Institut für Parasitologie

Vetsuisse-Fakultät und Medizinische Fakultät

Jahresbericht / Annual report

2016 & 2017

Editor Peter Deplazes Layout Shianne De Marinis Titelbild Adultes männliches und weibliches Stadium von Angiostrongylus vasorum Illustration Manuela Schnyder, Michelle Ösch Fotos Institutsmitglieder, welche in den Projekten involviert sind

Jahresbericht / Annual report 2016 & 2017

Institut für Parasitologie* Vetsuisse-Fakultät und Medizinische Fakultät

Universität Zürich Winterthurerstrasse 266a

8057 Zürich

* Abkürzung: IPZ

Tel.: +41 (0)44/635 85 01

Fax: +41 (0)44/635 89 07

E-mail: parasito@vetparas.uzh.ch

URL: http://www.paras.uzh.ch

Inhaltsverzeichnis Zusammenfassung (Management Summary) ............................................................................ 1

1 Allgemeine Einschätzung ......................................................................................................... 2

2 Forschung/Research ................................................................................................................ 4

2.1 Gruppe ‚Zoonosen und translationelle Forschung‘ (Leitung Peter Deplazes) ............. 4

2.2 Gruppe ‚Veterinärparasitologie‘ (Leitung Manuela Schnyder) .................................. 14

2.3 Gruppe ‚Molekulare Parasitologie‘ (Leitung Adrian Hehl) ......................................... 21

2.4 Gruppe ‚Vektor Entomologie‘ (Leitung Alexander Mathis)........................................ 27

2.5 Gruppe ‚Nematode-host interactions‘ (SNF-Ambizione program) (Leitung Lucienne Tritten) ....................................................................................................................... 30

2.7 Publikationen .............................................................................................................. 31

2.8 Wissenschaftliche Vorträge an Kongressen und Tagungen ....................................... 39

3 Lehre ...................................................................................................................................... 45

4 Nachwuchsförderung ............................................................................................................ 49

5 Genderneutrale und familienfreundliche Förderung ........................................................... 52

6 Dienstleistungen .................................................................................................................... 53

7 Aussenbeziehungen .............................................................................................................. 59

8 Preise, Auszeichnungen und Stipendien ............................................................................... 67

9 Drittmittel .............................................................................................................................. 68

10 Organigramm....................................................................................................................... 71

11 Personal Stand 31.12.2017 .................................................................................................. 72

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Zusammenfassung (Management Summary)

The Institute of Parasitology (IPZ) belongs to both the Vetsuisse and the Medical Faculty of the University of Zurich. It is the only institution in the greater Zurich area that addresses the discipline of parasitology in both research and teaching. Teaching is provided for the Vetsuisse Faculty, the Faculty of Medicine and the Science Faculty and requires a broad spectrum of expert knowledge in the field. The established ‘One Health’ concept and the implementation of diverse scientific programmes, which range from translational research to basic biology and biomedicine, were continued in 2016 and 2017. The four independent research groups ‘Parasitic Zoonoses and Translational Research’ (head Peter Deplazes), ‘Molecular Parasitology’ (head Adrian Hehl), ‘Vector Entomology’ (head Alexander Mathis) and ‘Veterinary Parasitology’ (head Manuela Schnyder) and the SNF-funded Ambizione group ‘Nematode-host interactions’ (head Lucienne Tritten) are well connected and generated substantial extramural research funding.

Highlights in the reporting years:

In 2016, altogether 36 reviewed scientific articles were published in a variety of journals, including high ranking ones such as PLOS Pathogens and Nature Communications. Adrian Hehl achieved a renewal of his SNF-Project. The Vector Entomology group (Eva Veronesi) secured funding in two Horizon 2020 projects (InfraVec2, ZikAlliance). A major achievment in 2016 was the revision and English translation of our veterinary parasitology textbook “Lehrbuch der Parasitologie für die Tiermedizin” which was published by Wageningen Academic Publishers with the title “Parasitology in Veterinary Medicine”, with three authors and editors from the IPZ.

In 2017, altogether 45 reviewed scientific articles were published, including reviews in Trends in Parasitology and Advances in Parasitology. Cornelia Silaghi (Vector Entomology group) was appointed as Professor (University of Greifswald) and head of the Institute of Infectology at the Friedrich-Loeffler-Institute (Insel Riems, Germany). Lucienne Tritten (Veterinary Parasitology group) received an Ambizione SNF-grant and formed an independent research group end of 2017. Peter Deplazes received the “World Association of Veterinary Parasitology Award for Excellence in Research”. Furthermore, a new SNF-Project in collaboration with Paul Torgerson, Vetsuisse Faculty, and Beat Müllhaupt, University Hospital Zürich, was started.

Sasa Stefanic (Parasitic Zoonoses and Translational Research group) established 2016 the ‘University Nanobody Service Facility’ which provides a technology platform and know-how in production and selection of highly specific single-domain antibody fragments to the Life Science Community. Carmen Faso (Molecular Parasitology group) completed her Teaching Skills Certificate from the Centre for Higher Teaching and Learning and was selected as the coordinator of the introductory week of the Microbiology and Immunology Program of the Life Sciences Zurich Graduate School. Ramon Eichenberger received the EVPC diplomate status in 2017.

Teaching activities by members of the Institute reached veterinary, medical and biology students at all levels. In addition, the IPZ is involved in postgraduate and residence teaching and offers a residence training program for the European Veterinary Parasitology College (EVPC) in which 2-4 residents are involved. Furthermore, the IPZ organized in 2016 a residence and diplomate training program (VIPs in Zurich, ‘Very Important Parasites in Zurich’ – from fundamental to applied research) for the European Veterinary Parasitology College. This event will be offered every second year.

Diagnostic services provided by the IPZ in medical and veterinary parasitology are a key source of expertise for training of residents of EVPC and FMH for laboratory medicine and they provide valuable information for teaching and research. The number of diagnostic tests performed in 2016 and 2017 was in the range of the last few years (around 35‘900 tests performed in 2016 and 36’345 tests in 2017) and resulted in the highest ever total revenue of around CHF 1.05 million.

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1 Allgemeine Einschätzung

Das IPZ ist die einzige Institution im Grossraum Zürich, die das Fach Parasitologie in Forschung und Lehre vertritt, und das Institut ist in diesen Bereichen mit der Medizinischen und der Mathematisch-Naturwissenschaftlichen Fakultät sowie der ETH Zürich vernetzt. Das breite Lehrangebot für die Vetsuisse-, Medizinische und Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät der Universität Zürich setzt eine breit gefächerte Kompetenz im Fachbereich voraus. Das etablierte 'One Health'-Konzept und die Bearbeitung von Projekten sowohl aus der Grundlagen- als auch der translationellen Forschung haben sich bewährt. Die kontinuierlichen Strukturanpassungen, welche von der Fakultätsleitung effizient unterstützt wurden und welche vor allem dank dem überdurchschnittlichen Einsatz der motivierten Mitarbeitenden möglich waren, stärkten besonders die Forschung. Vier dynamische Forschungsbereiche (‚Zoonosen und translationelle Forschung‘, Leitung Prof. Peter Deplazes; ‚Molekulare Parasitologie‘, Leitung Prof. Adrian Hehl; ‚Vektor Entomologie‘, Leitung Prof. Alexander Mathis; ‚Veterinärparasitologie‘, Leitung PD Dr. Manuela Schnyder) und die neue Ambizione-Gruppe ‚Nematode-host interactions‘, Leitung Dr. Lucienne Tritten, arbeiten selbständig, aber untereinander vernetzt.

Das Gebiet der Parasitologie soll weiterhin in Forschung, Lehre und Dienstleistung breit und kompetent vertreten sein. Priorität hat die Nachwuchsförderung, besonders in der Veterinärparasitologie. Der Frauenanteil der Forschenden und Lehrenden soll, in Übereinstimmung mit dem hohen Anteil an Studentinnen, kontinuierlich vergrössert werden.

Molekulare Parasitologie (A. Hehl): In der Protozoen-Forschung werden zusätzlich zur Fortsetzung der Grundlagenforschung in Zellbiologie von Diplomonaden (laufendes SNF Projekt) nationale und internationale Kollaborationen in der post-genomics Forschung über Wirt-Parasit Interaktion bei Toxoplasma und Besnoitia koordiniert. Ein weiteres großes Projekt im Bereich der Erforschung der chronischen Toxoplasmose wird vom SNF unterstützt (Sinergia). Diese Forschungslinie soll im Rahmen von nationalen Kollaborationen mit neuen Mitteln weitergeführt werden. Diese interdisziplinären Projekte stärken die Forschung am Institut auch dank der engen Zusammenarbeit mit anderen Gruppen (z.B. Vakzineforschung, Gruppe Deplazes). Die Gruppe ist an der Entwicklung diverser Online-Plattformen (z.B. EuPathDB) beteiligt.

Zoonosen und translationelle Forschung (P. Deplazes): Ein neuer Schwerpunkt in Zusammenarbeit mit der Gruppe Hehl und Nick Smith (Western Sydney University) ist die Entwicklung einer Impfung zur Verhinderung der Ausscheidung von Oozysten von Toxoplasma gondii bei Katzen (Finanzierung: KTI und Australian Research Council). In den kommenden Jahren sind in diesem Projekt wichtige Versuche geplant als Grundlage eines neuen grossen KTI-Projektes. Im Bereich der Echinococcose werden für die nächsten Jahre zahlreiche Kollaborationen mit epidemiologischen Projekten in Kirgistan, Litauen, und Bhutan unterhalten. Zudem wurden experimentelle Studien im Bereich der Echinococcus-Invasion vorangetrieben. Besonders die Situation in Kirgistan wird in einem neuen SNF-Projekt in Zusammenarbeit mit Paul Torgerson und Beat Müllhaupt (Universitätsspital) durchgeführt, welches von grosser Bedeutung für die Früherkennung und Bekämpfung der Alveloären Echinococcose ist. In der translationellen Forschung werden zum Teil mit Industrie-Unterstützung diagnostische Testverfahren entwickelt.

Veterinärparasitologie (M. Schnyder): Im Kleintierbereich sind die Forschungs-Schwerpunkte die canine Angiostrongylose (Epidemiologie und Pathophysiologie der letal verlaufenden Koagulopathie; Forschungskredit, Albert-Heim-Stiftung, Stiftung der Privatdozierenden) und Nematodeninfektionen der Katzen (Industrie-Finanzierung). Die neu formierte Gruppe ist gut vernetzt und weitere, klinisch relevante Projekte sowohl im Kleintier- als auch im Nutztierbereich sind geplant.

Vektor Entomologie (A. Mathis): Die aktuellen Forschungsthemen decken die meisten der relevanten aktuellen anwendungsorientierten Aspekte im Gebiet ab (Vektorkapazität, Biologie als Grundlage zur Bekämpfung, Etablierung effizienter molekularer Identifizierungsmethoden) und die Gruppe wird diesbezüglich substantiell durch das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und

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Veterinärwesen (BLV) unterstützt. Die Forschung soll durch ein Grundlagenprojekt mit anderweitiger Finanzierung erweitert werden. Wünschenswert wäre eine Verbesserung der räumlichen Situation der Arbeitsgruppe (beengende Verhältnisse, Arbeitsplätze in 4 Gebäuden).

Lehre/Weiterbildung: Die Lehre am IPZ ist breit abgestützt (10 Mitarbeitende haben Lehraufträge) für Vorlesungen und Praktika. Im geplanten verlängerten Vetsuisse-Curriculum sollten insbesondere Praktika neu etabliert werden. Neue bereitgestellte Lernformen wie E-Learning-Programme für Parasitendiagnostik, sowie die von M. Schnyder geleiteten Projekte: Lernprogramm CASUS® für Fallbearbeitungen und weitere e-Learning-Werkzeuge für die Steigerung der Interaktivität in der Lehre sollen in Zukunft die Lehre fördern.

Dienstleistung und Diagnostik: Die Kapazität des Diagnostikzentrums Parasitologie (DZP) hat mit dem gestiegenen Auftragsvolumen ihre Grenze erreicht. Im kommenden Jahr wird ein neuer Ansatz der molekularen Diagnostik zur Ergänzung und längerfristig zum Ersatz einzelner Untersuchungen der klassischen mikroskopischen Koprologie geprüft. Die Implementierung dieser neuen Entwicklung ist für die nächsten Jahre geplant. Um eine hoch stehende klinische Forschung am Universitätsspital und am Tierspital zu gewährleisten, sollen die ausgezeichnete Qualität und das weite Spektrum der Diagnostik erhalten bleiben.

Bauliche Entwicklung: Die tierexperimentellen Einrichtungen am Strickhof (Irchelareal), inklusive Alpaka-Haltung, sind für die Forschung am Institut essentiell. Erfreulicherweise konnten die Arbeiten für mückensichere Boxen in der Station am Stiegenhof vorangetrieben werden, sodass verschiedene Gruppen für die Schweiz einzigartige Versuche mit mückenübertragbaren Erregern planen können. Das Gebäude des IPZ (altes Provisorium) erfüllt trotz kontinuierlichen Renovationen und grossem Einsatz des technischen Dienstes unserer Fakultät nur knapp seine Funktion. Enge Platzverhältnisse und zunehmende bauliche Mängel (Heizung, Isolation, Wasserschäden, Pilzbefall) sprechen für eine sehr dringliche Planung und mittelfristige räumliche Veränderung. Die Planung eines Neubaus wurde in den letzten 20 Jahren bis in die neueste Zeit in der Prioritätsliste der Fakultät kontinuierlich nach hinten verschoben!

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2 Forschung/Research

In den letzten beiden Jahren wurden wiederum beachtliche Anteile von Drittmitteln in der Höhe von 2016 CHF 1‘762’000 und 2017 CHF 1‘791‘00 für die Forschung am IPZ eingesetzt. Gesamthaft erschienen 81 rezensierte Publikationen in einer breiten Palette von Fachzeitschriften. In den Berichtsjahren wurden 3 veterinärmedizinische Dissertationen, 1 naturwissenschaftliche Dissertation (PhD) und 11 Masterarbeiten abgeschlossen. An anderen Universitäten wurde Cornelia Silaghi zur Professorin und Maria T. Armua zur Assistenzprofessorin berufen.

2.1 Gruppe ‚Zoonosen und translationelle Forschung‘ (Leitung Peter Deplazes)

Im Bereich ‚One Health‘ sind gute Zusammenarbeiten in Litauen, Bhutan und Kirgistan etabliert. Diese Projekte werden in den kommenden Jahren abgeschlossen. In einer aufwändigen internationalen Zusammenarbeit fungierte Peter Deplazes als Ko-Editor zweier Bände der angesehenen Zeitschrift ‚Advances in Parasitology‘, die Übersichtsarbeiten aus führenden Gruppen im Gebiete der Echinococcose beinhaltet. Im Gebiet der Protozoen wurden in den letzten Jahren Tiermodelle aufgebaut, die die Isolation der wichtigen intestinalen Parasiten-Stadien für Transkriptom-Analysen in den Gebieten der Babesiose, Toxoplasmose und Cryptosporidiose ermöglichten (enge Zusammenarbeit mit Gruppe Hehl).

Surveillance of alveolar echinococcosis and control of Echinococcus multilocularis in Switzerland (2000-2017) In the 1990s, Swiss fox population densities strongly increased and foxes started to colonise urban areas. This phenomenon can be explained by multi- faceted human–wildlife interactions: vaccination against rabies (main cause of fox mortality), elimination of top predators, and changing attitude towards wildlife (feeding, taming) contributed to the development of high fox densities in and around cities (Hegglin et al. 2015). The IPZ investigated parasitological and epidemiological consequences of this development in the framework of a long-term interdisciplinary project

(Integrated Fox Project IFP) and demonstrated that E. multilocularis is present in urban habitats and highly prevalent in urban peripheries. In these transition zones, high urban fox densities, which are sustain by rich anthropogenic food resources, overlap with the habitat of the most susceptible intermediate hosts Arvicola scherman and Microtus arvalis that live on meadows and pastures (reviewed Deplazes et al. 2004, Trends Parasitol., Hegglin et al. 2007, Func. Ecology). Climatic conditions that adversely affect the survival of E. multilocularis eggs and the lack of suitable intermediate hosts are thought to be the primary causes limiting the parasite distribution. In the Canton Grisons, local prevalences in foxes varied significantly between 0 and 40% and correlated with the predation rate on voles by foxes. Our results suggest that the life cycle of E. multilocularis in the Alps is confined to small scale hot spots which can persist for decades. This has been

shown in the Canton Ticino, where the parasite has been regularly confirmed in the North of the Canton and did not spread further south during more the 20 years. The endemic area corresponded well with the distribution of the vole Microtus arvalis but not with the distributions of five other vole species (Guerra et al., 2015, Parasitology). A comparative study in a high endemic region in Zurich confirmed the key role of this intermediate host. Among four frequent and widespread vole species M. arvalis was the species with the highest prevalence and the highest portion of fertile infections (Beerli et al. 2017, Front. Vet. Science). Prevalence and fertility in the water vole A. scherman were lower, but this species was predated with a similar high frequency by foxes as M. arvalis. We therefore postulate that models on the

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distribution and abundance of M. arvalis and A. scherman, could allow predicting parasite occurrence on a more detailed spatial scale than distribution models for foxes which have a very broad and much more uniform distribution than vole species. A retrospective study on the incidence of human alveolar echinococcosis (AE) in Switzerland demonstrated an2.6-fold increase within 20 years in the wake of the general increase and urbanisation of foxes (Schweiger et al., 2007, EID). On the other hand, survival analysis revealed a strongly improved prognosis for AE patients over the last 30 years: Mean life expectancy of patients was reduced by around 20 years in 1970ies and roughly three years at the beginning of 2000s (Torgerson et al., 2008, J. Hepatol.). The better survival and the higher incidence caused a steady increase of the prevalence causing an annual burden of disease of approximately 77.6 DALYs and yearly costs per patient approximately €108,762 per patient. In experimental field studies, the feasibility of E. multilocularis control was tested in urban peripheries. The monthly delivery of Praziquantel-containing baits reduced the parasite egg contamination of defined small urban patches to a very low level (Hegglin and Deplazes, 2008, EID). However, eradication of the parasite is unlikely and long-term baiting campaigns are actually the most effective tool to significantly lower the infection pressure with parasite eggs. Regarding the long latency of 5-15 years of AE, such measures can only be cost effective if they are pursued for several decades and concentrate on restricted areas which are most relevant for the transmission of AE such as highly endemic areas in densely populated zones (Hegglin and Deplazes, 2013, Int. J. Parasitol.). Considering the high reproduction of E. multilocularis in domestic dogs which live in close contact to humans, a monthly deworming scheme for domestic dogs with access to rodents is likely to be of high importance. This holds true if only low prevalences in domestic dogs are recorded, as high densities of these pets can easily outweigh low infections rates. Thus, in Central Europe their estimated contribution to environmental contamination with E. multilocularis eggs ranges between 4% and 19% (Hegglin and Deplazes, 2013). Institute members: Daniel Hegglin, Maria Teresa Armua-Fernandez, Diogo Ribeiro Almeida Guerra,

Olivia Beerli, Peter Deplazes (Project Leader) Funding sources: Foundation, Federal Veterinary Office, Grün Stadt Zürich, Stiftung Echinococcose;

EU-Project EMIDA (Emerging and Major Infectious Diseases of Livestock) In collaboration with: PD Dr. Beat Müllhaupt, Klinik für Gastroenterologie und Hepatologie,

Universitätsspital Zürich, Switzerland; Dr. S. Gloor and Dr. F. Bontadina, SWILD, Urban Ecology and Wildlife Research, Zurich, Switzerland; Prof. Paul R. Torgerson, Veterinärepidemiologie, VetsuisseFaculty, University of Zürich, Switzerland.

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Inate immunity against Echinococcus multilocularis oncosphere invasion in naturally resistant rats Investigations into the role of the immune system in resistance to E. multilocularis has been largely limited to studies of the metacestode stage of infection, for which it is known that parasite-specific humoral and cell-mediated immune responses are both progressively established. However, no studies investigating the immune parameters and factors involved in susceptibility or resistance to E. multilocularis oncosphere invasion have been carried out until our recent work on Rattus norvegicus, a host for which natural AE cases are rarely described. Our experiments first compared the susceptibility of immunocompetent Wistar rats to oral infection with eggs or oncospheres and intraperitoneal infection with oncospheres or metacestode material. Immunocompetent rats were totally resistant to oral infection, whereas they were susceptible to experimental intraperitoneal infection which led to metacestode development. This suggests that resistance of rats to oncosphere invasion after oral infection involves different mechanisms to those that control the development of AE. Our subsequent experiments included animals with an altered immunological status, such as congenital T-cell deficient nude or pharmacologically immunosuppressed Wistar rats. These experiments revealed that the absence of an adaptive (T-cell) immune response is not the source of resistance against oncosphere invasion in rats, while treatment with dexamethasone (DXM) led to establishment of the parasite in the liver. This led to our hypothesis that primarily innate immune mechanisms, provided by e.g., granulocytes, NK-cells and macrophages, are involved in the host defense against E. multilocularis-oncosphere invasion. This hypothesis could be confirmed in our recent animal experiments in which immunocompetent rats were depleted from the mentioned innate immune cell populations, either singly or in combination. Granulocyte depletion induced by polyclonal antibodies resulted in successful intestinal oncosphere invasion with subsequent metacestode development in the livers of rats. This newly developed rat model is a substantial improvement for future infection experiments with oral inoculation of eggs to study AE in rats.

Multiple E. multilocularis metacestode development in granulocyte-depleted rats, 10 weeks after oral egg inoculation.

Institute members: Deborah Joekel, Maria Teresa Armua-Fernandez, Philipp

A. Kronenberg, Peter Deplazes (Project Leader)

Funding sources: Forschungskredit der Universität Zürich

In collaboration with: Bernard Vanhove and Salomé LeibundGut-Landmann, Section of Immunology,

Institute of Virology, University of Zurich

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Test development for the isolation of Echinococcus eggs from environmental and food sources and assessment of egg viability Echinococcus spp. are transmitted to intermediate hosts and also to humans through the ingestion of viable eggs released to the environment in canid (mainly fox and dog) faeces. Echinococcus multilocularis causes alveolar echinococcosis (AE), E. granulosus is responsible for cystic echinococcosis (CE), both zoonoses with high burdens of diseases. While E. granulosus has a worldwide distribution, E. multilocularis is restricted to the Northern Hemisphere and is endemic in Switzerland. Recently, the incidence of AE has risen in Switzerland probably due to an increased infection pressure. Reasons for this emergence are the increase in populations of foxes and their presence in urban areas, leading to the urbanization of the parasite cycle. Further, also infected dogs could play an important role as a source of infection. Eggs of E. multilocularis and other taeniids can contaminate the environment and food sources facilitating the transmission to humans. However, the exact mechanisms by which humans acquire the infection remain unknown. Taeniid eggs are indistinguishable from each other at the microscopic examination. Therefore, the determination of species in a given sample must include a suitable molecular test (specific amplification of parasite DNA). Recent investigations performed at our Institute demonstrated the presence of taeniid eggs in vegetables used to feed primates at the Basel zoo. Some of the vegetables used in this study were purchased from local farmers in the Basel region while others originated from different southern European countries. Although E. multilocularis was not found in the vegetables studied, other taeniid parasites that use canids as definite hosts were identified, suggesting that some of the vegetables have been in contact with canid faeces (Federer et al. 2016, Int J Parasitol Parasites Wildl.). Although the scientific literature provides some evidence of the presence of taeniid eggs in vegetables used for human consumption in different countries, to date there is no standardized methodology to isolate taeniid eggs from vegetables (see Alvarez Rojas et al. 2018, Curr Clin Micro Rpt). The only validated test that allows the assessment of the viability of eggs has been developed by our group (Federer et al. 2015, Exp. Parasitol) and is based on egg inoculation of rodents (and therefore not suitable/practical for large epidemiological studies). This matter has been set as a priority for the European Food and Safety Agency (EFSA) aiming to identify key points in which food sources can be involved in the transmission of taeniid parasites to humans. Therefore, in the ongoing project, we would like to optimize the isolation of taeniid eggs from food sources aiming to establish a standardized protocol that could be used to routinely assess the presence of taeniid eggs in food sources destined to human consumption. Secondly, we would also like to develop experimental animal-free methods to confirm the viability of taeniid eggs isolated from food sources and the environment. Institute members: Cristian Alvarez Rojas (postdoc and EVPC resident), Francesca Gori, Peter

Deplazes (Project Leader),

Funding sources: partially funded by Basel zoo.

In collaboration with Dr. med. vet. Karin Federer (Walterzoo, Gossau, Switzerland), Dr. Christian Wenker (Basel zoo, Switzerland).

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Figure 1: All eggs in this figure were isolated from Echinococcus multilocularis and illustrate the typical features of a taeniid eggs. A and B showing mature eggs with a thick embryophore, clearly visible oncosphere and pairs of hooks in parallel alignment; these microscopic features suggest that viability of these eggs. C Oncosphere released from a viable egg after treatment with 2% sodium hypochlorite for 2 min. D Non-viable egg stored for 2 years at 4 °C in physiological saline solution showing unparalleled hooks. E and F Immature eggs showing a thin embryophore and no oncosphere; E was stored for 8 months in saline solution at 4 °C and F was freshly removed from an adult specimen of E. multilocularis from a fox. From Alvarez Rojas et al, 2018.

Whole genome sequencing, proteome analysis and diagnostic test development for canine babesiosis Canine babesiosis is caused by an apicomplexan parasite of the genus Babesia which is transmitted by ticks. Babesiosis is characterised by an intraerythrocytic parasitism which leads to severe clinical signs and often cause death if left untreated. Canine babesiosis is considered as an emerging vector-borne disease, as numerous cases have been reported in new areas throughout Europe, including focal regions in Switzerland (Eichenberger et al., 2015, Ticks Tick Borne Dis.). Currently, host-parasite interactions of this parasite are poorly understood. Hence, a significant improvement of our knowledge about the molecular details of the pathophysiology is required as a prerequisite for new intervention approaches. An early diagnosis of canine babesiosis increases the chance of survival. Correspondingly, a poor outcome in acute B. canis infection is indicated by changes in the laboratory profile (Eichenberger et al., 2015, J Vet Intern Med.). In practice, diagnosis of canine babesiosis is based on morphological and molecular appearance of the parasite. Aim of this project was the establishment of alternative diagnostic test assays using specific monoclonal antibodies against infected erythrocyte (iEc) membrane-associated parasite proteins or circulating parasite antigens. In this project we could confirm the potential of detecting circulating Babesia-antigens in the blood of infected dogs with a sandwich ELISA (Eichenberger et al., 2017, Vet Parasitol.). This test will be further developed for the use in epidemiological investigations and for the establishment of a rapid diagnostic assay for use in the practice. Another aim of the project was to identify and analyse the secreted B. canis proteome which affects iEc biology and host immunology. A prerequisite was the establishment of in vivo and in vitro models for canine babesiosis. This study leads to a model for the acute babesiosis in order to explore proteomic parasite-host interactions and improve diagnostics. We combined high-throughput approaches with a detailed characterization of these parasite determinants and their interactions with host receptors. As a backdrop, we generated a fully annotated B. canis genome sequence of a virulent field isolate underpinned by extensive genome-wide RNA-seq analysis. In silico analysis of the 3467 annotated gene models identified 509 potential secreted parasite proteins. By a shotgun proteomics approach of excretory/secretory parasite fractions we found evidence for conserved factors in apicomplexan hemoparasites involved in immune evasion (e.g. VESA-protein family),

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proteins secreted across the iEc membrane into the host bloodstream (e.g. SA- and Bc28 protein families), potential moonlighting proteins (e.g. profilin and histones), and uncharacterized antigens present during acute crisis in dogs (Eichenberger et al., 2017, Sci Rep.). This data contribute decisively to build an accurate model for parasite-host interaction which can be exploited for innovative intervention strategies aimed at facilitating diagnosis and management of canine babesiosis.

Stained preparation of dog erythrocytes containing

intracellular Babesia canis merozoites from a dog with severe

shock-like clinical signs (parasitemia of 1.5% infected

erythrocytes). The genome, transcriptome and proteome of

these morphologically pleiomorphic parasite stages were

further analysed.

Comparison of the assembled

Babesia canis genome to related

Babesia species based on synteny

(conserved genes). Despite

significant species-specific

features, analysis of orthologues

revealed a close relationship of B.

canis to B. bovis (based on a

considerable degree of synteny)

compared to the genome of the

rodent B. microti.

Institute members: Ramon Eichenberger* (PhD student), Saša Štefanid, Adrian Hehl*, Peter

Deplazes* (*Project Leaders)

Funding sources: Forschungskredit der Universität Zürich

In collaboration with: Functional Genomics Center Zurich (FGCZ), Switzerland; Alicia Rojas,

Departamento de Parasitologia, Centro de Investigación Enfermedades Tropicales, Universidad de

Costa Rica, Costa Rica; Torsten J. Naucke, Department of Zoology, Division of Parasitology,

University of Hohenheim, Germany.

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Epidemiology of echinococcosis in Kyrgyzstan

Gulcha, Alay valley, Kyrgyzstan Foto Philipp Kronenberg

Alveolar echinococcosis (AE) is among the most lethal parasitic diseases if left untreated. AE is considered to be confined to the Northern hemisphere with an estimate of 18,000 new cases occurring globally every year. Overall, AE results in approximately 666,000 DALYs per year. The disease is caused by the fox tapeworm, Echinococcus multilocularis. AE is an emerging disease in many European countries including Switzerland (Deplazes et al., 2017, Adv. Parasitol.). Outside of Europe there is a hotspot for AE in central Asia with a focus in Kyrgyzstan (Bebezov et al., 2018, Emerg. Inf. Dis.). After the dissolution of the Soviet Union in 1992, Kyrgyzstan faced an emergence of AE but also of cystic echinococcosis caused by E. granulosus. Echinococcus multilocularis has a complex lifecycle with carnivores (mostly foxes and dogs) playing an important role in the transmission of the parasite.

Our Institute is involved since years in epidemiological investigations, education and technology transfer to improve the scientific environment in several Kyrgyz laboratories. Results of these studies documented high prevalences of E. multilocularis in dogs (Ziadinov et al., 2008, Int J Parasitol.), foxes Ziadinov et al., 2010, Vet Parasitol.), and humans. The local prevalence of AE in a study that started 2012 was 4.1%, based on PCR, serology and ultrasound results (Bebezov et al., 2018).

At present, a treatment study with several hundred AE patients in Kyrgyzstan is ongoing as collaboration between our Institute, the section of Epidemiology at the Vetsuisse Faculty Zurich, the University Hospital Zurich, and the Department of Disease Prevention and Sanitary - Epidemiological Surveillance, Ministry of Health of the Kyrgyz Republic, The Kyrgyz National Veterinary Research Institute. A further SNF-project (‘Transmission modelling of emergent echinococcosis in Kyrgyzstan’’, focuses on the environmental contamination with E. multilocularis eggs, geographic distribution of the cases and risk factor analyses. Furthermore, a PhD at the Graduate School for Cellular and Biomedical Sciences (GCB) of the Universities of Bern and Zurich is planned with the aim to develop and validate strategies for early AE diagnosis. The project is focussed on the detection of specific antibodies against recombinant and affinity-purified native antigens and the detection of circulating E. multilocularis antigens (using monoclonal antibodies and nanobodies), the development of reliable tests for laboratories with restricted infrastructure, and a fast-test applicable in the field in parallel to

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ultrasound studies. Altogether, this project should help to improve the serological diagnosis of early AE cases and contribute to the improvement of laboratory methods in the country. Institute members: Philipp Kronenberg (doctoral student), Felix Grimm, Saša Štefanid, Cristian

Alvarez, Peter Deplazes (Project Leader)

Funding sources: WHO: drugs for human AE; SNF Project: No. 173131 – ‘’Transmission modelling of emergent echinococcosis in Kyrgyzstan’,, main applicant Paul Torgerson, co-applicants Peter Deplazes and P Beat Müllhaupt).

In collaboration with: Prof. Paul R. Torgerson, Head of the Epidemiology Department at the Vetsuisse Faculty in Zurich; PD Dr. Beat Müllhaupt, Head of Hepatology in the division of Gastroenterology and Hepatology at the University Hospital of Zurich; Dr. Giulia Paternoster, PhD student, Epidemiology Department at the Vetsuisse Faculty in Zurich; Dr. Gulnara Minbaeva and Dr. Jumagul Usibaeva, MD’s, Department of Disease Prevention and Sanitary - Epidemiological Surveillance, Ministry of Health of the Kyrgyz Republic; Dr. Elimira Akmatova and Kuban Abdykerimov, Veterinarian, Kyrgyz National Veterinary Research Institute in Bishkek Kyrgyzstan.

Generation of nanobodies for functional and structural studies at the Nanobody Service Facility http://www.nsf.uzh.ch/en.html About half of the total antibody population in members of the Camelidae family (bactrian and dromedarian camel, llama, alpaca, vicugna, guanaco) consists of immunoglobulins that are missing CH1 regions of the heavy chains and as a result cannot pair with light chains. They are called single domain heavy chain-only antibodies (hcAbs). These monospecific antibodies are ideally suited for construction of antibody libraries since they enable us to produce the antigen-binding domain of a heavy chain, using the genetic information obtained from immune cells. Large libraries of such antigen binding fragments, called VHH or nanobodies, can be engineered in phage or yeast display systems. These small fragments (~13 kDa) are fully functional entities that can recognize and bind their cognitive antigens with the same affinity as the much bigger conventional antibodies (~150 kDa). Due to their intrinsic properties like small size, increased solubility, excellent stability, ease and low cost of large-scale production, the camelid antibodies have become a promising tool in a range of applications that deal with diverse aspects of cell biology, diagnostics and therapy. Their large therapeutic potential was recognized for the treatment of cancer, viral and parasitic diseases, and as neutralizing toxins. In basic research, they are used for targeting of antigens in live cells and tissues, as specific inhibitors, a tool in pull-down experiments, and protein crystallization chaperones, to mention just a few. Since 2012 we established the production of nanobodies at our institute, which in 2016 became one of the University of Zurich Technology Platforms that serves the scientific community in the region (http://www.nsf.uzh.ch/en.html). Research groups from both Zurich’s universities, UZH and ETH, and as well from other big research centres, like the Paul Scherrer Institute, use the nanobody technology to select specific binders for membrane proteins of medical relevance. Towards this end we are collaborating with the research groups of Prof. Raimund Dutzler and Prof. Markus Seeger (both UZH), Prof. Kaspar Locher (ETH), Prof. Eric R. Geertsma (Goethe-University Frankfurt), Dr. Volodymyr Korkhov and Dr. Jörg Standfuss (both PSI), who investigate structure and function of a variety of

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membrane proteins that catalyse important cellular transport reactions. The identification of high-affinity binders against purified membrane proteins provides important tools that aid the crystallization and structure determination of these important targets and facilitate the elucidation of transport mechanisms. Due to their high specificity and sutability for oral applications, nanobodies have great potential in diagnosis and therapy. At our institute we are developing nanobodies for different projects that deal with parasite biology (Toxoplasma gondii and Giardia lamblia projects), and identification of novel diagnostic and therapeutic targets for the control of parasitic zoonoses (Echinococcus multilocularis project). We hypothesise that the nanobodies can serve as ligands that can recognize and interfere with function of parasite molecules essential for the establishment and maintenance of parasitism. Because of their small size and long protruding variable loop, nanobodies may readily access receptor clefts and thus inhibit the target molecules, a task that is challenging to achieve with conventional antibodies. During the past 6 years’ time we identified diverse high-affinity nanobodies that are currently being used as functional tools in basic research, and many nanobodies were selected which greatly improved the quality of protein crystals. In several cases the identified nanobody helped determining the 3D structure of its membrane protein target. Part of this work was published in highly impacted journals and other manuscripts are in preparation. Institute members: Saša Štefanid, (NSF manager and project leader), Hans-Peter Müller (animal

caretaker), Peter Deplazes (NSF Director) Funding sources: The Nanobody Service Facility was supported by the Faculty of Sciences and the

Vetsuisse Faculty of the University of Zurich, and by service fees.

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Development of a multivalent recombinant vaccine against Toxoplasma gondii in cats Toxoplasma gondii causes severe human diseases ranging from encephalitis to congenital neurological defects, and is a major cause of zoonotic diseases worldwide. Around a third of the Swiss and the world’s population is chronically infected with this parasite. Although toxoplasmosis causes mild or no symptoms in many individuals, the infection is potentially lethal for immunocompromised patients and unborn children. A few therapies are available to control acute toxoplasmosis but it is currently impossible to medically eradicate the parasite and cure chronic infections. During a chronic infection T. gondii persists in the body as dormant tissue cyst but is capable of reactivation, thus causing a recurrence of the acute disease. Toxoplasma gondii infects virtually all warm-blooded animals and causes considerable economical losses to the livestock sector. For example, toxoplasmosis is an important cause of abortion in sheep, and the economic damage estimated in 1996 in the UK was £18 million. All in all, an effective vaccine against T. gondii would be of great benefit for the society. Infection with T. gondii occurs either by ingesting oocysts that contaminate soil, water, fruit and vegetables, or by eating cysts in undercooked meat of infected livestock. Importantly, felids are the only definitive host of this parasite, and every human infection results directly or indirectly from cats shedding fertile oocysts into the environment. Blocking oocyst shedding into the environment is therefore crucial to prevent infections. The estimated number of cats in Switzerland is 1.5 million, of which around 50% are freely roaming and therefore continuously exposed to intermediate hosts of T. gondii (i.e. rodents and birds). At any moment, around 1% of cats are shedding up to 55 million T. gondii oocysts per day, and the oocysts survive in the environment for several months. Notably, most cats are domestic and regularly visited by a veterinarian, indicating the feasibility of a systematic vaccination program for young cats. The goal of our project is to develop a vaccine to prevent oocyst formation and shedding in cats. We aim at targeting several stages of the T. gondii life cycle with a multivalent vaccine based on recombinant proteins. A transcriptomic profiling of various T. gondii life cycle stages conducted at our Institute in collaboration with the ‘Molecular Parasitology Group’ highlighted important players that are upregulated during infection in cats (Hehl at al., 2015, BMC Genomics). We are currently establishing the production of selected vaccine candidates in both bacterial and yeast protein expression systems and in the near future we will evaluate the immunogenic potential of the recombinant proteins. Institute members: Peter Deplazes (Project Co-leader), Adrian Hehl (Project Co-leader), Stefania

Geiger, Saša Štefanid, Simone Meier.

Funding sources: KTI Project: 18485.1 PFLS-LS – ‘The Path to a Transmission-Blocking Vaccine for cats against Toxoplasma gondii: A feasibility Study Using Stage-specific Recombinant Proteins’ and National Health and Medical Research Council (Australia; APP1128911, main applicant Nick Smith).

In collaboration with: Prof. Nick Smith (Project Co-leader), Dr. Cibelly Goulart and Dr. Erik Tjhin, Research School of Biology, Australian National University, Canberra, Australia.

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2.2 Gruppe ‚Veterinärparasitologie‘ (Leitung Manuela Schnyder)

Diese Gruppe hat sich im Verlaufe des Jahres 2015 konstituiert und befasst sich mit spezifischen veterinärparasitologischen Themen in den Bereichen Kleintiere, aber auch Zootiere, Pferde und Nutztiere. Forschungsschwerpunkte sind Lungenwürmer bei Hund und Katze, Magen-Darm-Parasitosen von Wiederkäuern und Pferden sowie Thematiken, welche sich aus aktuellen Fragestellungen im Austausch mit den anderen Forschungsgruppen sowie mit der Tierärzteschaft und den TierhalterInnen ergeben. Die vorhandenen Kompetenzen werden von diesen letzteren beiden Gruppierungen sehr häufig abgerufen und sind auch hier eng mit der diagnostischen Einheit des Institutes und mit den klinischen Abteilungen des Tierspital verflochten; Vernetzungen, welche eine forschungsgestützte und praxistaugliche Lehre ermöglichen.

Mit Lucienne Tritten wurden neue Kompetenzen in die Gruppe eingebracht, welche zur Erforschung von zugrundeliegenden Störungen bei caniner Angiostrongylose beitragen. Hierzu wurde ein gemeinsames Projekt mit der Abteilung für Anästhesiologie und mit der Inneren Medizin Kleintiere aufgebaut, um Daten aus klinischen Patienten zu generieren. Zugleich werden die durch Angiostrongylose hervorgerufenen Veränderungen im Wirtsblut mittels Proteomics untersucht und die vom Parasiten produzierten Substanzen erforscht, welche eine Rolle in der Pathogenese von Angiostrongylus vasorum spielen. In einem neu im 2017 gestarteten PhD-Projekt sollen die Wirts-spezifischen Unterschiede zwischen Hund und Fuchs und zwischen A. vasorum und einem weiteren wichtigen caninen kardiopumonalen Parasiten, Dirofilaria immitis, mittels Proteomics untersucht werden. Die Rolle von unterschiedlich exprimierten Proteinen lässt sich anhand eines experimentellen Koagulationsmodelles nachvollziehen. Diese Forschung wird durch universitäre Drittmittel (Forschungskredit) sowie Mittel von Stiftungen (PD-Stiftung, Albert-Heim-Stiftung) unterstützt.

Internationale Kollaborationen mit der Industrie und mit Forschungsinstitutionen unterstützen zudem europaweite epidemiologische Untersuchungen zu Lungenwürmern von Hunden und Katzen. So haben wir im Rahmen der Forschung zum Lungenwurm der Katze, Aelurostrongylus abstrusus, (Dissertation Eva-Maria Zottler, 2016-2017) einen serologischen Test zum Nachweis von Antikörpern etabliert und experimentelle Erfahrungen mit der Infektion von Zwischenwirten (Schnecken) gesammelt. Diese Arbeit war die Grundlage zur Erforschung der parasitologischen Situation von Katzen in der Schweiz, welche bisher unbekannt war. Die vertiefte Analyse serologischer Daten zu A. abstrusus aus der Schweiz (Dissertation Emily Güldner, laufend) wird zur Identifizierung von Risikofaktoren für Aelurostrongylus-Infektionen führen, welche veterinärmedizinisch von Bedeutung sein werden. Zukünftige Zusammenarbeiten mit weiteren europäischen Ländern, u.a. mit Italien, Portugal u. Schweden, sollen der epidemiologischen Aufklärung dienen.

Im Berichtsjahr 2017 wurde durch die Zusammenarbeit zwischen der Veterinärparasitologie Gruppe, der Vektor-Entomologie Gruppe (Alexander Mathis) und der mit Beteiligung der Abteilung für Anästhesiologie (PD Dr. Annette Kutter) und derjenigen für Bildgebung (Dr. Mathias Dennler) des Tierspitals ein durch die Industrie finanziertes Projekt zum Hautwurm Dirofilaria repens gestartet. Vorgängige Arbeiten unter der Leitung von Peter Deplazes zum serologischen Nachweis von Antikörpern gegen Filarien beim Hund werden das Projekt ergänzend unterstützen. Durch die lange Präpatenzzeit des Parasiten werden erste Resultate im Frühjahr 2018 erwartet.

ESCCAP (European Scientific Counsel Companion Animal Parasites) ist eine europäische Organisation, an welcher das Institut mit Peter Deplazes seit seiner Gründung beteiligt ist. Manuela Schnyder agiert seit 2013 als Präsidentin von ESCCAP Schweiz und hat gemeinsam mit Peter Deplazes, Walter Basso (IPZ), Prof. Bruno Gottstein (IPB) in Zusammenarbeit mit der Präsidenz der Schweizerischen Vereinigung für Kleintiere (SVK, aktuell Dr. Claudia Nett) die Verbreitung der international erarbeiteten Richtlinien zur Bekämpfung von Parasitosen bei Hund und Katze in der Schweiz

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massgebend vorangetrieben. Dies zeigt sich aus der jährlich zunehmenden Anzahl von Besuchern der entsprechenden homepage www.esccap.ch.

Jährliche Anzahl von Besuchern (blau) und Besuche (rot) der Schweizer ESCCAP website von 2011-2017. Die Steigerung von 2016 auf 2017 betraf 54.5%. Da Pferde auch als Begleittiere des Menschen betrachtet werden, wird ESCCAP neu auch eine Pferde-Richtlinie erarbeiten

Im Bereich Pferd hat besteht seit mehreren Jahren ein Projekt, welches von Klinikern und Parasitologen beider Vetsuisse-Standorte unter der Federführung von Hubertus Hertzberg durchgeführt wird. Ziel des Projektes ist es, das seit mehreren Jahrzehnten auf kalendarischen Fixpunkten basierende Parasitenmanagement auf der Grundlage epidemiologischer Erkenntnisse neu auszurichten. Anhand von über 40‘000 Kotbefunden aus der gesamten Schweiz werden wesentliche Rückschlüsse zum Infektionsgeschehen mit gastrointestinalen Helminthen möglich sein. Der primäre Beweggrund für dieses Projekt liegt in der besorgniserregenden Zunahme anthelminthikaresistenter Strongyliden und Spulwürmer, die vor allem in der Pferdezucht und -aufzucht eine praktikable Parasitenkontrolle immer mehr erschweren.

In einem Pionierprojekt auf Basis einer Kooperation mit der Spanischen Hofreitschule Wien und dem HealthBalance Tiergesundheitszentrum in Niederuzwil sind seit dem Jahr 2016 über 350 Pferde in ein kontinuierliches, diagnostikgestütztes Monitoring einbezogen, welches wesentliche Erkenntnisse zu einer bedarfsgerechten Parasitenkontrolle und die Eindämmung von Anthelminthika-Resistenzen in einem geschlossenen Umfeld geben wird.

Bei den Wiederkäuern befassen sich aktuelle, im Rahmen internationaler Kooperationen eingebettete Projekte mit den Auswirkungen des Klimawandels auf Helminthen-Infektionen. Die Topographie des Alpenraums bietet hier eine geeignete Grundlage für das Studium und die Modellierung temperatur- und niederschlagsabhängiger Entwicklungsphasen bei freilebenden Parasitenstadien; zudem wirkt sich der globale Temperaturanstieg neben den Polen im Alpenraum besonders deutlich aus. Wir konnten zeigen, dass sich die infektiösen Larven des für Schafe und Ziegen sehr problematischen Labmagenparasiten Haemonchus contortus in den Sommermonaten inzwischen sehr gut auch auf Höhenlagen bis 2000 m entwickeln können, während dieser Parasit bis anhin als ausschliesslich im Mittelland bedeutsamer Erreger betrachtet wurde.

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In einer Kooperation mit dem Bundesgestüt Piber (Steiermark) der Spanischen Hofreitschule Wien wird ein diagnostikgestütztes Parasitenmanagement evaluiert (Quelle: SRS Wien).

Epidemiology and development of new strategies for the diagnosis of the cat lung worm Aelurostrongylus abstrusus Aelurostrongylus abstrusus (Nematoda, Strongylida) is a global lung worm of cats and other felids (Elsheikha et al., 2016, Paras & Vect). The biological life cycle includes snails as intermediate hosts, in which the first larval stages which are excreted by cats through faeces develop into infectious third stage larvae (Zottler et al., 2016, Parasitology). Cats are infected through the ingestion of intermediate hosts or of paratenic hosts such as reptiles, amphibians, rodents or birds. After larval body migration, the adult parasites establish in the lung parenchyma and produce eggs, causing inflammatory reactions in the alveoli and bronchioli of the cats. Clinical evidence of the infection may vary from mild to severe respiratory signs (coughing, nasal discharge, tachypnoe, dyspnoe leading to anorexia, emaciation and potentially death of the animals) (Schnyder et al., 2014, Parasitol Res). The diagnosis of aelurostrongylosis is traditionally performed through larval isolation from faeces followed by microscopic identification.

However, low sensitivity may be due to irregular larval excretion or even suspension of the excretion, especially after reinfections. In addition, appropriate collection of fresh faecal samples from cats for routine analyses, i.e. collection of faecal material over 3 days as recommended to increase sensitivity of the diagnostic methods, is often difficult, since free-roaming animals typically defecate outdoors.

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First stage larvae of the cat lungworm Aelurostrongylus abstrusus.

In this view and considering that the course of chronic infection of cats with lungworms is often subtle and lacking evident clinical signs, serological methods for the detection of A. abstrusus are of great help. In this context, overall 664 faecal samples of cats were collected from shelter, privately owned and stray cats, which were then analysed by classical parasitological methods. An additional subset of 124 faecal samples from owned cats were included in an Europe-wide study on gastrointestinal parasites and lungworm with overall almost 2000 cat samples, indicating a prevalence of 10.6% for lungworms and confirming that A. abstrusus is the most frequently detected lungworm in faecal samples (Giannelli et al., 2017, Int J Parasitol). The results constitute the first representative data set regarding the parasitological status of Swiss cats, and contemporaneously delivered representative material for the development of a serological test for the detection of specific antibodies against A. abstrusus that was developed at the Institute (Zottler et al., 2017, Vet Parasitol). This ELISA is being employed for screening of a large cat population in Switzerland, and the first results indicate that the occurrence of the infection is probably underestimated. The evaluation of anamnestic and clinical data of 1000 cats will shed light on risk factors. Furthermore, mass-screening of cat sera from several countries in Europe (e.g. Sweden, Italy, Portugal) is intended to gain a better understanding of epidemiological aspects of this widespread feline disease.

Institute members: Manuela Schnyder (Project Leader), Eva-Maria Zottler (doctoral student), Emily Güldner (doctoral student), Monika Bieri (former master student)

Funding sources: Industry

In collaboration with: PD Dr. T. Glaus and M. Dennler, Clinic for Small Animal Internal Medicine and Department of Diagnostic Imaging, Vetsuisse-Faculty, University of Zurich; Prof. C. Strube, Institute of Parasitology, University of Veterinary Medicine Hannover, Germany; Dr. R. Schaper, Bayer Animal Health, Monheim, Germany; Dr. C. Ramaswamy, IDEXX Laboratories, Westbrook, Maine, USA; Dr. Barbara Riond, Clinical Laboratory, Vetsuisse Faculty, University of Zurich, Switzerland; Merial SAS, Lyon, France.

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Canine angiostrongylosis: clinical, diagnostic and epidemiological investigations Angiostrongylosis is an emerging snail-borne disease in Europe including Switzerland (Staebler et al., 2005). Canine pulmonary angiostrongylosis is caused by the nematode species Angiostrongylus vasorum and can manifest in the form of variable clinical signs. Adult parasites reside in the right side of the heart and the pulmonary arteries. Infections are usually characterized by a gradual onset of progressively worsening respiratory distress, due to lung verminous parenchymal inflammations, haemorrhage and arterial thrombosis. However, acute onset of illness followed by sudden death can occur. In an interdisciplinary approach, clinical and laboratory findings as well as imaging methods, i.e. radiology, echocardiography and computed tomography, were employed before and after anthelmintic therapy in controlled experimental infections. A particular prominent attention is given to diagnostic approaches comparing established methods, such as faecal examinations, with recently developed tools for specific antibody (Schucan et al., 2012) or antigen (Schnyder et al., 2011) detection as well as identification of circulating DNA in blood samples (Schnyder et al., 2015, Parasitology). Based on described experiences with the canine heartworm Dirofilaria immitis and on the fact that single A. vasorum infected dogs were serologically antigen negative despite high worm burdens, we evaluated if the formation of antigen/antibody complexes may impede the detection of antigen in serological tests (Gillis-Germitsch et al., 2017, Paras & Vect). This knowledge will help to identify single infected dogs that may result negative for most of the diagnostic procedures but are clinically highly suspect and could be positive for antibody detection.

These methods represent key techniques for monitoring the success of anthelmintic treatments and for mass-screening of dog populations in Europe, intended for a better understanding of epidemiological aspects of this relevant canine disease. Seroepidemiological surveys with dog samples have been performed in many European countries (Alho et al., 2016, Paras Res and Paras & Vect; Lempereur et al., 2016, Paras & Vect; Schnyder et al., 2017, Paras Res; Grandi et al., 2017, Acta Vet Scand). Furthermore, the serological tests were evaluated for suitability in foxes, representing the most prominent wild reservoir of A. vasorum. Interestingly, the serological response of A. vasorum infected foxes, in particular follow-ups for antibody detection, differentiated consistenly from the ones in dogs (Gillis-Germitsch, 2017, Parasitology). The findings supported studies performed on experimentally infected foxes showing that faecal larval excretion of repeatedly infected animals increases, therefore significantly contributing to the establishment of endemic foci (Woolsey et al., 2017, Int J Parasitol: Paras & Wildlife). Actually, the presence of an endemic spot very close to the faculty has been confirmed by the discovery of a research meerkat (Suricata suricatta) group with access to infected gastropods (Gillis-Germitsch, 2017, Int J Parasitol_ Paras & Wildlife). Foxes under natural conditions were also under investigation, applying new ecological standardized approaches.

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Infections with Angiostrongylus vasorum in suricates were discovered for the first time in meerkats (Suricata suricatta) of a research group at the University of Zurich.

For the diagnosis of dogs in clinical practices, the collaboration with a diagnostic company resulted in the development of a highly specific rapid-assay (Schnyder et al., 2014; Liu et al., 2017) that can help to identify dogs with clinical angiostrongylosis.

Institute members: M. Schnyder (Project Leader), Daniel Hegglin, Nina Gillis-Germitsch (doctoral candidate), Peter Deplazes

Funding sources: Industry

In collaboration with: PD Dr. T. Glaus, Clinic for Small Animal Internal Medicine, Vetsuisse-Faculty, University of Zurich, Switzerland; Prof. Dr. Stieg.M. Thamsborg, Danish Centre for Experimental Parasitology, Dept. for Veterinary Pathobiology Faculty of Life Sciences, University of Copenhagen, Denmark; Prof. Dr. E. Morgan, School of Clinical Veterinary Science, University of Bristol, United Kingdom; PD Dr. D. Barutzki, Tierärztliches Labor Freiburg, Freiburg i.Br., Germany; Prof. Robin Gasser, Veterinary Science, The University of Melbourne, Australia; Prof. M. Magi and Fabio Macchioni, Dipartimento di Patologia Animale, Profilassi ed Igiene degli Alimenti, Università di Pisa, Italy; Dr. P. Paradies, Department of Emergencies and Organs Transplantations, Veterinary Internal Medicine Unit, University of Bari, Italy; Prof. J. Willesen, Faculty of Health and Medical Sciences, University of Copenhagen, Denmark; Dr. M. Miterpakova, Slovak Academy of Sciences (SAS), Kosice, Slovakia; Prof. R. Farkas, Department of Parasitology and Zoology, Szent Istvan Egeyetem, Budapest, Hungary; Dr. G. Grandi, Institute of Parasitology, Statens Veternärmedicinska Anstalt (SVA), Uppsala, Sweden; Dr. L. Carvalho, University of Lisbon, Lisbon, Portugal; Prof. C. Clercx, Department of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, University of Liège, Belgium; Dr. R. Schaper, Bayer Animal Health, Monheim, Germany; Dr. C. Ramaswamy, IDEXX Laboratories, Westbrook, Maine, United States.

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Pathogenesis of cardiopulmonary nematodes investigated through proteomics

The cardiopulmonary nematode Angiostrongylus vasorum can cause bleeding disorders in canine hosts which can be fatal. However, to this day the pathophysiology and the cross-talk between the host and parasite are not fully understood. Interestingly, coagulation is impaired only in some of the infected dogs Fibrinolysis appears to play a fundamental role (Sigrist et al., 2017, J Vet Int Med). To elucidate host-parasite interactions, canine host serum proteomics analysis and bioinformatics analysis are employed to identify differentially expressed host serum proteins upon infection with cardiopulmonary nematodes, including also the dog heartworm Dirofilaria immitis. Using ROTEM, a thromboelastometric tool to measure haemostasis, differentially expressed candidate host proteins will be evaluated in vitro. To examine the parasite’s active contribution to the induced coagulation disorders, A. vasorum excretory/secretory (E/S) products will be collected from cultivated adult specimens and used to stimulate canine aorta endothelial cells in a cell culture model. Molecules and factors expressed on the cells involved in the coagulation cascade and the activation of fibrinolysis will be examined. Revealing the pathological processes caused by these nematodes and the molecular mechanisms which contribute to the modulation of coagulation is relevant in human and veterinary medicine. This research project represents a yet unexplored topic, which may shed light on drug target candidates that can be useful against blood-dwelling pathogens or drug candidates for treatment of coagulopathies in animals and humans. Institute members: Manuela Schnyder (Project leader), Lucienne Tritten (Project Co-leader), Nina

Gillis-Germitsch (PhD candidate).

Funding sources: Private Sector, PD-Stiftung, Forschungskredit Universität Zürich.

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2.3 Gruppe ‚Molekulare Parasitologie‘ (Leitung Adrian Hehl)

In den Berichtsjahren erfolgte nach einer breiten Konsolidierung der Protozoen-Forschung im Gebiet der Stadien-spezifischen Genexpression bei Apicomplexa eine neue Forschungsphase. Auf der Basis dieser Daten wurden Fragestellungen zu zentralen biologischen Prozessen der Parasiten-Differenzierung und Pathogenese entwickelt und experimentell bearbeitet.

Biologie von Toxoplasma gondii im Endwirt

Die detailliert bearbeiteten Datensätze aus einer erweiterten RNA-seq Studie der Entwicklung von T. gondii in Katzen sowie die Validierung der Genexpressionsdaten in vitro und in vivo haben die Voraussetzung zur Entwicklung einer Vakzine für Katzen geschaffen, wodurch eine wesentliche Reduktion von Umweltkontamination mit infektiösen Stadien und damit Ansteckung beim Menschen erreicht werden kann. Insbesondere haben wir mittels modernster Methoden des Genome Editing erste transgene T. gondii Linien produziert, die an ganz bestimmten Stellen in der Entwicklung des Kokzidien-Zyklus in der Katze blockiert sind und keine infektiösen Stadien mehr produzieren. So wurde zum Beispiel eine knockout Mutante generiert, die in Mäusen und Ratten Gewebszysten bildet und in Katzen zur Ausscheidung von Oocysten führt, aber in der Entwicklung von infektiösen Stadien (Sporogonie) blockiert ist. Immunologische Daten haben gezeigt, dass die Mutante Form des Parasiten eine protektive Immunreaktion in der Katze auslöst und im Challenge Experiment mit wildtyp Parasiten Ausscheidung von Oocysten verhindert. Dies ist ein wichtiger Schritt hin zur Entwicklung einer Lebendvakzine für Katzen.

Apicomplexa Postgenomik und Datamining

In den Berichtsjahren wurden zwei neue Parasiten Genome annotiert und bearbeitet. Ein erstes vollständig annotiertes Genom von Besnoitia besnoiti wurde im Rahmen einer Zusammenarbeit mit den Proff. Hemphill und Leitao (Vetsuisse-Fakultät Bern, bzw. Veterinärfakultät der Universität Lissabon) hergestellt. Zusammen mit weiteren Genexpressionsdaten und vergleichender Analyse werden damit völlig neue Erkenntnisse zum noch weitgehend unbekannten Lebenszyklus dieses Rinder-Parasiten gewonnen. Ein ähnliches Vorgehen (in Zusammenarbeit mit der Gruppe ‚Zoonosen und translationelle Forschung‘) wurde auch für den Hundeparasiten Babesia canis gewählt. Hier liegt der Schwerpunkt auf Faktoren, die vom Parasiten innerhalb der ersten Tage nach der Infektion ins Blut des Wirtes sekretiert werden. Parasiten Proteine wurden mittels Massenspektrometrie im Blut von schwer kranken Tieren detektiert. Die Identifizierung dieser potentiellen Virulenz-Faktoren erforderte die Sequenzierung und ausführliche Annotierung des B. canis-Genoms. Zusammen mit Genexpressionsdaten haben wir so erstmals ein klares Bild des B. canis-Sekretoms erhalten und die Grundlage für die gezielte Entwicklung von Werkzeugen zur Diagnose und Bekämpfung dieser schweren Krankheit bei Hunden geschaffen (Eichenberger et al., Sci Rep. 2017).

Organellen Biologie und Stoff-Transport in proliferierenden und differenzierenden Giardia lamblia Parasiten

In der Forschung zur Biologie von Organellen und des Stoff-Transportes in Giardia sind im Berichtsjahr mehrere Meilensteine erreicht worden. Die bislang vollständigste Charakterisierung der Biogenese und des Protein-Imports in stark zurückgebildeten, aber vermutlich essentiellen Mitochondrien wurde publiziert (Rout et al. PLoS Pathog. 2016). Im Bereich der wichtigen Endozytose-Prozesse in Giardia ist es uns gelungen, ein ganz neuartiges Modell auf der Grundlage von molekularen Daten aufzubauen. Hier zeigt sich insbesondere das Ausmass der funktionellen und strukturellen Veränderungen, die sich im Laufe der Koevolution von Giardia mit dem Wirt und der Spezialisierung auf die Nische Dünndarmepithel ausgebildet haben. Die Publikation in der Fachzeitschrift PloS Pathogens bildet die Grundlage für die weitere molekulare Charakterisierung der Wirt-Parasit Interaktion bei Giardia (Zumthor et al., PLoS Pathog. 2016). Ein weiterer Meilenstein war

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der erste Knockout aller vier Allele des CWP1 Gens von Giardia, welches streng Stadien-spezifisch exprimiert wird und für ein essentielles Strukturprotein der Zystenwand codiert. Dies ist der erste phänotypisch charakterisierte Knockout überhaupt und bildet die Grundlage für eine funktionelle Analyse der Zystenwandbildung, die bisher nicht möglich war (Ebneter et al., Nat Commun. 2016).

Bildung der Zystenwand bei T. gondii

In den Berichtsjahren wurde im Rahmen eines Sinergia-Projekts mit der systematischen Charakterisierung von Faktoren begonnen, die für den Aufbau der T. gondii Zystenwand nach der Differenzierung zu Bradyzoiten essentiell sind. Dabei verwenden wir Informationen aus RNA-seq Datensätzen sowie gezielte Ansätze, die auf der Funktion von Proteasen beruhen, welche für die post-translationelle Prozessierung während des Exports von Strukturproteinen bei der Etablierung der Zystenwand eine Rolle spielen. Hier konnten bereits sehr wichtige neue Erkenntnisse zur Substrat-Spezifität gewonnen werden (Dogga et al., Elife. 2017).

Nebst der Unterstützung durch den SNF und den Forschungskredit der Universität Zürich hat die Gruppe in den Berichtsjahren mit der Finanzierung eines interdisziplinären Sinergia-Projekts durch den SNF eine neue Forschungslinie konsolidiert. In dieser Zusammenarbeit mit führenden Gruppen aus Genf (Prof. Soldati-Favre) und Basel (Prof. Bumann) geht es um die Erforschung der Struktur und Funktion der Zystenwand bei T. gondii.

Stage-specific regulation of secretory trafficking in Giardia lamblia: from gene expression to export pathways

http://p3.snf.ch/id.aspx?type=project&id=242ffd00-c0d2-461d-a5a6-4593b4fd9e20 Giardia lamblia trophozoites attach to the intestinal epithelium of the host’s small intestine. This intimate contact between parasite and host provides a molecular basis for communication which results in gene expression changes in both parasite and host. A case in point is stage‐specific production of cyst wall components when the appropriate environmental conditions are met. Previous data highlight two categories of stage‐specifically regulated genes; either de novo transcribed (cyst wall protein genes) or up regulated during encystation. Based on this and other data, we hypothesize that, when conditions for proliferation are no longer met, signaling for maintenance of the trophozoite state is lost and replaced with activation of the encystation program. This requires signal‐dependent de‐repression of cyst wall protein (CWP) gene expression, ending in deposition of a polymerized extracellular matrix (the cyst wall) which allows for parasite survival and transmission outside the host. Testing of this hypothesis is articulated around three subprojects. In Subproject 1 we will define the molecular basis for stage‐specific CWP gene expression by taking advantage of new tools and high throughput technology to characterize epigenetic, genetic, and post transcriptional factors determining activation and negative feedback regulation of CWP expression. Using partial complementation of CWP1‐3 KO phenotypes, in Subproject 2 we will capitalize on a recently developed gene knockout system to dissect the contribution of each CWP and individual domains to the trafficking program of encystation. Finally, in Subproject 3 we propose to use the recently established stem‐cell dependent small intestinal organoid infection model as a controlled luminal space to analyze genome‐wide expression data linked to trophozoite proliferation and to define an infection secretome for G. lamblia. This data will allow us to build an experimentally‐validated, forward genetics‐driven, integrated model of the molecular networks that govern the ‘program’ for the alternating of G. lamblia between states of proliferation and encystation. This complex circuit for cell differentiation in an evolutionarily reduced eukaryote may provide clues on similar phenomena occurring in other encysting parasitic species and perhaps even in more complex eukaryotes.

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Figure: Cartoon depicting sequential secretion of material forming first a structurally resistant outer cyst wall (red) which polymerizes and acquires osmotic resistance by incorporation of additional cyst wall material components (green). Merged immunofluorescence images of cysts just after formation of the outer wall (right, top) and after completion of the two-layered wall (right, bottom). Nuclear DNA is stained blue.

Institute members: Adrian Hehl (Project Leader)

Other links to external web pages: http://www.paras.uzh.ch/index.html

Funding sources: SNF 31003A_166437 (Personen- und Projektförderung)

Cyst wall formation: a persistent challenge in toxoplasmosis

The acute phase of Toxoplasma gondii infection initiates with the rapid proliferation and dissemination of the fast-replicating form of the parasite (tachyzoite) throughout the vertebrate host. At the onset of the immune response, the tachyzoites are efficiently neutralized and the infection enters in a chronic phase with conversion to a slow-replicating developmental stage (bradyzoite) that forms tissue cysts predominantly in the central nervous system and in striated and heart muscle. This process of encystation is vital to the parasite’s life cycle because i) it ensures survival and life-long persistence in intermediate hosts, and ii) it allows peroral transmission to the feline definitive host, initiating the sexual cycle. Tissue cysts not only prevent eradication of the parasite, but also pose a significant threat of reactivation in the context of host immunosuppression and can lead to encephalitis and other severe clinical manifestations.

Despite the central importance of cyst formation for pathogenesis and transmission, our insight into how T. gondii defies the innate and adaptive immune responses to take up permanent residence in the immunocompetent hosts is rudimentary. Very little is known about the cyst wall composition and the molecular processes governing its formation. We have a very fragmented view of the temporal and spatial dissemination of cysts in the host and especially in the brain.

Progress in biology is driven both by medical necessity and scientific curiosity and this project, which proposes to investigate the process of encystation, lies at the intersection of these two forces. It is the most propitious time to address the challenging question of cyst wall formation in light of the most recent breakthroughs in the sensitivity of -omics approaches, the power of the CRISPR/Cas9 system in genome editing, the revolution in high-throughput microscopy, and ex-vivo tissue examination at the highest level of resolution.

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This ambitious and highly synergistic project tackles key biological questions on tissue cyst formation and capitalizes heavily on cutting-edge technologies to address three specific objectives:

1. A comprehensive definition of the cyst wall composition. We will generate an unprecedentedly accurate transcriptome of the bradyzoite stage and a differential proteome of bradyzoites and the surrounding cyst wall. The data will be curated via a powerful comparative genomics approach spanning cyst-forming and cyst-lacking Apicomplexa species. A complementary strategy is designed to identify specific defects in cyst formation or maturation by large-scale genetic screens using quantitative high-throughput microscopy.

2. An uncovering of molecular mechanisms governing the cyst wall formation by creation of a comprehensive gene disruption collection in subproject 1 allows identification of all non-essential tachyzoites genes that display trafficking defects during cyst formation. Key mutants will be mechanistically dissected in vitro with a subset to be investigated further in vivo.

3. A spatiotemporal cartography of cyst formation in the brain using cutting-edge imaging methods to investigate the in vivo dynamics of dissemination and cyst formation in the whole body and foremost in the brain of a mouse infection model. These findings will inform development of spatiotemporal models describing parasite dissemination and differentiation, to be correlated with data from post-mortem biopsies.

These studies fill a significant knowledge gap and will provide i) highly valuable web-accessible integrated gene expression data, ii) fundamental discoveries about the regulatory and trafficking circuits that govern formation of the cyst wall as a biological barrier during encystation iii) invaluable paradigms of how the parasite initiates and sustains molecular programs required for disease progression and persistence.

Institute members: Adrian Hehl (Responsible Project Leader)

External members: Prof. Dominique Soldati-Favre (Project Leader), Prof. Dirk Bumann (Project Leader)

Other links to external web pages: http://p3.snf.ch/project-160702

Funding sources: SNF CRSII3_160702 (Personen- und Projektförderung)

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Metabolic Network govering Toxoplasma gondii persistence and transmission

Rationale: Toxoplasma gondii is the most successful obligate intracellular parasites with the remarkable ability to infect virtually all warm-blooded animals. It is transmitted to humans through consumption of undercooked meat containing tissue cysts, ingestion of oocysts shed in the feces of infected cats or congenitally in case of a primary infection during pregnancy. This parasite establishes a lifelong chronic infection that reactivates in situation of immunosuppression and can lead to fatal toxoplasmosis. Development of T. gondii stages that can be transmitted to a new host, i.e. sporozoites and bradyzoites, entails differentiation and adaptation to very distinctive host niches. These developmental programs are characterized by a distinct physical separation of the parasite from the host environment and/or a predilection for specific tissues/cell types. During acute infection, tachyzoites develop secluded within a safe and simple parasitophorous vacuole (PV) in almost any cell types. In contrast, during chronic infection, effectors of the cell mediated immune response drive the parasite into a more sequestered niche both in terms of cell type preference and of building an additional barrier in the form of a thick cyst wall extracellular matrix. To ensure sexual reproduction and transmission, sequestration is also required for the development of all stages of the coccidial cycle, which takes place exclusively in enterocytes of the small intestine of the definitive host (felids). Whilst rapidly proliferating merozoites reside in a regular PV likely very similar to the one surrounding the tachyzoites, zygotes rapidly build an environmentally resistant oocyst wall, robustly confining the parasites within an envelope, in preparation for release and resistance into the environment. The infectious forms of T. gondii (tachyzoites, bradyzoites and sporozoites) face fundamentally distinct challenges to survive and adapt to the various environments, accessibility to nutrients and immune pressures. We hypothesize that considerable remodelling and adaptation of the parasite metabolic pathways occur during the preparatory phase as well as the final execution of the differentiation programs. The objective of the project is to construct stage-specific metabolic models toward a better understanding of the parasite versatility that ensures its survival and successful transmission.

Specific aims: The project capitalizes on the genome scale in silico model of T. gondii metabolic network with incorporated thermodynamic constraints that was built in the context of IPhD project 2011, 51PH-0_131363, by Stepan Tymoshenko. In logical continuation, the objective is now to produce stage-specific metabolic networks for tachyzoites, bradyzoites, merozoites and sporozoites that will recapitulate their adaptation to distinct life styles and environment. This tripartite interdisciplinary approach will begin with the collection of biological samples that will be used to generate stage–specific transcriptomes and metabolomes to then fuel into the global metabolic model. In a first step the models will be built based on transcriptomic data obtained from genome-wide RNA-Seq analyses of proliferating tachyzoites, tissue cysts (bradyzoites) and coccidial stages (merozoites, zygotes, unsporulated/sporulated oocysts) isolated from tissue culture/experimentally infected animals. In a second step, stage-specific metabolomics profiling will be obtained and used to curate the metabolic models. The third step will consist in generating the metabolic readouts for transgenic parasites mutated in selective metabolic pathways and integrate them into the models. Specifically, the importance of gluconeogenesis and beta-oxidation will be examined in the context of persistence and transmission, respectively.

Ultimately this project will provide the PhD student with an excellent interdisciplinary training in systems biology with solid expertise in computational biology, molecular parasitology and metabolomics.

Overall, the construction of refined stage-specific metabolic networks for Toxoplasma will be instrumental to investigate central questions regarding stage conversion and parasite differentiation and to identify bottlenecks as candidates for developing intervention strategies.

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Main tasks:

Establish transgenic T. gondii lines that express fluorescent reporter genes at specific developmental stages throughout the life cycle, allowing fluorescence-based flow sorting of single parasites.

Experimental infections of intermediate and definitive hosts with transgenic parasites.

Establish optimized workflows for isolation of highly enriched parasites, compatible with FACS

Perform expression analysis by RNA-Seq of the infectious stages of T. gondii

Generate stage-specific metabolic networks

Perform metabolites profiling by mass spectrometry analysis of the wild type and metabolic mutants

Interrogate and curate the models

Comprehensive in silico description of inferred and actual changes in metabolic activities during differentiation processes by flux analysis.

Institute members: Adrian Hehl (Project Leader)

External members: Prof. Dominique Soldati (Responsible Project Leader), Prof. Vassily Hatzimanikatis (Project Leader)

Funding sources: SNF 51PHP0_157303 (Personen- und Projektförderung), SystemsX

High content confocal imaging of cellular phenotypes in health and disease

Life science research and teaching at the University of Zurich (UZH) cover a large range of methodology in physical, chemical and molecular cell biology, and developmental and organismic biology. Imaging techniques are key for the quest to understand how single and multicellular systems work the way we observe them. Here we propose to install and administer an automated spinning disc confocal fluorescence microscope for high-throughput analyses of cell and organoid phenotypes. With this setup, we strive to provide maximal support and accessibility of confocal automated high content fluorescence microscopy for the local life science community in cell biology, infectious disease and cancer environments. Institute members: Adrian Hehl (Co-applicant),

External members: Prof. Urs Greber (Main applicant), Prof. Andreas Plückthun (Co-applicant), Prof. Annelies Zinkernagel (Co-applicant), Prof. Bernd Bodenmiller (Co-applicant), Prof. Cornel Fraefel (Co-applicant), Prof. Matthias Altmeyer (Co-applicant)

Funding sources: SNF 316030_170799 (R'Equip)

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2.4 Gruppe ‚Vektor Entomologie‘ (Leitung Alexander Mathis)

Der Forschungs-Schwerpunkt der Gruppe sind Untersuchungen zu Vektorkapazität, d.h. zum Vermögen von Vektorpopulationen, Krankheitserreger übertragen zu können. Dies umfasst hauptsächlich Laborstudien zur Kompetenz von Vektoren (aus Laborzuchten oder bevorzugt mit Wildfängen) unter realistischen Temperaturbedingungen und im Biosicherheitsstufe 3 Labor (worüber unserer Gruppe als einzige im Fachgebiet in der Schweiz verfügt). Weitere Faktoren, welche die Vektorkapazität bestimmen und welche im Feld oder im Labor untersucht werden, sind das zeitlich-räumlichen Vorkommen von Vektorarten (Abundanzen) und ihre Wirtspräferenzen. Der Fokus liegt bei Gnitzen und ihrer Rolle als Vektoren des Blauzungenkrankheits-Virus, sowie Stechmücken als Vektoren des West Nil Virus, Zika Virus und von Dirofilaria spp. In einer weitergehenden Studie wurde das Genom und Stadien-spezifische Transcriptome von D. repens bestimmt. Ein weiterer Schwerpunkt ist die Entwicklung effizienter labordiagnostischer Identifizierungsmöglichkeiten von Vektoren. Die Massenspektrometrie (MALDI-TOF MS) Datenbank wurde in Zusammenarbeit mit einer Firma (Mabritec, Riehen) und im Rahmen laufender Projekte kontinuierlich weiterentwickelt und angewendet. Als Alternative zu real-time PCR wurde die simple und robuste isothermale DNA Amplifizierung (‚LAMP‘) etabliert, und feldtaugliche Tests für die Identifikation von Vektoren werden entwickelt. Die internationale Vernetzung wurde weiter ausgebaut: neben der COST Aktion TD1303 ‚European Network for Neglected and Vector-Borne Infections‘ (EurNegVec; Beteiligung von 34 Ländern) und dem SNF-SCOPES ‚Institutional Partnership‘ beteiligen wir uns neu an zwei grossen europäischen Konsortien (ZikAlliance, Infravec2). Die Swiss Vector Entomology Group, deren Koordinator der Leiter der Gruppe ‚Vektor Entomologie ist, hat in beiden Berichtsjahren eine wissenschaftliche Tagung organisiert (Zürich, Lausanne). Die Gruppe ist dank Drittmitteln mittlerweile auf 3 PostDocs angewachsen. Als Nachwuchs waren 2 Doktorandinnen angestellt, und 2 Masterarbeiten wurden erstellt. Drittmittelquellen in den Berichtsjahren waren das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen (BLV), der Schweizerische Nationalfonds, EU, Vlaamse Overheid (Belgien), EFSA/ECDC, Industrie.

Vector capacity

The geographic occurrence and extent of insect-borne diseases is changing, also in Europe. The driving factors are globalisation and environmental alterations, causing the carryover of insect vectors and disease agents they transmit to new regions. Most spectacular is the emergence of invasive mosquito species, e.g. Aedes albopictus (Asian tiger mosquito), Ae. japonicus (Asian bush mosquito), and the introduction of exotic pathogens that yielded unexpected, explosive outbreaks like the bluetongue virus after 2007. Other arthropod vectors such as ticks (Ixodida), biting midges (Ceratopogonidae) and sand flies (Phlebotominae) are gradually expanding their distribution ranges in Europe, and this is associated with changes in the risk of exposure to the pathogens they transmit . Striking examples are the filarial zoonotic pathogens Dirofilaris immitis and D. repens, transmitted by mosquitoes, which have spread northwards in the recent past. As a basis for risk assessments, we evaluate the vectorial capacity of indigenous insect (Culicidae, Ceratopogonidae, field-collected populations or laboratory colonies) vectors for a variety of pathogens. Crucial factors of vectorial capacity are vector competence, which we evaluate for a number of pathogens of medical or veterinary significance (viruses, e.g. bluetongue virus, West Nile virus, Zika virus; filariae, D. immitis, D. repens) under realistic condition (fluctuating temperature regime). Further, host preference is an important factor contributing to vectorial capacity, as only those species that preferentially bite susceptible hosts can act as efficient vectors. Host preference is assessed by identifying by molecular means the blood donor of blood-fed arthropods. As alternatives, animal-baited traps are employed in natural settings (‘animal-baited traps’). Further, in the laboratory olfactometers are used, i.e. wind channels in which flying insects can choose a preferred stimulus (e.g. chemical extracts). The populations dynamics of vector species (mainly Ceratopogonidae, on which little is known) is investigated by repeated adult collections over the season and identification by MALDI-TOF mass spectrometry, as well as by identifying productive breeding habitats (as basis for control measures)

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by detecting insect DNA in such habitats (eDNA approach). The genome and the stage-specific transcriptomes (larvae 1 and 3) of D. repens were determined as a basis for improving the detection of active vectors but also for identifying drug targets.

Institute members: Eva Veronesi (Project leader), Cornelia Silaghi (Project Leader), Alexander Mathis, Anca Paslaru, Chiara Tochtermann (med. vet. doctoral students)

Funding sources: Federal Agencies (BLV: ‘National Centre for Vector Entomology‘, research project); EU (Horizon2020: ZikAlliance, Infravec2), Swiss National Science Foundation (COST; SCOPES Institutional Partnership), EFSA/ECDC (VectorNet), private sector (Novartis/Elanco, Bayer).

In collaboration with: Massimo Palmarini, University of Glasgow, United Kingdom; Simon Carpenter, The Pirbright Institute, United Kingdom; Jan Lundström, Uppsala University, Sweden; Jonas Schmidt-Chanasit, Bernhard-Nocht-Institut Hamburg, Germany; Anna Bella Failloux, Institut Pasteur, Paris, France; Giovanni Savini Istituto Zooprofilattico Sperimentale di Teramo, Italy; Relja Beck, Croatian Veterinary Institute, Zagreb, Croatia; Gioia Capelli, Istituto Zooprofilattico Sperimentale delle Venezie, Legnaro, Italy; Martin Pfeffer, Institute for Animal Hygiene and Veterinary Public Health, University of Leipzig, Germany; Dusan Petric and Sara Savic, Scientific Veterinary Institute of Serbia, Novi Sad, Serbia; Andrea Vögtlin, Marco Alves, Institut für Virologie und Immunologie, Mittelhäusern, Switzerland; Paul Torgerson, Vetsuisse Faculty Zürich, Switzerland; Functional Genomics Centre Zürich (Giancarlo Russo), Switzerland. Consortia: ZikAlliance (53 partners, worldwide), COST: EurNegVec - European Network for neglected vectors and vector-borne infections (partners from 44 countries), Infravec2 (partners from 13 countries), VectorNet (partners from 64 Countries)

Heat map of clusters of genes differentially expressed between microfilariae and larvae 3 of Dirofilaria repens.

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Identification of arthropods of medical or veterinary significance by molecular methods The accurate identification and (semi-) quantification of arthropods is of paramount importance in topics of problem-oriented research and surveillance. The gold standard of identification is the morphological identification which requires expertise, a knowledge that is becoming rare. Further, morphological identification can be time-consuming and difficult or even impossible in case of damaged specimens, sister taxa and developmental stages which often lack specific features. As alternatives, we are developing molecular approaches, including PCRs in different formats (classical, real-time, single or multiplex), loop-mediated isothermal amplification of DNA (LAMP) and matrix-assisted laser desorption/ionization time of flight mass spectrometry (MALDI-TOF MS). LAMP assays, similar to PCR, amplify DNA over several orders of magnitudes. Advantages of LAMP include its robustness, speed and its simplicity with regard to equipment and reading the result (as simple as visualizing by the naked eye a colour shift). LAMP assays for the application also in the field are being developed for mosquitoes. Eventually, the assays will be designed in a lateral flow dipstick format (lateral flow assay) in order to have an easy readout, interpretable also for lab inexperienced persons. A MALDI-TOF MS database is established for adults and partly also for developmental stages (larvae, eggs) of species from Culicidae (mosquitoes), Ceratopogonidae (biting midges), Phlebotominae (sand flies), Simuliidae (black flies) and also Ixodida (ticks). The database, which is the largest containing arthropod vectors, is continuously growing in the frame of ongoing research projects. It is located at a private company (Mabritec SA, Riehen, Switzerland), and thus easily amenable to customer-oriented identification services. The ultimate goal is make the datasbase available via online platform in a cost-efficient manner Institute members: Alexander Mathis (Project Leader), Cornelia Silaghi (Project Leader), Tim Kamber

Funding sources: Federal Agencies (BLV: ‘National Centre for Vector Entomology‘); Swiss National Science Foundation (COST; SCOPES Institutional Partnership), Vlaamse Overheid (Belgien; MosqDyn project).

In collaboration with: Valentin Pflüger, Mabritec SA, Riehen, Switzerland; AVIA-Gis, Belgium.

Visualisation of LAMP amplification products after gel electrophoresis (left panel, ladder-like pattern of sample [M: DNA size marker; NC: negative control) and by colour change (Malachite green).

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2.5 Gruppe ‚Nematode-host interactions‘ (SNF-Ambizione program) (Leitung Lucienne Tritten)

Excretory/secretory microRNAs of nematode parasites: small molecules for great success? Parasitic nematodes are masterful immunomodulators and growing evidence implies a role for microRNAs (miRNAs) in host-pathogen interactions and immune regulation. miRNAs are small non protein-coding RNAs with important regulatory roles at the posttranscriptional level, typically resulting in messenger RNA (mRNA) degradation and suppression of translation. To date, several studies report hundreds of nematode miRNAs in infected host biofluids or in culture media. Horizontal miRNA transfer between species has been shown several times, miRNAs retaining at least partially their functions in the foreign recipient cell. The ability of miRNAs to influence both innate and adaptive immune responses by being transferred to host cells has now been recognized. We currently investigate whether and how miRNAs released by parasitic helminths modulate their hosts and create a favorable environment for the development of chronic infections. Our aim is to verify the effects of parasite miRNAs on host defenses, and improve our understanding of the involved mechanisms. Ultimately, we expect to identify key target host genes that, if impaired, determine the successful development of long-lasting nematode infections. Institute members: Lucienne Tritten (Project Leader), Julien Soichot

Funding sources: SNSF Ambizione

In collaboration with: Prof. Jennifer Keiser, Swiss TPH (Basel); Dr. Hanspeter Marti, Swiss TPH (Basel); Institue of Parasitology, McGill University (Montreal, Canada)

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2.7 Publikationen

2.7.1 Dissertationen

Vetsuisse Fakultät (Dr. med. vet.)

Alishani, Mentor (2017): The impact of socio-cultural factors on transmission of Taenia spp. and Echinococcus granulosus in Kosovo, https://doi.org/10.1017/S0031182017000750 Referent/in: P. Deplazes

Beerli, Olivia (2017): Microtus arvalis and Arvicola scherman: key players in the Echinococcus multilocularis life cycle, https://doi.org/10.3389/fvets.2017.00216 Referent/in: P. Deplazes

Gillis-Germitsch, Nina (2017): Host-specific serological response to Angiostrongylus vasorum

infection in red foxes and impact of heat treatment on antigen detection in dog sera https://doi.org/10.1017/S0031182017000427, Referent/in: M. Schnyder & A. Kutter, Annette

Zottler, Eva-Maria (2017): Detection of specific antibodies in cats infected withe the lung nematode Aelurostrongylus abstrusus and investigations on the larval development of A. abstrusus in the topical freshwater snail Biomphalaria glabrata, http://dx.doi.org/10.5167/uzh-137118 Referent/in: Schnyder, Manuela, University of Zurich, Vetsuisse Faculty

Mathematisch-naturwissenschaftlichen Fakultät (Dr. sc. nat, PhD)

Zumthor, Jon Paulin (2016): Endocytosis Redesigned: Host–Parasite Coevolution Drives Adaptation of

the Giardia lamblia, Endocytic System, Referent: A. Hehl Ebneter, Jacqueline Antoinette (2017): Adapting to a Parasitic Lifestyle: from a Minimized Golgi to a

Specialized Attachement Organelle in Giardia lamblia, Referent: A. Hehl Eichenberger, Ramon Marc (2017): Parasite Factors, Prognostic Markers and Epidemiological Aspects

in Babesia canis Babesiosis, Leiter: P. Deplazes, Vetsuisse Fakultät, University of Zurich Referent: A. Hehl

2.7.2 Originalarbeiten (referiert) 2016

Alho, A.M., Pita, J., Amaro, A., Amaro, F., Schnyder, M., Grimm, F., Custódio, A.C., Cardoso, L., Deplazes, P., de Carvalho, L.M., (2016). Seroprevalence of vector-borne pathogens and molecular detection of Borrelia afzelii in military dogs from Portugal. In: Parasites & Vectors 9(1), 225, 1756-3305 https://doi.org/10.1186/s13071-016-1509-2

Alho, A.M., Schnyder, M., Schaper, R., Meireles, J., Belo, S., Deplazes, P., de Carvalho, L.M., (2016). Seroprevalence of circulating Angiostrongylus vasorum antigen and parasite-specific antibodies in dogs from Portugal. In: Parasitology Research 115(7), 2567 – 2572, https://doi.org/10.1007/s00436-016-5001-x

Armua-Fernandez, M.T., Joekel, D., Schweiger, A., Eichenberger, R.M., Matsumoto, J., Deplazes, P., (2016) Successful intestinal Echinococcus multilocularis oncosphere invasion and subsequent hepatic metacestode establishment in resistant RccHan™: WIST rats after pharmacological immunosuppression. In: Parasitology 10, 1252 – 1260, https://doi.org/10.1017/S0031182016000809

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Balestrino, F., Schaffner, F., Forgia, D.L., Paslaru, A.I., Torgerson, P.R., Mathis, A., Veronesi, E., (2016) Field evaluation of baited traps for surveillance of Aedes japonicus japonicus in Switzerland. In: Medical and Veterinary Entomology 30, 64 – 72, https://doi.org/10.1111/mve.12152

Balestrino, F., Mathis, A., Lang, S., Veronesi, E., (2016) Sterilization of Hulecoeteomyia japonica japonica (= Aedes japonicus japonicus) (Theobald, 1901) by high-energy photon irradiation: implications for a sterile insect technique approach in Europe. In: Medical and Veterinary Entomology 30, 278-285 https://doi.org/10.1111/mve.12170

Baneth, G., Thamsborg, S.M., Otranto, D., Guillot, J., Blaga, R., Deplazes, P., Solano-Gallego, L., (2016) Major Parasitic Zoonoses Associated with Dogs and Cats in Europe. In: Journal of Comparative Pathology 155 , 54-74 https://doi.org/10.1016/j.jcpa.2015.10.179

Bollinger, J., Hertzberg, H., Hässig, M., Knubben-Schweizer, G., (2016) Gezielte anthelminthische Behandlung bei Ziegen: Evaluation verschiedener Bewertungskriterien und Entwicklung eines praxisnahen Enscheidungsschlüssels. In: Schweizer Archiv für Tierheilkunde 158 (8), 557-564 https://doi.org/10.17236/sat00077

Bosch, F., Manzanell, R., Mathis, A., (2016) First description of Onchocerca jakutensis (Nematoda: Filarioidea) in red deer (Cervus elaphus) in Switzerland. In: International Journal of Parasitology: Parasites and Wildlife 5, 192 – 197, https://doi.org/10.1016/j.ijppaw.2016.06.001

Brugger, K., Boehnke, D., Petney, T., Dobler, G., Pfeffer, M., Silaghi, C., Schaub, G., Pinior, B., Dautel, H., Kahl, O., Pfister, K., Süss, J., Rubel, F., (2016) A Density Map of the Tick-Borne Encephalitis and Lyme Borreliosis Vector Ixodes ricinius (Acari: Ixodidae) for Germany. In: Medical and Veterinary Entomology 53, 1292 – 1302 https://doi.org/10.1093/jme/tjw116

Craig, P.S., Hegglin, D., Lightowlers, M.W., Torgerson, P., Wang, Q., (2016) Echinococcosis: Control and Prevention. In: Parasitology 95, 1- 104, https://doi.org/10.1016/bs.apar.2016.09.002

Darpel, K.E., Barber, J., Hope, A., Wilson, A.J., Gubbins, S., Henstock, M., Frost, L., Batten, C., Veronesi, E., Moffat, K., Carpenter, S., Oura, C., Mellor, P.S., Mertens, P.P., (2016) Using shared needles for subcutaneous inoculation can transmit bluetongue virus mechanically between ruminant hosts. In: Scientific Report 6, 20627, https://doi.org/10.1038/srep20627

Ebneter, J., Heusser, S.D., Schraner, E.M., Hehl, A.B., Faso, C., (2016) Cyst-Wall-Protein-1 is fundamental for Golgi-like organelle neogenesis and cyst-wall biosynthesis in Giardia lamblia. In: Nature Communications 15; 7:13859, https://doi.org/10.1038/ncomms13859

Eichenberger, R.M., Riond, B., Willi, B., Hofmann-Lehmann, R., Deplazes, P., (2016) Prognostic Markers in Acute Babesia canis Infections. In: Journal of Veterinary Internal Medicine 30(1), 174 – 182, https://doi.org/10.1111/jvim.13822

Elsheikha, H.M., Schnyder, M., Traversa, D., Di Cesare, A., Wright, I., Lacher, D.W., (2016) Updates on feline aelurostrongylosis and research priorities for the next decade. In: Parasites & Vectors 9, 389, https://doi.org/10.1186/s13071-016-1671-6

Federer, K., Armua-Fernandez, M.T., Gori, F., Hoby, S., Wenker, C., Deplazes. P., (2016) Detection of Taeniid (Taenia spp., Echinococcus spp.) eggs contaminating vegetables and fruits sold in European markets and the risk for metacestode infections in captive primates. In: International Journal of Parasitology Parasites and Wildlife 5, 249-253, https://doi.org/10.1016/j.ijppaw.2016.07.002

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Gretera, H.,Batil, A.A., Alfaroukhc,I.O., Grimm, F., Ngandoloc, B.N., Keisera, J., Utzingera, J., Zinsstaga, J., Hattendorfa,J., (2016) Re-infection with Fasciola gigantica 6-month post-treatment with triclabendazole in cattle from mobile pastoralist husbandry systems at Lake Chad. In: Veterinary Parasitology 230 :43-48, https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2016.10.019

Herholz, C., Kopp, C., Wenger, M., Mathis, A., Wägeli, S., Roth, N., (2016) Efficacy of the repellent N, N-diethyl-3-methyl-benzamide (DEET) against tabanid flies on horses evaluated in a field test in Switzerland. In: Veterinary Parasitology 221, 64 – 67, https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2016.03.015

Huber, K., Schuldt, K., Rudolf, M., Marklewitz, M., Fonseca, D.M., Kaufmann, C., Tsuda, Y., Junglen, S., Krüger, A., Becker, N., Tannich, E., Becker, S.C., (2016) Distribution and genetic structure of Aedes japonicus japonicus populations (Diptera: Culicidae) in Germany. In: Parasitology Research 113, 3201 – 3210 https://doi.org/10.1007/s00436-014-4000-z

Hertzberg, H., (2016) Selektive Entwurmung beim Pferd: Erfahrungen aus der Schweiz. In: Pferdespiegel 1 2-7, https://doi.org/10.1055/s-0042-100571

Kohl, A., Pondeville, E., Schnettler, E., Crisanti, A., Supparo, C.,Christophides, G.K., Kersey, P.J., Maslen, G.L., Takken, W.,Koenraadt, C.J.M., Oliva, C.F., Busquets, N., Abad, F.X., Failloux, A.-B.,Levashina, E.A., Wilson, A.J., Veronesi, E., Pichard, M., Arnaud Marsh, S., Simard, F., Vernick, K.D., (2016) Advancing vector biology research: a community survey for future directions, research applications and infrastructure requirements. In: Pathogens and Global Health; 110, 4-5 https://doi.org/10.1080/20477724.2016.1211475

Krtková, J., Thomas, E.B., Alas, Germain, C.M., Schraner, E.M., Behjatnia, H.R., Hehl, A.B., Paredez, A.R., (2016) Rac Regulates Giardia lamblia Encystation by Coordinating Cyst Wall Protein Trafficking and Secretion. In: Journal of Molecular Biology 7 (4), e01003-16, https://doi.org/10.1128/mBio.01003-16

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2.7.3 Originalarbeiten (referiert) 2017

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Zottler, E.M., Strube, C., Schnyder, M., (2017) Detection of specific antibodies in cats infected with the lung nematode Aelurostrongylus abstrusus. In: Veterinary Parasitology 235, 75 – 82 https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2017.01.015

39

2.8 Wissenschaftliche Vorträge an Kongressen und Tagungen

Vortragende/r Titel des Vortrags Veranstaltung (Titel, Ort, Datum)

Basso, Walter, PD, Dr.

Occurrence and importance of endoparasites in piglets analysed in the frame of the PathoPig project aiming at early detection of major pig diseases in Switzerland.

24th International Pig Veterinary Society (IPVS) Congress, Dublin, Irland, 07.06. - 10.06.2016.

Experimental Toxoplasma gondii infections in pigs and vertical transmission

29th Congress of the Italian Society of Parasitology (SoIPa) and EVPC Meeting, Bari, Italien, 21.06. - 24.06.2016

Carmen Faso, PhD, Dr.

When less still works: A glimpse in the cell biology of Giardia lamblia

Molecular Parasitology Lecture Series, Institute of Cell Biology, University of Bern, Switzerland, 08.04.2016

The impact of Cyst-Wall-Protein 1 on Encystation in Giardia lamblia

5th International Conference on Anaerobic Parasites, Newcastle-upon-Tyne (UK), 31.08.-03.09.2017

Deplazes, Peter, Prof, Dr.

Alveolar echinococcsis in Europe 27th Annual Meeting of the German Society for Parasitology. Göttingen, 09.03. – 12.03.2016

Zoonotic parasitic diseases in Europe

24. Congress of the Societa Italiana di Parassitologia 21.06. – 24.06.2016

New insights on zoonotic parasitoses

26th ECVIM-CA Congress, Göteborg, Sweden, 09.09.2016

Wilderness in the city revisited: different urbes shape transmission of Echinococcus multicularis

Academy Colloquium, One Health Approach to Infectious Diseases, Amsterdam, Niederlande, 14.02 – 15.02.2017

Epidemiology of echinococcosis socio-cultural and ecological drivers

Joint SVA/SLU-BVF symposium in honor of professor Arvid Ugglas retirement, National Veterinary Institute, Uppsala, Schweden, 17.03.2017

Einheimische Zoonosen der Katze Zürich Tierärztestammtisch in Zürich, Schweiz, 06.06.2017

Confronting key parasitic zoonoses: towards an one health approach

Echinococcoses, XX Congresso SOCEPA (Sociedad Espanola de Parasitologia) 21.07.2017, Tenerifa, Spain

Parasitäre Zoonosen Fortbildung GZST, Rothenburg, 09.11.2017

Echinococcus multilocularis Diagnosis,

Swiss TPH Winter Symposium 2017, Basel, 07.12. -08.12 2017

Gillis-Germitsch, Nina, Dr,

Prävalenz von Lungenwürmern in Schweizer Füchsen und Evaluation serologischer Methoden zum Nachweis von Angiostrongylus vasorum

Tagung der Deutschen Veterinärmedizinischen Gesellschaft-Fachgruppe “Parasitologie und parasitäre Krankheiten”, Berlin, Deutschland, 02.05. - 04.05.2016

Prevalence of lungworms in Swiss red foxes and evaluation of serological procedures for detection of Angiostrongylus vasorum

Fifth European Dirofilaria and Angiostrongylus Days (FiEDAD), Wien, Österreich, 12.07. - 13.07.2016

Increasing prevalence of Angiostrongylus vasorum in wild Swiss red foxes between 2012-2017 and evaluation of serological procedures

26th International Conference of the World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (WAAVP), Kuala Lumpur, Malaysia, 04.-08. September 2017

Hegglin, Daniel, Dr. Fuchsbandwurm – Ein Fuchs-Maus-Spiel

Rendez-vous am Mittag, Bündner Naturmuseum, Chur, 15.06.2016

40

Hehl, Adrian, Prof, Dr. The Eukaryotic Pathogen Database (EuPathDB) project: Public database resources for –omics analysis and data mining for parasitic protozoa

Training Course in Veterinary Parasitology “VIPs in Zurich” for EVPC Residents and Diplomates, IPZ, Zürich, Schweiz 23.10. - 29.10.2016

When less still works A glimpse in the cell biology of Giardia lamblia

Molecular parasitology lecture series, Institute of Cell Biology, University of Bern, Switzerland, 08.04.2017

Toxoplasma and Toxoplasmosis Training Course in Veterinary Parasitology “VIPs in Zurich” for EVPC Residents and Diplomates, IPZ, Zürich, Schweiz 23.10. - 29.10.2016

How to become a practically perfect intestinal parasite: specializations, new inventions and losses in the evolution of Giardia lamblia

FORUM Graduate Schools Infection & Immunity UniGe & UniL: CUS & CUSO, 12.05.2017

Hertzberg, Hubertus PD Dr.

Neuorientierung des Parasiten-managements beim Pferd in der Schweiz: Status Quo

Fortbildungsseminar, Schweizerische Vereinigung für Veterinär-Labordiagnostiker, Vetsuisse Fakultät Zürich, 28.04.2016

Parasiten-Management in Schweizerischen Pferdeaufzuchtbeständen

DVG-Tagung Parasitologie und parasitäre Krankheiten, Berlin, 02.-04.05.2016

Re-orientation of helminth control in adult horses in Switzerland

Vortrag an der Jahrestagung des European College of Veterinary Parasitology, Bari, It, 24. 06.2016

LIHRA-Meeting Crete: Activities Switzerland, Focus: small ruminants

Second Meeting of the European Livestock Research Association, Crete, GR, 12. 09.2016

Re-orientation of helminth control in adult horses: the Swiss example

Vortrag an der Veterinärmedizinischen Universität Brno, CZ, 5.11. 2016

Kontrollstrategien gegen Magen-Darm-Strongyliden bei Kleinwiederkäuern - Aktuelle Entwicklungen -

Weiterbildung für Tierärzte beim Beratungs- und Gesundheitsdienst für Kleinwiederkäuer, Niederönz, 30.03.2017

Problematik des Parasitenbefalls in der Weiderinderhaltung

10. Südtiroler Berglandwirtschaftstagung Forum Brixen, Brixen, Italien, 13.01.2017

Parasitenmanagement in Schweizerischen Pferdezuchtbeständen

DVG-Fachgruppentagung Parasitologie, Hannover 14.06.2017

Helminth management in Swiss horse breeding enterprises

XX National Congress Spanish Parasitology Society and European Veterinary Parasitology College, Tenerife, Spain, 20.07. 2017

Neuorientierung des Entwurmungs-managements beim Pferd in der Schweiz

Fachmesse EXPOHORSE, Zürich, 03.12.2017

Neuorientierung des Entwurmungs-managements beim Pferd in der Schweiz: Status Quo

Schweizerische Tierärztetage, Fribourg, 12.05.2017

Re-orientation of helminth control in adult horses in Switzerland

WAAVP Conference, Kuala Lumpur, Malaysia 04. –08. 09.2017

Teaching Veterinary Parasitology: ten years of experience with the Vetsuisse-Curriculum

WAAVP Conference, Kuala Lumpur, Malaysia 4. – 08. 09.2017

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Helminthenkontrolle beim Pferd in der Schweiz: Zwischenbilanz eines Richtungswechsels

Fortbildung der Gesellschaft Zürcher Tierärzte, GZT, Uster, 04.04.2017

Joekel, Deborah, PhD Serologischer Antikörper-Nachweis von Dirofilaria-Infektionen beim Hund

DVG-Tagung Parasitologie und parasitäre Krankheiten, Berlin, 02.-04.05.2016

Parasiten im Fokus von Schweizer Schädlingen

Weiterbildungstage des Verbandes Schweizerische Schädlingsbekämpfer, 03.11.2016

Kamber, Tim, Dr. Development of LAMP-based field tests for mosquito identification’

Swiss Vector Entomology Group (SVEG) Annual Scientific Meeting; Lausanne 19-20.06.2016.

Mathis, Alexander, Prof, Dr.

Arbovirus transmission in Switzerland: the entomological issues

6th Swiss Virology meeting. Thun, 03.02.2016

Lästige Stiche oder Krankheitsübertragung? Bedeutung von Mücken in der Schweiz

Veranstaltungsreihe Wissen-schafft Wissen, Zürcher Zentrum für Integrative Humanphysiologie, Universität Zürich, 11.04.2016.

Vektor-übertragene Krankheiten: eine sich wandelnde Lage auch in der Schweiz

Gesellschaft Zürcher Tierärzte, Uster, 03.05.2016.

Stechmückenüberwachung in den Thurauen

Sitzung Begleitkommission ‚Hochwasserschutz und Auenlandschaft Thurmündung‘; Andelfingen 18.05.2016

Towards high-throughput identification of arthropod vectors by mass spectrometry

3rd Conference on Neglected Vectors and Vector-Borne Diseases (EurNegVec) (COST Action TD1303). Zaragoza (Spain) 24.-26. 05.2016

Biosafety issues in parasitology research: the Echinococcus case

10th Applied Biosafety Meeting 25.-26..08.2016, Lausanne.

Lumpy skin disease: die Vektoren 17.Informationsveranstaltung für veterinärmedizinische.Diagnostiklaboratorien (SVVLD), 21.09.2016, Bern-Liebefeld.

Vektor-übertragene Krankheiten: eine sich wandelnde Lage auch in der Schweiz

Entomologische Gesellschaft Zürich (21.01.2017)

Maldi-TOF mass spectrometry for insect identification

AMSAR winter school, Iasi (Romania); 08.03.2017.

Zika Virus and Aktuelles zu Arthropoden-übertragenen ‚emerging veterinary diseases

SVVLD Frühjahrstagung, Zürich, 27.04.2017

Easy identification of arthropod vectors by mass spectrometry: we are getting real’

Swiss Vector Entomology Group (SVEG) Annual Scientific Meeting; Lausanne 19-20.06.2016.

Easy identification of arthropod vectors by mass spectrometry: we are getting real

7th International SOVE Congress, Palma de Mallorca, 01-07.10.2017.

Einführungsreferat Nationales Zentrum für Vektor Entomologie (NZVE)

Herbsttagung Tierärztliche Vereinigung für Lebensmittelsicherheit (TVL), 23.11.2017, Olten .

Insekten als Vektoren von Tierseuchen

Herbsttagung Tierärztliche Vereinigung für Lebensmittelsicherheit (TVL), 23.11.2017, Olten .

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Vektor-bürtige Krankheiten – eine sich wandelnde Lage auch in der Schweiz?

Kolloquium Infektiologie und Mikrobiologie USZ, 07.12.2017

Paslaru, Anca Bionomics and vector competence among pre-alpine Culicoides species in Switzerland

XXV International Congress of Entomology, Orlando (USA), 25-30.09.2016.

Population dynamics of (pre-) alpine biting midges (Ceratopogonidae, Culicoides spp.) and their vector competence for bluetongue virus

7th International SOVE Congress, Palma de Mallorca, 01-07.10.2017.

Ramakrishnan, Chandra, Dr.

Updates from the Hehl lab Sinergia Meeting in Genf, 21.10.2016

Schaffner, Francis, Dr. Vectors & vector-borne diseases - Facing the challenge’

Community Medicine Training Program, Ministry of Health, Doha, Qatar, 21.09.2017.

Mosquito identification by morphology versus molecular tools: from rivalry to symbiosis’

7th International SOVE Congress, Palma de Mallorca, 01-07.10.2017

European-wide surveillance of mosquito vector species: outcomes of the field survey studies in Caucasus, 2015-2017’

Baku, Azerbaijan, 20.10.2017

Die Buschmücke in der Schweiz Kanton Zurich-AWEL-Biosicherheit, Zurich, 27.11.2017.

Schnyder, Manuela, PD Dr

Dog lungworms in Europe: where do we stand? Clinical picture, diagnosis and treatment overview

12th Merial Symposium on Parasitosis & Arthropod-borne diseases, New Trends in Companion Animal Parasitology, 21-24.03.2016

Intestinale Nematoden bei Hund und Katze – gibt es Resistenzen?

4. Schweizerische Tierärztetage 2016, Lausanne, 11-13.05.2016

Giardia duodenalis – immer präsent, immer Durchfall?

4. Schweizerische Tierärztetage 2016, Lausanne, 11-13.05.2016

Unraveling facts about feline lungworms and their control with Profender Spot on

15th annual congress of the International Society for Feline Medicine (ISFM), Malta, 29.06-03.07.2016

Angiostrongylus vasorum – What’s new?

Fifth European Dirofilaria and Angiostrongylus Days (FiEDAD, key note speaker), Vienna, 11-13.07.2016

Häufig unterschätzt – Parasitosen als Ursache respiratorischer Erkrankungen bei Hund und Katze

Open house days Henry Schein, Burgdorf bei Lyssach, 03-04.11.2017

Giardiosi e dirofilariosi – (in)certezze e attualità

Presentation for the OVT (Ordine Veterinari Ticinesi), Sementina (TI), 07.12.2017

Silaghi, Cornelia, PD, Dr. med vet

Vector competence of the invasive container-breeding mosquito Aedes japonicus for Dirofilaria spp.

3rd Conference on Neglected Vectors and Vector-Borne Diseases (EurNegVec): with MC and WG Meeting of the COST Action TD1303, 24-26.052016, Zaragoza, Spain

Vector capacity of European mosquitos for Dirofilaria spp.

Tagung der DVG-Fachgruppe ‚Parasitologie und parasitäre Krankheiten‘, 02.-04.05.2016., Berlin, Deutschland.

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AMSAR: a capacity building project based on the ‘training the trainers’ concept

European Society for vector Ecology (E-SOVE), 20th conference, Lisbon, Portugal, 04.10.2016. (invited speaker)

Ongoing research projects Swiss Vector Entomology group meeting, Zürich, 18.11.2016.

The changing epidemiology of vector-borne diseases – driving factors and research approaches’

ISAH-Tagung, Mazatlan, Mexico, 22.03.2017 (invited talk)

The changing epidemiology of vector-borne diseases – driving factors and research approaches

Scientific Veterinary Institute Croatia, Zagreb. 12.05.2017, Institute Seminar for all 4 branches of SVI of Croatia (invited talk)

AMSAR: Arbovirus monitoring, surveillance and research – capacity building on mosquitoes and biting midges based on the ‘training the trainers’ concept.

Workshop on Arthropod-borne Diseases 2017, 16-17.11.2017, Jena, Deutschland

Vector competence of the invasive container-breeding mosquito Aedes japonicus for Dirofilaria spp.

Workshop on Arthropod-borne Diseases 2017, 16-17.11.2017, Jena, Deutschland

Vektorkompetente Stechmückenarten in Mitteleuropa? Experimentelle Laboruntersuchungen am Beispiel zoonotischer Filarien

8. Riemser Diagnostiktage. 30. 11.’- 01. 12. 2017.

Tochtermann, Chiara Dirofilaria repens comparative stage-specific transcriptome analysis

SVEG (Swiss Vector Entomology Group) 2017 Scientific Meeting , Lausanne, 20.06.2017

Veronesi, Eva, Dr. Vector competence for West Nile virus of potential bridge-vector mosquito species of Switzerland

European Mosquito Control Association (EMCA) workshop, Speyer, Germany 13-15.03.2016.

Bionomics and vector competence among pre-alpine Culicoides in Switzerland’

Swiss Vector Entomology Group (SVEG) Annual Scientific Meeting; Lausanne 19-20.06.2016.

Impact of irradiation on vector competence for Dengue and Chikungunya viruses among Aedes (Stegomyia) albopictus and Ae. (St.) aegypti females

International Atomic Energy Agency, Vienna. Collaborative meeting 30.06.2016

The exotic mosquito species Ae. japonicus in Switzerland: Evaluation of vector competence, surveillance, control and SIT approaches

International Atomic Energy Agency (IAEA) workshop „Regional Meeting of the IAEA-TC Project RER5022

Establishing Genetic Control Programmes for Aedes Invasive Mosquitoes

Vienna 22-23.08.2016 (invited speaker).

Surveillance on exotic invasive mosquitoes in Southern Switzerland)„. International Atomic Energy Agency (IAEA) workshop

Regional Meeting of the IAEA-TC Project RER5022. Establishing Genetic Control Programmes for Aedes Invasive Mosquitoes“. Vienna 22-23.08.2016 (invited speaker).

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The European situation for vector-borne diseases

Presentation as President of the E-SOVE at the Society of Vector Ecology (SOVE) 46th Annual Conference. Anchorage, Alaska 11-16.09.2016 (invited speaker).

Culicoides and vector competence The 2-day training course on vector ecology and control organized by E-SOVE and EMCA. Lisbon, (Portugal) 01-02.10.2016 (invited speaker).

The European situation for vector-borne diseases

Presentation as President of the E-SOVE at the European Society of Vector Ecology (E-SOVE) 20th conference, Lisbon 03-07.10.2016

Areas of investigation Swiss Vector Entomology group meeting, Zürich,18.11.2016

Role of arthropod vectors in LSD transmission and persistence

Workshop on the Advanced Diagnosis and Control of Emerging Transboundary Animal Diseases, with Emphasis on Lumpy Skin Disease. International Atomic Energy Agency (IAEA), Vienna 21-23.11.2016 (invited speaker).

Implementing surveillance in vectors

Workshop on the Advanced Diagnosis and Control of Emerging Transboundary Animal Diseases, with Emphasis on Lumpy Skin Disease. International Atomic Energy Agency (IAEA), Vienna 21-23.11.2016 (invited speaker).

Retrospective study on Culicoides distribution and dynamics, along an altitude transect in Switzerland’

VectorNet annual meeting; Antwerp 21-23.02. 2017

Rate of transmission for two strains of West Nile virus among Swiss populations of Aedes japonicus’.

Swiss Vector Entomology Group (SVEG) Annual Scientific Meeting; Lausanne 19-20.06.2017.

InfraVec2 Research infrastructures for the control of insect vector-borne diseases’

Swiss Vector Entomology Group (SVEG) Annual Scientific Meeting; Lausanne 19-20.06.2017.

Update on WP5 of Infravec2 Steering committee meeting. Glasgow University, Glasgow 06.09.2017.

Vector capacity of pre-alpine Culicoides for bluetongue virus

7th International SOVE Congress, Palma de Mallorca, 01-07.10.2017.

The Infravec2 Horizon 2020 project: research infrastructures for the control of vector-borne diseases’

7th International SOVE Congress, Palma de Mallorca, 01-07.10.2017 (with K. Vernick).

Authentication of mosquito lines and pathogen strains for vector studies’

Infravec2 workshop. Imperial college London, 16.10.2017.

The Infravec2 Horizon 2020 project: research infrastructures for the control of vector-borne diseases

European Food and Safety Agency EFSA, Parma (Italy), 23.10.2017

Ongoing activities at the NZVE, Zurich University’

Tropical Public Health Institute (TPH), Basel 02.11. 2017.

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The National Centre for Vector Entomology: ongoing activities’

University of West Indie (Trinidad-Tobago), 21.11.2017.

InfraVec2 Research infrastructures for the control of insect vector-borne diseases’

Caribbean Public Health Authorities (CARPHA), Trinidad-Tobago, 20.11.2017

Winiger, Rahel Cyst wall formation- a persistent challenge in toxoplasmosis

MIM introductory course, 15.01.2016

Cyst wall formation- a persistent challenge in toxoplasmosis

SSTMP meeting Grindelwald, 25.11.2016

Implementation of nanobodies in the Toxoplasma gondii field

Sinergia meeting Basel, 13.07.2017

Implementation of nanobodies in the Toxoplasma gondii field

SSTMP meeting Schwarzenberg, 03.11.2017

Updates on my projects Sinergia meeting Zürich, 28.11.2017

3 Lehre

3.1 Lehrveranstaltungen

Das IPZ bietet folgende Lehrveranstaltungen an: Vetsuisse-Fakultät: Nicht-organzentrierter Unterricht (Vorlesungen/Übungen) (58h) Kernausbildung in den Schwerpunkten (Praktika/Übungen, Projektarbeit) (2 Wochen) Organblöcke (12h) Infektionsimmunologie (10h) Oekologie & Parasitologie (8h) Aktuelle Aspekte der parasitologischen Forschung (14h) Fortbildungsseminar Parasitologie (14h) Parasitologisch-diagnostische Fallbesprechung (14h) Zellbiologie für Postgraduates (35h) Medizinische Fakultät: Medizinische Parasitologie (24h) Grundlagen der klinischen Medizin (1h) Mathemathisch-Naturwissenschaftliche Fakultät: (Veterinär-) Medizinische Entomologie BIO 298 (28h)

3.2 Lehrveranstaltungskonzepte

Jährlich werden alle schriftlichen Lehrunterlagen für die Vorlesungen und Kurse überarbeitet und in elektronischer Form angeboten. Zudem prägen Institutsmitglieder die wichtigsten, aktuellen, deutschsprachigen Lehrbücher im veterinärmedizinischen und im medizinischen Bereich des Faches Parasitologie. Die Vorlesungsorganisation der Vetsuisse Veranstaltungen und die entsprechenden Skripte stimmen gut überein mit der dritten Auflage (2013) des 'Lehrbuches der Parasitologie für die Tiermedizin' (Ed: P. Deplazes, J. Eckert, G. von Samson-Himmelstjerna, H. Zahner), welches

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wesentlich von unserem Institut geprägt ist. Die 3. Auflage steht allen Studierenden unserer Fakultät auch in elektronischer Form zur Verfügung und sollte als Nachschlagwerk und zur Vertiefung dienen. In den Berichtsjahren wurden weitere Erfahrungen mit einem E-Learning-Programm gemacht, welches am IPZ zur Vertiefung der Ausbildung im Rahmen der koproskopischen Diagnostik dient (das Programm wird auch an der Vetsuisse-Fakultät Bern sowie in München und in Melbourne angeboten). Dieses unterrichtsbegleitende Lehrangebot kann nur teilweise die Ausbildungsdefizite kompensieren, welche durch die erheblichen Kürzungen der praktischen Übungen entstanden sind. Ein weiteres Lernprogramm für das Training in der Diagnostik von Ektoparasiten wurde 2015 fertiggestellt. Beide Lernprogramme sind in der Lehre integriert und dienen auch der Prüfungsvorbereitung.

Im Rahmen der Lehrveranstaltung ‚Infektions-Immunologie‘ wurden Gruppenarbeiten mit gegenseitigen Präsentationen anhand von Postern und kurzen Zusammenfassungen durchgeführt, die guten Anklang bei den Studierenden fanden. Wie im letzten Jahr haben wir durchwegs positive Erfahrungen gemacht. Die Erfahrungen mit dem Schwerpunkt ‚Pathobiologie‘ sind sehr positiv und 2016 wurde eine Studierende betreut, 2017 fünf Studierende. In den Berichtsjahren waren 17 Masterstudierende an unserem Institut tätig. Im Rahmen von anderen praktischen Übungen und Kursen (Veterinärparasitologie sowie Parasitologie an der MNF) werden problemorientierte Aufgaben von den Studierenden vermehrt selbständig erarbeitet und Lösungen präsentiert. In den MNF-Blockkursen Parasitologie führten die Studierenden, in kleinen Gruppen und integriert in Forschungsgruppen an unserem Institut, praktische und forschungsorientierte Laborarbeiten aus.

Nach 2014 hat PD Dr M. Schnyder im 2017 zum zweiten Mal eine finanzielle Unterstützung (CHF 20‘000) im Rahmen der Initiative Interaktives Lernen erhalten. Beide Projekte haben zum Ziel, die Lehre der Parasitologie zu fördern und anhand Interaktivität nachhaltig bei den Studierenden zu stützen.

Zudem wurde das Institut anlässig des alle 2 Jahre stattfindenden Meetings der World Association for Advancement in Veterinary Parasitology eingeladen, einen reflektierenden Beitrag zur Parasitologie-Lehre zu verfassen. Unsere Lehrkonzepte in Veterinärparasitologie wurden in der Publikation Schnyder et al., 2018 (Veterinary Parasitology 252, 148 – 152) dargestellt.

Die letzten Beurteilungen unserer Vorlesungen durch die Studierenden ergaben bei allen Veranstaltungen (Veterinärmedizin, Medizin, MNF) durchwegs gute Ergebnisse. Zudem wurde die Infektionsimmunologie-Veranstaltung auch während der Schlussbesprechung in diesem Jahr von den Studierenden gut beurteilt. Es muss festgestellt werden, dass das Ausbildungsniveau im Fach Parasitologie, mit besonderer Betonung der praxisrelevanten Bereiche, optimiert werden könnte. Es ist zu hoffen, dass mit der geplanten Revision des Curriculums die praxisorientierte Ausbildung noch gestärkt werden kann. Erfreulich ist die Prüfungssession im Januar 2018 ausgefallen, die einen viel höheren Notendurchschnitt im Vergleich mit den letzten Jahren vorweist.

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3.4 Betreuung von Masterarbeiten

Student/in Titel Abschlussjahr Referent/in Fakultät

Dana Weissberg

Alveoläre Echinococcose in der Schweiz, 1993-2012

2016 Peter Deplazes Medizinische Fakultät

Daniel Buob Sarcocystis infections in red deer and foxes in the Canton of Grisons, Switzerland

2016 Peter Deplazes und Walter Basso

Vetsuisse-Fakultät

Isabelle Schmutz

Endoparasitika-Anwendung in der Schweizer Hunde- und Katzenpopulation: eine ESCCAP-Bekanntheitsgradermittlung und Resistenzlage bei Hunden

2016

Manuela Schnyder

Vetsuisse-Fakultät

Karin Villiger Epidemiologie des Magen-Darm-Strongyliden-Befalls bei Ziegen auf Sömmerungsweiden

2016 Hubertus Hertzberg

Vetsuisse-Fakultät

Nadine Kettner

Parasitenstatus bei Fohlen und Mutterstuten

2016 Hubertus Hertzberg

Vetsuisse-Fakultät

Sandro Sterchi Exploring the potential of a parasite-derived microRNA in stool to detect Heligmosomoides polygyrus bakeri infection

2016 Lucienne Tritten und Jennifer Keiser

Swiss TPH, Universität Basel

Simone Jucker Biologie von präalpinen Gnitzen 2016 Eva Veronesi Vetuisse-Fakultät

Isabelle Specker

The occurrence of Angiostrongylus vasorum in paratenic hosts in Switzerland and investigations on cardiopulmonary and inflammatory biomarkers to evaluate the severity of A. vasorum infections in dogs

2016/2017

Manuela Schnyder und Lucienne Tritten

Vetsuisse-Fakultät

Meltem Olcer

Vorkommen der caninen Leishmaniose und deren Überträger in der Schweiz

2016/2017

Cornelia Silaghi

Vetsuisse-Fakultät

Michaela Kühni

Parasitenproblematik bei domestizierten Yaks in der Schweiz

2016/2017

Hubertus Hertzberg

Vetsuisse-Fakultät

Nora Schreiber

Toxoplasmose bei der Katze, Risikoanalyse und Altersverteilung

2016/2017

Peter Deplazes Vetsuisse-Fakultät

Sara Lüthin Umsetzung des selektiven Entwurmungskonzeptes beim Pferd in der Schweiz

2017 Hubertus Hertzberg

Vetsuisse-Fakultät

Tina Gysin

Feldstudie: Parasitenproblematik bei Ponys

2018

Hubertus Hertzberg

Vetsuisse-Fakultät

Koller Stephanie

Helminthenmanagement auf österreichischen Schafbetrieben

2018 Hubertus Hertzberg

BOKU Wien

Ronja Zuber Untersuchungen zum Endo-Parasitenbefall in Wildcaniden und –feliden der Schweiz

2018 Manuela Schnyder

Vetsuisse-Fakultät

Annis Lindsay Parasitenproblematik in Pferdegestüten

2019 Hubertus Hertzberg

Vetsuisse Zürich

Ruprecht Raila Bedeutung von Magen-Darmwurm-Infektionen als Todesursache bei Schafen und Ziegen

2019 Hubertus Hertzberg

Vetsuisse Zürich

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3.5 Besuchte Weiterbildungskurse von IPZ Angehörigen

Titel Leitung Dauer Teilnehmende

Arbeitssicherheit im Labor Dr. C. Weber, Sicherheit und Umwelt UZH

04.02.2016 Alexander Mathis

10. Weiterbildungsmodul für Biosafety Officers

Jörg Frank, Sicherheit und Umwelt UZH

25.11.2016 Alexander Mathis

Führungskurs für Habilitierte Dunamis AG, Zürich 22./23.11.2016; 17.01.2017

Alexander Mathis

Lernen in kooperativen Lehrsettings PD Ulrike Hanke 16.02. & 15.03.2016

Carmen Faso

Teaching Skills Certificate Center for University Teaching and Learning (Hochschuldidaktik) at the University of Zürich

2015-2017 Chandra Ramakrishnan, Abschluss 2016

Transcriptomics/NGS course (FGCZ) Dr. Lucy Poveda 21.- 24.06.2016 Lucienne Tritten

Die erste Lektion - Unterrichtsstil etablieren (Portal)

Wolfgang Wellstein, Hochschuldidaktik UZH

20.04.2016 Manuela Schnyder

Using Classroom Assessment Techniques (CATs) CATE1-16-1-1 to gain insights into student learning

Pia Scherrer, Hochschuldidaktik UZH

17.05.2016 Manuela Schnyder

Leadership skills for post docs Dr. Olga Pardo, Graduate Campus

16-17.06.2016 Manuela Schnyder

Studentisches Lernen mit webbasierten Selbsttests und Quizzes unterstützen

Marco Lehre, Hochschuldidaktik UZH

17.05.2017 Manuela Schnyder

Gendergerechte Führungsentwicklung an der Vetsuisse-Fakultät

Firma Dunamis AG (Project kids&career)

22-23.11.2016, 17.01.2017

Manuela Schnyder

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4 Nachwuchsförderung

4.1 Standortbestimmung

Im 2016 waren an unserem Institut 5 Postdoktorierende (4 über Drittmittel finanziert), 1 Assistentin sowie 1 Oberassistentin angestellt. 2017 waren 6 Postdoktorierende (alle über Drittmittel finanziert), 1 Assistentin und 1 Oberassistentin angestellt.

Durch verschiedene Drittmittelquellen wurden im Berichtsjahr zahlreiche Masterstudierende, 14 Doktorierende der Vetsuisse-Fakultät und 1 Doktorandin der MNF gefördert. Zusätzlich betreuten wir auch einen externen Doktoranden aus dem Kosovo. Das Institut war auch in diesem Berichtsjahr, wie schon in den letzten Jahren, stark bei der Nachwuchsförderung im Ausland engagiert. Mit Drittmitteln aus verschiedenen Quellen (SNF-SCOPES, COST, Industrie) wurden vorrangig NachwuchswissenschaftlerInnen im Ausland unterstützt (je ein/e Doktorand/in in Litauen, Kosovo und Rumänien). Nach unseren Erfahrungen sind die Forschungsstrukturen dieser Länder nur mit finanzieller und technologischer Hilfe aus dem Ausland überlebensfähig. Da diese Institutionen in vielen Bereichen des Gesundheitswesens Schlüsselfunktionen ausüben, unterstützten wir besonders im ‚One Health‘ Sektor Nachwuchskräfte und ermöglichten diesen auch Ausbildungsaufenthalte an unserem Institut.

Dr. med. vet. Paulin Zumthor und Dr. med. vet. Ramon Eichenberger waren im MD-PhD Programm der Life Science Graduate School Zürich als Doktoranden tätig. Ihre Dissertationen wurden im in 2016 bzw. 2017 erfolgreich abgeschlossen. Dr. Eichenberger erhielt ein SNF-Stipendium für angehende Forscher und begann seine Postdoc Ausbildung in einer renommierten Arbeitsgruppe an der James Cook University, Institute of Tropical Health and Medicine in Cairns (Australien).

Dr. Carmen Faso und Dr. Chandra Ramakrishnan absolvierten im Bereich Hochschuldidaktik eine intensive Weiterbildung mit Abschluss (universitäres ‚Teaching Skills‘ Zertifikat). Dr. Faso forscht seit 2012 unter anderem mit der Unterstützung des Forschungskredits der Universität Zürich und arbeitet an einem MSc im Programm ‚Global Health Policy‘ der London School of Hygiene and Tropical Medicine, University of London (UK).

PD Dr. Cornelia Silaghi wurde in der Gruppe ‚Vektor Entomologie‘ angestellt. Sie hat sich im Berichtsjahr an der UZH umhabilitiert und wurde auf die Professur für Infektionsmedizin am Friedrich-Loeffler-Institut (FLI) Bundesforschungsinstitut für Tiergesundheit und an der Ernst-Moritz-Arndt-Universität Greifswald, berufen.

PD Dr. Manuela Schnyder, Leiterin der Gruppe ‚Veterinärparasitologie‘, wurde 2017 zur Titularprofessorin ernnant.

Dr. PhD Lucienne Tritten leitet eine eigenständige Arbeitsgruppe ‚Nematode-host interactions‘ (SNF-Ambizione program).

Auch in Zukunft werden wir versuchen, die besten Studierenden für Master- und Doktorarbeiten zu gewinnen. Dabei sind wir besonders an der Ausbildung von Doktorierenden im Bereich Veterinärmedizin interessiert, die eine wissenschaftliche Karriere einschlagen wollen. Leider waren die Bemühungen nicht immer erfolgreich.

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4.2 Durch Drittmittel geförderte Nachwuchskräfte am Institut

Name Vorname Funktion Projekt Drittmittelgeber Datum von Datum bis

Cernikova Lenka PhD-Doktorandin Molecular basis for secretion of a protective biopolymer in the basal parasite Giardia lamblia

Schweizerischer Nationalfonds 01.12.2014 30.06.2016

Ebneter Jacqueline PhD-Doktorandin Molecular basis for secretion of a protective biopolymer in the basal parasite Giardia lamblia

Schweizerischer Nationalfonds 01.04.2013 30.06.2016

Gillis-Germitsch

Nina Doktorandin Canine Angiostrongylose: Untersuchungen zur Epidemiologie des Herz- und Lungenwurms Angiostrongylus vasorum beim Endwirt Fuchs

Bayer 01.03.2015 28.02.2017

Paslaru Anca Doktorandin Vector capacity of (pre-)alpine biting midges (Ceratopogonidae, Culicoides spp.) for orbiviruses

BLV 01.06.2015 31.05.2017

Ramos Santos Rui PhD-Doktorand Stage-specific regulation of secretory trafficking in Giardia lamblia: from gene expression to export pathways

Schweizerischer Nationalfonds 01.10.2015 30.09.2016

Silaghi Cornelia Postdoktorandin Vector capacity and identification of arthropods

NZVE Nationales Zentrum für Vektor Entomologie

01.06.2014 31.12.2016

Tritten Lucienne Postdoktorandin Deciphering coagulopathies in Angiostrongylus vasorum-infected dogs

Industrie 01.09.2015 31.12.2016

Veronesi Eva Postdoktorandin Vector capacity and control of arthropods NZVE Nationales Zentrum für Vektor Entomologie

01.06.2014 31.12.2016

Winiger Rahel PhD-Doktorandin Cyst wall formation- a persistent challenge in toxoplasmosis

Schweizerischer Nationalfonds 01.11.2015 31.10.2016

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4.3 Durch Drittmittel geförderte Nachwuchskräfte im Ausland

Name Vorname Funktion Projekt Drittmittelgeber Gastinstitution Datum von Datum bis

Sarkunas Mindaugas Externer Resident des EVPC

Alternatives Residency Program des IPZ

Baltnet Lithuanian University of Health Sciences, Dept. of Veterinary Pathobiology

2017 2020

Thapa Nirmal Kumar

Wissenschaftlicher Mitarbeiter

Epidemiology of echinococcosis in Bhutan

International Foundation for Science

National Centre for Animal health, Department of Livestock, Bhutan

2016 2017

Alishani Mentor Doktorand Epidemiology and control of echinococcoses in dogs in the Republic of Kosovo

Schweizerischer Nationalfonds

University of Prishtina, Faculty of Agriculture and Veterinary Medicine

01.10.2012 2018

4.4 Durch Forschungskredit der Universität Zürich geförderte Nachwuchskräfte

Name Vorname Funktion Projekt Datum von Datum bis

Joekel Deborah Postdoktorandin Intestinal oncosphere invasion of Echinococcus multilocularis: Investigation of resistance mechanisms in a new rat model

01.08.2017 31.10.2018 51

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5 Genderneutrale und familienfreundliche Förderung

Wissenschaftlerinnen haben eine besondere Vorbildfunktion, was in der Veterinärmedizin und Medizin (mit hohen Studentinnen-Anteilen) grösste Bedeutung hat. Der Einbezug von gut ausgebildeten Wissenschaftlerinnen in der Lehre soll die Vorbildfunktion für Studentinnen stärken.

In den Berichtsjahren hatten wir gesamthaft 15 Masterstudentinnen und 2 Masterstudenten, 8 Doktorandinnen und 2 Doktoranden betreut. Im Mittelbau (Postdocs und Assistent/-innen) waren 5 Frauen und 3 Männer angestellt. Im Bereich administratives und technisches Personal sind 21 Frauen und 2 Männer angestellt. Im Tierwärterbereich sind es 1 Mann und 3 Frauen. Die Verteilung der Geschlechter in diesen Bereichen wird weitgehend durch den Arbeitsmarkt bestimmt.

Am IPZ werden besondere Anstrengungen hinsichtlich der Förderung von Wissenschaftlerinnen unternommen. Manuela Schnyder ist eine selbstständige Abteilungsleiterin der Gruppe ‚Veterinärparasitologie‘. Die Frauenpräsenz im Mittelbau wurde in den Berichtsjahren mit einer Postdoc-Stelle verstärkt. Carmen Faso, Oberassistentin in der Gruppe ‚Molekulare Parasitologie‘ ist verantwortlich für die Ausbildung und Betreuung von Masterstudierenden und Doktorierenden. Lucienne Tritten hat Ihre eigene Arbeitsgruppe ‚Nematode-host interactions (SNF-Ambizione program) ‘ aufgebaut.

Adrian Hehl hat in den Berichtsjahren im Rahmen des Aktionsplans Chancengleichheit der Universität Zürich (https://www.gleichstellung.uzh.ch/de/politik/aktionsplan2013.html) erfolgreich eine Internetplattform zur Förderung von Talenten im Bereich Veterinärmedizin (https://vsf-mycareer.uzh.ch/) geschaffen und in Betrieb genommen. Dieses Instrument soll es Betreuungspersonen ermöglichen, Studierende, die sich potentiell für eine akademische Karriere eignen, möglichst frühzeitig zu erfassen und gemäss ihren Qualitäten und Talenten zu fördern. Via vsf-mycareer werden Studierende für besondere Förderungs- und Mentoringprogramme rekrutiert.

Zurzeit sind 5 frischgebackene Mütter und 1 Vater am Institut tätig. Zudem arbeiten 3 weitere Mütter und 3 Väter von Kleinkindern am Institut. Mit einem flexiblen Anstellungsmodus und, wenn möglich, teilweise Arbeitsmöglichkeiten zu Hause, wird versucht, die Vereinbarung von Kinderbetreuung und Karrieren optimal zu gewährleisten.

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6 Dienstleistungen

6.1 Dienstleistungen innerhalb der Universität

Im Auftrag der Vetsuisse-Fakultät und der Medizinischen Fakultät der Universität Zürich bietet das IPZ diagnostische Dienstleistungen am Diagnostikzentrum Parasitologie (DZP) an. Das DZP ist seit dem 17.06.2002 als Labor für parasitologische Diagnostik in den Bereichen Veterinär- und Humanmedizin nach der Norm ISO/IEC 17025 (Akkreditierungsnummer: STS 0346) akkreditiert.

Wie in den Vorjahren war die parasitologische Diagnostik auch im Jahr 2016 & 2017 von der breiten methodischen Vielfalt, dem weiten Parasitenspektrum und den äusserst unterschiedlichen Probenmaterialien geprägt. Es wurden Blut-, Serum- und (selten) Liquorproben auf spezifische Antikörper, sowie Stuhl-, Kot-, Urin-, Blut- und Gewebeproben auf Parasiten, Parasitenstadien, Parasitenantigene oder Parasiten-DNA mit mikroskopischen, immundiagnostischen und molekulardiagnostischen Methoden untersucht. Das Patientenspektrum umfasste neben dem Menschen, Heim-, Klein- und Nutztiere, sowie Reptilien und Zootiere.

Im Jahr 2016 wurden am DZP insgesamt 35‘900 Einzeluntersuchungen durchgeführt. Davon erfolgten 58% im Auftrag der Human- und 42% im Auftrag der Veterinärmedizin. Es wurden insgesamt 21‘890 (61%) mikroskopische, 12‘796 (36%) immundiagnostische und 1214 (3%) molekulardiagnostische Untersuchungen durchgeführt. 78% der mikroskopischen und 54% der immun- oder molekulardiagnostischen Tests wurden dabei innerhalb eines Arbeitstages abgeschlossen.

Im Jahr 2017 wurden am DZP insgesamt 36‘345 Einzeluntersuchungen durchgeführt. Davon erfolgten 58% im Auftrag der Human- und 42% im Auftrag der Veterinärmedizin. Es wurden insgesamt 22‘308 (61%) mikroskopische, 12‘765 (36%) immundiagnostische und 1272 (3%) molekulardiagnostische Untersuchungen durchgeführt. 78% der mikroskopischen und 52% der immun- oder molekulardiagnostischen Tests wurden dabei innerhalb eines Arbeitstages abgeschlossen

Die Einnahmen aus den diagnostischen Untersuchungen erreichten im Jahr 2016 CHF 1‘026‘012 und im 2017 mit CHF 1‘051‘121 erneut Spitzenwerte.

Das DZP ist im Bereich der Humanparasitologie seit vielen Jahren dem United Kingdom External Quality Assessment Scheme (UKNEQAS) angeschlossen. Auch im Jahr 2016 & 2017 wurden regelmässig Proben aus den Gebieten Serologie und Mikroskopie untersucht. Zusätzlich beteiligt sich das DZP an externen Ringversuchen zum Nachweis von Parasiten bei Menschen und Tieren. Die Qualitätsanforderungen wurden in allen Bereichen problemlos erfüllt.

Die diagnostischen Untersuchungen des DZP werden hauptsächlich für das Universitätsspital (USZ) und das Tierspital durchgeführt und stellen eine unerlässliche Erfahrungsquelle für Lehre, Aus- und Weiterbildung und Forschung dar. Einzelne Untersuchungsergebnisse wurden im Rahmen von Fallbeschreibungen publiziert. Die seit vielen Jahren etablierte enge Zusammenarbeit mit den Abteilungen Infektionskrankheiten und Spitalhygiene sowie Gastroenterologie des USZ im humanmedizinischen Bereich hat sich wiederum sehr gut bewährt. Traditionsgemäss beteiligte sich das DZP aktiv an Weiterbildungsveranstaltungen des IPZ und des USZ.

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Untersuchungen

Die in den Jahren 2015 bis 2017 am DZP durchgeführten Untersuchungen und die Einnahmen aus diesen Analysen sind in den folgenden Tabellen zusammengefasst (Zahlen ohne Untersuchungen im Rahmen von Forschungsprojekten).

Humanmedizinische Parasitologie1 2015 2016 2017

Parasitologische/Mikroskopische Untersuchungen

8‘898 9‘165 9‘158

Immunologische Untersuchungen 11‘236 10‘941 11‘281

Molekularbiologische Untersuchungen 867 829 900

Total 1 21’001 20’935 21’339

Veterinärmedizinische Parasitologie1 2015 2016 2017

Parasitologische/Mikroskopische Untersuchungen

11‘615 12‘725 13‘150

Immunologische Untersuchungen 2‘093 1‘855 1‘484

Molekularbiologische Untersuchungen 362 385 372

Total 2 14‘070 14‘965 15‘006

Human- und Veterinärmedizinische Parasitologie1

2015 2016 2017

(Total 1 + Total 2) 35‘071 35‘900 36‘345

Einnahmen2 2015 2016 2017

Humanmedizinische Parasitologie 753‘119 775‘881 806‘477

Veterinärmedizinische Parasitologie 223‘030 250‘131 244‘644

Total 976‘149 1‘026‘012 1‘051‘121

¹ Nicht verrechnete Untersuchungen für Kliniken/Institute und Analysen im Rahmen epidemiologischer Projekte nicht

berücksichtigt; Zahlen vom Laborsystem übernommen 2 Zahlen vom SAP in CHF (ohne Berücksichtigung MwSt-Abzug)

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6.2 Weiterbildung zugunsten der Universität Zürich

P. Deplazes: Wie Parasiten uns austricksen, Kinderuniversität Zürich, 16.03.2016

C. Faso: Adjunct committee member for the examination of MNF PhD candidates Ms Elisa Granato (15.09.2017) and Ms Jacqueline Ebneter (26.09.2017).

H. Hertzberg: Kontrollstrategien gegen Magen-Darm-Strongyliden bei Kleinwiederkäuern - Aktuelle Entwicklungen, Fortbildungsseminar, Klinik für Wiederkäuerkrankheiten, Vetsuisse Fakultät Zürich, 15. März 2016 H. Hertzberg: Warum machen Parasiten krank? Kinderuniversität, Universität Zürich, 01.11.2017 D. Joekel: Presentation of “Veterinary Parasitology” during the “Studieninfotage” 2016 (07.09.-08.09.2016) and 2017 (06.09.-07.09.2017) C. Ramakrishnan, PhD: Vortrag für Biology Undergraduate Summer School “Studying the life cycle of Toxoplasma gondii”, 21.07.2017 C. Faso und C. Ramakrishnan, Journal Club für Biology Undergraduate Summer School, 24.07.2017 M. Schnyder, R. Fiechter, S. Müller, E. Gueldner, Zukunftstag, Universität Zürich, 09.11.2017 C. Silaghi: ‚Zecken unterm Mikroskop‘ (Kinderuniversität Zürich; 21. 5. 2016, 6. 5. 2017) C. Tochtermann, Alexander Mathis: Stechende Mücken – hautnah‘ (Kinderuniversität Zürich, 29. 10. 2016, 18. 11. 2017)

6.3 Dienstleistungen zugunsten des European Veterinary Parasitology College, EVPC

EVPC-Diplomträger: Hubertus Hertzberg Manuela Schnyder Peter Deplazes Walter Basso bis 30.04.2017 Cornelia Silaghi bis 30.06.2017

Residents:

Deborah Joekel Cristian Alvarez Rojas Mindaugus Sarkunas (extern)

Administrative Funktionen im EVPC-Gremium:

P. Deplazes: Vorstandsmitglied (2015-2018) M. Schnyder: Mitglied im „Educational Committee“.

Durchführung von Resident-Trainingskursen alle 2 Jahre:

„Very important Parasites, VIPs in Zurich” 2016 for Residents and Diplomates, IPZ, 23.10 – 29.10.2016. https://www.uzh.ch/cmsssl/paras/de/teaching/EVPC,-European-Veterinary-Parasitology-College.html

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6.4 Dienstleistungen zugunsten anderer Forschungs‐ und Bildungsinstitutionen

W. Basso: Jury member (Rapporteur) PhD Thesis “Prevalence and risk factors for toxoplasmosis in pigs and characterization of natural evolution of infection in a pig model” von Vitomir Djokic, UPMC Sorbonne Universités, Ecole Doctorale “Complexité du Vivant” Université Pierre et Marie Curie, and ANSES, Paris, Frankreich. C. Faso: Lecturer: Molecular Parasitology Seminar series at the Institute of Cell Biology of the University of Bern, 08.04.2016. P. Deplazes:

Vorstandsmitglied des European Veterinary Parasitology College (EVPC).

Mitglied des EFSA BIOLOGICAL HAZARDS PANEL for scientific opinion on public health risks associated with foodborne parasites

Vorsitzender der DISCONTOOLS Gruppe Echinococcose (“FP 7 project involving a wide range of stakeholders including the research community, regulators, international organisations, CVO’s, veterinarians, farmers and others. The aim is to provide a mechanism for focusing and prioritising research that ultimately delivers new and improved vaccines, pharmaceuticals and diagnostic tests. This project delivers part of the Action Plan of the European Technology Platform for Global Animal Health (ETPGAH)”

Jury member (Rapporteur) PhD Thesis "Contamination des terrains potagers par Echinococcus multilocularis, Toxoplasma gondii et Toxocara spp., parasites responsables de zoonoses transmises par l’alimentation" von Matthieu Bastien, Université de Raims, Champagne-Ardenne, France

Vorlesung Studium Pharmazeutik ETH Zürich: Übersichtsvortrag in der Mikrobiologie Vorlesung über Parasitologie

Cestodiases of medical importance: taeniasis and echinococcosis II, Swiss TPH, Basel, 26.10.2016, 27.09.2017

A. Hehl:

Infectious agents: From molecular biology to disease FS2016, ETHZ, 01.06.2016, FS2017, ETHZ, 02.06.2017

Lecturer: Molecular Parasitology Seminar series at the Institute of Cell Biology of the University of Bern, 08.04.2017

When less still works a glimpse in the cell biology of Giardia lamblia, Molecular parasitology lecture series, Institute of Cell Biology, University of Bern, Switzerland, 08.04.2017

How to become a practically perfect intestinal parasite: specializations, new inventions, FORUM Graduate Schools Infection & Immunity, UniGe & UniL: CUS & CUSO, 12.05.2017

H. Hertzberg:

Vorlesung Studium Agrarwissenschaften ETH Zürich: Parasitenproblematik bei Nutztieren - Epidemiologie, ETH Zentrum, 5. April 2016, 11. und 12. April 2017

Vorlesung Studium Agrarwissenschaften ETH Zürich: Parasitenproblematik bei Nutztieren - Prophylaxe und alternative Kontrollstrategien, ETH Zentrum, 19. April 2016, 02. und 10. Mai 2017.

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A. Mathis:

Externes Mitglied Habilitation Claire Garros (Université Montpellier, France) (15.6. 2016).

Mitglied Dissertationskomitee Jonas Körner, Biozentrum, Universität Basel (Arthropoden

Infektionsmodell für Bartonella)

Organisation Swiss Vector Entomology Group (SVEG) Meeting Zürich (18.11. 2016)

External reviewer Habilitation Britta Lundström-Stadelmann (Vetsuisse Bern)

Unterstützung von Maturaarbeiten (Gymnasien Münchenstein, Rämibühl, Erwachsenenmatur St. Gallen)

Mitglied Wissenschaftliche Begleitgruppe NRZK (Nationales Referenzzentrum für zeckenübertragene Krankheiten, Bundesamt für Gesundheit BAG)

Amt für Landschaft und Natur, Kanton Zürich (ALN). Mitarbeit in der Fachgruppe Stechmücken (Ausarbeiten Rahmenbedingungen [Schwellenwerte, Methoden, etc.]) für Bewilligung der Bti Bekämpfung in Thurauen); fachliche Beratung und Begleitung der Stechmückenbekämpfung im Gebiet Thurauen; Monitoring der Mücken in diesem Gebiet. Vernehmlassungsantworten ‚Bti Resistenz‘ und ‚Wirkung Bti auf Nicht-Zielorganismen‘

Amt für Abfall, Wasser, Energie und Luft (AWEL) (Kanton Zürich): Expertise ‚Vektorkompetenz einheimischer und invasiver Stechmücken‘ (11 Seiten); Beratung Aedes japonicus Bekämpfung (Pilotprojekt durch BAFU finanziert). Beratung zu Aedes japonicus (Vektor Kompetenz für Zika Virus, Verhalten der Mücke als Grundlage ihrer Bekämpfung im Seuchenfall).

F. Schaffner:

Elected board member of the European Mosquito Control Association

Editor Journal of the European Mosquito Control Association (=European Mosquito Bulletin)

BAFU: Expert meeting Swiss Aedes albopictus surveillance programmes (Bern Ittingen, 18. Januar 2016).

Member of the Scientific Advisory Board of InfraVec2 Horizon 2020 project

Member of the Comité de Pilotage du Centre National d’Expertise sur les Vecteurs, France

Member of the International Health Regulations (IHR) Roster of Experts, WHO

C. Silaghi:

Gruppenleiterin COST action TD1303 EurNegVec (Work Group 5: Rare and neglected vector-borne pathogens)

L. Tritten:

Lecturer in the Drugs Discovery and Development for Parasitic Diseases course, Swiss TPH, University of Basel, 30.11.2017

E. Veronesi:

Arbitrator for PhD student thesis. University of Pretoria (South Africa).

Organizer of and trainer at E-SOVE/EMCA 2-day training course on vector ecology and control. Lisbon (Portugal), 1-2 October 2016.

President of E-SOVE (Society for Vector Ecology, European branch).

Organisation von zwei Summerschools in Serbien und Rumänien im Rahmen des SCOPES Projektes „AMSAR“ (mit C. Silaghi)

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6.5 Dienstleistungen zugunsten der Öffentlichkeit (Zeitungs-/Radio-/TV-Beiträge)

Zahlreiche Auskünfte an elektronischen und Printmedien zur Thematik von Parasiten und Parasitosen: Fuchsbandwurm und Echinococcose, Toxoplasmose, Giardiose, Insekten und Zecken und ihre Vektorfunktion.

6.6 Begutachtung von Publikationen und Forschungsvorhaben (Peer Review)

Institutsmiglieder begutachteten zahlreiche Manuskripte für Fachzeitschriften im Breiten Fachgebiet Parasitologie, Zellbiologie und Immunologie.

Zudem fungierten Institutsmitglieder in folgende Gremien:

C. Faso, PhD: Faculty of 1000; Analyst; LS2 for PIs of Tomorrow special session; Gigascience; Cambridge Scholars; Current Signal Transduction Therapy; Nature Ecology and Evolution; PLoS NTDs. 2016

P. Deplazes: Co-Editor von Veterinary Parasitology und Infection, Gutachter von verschiedenen Professuren und Preisen an europäischen Universitäten,sowie für Forschungsgesuche der Alexander von Humboldt-Stiftung, Karl-Enigk-Stiftung, Von Muralt Stiftung

A. Hehl: Gutachter für European Research Council, Schweizerischer Nationalfonds, Faculty of 1000 und diverse Fachzeitschriften; Editor für Faculty of 1000 und PLoS Neglected Tropical Diseases.

A. Mathis: Gutachter für Schweizerischer Nationalfonds; Bundesministerium für Bildung und Forschung (DE), Nederlands Wetenschappelijk Onderzoek (Niederlande). Mitglied Experten-Kommission Executive Agency for Higher Education, Research, Development and Innovation Funding (Rumänien). F. Schaffner: Mitglied Editorial Board von Hacettepe Journal of Biology and Chemistry C. Silaghi: Gutachterin für ein Forschungsgesuche der Czech Science Foundation, Brigitte-Schlieben-Lange-Programm (Ministerium für Wissenschaft, Forschung und Kunst Baden-Württemberg, Deutschland), National Science Centre, Poland

E. Veronesi: Editor Medical and Veterinary Entomology, Journal of Vector Ecology.

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7 Aussenbeziehungen

7.1 Regelmässige Zusammenarbeit

Partnerinstitution (Name, Stadt, Land, Region)

Beschreibung

Avia-GIS, Zoersel, Belgien, Europa Regelmässige Zusammenarbeit

Bayer Animal Health GmbH, Leverkusen, Deutschland, Europa

Wissenschaftliche Zusammenarbeit

Berner Fachhochschule, Bern, Schweiz, Europa

Wiss. Zusammenarbeit Bekämpfung von Arthropoden Vektoren

Bernhard Nocht Institute for Tropical Medicine, Hamburg, Deutschland, Europa

Wiss. Zusammenarbeit Vektor Kompetenz Stechmücken

Biogents AG, Regensburg, Deutschland, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Danube Delta National Institute for Research and Development, Tulcea, Rumänien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

ETH Zürich, Zürich, Schweiz, Europa Use of camelid antibody display for structural study of proteins

ETH Zürich, Zürich, Schweiz, Europa Experimentelle Zusammenarbeit

Goethe-Universität Frankfurt, Frankfurt am Main, Deutschland, Europa

Development and establishment of phage display technology for use with camelid antibodies

Paul Scherer Institut, Villigen, Schweiz, Europa

Development of nanobodies as tool to study the function of cellular receptors

Hrvatski veterinarski institut, Zagreb, Kroatien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

IDEXX Laboratories, Westbrook, ME, USA, Nordamerika

Wissenschaftliche Zusammenarbeit

Indian Institute of Science, Bangalore, Indien, Asien

Forschung über trans-splicing im Modellparasiten Giardia lamblia

Institut für Virologie und Immunologie (IVI), Mittelhäusern, Schweiz, Europa

Regelmässige Treffen; wiss. Zusammenarbeit in Projekten über Insekten Vektorkompetenz

Institut Pasteur, Paris , Frankreich, Europa Wissenschaftliche Zusammenarbeit

Institute of Experimental Physics, Slowak Academy of Sciences, Kosice, Slowakei, Europa

Wissenschaftliche Zusammenarbeit

International Atomic Energy Agency - IAEA, Wien, Österreich, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Istituto Superiore di Sanità (I.S.S.), Roma, Italien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Istituto Zooprofilattico Sperimentale delle Venezie, Legnaro, Italien, Europa

Wiss. Zusammenarbeit Vektor Kompetenz von Stechmücken

Københavns Universitet, København, Dänemark, Europa

Wissenschaftliche Zusammenarbeit

Lithuanian Veterinary Academy, Kaunas, Litauen, Europa

Aufbau eines Referenzlabors, mit unterstützt von der FAO, Ausbildung von PhD-Doktoranden und Postdoktoranden und Untersuchungen im Bereich VPH.

Mabritec SA, Riehen, Schweiz, Europa Regelmässige Treffen; wiss. Zusammenarbeit im Projekt: "MALDI-TOF mass spectrometry for insect identification"

MALCISBO AG, Schlieren, Schweiz, Europa Regelmässige Zusammenarbeit

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Murdoch University, Murdoch, Australien Wissenschaftliche Zusammenarbeit

Musée de Zoologie, Lausanne, Schweiz, Europa

Regelmässige Treffen; wiss. Zusammenarbeit im Projekt: "Spatio-temporal diversity of mosquito in Switzerland"

National Centre for Animal Health, Thimphu, Königreich Bhutan, Asien

Research Proposal on hydatidosis survey in Slaughter houses in Bhutan

National Institute for Public Health and Environment (RIVM), Bilthoven, Niederlande, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

National Veterinary Institute, Uppsala, Schweden, Europa

Wissenschaftliche Zusammenarbeit im Bereich der Echinococcose, finanziert durch National Veterinary Institute

Newcastle University, Newcastle, Grossbritannien, Europa

Erforschung der Funktionen von Mitosomen (degenerierten Mitochondrien) im Modellparasiten Giardia lamblia.

Pace University, New York, NY, USA, Nordamerika

Wissenschaftliche Zusammenarbeit

Schweizerisches Tropen- und Public Health-Institut, Basel, Schweiz, Europa

Regelmässige Treffen

Scientific Institute of Veterinary Medicine of Serbia, Belgrad, Serbien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Servizio di microbiologia (SMIC), Bellinzona, Schweiz, Europa

Vector capacity traits of Swiss mosquito populations for West Nile Virus

Szent István Egyetem, Gödöllö, Ungarn, Europa

Wissenschaftliche Zusammenarbeit

The Pirbright Institute, Pirbright, Grossbritannien, Europa

Wiss. Zusammenarbeit Vektor-Kompetenz von Ceratopogonidae

The Royal Veterinary and Agricultural University, Frederiksberg, Dänemark, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

The Royal Veterinary and Agricultural University, Frederiksberg, Dänemark, Europa

Zusammenarbeit in einem EU-Projekt (EMIDA = Emerging and Major Infectious Diseases of Livestock) im Bereich der Echinococcose

The University of Uppsala, Uppsala, Schweden, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

The University of Uppsala, Uppsala, Schweden, Europa

Forschungszusammenarbeiten: 1. Untersuchungen zu Organellen proteomics und Wirt-Parasit Interaktionen bei parasitischen Protozoen (Giardia Iamblia), 2. Epidemiologie der Echinococcose

Tierärztliche Hochschule Hannover, Hannover, Deutschland, Europa

Etablierung parasitologischer Modelle und Testentwicklung

Universidade de Lisboa, Lisboa, Portugal, Europa

Wissenschaftliche Zusammenarbeit, Epidemiologie von Parasitosen des Hundes

Universidade de Tras-os-Montes e Alto Douro (UTAD), Vila Real, Portugal, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Universiteit Utrecht, Utrecht, Niederlande, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Iaşi, Iasi, Rumänien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

University of Alberta, Edmonton, Kanada, Nordamerika

Wissenschaftliche Zusammenarbeit

University of Belgrad, Belgrade, Serbien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

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University of Bristol, Bristol, Grossbritannien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

University of Calgary, Calgary, Kanada, Nordamerika

Regelmässige Zusammenarbeit und Austausch von Studierenden

University of California, Berkeley, Berkeley, CA, USA, Nordamerika

Cooperation and exchange in the areas of Giardia cell cycle, differentiation and endocytic transport

University of California, San Francisco, San Francisco, CA, USA, Nordamerika

Regelmässige Zusammenarbeit. Gemeinsame Publikationen.

University of Exeter, Exeter, Grossbritannien, Europa

Erforschung der Rolle von Dynamin GTPasen im Parasiten Entamoeba histolytica

University of Glasgow, Glasgow, Grossbritannien, Europa

Wiss. Zusammenarbeit Vektor Kompetenz

University of Kentucky, Lexington, KY, USA, Nordamerika

Regelmässige Zusammenarbeit

University of Novi Sad, Novi Sad, Serbien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

University of Prishtina, Prishtinë , Kosovo, Europa

Wissenschaftliche Zusammenarbeit und Technologietransfer

Università degli Studi di Bari, Bari, Italien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Università degli Studi di Teramo, Teramo, Italien, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Università di Pisa, Pisa, Italien, Europa Experimentelle Zusammenarbeit durch Methodenaustausch

Universität Basel, Basel, Schweiz, Europa Gemeinsamer SNF Sinergia Antrag

Universität Bern, Bern, Schweiz, Europa Wissenschaftliche Zusammenarbeit: Functional genomics von Besnoitia besnoiti, Stofwechsel-Biochemie von Giardia lamblia.

Universität Leipzig, Leipzig, Deutschland, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Université de Genève, Genève, Schweiz, Europa

Gemeinsame Projekte (SystemsX) und gemeinsame Betreuung von Doktoraten

Université de Reims, Reims, Frankreich, Europa

Wiss. Zusammenarbeit Biologie von Schmetterlingmücken

Université de Strasbourg, Strasbourg , Frankreich, Europa

Regelmässige Zusammenarbeit

Univerzita Karlova, Prag, Tschechische Republik, Europa

Wiss. Zusammenarbeit molekulare Identifikation von Vektoren

Zoo Zürich, Zürich, Schweiz, Europa Wirtspräferenzen von Stechmücken, Parasitenüberwachung im Zoo

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7.2 Forschungsaufenthalte von Institutsangehörigen an anderen Forschungsinstitutionen

Name Vorname Funktion Gastinstitution Land Aufenthaltszweck Datum von Datum bis

Deplazes Peter Guest scientist National Centre for Animal health, Department of Livestock, Bhutan

Buthan Vertiefung des bestehnden Forschungsprojektes im Rahmen des Forschungssemesters (Sabbatical)

08.04. 2016 31.05.2016

Deplazes Peter Guest scientist Lithuanian University of Health Sciences, Dept. of Veterinary Pathobiology

Litauen Vertiefung des bestehnden Forschungsprojektes im Rahmen des Forschungssemesters (Sabbatical)

27.06. 2016 01.07.2016

Hehl Adrian Visiting scientist DCE – Danish Centre for Environment and Energy * ARC – Arctic Research Centre * Aarhus

University Institute for Bioscience

- Roskilde, Frederiksborgvej 399, 4000 Roskilde, Denmark

Dänemark Teilnahme and Expedition (Biological and Physical Environmental Monitoring Field Work)

03.08.2017 17.08.2017

62

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7.3 Forschungsaufenthalte von Angehörigen anderer Forschungsinstitute am Institut für Parasitologie, UZH

Name Vorname Funktion Herkunftsinstitution Land Aufenthaltszweck Datum von Datum bis Alho Ana Margarida PhD Studentin Faculdade de Medicina

Veterinaria Lisboa Portugal Forschung 17.10.2016 28.10.2016

Alvarez

Cristian Dr. The University of Melbourne

Australien

Forschung

14.03.2016 29.03.2016

Alves Pedro Privat Schwez Schnuppern 14.02.2017 15.02.2017

Bogodukhova Nadezhda Praktikantin Privat Schwez Praktikum 15.02.2016 09.09.2016

Becskei Csilla Zoetis Belgien Study Monitoring 13.10.2016 13.10.2016

Bello Alessia Lernende Tierspital Zürich Schweiz Repetitionskurs 22.02.2017 22.02.2017

Camilla Stella Studentin University of Turin Italien Forschung 10.02.2016 10.03.2017

Camp Jeremy Universität Wien Österreich Forschung 27.03.2017 14.04.2017

Camp Jeremy Universität Wien Österreich Forschung 15.05.2017 18.08.2017

Da Rold Graziana Dr. IZS-Venezia Italien Cost action 04.04.2016 08.04.2016

Deak Georgiana Dr. University of Veterniary Medicine

Rumänien

Zusammenarbeit

14.02.2017 14.03.2017

Di Cesare Angela University of Teramo Italien Forschung 25.04.2017 03.05.2017

Dumendiak Sonja TBA Institut für Parasitologie, Stuttgart

Deutschland Zusammenarbeit

06.02.2017 10.02.2017

Eggenschwiler

Rebecca

Dr. VetTrust AG, Kleintierpraxis Mühlebach

Schweiz Weiterbildung

13.12.2016 13.12.2016

Eugster

Marcel

Praktikantin

Institut Medizinische Virologie

Schweiz Weiterbildung

04.01.2016 29.01.2016

Frauchiger Stephanie Lernende Privat Schweiz Praktikum 01.03.2016 30.06.2016

Ghenzi Luca Lernender Tierspital Zürich Schweiz Repetitionskurs 14.03.2016 14.03.2016

Giger

Deborah

Lernende Tierspital Zürich, Kleintierklinik

Schweiz Repetitionskurs 14.03.2016 14.03.2016

Gulnara Minbaeva Studentin Medical Academy Gastwissenschaftlerin 28.01.2016 28.02.2016

Gysin Tina Studentin Universität Zürich Schweiz Forschung 22.02.2017 29.02.2017

Helm Christina Doktorandin Freie Universität Berlin Deutschland Forschung 04.12.2017 12.12.2017

Ignasi Garrido Dr. Fac.de veterinaria., Uni. Autonoma de Barcelona

Spanien Forschung

12.12.2016 16.12.2016

Jäger Kathrin Doktorandin Paul Scherrer Institut, Villigen

Schweiz

Zusammenarbeit

09.05.2016 30.03.2016

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64

Jiménez-Meléndez

Alejandro

PhD Student Complutense University of Madrid

Spanien

Forschung/Weiterbildung

15.09.2017 15.12.2017

Karrer Urs Dr. vet. KS Winterthur Schweiz Weiterbildung 20.03.2017 21.03.2017

Keller Roman Praktikant Schweiz Praktikum 15.08.2016 19.08.2016

Maksimov Pavlov Institut für Epidemiologie, Wusterhausen

Deutschland Weiterbildung 06.06.2017 09.06.2017

Marcinkute Audrone Dr. Vilnius University, Lithauen Forschung 12.04.2016 14.04.2016

Martini

Francesca

PhD Studentin Institute of Microbiology, ETH Zürich

Schweiz Kollaboration 01.06.2016 31.10.2016

Maeve Harte Zoetis Belgien Study Monitoring 13.10.2016 13.10.2016

Montarsi Fabrizio IZS- Venezia Italien Cost action 04.04.2016 08.04.2016

Müller Ramona Lernende Tierspital Zürich Kleintierklinik

Schweiz Repetitionskurs 14.03.2016 14.03.2016

Navarro Martina Studentin Summer School MNF Spanien Forschung 01.07.2016 31.08.2016

Roditscheff Anna Inst. Med. Mikrobiologie Schweiz Weiterbildung 20.03.2017 31.03.2017

Rohner Lea Studentin Universität Zürich Schweiz Forschung 20.02.2017 10.03.2017

Salathe Simone Lernende Tierspital Zürich Schweiz Repetitionskurs 14.03.2016 14.03.2016

Schmidt Florian Student ETH Zürich Schweiz Praktikum 22.08.2016 17.02.2017

Sharma Puspa M.sc National Centre for Animal Health

Bhutan Weiterbildung 15.11.2016 15.12.2016

Skilewitsch Olga Lerende Triemli Spital Zürich Schweiz Weiterbildung 12.07.2017 12.07.2017

Smith Nick Dr. The Australian National University/West Sydney

Australien Forschung 04.01.2017 31.01.2017

Smith Daniel Student The Australian National University/West Sydney

Australien Forschung 04.01.2017 31.01.2017

Strassmann Marc Praktikant Privat Schweiz Praktikum 01.09.2017 31.12.2017

Sugiarto

Sarah Dr. Zentrum für Labormedizin, St. Gallen

Schweiz Weiterbildung 12.06.2017 07.07.2017

Tamponi

Claudio Student Universita degli Studi di Sassari

Italien Forschung 12.06.2017 28.06.2017

Torres

Katia Dr.med.vet

VetTrust AG, Kleintierpraxis Mühlebach

Schweiz Weiterbildung

15.12.2016 15.12.2016

Vasic Ana University of Belgrade Serbien Weiterbildung 15.01.2017 15.02.2017

Wenger Michelle Lernende Tierspital Zürich Schweiz Repetitionskurs 22.02.2017 22.02.2017

Zdravkovic Nemanja Dr. Serbien Weiterbildung 15.01.2017 15.02.2017

Zweifel Melanie Lernende Tierspital Zürich Schweiz Repetitionskurs 14.03.2016 14.03.2016

64

65

7.4 Gastvorträge von Angehörigen anderer Forschungsinstitutionen am Institut 2016

Name Vorname Herkunftsinstitution Land Titel des Vortrags Bauer Christian Institute of Parasitology of Justus Liebig University Giessen Deutschland Diagnose und Bekämpfung der Eimeriose bei

Wiederkäuern

Beck Relja Croatian Veterinary Institute, Department for Bacteriology and Parasitology, Zagreb

Kroatien Piroplasms in horses- from clinics to molecular studies

Eichenberger Ramon James Cook University Australien Small secreted vesicles from parasitic helminths and their molecular interactions with host tissues

Elsheikha Hany School of Veterinary Medicine and Science, Veterinary Parasitology,

Leicestershire

England Systems approach to understanding host-

Toxoplasma gondii interaction

Geldhof Peter Laboratory of Parasitology, Faculty of Veterinary Medicine, Ghent University

Belgien The development of recombinant vaccines against the gastrointestinal parasites Ostertagia ostertagi and Cooperia oncophora in cattle

Hall Markus University of Zurich, IEU, Environmental Studies Group Schweiz Parasites in body and mind: The uses of history in parasitology

Hemphill Andrew Institut of Parasitology, University of Bern Schweiz Of mice and sheep: prevention and treatment of Neospora caninum infections

Hermosilla Carlos Visiting Professor (UACH) Institute of Parasitology Justus Liebig University Giessen

Deutschland Extracellular traps

Körner Jonas Biozentrum of the University of Basel Schweiz Studying pathogens in their vector Ctenocephalides felis as a model vector for Bartonella spp. and Yersinia pestis

Lüder Carsten Georg-August-University of Göttingen Deutschland Mechanisms of immune evasion and parasite persistence during Toxoplasma gondii infections

Mavrot Fabien Section of epidemiology, University of Zurich Schweiz Livestock nematode infection in a changing world: investigating the European situation

Morchon Garcia

Rodrigo University of Salamanca Spanien Relationship Dirofilaria immitis/host: the activation of the fibrinolytic system of the host in the model of the blood-borne pathogen Dirofilaria immitis

Singer Steven Georgetown University in DC USA Lessons for Mucosal Immunity from Animal Models of Giardiasis

Smith Nick The Australian National University/West Sydney

Australien Pathways to transmission-blocking vaccines

against coccidian parasites

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66

7.5 Gastvorträge von Angehörigen anderer Forschungsinstitutionen am Institut 2017

Name Vorname Herkunftsinstitution Land Titel des Vortrags Di Cesare Angela Faculty of Veterinary Medicine, Università degli

Studi di Teramo

Italien New avenues in the use of macrocyclic lactones in

the treatment and prevention of canine

dirofilarioses

Gabriël Sarah Faculty of Veterinary Medicine, Ghent University Belgien Taenia solium in Zambia, time for control

Gillingwater Kirsten Swiss Tropical and Public health Institute Schweiz Drug Discovery and Development against

Veterinary Trypanosomes

Jiménez Meléndez Alejandro Facultad de Veterinaria Universidad Complutense

de Madrid

Spanien In vitro efficacy of commercially available and new

generation drugs (BKIs) against Besnoitia besnoiti tachyzoites

Mihalca Andrei Department of Parasitology and Parasitic Diseases, University of Agricultural Sciences and

Veterinary Medicine

Rumänien Role of parasites in food-webs: Lessons from Eustrongylides

Olias Philipp Institute of Animal Pathology, Vetsuisse Faculty, University of Bern

Schweiz The transformation of host cell signaling pathways by apicomplexan parasites

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67

7.6 Tätigkeit in Institutionen der Forschungsförderung und Behörden

Peter Deplazes: Ist Gründungsmitglied des EVPC (European Veterinary Parasitology College) und des ESCCAP (European Scientific Counsel Companion Animal Parasites). Er ist zudem Vorstandsmitglied des Stiftungsrates der Karl-Enigk-Stiftung und von Muralt-Stiftung, sowohl auch Vorstandsmitglied des European Veterinary Parsitology Colleges.

Felix Grimm: Ist Mitglied der Diagnostik-Kommission der Schweizerischen Gesellschaft für Tropenmedizin und Parasitologie.

Adrian Hehl: Fungierte in der Berichtsperiode als Gutachter für den Schweizerischen Nationalfonds, die Wellcome Foundation, den NIH und den European Research Council. Er ist Mitglied der Interdisziplinären Kommission der ETH und Universität Zürich, der Kommission für Arbeitssicherheit und Gesundheitsschutz, der Talentförderungskommission „Kids & Careers“, der Fachkommission "Molekularbiologie/Zellbiologie" der Graduate School for Cellular and Biomedical Sciences (GCB), Bern, der Programme „Microbiology and Immunology“ und „Ecology“ der Life Science Zurich Graduate School, sowie diverser Habilitations- und Berufungskommissionen der Vetsuisse und MNF Zürich und Bern. Er ist Mitglied der Scientific Advisory Boards von EuPathDB und GiardiaDB. Er ist Stiftungsrat und wissenschaftlicher Berater der Stiftung FAIRMED.

Alexander Mathis: War in der Berichtsperiode Gutachter für ein Berufungsverfahren einer deutschen Universität sowie für verschiedene Fachzeitschriften. Er ist Mitglied der Fachgruppe Stechmücken des Amtes für Landschaft und Natur, Kanton Zürich. Er ist Vorsitzender der ‚Swiss Vector Entomology Group‘.

Manuela Schnyder: War bis 2016 Mitglied des Vorstandes und Kassier der Schweizerischen Gesellschaft für Tropenmedizin und Parasitologie (SGTP); ist Präsidiums-Mitglied von ESCCAP (European Scientific Counsel Companion Animal Parasites) Schweiz und Vorstands-Mitglied von ESCCAP Europa.

8 Preise, Auszeichnungen und Stipendien Peter Deplazes, “World Association of Veterinary Parasitology Award for Excellence in Research”, September 2017 Deborah Joekel, PhD: Forschungskredit für Postdocs (2017) M. Schnyder, PD-Stiftung, Albert Heim-Stiftung (co-applicant), Award IIL (Initiative for Interactive Learning) 2017 L. Tritten, Albert Heim-Stiftung (co-applicant), Forschungskredit für postdocs, SNSF Ambizione, SNSF 120% support grant, 2017

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9 Drittmittel

9.1 SNF-Projektförderung (CHF)

PSP Bezeichnung ProjektleiterIN Beginn Ende

S-52201-05-01 AMSAR: Arbovirus Monitoring, SurveillAnce and Research - capacity building on mosquitoes and biting midges

PD Dr. Cornelia Silaghi 01.04.2015 31.03.2017

S-52203-01-01 31003A–140803/1

Molecular basis for secretion of a protective biopolymer in the basal parasite Giardia lamblia

Prof. Dr. Adrian Hehl 01.10.2012 30.06.2016

S-52203-03-01 31003A-166437-1

Stage-specific regulation of secretory trafficking in Giardia lamblia: from gene expression to export pathways

Prof. Dr. Adrian Hehl 01.07.2016 30.06.2019

S-52203-02-01 CRSII3_160702

Cyst wall formation: a persistent challenge in Toxoplasmosis/Synergia Prof. Dr. Adrian Hehl 01.10.2015 30.09.2018

S-52201-06-01 31003A_173131

Transmission modelling of emergent echinococcosis in Kyrgyzstan

Prof. Dr. Peter Deplazes 01.04.2017 31.03.2021

S-52201-07-01 PZ00P3_168080

Secretory microRNAs of nematode parasites: small molecules for great success? Dr. Lucienne Tritten 01.09.2017 31.08.2020

9.2 EU-Rahmenprogramm (EUR)

PSP Bezeichnung ProjektleiterIN Beginn Ende

E-52201-03-01 ZIKAlliance Dr. Eva Veronesi 01.10.16 30.09.19

E-52201-04-01 Infravec2 Dr. Eva Veronesi 01.02.17 31.01.21

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9.3 Übrige Drittmittel mit Peer-Review (CHF)

PSP Bezeichnung ProjektleiterIN Finanzquelle Beginn Ende

F-52201-08-01 Pathogenesis of canine angiostrongylosis and dirofilariosis

PD Dr. Manuela Schnyder Gasparoli

Novartis Animal Health AG 01.07.2009 31.12.2017

F-52201-17-01 Vektorkapazitätseigenschaften von Schweizer Mücken aus mutmasslichen 'Hotspots' für West Nil Virus Einschleppung/Übertragung.

Prof. Dr. Alexander Mathis Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV

01.05.2012 18.01.2016

F-52201-22-01 F-52201-22-02 12946.1 VOUCH-LS

New and improved glycoproteins as novel vaccines against parasitic infections

Prof. Dr. Peter Deplazes Kommission für Technologie und Innovation via ETH Malcisbo AG, Zürich

01.10.2012 30.06.2016

F-52201-23-01 Kompetenzzentrum für Vektoren von Tierseuchen- und Zoonoseerregern, Nationales Zentrum für Vektor Entomologie (NZVE)

Prof. Dr. Alexander Mathis Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV

03.01.2013 30.12.2016

F-52201-29-01 Förderung von Forschungsarbeiten in der Veterinärmedizin (Parasitologie)

PD Dr. Manuela Schnyder Gasparoli

Bayer Vital GmbH Geschäftsbereich Tiergesundheit, Germany

01.05.2015 30.04.2017

F-52201-30-01 Vektor-Kapazität von (prä-)alpinen Gnitzen (Ceratopogonidae, Culicoides spp.) für Orbiviren

Prof. Dr. Alexander Mathis Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV

01.06.2015 31.05.2017

F-52203-01-01 NIH: Sexual development in Toxoplasma: functional genomics and proteomics

Prof. Dr. Adrian Hehl Prof. Dr. Peter Deplazes

NIH, via University of Pennsylvania, USA

01.04.2012 30.12.2016

F-52203-04-01 GRC Grant-'A platform to promote postdoc participation in interdisciplinary academic discourse'

Dr. Carmen Faso Graduate Campus Universität Zürich, Dr. Vivien Kappel

01.07.2012 31.12.2020

F-52203-05-01 Generation of a nanobody tookit to unlock the molecular composition of protective dyst wall biopolymere in the intestinal pathogen Giardia lamblia

Prof. Dr. Adrian Hehl Stiftung für wissenschaftliche Forschung

01.04.2017 31.03.2020

K-52201-07-01 Deciphering coagulopathies in Angiostrongylus vasorum-infected dogs

Dr. Lucienne Tritten Forschungskredit der UZH 01.01.2017 31.05.2018

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9.4 Drittmittel ohne Peer-Review (CHF)

PSP Bezeichnung ProjektleiterIN Finanzquelle Beginn Ende

D-52201-12-01 Studies about Angiostrongylus vasorum Dr. Manuela Schnyder Zoetis Belgium S.A. 01.05.2016 30.04.2019

D-52201-13-01 Collaboration studies about Sarcoptes scabiei Dr. Manuela Schnyder Bayer Animal Health Gmbh, Germany

01.06.2016 31.12.2020

D-52201-14-01 Studies about Dirofilaria repens Dr. Manuela Schnyder MSD Animal Health Innovation GmbH, Germany

01.09.2017 31.07.2020

D-52201-11-01 Nationales Referenzlaboratorium für Tierseuchen sowie Zoonosen-assoziierte Vektoren

Prof. Dr. Peter Deplazes / Prof. Dr. Alexander Mathis

BLV Bundesamt für Veterinärwesen und Lebensmittelsicherheit

01.01.2015 31.12.2021

F-52201-25-01 Entwicklung neuer diagnostischer Strategien für den Nachweis spezifischer Antikörper gegen Dirofilaria-Arten des Hundes

Prof. Dr. Peter Deplazes / PD Dr. Manuela Schnyder

Bayer Animal Health GmbH, Germany

01.07.2013 31.12.2020

F-52201-26-01 Entwicklung neuer diagnostischer Strategien für den Nachweis spezifischer Antikörper gegen Lungenwürmer der Katze

PD Dr. Manuela Schnyder

Bayer Animal Health GmbH, Germany

01.12.2013 30.11.2016

F-52201-28-01 Idexx USA: "Zoonoses and translational research at the Institute of Parasitology"

Prof. Dr. Peter Deplazes

IDEXX Laboratories Inc, USA 01.05.2015 30.04.2017

F-52201-32-01 18485.1 PFLS.LS

„Transmission-Blocking Vaccine“ für Katzen gegen Toxoplasma gondii: Studie mit stadium-spezifischen rekombinanten Proteinen

Prof. Dr. Peter Deplazes / Prof. A. Hehl

KTI Kommission für Technologie und Innovation

01.08.2016 30.04.2019

F-52201-33-01 Optimised methods for precision pest management: MOSQDYN

Prof. Dr. Alexander Mathis

Avia-Gis, Belgium 01.03.2017 28.02.2018

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71

10 Organigramm

71

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11 Personal Stand 31.12.2017 Leitung

Deplazes Peter Prof. Dr. med. vet. EVPC, Direktor

Zentrale Dienste

Müller Stefan Laborant mbA, Cheflaborant

Müller Hanspeter Tierpfleger

Ghebre Lettebrhan Laborhilfe

Sekretariat: Parasitologie/Virologie

Dietze Karin Verwaltungsassistentin (Anstellung Virologie)

Andersen Stefania Verwaltungsassistentin (Anstellung Virologie)

De Marinis Shianne Verwaltungsassistentin

Züst Esther Verwaltungsassistentin

Lüscher Liv Lernende Kanton Zürich

Forschung/Research

Zoonosen und translationelle Forschung

Deplazes Peter Prof. Dr. med. vet. , Dipl. EVPC, Direktor

Alvarez Rojas Cristian DVM, PhD, Postdoktorand, EVPC-Resident

Fehr Jeaninne med. vet. Doktorandin

Geiger-Luisoni Stefania PhD, Postdoktorandin

Hegglin Daniel Dr. sc. nat., wissenschaftlicher Mitarbeiter

Huggel Katharina Diplomierte Biomedizinische Analytikerin HF

Joekel Deborah PhD, Assistentin, EVPC-Resident

Kronenberg Philipp med. vet. /PhD Doktorand

Meier Simone med. vet. Doktorandin

Stefanic Sasa Dr. med. vet., PhD, wissenschaftlicher Mitarbeiter

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Molekulare Parasitologie

Hehl Adrian B. Prof. Dr. phil. nat., Extraordinarius

Cernikova Lenka Msc UCT Prague, PhD-Doktorandin

Faso Carmen Dr., Postdoktorandin und Assistentin

Ramakrishnan Chandra Dr. sc. nat. ETH, Postdoktorandin

Ramos Santos Rui Msc University of Lisbon, PhD-Doktorand

Schmidt Florian Laborant

Winiger Rahel MSc University of Basel, PhD-Doktorandin

Vektor Entomologie

Mathis Alexander Prof. Dr. sc. nat. ETH, Wissenschaftlicher Abteilungsleiter

Hauri Jeannine Diplomierte Biomedizinische Analytikerin HF

Kamber Tim Dr. sc nat., Postdoktorand

Paslaru Anca med. vet. Doktorandin

Schaffner Francis PhD Biosystématique, Wissenschaftlicher Mitarbeiter

Tochtermann Chiara med. vet. Doktorandin

Verhulst Niels PhD, Postdoktorand

Veronesi Eva PhD, Postdoktorandin

Veterinärparasitologie

Schnyder Manuela PD Dr. med. vet., Wiss. Abteilungsleiterin, Dipl. EVPC

Fiechter Ruth Dr. med. vet., wissenschaftliche Mitarbeiterin

Gillis Nina med. vet. Doktorandin

Güldner Emily med. vet. Doktorandin

Hertzberg Hubertus

PD Dr. med. vet., Dipl. EVPC, Wissenschaftlicher Mitarbeiter

SNF Ambizione Tritten Lucienne

Dr. PhD, Oberassistentin, Junior Group Leader

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Dienstleistung

Diagnostikzentrum Parasitologie IPZ

Grimm Felix Dr. phil. II, Wissenschaftlicher Abteilungsleiter

Baumann Franziska Laborantin

Camenisch Seraina Laborantin

Ebeid Susanne Laborantin

Glauser Larissa Laborantin

Gori Francesca Laborantin

Kaspar-Witt Vera Diplomierte Biomedizinische Analytikerin HF

Spalinger Mirjam Laborantin

Wolfensberger Elisabeth Laborantin

Zuleger Kerstin Laborantin

Hundestation Stiegenhof

Schnyder Manuela PD Dr. med. vet., Wiss. Abteilungsleiterin, Dipl. EVPC

Brändle Barbara Tierpflegerin

Steiner Kim-Vanessa Tierpflegerin

Wegmann Elvira Tierpflegerin