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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
Tesis de Grado
Previo a la obtención del título de:
Médica veterinaria zootecnista
TEMA
Incidencia de anaplasmosis en perros de la zona urbana del cantón Palenque de
la provincia de Los Ríos
Autora:
Johanna Elizabeth Suárez Martínez
DIRECTOR
Dr. Luis Salcedo Rosales
Vinces Los Ríos Ecuador
2015
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
Tesis de Grado
Previo a la obtención del título de:
Médica veterinaria zootecnista
TEMA
Incidencia de anaplasmosis en perros de la zona urbana del cantón Palenque
de la provincia de Los Ríos
Autora:
Johanna Elizabeth Suárez Martínez
Director
Dr. Luis Salcedo Rosales
TRIBUNAL DE SUSTENTACION
APROBADO POR:
-----------------------------------
Dr. Omar Reyes Echeverría M.Sc
Presidente
------------------------------ ------------------------------
Dr. Mario Mora Montes M.Sc Dr. Rafael Aspiazu Pimentel
DEDICATORIA
A DIOS quién supo guiarme por el buen camino, darme fuerzas para seguir adelante y no
desmayar en los problemas que se presentaban.
MIS PADRES, Augusto Melitón Suarez Ruiz y Juana Eufemia MartínezAndradepor sus
consejos, amor y ayuda en los momentos difíciles, me han dado todo lo que soy como
persona, mis valores, mis principios, mi carácter, mi empeño, mi perseverancia, para
conseguir mis objetivos, gracias por ser los principales pilares de mi vida.
MIS HERMANOS, Miguel Augusto,Juan Carlos, Santiago Rafael, Wendy Jobanna por
compartir tantos momentos increíbles ypor todoel cariño sincero que me han brindado.
Y sobre todo a mí querido esposo Fabián Alberto Vera Cervantes. Quien me brindo su
amor, su cariño, su estímulo y su apoyo constante. Su cariño, comprensión y paciente
espera para que pudiera terminar mi tesis son evidencia de su gran amor. ¡Gracias por ser
parte de mi vida!
AGRADECIMIENTO
A mi Señor, Jesús, quien me dio la fe, la fortaleza, la salud y la esperanza para terminar
este trabajo.
De manera especial a las familias Vera Cervantes y Vera Cercado.
Al Biólogo Manolo Fuentes y Dr. Roberto Coello por su ayuda en mi trabajo de
investigación.
A la Decana de la Facultad de Ciencias para el Desarrollo Ing. Marisol Vera Oyague.
A los profesores FCDE que de una u otra forma me ayudaron en la culminación de mi
tesis.
Dr. Omar Reyes Echeverría
Dr. Luis Salcedo Rosales
Dr. Abel Mora Montes
Dr. Rafael Aspiazu Pimentel
Dr. Héctor Díaz Carriel
Dr. Emilio Wong Mendoza
Ing. Milton León
Ing.Cesar Tamayo Ricaurte
Ing. Jorge Mora Montes
A mis amigos (as)
Karol Salazar Nivela
Dra. Kinverlyn Aspizú Tigrero
Dra. Carolina Aspiazu Tigrero
Jairo Jiménez
Dra. Dorianne Guerrero
Adriana Guerrero Palma
Jean Carlos Olvera
Hector Mendoza
Lininquer Mendoza
Al Personal Administrativo.
Lcda. Marietta Escobar
Lcda. Luisa Burgos
Sra. Katty Moran
Johanna Elizabeth Suárez Martínez
La responsabilidad del contenido de esta
tesis de grado corresponde
exclusivamente a Johanna Elizabeth
Suárez Martínez, y el patrimonio
intelectual de la misma a la Facultad de
Ciencias para el Desarrollo de la
Universidad de Guayaquil.
INDICE RESUMEN .......................................................................................................................... III
I.INTRODUCCIÓN .............................................................................................................. 1
II. Revisión de literatura. ....................................................................................................... 3
2.1 Descripción de anaplasma spp ..................................................................................... 3
2.1.1 Rickettsias. ................................................................................................................ 3
2.1.2 Anaplasma phagocytophilum. .................................................................................. 4
2.2. Genética ...................................................................................................................... 4
2.3. Taxonomía .................................................................................................................. 4
2.4. Anaplasmosis .............................................................................................................. 5
2.5. Patogenicidad y virulencia .......................................................................................... 5
2.6. Transmisión ................................................................................................................ 6
2.7. Epidemiología ............................................................................................................. 7
2.8.Inmunidad .................................................................................................................... 8
2.9. Clínica ....................................................................................................................... 10
2.10.Diagnóstico .............................................................................................................. 11
2.11. Tratamiento ............................................................................................................. 13
2.12. Prevención y control ............................................................................................... 13
III.Materiales y métodos ...................................................................................................... 14
3.1 Ubicación de la investigación y características .................................................... 14
3.1.1 Localización........................................................................................................ 14
3.1.2 Caracterización de la zona de trabajo. ................................................................ 14
3.2. Tipo de investigación ................................................................................................ 14
3.3. Diseño de la investigación ........................................................................................ 15
3.4. Universo .................................................................................................................... 15
3.5. Tamaño de la muestra ............................................................................................... 15
3.6. Metodología .............................................................................................................. 15
3.7. Materiales de investigación ...................................................................................... 16
3.8. Análisis estadístico ................................................................................................... 17
3.9. Datos evaluados ........................................................................................................ 18
IV.RESULTADOS .............................................................................................................. 19
4.1 Incidencia de Anaplasmosis en perros de la zona urbana del cantón Palenque de la
provincia de Los Ríos. 2013 ........................................................................................... 19
4.2 Incidencia de anaplasmosis en perros de acuerdo a la raza de la zona urbana del
cantón Palenque provincia de Los Ríos. 2013. ................................................................ 20
4.3 Incidencia de anaplasmosis en perros según el sexo de la zona urbana del cantón
Palenque provincia de Los Ríos. 2013. ............................................................................ 21
4.4 Incidencia según las edades investigadasde anaplasmosis en la zona urbana del
cantón Palenque, Los Ríos. 2013. ................................................................................... 22
4.5 Incidencia de Anaplasmosis por áreas en perros de la zona urbana del cantón
Palenque de la provincia de Los Ríos. 2013 .................................................................... 23
V. Discusión ........................................................................................................................ 25
VI. Conclusiones ................................................................................................................ 26
VII. Recomendaciones......................................................................................................... 27
SUMMARY ........................................................................................................................ 28
Bibliografía .......................................................................................................................... 29
ANEXOS ............................................................................................................................. 32
VIII. GLOSARIO: ............................................................................................................... 51
RESUMEN
El presente trabajo fue en el cantón Palenque, durante el mes de febrero hasta el mes de
julio del 2013. El objetivo de esta investigación fue Determinar la incidencia de
Anaplasmosis en perros de la zona urbana del cantón Palenque, mediante pruebas de
laboratorio.
Se tomaron muestras de sangre a 160 canes; que fue extraída de la vena cefálica una vez
tomadas esta fueron transportadas en una caja térmica con sus respectivos conservadores
para mantener la cadena de frio4-8 °C para su observación y diagnóstico; estas fueron
analizados en el laboratorio mediante microscopia óptica, donde se encontró 86 casos
positivos que equivale a 53,75 % de anaplasmosis, y 74 negativas 46,25%. El tipo de
estudio fue descriptivo-transversal con un diseño de investigación observacional con
muestreo aleatorio. Los mayores casos de la enfermedad se presentaron en la zona Norte
con 61 casos positivos (70,93%), seguida del Sur con 12 casos (13,93%) luego al Oeste
con nueve casos (10,46%) y al Este con cuatro casos (4,65%).Con respecto a al parámetro
de raza, mestiza fue la única presente en el estudio, la cual registró 53,75 % de casos
positivos; no pudiéndose comparar estadísticamente. En cuanto al sexo los machos
presentaron 63,95 % de positivismo a diferencia de las hembras que presentaron 36,05 %;
lo que demuestra que los machos son más susceptible, y de las edades, podemos afirmar
que la edad de 6 meses a 1 año presento la incidencia más alta; ya que de 54 muestras
analizadas de acuerdo a esta edad, 33 fueron positivos, que corresponden al 38.37%; En
cuanto a la menor incidencia la obtuvo las edades de 6 a 7 años, con un porcentaje de 6,97
%, es decir 6 muestras positivas de 18 analizadas.
I.INTRODUCCIÓN
La Anaplasmosis canina es una enfermedad de infecciones bacterianas, transmitidas por
garrapatas, Estos son microorganismos intracelulares que infectan a las plaquetas o
trombocitos de la sangre produciendo destrucción, el microorganismo está distribuido casi
en todo el mundo, y esta enfermedad infecciosa está despertando atención especial en los
últimos años en la Medicina Veterinaria, debido a diferentes causas, entre las que podemos
mencionar, la aparición de nuevos agentes patógenos transmitidos por garrapatas que hasta
ahora no se les daba mucha importancia; al hecho de que agentes infecciosos descritos en
otras zonas ahora son descubiertos en lugares muy diversos y distantes (debido al cambio
climático y a los movimientos migratorios de los propietarios y sus mascotas).
La Anaplasmosis epidemiológicamente está relacionada con el medio ambiente, el
hospedero y la variabilidad del agente microbiano; existen muchas referencias de que esta
enfermedad se da sobre todo en sitios donde existen bajas condiciones socio-económicas
con precariedad habitacional, por lo consiguiente, están expuestas a un mayor riesgo de
contraer la infección. La amplia distribución mundial de la bacteria está relacionada con la
presencia de garrapatas ya que se ha probado que está presente en el clima tropical y sub-
tropical de todo el mundo.
El cantón Palenque, es una zona de riesgo debido a la presencia de todas las condiciones
del ciclo biológico del vector, pero el diagnóstico del agente causal debe ser seguro y
definitivo, Por estas razones se realizó esta investigación para determinar la incidencia de
anaplasmosis en perros de la zona urbana del cantón Palenque de la provincia de Los Ríos,
para conocer en qué porcentaje los canes están siendo afectados por esta enfermedad, por
tal motivo es de notable importancia el estudio porque podrá convertirse en un problema de
salud animal.
2
Objetivos:
Objetivo General
Determinar la incidencia de Anaplasmosis en perros de la zona urbana del cantón
Palenque, mediante pruebas de laboratorio.
Objetivos específicos
1. Establecer la incidencia de anaplasma spp, en perros en la zona urbana del cantón
Palenque.
2. Establecer la susceptibilidadde los caninos de acuerdo raza, sexo y edad.
3. Zonificar el sector de mayor incidencia de Anaplasmosis en caninos, mediante un
mapa epidemiológico urbano del cantón Palenque.
3
II. Revisión de literatura.
2.1 Descripción de anaplasma spp
Estos microorganismos se presentan en formas bacilares, cocoides o pleomórficas,
presentando paredes típicas de bacterias gram negativas con ausencia de flagelos. Las
formas bacilares soncortas, mientras que las cocoides se presentan aisladas en pares,
cadenas cortas o en filamentos.Estas bacterias tienden a ser muy pequeñas, teniendo un
diámetro de 0,3-0,5 um. y una longitudes 0,8-2,0 um. Estos agentes al ser teñidos con
Giemsa son fáciles de visualizar con el microscopio de luz y se muestran con color azul y
con latinción de Macchiavello color rojo en contraste con elcitoplasma teñido de azul que
las rodea.
El Anaplasma son rickettsias intraeritrocitaria que generalmente se encuentra
localizada en el centro o a lo largo del margen del eritrocito; consta de un cuerpo inicial,
que invade el eritrocito y posteriormente se multiplica para formar inclusiones con cuatro a
ocho cuerpos iniciales, a demásse caracteriza como todas las rickettsias por no tener su
cromatina organizada en un núcleo con membrana limitante y por carecer de retículo
endoplásmico.(Bowman, 2011)(Soto, 2010).
2.1.1 Rickettsias.
Carecen de la ruta glucolítica y no utilizan glucosa como fuente de energía, sino que
oxidan glutamato y productos intermedios del ciclo de los ácidos tricarboxilícos como el
succinato; además presentan un sistema de transporte mediado por transportador, de tal
forma que losnutrientes y las coenzimas de la célula huésped se absorben y se utilizan de
forma directa. Estosmicroorganismos captan NAD y uridina glucosa difosfato, así como
también realizan intercambio de adenosin difosfato (ADP) por adenosin trifosfato (ATP)
de la célula hospedero, de tal forma que la célula puede aportar gran parte de laenergía
necesaria para el crecimiento intracelular.(J & Levy, 2008).
4
2.1.2 Anaplasma phagocytophilum.
Se transmite a partir de roedores reservorios; es la más comúnmente asociada con
Anaplasmosis, produciendo una enfermedad febril aguda en personas, caballos, zarigüeyas,
perros y rumiantes. Este microorganismo infecta a neutrófilos, eosinófilos y monocitos; a
veces es confundida comúnmente con la Enfermedad de Lyme o borreliosis; mientras que
la Anaplasma platys (no se ha demostrado que sea zoonósico) infecta naturalmente las
plaquetas de los canes produciendo una trombocitopenia cíclica, que puede agravarse si se
acompaña con alguna infección. Este género presenta mórulas no fibrilares y las
mitocondrias así como el retículo endoplasmático no contactan con la membrana de la
mórula.(Alleman & Couto, Testing for tick borne diseases: How and when?, 2009).
Anaplasma platys fue anteriormente conocida como Ehrlichia platys, pero en el
2001 fue reclasificada dentro de la familia Anaplasmataceae, género Anaplasma. Las dos
especies pueden llegar a infectar eritrocitos, leucocitos y plaquetas. (Alleman & Couto,
Testing for tick borne diseases: How and when?, 2009)(Dumler, y otros, s/f).
2.2. Genética
Posee ADN circular de doble cadena, su genoma oscila entre 1 200 y 1 250 kpb, presenta
seis genes (msp1α, msp1β, msp2, msp3, msp4 y msp5), que codifican para lasproteínas
mayoritarias de superficie (MSPs) de los cuerpos iniciales de este organismo,designadas
1a, 1b, 2,3,4 y 5 (Tebele&McGuire,1991).
Hasta el presente se han caracterizado seis proteínas mayoritarias de superficie
(MSPs) nombradas como MSP1a (105KDa) y MSP1b (100-105KDa), MSP2
(36KDa),MSP3 (86KDa), MSP4 (31KDa) y la MSP5 (19KDa) (Corona et al.,
2001).
2.3. Taxonomía
El Anaplasma spp. ertenece al Geno grupo II de las Ehrlichias. En cuanto a la clasificación
taxonómica del Anaplasmaspp. es la siguiente:
5
Reyno: Procarionte
Grupo: Eubacteriales
Sub grupo: Protobacterias
Phylum: Ciliophora
Clase: Kinetofragminophora
Orden: Rikettsiales
Familia: Anaplasmataceae
Género: Anaplasma
Especie : marginale
centrale
2.4. Anaplasmosis
Anaplasmosis o trombocitopenia cíclica infecciosa tiene una amplia distribución mundial y
generalmente es una enfermedad estacional, de hecho, la Anaplasmosis incluso ha sido
declarada endémica en ciertas áreas.
Anaplasmosis es también conocida como fiebre del perro o la fiebre por garrapatas
de perro (Mascotas, info, 2011)(Prieto, 2010).
2.5. Patogenicidad y virulencia
Es una bacteria intracelular obligada que una vez dentro del torrente sanguíneo, penetra en
los eritrocitos maduros por endocitósis; infectando estos con la formación de unavacuola
en donde se multiplica por fisión binaria para formar hasta ocho organismos individuales
dentro de una sola vacuola y luego, nuevos organismos salen del eritrocito, utilizando
exocitosis e infectan los eritrocitos aledaños (Figueroa et al., 1993).
Despuésque el parásito entra al huésped el número de eritrocitos infectados se
duplica entre las 24 y 48 horas siguientes. El período prepotente durante la incubación de
6
la enfermedad es de dosa tres semanas y la duración depende de la cantidad de organismo
infectante.
La enfermedad puede detectarse por microscopía entre 20 y 40 días después de la
transmisión, dependiendo del número de microorganismos transmitidos y de la virulencia.
La patogenicidad y virulencia depende mucho de factores genéticos (Soto, 2010).
2.6. Transmisión
El estudio de la transmisión de la Anaplasmosis es de fundamental importancia para
establecer un control efectivo de la enfermedad. Son amplias y muy variadas las formas en
que puede transmitirse el parásito y dependen de la presencia de vectores (biológicos y
mecánicos), la existencia de animales susceptibles y de condiciones ecológicas favorables.
La transmisión de esta enfermedad se puede efectuar de diferentes maneras, biológica y
mecánica.
Transmisión biológica
La transmisión biológica delAnaplasmaspp.es a través de las diferentes especies
degarrapatas, se efectúa de forma transestadial, es decir de una etapa a otra por ejemplo
delestado de larvas a ninfas y de ninfas a adultos o intraestadial, es decir dentro de una
etapa.
El ciclo de desarrollo de Anaplasma spp. en garrapatas es complejo ycoordinado
con el ciclo de alimentación, comienza en las células del intestino medio, siguiendo con las
células muscularesdel mismo, después muchos otros tejidos de la garrapata lleguen a ser
infectados,incluyendo las glándulas salivales, de donde la rickettsiae se transmite al
huéspedvertebrado durante la alimentación. En cada sitio de desarrollo en la garrapata, el
Anaplasmaspp.se multiplica dentro de inclusiones unidas a las membranas, llamadas
vacuolas ocolonias. Cada ciclo involucra dos estadios: la primera forma de Anaplasma
spp. Vista dentro de la colonia es la forma reticular (vegetativa), que divide por fisión
binaria, formando colonias grandes que pueden contener cientos de organismos.
7
La forma reticular cambia ala forma densa, que es la forma infecciosa y que puede
sobrevivir fuera de las células deanfitrión. Los animales llega a ser infectado con
Anaplasma spp. Cuando la forma densa estransmitida durante la alimentación de la
garrapata a través de las glándulas salivales.
Transmisión mecánica
La transmisión mecánica con frecuencia se produce a través de instrumentos contaminados
como: agujas, descornadoras, instrumentos de tatuaje o marcación, dispositivo de
etiquetado del oído e instrumentos usados en la castración(A & Salinas, 2011)(Prieto,
2010).
Diversas garrapatas del genero Ixodes pueden servir como vectores de A.
phagocytophilum e infectar a una amplia gama de mamíferos, incluyendo perros, gatos,
humanos y especies silvestres. El agente vector de A. platys se lo ha identificado por
técnicas moleculares en garrapatas de los géneros Dermacentor y Riphicephalus.
Rhipicephalu ssanguineus es la garrapata transmisora de Erhlichia canis y de A.
platys(Alleman & Sayler, Coinfeccion en las enfermedades transmidas por vectores.,
2010)(Alleman & Heather, 2008)(E & Breitschwerdt, 2006).
2.7. Epidemiología
Desde el año 2001, el agente causal se denomina Anaplasma platys, antes conocido como
Ehrlichia platys. Pertenece al grupo de las rickettsias y se distingue de otras especies de
Anaplasma por su capacidad de infectar plaquetas. Se diagnosticó por primera vez en
Estados Unidos en 1978, pero desde entonces se ha descrito también en Venezuela, China,
Taiwan, Japón, Israel, Australia, España, Grecia, Alemania, Italia y Francia. Se considera
como un parásito estricto del perro(Kujiman, Sepiurka, & Greco, s/f).
8
El Anaplasma spp y Babesia spp es endémica y se encuentra extendidaen todos los
países de América Latina. En Sudamérica esta enfermedad se ha llegado a considerarse
una enfermedad prevalente.
Diversas publicaciones en los últimos años en América del Sur se ha reportado el
30% de prevalencia de Anaplasma platys mediantes extendidos sanguíneos y el 5,33% de
prevalencia de babesiosis canina, con una tasa de infección de 81,3% por Rhipicephalus
sanguineus
(Kujiman, Sepiurka, & Greco, s/f)(J & Levy, 2008).
2.8.Inmunidad
Una vez que el Anaplasma spp. Atraviesa las barreras biológicas (mucosas), químicas
(pH, enzimas) y microbiológica (flora habitual); este penetra a nivel sanguíneo, por lo que
el organismo responde primeramente con la respuesta inmune innata o no adaptativa, que
coopera con el control de la infección en la etapa temprana de la infección.
Dentro del huésped, el microorganismo llega a sangre como cuerpos elementales
que se introducen en las plaquetas por endocitosis mediada por receptor o por fagocitosis;
la infección plaquetaria impediría la fusión de lisosomas a la membrana de la vacuola.
Comienzan a multiplicarse por fisión binaria transformándose en cuerpos iniciales. Se
trata de cuerpos redondos, ovales o en forma de habichuela, de 0,3-1,2 μm, que se hallan
dentro de mórulas en un número variable de uno a quince. Las mórulas intraplaquetarias
pueden ser únicas o múltiples y alcanzan un diámetro de 0,8- 2,1 µm, con lo que pueden
llegar a ocupar gran parte del citoplasma. Cuando la plaqueta se lisa, la mórula libera
nuevos cuerpos elementales que invaden otros trombocitos.
Una vez en el interior del eritrocito, la rickettsia se multiplica por bipartición hasta
alcanzar un numero entre dos y siete cuerpos iniciales, que se agrupan en un una forma de
mayor tamañoconocida como cuerpo de inclusión. Posteriormente estecuerpo de inclusión
libera los cuerpos iniciales que semultiplican secuencialmente en otros eritrocitos y se
liberansucesivamente hasta alcanzar porcentajes de infección altos.
9
Las células del sistema inmune reconocen a los patógenos a través de receptores
Tolllike (TLR) que reconocen moléculas antigénicas; al ser sensibilizados dichas células
estos secretan TNF, IL8, factor inhibidor de macrófago y otras citocinas que van a tratar de
inhibir la multiplicación del microorganismo, disminuyendo la infección.
Cuando el microorganismo penetra en la célula hospedadora este sigue la vía
endógena o biosintética que es captada en el citosol como moléculas extrañas por el
proteosoma dentro de los cuales se hidrolizan en péptidos de 5-15 aminoácidos.Estos
péptidos liberados en el citosol, son conducidos hacia el Retículo endoplásmico (RE) e
introducidos en sus cisternas por proteínas transportadoras del tipo ABC llamadas TAP1 y
TAP2. Inmediatamente después de su síntesis en el núcleo el CMH clase I ingresa en el
RE; dentro de las cisternas del (RE) los péptidos antigénicos se asocian con moléculas
CMH I y forman CMH 1– Ag este proceso es asistido por Chaperonas como la calnexina y
este pasa después del RE al sistema de Golgi.
Posteriormente se desprende en vesículas que son transferidas a las membrana
plasmática de la célula presentadora, en el cual queda expuesta y puede interaccionar con
el receptor de la célula TH1 para activar a su vez a linfocito T citotóxicos y a las células
NK lo que permite que sean detectadas, eliminadas por lisis o apoptosis.
También el Anaplasma genera CMH de clase II generando una respuesta inmune
humoral mediada por linfocitos B que se caracteriza por la producción de anticuerpos que
bloquean la entrada del microorganismo a las células diana (neutralización) y la elimina
dichas partículas antigénicas de la circulación gracias a la ayuda de células fagocíticas.
Luego de la infección con A. platys, la memoria inmunitaria remanente puede
alcanzar una duración de al menos cuatro meses, después de lo cual el organismo queda
nuevamente susceptible a padecer la enfermedad(Kujiman, Sepiurka, & Greco,
s/f)(Regueiro, Lopez, Gonzalez, & Martinez, 2002)(Rodriguez, Garcias, Aboites, & Cantó,
2003).
10
2.9. Clínica
Un animal infectado no presenta síntomas clínicos al inicio de la infección, solamente
cuando más del 15% de los eritrocitos han sido parasitados o infectados, se presentan
síntomas. En ese período, la parasitemia comienza a desarrollarse y posteriormente los
eritrocitos infectados se eliminan del torrente circulatorio mediante fagocitosis por las
células del retículo endotelial del bazo, hígado y nódulos linfáticos; induciéndose el
desarrollo de una fase de inflamación aguda (Kujiman et al., s/f) (soto et al.,2010).
Se distinguen tres fases clínicas de la enfermedad:
Fase aguda
Síntomas son similares a la de la enfermedad de Lyme e incluyen los siguientes:
Fiebre alta
Depresión
Anorexia
Letargo o debilidad
Poliartritis o la inflamación de varias articulaciones al mismo tiempo
Convulsiones atáxica
Dolor en el cuello
Vómitos
Diarrea
Tos
Forzada o dificultad para respirar
Inmune mediada por trombocitopenia o recuento de plaquetas bajo
Inmune mediada por anemia hemolítica o bajo recuento de glóbulos rojos(J &
Levy, 2008).
Fase hiperaguda
En ésta fase ocurre una pérdida dramática de peso, presencia de abortos, fallo
cardiopulmonar y muerte, debido a que el 90% de los eritrocitos están infectados, > 108
eritrocitos infectados por ml (Kieser, Eriks& Palmer, 1990).
11
Fase crónica
Los animales que sobreviven a la fase hiperaguda, disminuyen drásticamente la
parasitemia, luego de varias semanas los valores hematológicos vuelven a la normalidad.
Los animales recuperados pueden permanecer infectadospersistentemente con bajos
niveles de parasitemia, a estos animales se los conoce como “portadores asintomáticos de
la enfermedad”, en esta fase es difícil de diagnosticar la enfermedad por los métodos
tradicionales (Viseshakul, 2002)(Alleman & Sayler, Coinfeccion en las enfermedades
transmidas por vectores., 2010)( soto et al., 2010 ).
Los signos clínicos de la Anaplasmosis y Erhichiosis en el perro son inespecíficos,
pudiéndose encontrarse individuos asintomáticosA. phagocitophylum puede causar
también linfo adenomegalia, letargia, hinchazón y dolor articular, signos neurológicos y
hemorragias, pudiendo llegar a ocurrir la muerte; asimismo, ocurre trombocitopenia,
linfopenia y elevación de las transaminasas. En el caso de A. platys, la trombocitopenia se
deriva en un bacteriemia y trombocitopenia cíclica de 10 a 14 días de intervalo, anemia no
regenerativa, leucopenia e hipoalbuminemia (Alleman & Heather, 2008)(E C. M.,
2010)(Masake & Musike, 2005).
2.10.Diagnóstico
Existen diversos métodos generalmente sencillos para el diagnóstico de la enfermedad
como son:
Examen en Fresco: Consiste en tomar una pequeña muestra de sangre y colocarla entre un
porta y cubre objeto y buscar cuidadosamente los Anaplasmas spp. entre los glóbulos
rojos. Este procedimiento es el más rápido pero eficaz cuando hay parasitemia
elevada(PC, y otros, 2008).
PCR: Es un método que permite detección de secuencias genéticas dela bacteriamediante
la amplificación basada en la secuencia de ácidos nucleicos y consiste primeramente la
extracción del acido nucleico de la célula, para a continuación preparar el master mix de
reacción; para seguidamente realizar la mezcla del master mix con el ácido nucléico;
12
subsiguientemente se procede a amplificar los segmentos genéticos en un termociclador a
diferentes temperaturas, para posteriormente hacerlo migrar a un gel de agarosa o
policrilamina y luego teñirlo con Bromuro de Etidio o cyber green para finalmente
visualizarlo en un Transiluminador o en un aparato de fotodocumentación(Mullis, s/f).
Western blot: Consiste en tiras de nitrocelulosa en la que se han transferido las proteínas
dela bacteria mediante transferencia por electroforesis, posteriormente se incuba por
determinadas horas con el suero problema, para luego hacer reacciones inmuno
enzimáticas con conjugado y luego sustrato; el resultado positivo es la aparición de bandas
coloreadas de mayor o menor intensidad en la tira de nitrocelulosa en la que están situadas
proteínas del microorganismo contra las cuales existen anticuerpos en el suero problema.
Hemaglutinación Indirecta: También llamada hemaglutinación reversa pasiva, Se basa
en que con algunos antígenos parasitarios se sensibilizan glóbulos rojos, como resultado
estos glóbulos rojos sensibilizados son aglutinados por anticuerpos específicos, resulta un
método rápido y sencillo.
ELISA: la técnica ELISA (Enzyme Linked Inmuno absorvent Assay) se basa en la
detección de un antígeno inmovilizado sobre una fase sólida mediante anticuerpos que
directa o indirectamente producen una reacción cuyo producto, por ejemplo un colorante,
puede ser medido espectrofotométricamente. Este principio tiene muchas propiedades de
un inmuno ensayo ideal puesto que es versátil, robusto, simple en su realización,
económico y consigue mediante el uso de la fase sólida una separación fácil entre la
fracción retenida y la facción liberada(Winn, y otros, 2008).
Inmuno fluorescencia. La Inmuno fluorescencia indirecta ha sido utilizada para el
diagnóstico de Anaplasmosis, consiste en detectar inmunoglobulinas del suero canino, por
intermedio dedos reacciones: con la bacteria y con la globulina anti canina teñida con
fluoresceína. Esta prueba permite la visualización de reacciones Ag-Ac por medio de
marcajede una inmunoglobulina con fluorocromos. Estás son sustancias con capacidad
deabsorción de energía luminosa, tornándose excitadas por un breve periodo de tiempo
13
(10-9 a10-7 segundos) y enseguida emitiendo en forma de fluorescencia al retornar en su
estadonormal (soto et al .,2010).
2.11. Tratamiento
El tratamiento efectivo depende en gran medida el diagnóstico correcto.
El tratamiento con antibióticos como la doxiciclina a dosis de 5mg/kg cada 12 h. o
como una sola dosis de 10 mg/kg cada 24 h. durante un periodo de 28 a 30 días. y
la tetraciclina, dos o tres veces al día.
Otras drogas efectivas son la oxitetraciclina, la minociclina y el cloranfenicol
Periodo de tratamiento puede ser durante un mes.
cada 12 h. o como una sola dosis de 10 mg/Kg cada 24 h. durante periodos de 28 a
30 días.
La mejoría puede ser visto después de 24-48 horas después del tratamiento.
En casos de infecciones crónicas el tratamiento puede prolongarse hasta las ocho
semanas.
La transfusión de sangre puede ser necesaria para la anemia y trombocitopenia.
Si hay daño del riñón o del hígado, estos también tienen que ser tratados(Kujiman,
Sepiurka, & Greco, s/f)(Mascotas, info, 2011).
2.12. Prevención y control
No existen vacunas contra esta enfermedad. Los caninos utilizados como donantes de
sangre deberían ser evaluados mediante inmune fluorescencia indirecta dos veces a
intervalos de cuatro semanas, todos los años
( Kujiman et al .,s/f).
14
III.Materiales y métodos
3.1 Ubicación de la investigación y características
3.1.1 Localización.
La presente investigación se realizó en la zona urbana del cantón Palenque de la provincia
de los Ríos, durante el mes febrero hasta el mes de julio del 2013.
3.1.2 Caracterización de la zona de trabajo.
El cantón Palenque es una zona situada en la parte norte de la Provincia de Los Ríos; limita
al Norte con el cantón Mocache, al Suroeste con el cantón Vinces y al Oeste el cantón
Balzar.
Palenque es una zona eminentemente agrícola, donde se cultivan una innumerable
variedad de cultivos como: Banano, arroz, mango, maíz, soya, sandía, etc.,también sus
habitantes se dedican a actividades pecuarias. Dicho cantón se encuentra ubicado entre las
coordenadas de 1º 10´ S 79º 50´W.
Clima: Su clima es tropical y fresco, con marcada diferencia entre el invierno y verano,
con temperaturas que fluctúan entre los 22 y 36ºC. La temperatura máxima en invierno
oscila entre 32ºC a 36ºC. En verano la temperatura mínima varía entre 22ºC y 26ºC. La
humedad relativa va del 72 % al 80%.
Las precipitaciones son de 1000 a2000 mm; Con un déficit hídrico de 250-500 mm
de cuatro a ocho meses secos al año. El periodo de precipitaciones más importantes es
desde enero-abril. Los meses sin precipitaciones son desde mayo a diciembre(Palenque,
M, & Canton, 2012).
3.2. Tipo de investigación
Descriptivo, transversal
15
3.3. Diseño de la investigación
Muestreo aleatorio
3.4. Universo
La población canina de la zona urbana del cantón Palenque es de 300 animales, según el
censo que se utiliza para la inmunización de la Rabia por el departamento de
Epidemiología del hospital de Vinces “Nicolás Coto Infante”.
3.5. Tamaño de la muestra
La cantidad muestreada fue de 160 caninos.
3.6. Metodología
En esta investigación primero se procedió a realizar la toma de muestra a los caninos
investigados en dicha zona de estudio, cuyos dueños autorizaron la extracción de sangre a
sus respectivos animales.
Con respecto a la extracción de las muestras de sangre a los caninos se llenó una
hoja de recolección de datos. (Anexo 1)
Una vez obtenida las muestras de sangre estas fueron transportadas entre 4-8°C al
laboratorio para el análisis del microorganismo.
Actividades realizadas en el laboratorio:
1. Tomar una parte de muestra con un capilar.
2. Introducir el capilar en el tubo que contiene la muestra.
3. Colocar el capilar con la sangre en un porta objeto y se realiza el barrido o frotis,
4. Dejar secarla muestra en unos 5-10 minutos al ambiente.
5. Fijar la muestra colocando las placas en vaso de coplin con etanol o alcohol etílico
durante 3-5 minutos.
6. Luego se saca la placa y se deja secar cinco minutos al ambiente.
16
7. Teñir con Giemsa en una solución 1:10; que es 1 ml de Giemsa (solución madre)
más 9 ml de buffer (solución neutra).
8. Dispensar el Giemsa en las placas que contienen las muestras y se tiñe durante 30
minutos.
9. Lavar las placas para retirar el colorante (Giemsa) y se deja secar durante cinco
minutos.
10. Aplicar una gota de aceite de inmersión y por último se observa al microscopio
utilizando el lente de 100x .( Fotos 6-17 )
3.7. Materiales de investigación
Los materiales que se utilizaron fueron los siguientes:
De campo
Agujas
Tubos con citrato de sodio
Campana de extracción
Gradillas de plásticos
Hieleras
Tijeras
Algodón
Alcohol
Cajas térmicas
Bandejas
Tableros con los registros
Bozal
Torniquetes
De laboratorio:
Para microscopía óptica:
.
Lamina porta objeto
Para tinción de giemsa:
Mechero
Metanol
Agua ultra pura
Giemsa
Microscopio óptico con
cámara digital incluida
Microcapilares con heparina
17
3.8. Análisis estadístico
Con los datos obtenidos se realizó un análisis descriptivo que se presenta en forma de
tablas estadísticas, gráficos y mapa de la zona de estudio; también se realizó cálculos de
desviación estándar y coeficiente de variación (Anexo 3)
100 muestras del Área Norte (la Revesa)
26 muestras del Área Sur (entrada de Palenque)
10 muestras del Área Este (Cementerio de Palenque)
24 muestras del Área Oeste (Vías las Ánimas)
___
Σxi = 160
n = 4 Media
Varianza
Desviación
s = √40
s = 6,32
18
Coeficiente de Variación
x 100
CV = 15,8
3.9. Datos evaluados
Las variables que se analizaron en el estudio son:
Edad del canino: Se establecieron los datos de las edades respectivas de los animales
investigados, con base a información proporcionadas por los propietarios de los mismo; y
se registraron para los fines investigativos.
Sexo del canino: Se estableció por verificación directa la cantidad de machos y hembras
infectadas.
Raza del canino: De acuerdo a las características fenotípicas de los caninos se estableció
las razas existentes en la zona y se registraron.
Zona de incidencia de Anaplasmosis:De acuerdo a la zonificación efectuada se dividió en
cuatros áreas Norte, Sur Este y Oeste. En la cual sedeterminó la zona de mayor incidencia
de Anaplasmosis.
Presencia/ausencia del anaplasma: Se estableció la presencia o ausencia del
microorganismo, a través de microscopía óptica con tinción de Giemsa. Se observó cómo
corpúsculos esféricos con un color azul debido al colorante.
19
IV.RESULTADOS
4.1 Incidencia de Anaplasmosis en perros de la zona urbana del cantón Palenque de
la provincia de Los Ríos. 2013
De las 160 muestras analizadas en esta investigación; hubo una incidencia de 53,75%; lo
que corresponde a 86 casos positivas para Anaplasma spp. y 74 resultaron negativas 46,25
%. (Grafico # 1)
Cuadro 1. Incidencia de anaplasmosis en perros de la zona urbana del cantón Palenque de
la provincia de Los Ríos. 2013.
# DE MUESTRAS % DE INCIDENCIA
POSITIVAS 86 53,75
NEGATIVAS 74 46,25
TOTAL 160 100
20
4.2 Incidencia de anaplasmosis en perros de acuerdo a la raza de la zona urbana del
cantón Palenque provincia de Los Ríos. 2013.
En el Cuadro 3. Se observan en diferentes zonas donde todos los caninos que participaron
en el trabajo de investigación pertenecieron exclusivamente a la raza mestiza donde se
obtuvo el 53,75 % de incidencia.(Grafico # 3)
Cuadro3.Incidencia de anaplasmosis en perros de acuerdo a la raza de la zona urbana del
cantón Palenque provincia de Los Ríos. 2013.
RAZAS
# DE
MUESTRAS
MUESTRA
POSITIVAS
Porcentaje
(%)
MUESTRA
NEGATIVAS
Porcentaje
(%)
Mestiza 160 86 53,75 74 46,25
21
4.3 Incidencia de anaplasmosis en perros según el sexo de la zona urbana del cantón
Palenque provincia de Los Ríos. 2013.
En el cuadro 4.De acuerdo a lo investigado se estableció que de 86 casos positivos
de acuerdo al sexo; el mayor porcentaje fueron los machos con el 63,95% correspondiente
a 55 animales positivos. El coeficiente de variación fue de 0.27% (Grafico #4).
Cuadro 4. Incidencia de anaplasmosis en perros según el sexo de la zona urbana del
cantón Palenque provincia de Los Ríos. 2013.
Sexo
#
MUESTRAS
MUESTRA
POSITIVAS Porcentaje (%)
MUESTRA
NEGATIVAS
Porcentaje
(%)
Macho 86 55 63,95 31 41,89
Hembras 74 31 36,05 43 58,11
TOTAL 160 86 100 74 100
80 43 37
s 6 12 6
CV (%) 0,07 0,27 0,16
22
4.4 Incidencia según las edades investigadasde anaplasmosis en la zona urbana del
cantón Palenque, Los Ríos. 2013.
Con respectoa al parámetro de edades, podemos afirmar que la edad de 6 meses a 1 año
presento la incidencia más alta; ya que de 54 muestras analizadas de acuerdo a esta edad,
33 fueron positivos, que corresponden al 38.37%; En cuanto a la menor incidencia la
obtuvo las edades de 6 a 7 años, con un porcentaje de 6,97 %, es decir 6 muestras positivas
de 18 analizadas. (Grafico #5)
Cuadro. 5. Incidencia según las edades investigadasde anaplasmosis en la zona urbana del
cantón Palenque, Los Ríos. 2013.
EDADES
MUESTRA
TOMADA
MUESTRA
POSITIVAS %
MUESTRA
NEGATIVAS %
6 meses a un año 54 33 38,37 21 28,38
2 a 3 años 41 22 25,58 19 25,68
4 a 5 años 19 9 10,46 10 13,51
6 a 7 años 18 6 6,97 12 16,22
8 a 9 años 15 7 8,13 8 10,81
10 en adelante 13 9 10,46 4 5,40
TOTAL 160 86 99,97 74 100
26,66 14,33 12,33
s 15,32 9,89 5,96
CV (%) 0,57 0,69 0,48
23
4.5 Incidencia de Anaplasmosis por áreas en perros de la zona urbana del cantón
Palenque de la provincia de Los Ríos. 2013
En el Cuadro 2. Se observan la incidencia de Anaplasmosis en todas las zonas de estudio.
En el estudio el mayor casos de la enfermedad se presentó en la zona Norte
denominada la Revesa con 61 casos positivas (70,93%) y con menor incidencia la obtuvo
la zona Este (cementerio de Palenque) donde se tomaron 10 muestras y resultaron positivas
cuatro de ellas (4,65%). (Grafico #2)
Cuadro 2. Incidencia de anaplasmosis por áreas en perros de la zona urbana del cantón
Palenque provincia de Los Ríos. 2013.
ZONA MUESTRAS
TOMADAS
MUESTRAS POSITIVAS MUESTRAS NEGATIVAS
NÚMERO PORCENTAJE NÚMERO PORCENTAJE
Norte 100 61 70,93 39 52,70
Sur 26 12 13,93 14 18,92
Este 10 4 4,65 6 8,11
Oeste 24 9 10,46 15 20,27
TOTAL 160 86 100 74 100
40 21,50 18,50
s 35,18 22,98 12,33
CV (%) 0,87 1,06 0,66
24
MAPA EPIDEMIOLOGICO DE LA ZONA URBANA DEL CANTÓN PALENQUE
Norte
61 casos (70,93%,)
Este
4 casos (4,65%)
Oeste
9 casos (10,46)
Sur
12 casos (13,93)
25
V. Discusión
En el presente estudio ejecutado sobre la incidencia de anaplasmosis en perros de la zona
urbana del cantón Palenque, donde el número de muestras fue de 160 caninos se identificó
86 casos positivos que equivalen al 53,75%: lo que difiere de (Dominguez, 2011); quien
manifiesta haber encontrado un 3,13 % de incidencia de anaplasma en la Ciudad de
Cuenca; donde las condiciones climáticas son distinta a la de esta investigación.
(Marquez, 2011) en investigaciones realizadas en Milagro, que tiene condiciones
climatológicas similares, reporto una incidencia de 9% estudiando 100 casos de los cuales
9 resultaron positivos, dándonos a conocer que los cambios de climas influyen a la
aparición de esta enfermedad.
La raza (mestiza) fue la única presente en el estudio, registró53,75 % de casos
positivos; no pudiéndose comparar estadísticamente.
Los caninos más susceptible en lo referente a la edad, fue la del rango comprendido
entre los 6 meses a 1 añosde edad, con un porcentaje de 38,37%. Lo que se puede deber a
que en esta edad no tiene bien desarrollado el sistema inmune.
En cuanto al sexo los machos presentaron 63,95 % de positivismo a diferencia de
las hembras que presentaron 36,05 %; lo que demuestra que los machos son más
susceptible.
El muestreo efectuado en las cuatros zonas en que fue dividida el área urbana del
cantón Palenque, demostró que la zonaNorte (La Revesa) registró el mayor porcentaje de
incidencia de anaplasmosis, con un total de 61 casos positivos que equivale a 70.93%, lo
cual se debe probablemente a que en esta zona es colindante con el área rural, posibilitando
la mayor presencia de vectores y la disposición de los habitantes de dicho sector a
mantener una población alta de perros. Y la zona Este (Cementerio de Palenque) registro la
menor incidencia con 4% de casos positivos, lo cual puede deberse al poco número de
animales muestreados en esa zona.
26
VI. Conclusiones
Con base a los estudios y resultados encontrados se concluyecon lo siguiente:
1. Se identificó por medio de microscopia y el uso de la tinción de giemsa, la
presencia de anaplasma spp en los caninos de la zona urbana del cantón Palenque.
2. Se determinó la incidencia de Anaplasmosis en la sangre de perros de la zona
urbana del cantón Palenque, mediante pruebas de laboratorio la cual dio 53,75 %
(86 casos positivos) de 160 caninos muestreados.
3. En cuanto en la raza predominante solo se muestreo perros mestizos (53,75 %).
4. Se determinó que los machos tienen los mayores porcentajes de incidencia de la
enfermedad (63,95%) frente a la hembra.
5. El grupo etéreo que presento mayor porcentaje de incidencia de anaplasmosis fue el
de (6 meses a 1 años), que presentaron el (38,37 %).
6. En la investigación se estableció que la zona Norte fue quien obtuvo la mayor
incidencia con (70,93%).
27
VII. Recomendaciones
1. Se recomienda que a más de la prueba de tinción de giemsa de laboratorio, se
continúe otras investigaciónes utilizando pruebas rápidas como la de Elisa.
2. Realizar investigaciones continuas sobre la incidencia de anaplasma en caninos;
estableciendo la susceptibilidad en relación al sexo, edad y razas.
3. Establecer campañas de concientización a la comunidad sobre la importancia de la
anaplasmosis y de los vectores que la trasmiten.
4. Se recomienda a los Médicos Veterinarios orientar a los propietarios de caninos
sobre las consecuencias que ocasiona la presencia de garrapatas en sus mascotas
5. Incentivar a los propietarios en el control de ectoparásitos de forma periódica para
precautelar la salud de las mascotas.
6. Tratar a los pacientes positivos y en especial a los provenientes de la zona norte del
cantón Palenque, porque fue donde se presentó el mayor porcentaje de casos
positivos.
28
SUMMARY
This work was in the canton Palenque, during the month of February through July 2013.
The objective of this research was to determine the incidence of anaplasmosis in dogs from
the urban area of Canton Palenque, by laboratory tests.
In which blood samples were taken at 160 dogs; which it was extracted in the cephalic
vein once taken this were transported in a cooler with their respective Conservative to
maintain the cold chain 4-8 ° C for observation and diagnostic these were analyzed in the
laboratory by optical microscopy, where it was found 86 positive cases is equivalent to
53.75% of anaplasmosis and 74 negative 46.25%. The type of study was descriptive-cross
with a design of observational research with random sampling. Older cases of the disease
occurred in the north called the Revesa with 61 positive cases (70.93%), followed by the
South with 12 cases (13.93%) then the West with nine cases (10.46%) and the East with
four cases (4.65%). With respect to the parameter race (mestizo) the only one present in
the studio, recorded 53.75% positive cases; not being able to compare statistically. As for
the male sex presented 63.95% of positivism unlike females presented 36.05%; It is
showing that males are more susceptible, and ages, can say that the age of 6 months to 1
year had the highest incidence; as 54 samples tested according to this age, 33 were
positive, corresponding to 38.37%; As for the lower incidence of the obtained ages 6 to 7
years, with a percentage of 6.97%, ie 18 6 positive samples analyzed
29
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32
ANEXOS
ANEXO 1.
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
INSTITUTO TECNOLÓGICO AGROPECUARIO DE VINCES.
INCIDENCIA DE ANAPLASMOSIS EN PERROS DOMESTICOS DE LA ZONA
URBANA DEL CANTÓN PALENQUE. LOS Ríos, 2013.
FORMATO DE AUTORIZACIÓN PARA LA TOMA DE MUESTRA
Área: Dirección: Número:
Yo………………………………………………………………………habitante de
la zona urbana del cantón Palenque propietario del animal correspondiente a
la siguiente ficha:
Nombre:………………………..
Edad:……………………………
Sexo:…………………………...Color:……………………
Especie:……………………….Raza:…………………..
Doy consentimiento, a la toma de muestra de sangre a mi mascota para el
estudio antes mencionado.
………………………………
Propietario
Fecha:…………………………………………………
Lugar:…………………………………………………
Cuadro. 1. Porcentaje de edades investigadas en el estudio de incidencia de anaplasmosis
en perros domésticos de la zona urbana de palenque, los ríos. 2013.
EDADES FRECUENCIA %
6 meses a 1 año 54 33,75
2 a 3 años 41 25,62
4 a 5 años 19 11,87
6 a 7 años 18 11,25
8 a 9 años 15 9,37
10 en adelante 13 8,12
TOTAL 160 100%
Grafico 1. Número de muestras positivas y negativas de Anaplamaspp. En el estudio de
incidencia de Anaplasmosis en perros de la zona urbana, Palenque, los Ríos.
2013.
42
44
46
48
50
52
54
POSITIVAS NEGATIVAS
TÍTU
LO D
EL E
JE
TÍTULO DEL EJE
% DE INCIDENCIA
Gráfico 2. Porcentaje de razas investigadas en el estudio de incidencia de Anaplasmosis en
perros de la zona urbana de Palenque, Los Ríos. 2013.
Gráfico 3. Porcentaje de machos y hembras investigados en el estudio de incidencia de
Anaplasmosis en perros de la zona urbana de Palenque, Los Ríos. 2013.
0
10
20
30
40
50
60
Mestiza Otras razas
53,75
0
46,25
0
MUESTRA POSITIVAS
MUESTRA NEGATIVAS
0
10
20
30
40
50
60
70
Macho Hembras
63,95
36,05
41,89
58,11
MUESTRA POSITIVAS
MUESTRA NEGATIVAS
Gráfico 4. Porcentaje de edades investigadas en el estudio de incidencia de Anaplasmosis
en perros de la zona urbana de Palenque, Los Ríos. 2013.
Grafico 5. Incidencia de Anaplasmosis por áreas en perros de la zona urbana del cantón
Palenque de la provincia de Los Ríos. 2013
0
5
10
15
20
25
30
35
40
6 meses aun año
2 a 3 años 4 a 5 años 6 a 7 años 8 a 9 años 10 enadelante
38,37
25,58
10,46
6,97 8,13
10,46
28,38
25,68
13,51
16,22
10,81
5,4
MUESTRA POSITIVAS
MUESTRA NEGATIVAS
0
10
20
30
40
50
60
70
80
Norte Sur Este Oeste
70,93
13,93
4,65
10,46
52,7
18,92
8,11
20,27
TÍTU
LO D
EL E
JE
TÍTULO DEL EJE
MUESTRAS POSITIVAS
MUESTRAS NEGATIVAS
ANEXO 2: MUESTRA POSITIVA POR MICROSCOPÍA ÓPTICA EN EL ESTUDIO
DE INCIDENCIA DE ANAPLASMOSIS EN PERROS DE LA ZONA
URBANA DEL CANTÓN PALENQUE DE LA PROVINCIA DE LOS
RÍOS.
ANEXO 3. MATERIALES UTILIZADOS EN EL PRESENTE ESTUDIO.
FOTO 1-2: MANIPULACIÓN DEL CANINO EN EL ESTUDIO DE INCIDENCIA
DE ANAPLASMOSIS EN PERROS DE LA ZONA URBANA DEL
CANTÓN PALENQUE DE LA PROVINCIA DE LOS RÍOS.
FOTO 3:MUESTRA EXTRAÍDA DEL CANINO DURANTE EL ESTUDIO DE
INCIDENCIA DE ANAPLASMOSIS EN PERROS DELA ZONA
URBANA DEL CANTÓN PALENQUE DE LA PROVINCIA DE LOS
RÍOS.
FOTO 4-5: MUESTRA CONSERVADA EXTRAÍDA DEL CANINO DURANTE EL
ESTUDIO DE INCIDENCIA DE ANAPLASMOSIS EN PERROS DE LA
ZONA URBANA DEL CANTÓN PALENQUE DE LA PROVINCIA DE
LOS RÍOS.
FOTOS 6-7: MUESTRA EXTRAÍDA DEL CANINO DURANTE EL ESTUDIO DE
INCIDENCIA DE ANAPLASMOSIS EN PERROS DE LA ZONA
URBANA DEL CANTÓN PALENQUE DE LA PROVINCIA DE LOS
RÍOS.
FOTO 8: TOME EL CAPILAR Y LO INTRODUCI EN EL TUBO QUE
CONTIENE LA MUESTRA.
FOTO9-11: COLOCAR EL CAPILAR CON LA SANGRE EN UN PORTA
OBJETO Y SE REALIZA EL BARRIDO O FROTIS.
FOTO 12: DEJAR SECAR LA MUESTRA EN UNOS 5-10 MINUTOS AL
AMBIENTE.
FOTO 13: FIJAR LA MUESTRA COLOCANDO LAS PLACAS EN VASO DE
COPLIN CON ETANOL O ALCOHOL ETILICO DURANTE 3-5
MINUTOS.
FOTO 14: SE SACA LAS PLACAS Y SE DEJA SECAR CINCO MINUTOS AL
AMBIENTE.
FOTO 15: TEÑIR CON GIEMSA EN UNA SOLUCION 1:10; QUE ES 1 ML DE
GIEMSA (SOLUCION MADRE) MAS 9 ML DE BUFFER (SOLUCION
NEUTRA).
FOTOS 17: LAVAR LAS PLACAS PARA RETIRAR EL COLORANTE
(GIEMSA) Y SE DEJA SECAR DURANTE CINCO MINUTOS.
FOTO 18: APLICAR UNA GOTA DE ACEITE DE INMERCION Y POR ULTIMO
SE OBSERVA AL MICROSCOPIO UTILIZANDO EL LENTE DE 100x.
VIII. GLOSARIO:
Anaplasma: Bacteria gran negativa causante de la Anaplasmosis.
Anaplasmosis: Enfermedad estacional transmitida por garrapatas causada por el
microorganismo llamado Anaplasma spp.
Adenopatía:Trastornos inespecífico de los ganglios linfáticos.
Complejo Mayor de Histocompatibilidad (MHC): Conjunto de genes que codifican las
moléculas de unión a péptidos reconocidos por los linfocitos T.
Censo: Enumeración de una población entera, habitualmente incluye el registro de datos
tales como la edad, el sexo, grupo étnico, entre otros.
ELISA: (Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay, Ensayo por inmune absorción ligado a
enzimas) Es un método por el cual se precisa la cuantificación de productos mediante
anticuerpos; sirviendo para el diagnóstico clínico, detección viral, clasificación de
anticuerpos en isotipos, búsqueda de anticuerpos monoclonales, etc.
Epidemia: Aparición de un número mayor de casos de una enfermedad que el esperado,
en un área determinada, en un grupo específico de persona y durante un periodo de tiempo
determinado.
Epizootia: Aparición de un número mayor de casos de una enfermedad que el esperado, en
un área determinada, en un grupo específico de animales y durante un periodo de tiempo
determinado.
Hipoalbuminemia: Condición clínica en la que existe disminución de albumina por
debajo de 3,5g/dL. En los niveles séricos de la sangre.
Hipocalcemia:Condición clínica en la que existe disminución de calcio por debajo de lo
normal en la sangre.
Anticuerpo: Glicoproteína altamente específica producida por el organismo en respuesta a
una sustancia extraña, como una bacteria o virus, y con capacidad de unirse a esa sustancia.
Complemento: Es un sistema formado por más de glucoproteínas séricas o unidas a
membrana que actúan en forma secuencial cuando se activan por una
Hospedero: Organismo sobre o en el cual un microorganismo vive, crece y se multiplica.
Pleomórficos: Diversas formas de un microorganismo.
Rickettsias: Grupo de bacterias gran negativas.
Hirsutismo: es el crecimiento excesivo de vello.
