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INSTITUTO NACIONAL DE CANCEROLOGÍA
HEMATOPOYESIS
PROLIFERACIÓN, DIFERENCIACIÓN Y
MADURACIÓN CELULAR
VELÁZQUEZ FIGUEROA JUAN MANUEL RESIDENTE DE HEMATOLOGÍA
18, MARZO 2015
TEMARIOHISTORIA
DEFINICIÓN
INTRODUCCIÓN
ORGANIZACIÓN DEL SISTEMA HEMATOPOYÉTICO
MICROAMBIENTE HEMATOPOYÉTICO
CÉLULAS TRONCALES HEMATOPOYÉTICAS
MIELOPOYESIS
LINFOPOYESIS
HISTORIA
• PRIMERA MITAD SIGLO XX – Bizozzero (Italia) y Neuman (Alemania), nombran a
la MO como el sitio de la hematopoyesis – Finales siglo XIX.
– Carnot y Deflandre (Francia) muestran exiistencia f a c t o r r e g u l a d o r d e l a e r i t r o p o y e s i s , eritropoyetina- Principios siglo XX.
– Sabin, Maximow y Ferrata proponen la existencia tipo celular muy primitivo, capaz dar origen a todos los linajes hematopoyéticos, hemocitoblasto – Segunda década XX.
Mayani VH. Hematopoyesis: 50 años de descubrimientos y aplicaciones. Gac Med
Mex, 2009; 145, Supl 1: 23-25.
DÉCADA 1950
• 1953.- Allan Erslev (Filadelfia) demostró la existencia de la EPO.
• 1957.- Donall Thomas y colaboradores, publicaron sobre TMO en humanos.
• 1959.- Dr. Luis Sánchez Medal formó AMEH. • Ernest McCulloch y James Till (Canadá)
publicaron primer artículo demostrando la e x i s t e n c i a c é l u l a s t r o n c a l e s hematopoyéticas.
Mayani VH. Hematopoyesis: 50 años de descubrimientos y aplicaciones. Gac Med
Mex, 2009; 145, Supl 1: 23-25.
DÉCADA 1960
• 1965 & 1966.- Leo Sachs (Israel) y Donald Metcalf (Australia) publicaron estudios donde describían cultivos in vitro de células de la MO.
• Finales de 1960.- Trentin y cols dan el concepto microambiente hematopoyético.
• Thomas reporta los primeros TCH existosos en humanos.
Mayani VH. Hematopoyesis: 50 años de descubrimientos y aplicaciones. Gac Med
Mex, 2009; 145, Supl 1: 23-25.
DÉCADA 1970
• Metcalf y colaboradores, descubren y caracterizan varias proteínas: FSC-M, FSC-GM, FSC-G e IL3.
• Eugenio Goldwasser (Chicago) purifica la EPO.
• Michael Dexter y su grupo (Manchester) describieron sistema de desarrollo in vitro e n e l q u e l o g r a n r e p r o d u c i r e l microambiente hematopoyético.
Mayani VH. Hematopoyesis: 50 años de descubrimientos y aplicaciones. Gac Med
Mex, 2009; 145, Supl 1: 23-25.
DÉCADA 1980
• 1984.- Curt Civin y cols. (EUA) describen la presencia de una molécula que es expresada en la superficie de células primitivas, CD34.
• Finales de los 80s.- Hal Broxmeyer y su grupo, demostraron que en la sangre cordón umb i l i c a l h a y cé l u l a s t r onca l e s y progenitoras.
• 1988.- Eliane Gluckman (Francia), realiza primer TCH de sangre de cordón umbilical.
Mayani VH. Hematopoyesis: 50 años de descubrimientos y aplicaciones. Gac Med
Mex, 2009; 145, Supl 1: 23-25.
DÉCADA 1990
• Nuevos sistemas in vivo para el estudio de la hematopoyesis humana.
• Nuevos marcadores de células troncales y progenitoras: CD90, CD117 y CD 133.
Mayani VH. Hematopoyesis: 50 años de descubrimientos y aplicaciones. Gac Med
Mex, 2009; 145, Supl 1: 23-25.
DEFINICIÓN
PROCESO A TRAVÉS DEL CUAL SE GENERAN LAS CÉLULAS DE LA SANGRE, A TRAVÉS DEL CUAL INTERVIENEN UNA GRAN VARIEDAD DE TIPOS CELULARES Y ES REGULADO POR DIVERSOS
FACTORES
Torok-Strob B. Cellular interactions. Blood 1990; 72:
373-385
INTRODUCCIÓN
HEMATOPOYESIS PRENATAL
MESOBLÁSTICA HEPÁTICA MIELOIDE
Wintrobe MM. Clinical Hematology. 8th ed. Philadelphia Lea & Febiger. 1981,
p35
HEMATOPOYESIS HEPATICA
• Fuente primaria de célula rojas de la 9ª a la 24ª semana de gestación – 60% de células hematopoyéticas – La diferenciación en células eritroides
depende de la señalización con eritropoyetina a través del receptor JAK2
Wintrobe MM. Clinical Hematology. 8th ed. Philadelphia Lea & Febiger. 1981,
p35
INTRODUCCIÓNHemangioblasto
Célula hematopoyética
Célula angioblástica
Hoffbrand, V, et al. Postgraduate Haematology. 5º edition. Blacwell Publishing -Caolo, et al. Notch Regulation of Hematopoiesis, Endothelial Precursor Cells, and Blood Vesser
Formation: Orchestrating the Vasculature. Stem Cells International, volume 2012.
Saco vitelino
Mesénquima
Células endoteliales
Células madre hematopoyéticas
HEMATOPOYESIS MEDULAR
• Las células hematopoyéticas migran a la médula ósea en la 8ª semana de gestación
• Se confina a la región diafisiaria de los huesos largos hasta la semana 15
• En la semana 12 predominan las células mieloides – Después de la semana 24 es el sitio principal
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
LINFOPOYESIS PERÍODO PRENATAL
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
HEMATOPOYESIS POSTNATAL
• Exclusiva de la médula ósea.
2x1011
1x1011
2x1010
Wintrobe MM. Clinical Hematology. 8th ed. Philadelphia Lea & Febiger. 1981,
p35
ORG
ANIZ
ACIÓ
N D
EL S
ISTE
MA
HEM
ATO
POYÉ
TICO
Wintrobe MM. Clinical Hematology. 8th ed. Philadelphia Lea & Febiger. 1981,
MICROAMBIENTE HEMATOPOYÉTICO
ESTRUCTURA TRIDIMENSIONAL ALTAMENTE ORGANIZADA, DE CÉLULAS DEL ESTROMA Y SUS PRODUCTOS QUE REGULA LA LOCALIZACIÓN Y L A F I S I O L O G Í A D E L A S C É L U L A S HEMATOPOYÉTICAS.
Mayani H, Guilbert LJ, Janowska-Wieczorek A. Biology of the hemopoietic
microenvironment. Eur J Haematol 1992
MICROAMBIENTE
HEMATOPOYÉTICO
COMPONENTE HEMATOPOYÉTICO
CÉLULAS DEL ESTROMA
COMPONENTE MESENQUIMAL
Mayani H, Guilbert LJ, Janowska-Wieczorek A. Biology of the hemopoietic
microenvironment. Eur J Haematol 1992
COMPONENTE HEMATOPOYÉTICO
Expresan: MCH II, CD45, CD14, CD11c y
C68.
Regulan: Interacción célula-célula y secreción citocinas (FEC-M, FCEGM, IL1, IL3, IL6, IL8 y TNFα
Mayani H, Guilbert LJ, Janowska-Wieczorek A. Biology of the hemopoietic
microenvironment. Eur J Haematol 1992
COMPONENTE MESENQUIMAL
Citocinas: IL1, 6, 7, 8, FEC-M, FEC-G, SCF e
INFβ
Proteínas del citoesqueleto: actina α y metavinculina
Matriz extracelular: vimentina, fibronectina,
colágena I, III y IV, heparán sulfato y Ac.
hialurónico
FIBROBLASTOS ESTROMALES
CD45-
Quimiocina: SDF- 1
Mayani H, Guilbert LJ, Janowska-Wieczorek A. Biology of the hemopoietic
microenvironment. Eur J Haematol 1992
CITOCINAS
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
OSTEOBLAST
OS Citocinas:
FEC-G, FEC-M, FEC-GM, IL-1, IL-6
Homing:
Ang-1, SDF-1
Nicho: Receptor de
vitronectina
(αVβ3), N-
caderina,
Tie2, Jagged
-1
Mayani H, Guilbert LJ, Janowska-Wieczorek A. Biology of the hemopoietic
microenvironment. Eur J Haematol 1992
MICROAMBIENTE HEMATOPOYÉTICO
Mayani et al, Cancerología 2 (2007): 95-107
NICHO DE LAS CÉLULAS TRONCALES HEMATOPOYÉTICAS
• Interacción entre las células no hematopoyéticas y las células hematopoyéticas.
• S e i d e n t i f i c a n c é l u l a s hematopoyéticas junta a la c apa i n te rna de l hue so delimitadas por ostoblastos – CD 45 negativos (células SON)
• Mantiene a la CMH inmadura en estado quiescente.
Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 5th ed.
2008
CÉLULAS TRONCALES HEMATOPOYÉTICAS
• El estado quiescente se mantiene por el Factor de crecimiento transformador β.
• Homeostasis
•
Mediado por p 53
Que regula inhibidor cinasa dependiente de
ciclina
Regula actividad del complejo CDK-ciclina
Previene la fosforilación de
Rb
Hoffbrand, V, et al. Postgraduate Haematology. 5º edition. Blacwell Publishing
CÉLULAS TRONCALES HEMATOPOYÉTICAS
Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 5th ed.
2008
CÉLULAS TRONCALES HEMATOPOYÉTICAS
• La autorenovación se asocia parcialmente con la actividad de telomerasa – Es una estructura protectora del cromosoma – Compuesto de secuencias repetidas TTAGGG
que se acortan gradualmente en la proliferación celular
– Principal mecanismo para mantener la longitud del telómero al agregar secuencias repetidas de TTAGGG al final del cromosoma
Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 5th ed.
2008
CÉLULAS TRONCALES HEMATOPOYÉTICAS
CARACTERÍSTICAS: Auto-renovarse, multipotencial. 0.01% células nucleadas de
MO
Expresan CD 34, CD 90, CD117, CD 133.
Carecen específicos: CD3, CD4, CD8, Glicoforina A ….
Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 5th ed.
2008
CÉLULAS TRONCALES HEMATOPOYÉTICAS
Marcadores
CD 34 (glucoproteína de tipo I)
Adhesión celular Detención en el ciclo celular
CD 90 (Thy1)
Adhesión células T/células estromales
CD 117 (receptor c-Kit)
Supervivencia y proliferación
AA4
Homologo al receptor de C1q
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
REGULACIÓN INTRÍNSECA Y EXTRÍNSECA
INTRÍNSECA• Factores de
transcripción.- SCL, LOM2, GATA2, AML1.
• Regulación epigenética. • Estabilidad en el RNAm. • Ciclo celular.
EXTRÍNSECA• Células stem nicho. • Notch, FGF, BMPs. • Citocinas que actúan a
nivel de HSC.
Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 5th ed.
2008
DIFERENCIACIÓN CÉLULA TRONCAL HEMATOPOYÉTICA
Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 5th ed.
2008
FACTORES TRANSCRIPCIÓNPERÍODO EMBRIONARIO
SCL (TAL1) Stem cell leukemia factor ERITROPOYESIS AML 1 (RUNX1 o
CBFα Maduració
n linfocitos
y megacario
citos
LMO2 Transcripc
ión eritroide
NOTCH1 (TAN1)
MLL Formación colonias
hematopoyéticas en
SV e Hígado fetal
Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 5th ed.
2008
FACTORES TRANSCRIPCIÓNCÉLULA TRONCAL ADULTA
Meis 1 proloferación
HoxA9 Expresión de
genes
TEL (Etv6) represor
Bmi-1 Regulación epigenética
MOZ Acetil
transferasa de histonas
Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 5th ed.
2008
MIELOPOYESIS
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
FACTORES DE TRANSCRIPCIÓN
GATA-1 • Regulad
or maestro
• Conserva la secuencia GATA
FOG-1 • Se une
GATA1 para activar o reprimir la transcripción
Gfi-1b
PROGENITORES ERITROIDES/ MEGACARIOCITOS
ERITROPOYETINACitocinas: IL3,
Trombopoyetina, FLT-3L, SCF
TROMBOPOYETINA Citocinas: IL 3, IL6, IL11
Mayani et al, Cancerología 2 (2007): 95-107
ERITROPOYETINASe sintetiza en las células intersticiales peritubulares y células tubulares renales. • También existe eritropoyetina hepática:
células de Kupffer y hepatocitos. • El mayor número de receptores se
encuentra en la CFU-E, célula diana para la acción de la eritropoyetina.
• Estimula la proliferación de los proeritroblastos y eritroblastos basófilos.
Kenneth Kaushansky, M.D. Lineage-Specific Hematopoietic Growth Factors. N Engl J Med
2006;354:2034-45
PROGENITORES GRANULOCITOS/ MONOCITOS
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
FACTORES DE TRANSCRIPCIÓNSobreexpresión ! MONOCITO Rol linaje B • PU.1
Inhibe la transcripción E2F y c-myc • C/EBPα
Activador y represor • Egr 1 y 2
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
PROGENITORES GRANULOCITOS/ MONOCITOS
Citocinas estimuladoras: GM- CSF, G-CSF, M-CSF,
IL3, IL6 y SCF
Citocinas inhibidoras: TNFα, TGFβ, MIP-1α e INF
FACTORES ESTIMULANTES DE COLONIAS
• Acción: células madre multipotenciales, megacariocitos, progenitores eritroides, eosinófilos y dendríticos.
• FSC-GM.- Cromosoma 5, Estimula la p r o l i f e r a c i ó n y m a d u r a c i ó n d e progenitores neutrófilos y macrófagos. Aumenta l a l i be rac i ón de ác ido araquidónico.
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
FACTORES ESTIMULANTES DE COLONIAS
• Células maduras: – Estimulación de síntesis de membrana y
nucleoproteínas. – Aumenta la expresión de proteínas de adhesión. – Inhibe la migración de los neutrófilos. – Estimula la actividad citotóxica y fagocítica. – Aumenta la liberación de histamina. – Aumenta la producción de superóxido,
liberación de ácido araquidónico.
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
SERI
E M
IELO
IDE
WHO Classification of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid Tissues, 4TH; 2008
LINFOPOYESIS
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.
REGULACIÓN PROGENITOR LINFOIDE TEMPRANO (ELPs)
EARLY LYMPHOID PROGENITORS • IKAROS.
- Regulador maestro, factor de
Yoshida T, Ng SY, Zuniga-Pflucker JC, Georgopoulos K: Early hematopoietic lineage restrictions directed by
Ikaros. Nat Immunol 7:382, 2006
REGULACIÓN CÉLULA B
PAX5. – Expresión linaje B,
CD19 y CD79a
EBF. – Antagonista expresión genes C/
EBPα, Id2 y PU.1; induce
expresión PAX5
Pongubala JM, et al: Transcription factor EBF restricts alternative lineage options and promotes B cell
fate commitment independently of Pax5. Nat Immunol 9:203, 2008.
REGULACIÓN CÉLULA T
GATA3 • Factor de transcripción • HSC, CLPs y algunas células
no hematopoyéticas
NOTCH • Factor de transcripción hacia
linaje T, pero requiere otros factores
• Esencial para proliferación timocito temprano, pero NO selección β o TCRαβ
Taghon T, et al: Notch signaling is required for proliferation but not for differentiation at a well-defined
beta-selection checkpoint during human T-cell development. Blood 113:3254, 2009
PROGENITORES LINFOIDES
Lichtman MA et al. Williams Hematology, 8ed;
2011.