlán, Such.
Zarzaparrilla, Bejuco de la vida San Martín Chiquito, Quetzaltenango
Zarzaparrilla La Reforma, San Marcos
Zarzaparrilla Chuituj, Santa Catarina Ixtahuatán, Sololá
Sinaca Erivón, Río Dulce, Izabal
Coculmeca Roja San Miguel La Palotada, Petén
Cocolmeca Roja Uaxactún, Petén
Diente de Chucho San Marcos
Fuente: Informe de actividades 92-93, Proyecto Desarrollo Agrotecnológico de Cinco
Especies Medicinales, Silvestres, con potencial de Exportación. (Herrera, M. 1994)
6.12 Usos Medicinales atribuidos
A las zarzaparrillas Smilax sp. Se les ha atribuido propiedades curativas, al preparar un
cocimiento del rizoma en tratamiento vía oral:
Propiedades tónicas y estimulantes:
Tratamientos de Anemia.
Enfermedades de la sangre (purificación de la sangre).
Propiedades gástricas.
Tratamientos de diarrea.
Dolor de estomago
Inapetencia.
Propiedades antiinflamatorias y desinflamantes
Tratamientos de hinchazón.
17
Reumatismo.
Propiedades depurativas.
Propiedades sudoríficas.
Propiedades diuréticas.
Propiedades antipruriticas.
Para el tratamiento de las enfermedades: Malaria, dolor de riñones, enfermedades
venéreas, hepatitis y tumores.
(Cáceres, 1996), (Girón, L. 1998)
La decocción se aplica tópicamente para tratar diversas afecciones dermatomucosas, tales
como;
Alergia.
Eczema.
Liquen plano.
Tinea.
Psoriasis
(Cáceres, 1996), (Girón, L. 1998)
6.13 Especies de Smilax en el área de Petén
La Smilax es conocida en Petén bajo el nombre de cocolmeca roja, una planta nativa. En el
año 2002 se realizó un estudio por parte de la Facultad de Agronomía de la USAC. Las
especies de Smilax encontradas en la reserva de San José fueron cinco: Smilax mollis, S.
spinosa, S. jalapensis, S. regelli y S. dominguensis. (Martinez Arévalo, J.V. 2002)
6.13.1 Vegetación acompañante donde crece la Smilax en Petén
En la reserva de Bio Itzá, San José, Petén, se realizaron tres visitas para recopilar información
como parte del proyecto de investigación 18-00. En general la vegetación corresponde a áreas
con diferentes estadios sucesionales, con aproximadamente 15 a 20 años de desarrollo.
18
Por las condiciones climáticas del área se tienen arboles de rápido crecimiento aunque su
diámetro no sobrepasa los 10cm. Además se realizó un reconocimiento en el Cerro Cahuí.
(Martinez Arévalo, J.V. 2002)
CUADRO 2. Plantas acompañantes donde crece la Smilax, en San José, Petén.
Familia Nombre cientifico
Apocynaceae Mandevilla subsagittata
Mimosaceae Cassia cookii
Mimosaceae Cassia bacillaris
Sapotaceae Crisophyllum mexicanum
Moraceae Trophis racemosa
Passifloraceae Passiflora ruvirosae
Flacourtiaceae Laetia thamnia
Flacourtiaceae Zuelania guidonia
Verbenaceae Rehdera penninervia
Simaroubaceae Simarouba glauca
Sapindaceae Allophylus sp.
Mimosaceae Calliandra sp.
Cecropiaceae Cecropia peltata
Burseraceae Bursera simaruba
Ulmaceae Trema micrantha
Verbenaceae Vitex gaumeri
Fuente: Martínez Arévalo, J.V. 2002
Levantamiento florístico durante el proyecto 18-00
6.14 Ventajas de la reproducción vegetativa
La reproducción vegetativa es una técnica que ha adquirido gran importancia en la
multiplicación y conservación de especies en peligro de extinción o amenazadas,
principalmente de especies arbóreas tropicales.
19
Valorar genéticamente material vegetal, incluyendo estudios de interacción genotipo
ambiente, manifestaciones juveniles y maduras de una misma característica, etc.
Preservar genotipos y complejos genéticos en bancos clónales y arboretos.
Acortar ciclos reproductivos para acelerar procesos de cruzamiento y prueba.
Conservar genotipos superiores que determinan características genéticas favorables
(resistencia a plagas y/o enfermedades, crecimiento, producción, calidad de frutos,
tolerancia a condiciones extremas de humedad o sequía, etc). Estas características se
pueden “perder” por el cruzamiento genético en la propagación sexual.
Ser más eficiente cuando la reproducción sexual no es el método más viable o eficaz.
Propagar especies que sus semillas presentan problemas de germinación o de
almacenamiento o que son de ciclo reproductivo largo.
Aprovechar las características genéticas favorables de dos plantas en una sola planta.
Manejar las diferentes fases del desarrollo de las plantas.
Obtener plantaciones uniformes o la producción de un determinado número de
individuos con identidad genética.
(Rojas, García, Alarcón, 2004)
6.15 Desventajas de la reproducción vegetativa
Una limitante de la propagación vegetativa a tener en cuenta es la dispersión de
enfermedades, especialmente bacteriales y virales. Una vez una planta se infecta con un virus
a menudo a través de los insectos chupadores como los áfidos o mediante el uso de
herramientas, puede transmitirse rápidamente dentro del sistema de la planta.
De tal manera que si se obtiene un esqueje (estaca, yema, etc.) éste también llevará consigo la
enfermedad.
La estrechez genética de las poblaciones propagadas vegetativamente suele convertirse en un
problema, pues este tipo de reproducción no permite la recombinación genética que favorece
la evolución y adaptación de las especies. En caso de implementarse masivamente este
método, debe ser una norma, la búsqueda constante de clones elite con características
20
deseables pero provenientes de diferentes ambientes, que permitan llevar a su vez la
variabilidad genética de sus sitios de origen. (Rojas, García, Alarcón, 2004)
6.16 Reguladores de crecimiento vegetal
El término de Regulador de Crecimiento Vegetal (RCV), puede emplearse para cualquier
sustancia que, en muy pequeñas concentraciones, provoca un efecto fisiológico en las
plantas, ya sea inhibición o estímulo de alguna función. (Weaver, 1972; y Salisbury y Ross,
1992 Citado por García - Martínez, I. 1997)
En la actualidad son generalmente reconocidos cinco grupos de reguladores del crecimiento
vegetal:
Auxinas
Gibelarinas
Citoquininas
Ácido Abscísico
Etileno
Para el presente trabajo ampliaremos sobre las auxinas donde se encuentra Acido Indolbutírico
que usaremos para el ensayo.
6.16.1 Auxinas
Las auxinas fueron las primeras hormonas del crecimiento vegetal que se descubrieron. Sin
embargo, el conocimiento de las auxinas es parcial, y las aplicaciones prácticas de las mismas
continúan siendo una cuestión totalmente empírica. Este es un grupo de compuestos que se
caracterizan por su capacidad para inducir la elongación de las células de brotes y la
diferenciación celular en las plantas. (García - Martínez, I. 1997)
21
Una de las auxinas más conocidas es el Ácido Indolbutírico (AIB), como estimuladora del
crecimiento.
6.17 Domesticación de plantas medicinales
De acuerdo con León (1992) citado por Ocampo (1994), existen dos factores principales para
determinar el proceso de domesticación de plantas:
a. La habilidad del hombre para escoger, manejar y conservar las especies útiles, la cual
depende de la capacidad innata y el grado de cultura.
b. La riqueza de especies en un área determinada que ofrezca un material amplio y
variado donde el hombre pueda escoger los elementos que necesita.
La diferencia clave entre la domesticación de las plantas en forma genérica y plantas
medicinales en específico es simple: las actividades de mejoramiento que conllevan hacia la
domesticación deben considerar el mantener o promover la presencia de metabolitos
secundarios básicos en la actividad biológica de la especie. (MUÑOZ. L.B. 1987)
La cocolmeca roja, liana propia del bosque tropical húmedo, de amplio uso por los grupos
nativos de américa como depurativo de la sangre, ha sido un importante recurso vegetal para la
economía durante miles de años. A pesar de su antigüedad, no existe hoy en día tecnología
apropiada para su manejo en condiciones naturales. (OCAMPO, R.A. 1994)
22
7. MARCO REFERENCIAL
7.1 Ubicación geográfica
La caracterización, se llevó a cabo en la finca #5007, ubicada en el barrio Villa Concepción,
Santa Elena, en el municipio de Flores, del departamento de Petén. En la cabecera municipal,
sus coordenadas son; Longitud Este 90°28’05” y Latitud Norte 89° 20’ y 89°42’. Y al Oeste
en el paralelo 17°49’. (Instituto Geográfico de Guatemala 2009).
7.2 Zona de Vida
Según Lesslie Holdridge 1967. El municipio de Flores, se localiza en la zona de vida Bosque
Subtropical Cálido, la cual se caracteriza por poseer biotemperatura promedio de 22°C,
precipitación pluvial de 1,500 a 2,000 milímetros anuales. Con una vegetación indicadora
formada por: Guarumo Cecropia peltata, Ramon Blanco Brosimun alicastrum, Santa Maria
Calophyllum brasielense, Chacaj Bursera simaruba, Danto Vatairea lundellii.
7.3 Factores Climáticos
7.3.1 Clima
El clima típico en esta zona de estudio es cálido para los meses de marzo, abril y mayo. El
resto de los meses del año son impredecibles pero regularmente tienen días con más lluvias.
(INSIVUMEH, Estación Flores, 2012)
23
Figura No. 5. Ubicación geográfica del área experimental, Santa Elena, Flores, Petén
24
7.3.2 Temperatura
La temperatura media anual registrada para el año 2011 fue de 27°C. Registrando una máxima
de 32.2°C y una mínima de 22.5°C. se considera la hipótesis de que la deforestación
desmedida provoca cambios en las mediciones de la temperatura cada año.
7.3.3 Precipitación Pluvial
La precipitación para el municipio de Flores va desde 1,600 a 2,531 milímetros anuales. Las
lluvias han variado en los últimos años por los diversos factores ambientales que inciden
directa e indirectamente en la zona. (INSIVUMEH, Estación Flores, 2012)
7.3.4 Vientos
Los vientos predominantes son los orientales que soplan de marzo a septiembre. En octubre
persisten los del noroeste, conocidos como vientos del norte. (INSIVUMEH, Estación Flores,
2012)
7.3.5 Humedad Relativa
La humedad relativa mínima es de 40.58% y una máxima 98.8% lo cual identifica a este
municipio por poseer un clima regularmente cálido para sus pobladores. (INSIVUMEH,
Estación Flores, 2012)
7.3.6 Presión Atmosférica
Se registra una presión atmosférica como máxima de 754.6 milibares y una mínima de 746.5
milibares. (INSIVUMEH, Estación Flores, 2012)
25
7.4 Geología y Fisiografía
El territorio es plano, con ligeras ondulaciones de poca elevación. Todo el departamento está
incluido en la división fisiográfica denominada Tierras Bajas del Petén-Caribe (Simons,
Taranto, Pinto.1959)
7.4.1 Suelos
El Municipio de Flores tiene una extensión de 4,336 Km 2 de los cuales 87% no es apto para
uso agrícola porque presentan severas limitaciones por su poca profundidad, drenaje deficiente
y pedregosidad, solamente 13% tiene condiciones de profundidad y drenajes adecuados, para
agricultura; no utilizados por estar localizados en planicies y depresiones aluviales. El plan de
ordenamiento territorial del Municipio clasifica la geomorfología de la región de la siguiente
manera: Polje, Loma residual, Campo de úvalas, Campo de mesetas cársticas, Campo de
mogotes, Mesa, Mesa disectada, Acantilado, Fluvio-karst. (UTJ/PROTIERRA Catastro
Nacional de Guatemala. 1999)
7.4.2 Topografía y Relieve
Todo el terreno de la finca posee una topografía homogénea sin pendientes. El ensayo fue
establecido sobre un área totalmente plana.
7.5 Principales trabajos de campo desarrollados a Smilax
Entre 1991 y 1993 la Facultad de Agronomía llevó a cabo un estudio de exploración y
recolección del género Smilax en casi todo el país, se obtuvieron 17 colectas de diferentes
especies, sin embargo, no se llegó a la determinación taxonómica de ellas. Además se hicieron
trabajos sobre propagación sexual y asexual, con resultados variables en cuanto a porcentaje
de germinación y brotación respectivamente. También se han realizado trabajos de cultivo in
vitro de diferentes porciones de la planta. Estos indican que es posible la reproducción a través
26
de brotes y embriones, aunque todavía no se han realizado una evaluación económica del
costo de las plántulas producidas por este medio. (Martinez Arévalo, J.V. 2002)
Entre 1997 a 1999 se llevaron a cabo trabajos con apoyo del programa TAMIL- CA. Estos
consistieron en la caracterización morfológica y fenológica y manejo de una plantación. El
Centro Agronómico de Investigación y Enseñanza (CATIE) ejecuto el proyecto “Desarrollo
del manejo sostenible Smilax spp. (Planta medicinal) en ecosistemas naturales y agroforestales
en América Central; desde la producción hasta la comercialización” con el cual se ha
avanzado en el conocimiento científico de estas especies principalmente en Costa Rica y
Nicaragua y en menor grado en Guatemala. (Martinez Arévalo, J.V. 2002)
7.5.1 Caracterización in situ y Manejo de poblaciones de Zarzaparrilla (Smilax)
Este estudio es uno de los más completos realizados en Guatemala, promovido por la
Secretaria de Ciencia y Tecnología, del Instituto de Investigaciones Agronómicas de la
Facultad de Agronomía de la Universidad de San Carlos de Guatemala. Efectuado por un
equipo de profesionales dirigidos por el Ingeniero Agrónomo MC Jose Vicente Martinez
Arévalo, durante septiembre 2001 a agosto 2002, en cuatro diferentes localidades del país:
San Lucas Toliman, Sololá,
San José, Chamelco y Chamtacá, Carchá, Alta Verapaz
San Miguel, Panán, Suchitepéquez
San José, Petén
Conclusiones obtenidas de la investigación en las cuatro localidades:
La vegetación en la cual se desarrollan las plantas de zarzaparrilla corresponde a
bosques perturbados en diferentes estados sucesionales, no se logró detectar una
27
asociación específica con determinada especie que utilicen las plantas como tutor, sino
más bien parece corresponder con la disponibilidad que exista.
Los suelos en que se desarrollan por ser en condiciones de bosque, tienen un pH
ligeramente ácido y una baja disponibilidad de fósforo, pero con un alto contenido de
materia orgánica poco mineralizada. En este campo vale la pena hacer estudios más
completos para determinar las necesidades de nutrimientos que tienen estas plantas,
que pueden servir para desarrollar un plan de manejo con miras a una mayor
producción de materia seca de rizoma o raíz.
En términos generales se pudo establecer que los estadios de floración se presentan en
los meses de abril y mayo y otro en junio a agosto y la fructificación en los meses de
julio a agosto y de octubre a enero.
Los resultados de manejo de zarzaparrilla como cultivo, indican que los primeros
estadios de desarrollo de las plantas son los críticos para que se desarrolle
adecuadamente, ya que bajo condiciones naturales se observa que durante mucho
tiempo, año con año el tallo principal se muere lo que retrasa su normal desarrollo. De
tal forma que es aquí donde debe darse los cuidados, especialmente en limpias y
tutoreo para que el tallo principal pueda treparse fácilmente a los árboles. Estos
resultados también denotan que es factible la incorporación de la zarzaparrilla a
sistemas agroforestales, con una mínima competencia, proporcionando un mayor
número de especies aprovechables.
El perfil cromatográfico efectuado a todas las muestras de rizoma o raíz de las
localidades estudiadas e incluyendo otras más, demuestra la presencia de saponinas,
flavonoides y esteroides en todas las muestras y con diferentes grados de variación lo
que podría suponer un amplio espectro de actividad biológica. Sin Embargo, deben
realizarse trabajos de actividad biológica más específicos especialmente como
antimicrobiano y antiinflamatorio, considerando en estos la edad de la planta utilizada.
28
Los resultados químicos obtenidos coinciden con los reportados en estudios de tipo con
varias especies de zarzaparrilla.
La caracterización morfológica se determinó que hay una alta variación dentro de una
misma planta y por lo tanto dentro de una misma especie. Las características que
tienen una mayor variación son las relacionadas con la hoja. No se logró hacer una
clara caracterización de flores y frutos ya que estos estadios fenológicos necesitan de
más de un año para su estudio por que los resultados obtenidos deben tomarse como
preliminares. Con relación a la parte subterránea se logro corroborar que S.kunthli
produce un rizoma de color rojo seco, S. regelii y S. spinosa producen únicamente
raíces; en el caso de S. spinosa se encontró que su rendimiento es bastante bajo por lo
que de evaluarse si vale la pena continuar con estudios para darle manejo para
producción de materia seca, tomando en consideración que con S. kunthli se puede
obtener mayor rendimiento y que representan una mejor sostenibilidad. El rizoma S.
subpubescens es de color rosa y es la primera vez que se estudia la parte subterránea de
esta especie.
6.5.2 Caracterización Morfológica y Fenológica de una plantación de Zarzaparrilla (Smilax
Dominguensis Willd.) en el Municipio de Samayc, Suchitepéquez.
La caracterización se realizó en una siembra de Smilax domingensis Willd, establecida en
1992 en la Eco parcela el Cacaotal, ubicada en el cantón Chiguaxté, Samayac, Suchitepéquez,
para lo cual se contó con el apoyo económico de TRAMIL-CA. Los principales resultados
indican que las características más influyentes en la variabilidad morfológica y fenológica son:
número de hojas / rama, longitud de zarcillos, número de entrenudos / tallo, longitud del tallo,
diámetro de tallo, número de ramas terminales, promedio de frutos / inflorescencia, número de
inflorescencias / rama, inicio y fin del proceso de formación floral de acuerdo al sexo de la
planta; el tiempo estimado de desarrollo de la flor desde el primario floral hasta la liberación
de polen es de 4 semanas. (López Salguero, A.O. 2004)
29
Principales Conclusiones obtenidas: (López Salguero, A.O. 2004)
Las características morfológicas y fenológicas que en mayor proporción determinaron
la similitud de los individuos evaluados son:
a. Características constantes: hojas con cinco nervaduras, ápice brevicuspidado y hojas
lanceolado-oblongas.
b. Características con coeficiente de variación menor a 15: longitud del pecíolo, ancho
de hojas, longitud de hojas, peso de semillas, número de semillas en 100 g, número de
frutos en 100 g, longitud de la flor femenina, peso de 100 frutos, promedio de semillas
por fruto, longitud de las semillas, diámetro de las semillas, diámetro del fruto.
Las características morfológicas y fenológicas que en mayor proporción determinaron
la variabilidad de los individuos evaluados son; número de hojas por rama, longitud de
zarcillos, número de entrenudos por tallo, longitud del tallo, diámetro del tallo, número
de ramas terminales, longitud de entrenudos, promedio de frutos por inflorescencia,
número de inflorescencias por rama, longitud del fruto, inicio y fin de la floración
masculina y femenina.
30
8. METODOLOGÍA
8.1 Procedencia del Material Experimental
Las muestras de rizomas que se utilizaran como material experimental, serán extraídas de
región de la Biosfera Maya: aldea Uaxactún, Flores, Petén. Sus coordenadas son: 17°23’37”
N y 89°38’1” E. El Área del unidad de manejo de Uaxactún asciende a la cantidad de 83,558
hectáreas, según informe de CONAP y CATIE/CONAP (1996), el área fue otorgada en
concesión a la Sociedad Civil “Organización, Manejo y Conservación” –OMYC- por un
periodo de 25 años desde 1999. (OMYC, 1999)
8.1.1 Vías de acceso
Anteriormente la única vía de acceso formal durante 40 años fue la pista de aterrizaje,
construida en 1926 para el transporte de chicle, actualmente el acceso al área es por medio de
una carretera asfaltada que de la cabecera municipal de Flores conduce al Parque Nacional
Tikal 63 Km. y 23 km de terracería de Tikal a Uaxactún. Otra via de acceso a la comunidad
es a través de un trocopas o camino transitable solamente en verano, via San Andres, por la
comunidad El cruce Dos Aguadas, atravesando el biotopo de San Miguel la Palotada (El
Zotz).
8.1.2 Características Físicas y Climáticas
Thornwhaite citado por Bámaca (1999), indica que el clima de Uaxactún es de tipo cálido, con
invierno benigno semiseco a húmedo y sin estación seca bien definida. Alrededor de la aldea,
específicamente al Norte, solamente circula una corriente de agua efímera, llamada Paxamán o
Arroyón, existiendo también cuatro aguadas. El río más importante al norte de la zona es Río
Azul, que nace en las planicies inundables al noreste del área.
31
Según datos climatológicos de la estación ubicada en Tikal, a una altura de 200 msnm, latitud
17o 13´ 40” y longitud 89º 09´ 15” la temperatura media máxima es de 35ºC y la media
mínima de 20ºC. La temperatura media es de 25ºC. La humedad relativa media es de 77% y la
evapotranspiración media es de 79.8 mm. La precipitación media anual varía entre 1500 a
3000 mm, con una estación seca con lluvias ocasionales en los meses de enero hasta junio, y
una época lluviosa estacional el resto del año. (OMYC, 1999)
8.1.3 Geología y Suelos
Según Simmons et. (1959) los suelos del área de estudio corresponden a la serie de suelos
Uaxactún y Yaxhá, los cuales se caracterizan por ser poco profundos, bien drenados y aptos
para el uso forestal. El área ocupa mayormente planicies externas sobre formaciones calizas.
Los suelos de la serie Uaxactún, presentan serias limitaciones para la agricultura, debido a los
efectos de plasticidad y compactación, acompañada de poca profundidad y alta pedregosidad.
8.1.4 Uso del Suelo
Un 97.82% del área total tiene uso forestal, predominando el bosque medio. Existen áreas con
vegetación escasa, y áreas de bajos. El área agrícola y de guamiles son aproximadamente 1600
has, y actualmente no presenta ninguna amenaza critica por expansión, debido a que la
mayoría de la población cosecha productos no maderables. Entre los principales cultivos se
encuentra el maíz, frijol y pepitoria.
8.1.5 Fisiografía y topografía
La UM Uaxactún se encuentra dentro de la provincia fisiografía, Plataforma de Yucatán,
conteniendo características cársticas con drenaje superficial. Una columna de serranía cárstica
se extiende desde el suroeste, hasta casi todo el norte del área, aunque en la porción noroeste
el relieve es ligeramente ondulado, con depresiones periódicamente inundables.
32
La porción este del área está formada por una planicie aluvial con relieve plano a ligeramente
ondulado y con depresiones inundables. El Parque Nacional Río Azul en tiempo de invierno
inunda la zona de la parte noreste. Aproximadamente un 19% del área presenta un relieve
plano a ligeramente ondulado, un 36% con relieve desde ondulado a escarpado y un 45%, de
plano a ondulado. Las altitudes van desde 150 a 400 msnm (OMYC, 1999).
Figura No. 6. Ubicación de la Unidad de Manejo Uaxactún en la Reserva de la Biosfera Maya.
33
8.2 Identificación de la Especie
Para determinar la especie de cocolmeca y poder garantizar el material genético es de Smilax
dominguensis; recabamos la información necesaria con descriptores morfológicos y
fenológicos establecidos en boletas de toma de datos y lecturas al extraer el rizoma; se
establecieron 3 claves dicotómicas con las variables de respuesta para realizar una
caracterización morfológica e identificar la especie, los descriptores fueron seleccionados con
base en las características generales a nivel de campo y revisión de las descripciones del
género y especies en Flora de Guatemala y Flora Mesoamericana, y otros estudios recientes en
Centroamérica acerca de la especie. Y son los siguientes: 1. Tallo (bejuco): Terrestres
cilíndricos, escasamente armados en la parte inferior, con aguijones robustos recurvados
inermes en la parte posterior. El color del tallo varía según el ambiente donde crezca la planta.
En S. domingensis puede ser rojo a morado en la parte inferior; en la mayoría de las especies
es verde. 2: Hojas: hojas con cinco nervaduras, ápice brevicuspiado, lanceoladas-oblongas. 3.
Rizoma: Por su forma robusto y entre nudos; color rojo. (Standley, P Steyermak, J. 1952)
(Ocampo, R.A. 1994) (Cáceres, 1996)
8.3 Diseño Experimental para la Reproducción Vegetativa
8.3.1 Descripción de los Tratamientos
Los rizomas fueron cortados transversalmente en trozos aproximadamente iguales de 3 x 5 cm
con yemas prominentes en sus tejidos jóvenes.
Previamente a la siembra se limpiaron las muestras por inmersión en agua durante varios
minutos, luego procedimos a la aplicación de cada tratamiento según la distribución de los
tratamientos y se efectuó la siembra en el sustrato preparado para el ensayo.
Los tratamientos que se plantearon para la reproducción vegetativa se describen a
continuación en el cuadro siguiente.
34
Cuadro No.3 Descripción de los tratamientos de reproducción vegetativa
No. De Tratamiento Tratamiento Forma de Aplicación
T-1 AIB (1000 ppm) Liquida
T-2 AIB (1500 ppm) Liquida
T-3 AIB (3000 ppm) Liquida
T-4 Testigo (Agua) Liquida
Evaluamos tres concentraciones de AIB, además del testigo (sin hormonas) sobre el
enraizamiento en las unidades experimentales. Las concentraciones (1000, 1500 y 3,000) se
aplicaron en forma líquida, a partir de las soluciones preparadas con AIB puro. Sumergidas
durante 5 minutos en cada concentración.
8.3.2 Unidad Experimental
Las pruebas se realizaron estableciendo camellones de siembra, bajo sombra (50% de sombra
de sarán). El sustrato donde plantamos las muestras era de arena (60%) y materia orgánica,
mezclada con tierra negra (40%).
En el experimento se efectuaron 4 tratamientos y 3 repeticiones, con un total de 12 unidades
experimentales las cuales contenían 15 secciones de rizomas cada una, para un total de 180
muestras de rizomas. A continuación se ejemplifica la ubicación y distribución de los
tratamientos en el experimento completamente al azar, en un área de 5 x 4 metros.
Figura No. 7 Área de las unidades experimentales y distribución de tratamientos.
35
T1 - AIB (1000 ppm) T2 - AIB (1500 ppm) T3 - AIB (3000 ppm) T4 – Testigo
5m
T3R2
T1R3
T2R1
TESTIGO
T2R3
TESTIGO
T3R3
T1R2
T1R1
T2R2
TESTIGO
T3R1
Figura No.8 Croquis de las unidades experimentales en el campo.
4m
m
5m
m
25cm
mmm
Muestra de 1 tratamiento, 15 individuos.
36
8.3.4 Variable Respuesta
a) Porcentaje de brotación: Número de secciones de rizomas de Cocolmeca roja brotados; se
multiplicará por 100, luego se dividirá entre 180 para obtener el resultado en porcentaje.
b) Porcentaje de enraizamiento: Número de secciones de rizomas o raíz de cocolmeca con
enraizamiento; se multiplicará por 100, luego se dividirá entre 180 para obtener el porcentaje.
c) Tiempo de brotación: Los dias que tomaron los primeros rizomas en tener brotación
estimando un periodo de evaluación de 60, 90 y 150 días.
d) Tiempo de enraizamiento: Los dias que llevaron los rizomas en mostrar raíces prominentes
en el periodo de evaluación estimado de 60, 90 y 150 dias.
8.4 Manejo del Experimento
a) Obtención de los rizomas de Smilax dominguensis
Localizamos las plantas de cocolmeca roja, debidamente identificadas y se extrajeron 5
rizomas en un rango de 20 a 25 cm de longitud x 10 cm de ancho, dejando viva la planta; en
la unidad de manejo forestal de Uaxactún. Tres días después se realizaron cortes
transversalmente para obtener trozos pequeños aproximadamente iguales de 3 x 4 s de 3 cm
con yemas prominentes.
b) Desinfección de las muestras experimentales
Se lavaron las muestras con agua; se dejó secar a la sombra por 20 minutos colocando los
trozos sobre papel absorbente; cuando el papel se humedecía fue sustituido por uno nuevo y
seco. Al estar secas aplicamos parafina para evitar pudrición y daño de patógenos.
37
c) Tratamiento del rizoma de Smilax dominguensis con ácido indolbutírico
Se formularon 3 dosificaciones de ácido Indolbutírico a 1000, 1500 y 3000 partes por millón
para sumergir las secciones de Cocolmeca roja por 10 min. en la solución a temperatura
ambiente (+- 20 °C). aplicando las 3 repeticiones por cada concentración de AIB en cada una
de las muestras de rizomas.
d) Desinfección y preparación del sustrato.
La arena de río se introdujo en un recipiente plástico y se le aplicó agua caliente a fin de
eliminar cualquier patógeno. Luego el mismo procedimiento para 40 % de materia orgánica y
de tierra del lugar.
Las dos mezclas se dispusieron sobre bolsas plásticas y se revolvieron, luego se le regó con
Benomil (fungicida foliar) a razón de 4 gramos por litro, humedeciendo por completo todo el
sustrato. Posteriormente se dispuso cada una de las dos mezclas en las unidades
experimentales según tratamiento asignado.
e) Siembra
Se procedió a la plantación de las secciones de rizomas con los respectivos tratamientos en los
unidades experimentales con 15 muestras cada una, completamente al azar a distancias de 10 x
10 cm entre cada trozo de rizoma.
8.4.1 Manejo de las Unidades Experimentales
Se efectuaran riegos cada dos días y se tomaron datos diariamente a lo largo de un periodo de
90 días, y se estima un periodo máximo de 150 días para recolectar toda la información.
38
8.5 Diseño Experimental
Por el tipo de experimento que estuvo sujeto a condiciones climáticas homogéneas y sin existir
una gradiente de variabilidad que pudiera alterar el efecto de los tratamientos, se utilizó un
diseño completamente al azar, (DCA) con 4 tratamientos y 3 repeticiones.
8.6 Modelo Estadístico
El modelo estadístico es el siguiente que valida la distribución planteada de las unidades
experimentales.
Yij = µ + τi + eij
Dónde:
Yij = Efecto de la variable respuesta asociada a la ij-ésima unidad experimental.
µ = Efecto de la media general de la población.
τi = Efecto de la i-ésimo del enraizador (AIB) sobre las unidades experimentales.
eij = Efecto del error asociado a la ij-ésima unidad experimental.
8.7 Análisis de la información
Se realizó la prueba de Normalidad y el test de Shapiro-Wilk para establecer la naturaleza
paramétrica o no paramétrica de los datos. Estos cálculos se realizaran con el software de
estadística Minitab.
Para la medición de brotación y enraizamiento, se elaboró un calendario de registro con medición
periódica de 2 y 3 meses indicando las características más sobresalientes a través del tiempo.
Para el porcentaje de brotación y enraizamiento serán sometidos al análisis de varianza para una
distribución completamente al azar, luego se realizara la prueba múltiple de medias de Tukey con
el fin de establecer en que promedios existen diferencias significativas, en el caso que haya
significancia entre los tratamientos.
39
9. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
A continuación se presenta en detalle la información recolectada en cada tratamiento aplicado
en el ensayo de reproducción vegetativa por medio de rizomas de cocolmeca (Similax
domingensis), con el respectivo análisis y discusión de los resultados de las variables
evaluadas: porcentajes de brotación, porcentaje de enraizamiento y el tiempo de brotación y
enraizamiento con rizomas de cocolmeca roja.
9.1 Porcentaje de brotación
En el siguiente cuadro se presenta el porcentaje de brotacion de los rizomas de cocolmeca roja
de acuerdo a cada tratamiento aplicado.
Al no existir antecedentes de estudios similares; que nos permita comparar si los resultados
obtenidos son aceptables, considero que la media de brotación en el presente ensayo es
demostrativa y que proporciona datos valiosos en brotación de rizomas de cocolmeca roja en
un tiempo menor, al proceso natural de regeneración que dura de 9 a 12 meses, observando
algunas otras variables que pueden ser significativas y consideradas en el futuro para obtener
mejores resultados, las cuales mencionamos en las recomendaciones. El tratamiento 1 tiene
una media del porcentaje de brotacion de 40% y el tratamiento 2 obtuvo un 17.78% del
porcentaje de brotación en las diversas repeticiones.
Cuadro No.4 Porcentajes de brotación con rizomas de cocolmeca roja por tratamiento.
Tratamientos Repeticiones Media
R1 R2 R3
T1 40.00 53.33 26.67 40.00
T2 26.67 20.00 6.67 17.78
T3 0.00 0.00 0.00 0.00
TESTIGO 0.00 0.00 0.00 0.00
40
Figura No.9 Grafica de porcentajes de brotación por tratamiento y repeticiones.
Se realizó una prueba de normalidad con el test de Shapiro-Wilk con las variables de brotación
de la cocolmeca roja utilizando el programa Minitab, reflejando una distribución normal de los
datos.
9.1.1 Análisis Estadístico
Efectuamos un análisis de varianza para el porcentaje de brotación a un nivel de confianza del
95%. Se observó que existen diferencias significativas entre los tratamientos; disminuyendo la
efectividad en las muestras con mayor dosis de hormonas de crecimiento y el testigo.
Cuadro No.5 Análisis de varianza en la brotacion de cocolmeca roja.
FV GL SC MC F P
Tratamiento 4 772.8 257.6 7.56 0.010
Error 8 272.6 34.1
Total 11 1045.4
41
Se realizó también la prueba de Tukey para ver la comparación de los tratamientos y los
niveles que resultaron significativos. Se muestra en el cuadro No.10, los tratamientos que no
comparten una letra son altamente significativos, lo cual rechaza la hipótesis planteada.
Cuadro No.6 Prueba de Tukey al 5% para el porcentaje de brotacion (tratamientos)
Tratamientos Descripción Dif. Tukey
T1 AIB (1000 ppm) A
T2 AIB (1500 ppm) AB
T3 AIB (3000 ppm) B
TEST. Testigo (Agua) B
En la prueba de Tukey se obtuvieron los grupos de medias aritméticas, el T1 y el T2 son
estadísticamente iguales, así como el T2, T3 y Testigo. Con esta base se puede recomendar el
T1 o T2, de 1000 ppm y 1500 ppm, pero de preferencia el T1, ya que su media aritmética es
más alta y se necesita menos concentración de AIB.
Figura No. 10 Inmersión de los trozos de cocolmeca en las diferentes concentraciones de
AIB.
42
9.2 Porcentaje de enraizamiento
Se evaluaron tres tipos de tratamientos más un testigo, sobre el enraizamiento de trozos de
rizomas de Smilax dominguensis, realizando un conteo final en cada unidad experimental, del
número de rizomas que mostraron enraizamiento después de cinco meses de haberse efectuado
la siembra.
Cuadro No.7 Porcentajes de enraizamiento con trozos rizomas
Tratamientos Repeticiones Media
R1 R2 R3
T1 53.33 86.67 60.00 66.67
T2 53.33 40.00 33.33 42.22
T3 6.67 26.67 0.00 11.11
TESTIGO 20.00 6.67 0.00 8.89
Figura No.11 Porcentajes de enraizamiento con trozos de rizoma de Smilax dominguensis por
tratamiento.
43
La prueba de normalidad con el test de Shapiro-Wilk con las variables de enraizamiento
utilizando el programa Minitab, reflejó una distribución normal de los datos.
9.2.1 Análisis Estadístico
Según el análisis de varianza aplicado a los datos del porcentaje de enraizamiento, se pudo
concluir las diferencias significativas entre cada tratamiento y el efecto de la hormona de
crecimiento (AIB) en menor porción, que se utilizó.
Cuadro No.8 Análisis de varianza para el porcentaje de enraizamiento.
FV GL SC MC F P
Tratamiento 4 6707 2236 11.39 0.003
Error 8 1570 196
Total 11 8277
Al existir diferencias significativas entre los tratamientos se rechaza la hipótesis al 95% de
confianza por la variable del porcentaje de enraizamiento, también se procedió a realizar la
prueba de medias de Tukey reflejando los siguientes resultados.
Cuadro No.9 Prueba de Tukey al 5% para el porcentaje de enraizamiento (tratamientos)
Tratamientos Descripción Media Dif. Tukey
T1 AIB (1000 ppm) 66.67 A
T2 AIB (1500 ppm) 40.00 AB
T3 AIB (3000 ppm) 11.11 B
TEST. Testigo (Agua) 8.89 B
En la prueba de Tukey se obtuvieron los grupos de medias aritméticas, el T1 y el T2 son
estadísticamente iguales, así como el T2, T3 y Testigo. Con esta base se puede recomendar el
T1 o T2, de 1000 ppm y 1500 ppm, pero de preferencia el T1, ya que su media aritmética es
más alta y se necesita menos concentración de AIB.
44
9.3 Periodo de tiempo de brotación y enraizamiento de los rizomas
El periodo de brotacion y enraizamiento en rizomas de Smilax dominguensis, se estimó
evaluarlo en tres rangos de tiempo; realizando un conteo del número de rizomas que mostraron
brotacion y enraizamiento a los 60, 90 y 150 dias después de la siembra.
A continuación se presentan los datos de las lecturas en el cuadro No.10, y las gráficas que
muestran los resultados obtenidos en los periodos evaluados, la brotación empezó en el
periodo de los 90 dias de plantados los rizomas y el enraizamiento mostró resultados en un
periodo menor de 60 dias con mayor cantidad de muestras enraizadas, pero de estas solamente
el 50% llegaron a brotación al final del ensayo.
Cuadro No.10 Registro de rizomas con brotación y enraizamiento a los 60, 90 y 150 dias
después de la siembra.
Tratamientos Tiempo / Dias
60 90 150
brotación enraizamiento brotación enraizamiento brotación enraizamiento
T1 0 4 2 20 18 30
T2 0 1 0 7 8 19
T3 0 0 0 1 0 5
TESTIGO 0 0 0 1 0 4
TOTAL de muestras 0 5 2 29 26 58
El periodo de brotación a los 60 dias, no mostro resultados; a los 90 dias obtuvimos 2 muestras
con brotación y un total de 26 muestras a los 150 dias.
Los resultados en periodo de tiempo para enraizamiento fueron mejores a los 60 dias, 5
muestras, a los 90 dias 29 muestras y un total un total de 58 muestras al finalizar (150 dias) la
evaluación de brotación y enraizamiento con trozos de rizomas de cocolmeca roja.
45
0 muestras2 muestras
26 muestras
60 dias 90 dias 150 dias
Periodo de brotación
Brotación de rizomas
Figura No.12 Número de rizomas brotados a los 60, 90 y 150 dias.
La brotación de rizomas de cocolmeca roja mostro resultados a los 90 dias, en la sección del
tratamiento 1 y concluyo con 26 muestras con brotación a los 150 dias, periodo final del
ensayo.
Figura No. 13. Brotación de Cocolmeca roja, originada de un rizoma con la aplicación de AIB
(1500 ppm) su periodo corresponde a 150 dias.
46
Figura No.14 Número de rizomas con enraizamiento a los 60, 90 y 150 dias
El enraizamiento de los trozos de cocolmeca roja comenzó en el periodo de 60 dias en los
tratamientos #1 y #2. Concluyendo con una lectura de 58 muestras enraizadas al terminar el
estudio a los 150 dias.
Figura No. 15. Enraizamiento de Cocolmeca roja, utilizando trozos de rizoma con la
aplicación de AIB (1000 ppm) después de 150 dias de haberse sembrado.
47
9.3.1 Análisis Estadístico
a) Periodo de brotación a los 60 dias
En este periodo no hubo brotación en ninguno de los tratamientos, por lo tanto no se efectuó
análisis estadístico.
b) Periodo de brotación a los 90 dias
El resultado fue mínimo con 2 rizomas brotados del T1, sin tener las muestras necesarias para
efectuar un análisis estadístico.
c) Periodo de brotación a los 150 dias
Según el análisis de varianza aplicado a los datos del periodo de brotación, se pudo concluir
las diferencias significativas entre cada tratamiento y el efecto de la hormona de crecimiento
(AIB) con mejores resultados en menor concentración.
Cuadro No.11 Análisis de varianza del periodo de brotación a los 150 dias
FV GL SC MC F P
Factor 3 89.33 29.78 1.00 0.045
Error 8 237.33 29.67
Total 11 326.67
Al existir diferencias significativas entre los tratamientos se rechaza la hipótesis al 95% de
confianza por la variable del porcentaje de brotación, también se procedió a realizar la prueba
de medias de Tukey reflejando los siguientes resultados.
48
Cuadro No.12 Prueba de Tukey al 5% para el periodo de brotación
Tratamientos Descripción Media Dif. Tukey
T1 AIB (1000 ppm) 6.67 A
T2 AIB (1500 ppm) 2.67 A
T3 AIB (3000 ppm) 0.00 B
TEST. Testigo (Agua) 0.00 B
a) Periodo de enraizamiento a los 60 dias
A los 60 dias de plantados 5 rizomas enraizaron, los cuales 4 muestras fueron del T1 y 1
muestra del T2, no efectuamos análisis estadístico por tener un bajo número de rizomas
enraizados.
b) Periodo de enraizamiento a los 90 dias
Al finalizar este periodo de tiempo, 29 rizomas tenían enraizamiento distribuidos en todos los
tratamientos, manteniendo la constante de mejores resultados en el T1 y seguidamente el T2.
c) Periodo de enraizamiento a los 150 dias
Al concluir la evaluación a los 150 dias se realizó un coteo final de los rizomas con
enraizamientos, los mejores resultados fueron con la concentración más baja del T1 y el T2.
Cuadro No.13 Análisis de varianza por enraizamiento en 60, 90 y 150 dias.
FV GL SC MC F P
Factor 3 239.0 79.67 0.94 0.015
Error 8 678.7 84.83
Total 11 917.7
49
Al existir diferencias significativas entre los tratamientos se rechaza la hipótesis al 95% de
confianza por la variable del porcentaje de brotación, también se procedió a realizar la prueba
de medias de Tukey reflejando los siguientes resultados.
Cuadro No.14 Prueba de Tukey al 5% para el porcentaje de enraizamiento (tratamientos)
Tratamientos Descripción Media Dif. Tukey
T1 AIB (1000 ppm) 12 A
T2 AIB (1500 ppm) 9 A
T3 AIB (3000 ppm) 2 B
TEST. Testigo (Agua) 1.67 B
La prueba de medias de Tukey indica que las muestras del T1 que tuvo una concentración de
AIB a 1000 ppm, presento un mayor enraizamiento en los rizomas de cocolmeca roja a los 60,
90 y 150 dias después de la siembra por lo que se deduce que estadísticamente es el mejor
tratamiento.
50
10. CONCLUSIONES
1. En general los tratamientos 1 y 2 presentan resultados matemáticos similares, el
tratamiento 3 y el testigo son diferentes a los dos primeros, por los que la hipótesis se
rechaza al nivel de confianza del 95% para cada una de las variables.
2. El tratamiento 1 proporciono mejores resultados en brotación con una aplicación de
1000 ppm de ácido indolbutírico. Con un porcentaje del 40% de brotación en un
periodo de 150 dias.
3. El porcentaje de enraizamiento fue del 66.67% en el tratamiento 1, y también fue el
mejor resultado de los 3 tratamientos aplicados a los rizomas de Smilax dominguensis,
sin embargo, estadísticamente es igual al T2, con un porcentaje de enraizamiento del
42.22%.
4. El comportamiento de brotacion y enraizamiento en proporción con el tiempo presenta
una densidad promedio de 26 brotes y 58 enraizamientos en un periodo de 150 dias, de
las 180 muestras experimentales. La primera lectura a los 60 dias presento 5
enraizamientos y ningún rizoma con brotacion; la segunda lectura a los 90 dias
presento 29 enraizamientos y 2 brotaciones. La tercera y última lectura a los 150 dias
registró la sumatoria total con 58 enraizamientos y 26 brotaciones. La regeneración
natural es lenta en periodos de 10 a 12 meses.
5. Con la aplicación de las 3 dosificaciones de AIB y un tratamiento testigo, existieron
diferencias significativas y se descarta el tratamiento 3 que tenía una dosis de 3000
ppm, con 0% de brotación al igual que el tratamiento testigo que solamente se le aplico
agua.
51
11. RECOMENDACIONES
1. Aplicar concentraciones bajas de enraizadores en futuros estudios con un máximo de
1500 ppm. considerando las variables obtenidas en esta investigación.
2. Para la brotación y el enraizamiento de la cocolmeca roja (Smilax dominguesis) con
trozos de rizomas, se necesitan periodos mínimos de 150 dias para obtener resultados
satisfactorios en las condiciones que se desarrolló este ensayo de reproducción
vegetativa.
3. Considerar la profundidad de siembra en investigaciones posteriores como una variable
importante a evaluar; debido a que los mejores resultados obtenidos en este estudio
fueron rizomas con una profundidad superficial de 10 cm aproximadamente, en suelos
de textura franco arenoso, con una buena cantidad de material orgánico.
4. Se recomienda la utilización y comparación de otro tipo de enraizadores, sugiriendo el
Ácido Giberélico el cual ha dado buenos resultados en cultivos de tubérculos como la
papa, en otros lugares fuera de Guatemala.
5. Realizar otros estudios silvicuturales sobre la cocolmeca roja, debido a que es una
especie nativa con que necesita de la presencia de arbustos o árboles para
desarrollarse, considerando la constante deforestación y el lento proceso natural de
regeneración; corre un alto riesgo de desaparecer en el futuro.
6. Evaluar otras variables como el grosor, largo y diferentes procedencias del tubérculo,
para la obtención de mejores resultados e información que contribuya al manejo
sostenible de la cocolmeca roja.
52
12. BIBLIOGRAFÍA
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http://bibliotecadigital.ilce.edu.mx/sites/ciencia/volumen3/ciencia3/157/htm/sec_6.htm
UTJ/PROTIERRA CATASTRO NACIONAL DE GUATEMALA. Caracterización del
Municipio de Flores, Petén. Año 1999. 34 páginas.
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13. ANEXOS
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Cuadro No.15A Boleta de resultados obtenidos para las variables de brotación y
enraizamiento de trozos de rizomas de Smilax dominguensis
Fuente el autor
Tratamiento
1era. Lectura - 60 DIAS
2da. Lectura 90 DIAS
3ra. Lectura 150 DIAS
Brotación
Enraizamie
nto Brotación
Enraizami
ento Brotación
Enraizamient
o
T1R1
T1R2
T1R3
T2R1
T2R2
T2R3
T3R1
T3R2
T3R3
TEST R1
TEST R2
TEST R3
