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High diversity of Rhodobacterales in the subarctic North Atlantic Ocean and gene agent transfer protein expression
in isolated strains
Diversité des Organismes Marins UE 106
Bordeyne François Arias Ruiz Camilo
Etude de publications
Fu Y, MacLeod DM, Rivkin RB, Chen F, Buchan A, Lang AS
Mar
ie B
eau
cham
p
2010
Terre-Neuve
500 nm
Jannaschia sp. CCS1
Procaryotes : Organismes majeurs de l’océan
Rhodobacterales : Classe des alphaprotéobactéries 1 famille et 26 genres
Importance dans la communauté du bactérioplancton
Role écologique majeur !
Présence d’Agents de Transfert de Gènes (ou GTAs)
Diversité DiscussionExpression g5 CritiqueIntroduction Conclusion
2
Bie
rs e
t al
., 20
08
50 nm 50 nm
GTAs chez Ruegeria pomeroyi DSS-3
Pourcentage de Rhodobacterales
10 20 30 40 50 600
800
600
400
200
0
Profondeur (m)
Bloom Nord Atl.
Ocean Pacifique côtier
Mer Méditerranée
Buchan et al., 2005
Ruegeria sp. TM1040500 nm
500 nm
Jannaschia sp. CCS1
3
GTAs : Que sont-ils et quel est leur rôle ?
Petites particules : environ 50 à 70 nm semblables à des bactériophages
Transferts de parties de génomes entre bactériesEnviron 4,5 kb
Rôle : flux majeur de gènes : adaptations aux conditions environnementales
=> Rôle écologique majeur
100 nm
Bactériophage lambda
Sch
no
s
GTA chez Reugeria mobilis 45A6
50 nm
McD
anie
l et
al.
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction Critique Conclusion
4
Avantage : conservation des séquences
Marqueur
Objectifs
Estimation de la diversité en Rhodobacterales de la communauté bactérienne
Etude de l’expression de la protéine g5 chez différentes souches/espèces
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction
Mise en évidence de 3 gènes : g2 : protéine terminase g5 : protéine majeur de la capside g9 : protéine majeure de la queue
Cluster GTA1 kb
10 kb
g2 g5 g9 CysEchprecG
Lang et Beatty, 2000, modifié
g5 : protéine majeur de la capside
Critique Conclusion
5
1000 km
USA
USA
Groenland
Canada
Terre Neuve
Pickatrail ®
Lieu de prélèvements
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction Critique Conclusion
10 km
Go
og
le E
arth
, U.S
. Nav
y
N
N
6
Matériel et méthodes
Création d’OTUs 97 % d’identité nucléotidique
Phylogénie selon méthode de Neighbor-Joining
Identité nucléotidique inter-OTUs : 44 – 97 %
Diversité supérieure en été
Résultats
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction
Séquence g5
Critique Conclusion
Paramètres Été Hiver Total Chesapeake Nombre Clones 127 45 172 158 Nombre d’OTUs 54 10 59 12
Indice de Shannon H’ 3,71 1,59 - H’ max = 2,39
Rhodobacter capsulatus
Ordre du µm
Sulfitobacter
Oceanibulbus
Roseobacter denitrificans OCh114
Octadecabacter
Loktanella
Ruegeria pomeroyi DSS-3
Roseobacter sp. MED193
Rhodobacter capsulatus SB1003
Citreicella sp. SE45
Groupe externe
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction
Fu et al., 2010 modifié
7
Echelle non représentative
Critique Conclusion
Sulfitobacter sp. EE-36
Sulfitobacter sp. NAS-14.1
SulfitobacterLoktanella sp. CCS2
Loktanella
Oceanibulbus indolifex HEL-45
Oceanibulbus
Octadecabacter antarcticus 307
Octadecabacter
Ete
Hiver
8
Sulfitobacter sp. EE-36
Sulfitobacter sp. NAS-14.1
Oceanibulbus indolifex HEL-45
Roseobacter denitrificans OCh114
Octadecabacter antarcticus 307
Loktanella sp. CCS2
Rhodobacterales bacterium HTCC2150
Ruegeria pomeroyi DSS-3
Phaeobacter sp. Y4IRoseobacter sp. MED193
Rhodobacter capsulatus SB1003
Groupe externeCitreicella sp. SE45
Fu et al., 2010 modifié
Echelle non représentative
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction Critique Conclusion
Sulfitobacter
Oceanibulbus
Octadecabacter
Loktanella
9
DML-w6DML-w13
DML-w12.1DML-w4.2
DML-w8
Sulfitobacter sp. NAS-14.1
Roseobacter sp. GAI101Oceanilbulbus indolifex HEL-45Octadecabacter antarcticus 307CB1023CB1005CB1040Loktanella sp. CCS-2
Citreicella sp. SE45Roseovarius sp. HTCC2601Ruegeria pomeroyi DSS-3Phaeobacter sp. Y4I
Rhodobacter capsulatus SB1003Roseobacter sp. MED193
Matériel et méthodes
10 souches/espèces testées
+ 3 témoins
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction
5 provenant de Terre-Neuve
3 provenant de la baie de Chesapeake
2 autres
Echelle non représentative
Fu et al., 2010 modifié
Western blot
Critique Conclusion
Poids moléculaire :
g5 mature chez Rhodobacter capsulatus
10
DML-w6DML-w13
DML-w12.1DML-w4.2
DML-w8
Sulfitobacter sp. NAS-14.1
Roseobacter sp. GAI101Oceanibulbus indolifex HEL-45
Octadecabacter antarcticus 307
CB1023CB1005CB1040Loktanella sp. CCS-2
Citreicella sp. SE45
Roseovarius sp. HTCC2601
Ruegeria pomeroyi DSS-3Phaeobacter sp. Y4I
Rhodobacter capsulatus SB1003
Roseobacter sp. MED193
Expression de la protéine dans 60 % des cas (6/10)
4/5 pour les échantillons de Terre-Neuve
2/3 pour ceux de la baie de Chesapeake
0/2 pour Loktanella
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction
kDa
46
30
30
46
Rc
Rc
g5-
g5-
4.2 6 8 12.1 13 DSS
DSSY41 SE 05 23 40
Fu et al., 2010
Echelle non représentative
Fu et al., 2010 modifié
Critique Conclusion
Résultats
Protéines matures
11
Adaptation aux environnements froids
Période du bloom phytoplanctonnique
Terre Neuve : de -1,5 à 16°C
Baie de Chesapeake : de 1 à 26 °C
Terre Neuve : mi Avril à fin Mai
Baie de Chesapeake : fin Février à fin Mars
Mer de Weddel, Antarctique
Jean
-Pie
rre
Mar
ro
50 km
N
Bloom phytoplanctonique, Terre Neuve
NA
SA
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction
Diversité
Critique Conclusion
Existence de microdiversité Nouveaux groupes = nouvelles caractéristiques écologiques ?
12
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction
Expression g5
g5 mature formation du GTAs
Mais aussi :
Mauvaises conditions de croissance
Seuil de détection trop élevé
Possibilité d’aucune expression
Acquisition de nouvelles caractéristiques : dégradation de molécules carbonées ou soufrés particulières, etc.
Critique Conclusion
Mo
nsi
eurb
en, m
od
ifié
50 nm
McD
anie
l et
al.
13
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction Critique Conclusion
GLRGLSLEGKALNSAVAAEGGLRGLELEGKAMSTAVAGDGGLRGLVLEGKALSTAVAGDGALRGLELEGKSLSSAVAADGALRGLTLEGKAMSTAINSDGGLRGLELDSKSMSTAVNSDG
Rhodobacter capsulatus SB1003
Oceanibulbus indolifex HEL-45
Phaeobacter sp. Y4ICitreicella sp. SE45
Octodecabacter antarcticus 307Ruegeria pomeroyi DSS-3
Zone de clivage
Une autre évidence
Conservation de la zone de clivage très importante
Fu et al., 2010
14
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction
Phylogénie g5 vs phylogénie ARNr 16S : non congruence
Temps écoulé entre les 2 prélèvements
Mise en évidence de bloom phytoplanctonnique estival par la NASA
Critique Conclusion
Originalité du marqueur
Rhodobacterales affectées par une eau contaminée
Suivi de l’évolution de la communauté en Rhodobacterales
Eu
rop
e 1
NA
SA
12/08/2002
Terre-Neuve
N
15
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction Critique Conclusion
Difficulté de culture des souches/espèces
Seulement 2 prélèvements, sans réplicats
Comparaisons + diminution du risque d’extrêmes
Vitesse d’évolution de la séquence g5
10 km
Go
og
le E
arth
, U.S
. Nav
y
N
Labrot ©
16
Diversité DiscussionExpression g5 Introduction Critique Conclusion
Diversité en Rhodobacterales importante à Terre Neuve
Mise en évidence d’une nouvelle partie de la grande diversité de cet ordre
Expression de protéines g5 matures chez plusieurs espèces
Transferts et acquisition de gènes peuvent être réalisés
Mais, de nombreux travaux restent à effectuer pour en connaitre encore et encore… 10
0
20
60
50
40
30
140120100806040200
Nombre d’OTUs
Nombre de clones
Eté
Hiver
Fu et al., 2010 modifié
Ordre du µm
50 nm
500 nm500 nm
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Bibliographie
Fu Y, MacLeod DM, Rivkin RB, Chen F, Buchan A, Lang AS (2010) High diversity of Rhodobacterales in the subarctic North Atlantic Ocean and gene transfer agent protein expression in isolated strains. Aquat Microb Ecol : 283 - 293
Zhao Y, Wang K, Budinoff C, Buchan A, Lang A, Jiao N, Chen F (2009) Gene transfer agent (GTA) genes reveal diverse and dynamic Roseobacter and Rhodobacter populations in the Chesapeake Bay. The ISME journal (3) : 364 - 373
Prabagaran SR, Manorama R, Delille D, Shivaji S (2007) Predominance of Roseobacter, Sulfitobacter, Glaciecola and Psychrobacter in seawater collected off Ushuaia, Argentina, Sub-Antarctica. FEMS Microbiol Ecol 59 : 342–355
Lang AS et Beatty JT (2000) Genetic analysis of a bacterial genetic exchange element: The gene transfer agent of Rhodobacter capsulatus. PNAS (97) : 859 –864
Ettema TJG et Andersson SGE (2009) The α-proteobacteria: the Darwin finches of the bacterial world. Biol. Lett. (5): 429 - 432
Google Earth (Version 6.0) [Software]. Mountain View, CA: Google Inc. (2010). Disponible sur http://www.google.fr/intl/fr/earth/download/ge/
NASA Earth Observatory (2010) Phytoplankton bloom off Newfoundland. http://earthobservatory.nasa.gov Novembre 2010
Buchan A, Gonzalez JM, Moran MA (2005) Overview of the marine Roseobacter lineage. Appl Environ Microbiol 71: 5665 –5677
Biers EJ, Wang K, Pennington C, Belas R, Chen F, Moran MA (2008) Occurrence and Expression of Gene Transfer Agent Genes in Marine Bacterioplankton. Applied and environmental microbiology : 2933 – 293
Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. Second edition. Volume 2 : The Proteobacteria. Part c : The Alpha-, Beta-, Delta- and Epsilonproteobacteria. (2005)
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Merci de votre attention !
Terre-Neuve
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High diversity of Rhodobacterales in the subarctic North Atlantic Ocean and gene agent transfer protein expression
in isolated strains
Diversité des Organismes Marins UE 106
Bordeyne François Arias Ruiz Camilo
Etude de publications
Mar
ie B
eau
cham
p
Fu Y, MacLeod DM, Rivkin RB, Chen F, Buchan A, Lang AS
2010
500 nm
Jannaschia sp. CCS1
Terre-Neuve
20
Cycles de PCR et primers utilisés
Pour la séquence g5 Cycle : 30 s à 98 °C puis 35 cycles de 10 s à 98 °C, 30 s à 60 °C et 30 s à 72 °C, avec pour finir 7 min à 72 °C
Primers : MCP-109F : 5’-GGC TAY CTG GTS GAT CCS CAR AC-3’MCP-368R : 5’-TAG AAC AGS ACR TGS GGY TTK GC-3’
Pour la séquence ADNr 16S Cycle : 30 s à 98 °C puis 35 cycles de 10 s à 98 °C, 30 s à 58 °C et 30 s à 72 °C, avec pour finir 8 min à 72 °C
Primers : 27F : 5’-AGA GTT TGA TCM TGG CTC AG-3’1522R : 5’-AAG GAG GTG ATC CAN CCR CA-3’
Questions
21
Base ou type de bases code à une lettreAdénine AThymine TGuanine GCytosine CInosine IUracile UPurine : Adénine ou Guanine RFaible liaison (deux liaisons hydrogène) : Adénine ou Thymine
W
Fonction cétone dans le grand sillon de l'ADN : Thymine ou Guanine
K
Pas une Adénine BPas une Thymine V
Pyrimidine: Thymine ou Cytosine Y
Forte liaison (trois liaisons hydrogène) : Cytosine ou Guanine
S
Fonction amine dans le grand sillon de l'ADN : Adénine ou Cytosine
M
Pas une Cytosine DPas une Guanine HQuelconque N
Base azotée : abréviations
22
Expérience de neutralisation d'anticorps
TBST Tris-Buffered Saline Tween-20
Anticorps primaire
Incubé avec un excès molaire (~100 plis du peptide d'immunisation)2h en solution buffer (TBST) à T° ambient.
Anticorps Control(Non neutralisé)
Meme conditionssans adition de peptide
Pour confirmer la détection des bandes spécifiquement reconnues par les anticorps primaires du GTA.
Anticorps polyclonal dirigé contre un peptide synthétique correspondant à une région de la protéine majeure capsid (g5) GTA conservée à plus de 90 %.
Détection de la présence d'une protéine dans un tissu, évaluation de la taille et la concentration.
Avantage
Anticorps du g5
23
Pourcentage de recouvrement
Analyse de raréfaction
C = 1 – (N/n) x 100
N : nombre de séquences uniques
n : nombre total de clones
But : calculer la proportion de la diversité entre les séquences
Cette analyse permet d’estimer le nombre d’espèces présentent dans un échantillon à partir du nombre total d’individus.
24
Mécanisme de transfert de gènes chez les procaryotes
Conjugaison
Transformation bactérienne
25
Neighbor Joining
N’accepte pas l’exactitude de l’horloge moléculaire
But : établir les relations phylogénétiques entre différents taxons, à partir d’un indice de distance
Obtention d’un arbre non raciné
Méthode d’analyse phénétique
Ici : méthode des distances the Maximum Composite Likelihood Method
26
Cellule eucaryote : 20 µm
Bactérie : 2 µm
GTA : 50 – 70 nm
Taille moyenne des différentes structures
27
Position des alphaprotéobactéries dans le vivant
Archae
Eucaryotes
Bactéries
γ-protéobactéries
β-protéobactéries
α-protéobactéries
ε-protéobactéries
Cyanobactéries
Firmicutes
Planctomycètes
SpirochètesActinobactéries
28
Western blot
Permet d’étudier la synthèse (ou non) de protéine
utilisation de sonde : des anticorps
Northern blot : permet de quantifier l’expression du gène
Southern blot : permet de répondre à combien de gènes sont exprimés
29
Indice de Shannon H’
H’ = - ∑ pi ln(pi)
i = Espèce du milieu
pi = proportion de l’espèce I dans le milieu
0 < H’ < ln S
Mesure de la diversité d’un milieu.
Plus H’ est grand, plus la diversité est importante.
L’indice est max quand toutes les espèces sont à égale proportion
S = nombre d’espèces dans le milieu
Source : Grall J. et Hily C.
30
Roseobacter vs Rhodobacterales
Loktanella
Octadecabacter - Ruegeria
Sulfitobacter - Oceanibulbus
Roseobacter
Ruegeria
Rhodobacter capsulatus
Buchan et al., 2005
31
ORF : Open Reading Frames
Séquence d’ADN qui permet d’estimer la présence d’un gène
Commence par un codon d’initiation et termine par un codon stop.
Entre ces codons, on retrouve les codons codant pour la protéine la partie codante de l’ADN
32
ACIDE AMINE 3 lettres 1 lettre Codons Alanine Ala A GCA, GCC, GCG, GCTArginine Arg R CGA, CGC, CGG, CGT, AGA, AGGAspartic acid Asp D GAC, GATAsparagine Asn N AAC, AATCysteine Cys C TGC, TGTGlutamic acid Glu E GAA, GAGGlutamine Gln Q CAA, CAGGlycine Gly G GGA, GGC, GGG, GGTHistidine His H CAC, CATIsoleucine Ile I ATA, ATC, ATTLeucine Leu L CTA, CTC, CTG, CTT, TTA, TTGLysine Lys K AAA, AAGMethionine Met M ATGPhenylalanine Phe F TTC, TTTProline Pro P CCA, CCC, CCG, CCTSerine Ser S TCA, TCC, TCG, TCT, AGC, AGTThreonine Thr T ACT, ACC, ACG, ACTTryptophan Trp W TGGTyrosine Tyr Y TAC, TATValine Val V GTA, GTC, GTG, GTTSTOP - - TAG, TAA, TGA
Correspondance Acides aminés/abbréviations
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Position phylogénétique non sûre
En se basant sur l’ARNr 16S, Lee et al., proposent une taxonomie différente de celle du Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology.
This study BMSB
Order Caulobacterales Order Caulobacterales
Family Caulobacteraceae Family Caulobacteraceae
Family Hyphomonadaceae Order ‘Rhodobacterales’
Family ‘Rhodobacteraceae’ Family ‘Rhodobacteraceae’
The hierarchical system of the ‘Alphaproteobacteria’: description of Hyphomonadaceae fam. nov., Xanthobacteraceae fam. nov. and Erythrobacteraceae fam. nov.Lee et al., 2005