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May. 2007 共焦点レーザスキャン蛍光相関分光顕微鏡システム LSM 510 META ConfoCor 3 共焦点レーザスキャン蛍光相関分光顕微鏡システム カールツァイスマイクロイメージング

LSM 510 META ConfoCor 3 - 札幌医科大学web.sapmed.ac.jp/bme/technoseminer/clsm/Combi.pdf(Mander’s) (0 ~ 1) 定量的Co-localization 共存部位の定量数値化 May. 2007

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May. 2007

共焦点レーザスキャン蛍光相関分光顕微鏡システム

LSM 510 META ConfoCor 3

共焦点レーザスキャン蛍光相関分光顕微鏡システム

カールツァイスマイクロイメージング

May. 2007

May. 2007

共焦点レーザスキャン顕微鏡 (LSM 510)

- Contents -

スペクトルイメージング (META)

蛍光相関分光法 (ConfoCor3 ; FCS)

May. 2007

Non confocal Confocal

空間分解能 (XYZ)の向上

焦点深度を薄くして、局在の有無を観察

焦点深度厚い

蛍光顕微鏡は焦点深度が厚い

薄い

Projection(投影像)

厚みのある試料の観察に最大限の効果を持つ

共焦点レーザスキャン顕微鏡の基本原理

May. 2007

光学的に共役(共焦点 ; Confocal)

共焦点レーザスキャン顕微鏡の基本原理

Small PH:out-of-focusの光は

殆ど入らないが暗い

Large PH:明るいが、out-of-focusの光も通してしまう

May. 2007

厚い 薄い

波長(λ)

ピンホール径

対物レンズの開口数(NA)

被写体深度(光学断層像の厚さ)の設定

共焦点レーザスキャン顕微鏡の基本原理

May. 2007

Lacrimal gland endpieces, Guinea pigGreen/Actin BODIPY-FLRed/Nc Eth Homodimer-1Prof. Y. Sato, Iwate Medical Univ.

3D Rendering

光学断層像の取得、空間分解能 (XYZ)の向上

共焦点レーザスキャン顕微鏡の光学原理

May. 2007

厚みのある生きたサンプル内での変化を画像化

t

X

YIntensity

…..

特定の深さでの高コントラスト像を連続的に取得 (XY-t)

Mast Cell RatRed ; SFRM-B/Granule,Green ; Fluo-3/Calcium

S. Mori, T. Saino, Y. SatoIwate Medical Univ.

時間分解能の向上

May. 2007

XY

Z

t

…..

サンプルが焦点面以外で、光軸方向に動く場合に

CardiomyocyteMitochondria GFP

Carl Zeiss Jena AIM

複数枚の光学断層像を時間的に連続に取得 (XYZ-t = 4D)

時間分解能の向上

May. 2007

Line Scan

Rotated Line Scan

Spline Scan Tile Scan

Uni-directional Scan Bi-directional Scan

Rotated Scan Rotated Scan

Beliebige ROIRandom Window Scan

様々な画像の描画方法

※オプションが必要

May. 2007

Rotated Scan

Line Scan

Rotated Line Scan

Spline Scan Tile Scan

Uni-directional Scan Bi-directional Scan

Rotated Scan

Beliebige ROIRandom Window Scan

ステージを回転させなくとも、自由自在な角度でスキャニングが可能

全体像を見ながら、任意の位置で、任意の回転角、ズーム倍率で表示

様々な画像の描画方法

May. 2007

Line Scan

Rotated Line Scan

Spline Scan Tile Scan

Uni-directional Scan Bi-directional Scan

Rotated Scan Rotated Scan

Beliebige ROIRandom Window Scan

Line Scanでは輝度を

Line-Zでは断層像を

Splineで境界を設定

Spline-Zで境界面の断層像を

様々な画像の描画方法

May. 2007

Line Scan

Rotated Line Scan

Spline Scan Tile Scan

Uni-directional Scan Bi-directional Scan

Rotated Scan Rotated Scan

Beliebige ROIRandom Window Scan

99ヶ所までROIの設定が可能

様々な画像の描画方法

May. 2007

Bi-directional ScanLine Scan

Rotated Line Scan

Spline Scan Tile Scan

Uni-directional Scan

Rotated Scan Rotated Scan

Beliebige ROIRandom Window Scan

Calcium Wave in Salivary gland / Fluo-3 AMDr. B. Zimmermann Carl Zeiss Jena A.I.M.

Living Cell内のダイナミクスの画像化に有効

時間分解能の向上

May. 2007

LP560BP505-530

500 600550

Red FL

Cross-talk(蛍光の漏れこみ)

Green FL

488nm 543nm

チャネル間の蛍光クロストークの問題とその対処法

May. 2007

BODIPY-FL (F-actin)

MitoTracker (Mitochondria)

Marge / White

チャネル間の蛍光クロストークの問題とその対処法

May. 2007

BP505-530

BODIPY-FL

LP560

Mito-tracker

チャネル間の蛍光クロストークの問題とその対処法

May. 2007

同時取り込みSingle Track

シーケンシャル取り込みMulti Track

Multi Trackはコローカリゼーションの調査には必須

チャネル間の蛍光クロストークの問題とその対処法

May. 2007

Mitochondria in Cultured Hepatocyte

Mito-tracker Red / Ex.543nmRhodamine 123 / Ex.488nm

Prof. T. Kawanishi, N.I.H.S.

May. 2007

HEK cells (free GFP, YFP_SHP1 fusion)

Dr.O.Baumann, Univ. of Potsdam

定量的 Co-localization

輝度分散図と画像間での双方向での定量解析

May. 2007

Cultured HepatocyteMitochondria/TMRME, Golgi Apparatus/BODIPY-seramide

Prof.T.Kawanishi, Dr.H.Kawai N.I.H.S.

Colocalization coefficients(0 ~ 1)

Weighted Colocalization coefficients(0 ~ 1)

Correlation coefficients(Pearson’s)

(-1 ~ +1)

Overlap coefficients(Mander’s)

(0 ~ 1)

定量的 Co-localization共存部位の定量数値化

May. 2007

Co-localization部位のみで3D画像を作成

経時的にCo-localization部位を画像化、解析

定量的 Co-localization

共存部位の切り取り、3D、Timeseries画像作成

May. 2007

画像のプレビュー

画像のパラメータの一部

画像取得時の全てのハードウエア設定を1クリックで瞬時に再現・いつも同一条件で画像化したい場合に・マルチユーザーの環境に

無償のソフトウエアをダウンロード可能www.zeiss.de/imagebrowser

画像データベースとReUSE機能

May. 2007

FRAP, iFRAP, FLIP, FLAP

repeated bleach monitor loss

FLIP(fluorescence loss in photobleaching)

single bleach monitor loss

iFRAP(inverse FRAP)

single activation track activated population

Photoactivation(activating paGFPwith 405 or 413 nm) paGFP

single bleach monitor recovery

FRAP(fluorescence recovery after photobleaching)

ブリーチング機能を使用したアプリケーション

May. 2007

FRAP - Fluorescence Recovery after Photobleaching

ROI 1

ROI 2

ROI 1

ROI 2

Pixel-precise bleaching of the nucleus followed by slow GFP flow-back from the cytoplasm(note that the overall concentration of fluorescent GFP is reduced due to the bleaching event).

A. Sporbert, MDC Berlin, Germany

online

single bleach monitor recovery

FRAP(fluorescence recovery after photobleaching)

FRAP

May. 2007

Photoactivation

Photoactivation(activating paGFPwith 405 or 413 nm)

repeated bleach

405nm

paGFP

Ex488nm

track activated population

Ex488nm

そのままでは488nmでは励起されない。ほとんど見えない。

405-413nmの光照射をすると・・・

光照射で活性化された分子だけが488nmで励起され、強い蛍光を発する。

paGFPのみ細胞内に発現、あるいはターゲットのタンパク質とつなげ

て発現させ、任意の部分のみに405nmレーザー照射すれば…

①標的分子・細胞のマーキング

②標的分子の動きを追う

③分子の拡散速度をはかることで、

分子間相互作用をみる。

などの応用が可能。

May. 2007

LSM510 META

Lambda separation and 3Dof CFP/GFP fusion myocyteProf. F.Ishikawa, RIKEN YokohamaDr. M.Fukata, Kyusyu Univ.

6 types of FluorescenceProtein (CFP/MiCy/EGFP/YFP/dKeima570, mKeima)Revealed organella in VeroProf. A.Miyawaki, Dr. T.KogureRIKEN, Wako

クロストークなしで最大8色まで分離

スペクトルイメージング (FRET、Kaede、レシオメトリック試薬)

スペクトルイメージングについて

May. 2007

さらに…..

励起光のクロストークが強いGFPやその改変型などを組合せて、十分な

蛍光シグナルとして分離するのは極めて困難488nm ….. EGFP, EYFP, DsRED, ECFP458nm ….. ECFP, EGFP, DsRED, EYFP

514nm ….. EYFP, DsRED, EGFP

Multi-fluorescence Imagingの限界

なぜ波長分解イメージングが必要なのか?

May. 2007

反射型回折格子により、各点のシグナルを分光↓

画像を構成する全画素が波長情報を持つ

メカ的な稼動部がなく再現性に優れる

波長の選択は32個の各PMTを電気的に選択(波長分解能は730-380nm/32で約10.7nm)

↓1回の走査で幅広い波長を分析、画像化

↓時間分解能が高い、ダメージが最小限

Multi-channel (32 PMTs)arranged Spectral Order

Lambda-stackとLinear-unmixing

May. 2007

LSM510 META32 Channel 同時画像取得(DAPI~Cy5蛍光領域)

32 Multi-channel simultaneous detection & Z-sectioning of 5 color sample ( DAPI + CFP + GFP + Cy3 + Cy5 )

グレーティングで分光一気に検出

May. 2007

各画素毎に波長情報 (λ)を持たせて画像を生成する

450 500 550 600

CFP

450 500 550 600

GFP

450 500 550 600

YFP

各参照スペクトルを取得する 各スペクトルに重み付けを与える

450 500 550 600

0.2 x YFP + 0.4 x CFP + 0.4 x GFP

CFP GFP YFP

分離(Unmixing)するEmission Fingerprinting

スペクトルパターンの計算によって分離

Lambda-stackとLinear-unmixing

May. 2007

LSM510 METAOn-line Fingerprinting (Live Unmixing )

DAPI CFP GFP

Cy3 Cy5 Unmixed & Overlay

参照Spectralを登録

この波長のみを分離計算表示

May. 2007

5蛍光ビーズバンドパスフィルタ様設定

5蛍光ビーズEmission Fingerprinting

May. 2007

Multi Trackingでもクロストーク回避できないとき

Lambda Stackで波長情報

を含む画像を取得

FITCGFP

Ref.となるスペクトル情報を

分析、登録する

GFP FITC

GFP and FITC (Distance of emission peaks 7nm)Cultured fibroblasts expressing, GFP-Histone2Bfusion protein (green), actin filaments stained with FITC-phalloidin (red)Mary Dickinson, PhD, Caltech, Pasadena USA

Unmixing

May. 2007

蛍光(Alexa 532, Cy3)と自家蛍光のサンプルSection through fly (Drosophila melanogaster) retina labeled with Alexa 532-phalloidin and Cy3 (Na+/K+-ATPase immunostain)

Sample: Dr. O. Baumann, Univ. Potsdam, Germany

May. 2007

Cy3Alexa 532

Alexa 532 + Cy3

Autofluorescence

O. Baumann, Univ. Potsdam, Germany

蛍光(Alexa 532, Cy3)と自家蛍光のサンプルSection through fly (Drosophila melanogaster) retina labeled with Alexa 532-phalloidin and Cy3 (Na+/K+-ATPase immunostain)

May. 2007

CFP

CGFP

GFP

YFP

HEK 239 cell, CFP / ER, CGFP-mutant /Nuclei, GFP / Plasma-membrane, YFP / Mitochondria

Prof. A. Miyawaki, Dr. M. Hirano RIKEN, B.R.I.

CFP;Blue, CGFP;Green, GFP;Red, YFP;Yellow

Multi-fluorescence ApplicationMulti-color Fluorescence Protein in 2D, 3D

May. 2007

t

…..

Lambda-modeX

4D-imagingCell division of HeLaMixture of H2B-CFP, GFP, YFPZ & Lambda projection along time course

Prof.Y.Yoneda, Dr.T.SaiwakiOsaka Univ.

Z

Multi-fluorescence ApplicationMulti-color Fluorescence Protein in 4D

May. 2007

1: Lambda Timeseries 2: Spectral Patternの経時変化を分析

Ch 1

(e.g Pre, green)

Ch 2

(e.g Partial, red)

Ch 3

(e.g Post, blue)

Spectral Patternの違いによって細胞を分類

Kaede、Indo-1などのダイナミックなRatio-metricプローブを用いた画像化の解析に有効

細胞内の蛍光波長の経時変化を明瞭に表示

Photo-conversionとLambda AnalysisPre-, Post-conversionの波長解析

May. 2007

FRET Application従来はフィルタの最適化によって対応

Scheme of Yellow-cameleon for [Ca2+]imonitoring designed by A.Miyawaki

Scheme of excitationAbsorbance of CFP

Emission spectra of Y-Cameleonexcited 458nm measured in-vivo

May. 2007

Optimize Emitters:482.5±30nm / CFP530.0±30nm / YFP

[Ca2+]i dynamics in cultured Hepatocyteimaged by Yellow-cameleon

Prof. T. Kawanishi, N.I.H.S.

Temporal analysis of intensity of CFP, YFP and Ratio

FRET Application従来はフィルタの最適化によって対応

May. 2007

Optimize Emitters,Optimize Beamsplitters

Flexibility ?

Refelence CFPRefelence YFP

Detection spectral range:460-640nm

FRET ApplicationFRETの設定がFlexible, 簡単に

METAでは励起レーザの波長と蛍光の検出帯域を決めるだけ!

May. 2007

Caspase-3 activation in HeLaApoptosis induced by StaurosporineCFP / YFP FRET to NO FRET

Prof. T. Kawanishi, Dr. H. Kawai, N.I.H.S.

t

Spectralの経時変化

Unmixing経時画像CFP/REDYFP/GREEN

Spectral測定領域を設定

FRET ApplicationFRET imaging on Timeseries

May. 2007

0

500

1000

1500

400 450 500 550

0

1

2

3

4

5

6

7

0

5 0 0

1 0 0 0

1 5 0 0

2 0 0 0

2 5 0 0

4 0 0 4 5 0 5 0 0 5 5 0

0

1

Intensity Ratio

(sec.)

CY initiator

GR effecter

CFP GFP YFP RFP

Lambda detection

Time

Spatio-temporal Multi-FRET imaging of initiator and effecter Caspase activation in the same HeLa

Dr. H. Kawai, Prof. T. Kawanishi, N.I.H.S.

FRET Application2 Pairs of FRET imaging on Timeseries

May. 2007

Lambda detection

Time

Bleaching

No FRET

FRET

Dimerization of GABA-B receptorin BHK cell membrane appeared byAcceptor bleaching method& lambda detection

Dr. Y. Uezono, Prof. K. Taniyama, Nagasaki Univ.

GABA B1 + CFPGABA B2 + YFP

FRET ApplicationLambda-stack + Acceptor bleaching法

May. 2007

蛍光相関分光(FCCS)顕微鏡システム (ConfoCor3)

LSM510(META)ベースの分子間相互

(相関)作用測定・解析システム

1分子の挙動解析

短時間の測定で、濃度・拡散・相互作用

を解析可能

May. 2007

Beampath

May. 2007

• FCS : Fluorescence Correlation Spectroscopy

蛍光相関分光法

• FCCS : Fluorescence Cross-Correlation Spectroscopy

蛍光相互相関分光法

• AC : Auto-correlation

自己相関関数

• CC : Cross-correlation

相互相関関数

用語

May. 2007

FCS: 共焦点領域内の蛍光輝度揺らぎの解析

• Very fast, sensitive and highly quantitative.• 濃度の定量• 分子の可動性の定量• 分子間相互作用の定量 (FCCS)

• 1回の測定で同時にいくつかのパラメータを算出

May. 2007

A

共焦点測定容量(» 1 fl)

2w2w1

分子数: N

拡散時間 :tfree, tbound

など測定

FCS (Fluorescence correlation spectroscopy)

B

Time (t)

I(t)

<I(t)>

蛍光強度の揺らぎを測定

C

Time [ms]

Auto

corr

elation

( ) ( )( ) 2(tF

tFtFG dtdt +=)

0,01 0,1 1 10 100 1000 10000

0,9

1,1

1,3

1,5

1,7

1,9相関関数を計算

Auto

corr

elation

Time [ms]tfree tbound

D1/N+1

0,01 0,1 1 10 100 1000 10000

0,9

1,1

1,3

1,5

1,7

1,9

フィッティング後、パラメータを読み取る

May. 2007

May. 2007

AC : autocorrelation 自己相関関数

相関関数

May. 2007

• 直接読み取れるパラメータ:

測定ボリューム内の平均分子数

結合分子と非結合分子の割合

測定ボリューム内の分子の平均滞在時間

Triplet timeとTriplet fraction

• 計算して得られるパラメータ:

濃度 c [mol/l]

拡散係数 [mm2s-1]

結合定数 K [mol-1]

平衡定数 kass [mol-1s-1]; kdiss [s-1]

速度定数 Km, turnover kcat

相関関数

May. 2007

LSM-FCSコンビシステム

1. LSMで画像取得2. FCS測定箇所をマーク3. FCS測定

May. 2007

Measurement point Position in cell Correlation Concentration Diffusion 1 in membrane low high slow (1.5 ms) 2 in cytosol medium medium medium (0.6 ms) 3 in medium high low fast (0.1 ms)

1

2

3

DiI

LSM-FCSでの測定例

1

2

3

May. 2007

1-3

4

5

5 mm

measurementpoint

position within the cell correlation protein concentration

1, 2, 3 in the nucleoplasm low high

4 in the nucleolus high low

5 in the cytoplasm none no protein

1

4

5

2

3

Rahn, Sporbert, Cardoso & LeonhardtFranz-Vollhard KlinikBerlin, Germany

GFP-tagged nuclear protein

Exploring distribution and dynamic changes in mobility

May. 2007

Determination of molecular sizes

eGFP-RBeGFP

Calculation of molecular sizes•Determination of viscosity with known eGFP parameters•Determination of size of eGFP-RB with calculated viscosity (RB = Retinoblastoma tumor suppressor)

radiusichydrodynamrmoleculetheofdensitymeanρetemperaturT

numbersAvogadro'NconstantsBoltzmann'k

weightmolecularmplanexyinfocuslaser ofradiusωviscosityηconstantdiffusionnaltranslatioD

43;

46

A

xy

3

2

=====

=-===

===AD

xy

Nmr

rkTD

prt

w

ph

Normalized autocorrelation curves of eGFP and eGFP-RB in the nucleus of Rat-1 cells

SP Angus1, DA Solomon1, RF Hennigan1, ES Knudsen1 , L Kuschel21University of Cincinatti, Cincinatti, OH2Carl Zeiss Jena GmbH, Jena

A small percentage of RB is part of a huge complex

tD = 285 usMW = 93 kDa

tD = 4000 usMW = 220 MDa

May. 2007

Looking for complex integrity

Normalized autocorrelation curves of eGFP-TAM67 in the nucleus of HAT-1080 cells or in RIPA cell lysates

RF Hennigan1, SP Angus1, DA Solomon1, L Kuschel2, ES Knudsen1

1University of Cincinatti, Cincinatti, OH2Carl Zeiss Jena GmbH, Jena

nucleus

lysate

Examination of complex stability

eGFP-TAM67 is part of a complex which shows a 100x higher molecular weight in intact nuclei than in cell lysates (TAM67 is a mutant c-jun Protein)

-> Detergent stable core complex

May. 2007

Investigating complex formation of mutant proteins

Normalized autocorelation curves of eGFP, eGFP-WTRB and eGFP-MUTRB in the nucleus of Rat-1 cells

SP Angus1, DA Solomon1, RF Hennigan1, ES Knudsen1 , L Kuschel21University of Cincinatti, Cincinatti, OH2Carl Zeiss Jena GmbH, Jena

eGFPeGFP-WTRB

eGFP-MUTRB

eGFP-WTRB eGFP-MUTRB

monomeric

complexed

Hypophosphorylated mutant RB is predominantly complexed and mediates transcriptional repression

Examination of mutants•Phosphorylated WTRB is predominantly monomeric•Hypophosphorylated MUTRB is predominantly complexed

% o

f to

tal pro

tein

sp

ecie

s

May. 2007

Looking for interaction

1E-3 0.01 0.1 1 10 100 10001.00

1.05

1.10

1.15

1.20

A subunit

crosscorrelation

B subunit

corre

latio

n G

(t)

t / ms

Intracellular cross-correlation between A and B subunits of endosomally localized cholera toxin in live cells

1E-3 0.01 0.1 1 10 100 10001.00

1.01

1.02

1.03

1.04

1.05

1.06

1.07

crosscorrelation

A subunitsB subunitsco

rrel

atio

n G

(t)

t / ms

Loss of intracellular cross-correlation between A and B subunits of cholera toxin upon their separation in the GOLGINote also different diffusion characteristics

K. Bacia, I. Majoul & P. SchwilleMPI, Dept. of Biophysical ChemistryGoettingen, Germany

May. 2007

May. 2007

May. 2007

APDやGaAsP(FCS用高感度検出器)をイメージングに。

少ないレーザ照射でS/Nのよい画像を得ることが可能

FCCSの他にも・・・

PMT(gain >900, AOTF 10%)

APD(digital gain 1, AOTF 0.1%)

sample: yeast cells expressing GFP fusion, Wiegraebe, Stowers Institute Kansas City

APDイメージング

PMT(gain >900, AOTF 10%)

APD(digital gain 1, AOTF 1%)

sample: Drosospila embryo neuron FITC

May. 2007