108
CEMIL ALTUNAY İSTANBUL ÜNİVERSİTESİ SAĞ. BİL. ENST. YÜKSEK LİSANS İSTANBUL-2018 Tez kabul edildikten sonra yapılan sabit ciltte sırt yazısı bu şablona göre yazılacak. Yazılar tek satır olacak Cilt sırtı yazıların yönü yukarıdan aşağıya (sol yandaki gibi) olacak . Tez, Yüksek Lisans’sa, YÜKSEK LİSANS TEZİ; Adınızı soyadınızı giriniz Tez Sınavının yapılacağı yılı yazınız

olacak - İstanbul

  • Upload
    others

  • View
    4

  • Download
    0

Embed Size (px)

Citation preview

CE

MIL

AL

TU

NA

Y

İS

TA

NB

UL

ÜN

İVE

RS

İTE

Sİ S

. BİL

.

EN

ST

.

KS

EK

LİS

AN

S

İS

TA

NB

UL

-20

18

Tez kabul edildikten sonra yapılan sabit ciltte

sırt yazısı bu şablona göre yazılacak. Yazılar tek satır

olacak

Cilt sırtı yazıların yönü yukarıdan aşağıya

(sol yandaki gibi) olacak .

Tez, Yüksek Lisans’sa, YÜKSEK LİSANS

TEZİ;

Doktora ise DOKTORA TEZİ ifadesi

kalacak

Adınızı soyadınızı giriniz

Tez Sınavının yapılacağı yılı yazınız

ii

T.C.

İSTANBUL ÜNİVERSİTESİ

SAĞLIK BİLİMLERİ ENSTİTÜSÜ

DANIŞMAN

DOÇ. DR. SELÇUK SÖZER TOKDEMİR

GENETİK ANABİLİM DALI

GENETİK PROGRAMI

İSTANBUL-2018

CEMİL ALTUNAY

POLİSİTEMİA VERA’DA SİTOKİN SİNYAL

YOLAĞININ ETKİSİ

( YÜKSEK LİSANS TEZİ )

iii

iv

BEYAN

v

İTHAF

Aileme ithaf ediyorum

vi

TEŞEKKÜR

Değerli desteklerinden dolayı danışmanım Selçuk Sözer TOKDEMİR‘e;

Ekip arkadaşlarım İldeniz USLU, Hilal HEKİMOĞLU, Can Veysel ŞOROĞLU,

Büşra YAŞA, Selin Fulya TOPRAK ve Cemal Çağıl KOÇANA’ya;

Aziz Sancar Deneysel Tıp Araştırma Enstitüsü Öğretim Üyelerine, çalışanlarına

ve tüm arkadaşlarıma;

Sağlık teknikeri Abdullah YILMAZ ve Biyolog Ayşe ENGİN’e;

Değerli arkadaşlarım Sami YEŞİLKAYA, Emre MURATOĞLU, Ali İsa TAŞ,

Ferid TAŞ, Barış TAŞ, Burak GÜLBOL, Ferdi KURTOĞLU ve Koray REYHAN’a;

Lisans ve Yüksek Lisans arkadaşım Esra KAYNAK’a;

Tuğçe TORUN’a;

Annem Faize ALTUNAY, babam Mehmet Ziya ALTUNAY ve kardeşim Mert

ALTUNAY’a teşekkür ederim.

Bu çalışma, İstanbul Üniversitesi Bilimsel Araştırma Projeleri Birimi tarafından

desteklenmiştir. Proje No: 27338

vii

İÇİNDEKİLER

TEZ ONAYI ................................... ERROR! BOOKMARK NOT DEFINED.

BEYAN .............................................................................................................. İV

İTHAF .................................................................................................................. V

TEŞEKKÜR ....................................................................................................... Vİ

İÇİNDEKİLER ................................................................................................. Vİİ

TABLOLAR LİSTESİ ......................................................................................... X

SEMBOLLER / KISALTMALAR LİSTESİ ................................................... Xİİ

ÖZET ................................................................................................................ XV

ABSTRACT .................................................................................................... XVİ

1. GİRİŞ VE AMAÇ ............................................................................................. 1

2. GENEL BİLGİLER .......................................................................................... 3

2.1. Miyeloproliferatif Neoplaziler ..................................................................... 3

2.1.1. Tarihçe .................................................................................................... 3

2.1.2. Sınıflandırma ........................................................................................... 4

2.1.3. Klasik Miyeloproliferatif Neoplazilerin Genetik Temeli ve Moleküler

Patofizyolojisi ............................................................................................................... 5

2.1.4. JAK2 Gen Mutasyonu ve Mutasyonun MPN Patogenezindeki Rolü ..... 6

2.1.5. “MPN ile sınırlı” Mutasyonlar, JAK2 Kinaz-bağımlı Sitokin Reseptör

Yollarını Aktive Eder .................................................................................................... 7

2.1.6. MPN Başlangıcında Önemli Faktörler .................................................. 10

2.2. Sitokinler .................................................................................................... 11

2.2.1. Kemokinler............................................................................................ 12

2.2.2. IFN ile Uyarılabilen CXCR3 Kemokinleri ........................................... 15

2.2.3. CXCR3 .................................................................................................. 16

2.2.3.1. CXCR3'ün Tanımlanması ve Ekspresyonu ...................................... 16

2.2.3.2. Alternatif Eklemeyle Oluşturulan CXCR3 Varyantlarının Keşfi .... 18

2.2.3.3. CXCR3'ün in vivo İşlevi için Ekleme Varyantlarının Potansiyel

Önemi ........................................................................................................................ 20

2.2.4. Kemokin ile Uyarılan CXCR3 İnternalizasyonu .................................. 21

2.2.4.1. CXCR3 Ligandlarının Hastalık ve Tedavi ile İlişkisi ...................... 22

2.2.5. MPN ile İlişkilendirilen Sitokin ve Kemokinler ................................... 23

viii

3. GEREÇ VE YÖNTEM ................................................................................... 25

3.1. Gereç .......................................................................................................... 25

3.1.1. Hasta Örnekleri ..................................................................................... 25

3.1.2. Deneylerde Kullanılan Kontrol Örnekleri ............................................. 27

3.1.2.1. Sağlıklı Kontrol Örnekleri ................................................................ 28

3.1.3. Kullanılan Kimyasal Maddeler ............................................................. 28

3.1.4. Kullanılan Kitler ................................................................................... 29

3.1.5. Kullanılan Cihazlar ............................................................................... 30

3.1.6. Kullanılan Tampon ve Çözeltiler .......................................................... 31

3.2. Yöntem ....................................................................................................... 32

3.2.1. Mononükleer Hücre İzolasyonu ............................................................ 32

3.2.2. Hücre Dondurma ................................................................................... 33

3.2.3. Hücre Çözme......................................................................................... 34

3.2.4. Hücre Ayrımı ........................................................................................ 35

3.2.4.1. CD34 MicroBead Kit (MACS Separation) ile Hücre Ayrım

Prosedürü................................................................................................................... 35

3.2.4.2. CD34+/-Lineage- Popülasyon Eldesi Prosedürü ............................... 36

3.2.5. Hücrelerden DNA İzolasyonu ............................................................... 38

3.2.6. İki Aşamalı Allel Spesifik Nested PZR ................................................ 38

3.2.7. Agaroz Jelde Görüntüleme .................................................................... 42

3.2.7.1. Agaroz Jelin Hazırlanması ............................................................... 42

3.2.7.2. Jele Yükleme Ve Görüntüleme ........................................................ 42

3.2.8. RNA İzolasyonu .................................................................................... 42

3.2.9. Ters Transkriptaz Polimeraz Zincir Reaksiyonu .................................. 44

3.2.10. Gerçek Zamanlı Kantitatif PZR (q-PCR)............................................ 46

3.2.11. Akım Sitometri Cihazında Antikor Hücre Yüzey Analizi .................. 50

3.2.12. CD34+ ve CD34+Lin- Hücrelere GM-CSF Uygulaması ..................... 50

3.2.13. Ekspresyon Verilerinin İstatiksel Analizi ........................................... 51

4. BULGULAR ................................................................................................... 52

4.1. DNA İzolasyon Sonuçları .......................................................................... 52

4.2. RNA İzolasyon Sonuçları .......................................................................... 53

4.3. İki Aşamalı Nested PZR Sonuçları ............................................................ 55

4.4. Gen İfadesi Sonuçları ................................................................................. 58

ix

4.5. Hücre Yüzey CXCR3 Reseptör Anlatımı .................................................. 60

4.5.1. CD34+ ve CD34+Lin- Hücrelere GM-CSF Uygulaması Sonuçları ....... 62

5. TARTIŞMA .................................................................................................... 64

KAYNAKLAR ................................................................................................... 68

HAM VERİLER ................................................................................................. 83

FORMLAR ......................................................................................................... 84

ETİK KURUL KARARI .................................................................................... 85

PATENT HAKKI İZNİ ...................................................................................... 86

İNTİHAL RAPORU İLK SAYFASI .................................................................. 87

ÖZGEÇMİŞ ........................................................................................................ 88

x

TABLOLAR LİSTESİ

Tablo 2-1: Güncellenmiş (2016) WHO sınıflandırmasına göre MPN’lerin başlıca

alt tipleri (3) ...................................................................................................................... 4

Tablo 3-1: Hastaların Klinik Parametreleri ........................................................ 25

Tablo 3-2 ............................................................................................................. 28

Tablo 3-3: Kullanılan kimyasal maddeler .......................................................... 28

Tablo 3-4: Kullanılan Kitler ............................................................................... 30

Tablo 3-5: Kullanılan cihazlar ............................................................................ 30

Tablo 3-6: Hücre Sayımında Kullanılan Formül ................................................ 33

Tablo 3-7: Allel Spesifik Nested PZR 1. Aşama bileşenleri .............................. 39

Tablo 3-8: İki aşamalı PZR için tasarlanan primer setleri .................................. 39

Tablo 3-9: İki aşamalı PZR’nin 1. aşama koşulları ............................................ 40

Tablo 3-10: Allel Spesifik Nested PZR 2. aşama bileşenleri ............................. 41

Tablo 3-11: Allel spesifik Nested PZR’nin 2. aşama koşulları .......................... 41

Tablo 3-12: Kalıp RNA/Primer Karışımı ........................................................... 44

Tablo 3-13: Reaksiyon Karışımı ......................................................................... 45

Tablo 3-14: cDNA Sentez Koşulları ................................................................... 45

Tablo 3-15: Gen ekspresyon analizleri için PZR bileşenleri .............................. 47

Tablo 3-16: Kantitatif gerçek zamanlı PZR Reaksiyon Bileşenleri ................... 47

Tablo 3-17: CXCR3A, CXCR3B, CXCL9 ve GAPDH Primer Dizileri ............... 49

Tablo 4-1: Mononükleer Hücrelerden İzole Edilen DNA örneklerinin ölçüm

değerleri .......................................................................................................................... 52

Tablo 4-2: Mononükleer Hücrelerden İzole Edilen DNA örneklerinin ölçüm

değerleri .......................................................................................................................... 53

Tablo 4-3: Hastaların Mutasyon Durumları ........................................................ 56

xi

ŞEKİLLER LİSTESİ

Şekil 2-1: JAK kinaz ailesinin homoloji bölgeleri (46) ........................................ 7

Şekil 2-2: MPN hücrelerinde JAK – STAT sinyali (53) ...................................... 8

Şekil 2-3: JAK2V617F ve CALR mutantlarının onkojenik özelliklerinde sitokin

reseptörlerinin rolü (4) .................................................................................................... 10

Şekil 2-4: CXC kemokinlerin genel yapısı (91) ................................................. 13

Şekil 2-5: CXCR3 ligandlarının özgünlüklerine katkıda bulunabilecek

mekanizmalara genel bakış (91) ..................................................................................... 14

Şekil 2-6: Cxcr3 gen yapısına genel bakış (91) .................................................. 18

Şekil 4-1: Alel Spesifik PZR Jel Görüntüsü ....................................................... 58

Şekil 4-2: CXCR3B gen ifadesi sonucu. ............................................................. 59

Şekil 4-3: CXCR3A gen ifadesi sonucu. ............................................................. 59

Şekil 4-4: CXCR9 gen ifadesi sonucu. ................................................................ 60

Şekil 4-5: 22 ve 24 numaları hastaların akımölçer sonuçları. ............................. 61

Şekil 4-6: Akımölçer verilerinin istatistiksel analizi. ......................................... 62

xii

SEMBOLLER / KISALTMALAR LİSTESİ

γδT: Gama delta T hücreleri

γIRE: γ-interferon yanıt elementi

ACKR: Atipik kemokin reseptörleri

Bç: Baz çifti

[Ca2+]i: Hücre içi kalsiyum konsantrasyonları

CAC: Klinik Danışma Komitesi

CALR: Calreticulin

[cAMP]i: Siklik adenosin monofosfat

CD34: (Cluster of differentiation 34, hematopoietic progenitor cell antigen)

cDNA: Komplementer Deoksiribonükleik Asit

CXCL9: C-X-C Motif Chemokine Ligand 9

CXCL10: C-X-C Motif Chemokine Ligand 10

CXCL11: C-X-C Motif Chemokine Ligand 11

CXCL12: C-X-C Motif Chemokine Ligand 12

CXCR3: C-X-C Motif Chemokine Receptor 3

CXCR3A: C-X-C Motif Chemokine Receptor 3 – A izoformu

CXCR3B: C-X-C Motif Chemokine Receptor 3 – B izoformu

DH: Dendritik hücre

dNTP: Deoksinükleotid Trifosfat

DNA: Deoksiribonükleik Asit

DMSO: Dimetil Sülfoksit

DSMZ: Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen

EDTA: Etilen Diamin Tetra Asetik Asit

Epo: Eritropoietin

EpoR: Eritropoietin Reseptörü

ET: Esansiyel Trombositoz

F: Fenilalanin

FACS: Fluorescence Assisted Cell Sorting

xiii

FBS: Fetal Sığır Serumu, Fetal Bovine Serum

FERM: Dört-noktalı-bir (four-point-one) ezrin radixin moesin

G: Guanin

Gαi: G alfa proteinlerinin inhibitör tipi

Gαs: Uyarıcı G alfa protein sinyali

GAG: Glikosaminoglikanlar

G-CSFR: Granülosit Koloni Uyarıcı Faktör Reseptörü

GM-CSF: (Granülosit Makrofaj Koloni Uyarıcı Faktör)

GPCR: G protein-bağlı reseptörlerdir

HEL: Human Erythroleukemia Cell Line

HKK: Hematopoetik Kök Hücre

HUMEC: İnsan mikrovasküler endotelyal hücreleri

IFN-γ: İnterferon γ

(IL)-2: İnterlökin

ILC: Lenfoid hücreler

IMDM: Iscove's Modified Dulbecco's Media

IP-9: IFN-γ ile uyarılabilen protein-9

IP-10: IFN- γ ile uyarılabilen 10 kDa'luk protein

I-TAC: IFN ile uyarılabilen T hücresi α kemoatraktanı

JAK2: Janus Kinaz 2

kDa: Kilodalton

KML: Kronik Miyeloid Lösemi

LC480: LightCycler-480

LPS: Lipopolisakkarit

Mig: IFN-γ ile uyarılabilen monokin

MPH: Miyeloproliferatif Hastalıklar

MPL: Miyeloproliferatif lösemi virüsü

MPNs: Miyeloproliferatif Neoplaziler

mRNA: Mesajcı Ribonükleik Asit

MS: Milattan Sonra

xiv

MUT: Mutant (JAK2V617F pozitif)

NF-κB2: Nükleer faktör kappa B2

NK: Doğal öldürücü hücreler

PBMC: Periferal kan mononükleer hücreleri

PBS: Fosfat Salin Çözeltisi, Phosphate Buffered Saline

Ph: Philadelphia Kromozomu

PHA: Fitohemaglutinin

PI: Propidyum İyodid

PI3K: Fosfatidilinositol 3-kinaz

PMF: Primer Miyelofibroz

PV: Polisitemia Vera

PZR: Polimeraz Zincir Reaksiyonu

qPZR: Kantitatif Polimeraz Zincir Reaksiyonu

RNA: Ribonükleik Asit

SDS: Sodyum Dodesil Sülfat

SET-2: Esansiyel Trombositoz Hücre Soyu

siRNA: Small Interfering Ribonükleik Asit

STAT: Signal transducer and activator of transcription

T: Timin

TAE: Tris-acetate-EDTA

Th1: Yardımcı T hücrelerinde

TPO: Trombopoietin

TYK2: Tirozin Kinaz 2

UV: Ultra Viyole

V: Valin

WHO: World Health Organization

WT: Wild Type (JAK2V617F negatif)

xv

ÖZET

Altunay C. Polisitemia Vera'da Sitokin Sinyal Yolağının Etkisi. İstanbul

Üniversitesi Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Genetik ABD. Yüksek Lisans Tezi. İstanbul.

2018.

Klasik Miyeloproliferatif Neoplaziler (MPN), miyeloproliferatif bozukluklar

arasında en sık görülen hastalıklardandır. Tamamen işlevsel olan ve son aşamaya kadar

farklılaşmış kan hücrelerinin aşırı üretimi ile karakterize edilirler. Önceki bir çalışmada

Granülosit-Makrofaj Koloni Uyarıcı Faktörün (GM-CSF) sağlıklı hematopoietik kök

hücrelerde proliferasyon kontrolünden sorumlu CXCR3 ekspresyonunu arttırdığı

gösterilmiştir. Buradan yola çıkarak bu çalışmanın hipotezi; CXCL9-CXCR3 sinyal

yolağının PV progresyonunda etkisi vardır. Bu çalışmada, MPN grubuna dahil olan

Polisitemia vera’da (PV) sitokin sinyal yolağı etkisi araştırılmıştır. İnsan perifer kan

mononükleer hücrelerinde ve kanser kök hücrelerinde CXCL9 kemokini ve bunun

reseptörü olan CXCR3’ün iki izoformunun (CXCR3A ve CXCR3B) gen ifade

seviyeleri, mononükleer hücre yüzeyinde ise CXCR3 reseptör varlığı incelenmiştir.

Çalışmada ekspresyon seviyelerini araştırmak amacıyla kantitatif gerçek zamanlı

polimeraz zincir reaksiyonu, hücre yüzey reseptör durumunun incelenmesi içinse akım

ölçer metotları kullanılmıştır. Mononükleer ve CD34+ hücrelerde ifade seviyelerinin

direkt olarak incelenmesinin yanında bu hücreler için gerçek zamanlı PZR metodu

hücre kültüründe GM-CSF uygulamasının ardından CXCR3 reseptör ekspresyonuna

bakmak amacıyla kullanılmıştır. Mononükleer hücrelerde CXCR3A ekspresyonunun

mRNA düzeyinde hastalarda sağlıklılara göre istatistiksel olarak anlamlı arttığı

bulunmuşur. Hasta ve sağlıklı kontrol grupları arasında CXCR3B ve CXCL9

ekspresyon seviyeleri kıyaslandığında mRNA düzeyinde istatistiksel olarak anlamlı bir

fark olmadığı tespit edilmiştir. Hücre yüzey reseptör durumuna bakıldığında CXCR3

reseptörünün hastalardan elde edilen mononükleer hücre yüzeylerinde sağlıklı gruptan

elde edilenlere göre anlamlı bir azalma olduğu görülmüştür. Bu sonuçlar PV’de

CXCR3A/CXCR3B dengesi ile bu reseptörlere özgün olarak bağlanan kemokinler

CXCL9, CXCL10 ve CXCL11’in inflamasyon ve kanser progresyonu ile ilişkili

olabileceğini düşündürmektedir.

Anahtar Kelimeler : Myeloproliferatif Bozukluklar, Polisitemia Vera, Sitokinler,

CXCR3, CXCL9

Bu çalışma, İstanbul Üniversitesi Bilimsel Araştırma Projeleri Birimi tarafından

desteklenmiştir. Proje No: 27338

xvi

ABSTRACT

Altunay C. Effect of Cytokine Signaling Pathway in Polycythemia Vera.

İstanbul University, Institute of Health Science, Department of Genetics, MSc Thesis.

İstanbul. 2018.

The classical myeloproliferative neoplasms (MPNs) are the most frequent

diseases among myeloproliferative disorders. MPNs are characterized by excessive

production of terminally differentiated blood cells. Granulocyte-Macrophage Colony

Stimulating Factor (GM-CSF) has previously been shown to increase CXCR3

expression responsible for proliferation control in healthy hematopoietic stem cells.

Taken together, the hypothesis of study is that the CXCL9-CXCR3 signaling pathway is

involved in the PV progression. In this study, effect of the cytokine signaling pathway

in Polycythemia vera (PV) was investigated. The aim was to investigate the expression

levels of CXCL9 and its receptor CXCR3, in human peripheral blood mononuclear cells

(PBMC) and cancer stem cells, and finally the CXCR3 on the surface of PBMC. Real-

time polymerase chain reaction (qPCR) was used to investigate expression levels, and

flow cytometry methods were used to examine cell surface receptor presence. In

addition, the qPCR method for these cells has been used to look at CXCR3 expression

after GM-CSF application in cell culture. In mononuclear and CD34+ cells, the mRNA

level of CXCR3A expression was found to be increased in patients. There was no

statistically significant difference in mRNA levels between CXCR3B and CXCL9

expression levels between patients and healthy controls. Given the cell surface receptor

status, the CXCR3 receptor was found to have a significant reduction in mononuclear

cell surfaces obtained from patients. These results may indicate that the

CXCR3A/CXCR3B balance and the chemokines CXCL9, CXCL10 and CXCL11,

which bind specifically to these receptors, may be associated with inflammation and

cancer progression in PV.

Key Words: Myeloproliferative Neoplasms, Polycythemia Vera, Cytokines,

Chemokine CXCL9, CXCR3

The present work was supported by the Research Fund of Istanbul University.

Project No. 27338

1. GİRİŞ VE AMAÇ

Myeloproliferatif neoplaziler (MPN) Miyelofibroz (MF), Polisitemia vera (PV)

ve Esansiyel trombositemi’den (ET) oluşur (1,2). BCR-ABL-negatif MPN'ler olarak da

adlandırılan klasik MPN'ler, miyeloproliferatif bozukluklar arasında en sık görülen

hastalıklardır (3). MPN'ler, tamamen işlevsel olan, son aşamaya kadar farklılaşmış kan

hücrelerinin aşırı üretimi ile karakterize edilir. Bu hematopoietik hücre bozuklukları,

miyeloid soy hücre tiplerinin (≥1) klonal proliferasyonu ile karakterize edilir (1,2,4).

Çoğunlukla Janus kinaz 2 (JAK2), kalretikülin (CALR) veya trombopoietin reseptörü

(MPL) genlerindeki mutasyonlarla ilişkilidir (5-11). Klinik bulgular MPN alt tipine göre

değişebilir. Bunlar arasında polisitemi, anemi, lökositoz, trombositoz, yorgunluk ve

hepatosplenomegali bulunur (6,12,13). Genel olarak, hastalar trombotik ve

tromboembolik olaylarda artmış risk taşırlar ve genel popülasyona göre daha yüksek

mortalite riskine sahiptirler (14-19). MF'ye (PV veya ET olanlar için) veya akut

miyeloid lösemiye ilerlemeler hastalar arasında büyük bir endişe kaynağı olmaya devam

etmektedir (5,20).

MPN'ler, çoğu hasta için genellikle düşük yaşam kalitesine yol açan

hastalıklardır (20-24). Semptomlar kaşıntı, gece terlemeleri, mikrovasküler belirtiler,

splenomegali ve splenomegali ile ilişkili bulguları (örn; karın ağrısı, erken tokluk)

içerebilir ve yorgunluk en şiddetli göstergelerden biridir (12,21-23).

Enflematuvar sitokinlerin, kemokinlerin ve büyüme faktörlerinin birçok farklı

hücresel kaynağı mevcuttur ve bu hücre çeşitleri MPN alt tipine ve oluşan

komplikasyonlara (tromboz ve kemik iliği fibrozisi) bağlı olarak değişmektedir.

ET, PMF ve PV hastalarında, sağlıklı bireylere kıyasla, çeşitli sitokin ve

kemokinlerin plazma seviyelerinde yükselme saptanmıştır (25). Bu bulgu, inflamatuar

bir sürecin MPN'nin fizyopatolojisine dahil olabileceğini, sitokinlerin ve kemokinlerin

otokrin, parakrin ve endokrin olaylarda rol oynayabileceğini ve hatta hematopoietik nişi

etkileyebileceğini göstermektedir. MPN hastaları ile yapılan çalışmalarda sağlıklı

bireylere kıyasla yüksek sitokin/kemokin üretim sıklığı ile karakterize olan işlevsiz

sitokin/kemokin üretimi gösterilmiştir. Ayrıca, sitokin/kemokin seviyeleri ve

hematolojik parametreler arasındaki korelasyon, bağışıklık sistem bozukluğunu,

hematopoietik (kan) hücrelerin üretimini etkileyebileceğini ve bu hücrelerin

2

çoğalmasını desteklediğini göstermektedir. Bulgular ayrıca, MPN hastalarında

sitokinlerin ve kemokinlerin aşırı üretimini ve bunun proinflamatuar bir durumla

sonuçlandığını da vurgulamaktadır (25).

Hastalarda, sağlıklı bireylere kıyasla, çeşitli sitokinlerin plazma seviyelerinde

yükselme saptanmış ve bunların MPN patogenezinde rol oynayabileceği gösterilmiştir.

Önceki bir çalışmada Granülosit-Makrofaj Koloni Uyarıcı Faktörün (GM-CSF) sağlıklı

hematopoietik kök hücrelerde proliferasyon kontrolünden sorumlu CXCR3

ekspresyonunu arttırdığı gösterilmiştir. Bu bilgiler ışığında oluşturmuş olduğumuz

hipotez: CXCL9-CXCR3 sinyal yolağının PV patogenez ve progresyonunda etkili

olduğudur.

Çalışmamızın amaçları PV’de önemli olduğu düşünülen CXCL9 kemokininin ve

onun reseptörü olan CXCR3’ün;

Amaç 1: MPN hasta ve kontrol grup Perifer Mononükleer Hücrelerde (MNH)

CXCL9 ve CXCR3 mRNA anlatım düzeyi,

Amaç 2: Kanser kök hücrelerinde CXCL9 ve CXCR3 mRNA anlatım düzeyi

Amaç 3: CXCR3’ün MNH yüzey anlatım düzeylerinin araştırılmasıdır

Çalışmamızın hedefi, PV prognoz ve tedavi süreçlerinin kolaylaştırılmasına

katkı sağlamaktır. Elde edilen bulgular bilimsel çalışmaları yeni kemokin ve kemokin

reseptörlerini de prognoz ve tadavi süreçlerinde etkili olmaları açısından aday hale

getirebilecektir. PV’de kemokin ve kemokin reseptörlerinin hastalık süreçlerine etkisini

gösteren herhangi bir bilimsel çalışma mevcut olmadığından, çalışmamız özgün bir

çalışmadır. Elde edilen veriler, PV’nin yanında diğer MPN’lere ve farklı kanser

türlerine katı sağlayabilecek potansiyeldedir.

3

2. GENEL BİLGİLER

2.1. Miyeloproliferatif Neoplaziler

2.1.1. Tarihçe

Hipokrat ve Galen’e (MS 129–200) göre kan, dört “salgı”dan biri olarak kabul

edilmiştir. Diğer üçü ise balgam, siyah ve sarı safradır. “Plethora” (Yunanca "bolluk")

ise kanın domine ettiği salgıların dengesizliği durumudur (26). Hipokratik düşünce tarzı

yüzyıllar boyunca hüküm sürmüş ve flebotomi (kan alma) genellikle humoral dengeyi

sürdürme çabasıyla uygulanmıştır (27). İsveçli bir bilim adamı olan Robin Fahreus

(1888–1968), bir test tüpünde dört ayrı katmana ayrılan pıhtılaşmış kanın, "hümoral

teori"nin temelini oluşturduğunu ileri sürmüştür (28). Sarı tabakanın serumu temsil

ettiği, yukarıdan aşağıya diğer üç tabakanın ise beyaz kan hücrelerini, kanı (oksijenli

kırmızı kan hücreleri) ve oksijensiz kırmızı kan hücrelerini temsil ettiği düşünülmüştür

(28).

1935 yılında Hirsch, post-Polisitemia vera miyelofibrozu (post-PV

miyelofibroz) tanımlamıştır (29) ve 1939'da Vaughan ve Harrison, Primer miyelofibroz

(PMF), Polisitemia Vera (PV) ve Esansiyel Trombositoz (ET) arasındaki ilişkiyi, ortak

bir atasal hücreden köken almaları açısından ele almışlardır (30). Bu görüş diğer bilim

insanları tarafından da desteklenmiştir (31,32) ve nihayetinde 1951'de Dameshek

tarafından miyeloproliferatif hastalıklar (MPH) konsepti olarak açıklanmıştır (33).

Dameshek, laboratuvar ve klinik ilgi alanları geniş olmasına rağmen, 1951’de

MPH kavramını tanımlamasıyla bilinmektedir (33). Pubmed'e göre, “miyeloproliferatif”

sıfatı ilk kez 1951'de William Dameshek'in “Miyeloproliferatif sendromlar hakkında

bazı spekülasyonlar” başlıklı bilimsel makalesinde kullanılmıştır ve Blood dergisinde

yayımlanmıştır. Dameshek miyeloproliferatif bozukluklar kavramını, kemik iliğinde

hematopoetik öncüllerin aşırı proliferasyonu ve olgun kan hücrelerinin aşırı üretimi ile

karakterize edilen koşullar olarak ortaya koymuştur. 1951'de William Dameshek,

Kronik Myeloid Lösemi’yi (KML), PV’yi, ET’yi, PMF’yi ve Eritrolösemi'yi bir araya

getirerek "miyeloproliferatif bozukluklar" kavramını tanımlamıştır (34). 1960 yılında,

Nowell ve Hungerford KML'deki Philadelphia kromozomunu keşfetmiştir (34,35).

1967'de Fialkow ve arkadaşları, KML'yi bir klonal kök hücre hastalığı olarak belirlemek

için X'e bağlı polimorfizmleri kullanmışlardır (34). 1967'de, PV Çalışma Grubu, PV'nin

4

tarihini incelemek ve büyük ölçekli klinik deneyler yapmak için Louis Wasserman

tarafından bir toplantıya çağrılmıştır (34). 1972'de, Janet Rowley, Philadelphia (Ph)

kromozomunun 9. ve 22. kromozomlar arasında bir karşılıklı translokasyon olduğunu

keşfetmiştir, böylece onkogenik BCR-ABL mutasyonunun karakterizasyonunun yolunu

açmıştır (34). 1996'da Brian Druker İmatinib'i keşfetmiştir (34). 2005 yılında James

Chloé, BCR-ABL-negatif MPH'lerde bir fonksiyon kazandırıcı mutasyon olan JAK2

mutasyonu (JAK2V617F) tanımlamıştır ve PV, ET ve PMF'de KML benzeri bir tedavi

stratejisi ortaya çıkmıştır (34).

2.1.2. Sınıflandırma

Dünya Sağlık Örgütü (WHO), Hematopatoloji Topluluğu ve Avrupa

Hematopatoloji Derneği ile işbirliği içinde, sırasıyla 2001 ve 2008 yıllarında,

Hematopoetik ve Lenfoid Doku Tümörlerinin WHO Sınıflandırmasının üçüncü ve

dördüncü baskılarını yayımlamıştır (2). 2014 baharında, dünyanın dört bir yanından 100

kişilik - patolog, hematolog, onkolog ve genetikçiden oluşan - bir klinik danışma

komitesi (CAC), sınıflandırmanın dördüncü baskısına revizyon önerisinde bulunmuştur.

Bu nedenlerle dördüncü baskı güncellenmektedir ve en son yapılan 2016

sınıflandırması hastalık kategorilerinin önemli bir revizyonu değildir (2).

MPN kategorileri, sınıflandırmanın 2008’deki dördüncü baskısından bu yana

önemli ölçüde değişmemiştir, fakat yeni mutasyonların keşifleri ve var olan bazı

morfolojik özelliklerin daha iyi anlaşılması, hastalıklar için tanı kriterlerini etkilemiştir

(2).

Güncellenmiş (2016) WHO sınıflandırmasına göre MPN’lerin başlıca alt tipleri

Tablo 2-1’de listelenmiştir.

Tablo 2-1: Güncellenmiş (2016) WHO sınıflandırmasına göre MPN’lerin başlıca alt tipleri

(2)

Miyeloproliferatif neoplaziler (MPN)

Kronik miyeloid lösemi (KML), BCR-ABL1+

Kronik nötrofilik lösemi (KNL)

5

Polisitemia vera (PV)

Primer miyelofibroz (PMF)

PMF, prefibrotik / erken evre

PMF, fibrotik evre

Esansiyel trombositemi

Kronik eozinofilik lösemi

Sınıflandırılamayan MPN

2.1.3. Klasik Miyeloproliferatif Neoplazilerin Genetik Temeli ve Moleküler

Patofizyolojisi

BCR-ABL- MPN'ler olarak da adlandırılan klasik MPN'ler, miyeloproliferatif

bozukluklar arasında en sık görülen hastalıklardır (3). MPN'ler, tamamen işlevsel olan,

son aşamaya kadar farklılaşmış kan hücrelerinin aşırı üretimi ile karakterize edilir.

Klasik MPN'ler 3’e ayrılır: PV, ET ve PMF. Tüm MPN’ler, klonal olarak büyüyen ve

hemen hemen tüm miyeloid hücreleri, B hücrelerini ve doğal öldürücü (natural killer,

NK) hücreleri oluşturan, tek bir somatik mutasyona uğramış hematopoetik kök

hücrelerden (HKH) kaynaklanır (36). MPN’de HKK'nin klonal genişlemesine, tek veya

bir dizi hiperplazi eşlik eder. PV sadece fazla eritrosit sayısı ve baskın eritroid soyu ile

değil, aynı zamanda megakaryositik / granülositik soyların değişken hiperplazisi ile de

ilişkilidir. ET, megakaryositik hiperplazi ile birlikte artmış trombosit sayısıyla

karakterize edilirken, PMF, hem kemik iliği fibrozunun (kollajen liflerinin fazlalığı)

hem de megakaryositik hiperplazi varlığıyla tanımlanan klinik ve biyolojik

özellikleriyle daha heterojen bir hastalıktır. Her ne kadar bu üç MPN’nin klinik tabloları

kendi özgün formlarında farklı olsa da hastalık başlangıcında kesin tanı konması çoğu

zaman zorlayıcıdır. Bu durum, Dünya Sağlık Örgütü'nün (WHO) MPN tanı kriterlerinin

2016 revizyonu ile yansıtılmıştır (2).

Somatik mutasyonlar, sadece MPN'lerde değil, aynı zamanda miyeloid

malinitelerin çoğunda da HKK'lerin klonal büyümesinden sorumludur (3). Mikroarray

ve yeni nesil dizileme (YND) kullanılarak yapılan yüksek çözünürlüklü genom

6

analizleri, tüm miyeloid malinitelerde birkaç gen mutasyonunun keşfiyle

sonuçlanmıştır. Bu gen mutasyonlarından nispeten az bir kısmı, tek veya sınırlı sayıda

hastalık ile ilişkili bulunmuştur. Bu nedenle, bu mutasyonlar “MPN ile sınırlı” olanlar,

“MPN ile sınırsız” olanlar ve diğer miyeloid malinitelerde bulunanlar şeklinde

sınıflandırılmıştır.

2.1.4. JAK2 Gen Mutasyonu ve Mutasyonun MPN Patogenezindeki Rolü

2005'ten önce, BCR-ABL- klasik MPN'lerin moleküler patogenezi

bilinmemekteydi. 2005 yılında, JAK2 geninin 14. ekzonunda 1849. nükleotit olan

Guanin’in (G) Timin’e (T) dönüştüğü somatik mutasyonun keşfi büyük bir buluştu. Bu

mutasyon, JAK2 proteininin psödokinaz bölgesinde 617. kodonda valinin fenilalaninle

yer değiştirmesi (JAK2V617F) ile sonuçlanır (Şekil 2-1) (35,37-39). Bu mutasyon

PV'nin %95'inde ve ET’nin ve PMF'nin %50-60'ında olmak üzere MPN'lerin yaklaşık

%70'inde bulunabilmektedir. JAK2V617F mutasyonu sıklıkla, 9. kromozomun kısa kolu

üzerinde heterozigotluk kaybına (9pLOH) yol açan mitotik rekombinasyonun meydana

gelmesinden dolayı heterozigotluktan homozigotluğa geçişe uğrar. JAK2V617F

mutasyonu multipotent hematopoetik bir progenitörde ortaya çıkar, tüm miyeloid

soylarda bulunur ve ayrıca lenfosit hücrelerde, özellikle B, NK ve T hücrelerinde de

hastalıkta saptanabilir. Diğer bazı malin hemopatilerde nadiren bulunabilir (40).

Bununla birlikte, JAK2V617F, yenidoğanlar da dahil olmak üzere, normal

popülasyonda çok düşük seviyede (% 1'den az) tespit edilmiştir (41-43). Yaşlanma ile

ilişkili klonal hematopoezde en sık görülen mutasyonlardan biridir (44).

JAK2 ekson 12 mutasyonları da MPN'lerde bulunmuştur ve JAK2V617F- PV'nin

çoğunluğunda mevcuttur (Şekil 2-1) (45). JAK2 ekson 12 mutasyonlarının hepsi, Src

homolojisi 2 (SH2) ve psödokinaz bölgeleri arasında, Lys 539 civarında, 536 ve 547

amino asitleri arasındaki bir bölgededir.

7

Şekil 2-1: JAK kinaz ailesinin homoloji bölgeleri (46)

V617F mutasyonu JH2 veya psödokinaz bölgesindedir, JAK2'deki ekson 12 mutasyonları JH2

alanına yakındır. (Debra Tyler'ın görselidir.)

2.1.5. “MPN ile sınırlı” Mutasyonlar, JAK2 Kinaz-bağımlı Sitokin Reseptör

Yollarını Aktive Eder

JAK2, iki kinaz bölgesi ile karakterize edilen JAK ailesinin bir üyesidir. İki bölgeden

bir tanesi C terminalinde katalitik olarak aktifken diğer bölge katalitik olarak inaktif

(veya çok zayıf) olan ve kinaz bölgesinin kendi kendine aktivasyonunu önleyen

psödokinazdır (Şekil 2-2) (47). JAK proteinleri, N terminalinde dört-noktalı-bir (four-

point-one) ezrin radixin moesin (FERM)-benzeri bölge ve SH2-benzeri bir bölgeye

sahiptir (Şekil 2-2). JAK'ların sitokin reseptörlerine kovalent olmayan bağlanması

FERM bölgesine bağlıdır. JAK ailesi kinazları, hücre içinde reseptörlere yapısal olarak

bağlı oldukları için, hematopoietik sitokin reseptör familyasının katalitik kısmı olarak

düşünülebilir. Ayrıca, JAK'ların reseptörler ile ilişkisi, hücre yüzeyine uygun

konumlanması için önemlidir. Eritropoietin (EPO) reseptörü (EPOR), miyeloproliferatif

lösemi virüsü (MPL) ve granülosit koloni uyarıcı faktör reseptörü (G-CSFR) gibi

homodimerik reseptörler JAK2’yi kullanırken heterodimerik reseptörler JAK1 ve

JAK2/tirozin kinaz 2 (TYK2) veya JAK3'ü kullanır. Sitokin bağlanması, reseptöre

bağlanan JAK'ları trans-fosforilasyon ile aktive eden reseptörlerin konformasyonundaki

değişiklikleri uyarır (Şekil 2-2). Aktive edilmiş JAK'lar, ardından, başta STAT’lar

olmak üzere, diğer sinyalleme molekülleri için kullanılan reseptörleri fosforile ederler.

Bu yolakta STAT'lar, homodimerizasyon veya heterodimerizasyonlarını ve ardından

hedef genlerin transkripsiyonunu düzenledikleri çekirdeğe geçişlerini indükleyen

JAK'lar tarafından fosforile edilirler (Şekil 2-3). JAK2'nin psödokinaz bölgesinin 2 rolü

8

vardır: bir tanesi kinaz bölgesini inhibe etmektedir, diğeri de sitokine bağımlı

aktivasyonu desteklemektir. V617F, JAK2'yi tam olarak anlaşılmayan bir mekanizma

ile aktive eder, fakat hem yapısal hem de fonksiyonel veriler V617F tarafından

indüklenen birinci konformasyonel değişimin psödokinaz bölgesinin C sarmalını

içerdiğini göstermiştir (48,49). Ekson 12'deki mutasyonların proteinde meydana geldiği

bölge ve aktivasyon mekanizması JAK2V617F mutasyonunkinden farklıdır (50).

JAK2V617F veya JAK2 ekson 12 mutasyonları, interlökin-3 (IL-3) bağımlı hücre

hatlarında ifade edildiğinde, sitokine aşırı duyarlılığı veya sitokin bağımsızlığını

indükler. EPOR gibi homodimerik reseptörlerin varlığı bu biyolojik etkiyi büyük ölçüde

kolaylaştırır (51). JAK2V617F’nin düşük ifade seviyelerinde sinyalizasyonu

indüklemek için bir sitokin reseptörünün bulunması mutlaka gereklidir. JAK2V617F,

STAT'larin ve fosfatidilinositol 3-kinaz (PI3K) ve MAPK yollarının yapısal

aktivasyonunu uyarır. Hücre soylarında JAK2V617F tarafından indüklenen bu sitokin

hipersensitivitesi veya bağımsızlığı, daha önce PV eritroid progenitörlerinde tarif edilen

EPO hipersensitivitesine veya bağımsızlığına benzer (37,52).

Şekil 2-2: MPN hücrelerinde JAK – STAT sinyali (53)

(a) JAK2, bir FERM bölgesi (sitokin reseptör etkileşimi), bir SH2 bölgesi (etkileşimli

proteinlerin katılması), bir psuedokinaz bölgesi ve bir kinaz bölgesi dahil olmak üzere yedi

9

bölgeye (JH7-JH1) sahiptir. En yaygın miyeloproliferatif neoplazi (MPN) mutasyonu,

JAK2V617F, proteinin psödokinaz bölgesinde bulunur. Ekson 12 mutasyonu bu bölgeye bitişik

olarak bulunur. Yaygın akut lenfoblastik lösemi (ALL) mutasyonu R683G, JAK2'nin

psödokinaz bölgesinde de mevcuttur. (b) JAK molekülleri, sitokin reseptörlerinin

dimerizasyonu ve otofosforilasyonu için bir araya gelirler. JAK'lar daha sonra karşılık gelen

dimerleri transfosforile ve aktive edebilirler. JAK2'deki aktive edici mutasyonlar, konstitütif

fosforilasyon ile sonuçlanır. JAK molekülleri, STAT yolu dahil olmak üzere çok sayıda sinyal

yolunu aktive edebilir. JAK2'nin yer değiştirerek çekirdeğe gittiği ve histon 3 üzerinde tirozin

41'in fosforilasyonunu düzenlediği gösterilmiştir, bu da hedef genlerin ve bunların ifadelerinin

düzenlenmesinde kritik olabilir. Kısaltmalar: JH1–7, JAK homoloji bölgeleri 1–7; SH2, Src

homoloji 2; FERM, dört noktalı bir, ezrin, radixin, moesin; JAK2, Janus kinaz 2; STAT, sinyal

transdüserleri ve transkripsiyon aktivatörleri; P, fosforilasyon.

Sonuçta, MPN ile ilişkili başlıca mutasyonlar olan JAK2V617F, JAK2 ekson 12

mutantları, MPLW515L/K ve CALR mutantları, sitokin/reseptör/JAK2 yolaklarını ve

bunların devamındaki sinyalizasyonu aktive eder. Bu aktivasyon JAK2V617F

mutantlarında 3 homodimerik reseptör (EPOR, MPL, G-CSFR) aracılığıyla, CALR

mutantlarında ise esas olarak MPL aracılığıyla sağlanır (Şekil 2-3). Bu durum, bu farklı

mutasyonların neden genelde birbirlerini karşılıklı olarak dışladıklarını açıklayabilir.

Karşılıklı dışlamanın ardındaki mekanizmaları aydınlatmayı amaçlayan çalışmalar

mevcuttur (54). Bu çalışmalarda hücre döngüsü durmasının ve yaşlanmanın bu yanıtta

rol oynadığı öne sürülmüştür. Bu yaklaşıma göre mutant bir hücrenin ek bir mutasyonu

edinmesi, belli sinyal yolaklarını ve yaşlanmayı hiperaktif hale getirir ve aynı

mutasyonu taşıyan hücreler baskın hale gelmektedir. Bununla birlikte, nadiren, bu

mutasyonların 2 tanesi aynı hastada tespit edilebilir, ancak genellikle farklı klonlarda

veya alt klonlarda bulunurlar.

10

Şekil 2-3: JAK2V617F ve CALR mutantlarının onkojenik özelliklerinde sitokin

reseptörlerinin rolü (3)

(A) JAK2V617F, sırasıyla eritrositoz, trombositoz ve nötrofili olmak üzere 3 ana homodimerik

reseptör olan EPOR, MPL ve G-CSFR üzerinden sinyalizasyonu aktive eder. (B) CALR

mutantları esas olarak MPL'yi ve düşük bir seviyede G-CSFR'yi aktive eder, ancak EPOR'u

aktive etmez, bu durum mutantlarla ilişkili trombositozu açıklar.

2.1.6. MPN Başlangıcında Önemli Faktörler

Yaşlanma: Yaşlanan sağlıklı popülasyonda JAK2V617F'nin nispeten daha sık

olduğuna dair kanıtlar artmaktadır ve sıklığının <%0.5 olduğu tahmin edilmektedir (41).

Bu durum, JAK2V617F'nin tek başına klonal hematopoezi meydana getirmek için

yeterli olduğunu ve MPN'de hastalık başlatan bir rolü olduğunu gösterir. Bununla

birlikte, JAK2V617F sık bir mutasyon olup, MPN başlatmak için düşük bir penetransa

sahiptir, bu da JAK2V617F’nin başka faktörlerle birlikte hastalığa yol açabilmesi için

ilişkilendirilmesi gerektiğini düşündürmektedir.

Enflamasyon: Tüm MPN'ler, özellikle de PMF enflamatuar yanıt ile ilişkilidir.

Özellikle, yüksek plazma düzeylerinde var olan enflamatuar sitokinlerin yanı sıra

kortikosid ve ruxolitinib gibi anti-enflamatuar tedavilerle hafifleyen semptomların

varlığı enflemasyonu göstermektedir (55). Bu enflamatuar sitokinler, mutasyona

11

uğramış ve uğramamış hematopoietik hücrelerin yanı sıra mezenkimal stromal hücreler

gibi hematopoetik olmayan hücreler tarafından da sentezlenir (56). Ayrıca, JAK2V617F

progenitörlerinin, JAK2V617F HKK'leri için uygun bir ortam sağlayan nestin+

hücrelerinin apopitotik ölümünü indükleyen IL1β salgıladıkları gösterilmiştir (57).

Bunun yanında, tümör nekroz faktör α’nın (TNFα) JAK2V617F HKK'lere bir rekabet

avantajı sağladığı gösterilmiştir (58).

Yatkınlık: JAK2, özellikle JAK2 46/1 haplotipi, TERT, MECOM, SH2B3,

CHEK2, PINT ve GFI1B gibi genlerdeki yaygın polimorfizmlere karşılık gelen birkaç

yatkınlık alleli, zayıf bir şekilde (2 ila 6 kat) hastalığın gelişimini arttırır (41,59).

Mekanizma halihazırda bilinmemektedir ancak bu yatkınlık varyantları ya DNA hasar

cevabında (CHEK2, TERT, JAK2 46/1 haplotip) ya da JAK2/STAT yolunda rol

oynayan genleri içermektedir (60,61).

2.2. Sitokinler

Sitokinler (Yunanca sito-, hücre; ve -kinos, hareket), hücresel iletişimde yaygın

olarak kullanılan bir sinyal molekülleri kategorisidir. Bunlar proteinler, peptitler veya

glikoproteinlerdir. Hücre sinyalizasyonunda önemli olan, yaygın bulunan, küçük

proteinlerdir (~ 5–20 kDa) (62). Sitokinler hücreler tarafından salınırlar ve diğer

hücrelerin davranışlarını etkilerler. Bazı durumlarda salındığı hücrenin kendisini de

etkileyebilirler. Sitokinler kemokinleri, interferonları, interlökinleri, lenfokinleri, tümör

nekroz faktörlerini kapsarlar, ancak genellikle hormon veya büyüme faktörü değillerdir

(63). Sitokinler geniş bir hücre grubu tarafından üretilirler; makrofajlar, B lenfositler, T

lenfositler ve mast hücreleri, endotel hücreler, fibroblastlar ve çeşitli stromal hücreler

gibi bağışıklık hücreleri de bu gruba dahildir. Bir sitokin birden fazla hücre tipi

tarafından üretilebilir (64). Sitokinler reseptörler yoluyla etki ederler ve özellikle

bağışıklık sisteminde önemlidirler. Humoral ve hücre bazlı bağışıklık yanıtları

arasındaki dengeyi düzenlerler ve belirli hücre popülasyonlarının olgunlaşmasını,

büyümesini ve tepkilerini düzenlerler. Bazı sitokinler, diğer sitokinlerin etkilerini

karmaşık yollarla güçlendirir veya kısıtlar. Tüm bunların yanında sitokinler, hastalıkta

özellikle enfeksiyona, immün yanıtlara, inflamasyona, travmaya, sepsise, kansere ve

reprodüksiyona karşı verilen yanıtlarda önemlidirler (65).

12

2.2.1. Kemokinler

Kemokinler olarak adlandırılan bazı sitokinler belirli hücre tiplerini kimyasal

olarak çekerler (66). Bu kemokinler, bir yaralanma veya enfeksiyon bölgesindeki

hücreler tarafından salınırlar ve hasarı onarmak veya istilacı ile mücadele etmek için

bölgeye başka bağışıklık hücrelerini çağırırlar (67). Kemokinler, iltihaplanma sürecinde

önemli bir rol oynamaktadırlar ve bağışıklık tepkilerini düzenlemeye yardımcı olacak

yeni ilaçlar için umut verici hedeftirler (68).

Kemokinler veya kemotaktik sitokinler düşük moleküler kütleli proteinlerdir (8–

12 kDa) ve zaman-mekan bağımlı bir şekilde lökosit migrasyonunu yönlendiren ayırt

edici bir işleve sahiptirler (69-74). Spesifik lökosit alt tiplerinin kontrollü kemotaksisi,

sadece immün hücre hedeflemesi, embriyogenez ve anjiyogenez dahil olmak üzere

homeostatik süreçlerde değil, aynı zamanda kanser, iltihaplanma ve otoimmünite gibi

patofizyolojik ortamlarda da gereklidir (75-80). Bu nedenle, kemokinler sağlık ve

hastalık sırasında doğuştan gelen ve sonradan kazanılmış bağışıklık olaylarında anahtar

oyunculardır. Biyolojik fonksiyonlar için bağlandıkları reseptörler, esas olarak G alfa

proteinlerinin inhibitör tipini (Gαi) aktive eden, daha sonra adenilat siklazın

inhibisyonuna neden olan ve böylece hücre içi siklik adenosin monofosfat ([cAMP]i)

konsantrasyonlarını azaltan spesifik G protein-bağlı reseptörlerdir (GPCR'ler) (70,78).

Bununla birlikte, G proteininden bağımsız sinyalizasyonu da aktive edebilirler. Bunların

arasında β-arrestin ile ilişkili yolaklar mevcuttur (81). Spesifik GPCR'ler ile etkileşime

ek olarak, kemokin varlığı, aktivite ve reseptör tercihi, glikosaminoglikanlar (GAG'ler),

atipik kemokin reseptörleri (ACKR'ler), gen transkripsiyonu, mRNA stabilitesi,

alternatif gen ekleme, karşılıklı sinerjizm veya antagonizm ile kemokin etkileşimleri ve

post-translasyonel modifikasyonlar da dahil olmak üzere çoklu seviyelerde modüle

edilir (82-85). Bu nedenle, in vivo olarak fonksiyon gösteren son kemokin, çok sayıda

düzenleyici mekanizmanın karmaşık bir sonucudur.

Başlıca biyolojik fonksiyonlara ilişkin olarak, aslında kemokin ailesinin,

sırasıyla, endojen (örn., Sitokinler) veya eksojen (örn., Mikrobiyal ürünler) uyaran

tarafından önceden oluşturulmuş veya önceden indükleme gerektiren, homeostatik ve

enflamatuar proteinlere sınıflandırılabileceği önerilmiştir (86-89). Bununla birlikte, bu

sınıflandırmanın mutlak olmadığı anlaşılmıştır. Çünkü CXCL12 gibi birçok kemokin

hem homeostatik hem de enflamatuar rollerde görev almaktadır.

13

Kemokinler yapısal olarak CXC, CC, C veya CX3C ligandları şeklinde

sınıflandırılır. Bu sınıflandırma, salgılanan olgun proteinin NH2-terminal dizisinde

bulunan korunmuş Sistein (Cys) rezidülerinin sayısına ve pozisyonuna bağlı olarak

yapılmıştır (73,78,90). CXC kemokinler NH2-terminal Cys rezidülerinin arasında

rastgele ("X") bir amino asit içerirler (Şekil 2-4). Kemokin reseptörlerinin

sınıflandırılması, etkileşime girdiği kemokin alt ailesine göre yapılır. Örneğin CC

kemokin reseptörler (CCR'ler) CC kemokinleriyle, CXC kemokin reseptörler

(CXCR'ler) CXC kemokinleri ile etkileşime girerler (78). Spesifik bir kemokin,

komplementer alt sınıfından bir veya daha fazla reseptörü tanıyabilir ve bunun tersi de

mümkündür. Bu durum kemokin ağında olağanüstü bir karışıklığın var olmasına neden

olur. Son birkaç yılda, bir kemokin reseptörünün hücre içi sinyal yollarından tercihli

olarak birkaçını aktifleştirebileceğinin kanıtlanması, durumu daha da karmaşık bir hale

getirmiştir (81). Bu durum muhtemelen ilgili reseptöre ve liganda değil, aynı zamanda

çalışılan hücre tipine veya dokusuna da bağlıdır.

Şekil 2-4: CXC kemokinlerin genel yapısı (91)

14

Kemokinler, karşılıklı olarak 30s, 40s ve 50s ilmeklerine bağlanan üç antiparalel iplikçik

(pembe) ve bir COOH-terminal α-sarmal (turuncu) içerir. Esnek NH2-terminal alanını sırasıyla

bir N ilmiği ve 310 sarmal takip eder. Salgılanmış olgun proteinin 3D yapısı, dört korunmuş

Cys rezidüsü (mavi) tarafından oluşturulan iki disülfid köprüsü ile stabilize edilir (91).

İnsan CXC kemokinlerinden yedi tanesi (CXCL1–3 ve CXCL5-8) korunmuş bir

Glu-Leu-Arg (“ELR”) amino asit motifi içerir (73,78,90). ELR motifi olmayan CXC

kemokinlerinin çoğu CXCR3 ile etkileşime girer (73). Bu CXCR3 ligandları için, bir

yandan trombositle ilgili agonistler CXCL4 ve CXCL4L1 ve diğer yandan başlıca

indükleyici olarak interferon γ (IFN-γ)'yı paylaşan CXCL9, CXCL10 ve CXCL11

kemokinleri şeklinde ayrım yapılabilir (92). Tek bir reseptör ve indükleyici

paylaşmalarına rağmen, ortaya çıkan kanıtlar IFN ile indüklenen CXCR3 ligandlarının

in vivo olarak benzer olmayan rolleri olduğuna işaret etmektedir (93). CXCR3

ligandlarının bu özgünlüklerine katkıda bulunabilecek belli başlı mekanizmaların

olduğu düşünülmektedir (Şekil 2-5).

Şekil 2-5: CXCR3 ligandlarının özgünlüklerine katkıda bulunabilecek mekanizmalara

genel bakış (91)

CXCL9, CXCL10 ve CXCL11, ortak reseptör olarak CXCR3'ü ve baskın indükleyici olarak

IFN-γ'yı paylaşan yapısal olarak ilişkili kemokinlerdir. Yapısal ve işlevsel benzerliklere rağmen,

ortaya çıkan kanıtlar CXCL9, CXCL10 ve CXCL11 için in vivo olarak birbilerine benzemeyen

rolleri olduğuna işaret etmektedir. IFN ile indüklenebilir CXCR3 ligandlarının özgünlükleri pek

çok durumdan köken alabilir. Bunlar; bu ligandlarının spesifik indükleyicilere yanıt olarak

spesifik hücre tiplerinde salgılanmaları (A, B), spesifik CXCR3 etkileşim özellikleri ve farklı

CXCR3 izoformlarının varlığı (C), ilgili başlıca sinyal kaskadları (D), T hücre polarizasyonu

15

üzerindeki etkileri (E), CCR antagonizmi (F), ACKR etkileşimleri (G), posttranslasyonel

işlemler (H) ve GAG bağlama özellikleri (I). ACKR, atipik kemokin reseptörü; CCR, CC

kemokin reseptörü; CXCR, CXC kemokin reseptörü; GAG, glikozaminoglikan; GRK, G

protein-bağlı reseptör kinazlar; HUMEC, insan mikrovasküler endotel hücresi; IFN, interferon;

LPS, lipopolisakkarit; PAD, peptidlarginin deiminaz; PBMC, periferik kan mononükleer hücre;

PG, peptidoglikan; STAT, sinyal dönüştürücü ve transkripsiyon aktivatörleri; TNF, tümör

nekroz faktörü.

2.2.2. IFN ile Uyarılabilen CXCR3 Kemokinleri

1985 yılında, IFN-γ aracılı inflamatuar yanıtı çözmek için yapılan bir çalışmada,

trombosit kaynaklı proteinlerle yüksek homolojiye sahip protein kodlayan bir gen fark

edilmiştir (94). Proteinin moleküler kütlesi yaklaşık 10 kDa ve protein "IFN- γ ile

uyarılabilen 10 kDa'luk protein" (IP-10) olarak adlandırılmıştır. Beş yıl sonra, 1990'da,

IFN-γ tarafından seçici olarak indüklenen ve başka bir trombosit faktör-4-benzeri

proteini kodlayan bir mRNA tarif edilmiştir (95). Bu molekül IFN-α, IFN-β ve

lipopolisakkarit (LPS) dahil olmak üzere başka hiçbir makrofaj aktivatörü tarafından

indüklenmeyen bir moleküldür. Yazarlar, molekülün “IFN-γ ile uyarılabilen monokin”

(Mig) olarak adlandırılması gerektiğini öne sürdüler. IP-10 ve Mig'in, benzer proteinler

oldukları, 4. Kromozomun q21.1 kolu üzerinde yer alan genleriyle ve başlangıç

kodonlarının 16 kb'den daha az bir mesafede olmalarıyla ortaya çıkarılmıştır (96).

Yapılan çalışmalar IP-10’un ve Mig’in, korunmuş bir ELR amino asit motifi içermeyen

ve NH2-terminal dizisinde rastgele bir rezidü ("X") ile ayrılan iki korunmuş Cys

rezidüsü içeren kemotaktik sitokinler veya kemokinler olduğunu ortaya çıkarmıştır. Her

ikisi de bu iki kemokin için seçici bir reseptör olarak rapor edilen CXCR3 üzerinden

etki ederler (97). Daha sonra, iki araştırma grubu uyarılmış astrositler ve

keratinositlerde üçüncü bir ELR negatif, IFN ile uyarılabilen CXC kemokini

tanımlamışlardır (98,99). Bu protein IP-10 ve Mig ile güçlü bir şekilde ilişkilidir ve

CXCR3 için daha yüksek bir afinite göstermektedir. Bu üçüncü IFN ile ilişkili CXCR3

ligandı, ilk yayınlarda "IFN-γ ile uyarılabilen protein-9 (IP-9)" veya "IFN ile

uyarılabilen T hücresi α kemoatraktanı" (I-TAC) olarak isimlendirildi ve karşılık gelen

gen yine 4q21'de bulundu (99,100). Kurulan yeni sistematik kemokin nomenklatüründe,

Mig, IP-10 ve I-TAC/IP-9, sırasıyla CXCL9, CXCL10 ve CXCL11 olarak yeniden

adlandırılmıştır (90), ve genel olarak IFN ile uyarılabilen CXCR3 ligandları olarak

adlandırılmaktadırlar.

16

IFN ile uyarılabilen CXCR3 kemokinleri, amino asit sekanslarında yaklaşık

%40 homoloji gösterirler ve insan mikrovasküler endotelyal hücreleri (HUMEC),

keratinositler ve fibroblastlar dahil olmak üzere çeşitli hücreler tarafından üretilirler

(Şekil 2-5) (98,99,101-103). Ek olarak, CXCL9 ve CXCL11 yaygın olarak periferal kan

mononükleer hücreleri (PBMC'ler) ve daha spesifik olarak makrofajlar (CXCL9) ve

astrositler (CXCL11) tarafından salgılanırlar (95). Ağırlıklı olarak CXCL10 üreten

lökositler T hücreleri ve monositlerdir (102,104,105). Farklı temel hücresel kökenlere

ek olarak, özgün promotörler IFN ile uyarılabilen CXCR3 kemokinlerinin

ekspresyonlarını kontrol ederler (Şekil 2-5). Cxcl9 promotörünün bir γ-interferon yanıt

elementi (γIRE) ve bir nükleer faktör kappa B2 (NF-κB2) bölgesi vardır ve CXCL9

protein ifadesi tam olarak IFN-γ'ya bağlıdır (106-108). Cxcl10 ve Cxcl11

promotörlerinin her ikisi de IFN-γ tarafından indüklendiklerinden ve bir interferon yanıt

elemanı (IRSE) ve bir NF-κB1 bölgesi içerdiklerinden belli bir benzerlik derecesi

gösterirler (108-111). Cxcl10 promotöründeki IRSE, genin IFN-α’ya ve IFN-β'ya

duyarlılığına aracılık eder. Bu nedenle hem Tip I hem de Tip II IFN'ler CXCL10

ekspresyonunun güçlü uyaranlarıdır. Dikkat çekici bir şekilde, CXCL11, IFN-β ve IFN-

γ tarafından uyarılır, ancak IFN-α ile uyarılmaz (112). IFN ile uyarılabilen üç CXCR3

ligandı için, ilgili IFN'ler tarafından indüklenen gen transkripsiyonu, fibroblastlarda ve

endotel hücrelerde TNF-α ve IL-1β varlığında kuvvetli bir şekilde artmaktadır (113).

Şaşırtıcı bir şekilde, bakteriyel lipopolisakkaritler (LPS) ve peptidoglikanlar aynı

zamanda fibroblastlarda ve endotel hücrelerde üç CXCR3 ligandını sinerjistik olarak

indüklemelerine rağmen, bu ajanlar, CXCR3 ligandlarının lökositler tarafından IFN

uyarımıyla üretimlerini inhibe etmiştir (101-103). Ek olarak, tek hücre seviyesinde,

endotel hücreler, CXCR3 ligandlarının fibroblast ve lökositlerden daha iyi

üreticileridirler (101-103).

2.2.3. CXCR3

2.2.3.1. CXCR3'ün Tanımlanması ve Ekspresyonu

İnsan kemokin reseptörü CXCR3, ilk kez 1996 yılında tanımlanmıştır (97).

Reseptör orijinal olarak "monositler veya granülositler tarafından ifade edilmeyen ilk

lenfosit kemokin reseptörü" olarak tarif edilmiştir (97). CXCR3’e karşılık gelen gen iki

yıl sonra bulunmuştur ve X kromozomu üzerinde, q13.1 bölgesinde yer almaktadır

(Şekil 2-6) (114). Gen, yaklaşık 41 kDa'lık bir moleküler kütleye sahip 368 amino

17

asitlik bir membran molekülünü kodlar (97). CXCR3, yedi transmembran sarmalı içeren

A sınıfı bir GPCR'dir. Reseptör, ağırlıklı olarak aktive edilmiş T hücreleri üzerinde

eksprese edilir. CXCR3, düzenleyici T hücreleri, CD4 pozitif ve CD8 efektör ve hafıza

T hücreleri üzerinde tespit edilmiştir, Th2 hücreleri ile karşılaştırıldığında yardımcı T

(Th)1 hücrelerinde daha yüksek seviyelerde olduğu tespit edilmiştir (97,114-127).

Dendritik hücre (DH) aracılı T hücresi aktivasyonu, başlangıçta CXCR3 negatif olan T

lenfositler üzerinde CXCR3'ü indükler. Ayrıca interlökin (IL)-2, hücre kültürlerinde,

fitohemaglutinin (PHA) varlığında ya da yokluğunda, CXCR3'ü yüksek verimle

arttırabilir ve toplam kültürün yaklaşık % 95’inde CXCR3 pozitifliğine neden olabilir

(114). Lökositlerin diğer alt tipleri, örneğin, doğuştan gelen lenfoid hücreler (ILC'ler),

Gama delta T (γδT) hücreleri, doğal öldürücü (NK) hücreler, NKT hücreleri, spesifik B

lenfositleri ve DH'lerin kendileri de fonksiyonel CXCR3'ü ifade edebilirler (115,128-

133). Ayrıca, CXCR3 ekspresyonu, bağışıklık sistemi ile ilgili olmayan çeşitli

hücrelerde gösterilmiştir. Bu hücreler fibroblastlar, endotel ve epitel hücreler, astrositler

ve düz kas hücreleridir (133,134). Son zamanlarda, eozinofiller ve iltihaplı ortamdaki

nötrofiller üzerinde de CXCR3 bulunmuştur (135-137). Bu durum, CXCR3'ün

granülositler üzerinde bulunmadığının tam olarak doğru olmadığını göstermektedir.

18

Şekil 2-6: Cxcr3 gen yapısına genel bakış (91)

Cxcr3, kromozom X üzerinde q13.1 bölgesinde bulunur ve üç ekson ile bir intron içerir.

Alternatif ekleme, üç farklı CXC kemokin reseptörü 3 (CXCR3) proteinini kodlayan, yapısal ve

fonksiyonel olarak farklı üç mRNA üretir. Standart CXCR3A 368 amino asit içerir. Dört NH2-

terminal rezidüsü, Cxcr3'ün 1. eksonu tarafından kodlanır ve kalan tüm amino asitler, 3. ekson

tarafından kodlanır. CXCR3B (415 amino asit), 2. ekson tarafından kodlanan 51 amino asitlik

özgün bir NH2 terminal ucu içerir. Hem CXCR3A hem de CXCR3B, yedi transmembran

bölgesi içerir. Önemli ölçüde kısaltılmış olan CXCR3-alt (267 amino asit), transkripsiyonel

ekson atlamadan kaynaklanır ve sadece dört veya beş transmembran bölge içerir.

2.2.3.2. Alternatif Eklemeyle Oluşturulan CXCR3 Varyantlarının Keşfi

Başlangıçta tarif edilen 368 amino asitlik CXCR3 proteininin adı daha sonra

CXCR3A olarak değiştirilmiştir ve Cxcr3 geninin alternatif eklemelerinden

kaynaklanan iki diğer CXCR3 izoformu keşfedilmiştir (Şekil 2-6). Birkaç çalışmada,

özgün sinyal kaskadlarının ve ekspresyon paternlerinin her bir CXCR3 varyant

oluşumuna dayandırılabileceği iddia etmiştir (138,139). Gerçekten de, ligandların

varlığından bağımsız olarak, CXCR3 varyantlarının, spesifik hücre tiplerinde farklı

19

şekillerde eksprese edilebildiği ve kısmen farklı sinyal transdüksiyon yollarını aktive

edebileceğine dair kanıtlar mevcuttur (138-142). Bu da, alternatif gen ekleme işleminin,

CXCR3'ün ve in vivo ligandlarının duruma özgü görevlerinin ve özelliklerinin

belirlenmesinde rol oynayabileceğini düşündürmektedir. En çok bulunan form olan

CXCR3A, kemotaksiyi ve kalsiyum mobilizasyonunu uyarmak için CXCL9, CXCL10

ve CXCL11 ile etkileşir. CXCL11 ve CXCL10, inhibe edici Gα proteinlerinin (Gαi)

aktivasyonunu, β arrestin-1 ve β arrestin-2 alımını ve ERK1/2 fosforilasyonunu uyarır

(138,141-143). CXCR3A'nın CXCL9 ile etkileşmesi üzerine verilen yanıt genel olarak

CXCL10 ve CXCL11 ile etkileşmesi üzerine verilen yanıttan daha zayıf olmasına

rağmen, HEK293T hücre transfektanlarında, üç ligandın tamamı reseptör

internalizasyonunu etkili bir şekilde uyarabilmektedir (138). Gαi proteinlerine bağlanma

durumu, CXCR3A aktivasyonunun, adenil siklaz aktivitesinin inhibisyonuna ve

ardından endojen [cAMP]i konsantrasyonunun azalmasına neden olduğu anlamına

gelmektedir. Bu sinyal yolağı en sonunda hücre içi kalsiyum konsantrasyonlarında

([Ca2+]i), hücre proliferasyonunda ve migrasyonla ilişkili hücresel tepkilerin

başlatılmasında artışa neden olur (97,114). Cxcr3'ün 2. eksonunun 5′ ucundaki bir

alternatif ekleme, ekspresyonu daha az olan 415 amino asitlik CXCR3B'yi üretir. Bu

ikinci CXCR3 varyantı, CXCR3A'nın dört NH2-terminal rezidüsünün yerini alan

özgün, 51 amino asitlik bir NH2-terminal kuyruğu içerir. mRNA seviyesinde CXCR3A

ve CXCR3B kalp, böbrek, karaciğer ve iskelet kası dokularında bulunurken, CXCR3A

plasentada da bulunur (139). Bağışıklık hücreleri esas olarak CXCR3A'yı eksprese etse

de genellikle düşük seviyelerde CXCR3B ekspresyonu görülür (92). Ayrıca, endotel

hücreleri CXCR3B'yi seçici olarak eksprese edebilirler. IFN ile uyarılabilen üç CXCR3

kemokin ligandına ek olarak iki trombosit kökenli kemokin olan CXCL4 ve CXCL4L1

de CXCR3A ve CXCR3B'ye bağlanırlar (139,144).

IFN ile uyarılabilen CXCR3 agonistleri arasında CXCL10, CXCR3B için

bağlanma afinitesi en yüksek olan kemokindir (139). IFN ile uyarılabilen tüm CXCR3

ligandları, CXCR3A için CXCR3B'den daha yüksek bir afinite gösterirler. Üstelik,

CXCR3B ile oluşan kemokin sinyali, kalsiyum hareketi ile ilişkili değildir. CXCR3A

transfektanlarına kıyasla, p21 mRNA seviyelerinin CXCR3B ile transfekte edilen

hücrelerde on kat daha yüksek olduğu gösterilmiştir (139). Siklin bağımlı kinaz

inhibitörü p21, DNA hasarı sonucunda hücre döngüsünün durdurulmasında önemli bir

role sahiptir (145,146) ve p21 ekspresyonunun uyarılmasının, uyarıcı G alfa (Gαs)

20

protein sinyalinin başlamasından ve ardından [cAMP]i artışından kaynaklanan

antiproliferatif tepkide yer alan mekanizmaların bir parçası olduğu düşünülmektedir

(147). Bu nedenle, kemokin reseptörlerinin ve CXCR3A'nın aksine, CXCR3B'nin,

mikrovasküler endotel hücrelerinde ligand etkileşimi üzerine Gαs proteinlerine

bağlanabileceği ve [cAMP]i'nin aslında bu CXCR3 varyantına bağlı olduğunu açıkladığı

öne sürülmüştür. Ayrıca, Gα proteinine bağlanmadaki bu farklılıkların, CXCR3A ve

CXCR3B ile indüklenen zıt hücresel tepkileri açıkladığı ileri sürülmüştür (139). Bu

hipotezi destekleyen kanıtlar, CXCR3B aktivasyonunun antiproliferatif bir yanıt

başlattığı ve hücre göçünü olumsuz yönde etkilediği gözlemleriyle sağlanmıştır. Ayrıca

CXCR3B'nin, CXCR3 ligandlarının antianjiyogenik etkilerinden sorumlu reseptör

olduğuna inanılmaktadır (139). Bununla birlikte, CXCR3B ile transfekte edilmiş

HEK293T hücrelerinde herhangi bir Gαs uyarımı gözlenememiştir ve farelerde

CXCR3B formu mevcut değildir. Ancak CXCR3 ligandları ve özellikle CXCL4L1 bu

hayvanlarda antianjiyogenik aktiviteyi etkili bir şekilde korumaktadır (138,144,148).

2.2.3.3. CXCR3'ün in vivo İşlevi için Ekleme Varyantlarının Potansiyel Önemi

Kullanılan deney modeline bağlı olarak, CXCR3 varyantlarına odaklanan özgün

çalışmalarda çelişkili sonuçlar elde edilmiştir. Aslında, CXCR3 ekleme varyantına bağlı

bir mekanizmadan ziyade hücreye bağlı bir mekanizmanın, ligand uyarımı üzerine

aktive edilen Gα protein (Gαi veya Gαs) tipi için belirleyici olabileceği öne sürülmüştür.

Bu, en azından kısmen de olsa, sadece bir izoformu bulunan ve başlangıçta klasik bir

Gαi-bağlı kemokin reseptörü olarak kabul edilen murin CXCR3'ün anjiyogenez

inhibisyonu gibi etkilere sebep olduğunu açıklayabilmektedir (144). Farelerde

CXCR3/Gαi sinyali göz önüne alındığında, Gαi proteini Gαi2’ye karşılık gelir, Gαi3 ise

bu hayvan modelinde inhibitör etki gösterir (149). İnsandaki Cxcr3 için farelerde

karşılık gelen gende alternatif ekleme olmadığı gerçeği, insan kemokin ağı ve murin

karşılığı arasındaki potansiyel önemli farkların altını çizen sayısız örneklerden biridir.

İzoforma spesifik antikorlarla yapılan çalışmaların sınırlı sayıda olması

nedeniyle, CXCR3 varyantlarının sağlık ve hastalık durumlarında IFN ile ilişkili

CXCR3 kemokin ağına kesin katkısı büyük ölçüde bilinmemektedir. İltihaplı bir

hücresel ortamda, genellikle belirli bir kemokin reseptörü ve bunun ligandları bulunur

ve hatta tek bir hücre tarafından birlikte sentezlenebilirler. CXCR3A ve CXCR3B'nin T

hücreleri üzerinde birlikte ifade edildiğini bildirilmiştir (139). Bununla birlikte,

21

CXCR3B’nin, CXCR3A'nın aksine, HUMEC'ler üzerinde eksprese edildiği ve CXCR3

ligandlarının CXCR3B aracılığıyla bu mikrovasküler endotelyal hücrelerin büyümesini

inhibe ettiği gösterilmiştir. Aksine, insan mezengial hücreleri esas olarak CXCR3B'yi

değil, CXCR3A'yı ifade eder (139). Over kanseri hastalarında üç CXCR3 varyantının da

farklı ekspresyonları bildirilmiştir. En yüksek CXCR3B ekspresyonu normal dokuda

(CXCR3B ekspresyonu; normal > endometriozis > kanser dokusu) görülmüştür.

CXCR3A ekspresyonu ise endometrioziste ve kanser dokusunda normal dokudan daha

yüksektir (150). Prostat kanseri örneklerinde CXCR3A'nın mRNA seviyelerinin artmış

ve CXCR3B'nin mRNA seviyelerinin azalmış olduğu bulunmuştur. Üstelik, bu değişmiş

ekspresyon düzeylerinin, kanser hücrelerinin bozulmuş bir göç ve invazyon davranışına

sebep olduğu ve CXCR3A ekspresyon artışı ile CXCR3B ekspresyon azalışının nihai

sonucunun tümör progresyonu ve metastaz olduğu ortaya çıkarılmıştır (151).

2.2.4. Kemokin ile Uyarılan CXCR3 İnternalizasyonu

CXC kemokin reseptörü 3, kemokin agonistlerinin varlığında daha da artan

yapısal internalizasyon gösterir (152). CXCL11, T hücreleri ve uyarılmış endotel

hücreleri arasındaki temastan sonra, CXCR3 internalizasyonunun uyarılmasından

sorumlu olan baskın IFN ile uyarılabilen CXCR3 ligandı olarak bulunmuştur (153).

Ayrıca, CXCR3 ile transfekte edilmiş HEK hücrelerinin kullanıldığı bir çalışmada,

CXCL11'in CXCR3 internalizasyonunu destekleyen ana kemokin olduğu iddia

edilmiştir (154). Bu veriler, CXCR3 internalizasyonunun üstün bir indükleyicisi olarak

hareket ederek CXCL11'in, diğer iki IFN ile uyarılabilen CXCR3 ligandları ve

trombosit türevli CXCR3 agonistleri CXCL4 ve CXCL4L1 için reseptörün

mevcudiyetini azalttığı anlamına gelebilmektedir. Üstelik, CXCL9’un ve CXCL11'in,

sırasıyla β-arrestin alımını ve reseptör internalizasyonunu başlatma eğilimli ligandlar

oldukları iddia edilmiştir. Aksine, transfekte edilmiş HEK hücreleri üzerindeki özgün

CXCR3 varyantlarının internalizasyon özellikleri arasında farka bakıldığında,

CXCL11’in CXCR3A ve CXCR3B'nin internalizasyonunu daha az uyardığı

görülmüştür (138). CXCL10, CXCR3A internalizasyonunu 10 dakika içinde %40

oranında başlatırken CXCL9 ile uyarılan CXCR3A internalizasyonunun üç kat daha

yavaş olduğu ortaya çıkarılmıştır (138). CXCR3 internalizasyonunu uyarmak için IFN

ile uyarılabilen CXCR3 ligandlarının potansiyelleri ile ilgili yapılan iki çalışmada elde

edilen çelişkili sonuçlar, ilk çalışmanın yazarlarının CXCR3 varyantları arasında fark

22

gözetmeksizin sadece β-arrestine bağımlı CXCR3 internalizasyonunu dikkate alırken,

diğerleri, reseptörün internalizasyonunun β-arrestin'den bağımsız bir şekilde

gerçekleşebileceğini göstermişlerdir (138,152,154,155). CXCR3B internalizasonunu

ise, CXCL9 veya CXCL10 orta derecede uyarmaktadır (138,155). Özetle, çeşitli

çalışmalardan elde edilen farklı sonuçlar, CXCR3 internalizasyon özelliklerinin

muhtemelen kullanılan deney düzeneğine bağlı olduğunu göstermektedir. Ayrıca

internalizasyon, alternatif CXCR3 ekleme varyantları için farklı şekillerde ortaya

çıkmaktadır. Bununla birlikte, CXCR3 izoformlarının in vivo fizyolojik özellikleri şu

anda büyük ölçüde bilinmemektedir. Önceki çalışmalar, bu farklı reseptör varyantlarının

özgün rolleri olduğu fikrini desteklerken, CXCR3 izoformları ile hücrelerin transfekte

edilmesi yapaydır ve in vivo durumu gösterdiği kesin değildir, bu da, endojen olarak

ifade edilen üç CXCR3 varyantı arasında ayrım yapabilen oldukça spesifik antikorlarla

çalışmalara ihtiyaç olduğunu göstermektedir.

2.2.4.1. CXCR3 Ligandlarının Hastalık ve Tedavi ile İlişkisi

T hücrelerinin ve NK hücrelerinin inflamatuar yapıları ve kemotaktik

aktiviteleri, CXCL9’un, CXCL10’un ve CXCL11'in inflamasyon ve otoimmünitede

anahtar rolleri olabileceği anlamına gelmekedir. Ayrıca, CXCL10’un ilk olarak in vitro

ve daha sonra in vivo olarak antianjiyogenik etkileri gösterilmiştir (156,157). Bu durum

ise IFN ile uyarılabilen CXCR3 ligandlarının biyolojik fonksiyonlarının, CXCR3 ifade

eden lökositlerin göçünü yönlendirmeye yönelik fonksiyonlarının ötesine uzandığı

anlamına gelir. Bununla birlikte, IFN ile uyarılabilen ve trombosit türevli diğer iki

CXCR3 agonisti CXCL4 ve CXCL4L1'in anjiyostatik özellikleri gösterilmiştir

(144,148,158-161). CXCR3 nötralize edici antikorların eklenmesinin, insan endotel

hücrelerinin göçünü engellediği ve fare korneasında CXCL4L1 ile indüklenen

antianjiyogenik aktiviteyi inhibe ettiği bulunmuştur (144,162). Üstelik, anti-CXCR3

antikorları, tümör büyümesinin inhibisyonunu önlemiştir ve CXCL4L1'in CXCR3 -/-

farelerde tümör büyümesi üzerinde hiçbir etkisi görülmemiştir (144). Bu sonuçlar, en

azından kemokinler ekzojen olarak (dışardan) eklendiğinde, CXCR3 ligandlarının

anjiyostatik etkilerinin CXCR3'e bağlı bir olgu olduğunu gösterebilmektedir.

CXCR3A'nın, ligandlarının anti-anjiyogenik etkilerine aracılık eden bir reseptör

olmadığını gösteren belirtiler de vardır. Bu durum, CXCR3 reseptör varyantlarının ya

23

da alternatif reseptörler aracılığıyla alternatif sinyal yollarının anti-anjiyogenik

aktivitede yer aldığını göstermektedir.

Anjiyogenezi düzenlediğine inanıldığı gerçeği, bu kemokinlerin ayrıca tümör

biyolojisi ve hematolojik malinitelerde de rol oynayabileceğini düşündürmektedir (92).

Genel olarak, çeşitli in vivo hastalık modellerinde, durum-bağımlı olan farklı roller IFN

ile uyarılabilen CXCR3 ligandlarına dayandırılmıştır (92,93).

2.2.5. MPN ile İlişkilendirilen Sitokin ve Kemokinler

MPN ile kemokinlerin arasındaki bazı ilişkileri belirten literatür çalışmaları

mevcuttur. Bir çalışmada CCL3’ün MPN’ye neden olabileceği gösterilmiştir (163). Bu

çalışmadaki hastalarda lösemi gelişme riskinin arttığı gösterilmiştir. Bu durumda kemik

iliği stromasından elde edilen CCL3, çeşitli proinflamatuar sitokinlerin üretilmesi ve

lösemi öncesi hücrelerin proliferasyonunu arttırma kapasitesine sahip olan monositlerin

kemik iliğinden sızmasını uyararak lösemi gelişimine neden olabilir.

Ph- MPN'ler (PV, ET ve PMF), birçok inflamatuar sitokinlerin (IL1, IL2, IL6,

IL8, IL12, TNFα ve IFNγ), birkaç büyüme faktörünün (GM-CSF, G-CSF, HGF, PDGF

ve EGF) ve anjiyogenik faktörlerin (VEGF) artmış plazma seviyeleri ile sitokin

üretimindeki önemli değişiklikler ile karakterize edilirler (164). Ayrıca deregülasyonlar

da IL4 ve IL10 gibi anti-enflamatuar sitokinlerle ilgilidir. MPN'ler arasında sitokin

seviyeleride ve profillerinde farklılıklar vardır, ancak bu hastalıklar içinde belirli bir

süreklilik söz konusu değildir. Bazı sitokinler, PMF'de PV'ye göre (IL1, IL1RA, IL2-

Ra, EGF ve IL10) aşırı eksprese edilir. Aksine, bazıları PV'de PMF’e göre (IL7, IFNγ,

GM-CSF, MIP-la, IP-10 ve MIG) aşırı eksprese edilir ve ET; IL6, IL8, IL12, IFNγ,

GM-CSF ve HGF için PV'den daha yüksek ekspresyon seviyelerine sahiptir.

Teknik olarak, farklı çalışmalar arasındaki yöntemlerin standardizasyonu

olmadığından, bu sonuçları birbirleriyle karşılaştırmak zordur. Aynı teknolojilerin

kullanılması ile büyük bir MFP, PV ve ET kohortunun araştırılması, bu farklılıkları

açıklığa kavuşturabilecek ve her bir hastalık için spesifik profil varlıklarını daha iyi

tanımlayabilecektir.

IFN-γ/CXC kemokin sinyallemesi, IFN-γ'nın, IFN-γ heterodimerik reseptöre

bağlanmasından başlayarak, Janus Kinaz (JAK) -STAT yolağını aktive eder ve bu da

STAT1 aktivasyonuna yol açar. Bunu, çekirdeğe STAT1 translokasyonu ve hemen

24

ardından kemokin (CXCL9, CXCL10) transkripsiyonu takip eder. Üretilip hücreden

salınan kemokinler, özgün reseptörleri CXCR3’e bağlanarak belli biyolojik süreçleri

başlatırlar.

Sonuç olarak, yaşlanma ile birlikte IL6 ve interferon-gama ile uyarılabilen

kemokinlerin (CXCL9 ve CXCL10) varlığının arttığı ve aksine IL2, EGF ve EGFR

varlığının azaldığı gösterilmiştir (165,166).

25

3. GEREÇ VE YÖNTEM

3.1. Gereç

3.1.1. Hasta Örnekleri

Çalışmada, İstanbul Üniversitesi, İstanbul Tıp Fakültesi Hematoloji Bölümü’nde

Miyeloproliferatif Neoplazi tanısı almış 33 hastadan flebetomi yolu ile elde edilen

periferik kan mononükleer hücreleri kullanıldı. Hastalara gerekli bilgilendirme

yapılarak, gönüllü onam formu okutuldu ve onayları alındı. Çalışmaya dahil edilen

hastalar için değerlendirmede kullanılan klinik parametreler ve hasta değerleri Tablo 3-

1’de özetlenmiştir. Kantitatif PZR’de CXCR3B için 27 hasta-10 sağlıklı; CXCL9 için

26 hasta-9 sağlıklı; CXCR3A için 10 hasta-10 sağlıklı örnek kullanıldı. Akım ölçer

analizi için 8 hasta-10 sağlıklı örnek kullanıldı. Etik kurul onayı alındı.

Tablo 3-1: Hastaların Klinik Parametreleri

Hasta Numarası Yaşı Tanı Yaşı Tanı Tedavi

H8 62 50 MF F

H9 27 - PV F

H10 29 - Şüpheli F

H11 66 59 Postpolistemik MF F-H-R-A-İ

H12 36 27 PV F-A-Ü

H13 54 44 ET F-A-H

H14 52 46 Hodgkin Lenfoma -

Klasik Tip

F

H15 68 63 PV F-H-A-Ü

H16 62 - Koagülasyon Bozukluğu F

26

(Biyopsi yok)

H17 31 27 PV F-A

H18 48 41 PV F-H-A-L-At-S

H19 83 75 PV F-H-C-Ü

H20 32 - PV F

H21 56 43 MPN (PV,ET) F-A-Ü

H22 70 66 ET F-A-H-Ü

H23 53 35 PV F-H-V

H24 63 54 Hairy Cell Lösemi F-A-C

H25 39 - PV F

H26 59 45 ET F-H-T-Ü-A

H28 56 48 PV F-H-Ü

H29 92 64 PV F-H-A-Ü

H34 58 -- PV F

H35 71 - PV F

H36 71 63 Multipl Miyelom F-Ko-Cl

H37 55 49 PV F-A

H38 69 52 PV F-A-Ü-H

H39 48 41 PV F-H-A

H43 65 54 PV F-H-A-Ü

27

H46 55 45 ET F-H-A

H54 55 53 ET F-A

H56 55 55 Hairy Cell Lösemi F-A

H57 - - - F

Tabloda Kullanılan Kısaltmalar: F: Flebetomi, H: Hidroksiüre, T: Tromboredüktin, Ü: Ürikoliz,

A: Asetilsalisilik Asit, R: Ruxolitinib, L: Larcadip, At: Ator, S: Saneloc, C: Coraspin, Ko:

Kordexa, Cl: Clexane

3.1.2. Deneylerde Kullanılan Kontrol Örnekleri

MPN’lerde JAK2V617F mutasyon karakterinin allel düzeyinde belirlenmesi

amacıyla deneylerde kontrol olarak 2 farklı hücre soyu kullanıldı. Bunlar JAK2V617F

mutasyonunu homozigot formda taşıyan HEL (İnsan eritrolösemi hücre soyu) ve

heterozigot formda taşıyan SET-2 (İnsan esansiyel tromboz hücre soyu) hücre

soylarıdır. Ayrıca JAK2V617F mutasyonunu taşımadığı bilinen K562 (İnsan kronik

miyeloid lösemi hücre soyu) hücre soyu da kontrol olarak kullanıldı (Tablo 3-2).

HEL ve SET-2 hücre soyları DSMZ (Leibniz Enstitüsü Alman Mikroorganizma

ve Hücre Kültürü Koleksiyonu) firmasından temin edildi. K562 hücre soyu ise İstanbul

Üniversitesi Deneysel Tıp Araştırma Enstitüsü Genetik Ana Bilim Dalı’ndan Prof. Dr.

Duran ÜSTEK’ten temin edilmiştir.

28

Tablo 3-2

Hücre

Hattı

Organizma Hastalık Morfoloji Kültür tipi JAK2V617F

K562 Homo

sapiens

Kronik Miyeloid

Lösemi (KML)

Lenfoblast Süspanse -

SET-2 Homo

sapiens

Esansiyel

Trombositemi(ET)

Megakaryosit Süspanse Heterozigot

3.1.2.1. Sağlıklı Kontrol Örnekleri

MPN hastası olmayan, 10 sağlıklı bireyden alınan periferik kan mononükleer

hücreleri kullanıldı. Gönüllülere gerekli bilgilendirme yapılarak, gönüllü onam formu

okutuldu ve onayları alındı.

3.1.3. Kullanılan Kimyasal Maddeler

Kullanılan kimyasal maddeler Tablo 3-3’te gösterilmiştir.

Tablo 3-3: Kullanılan kimyasal maddeler

Agaroz (Sigma)

IMDM (Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium)(Gibco)

Etidyum Bromid (M.Biotech)

Etil alkol (Merc)

İzopropanol (Merc)

DPBS (Fosfat Tampon Çözeltisi) (Gibco)

Fikol (GE Healthcare)

FBS (Fetal Bovine Serum)

29

Tris baz (BioChemika)

Etilen diamin tetra asetik asit (EDTA) (Gibco)

Steril, DNA/RNA nükleaz içermeyen su

Ultra Saf Su (Biochrom)

50 bp Ladder (BioRad)

Propidium Iodide

2 mL CD34 MicroBeads, insan (MACS)

2 mL FcR Blocking Reagent, insan (MACS)

2 mL Diamond Lin Biotin-Antibody Cocktail, insan (MACS)

2×2 mL Anti-Biotin MicroBeads (MACS)

2 mL CD34 Diamond MicroBeads, insan (MACS)

Universal Probe Library qPCR Probe 27 (Roche)

Universal Probe Library qPCR Probe 4 (Roche)

Universal Probe Library qPCR Probe 60 (Roche)

SYBR Green Probe (BIOLINE)

CD34 PE (8G12) Antikor (BD Pharming)

3.1.4. Kullanılan Kitler

Kullanılan kitler Tablo 3-4’te gösterilmiştir.

30

Tablo 3-4: Kullanılan Kitler

CD34 MicroBead Kit, insan (MACS)

Diamond CD34 Isolation Kit, insan (MACS)

Quick gDNA Micro Prep (Zymo Research D3025)

RNA Purification Kit (Jena Bioscience) (PP-210L)

SCRIPT cDNA Synthesis Kit (Jena Bioscience) (PCR-511S)

Sigma PZR Mix

3.1.5. Kullanılan Cihazlar

Kullanılan cihazlar Tablo 3-5’te gösterilmiştir.

Tablo 3-5: Kullanılan cihazlar

Buzdolabı ve Derin Dondurucular (+4°C, -20°C, -80°C) (Samsung, Haier,Haier)

Buz Makinası (Cornelius)

Jel görüntüleme sistemi (UVP)

Otoklav (Kermanlar)

Vorteks (Kermanlar)

Otomatik Pipetler (Eppendorf)

PZR Aleti (Thermo-Cycler) (Bio-Rad T100)

Elektroforez Aleti (Bio-Rad)

Güç Kaynağı (E-C Apparatus Corporation)

31

Distile Su Cihazı (Millipore)

Masaüstü Mini Santrifüj (Beckman Coulter)

Soğutmalı Santrifüj (Beckman Coulter)

Su Banyosu (Memmert)

Laminer Akış Kabini (NUAIRE)

Hücre Ayırım Ünitesi ( FACSAria Akım Sitometri Cihazı, BD Bioscience)

Nanodrop NanoDrop Technologies

Mikroskop (Olympus)

Mikrodalga Fırın (Arçelik)

Gerçek Zamanlı Kantitatif PZR Cihazı (LightCycler 480 II - Roche)

3.1.6. Kullanılan Tampon ve Çözeltiler

% 70’lik Etil Alkol

70 ml Etil alkol

Steril distile su ile 100ml’ye tamamlandı.

50 X TAE (Tris-Asetik asit-EDTA)

242 g Tris baz

57,1 g Glasiyal asetik asit

100 ml EDTA (0,5M)

Distile su ile 1 lt’ye tamamlandı ve otoklav ile steril edildi.

MACS Solüsyonu

500 ml PBS

% 0.5 (7.5 M) BSA

32

2Mm (0.5M) EDTA

Filtrelendi.

Propidoum Iodide Solüsyonu

10μl Propidoum iodide

10 ml’ ye MACS solüsyonu ile tamamlandı.

Hücre Dondurma Solüsyonu

%80 FBS (Fetal Bovine Serum)

%20 DMSO ile tamamlandı.

20 dakika buzda bekletildi.

Hücre Dondurma Solüsyonu 2

%80 IMDM

%20 FBS (Fetal Bovine Serum) ile tamamlanır. 0,20 μm membranlı filtreden

geçirildi.

Hücre Çözdürme Solüsyonu

%2 FBS (Fetal Bovine Serum)

IMDM ile tamamlandı. 0,20 μm membranlı filtreden geçirildi.

3.2. Yöntem

3.2.1. Mononükleer Hücre İzolasyonu

İstanbul Üniversitesi, İstanbul Tıp Fakültesi Hematoloji Bölümü’nde toplanarak

laboratuvarımıza getirilen MPN tanısı almış hastaların flebetomi uygulanarak toplanan

periferal kanları ile kontrol olarak kullanılan 10 sağlıklı erişkinden elde edilen perifer

kanlar, fikol üzerine yayıldı, fikol gradient santrifüj yöntemi ile ayrıştırıldı ve fikol

içindeki periferal kan mononükleer hücreleri, pastör pipet ile toplandı. Toplanan bu

periferal kan mononükleer hücreleri daha sonra yüzey belirteçlerine göre izole edilerek

DNA ve RNA izolasyonunda kullanıldı, kalan kısmı ise hücre dondurma protokolüne

uygun olarak dondurulup sonraki çalışmalarda kullanıldı.

1. Kabin çamaşır suyuyla silindi, tüm malzemeler alkolle silinerek kabine

alındı. Kan torbası ve filtre hortumu çamaşır suyuyla silindi.

33

2. Kan torbasındaki kan steril şişelerde PBSs ile 1:1 oranında sulandırıldı.

3. 15 mL fikol 50 mL’lik falkonlara dağıtıldı ve ardından üzerlerine 35 mL

kan (kan+PBS) yavaşça eklendi.

4. Falkonlar santrifüjde 2000 rpm’de 30 dakika 15°C’de hızlanma ve

yavaşlama ivmesi en az olacak şekilde santrifüj edildi.

5. Fikol-gradient santrifüj tekniği ile tüpün ağzından dibine doğru sırasıyla

plazma, mononükleer hücre, fikol, granülosit fazları oluşur. Ayrımı net

bir şekilde santrüfüj sonrasında görülen mononükleer hücreler 15 ml

MACS içerisine toplandı. Serum ve granülositler gerektiği kadar başka

çalışmalarda kullanılmak üzere saklandı.

6. Santrifüj sonrasında süpernatantı dikkatli bir şekilde atıldıktan sonra

pellet 10 ml MACS ile çözüldü ve tüm tüpler birleştirildi.

7. Bu tüp 2000 rpm’de 15 dakika santrifüj edildi.

8. Santrifüj sonrasında süpernatant atıldı, pellet 10 ml IMDM ile çözüldü.

9. IMDM içerisindeki hücrelerden pipet 10 μl çekilerek 90 μl IMDM’e

eklendi ve 10’luk dilüsyonlar hazırlandı. Seyreltilen bu hücrelerden 10 μl

çekilip 10 μl trypan blue ile karıştırıldıktan sonra hemositometre ile

sayıldı (Tablo 3-6).

Tablo 3-6: Hücre Sayımında Kullanılan Formül

Hücre sayısı/ml = (Dört Karedeki Hücre Sayısı Ortalaması) x 104 x (Dilusyon Oranı)

3.2.2. Hücre Dondurma

Mononükleer hücre izolasyonundan sonra kalan hücre sayısına göre hücre

dondurma solüsyonları 1:1 oranda hazırlanır.

1. Hücre dondurma solüsyonu 1, hazırlandıktan sonra 20 dakika buzda

bekletildi.

34

2. Hücreler 2000 rpm’de 15 dakika santrifüj edildi, pellet hücre dondurma

solüsyonu 2 ile çözüldü ve hücre dondurma solüsyonu 1 damla damla

eklendi.

3. 2 mL ve 5 mL dondurma tüplerine alındı. 1 gece -80°’de bekletildi ve

ertesi gün uzun süre saklamak amacıyla sıvı azot tankına aktarıldı

3.2.3. Hücre Çözme

Sağlıklı kontrol kanlarından elde edilen mononükleer hücreler dondurulmadan

direkt olarak deneylerde kullanıldı. Bu nedenle bu grup için hücre çözme işlemi

uygulanmadı.

Hasta kanından mononükleer hücre izolasyonundan sonra mononükleer

hücrelerin kalan kısmı sonraki çalışmalarda kullanılmak üzere donduruldu. Hücrelerin

çalışmalarda kullanılması gerektiğinde hücreler azot tankından alındı ve hücre

çözdürme için aşağıdaki protokol takip edildi.

1. Hücreler sıvı azottan alındı ve buza yerleştirildi.

2. 37°C su banyosunda olabildiğince hızlı bir şekilde eritildi.

3. Dondurma tüpünde bulunan hücreler 15 mL’lik falkona aktarıldı.

4. Bu tüpteki hacmin %10’u kadar Dnaz eklendi (200 μl)

5. 37°C su banyosunda 90 saniye inkübe edildi.

6. Filtrelenmiş %2 oranında FBS içeren 10 ml IMDM damla damla eklendi.

7. 1200 rpm’de 7 dakika santrifüj edildi.

8. Pellete 140 μl Dnaz eklendi. (hacmin %7’si kadar)

9. 10 mL FBS’li IMDM tekrar damla damla eklendi. 1500 rpm/ 6 dakika

santrifüj edildi.

10. Pellete 80 μl DNaz eklendi. (hacmin %4’ü kadar)

11. 100 milyon hücreye 5 mL olacak şekilde MACS eklendi.

12. Hücreler sayıldıktan sonra sonraki deneysel aşamalarda kullanıldı.

35

3.2.4. Hücre Ayrımı

Kök hücre ayrımı için iki farklı popülasyon hedeflenmiştir. Bunlar CD34+/- ve

CD34+/-Lineage- popülasyonlarıdır. Bu popülasyon periferik kan mononükleer

hücrelerinden elde edilmiştir.

3.2.4.1. CD34 MicroBead Kit (MACS Separation) ile Hücre Ayrım Prosedürü

İlk olarak, CD34+ hücreler ‘CD34 MicroBeads’ ile manyetik olarak işaretlenir.

Daha sonra, hücre süspansiyonu bir ‘MACS Ayırıcı’nın manyetik alanına yerleştirilen

‘MACS® Kolona’ yüklenir. Manyetik olarak işaretlenmiş CD34+ hücreler, kolontun

içerisinde tutunurlar. Kolonu manyetik alandan çıkardıktan sonra, manyetik olarak

tutunmuş olan CD34+ hücreler pozitif seçilmiş hücreler olarak saflaştırılır.

1. 5 mL MACS tampon çözültisindeki hücreler 1700 rpm’de 10 dakika

santrifüj edildi ve üst sıvı tamamen çekildi.

2. Pellete 300 μl MACS eklendi.

3. 100 μl FcR Blocking Reagent eklendi.

4. 100 μl CD34 MicroBeads eklendi.

5. İyice karıştırıldı ve +4°C’de 30 dakika inkübe edildi.

6. Hücrelere 5 mL MACS eklendi ve 1700 rpm’de 10 dakika santrifüj

edildi. Üst svı tamamen çekildi.

7. Hücreler 500 μl MACS ile yeniden çözüldüler.

8. Manyetik Ayrıma geçildi; kite özgü kolon, ‘MACS Ayırıcı’daki

manyetik alana yerleştirildi ve kolonun altına CD34- hücreleri toplayacak

olan tüp yerleştirildi.

9. Kolon 3 mL MACS ile yıkandı.

10. Hücreler kolona yavaşça bırakıldı ve CD34- hücreler toplanmış oldu.

11. 3 mL MACS yıkama yapmak amacıyla kolona 3 defa daha uygulandı.

12. Kolon manyetik alandan çıkarılarak CD34+ hücreleri toplamak amacıyla

2. bir tüpe yerleştirildi.

36

13. Kolona 5 mL MACS eklendi. CD34+ hücreleri kolondan çıkarmak için

kolonun paketinden çıkan piston sıkıca ve yavaş bir şekilde kolonun

ağzından itibaren bastırıldı.

Manyetik ayrımdan sonra saflık analizi yapıldı. Bunun için bir miktar hücre

alınıp CD34 PE Antikor ile boyandıktan sonra akım hücre ölçer cihazında

analiz edildi.

3.2.4.2. CD34+/-Lineage- Popülasyon Eldesi Prosedürü

Diamond CD34 İzolasyon Kiti, perifer kan mononükleer hücrelerinden

(PBMC'ler) ve kemik iliği mononükleer hücrelerinden son derece saf CD34+ kök

hücrelerinin izolasyonu için geliştirilmiştir. Kök hücrelerin izolasyonu, iki aşamalı bir

prosedürde gerçekleştirilir. İlk olarak, Lin+ hücreleri (CD2, CD3, CD11b, CD14, CD15,

CD16, CD19, CD56, CD61 ve CD235a (Glikopin A)), spesifik antijenlere ve Anti-

Biotin MicroBeads'e karşı biyotin-konjuge antikorların bir kokteyli ile manyetik olarak

etiketlenir. Hücreler ‘ayırıcı’nın manyetik alanına yerleştirilen bir kolonu üzerinde

manyetik olarak ayrılırlar, etiketlenmemiş Lin- hücreler akıp geçerken manyetik olarak

etiketlenmiş Lin+ hücreler kolon içinde kalır. İkinci adımda, Lin- kök hücreler doğrudan

‘CD34 Diamond MicroBeads’ ile etiketlenir. Ardından bir manyetik ayırma daha yapılır

ve CD34+ kök hücreler, kolonun manyetik alandan çıkarılmasından sonra elde edilir.

Prosedür, elde edilen PBMC sayısı belirlendikten sonra uygulandı.

1. 200 g’de 10 dakika santrüfüjden sonra üst sıvı tamamen çekildi.

2. 200 μl MACS ile yeniden sulandırıldı.

3. 50 μl ‘Diamond Lin Biotin-Antibody Coctail’ eklendi.

4. İyice karıştırıldı ve 10 dakika +4°C’de bekletildi.

5. 3 mL MACS eklenerek hücreler yıkandı ve 300 g’de 10 dakika santrifüj

edildi. Üst sıvı tamamen çekildi.

6. 400 μl MACS ile pellet yeniden sulandırıldı.

7. 100 μl ‘AntiBiotin Microbeads’ eklendi.

8. İyice karıştırıldı ve 15 dakika +4°C’de bekletildi.

37

9. 5 mL MACS eklenerek hücreler yıkandı ve 300 g’de 10 dakika santrifüj

edildi. Üst sıvı tamamen çekildi.

10. 1000 μl MACS’ta yeniden sulandırıldıç

11. Manyetik ayrıma geçildi. Manyetik ayrım esnasında sonraki adımlara

geçmeden önce daima kolonun boşalması beklendi.

12. Kolon manyetik alana yerleştirildi (MACS ayırıcıya).

13. Kolon 2 mL MACS ile yıkandı.

14. Kolona hücre süspansiyonu uygulandı.

15. ‘İşaretlenmemiş’ hücreler toplandı ve kolon 2 mL MACS ile yıkandı.

Akan tüm sıvı toplandı; bunlar ‘işaretlenmemiş’ Lin- hücrelerdir. İki defa

MACS eklenerek yıkama adımları gerçekleştirildi. Yeni MACS sadece

kolon boşaldıktan sonra eklendi.

16. CD34+ kök hücrelerin manyetik işaretlenmesine geçildi.

17. 300 g’de 10 dakika santrifüj edildi. Üst sıvı tamamen çekildi.

18. 200 μl MACS’ta yeniden sulandırıldı.

19. 50 μl ‘CD34 Diamond MicroBeads’ eklendi.

20. İyice karıştırıldı ve +4°C’de 30 dakika bekletildi.

21. 2,5 mL MACS eklenerek hücreler yıkandı ve 300 g’de 10 dakika

santrifüj edildi. Üst sıvı tamamen çekildi.

22. 500 μl MACS ile pellet yeniden sulandırıldı.

23. ‘Manyetik Ayrım: CD34+ kök hücrelerin pozitif seçilimi’ne geçildi

24. Kolon manyetik alana yerleştirildi.

25. Kolon 500 μl MACS geçirilerek hazırlandı.

26. Kolona hücre süspansiyonu uygulandı.

27. Kolon 3 defa 500 μl MACS ile yıkandı. (Kolon boşaldıkça eklendi.)

28. Kolon ayırıcıdan çıkarıldı ve uygun bir toplama tüpüne yerleştirildi.

38

29. 1 mL MACS kolona eklendi. Pistonun kolon ağzından itibaren sıkıca

itilmesiyle manyetik olarak işaretlenmiş hücreler elde edildi.

3.2.5. Hücrelerden DNA İzolasyonu

Sağlıklı bireylerden ve MPN hastalarından toplanan periferal kanlardan izole

edilen mononükleer hücrelerde ve iki farklı kit kullanılarak, hücre ayırıcı ile ayrımı

sağlanmış CD34+, CD34- hücreleri için DNA izolasyonu yapıldı.

1. Hücre süspansiyonları masaüstü mini santrifüj kullanılarak 3 000 g’de 5

dakika santrifüj edildi, üst sıvı mikropipet ile dikkatlice çekilerek

hücrelerin pellet haline gelmesi sağlandı.

2. Pellet olarak saklanmış örnekler üzerine 200 μl ‘Lysis Buffer’ eklendi ve

4-6 saniye vortekslenip 5-10 dakika oda sıcaklığında bekletildi.

3. Zymo Spin kolona aktarıldıktan sonra 10.000 g’de 1 dakika santrifüj

edildi ve yıkama aşamasına geçildi.

Yıkama Aşaması;

1. Spin kolon üzerine 200 μl ‘’Pre-Wash Buffer’’ eklendi ve 10.000

g’de 1 dakika santrifüj edildi.

2. 500 μl ‘’g-DNA Wash Buffer’’ spin kolona eklendi tekrar 10.000

g’de 1 dakika santrifüj edildi.

3. Kolon, RNaz-DNaz içermeyen 1,5 ml ependorflara alındı ve 10 μl

‘’Elution Buffer’' eklendi.

4. 2-5 dakika oda sıcaklığında bekletildi ve en yüksek hızda 30 saniye

santrifüj edildi.

DNA’nın Saklanması

Uzun süreli saklama için -20°C’de, kısa süre içinde kullanılacağında

+4°C’de muhafaza edildi.

3.2.6. İki Aşamalı Allel Spesifik Nested PZR

İki aşamalı veya iç içe polimeraz zincir reaksiyonu (allel spesifik PZR), spesifik

olmayan bağlanmayı azaltarak istenmeyen ürünlerin oluşmasını engelleyen bir

polimeraz zincir reaksiyonu modifikasyonudur. İki faklı primer seti gereklidir. İlk

39

primer seti ile mutasyonu içeren bölge çoğaltılır. İlk aşamadan sonra jelde 521 bazlık

DNA parçaları görülür. İlk aşama sonunda mutant ve yabani tipteki JAK2 geni ayırt

edilememektedir. PZR işlemi 2. aşamasında mutasyon bölgesine özgü farklı primer seti

kullanılır. Bu şekilde sadece istenilen bölgenin çoğaltılması sağlanarak spesifik bantlar

elde edilir.

İki aşamalı allel spesifik nested PZR’de uygulanan protokol şu şekildedir:

1. Sigma PZR karışımı, primerler ve kalıp DNA -20oC’ de saklandı.

Çalışma sırasında tüm bileşenler buz içerisinde tutuldu.

2. Allel spesifik nested PZR 1. aşamasında Tablo 3-7’de belirtilen

miktarlarla homojen bir karışım hazırlanıp DNaz/RNaz içermeyen PZR

tüplerine 18’er μl dağıtıldı.

Ortak karışımda bulunanlar: steril su, Sigma PZR karışımı ve

primerlerdir.

Tablo 3-7: Allel Spesifik Nested PZR 1. Aşama bileşenleri

Bileşen Miktar

Sigma PZR Mix 10 μl

Primer 1 (Forward) 1 μl

Primer 2 (Reverse) 1 μl

Kalıp DNA 2 μl

H2O 20 μl’ye tamamalandı

3. Allel spesifik nested PZR’nin 1. aşamasında P1 ve P2 primerleri, ikinci

aşamasında ise P3, P4, P5 ve P6 primerleri kullanıldı (Tablo 3-8).

Tablo 3-8: İki aşamalı PZR için tasarlanan primer setleri

40

Primer Dizisi Ürün

1.

AŞAMA

PRİMER

SETİ

P1

(Forvard)

5’-GATCTCCATATTCCAGGCTTACACA-3’

453

bç P2

(Reverse)

5’-TATTGTTTGGGCATTGTAACCTTCT-3’

2.

AŞAMA

PRİMER

SETİ

Mutant

Spesifik

Primerler

P3

(Forvard)

5’-CCTCAGAACGTTGATGGCA-3’

279

bç P4

(Reverse)

5’-ATTGCTTTCCTTTTTCACAAGA-3’

Yabani

Tip

Spesifik

Primerler

P5

(Forvard)

5’-

AGCATTTGGTTTTAAATTATGGAGTATATG-

3’

229

P6

(Reverse)

5’-GTTTTACTTACTCTCGTCTCCACAAAA-3’

4. 2 μl kalıp DNA, negatif kontrol tüpü haricindeki tüm tüplere dağıtıldı.

Negatif kontrol tüpüne de DNA yerine 2 μl steril su eklendi.

5. Allel spesifik nested PZR’nin 1. Aşaması için reaksiyon uygun

programda başlatıldı. (Tablo 3-9).

Tablo 3-9: İki aşamalı PZR’nin 1. aşama koşulları

94oC 1 dakika

95 oC 30 saniye

60 oC 30 saniye 35 Döngü

41

72 oC 30 saniye

72 oC 2 dakika

6. PZR’nin 1. aşamasından sonra elde edilen ürün, 1:40 oranında

seyreltilerek PZR’nin 2. aşamasında kullanıldı.

7. Tablo 3-10’da belirtilen miktarlarda olmak üzere yine DNA haricinde bir

karışım hazırlandı ve 18’er μl steril tüplere dağıtıldı ve seyreltilen

DNA’lardan 2’şer μl karışıma dağıtıldı. Negatif kontrol tüplerine 2 μl

steril su eklendi.

Tablo 3-10: Allel Spesifik Nested PZR 2. aşama bileşenleri

Bileşen Miktar (20 μl)

Sigma PZR Mix 10 μl

Primer 3 (Forward) 0,8 μl

Primer 4 (Reverse) 0,8 μl

Primer 5 (Forward) 0,8 μl

Primer 6 (Reverse) 0,8 μl

Kalıp DNA

(1. aşama PZR ürünü 1:40 seyreltik)

2 μl

H2O 20 μl’ye tamamlandı

8. 2. aşama uygun koşullarda gerçekleştirildi (Tablo 3-11).

Tablo 3-11: Allel spesifik Nested PZR’nin 2. aşama koşulları

42

94 oC 1 dakika

95 oC 30 saniye

59 oC 25 saniye 35 Döngü

72 oC 25 saniye

72 oC 2 dakika

3.2.7. Agaroz Jelde Görüntüleme

Reaksiyon sonrasında örnekler agaroz jelde yürütüldü ve görüntüleri alındı. Jele

yüklenen örneğin mutant alleli (JAK2V617F) taşıması durumunda 279 bç uzunluğunda

bant görülür, yabanil tip allel taşıması durumunda ise 229 bç uzunluğunda bant görülür.

3.2.7.1. Agaroz Jelin Hazırlanması

1 gram agaroz, 50 mL 1X TAE tamponuna eklenerek %2’ lik jel hazırlandı.

Agarozun TAE içerisinde tam olarak çözünebilmesi için karışım mikrodalga fırında

ısıtıldı. Tam olarak çözündükten sonra şişeye 2,5 μl etidyum bromür ilave edilerek

karıştırıldı. Karışım tarakların bulunduğu jel kasedine döküldü ve donup jel haline

gelmesi için bekletildi.

3.2.7.2. Jele Yükleme Ve Görüntüleme

Agaroz jel, kasette donduktan sonra taraklar çıkartıldı. Kasedin içindeki donmuş

jel yürütme tankına yerleştirildi ve kasede yürütme tamponu olan 1X TAE eklendi.

Nested pzr ürünlerinden 2’şer μl alındı ve jel yükleme tamponundan 6,5’er μl

eklendikten sonra jelde oluşan kuyulara yüklendi. Marker da yüklendikten sonra 45

dakika 65 voltta yürütüldü ve ardından görüntü U.V. ışık altında elde edildi.

3.2.8. RNA İzolasyonu

Sağlıklı kontrollerden ve MPN hastalarından alınan perifer kan örneklerinden

izole edilen MNC’lerden, CD34+ ve CD34- hücrelerden RNA izolasyonu yapılması

amacıyla ‘Jena Bioscience - Total RNA Purification Kit’ kullanıldı. Prosedür şu

şekildedir:

43

A. Örnek Hazırlama ve Hücre Lizizi

1. Hücre pelletine 500 μl Liziz Tamponu (2-Merkaptoetanol (ME)

eklenmiş) eklendi.

2. 10 saniye vorteklenerek ile örnek liziz edildi.

B. Kolon Aktivasyonu

1. Kolonlar 2 mL’lik toplama tüplerine yerleştirildiler.

2. Kolon içine 100 μl ‘Activation Buffer’ eklendi.

3. 10 000 g’de 30 saniye santrifüj edildi.

4. Altta toplanan sıvı atıldı.

5. Hemen sonraki adıma geçildi.

C. Kolona Örnek Yüklenmesi

1. Hazırlanan lizata 300 μl İzopropanol eklendi ve vortekslendi.

2. Karışım direkt olarak kolon içine aktarıldı.

3. 10 000 g’de 30 saniye santrüfüj edildi.

4. Alltaki sıvı atıldı.

D. Birinci Kolon Yıkaması

1. Kolona 700 μl ‘Primary Washing Buffer (ethanol eklenmiş)’

uygulandı.

2. 10 000 g’de 30 saniye santrifüj edildi.

3. Alttaki sıvı atıldı.

E. İkinci Kolon Yıkaması

1. Kolon içine 700 μl ‘Secondary Washing Buffer (ethanol eklenmiş)’

uygulandı.

2. 10 000 g’de 30 saniye santrifüj edildi.

3. Alttaki sıvı atıldı.

4. Kolon, etabolü uzaklaştırmak için, 10 000g’de 2 dakika yeniden

santrifüj edildi.

44

F. RNA’nın Elde Edilmesi

1. Kolon, Dnaz/Rnaz içermeyen bir mikrosantrifüj tüpüne yerleştirildi.

2. Kolon membranının merkezine 40 μl ‘Elution Buffer’ eklendi.

3. Oda sıcaklığında 1 dakika bekletildi.

4. RNA’yı elde etmek için 10 000 g’de 1 dakika santrifüj edildi.

5. Elde edilen RNA -20 ya da -80°C’de saklandı.

3.2.9. Ters Transkriptaz Polimeraz Zincir Reaksiyonu

Sağlıklı ve hasta MNC’lerinden ve CD34+ ve CD34- kök hücrelerinden izole

edilen RNA örneklerinden komplementer DNA (cDNA) elde edildi. cDNA elde etmek

amacıyla “Script cDNA Sentez Kiti (Jena Bioscience)” kullanılarak cDNA sentezi

yapıldı ve şu protokol izlendi:

1. DNaz/RNaz içermeyen steril PZR tüplerine Tablo 3-12’de belirtilen

maddeler, belirtilen miktarlarda eklenerek RNA/primer karışımı

hazırlandı. Tüm aşamalar buz üzerinde gerçekleştirildi.

2. Karışım, 70oC’ de 5 dakika inkübe edildikten sonra hemen buza alındı.

3. İnkübasyon esnasında, Tablo 3-13’de belirtilen bileşenler ile örnek

sayısına göre bir reaksiyon karışımı hazırlandı.

4. İnkübasyonun ardından primer/kalıp RNA karışımına, esnasında Tablo

3-13’e göre hazırlanmış olan reaksiyon karışımından 10’ar μl eklendi.

Toplamda 20 μl’lik bir karışım elde edildi.

Tablo 3-12: Kalıp RNA/Primer Karışımı

Bileşen Bileşenin Stok

Konsantrasyonu

Reaksiyon

Konsantrasyonu

Miktar

(10 μl)

H2O 10 μl’ye

tamamlanır.

Primer: Oligo- - 50 pmol (300ng) 0,5 μl

45

dT15-25 Random

Hexamer

50 pmol (100ng) 0,5 μl

Kalıp RNA - 55 ng X μl

Tablo 3-13: Reaksiyon Karışımı

Bileşen Bileşenin Stok

Konsantrasyonu

Reaksiyon

Konsantrasyonu

Miktar

(10 μl)

H2O 10 μl’ye

tamamlanır.

SCRIPT-RT

Tampon

Solüsyonu

5X 1X 4 μl

dNTP Karışımı Her biri için 10 mM Her biri için 500

μM

1 μl

DTT Solüsyonu 100 mM 5 mM 1 μl

RNaz inhibitörü 40 ünite/μl 40 ünite 1 μl

SCRIPT Ters

Transkriptaz

200 ünite/μl 100 ünite 0,5 μl

5. Bileşenleri belirtilen miktarlarda içeren PZR tüpleri, PZR cihazına

yerleştirildi ve Tablo 3-14’te belirtilen koşullarda reaksiyon uygulandı.

Tablo 3-14: cDNA Sentez Koşulları

+42oC 10 dakika

46

+50oC 50 dakika

+70oC 10 dakika

+4oC ∞

6. cDNA, direkt sonraki aşama için kullanıldı veya -20oC’de kısa süreli

saklandı.

3.2.10. Gerçek Zamanlı Kantitatif PZR (q-PCR)

CXCR3A, CXCR3B ve CXCL9 genlerinin Polisitemia Vera prognozunda etkili

olabileceği düşünüldüğünden, bu genlerin olası ekspresyon değişimlerinin hastalıkla

ilişkisini incelemek amacıyla ekspresyon analizleri yapıldı.

Gerçek zamanlı kantitatif PZR ile karşılaştırmalı ölçümler yapıldı. Prob olarak

önce Universal Probe Library (UPL) daha sonra SYBR Green kullanıldı. UPL problar,

5' ve 3' uçlarından sırasıyla Fluorescein (FAM) ve koyu bir boya olan ‘quencher’

(TAMRA) boyası ile işaretlenirler. qPCR problarının hibridizasyonunu gerektiren

özgünlüğü ve erime sıcaklığını (Tm) korumak için, ‘Kilitli Nükleik Asitler’ (LNA) her

bir UPL probunun dizisine dahil edilirler. LNA'lar, standart DNA nükleotidlerine

kıyasla yüksek bağlanma kuvvetlerine sahip DNA nükleotid analoglarıdır. 3’ ucunda

bulunan floresan yaymayan ve baskılayıcı olan TAMRA molekülü, 5’ ucunda bulunan

ve florasan ışıma yapabilen FAM boyasının sinyal oluşturmasına engel olmaktadır. Bu

sayede prob ışıma yapamamaktadır. Taq polimeraz, primerlerin bağlanmasıyla yeni

zincir oluşmaya başladığı zaman, 5'→3' yönünde uzama işlemini yaparken, ekzonükleaz

aktivitesi ile probu keser. FAM molekülünün TAMRA molekülünden ayrılması ile

floresan ışıma gerçekleşir. Amplifikasyon ürünü çoğaldıkça her döngüde floresan ışıma

miktarı da artarak devam eder. SYBR Green, DNA molekülleri arasına eklenerek çift

iplikçikli DNA moleküllerine bağlanan, yaygın olarak kullanılan bir floresan boyadır.

Kantitatif PZR'de kullanılır çünkü floresan ölçümü, DNA’nın ne kadar çoğaldığını

kısmi veya kesin olarak belirlemek için her amplifikasyon döngüsünün sonunda

yapılabilir.

47

Kantitatif PZR’de ekspresyon analizi amacıyla CD34+, CD34- ve mononükleer

hücrelerden elde edilen cDNA’lar kullanıldı. Ekspresyon analizleri, CXCR3A,

CXCR3B ve CXCL9 genlerinden her birine özgü tasarlanmış primerler,

UniversalProbeLibrary (UPL) problar (PZR karışımı olarak ‘Roche Light Cycler® 480

Probes Master (2x conc.)’ ve ayrıca SYBR Green kullanılarak yapılmıştır.

Elde edilen bulgular SYBR ile yapılan deneylerden elde edilmiştir.

qPCR uygulamasında izlenen adımlar şu şekildedir:

PZR için gerekli içeren bir reaksiyon karışımı, örnek miktarının %10’u

kadar fazla olacak şekilde hazırlandı (Tablo 3-15).

Ortak karışımda; prob (UPL veya SYBR Green), Roche Light Cycler®

480 Probes Master (UPL Prob için), primerler ve steril su kullanıldı.

Bileşenlerin konsantrasyonu Tablo 3-16’te gösterilmektedir.

Tablo 3-15: Gen ekspresyon analizleri için PZR bileşenleri

Bileşenler UPL SYBR

Roche Light Cycler® 480 Probes Master

Forward Primer 8 μl 7 μl

Reverse Primer Probes Master var Probes Master yok

Probe (UPL veya SYBR Green)

Su

cDNA 2 μl 3 μl

Tablo 3-16: Kantitatif gerçek zamanlı PZR Reaksiyon Bileşenleri

İçerik Konsantrasyon

(UPL)

Konsantrasyon

(SYBR)

Miktar

(UPL)

Miktar

(SYBR)

Son

Konsantrasyon

Son

Konsantrasyon

48

(UPL) (SYBR)

Roche

Light

Cycler®

480

Probes

Master

2X

-

5 μl

-

1X

-

Forward

Primer

100 μM 10 μM 0,8 μl 0,4 μl 200 nM 400 nM

Reverse

Primer

100 μM 10 μM 0,8 μl 0,4 μl 200 nM 400 nM

Prob

(UPL

veya

SYBR)

20 U 2X 0,2 μl 5 μl 0,04 U 1X

dH₂O - - 1,2 μl 1,2 μl - -

Toplam

Miktar

- - 8 μl 7 μl - -

Ekspresyon analizi için CXCR3A, CXCR3B ve CXCL9 genlerinin yanında

referans gen olarak GAPDH kullanıldı.

CXCR3A geni için, ENST00000373693.3 kodlu transkript varyantı kullanıldı.

Varyantın boyu 1624 bp olup 368 amino asitlik bir proteini kodlamaktadır. CXCR3A

gen dizisi referans alınarak sipariş edilen primerler kullanıldı. CXCR3A için sadece

SYBR Green probu kullanılarak ekspresyon sonuçları elde edildi.

CXCR3B geni için, ENST00000373691.4 kodlu transkript varyantı kullanıldı.

Varyantın boyu 1861 bp olup 415 amino asitlik bir proteini kodlamaktadır. Amplikon

boyutu 111 nükleotittir. CXCR3B gen dizisi referans alınarak sipariş edilen primerler

49

kullanıldı. SYBR Green ve 27 numaralı UPL prob kullanılarak ekspresyon sonuçları

elde edildi.

CXCL9 geni için, ENST00000264888.5 kodlu transkript varyantı kullanıldı.

Varyantın boyu 2740 bp olup 125 amino asitlik bir proteini kodlamaktadır. Amplikon

boyutu 73 nükleotittir. CXCL9 gen dizisi referans alınarak sipariş edilen primerler

kullanıldı. SYBR Green ve 4 numaralı UPL prob kullanılarak ekspresyon sonuçları elde

edildi.

GAPDH geni için, ENST00000229239.9 kodlu transkript varyantı kullanıldı.

Varyantın boyu 1875 bp olup 335 amino asitlik bir proteini kodlamaktadır. Amplikon

boyutu 66 nükleotittir. CXCL9 gen dizisi referans alınarak sipariş edilen primerler

kullanıldı. SYBR Green ve 60 numaralı UPL prob kullanılarak ekspresyon sonuçları

elde edildi.

CXCR3A, CXCR3B, CXCL9 ve GAPDH primer dizileri Tablo 3-17’ te

gösterilmektedir.

Tablo 3-17: CXCR3A, CXCR3B, CXCL9 ve GAPDH Primer Dizileri

Primerler Primer Dizileri

CXCR3A İleri Primer 5’ ACCCAGCAGCCAGAGCACC 3’

CXCR3A Geri Primer 5’ TCATAGGAAGAGCTGAAGTTCTCCA 3’

CXCR3B İleri Primer 5’ CAACCACAAGCACCAAAGC 3’

CXCR3B Geri Primer 5’ TCTTCTGCGTGATCCCATC 3’

CXCL9 İleri Primer 5’ CCTTAAACAATTTGCCCCAAG 3’

CXCL9 Geri Primer 5’ TTGAACTCCATTCTTCAGTGTAGC 3’

GAPDH İleri Primer 5’ AGCCACATCGCTCAGACAC 3’

GAPDH Geri Primer 5’ GCCCAATACGACCAAATCC 3’

50

3.2.11. Akım Sitometri Cihazında Antikor Hücre Yüzey Analizi

Sağlıklı kontrollerden ve hastalardan elde edilen MNC, CD34+ ve CD34- hücre

gruplarının yüzeylerinde CXCR3 reseptörünün durumu incelendi. İşlem için her bir

tüpte 50 000 - 100 000 hücre kullanıldı. Hücreler pellet haline getirildikten sonraki

adımlar şu şekildedir;

1. Pelletlere 500’er μl MACS eklendi ve santrifüj edilerek hücreler yıkandı.

Santrifüj işlemi 1800 rpm’de 5 dakika uygulandı.

2. Üst sıvı döküldü yeniden 500’er μl MACS ile sulandırılma işlemi

yapıldı.

3. Her bir hücre örneği için CXCR3 boyası içermeyen bir ‘boyasız’ tüp elde

edildi. Her bir boyasız hücre tipi için birer tane de CXCR3 boyalı tüp

hazırlandı.

4. Hücrelere CXCR3 boyası eklendikten sonra buzda ve karanlıkta olacak

şekilde 20 dakika bekletildi.

5. Ardından tüplere 500’er μl daha MACS eklenerek 1800 rpm’de 5 dakika

santrifüj edildi.

6. Üst sıvı atıldıktan sonra PI tamponundan 500’er μl eklendikten sonra

akım sitometri cihazında okutma işlemi gerçekleştirildi.

7. Cihazda ana hücre grubu belirlendikten sonra PI ile canlı-ölü hücrelerin

ayrımı sağlandı. Canlı hücrelerin bulunduğu bölge seçildikten sonra

CXCR3 pozitifliği için sonuçlar elde edildi.

3.2.12. CD34+ ve CD34+Lin- Hücrelere GM-CSF Uygulaması

Literatür taramalarında GM-CSF’in (Granülosit-Makrofaj Koloni Stimulasyon

Faktörü) CD34+ hücrelerde CXCR3 ekspresyonunu arttırdığı bilinmektedir (167). PV

hastalarında elde edilen CD34+ ve CD34+Lin- hücreler 2 gün boyunca GM-CSF ile

muamele edilmiştir. Uygulanan GM-CSF konsantrasyonu 10 ng/ml’dir. Besi yeri olarak

IMDM-%20 FBS kullanılmıştır. 6-kutulu tabağın her bir kuyusuna 3 mL besiyeri içinde

100.000-150.000 hücre eklenecek şekilde uygulandı. 2 gün sonunda toplanan

hücrelerden sırasıyla RNA izolasyonu, cDNA sentezi ve kantitatif PZR işlemleri

uygulandı. Bu işlem ayrıca hasta MNC ve kordon kanı hücreleri için uygulandı.

51

3.2.13. Ekspresyon Verilerinin İstatiksel Analizi

Ekspresyon analizi amacıyla uygulanan qPCR’de her bir örnek için triplike

çalışma gerçekleştirildi. PZR verimi 2 olarak belirlendi.

CXCR3A, CXCR3B ve CXCL9 gen ekspresyon düzeyleri GAPDH referans geni

kullanılarak araştırıldı. 2-ΔΔCt= 2-(CtHasta–CtReferans)-(CtSağlıklı-CtReferans) yöntemi ile hesaplandı

(168). Grafikleri oluşturma ve istatiksel analizler için GraphPad Prism 5.0 yazılımı

kullanıldı. Sağlıklı ve hasta örneklerin karşılaştırmalı mRNA düzeylerini incelemek için

Mann-Whitney U testi uydulandı. Mann-Whitney U testi, aynı popülasyondan gelen iki

örneği karşılaştırmak için kullanılan ve iki örneğin eşit olup olmadığını test etmek için

kullanılan, parametrik olmayan bir testtir.

Standart sapma (SD) değeri hesaplanırken “Mean ± SEM” yöntemi kıllanıldı.

Grafiklerde standart sapmanın ortalamaya yakın olması, ortalamadan sapma riskinin

düşük olduğu anlamına gelmektedir.

52

4. BULGULAR

4.1. DNA İzolasyon Sonuçları

Bu çalışmada toplam 31 hasta ve 10 kontrol kullanılmış ve bunların önce perifer

kan hücrelerinden mononükleer hücreler izole edilmiştir. Sonra kanser kök hücre

izolasyonları yapılmıştır. Sonra da GM-CSF uyarımı yapılmıştır. Hasta kanlarından elde

edilen MNC’lerden DNA izolasyonu yapılmıştır. NanoDrop ile yapılan DNA ölçümleri

Tablo 4-1’de göserilmiştir. Örneklerin ng/μl, 260/280 ve 260/230 değerleri tabloda

belirtilmiştir.

Tablo 4-1: Mononükleer Hücrelerden İzole Edilen DNA örneklerinin ölçüm değerleri

Örnek ng/μl 260/280 260/230

H8 77,8 1,88 0,60

H10 51,0 1,93 1,15

H11 31,8 1,82 0,88

H15 31,0 2,13 0,51

H17 122,7 1,87 1,88

H22 100,4 1,88 1,72

H23 311,9 1,87 1,31

H24 49,6 1,87 1,42

H25 252,6 1,86 2,05

H26 196,6 1,89 1,82

H28 104,3 1,83 0,32

H29 42,1 1,68 0,07

53

H34 299,4 1,84 1,03

H35 82,4 1,98 0,42

H36 203,4 1,88 0,85

H37 317,8 1,85 1,73

H38 111,8 1,86 1,03

H39 31,0 1,71 0,07

H54 70,3 1,63 0,40

H56 136,7 1,85 1,43

H57 78,4 1,87 0,43

4.2. RNA İzolasyon Sonuçları

Sağlıklı kontrol kanlarından ve hasta kanlarından izole edilen MNC’lerden RNA

izolasyonu yapıldı. NanoDrop ile yapılan RNA ölçümleri Tablo 4-2’de göserilmiştir.

Örneklerin ng/μl, 260/280 ve 260/230 değerleri tabloda belirtilmiştir.

Tablo 4-2: Mononükleer Hücrelerden İzole Edilen DNA örneklerinin ölçüm değerleri

Örnek (H: Hasta, K: Sağlıklı kontrol) ng/μl 260/280 260/230

H8 184,7 2,05 0,92

H9 36,7 2,32 0,06

H10 13,6 2,24 0,02

H11 49,4 2,20 0,07

H12 67,5 2,18 0,14

54

H13 40,5 1,99 0,07

H14 35,7 2,02 0,35

H15 43,8 2,14 0,08

H16 22,2 2,16 0,04

H17 27,4 2,11 0,06

H18 36,8 2,02 0,14

H19 48,9 2,00 0,07

H20 63,8 2,00 0,70

H21 49,7 2,03 0,31

H22 213,1 1,92 0,86

H23 14,7 2,00 0,08

H24 127,8 2,00 0,20

H25 57,9 2,00 0,18

H26 39,0 2,08 0,11

H28 48,5 2,05 0,22

H29 96,6 2,08 0,23

H34 17,0 2,17 0,04

H35 27,5 2,01 0,25

H36 113,6 2,08 0,25

H37 57,3 2,10 0,10

55

H38 73,8 1,97 0,49

H39 56,8 2,25 0,09

H43 73,6 2,03 1,26

H46 68,1 2,06 0,88

H54 44,8 1,76 0,30

H56 35,5 2,11 0,25

H57 40,0 2,18 0,09

K1 98,8 1,90 0,21

K2 520,4 2,08 0,59

K3 92,0 2,07 0,14

K4 163,6 2,09 0,32

K5 274,8 2,06 1,08

K6 103,9 1,95 0,23

K7 93,5 2,02 0,45

K8 78,8 2,06 0,19

K9 82,5 2,01 0,57

K10 198,9 2,03 0,32

4.3. İki Aşamalı Nested PZR Sonuçları

Hastaların mutasyon durumlarının tespit edilmesi için yapılan iki aşamalı allel

spesifik PZR sonuçları Tablo 4-3’te verilmiştir. Jel elektroforezi (Şekil 4-1) 229 ve 279

bç'lik Nested PZR ürün boyutunu göstermektedir. Çalışmada kullanılan hasta

56

örneklerinden 17 tanesinin JAK2V617F, 14 tanesinin ise yabanil tip olduğu tespit

edilmiştir (Tablo 4-3).

Tablo 4-3: Hastaların Mutasyon Durumları

Hasta Numarası Mutasyon Durumu (JAK2)

H8 JAK2V617F Heterozigot allel

H9 Yabani Tip

H10 Yabani Tip

H11 JAK2V617F Heterozigot allel

H12 JAK2V617F Heterozigot allel

H13 JAK2V617F Heterozigot allel

H14 Yabani Tip

H15 JAK2V617F Heterozigot allel

H16 Yabani Tip

H17 Yabani Tip

H18 Yabani Tip

H19 JAK2V617F Heterozigot allel

H20 Yabani Tip

H21 JAK2V617F Heterozigot allel

H22 Yabani Tip

H23 JAK2V617F Heterozigot allel

H24 Yabani Tip

57

H25 Yabani Tip

H26 JAK2V617F Heterozigot allel

H28 JAK2V617F Heterozigot allel

H29 JAK2V617F Heterozigot allel

H34 Yabani Tip

H35 JAK2V617F Heterozigot allel

H36 Yabani Tip

H37 Yabani Tip

H38 JAK2V617F Heterozigot allel

H39 JAK2V617F Heterozigot allel

H43 JAK2V617F Heterozigot allel

H46 JAK2V617F Heterozigot allel

H54 JAK2V617F Heterozigot allel

H56 Yabani Tip

H57 -

58

Şekil 4-1: Alel Spesifik PZR Jel Görüntüsü

Bu deneyde pozitif mutant kontrol (JAK2V617F mutant) olarak H15 MNC’den, JAK2

pozitif yabanil tip kontrol olarak K562 hücre hattından elde edilen DNA örnekleri

kullanıldı. 279 bç’lik bandın varlığı mutasyon varlığını göstermektedir. 229 bç’lik

fragman yabanil tipi ifade etmektedir. H48, H49 ve H54 MNC’lerde 279 bç’lik parça

olduğunda bu hastaların JAK2V617F açısında mutant oldukları tespit edilmiştir. H52 ve

H53 MNC’lerde yabanil tip JAK2 alleline sahip bireylerdir. Kısaltmalar: MNC:

mononükleer hücre; H: hasta; bç: baz çifti

4.4. Gen İfadesi Sonuçları

Yapılan gen ifadesi çalışmaları öncelikle hasta ve kontrol toplam mononükleer

hücrelerinde gerçekleştirilmiştir. Literatürde belirtildiği üzere CXCR3’ün toplam MNC

ve izole edilmiş lenfosit gruplarının ekspresyonları arasında rölatif bir fark

olmadığından (169) lenfosit izolasyonu yapılmayıp CXCR3 ifadesi toplam MNC’de

tespit edilmiştir.

Yapılan CXCR3 gen ifade analizlerinde mononükleer hücrelerden elde edilen

RNA’lar kullanılarak CXCR3B geni için: 27 hasta, 10 kontrol (Şekil 4-2); CXCR3A geni

için: 10 hasta, 10 kontrol (Şekil 4-3) ve CXCL9 geni için ise 26 hasta 9 kontrol (Şekil 4-

4) kullanılarak mononükleer hücrelerle gerçekleştirilmiştir. Sonuçlar istatistiksel

anlamlılık bakımından P değerleriyle birlikte gösterilmiştir. Grafiklerde standart

sapmanın ortalamaya yakın olması, ortalamadan sapma riskinin düşük olduğu anlamına

gelmektedir.

Ardından kanser kök hücrelerinde CXCR3 ve CXCL9 gen ifadesi çalışmaları

gerçekleştirilmiştir. Toplam 4 hastadan elde edilen CD34+ ve CD34+/Lin- gruplarına ait

hücreler kullanılmıştır. Bu çalışmada CXCL9 ve CXCR3 anlatım seviyesi tespit

edilememiştir.

59

Şekil 4-2: CXCR3B gen ifadesi sonucu.

Hasta ve kontrol sütunları için “ortalama ± standart sapma” değerleri sırasıyla "8.366 ± 0.5493

N=27" ve "9.067 ± 0.8859 N=10" şeklindedir. P=0,51’dir.

Şekil 4-3: CXCR3A gen ifadesi sonucu.

Hasta ve kontrol sütunları için “ortalama ± standart sapma” değerleri sırasıyla "7.029 ± 0.4493

N=10" ve "5.088 ± 0.7116 N=10" şeklindedir. P =0,03’tür.

60

CXCR3B ve CXCL9 gen ifadelerinin hasta ve sağlıklı kontroller arasında

istatistiksel olarak anlamlı bir farklılık göstermediği belirlenmiştir (Şekil 4-2 ve Şekil 4-

4).

CXCR3A gen ekspresyonunun ise istatistiksel olarak anlamlı bir şekilde hasta

bireylerde daha yüksek olduğu tespit edişmiştir (p = 0,03).

Şekil 4-4: CXCR9 gen ifadesi sonucu.

Hasta ve kontrol sütunları için “ortalama ± standart sapma” değerleri sırasıyla "10.42 ± 0.5302

N=26" ve "10.46 ± 0.3799 N=9" şeklindedir. P=0,96’dır.

4.5. Hücre Yüzey CXCR3 Reseptör Anlatımı

CXCR3 reseptörünün hücre yüzeyindeki durumu akım ölçer cihazıyla elde

edilen verilerin analizi ile tespit edilmiştir.

Örneklem olarak, 22 ve 24 numaralı hasta MNC hücreleri için elde edilen

sonuçlar Şekil 4-5’te gösterilmiştir. Öncelikle ana hücre popülasyonunun yer aldığı

61

canlı hücre grubunun bulunduğu bölge seçilmiştir (R1). Ardından propidium iodür (PI)

ile boyanmamış olan hücrelerin popülasyonunu oluşturan bölge seçilmiştir (R2). Son

olarak seçilen bu hücrelerin CXCR3 antikoruyla boyanıp boyanmamasına göre CXCR3

reseptör pozitif/negatif oranları elde edilmiştir. Şekil 4-5’te örnek olarak gösterilmiş

H22 CXCR3 reseptörü için %39,71; H24 ise %18,12 oranlarında pozitif tespit

edilmiştir.

Karşılaştırmak amacıyla dördü JAK2 mutant ve dördü JAK2 yabanil tipte 8 adet

hasta ve 10 adet sağlıklı kontrol kullanılarak akımölçer analizleri tamamlanmıştır. JAK2

mutant olup olmaması fark etmeksizin hastalarda sağlıklı kontrollere göre hücre yüzey

CXCR3 varlığında azalma tespit edilmiştir. Verilerin istatistiksel analizi Şekil 4-6’da

gösterilmiştir.

Şekil 4-5: 22 ve 24 numaları hastaların akımölçer sonuçları.

62

Şekil 4-6: Akımölçer verilerinin istatistiksel analizi.

Hasta ve kontrol sütunları için “ortalama ± standart sapma” değerleri sırasıyla "19.33 ± 5.394

N=8" ve "36.78 ± 3.351 N=10" şeklindedir. P=0,01’dir.

4.5.1. CD34+ ve CD34+Lin- Hücrelere GM-CSF Uygulaması Sonuçları

Amaç CD34+ hücrelerde normal şartlarda var olmayan CXCR3 gen ifadesinin

PV hastalarında GM-CSF uygulaması ile artıp artmadığını incelemekti. Perifer kandan

elde edilen MNC’lerden CD34+ ve CD34+Lin- hücre popülasyonları GM-CSF ile

muamele edildikten sonra RNA izolasyonları ve kantitatif PZR işlemi gerçekleştirildi.

Bu deneyler 4 hastada ve sağlıklı kontrol olarak kordon kanı kullanılarak

gerçekleştirildi. Yapılan çalışmalarda CD34+ ve CD34+Lin- kök hücre

popülasyonlarında CXCR3 anlatımı tespit edilememiştir. GM-CSF uygulamasının da bu

anlatımı değiştirmediği görülmüştür.

Tüm bu çalışmalara ek olarak kullanılmış olan hücre izolasyon ve dondurma

tekniklerinin bir artefaktı sonucu CXCR3 gen anlatımında bir farklılık olabileceği test

edilmiştir. Bu çalışma için yeni izole edilmiş ve dondurulmuş hücrelerle yapılan deney

63

sonuçları karşılaştırılmış ve taze veya dondurulmuş hücrelerden elde edilen CXCR3 ve

CXCL9 gen anlatım sonuçları arasında herhangi bir fark tespit edilmemiştir.

Ayrıca, kantitatif PZR deneyleri iki tip prob ile ayrı reaksiyonlar halinde

gerçekleştirilmiştir. İlk deneyler UPL problar kullanılarak gerçekleştirilmiştir. UPL

probla yapılan deneylerde hiçbir hücre tipi için (MNC, CX34+/-) Ct değeri elde

edilememiştir. SYBR Green ile uygulanan deneylerde ise hasta ve sağlıklı MNC’ler için

Ct değeri elde edilebilmiş ve gen ekspresyon analizleri gerçekleştirilmiştir. Çift

iplikçikli DNA'nın arasına eklenen SYBR Green I gibi boyalar, daha kullanışlıdır. Her

bir hedef için sentezlenmesi gereken spesifik probların (UPL prob) aksine, tespit

araçları olarak boyaların (SYBR Green) kullanımı ve gen ifadesi tespiti daha kolaydır.

64

5. TARTIŞMA

Lenfosit trafiğinin temel itici gücü olan kemokinler, lenfosit yüzeylerinde

bulunan spesifik reseptörler aracılığıyla sinyallerini iletirler (170). MPN hastalarında,

sağlıklı bireylere kıyasla, çeşitli sitokin ve kemokinlerin plazma seviyelerinde yükselme

saptanmıştır. Bu bulgu, inflamatuar bir sürecin MPN'nin fizyopatolojisine dahil

olabileceğini, kemokinlerin rol oynayabileceğini ve hatta hematopoietik nişi

etkileyebileceğini göstermektedir. Çalışmamızda, hasta ve sağlıklı kontrol

örneklerinden elde edilen periferal kan mononükleer hücrelerde (PBMC) CXCR3A gen

ifadesi kıyaslandığında istatistiksel olarak anlamlı bir artış tespit edilmiştir (p=0,03).

Bunun yanında CXCR3B izoformu ve CXCL9 için gen ifadelerinde hasta ve sağlıklılar

arasında anlamlı bir farkın mevcut olmadığı sonucu elde edilmiştir (p değerleri sorasıyla

0,96 ve 0,51).

Mevcut literatüre göre, CXCR3A hücre proliferasyonu ve kemotaksiden

sorumluyken CXCR3B’nin büyümeyi inhibe ettiği gösterilmiştir (171-173). Ortamı

tümör büyümesi lehine korumak için, CXCR3A ve CXCR3B'nin ifadesi PBMC ve

tümör hücrelerinde farklı şekillerde düzenlenmektedir (174).

CXCR3A ekspresyonunun hastalarda artması ve CXCR3B ekspresyonunun

değişmemesi PV’de kemokin aracılı göç sinyalinin hatalı olmasına, PV-PBMC'nin aşırı

derecede artmış kemotaksisine neden olabilir. CXCR3A varyantının, tümör bölgesine

sitotoksik T hücresi/Doğal öldürücü hücreler (NK)/Doğal öldürücü T hücrelerinin daha

fazla migrasyonunu sağlamak için kemokinler ile daha fazla etkileşerek uyarılmak üzere

ekspresyon artışı gösterdiği kanıtlanmıştır (175).

CXCR3 ekspresyon profilindeki değişiklikler, kanser gelişiminin başlangıç

aşamaları veya metastatik hastalığa ilerlemesi ile ilişkili olabilir. CXCR3A, prostat,

yumurtalık, meme ve böbrek kanserinde tümör ilerlemesiyle ilişkilendirilmiştir

(140,151,176). Ayrıca, CXCL9, CXCL10 ve CXCL11'in, seçici olarak CXCR3A'yı

eksprese eden insan mast hücre hattı (HMC) üzerinde proliferasyonu uyardığı

gösterilmiştir (177,178).

PV’de inflamasyon sıklıkla görülen bir komplikasyondur. Kemokinlerin ve

reseptörlerinin tümör mikroçevresindeki malin transformasyondaki rolü hala

65

tartışmalıdır. Kronik inflamasyon, proliferasyona uğrayan hücrelerde, neoplastik

transformasyona yol açan DNA hasarına neden olur (179-181). İnflamasyon, kanserde

CXCR3’ün artmış ekspresyonuna; promotör demetilasyonunu veya intron CpG

bölgelerinin demetilasyonunu uyararak neden olabilir (182-184). Bu kalıcı

inflamasyonun ve CXCL10’un sürekli salgılanmasının, yapısal CXCR3A-kemokin

(CXCL10) sinyallemesi yoluyla malign neoplastik transformasyonu destekleyen epitel

hücrelerde CXCR3A ifadesini arttırabileceği gösterilmiştir (185). Bu nedenle

çalışmamızda CXCL9’dan sonra CXCL10’un da PV’deki durumunu araştırmak yeni

kapılar açabilir.

PV’de dikkat çeken önemli semptomlardan bir diğeri kendini ciltte gösterir.

Özellikle sıcak bir duşun ardından olmak üzere hastalarda rahatsız edici düzeyde bir

kaşıntı semptomu görülmektedir. Yapılan araştırmalarda, sedef hastalığına sahip

bireylerde IL-29’un CXCR3A taşıyan immün hücrelerin sedef hastalıklı deriye

gitmesine katkıda bulunduğu kanıtlanmıştır. IL-29, insan cildindeki hedef hücreler olan

keratinositlerde ve melanositlerde CXCR3A’nın ligandları CXCL9, CXCL10 ve

CXCL11'in ekspresyonunu uyarmaktadır. CXCL9 uyarımı oldukça zayıfken, CXCL10

indüksiyonu biraz daha kuvvetlidir, IL-29 ile muamele edilmiş keratinositlerde

CXCL11'in ekspresyon artışı en kuvvetli şekilde gözlenmiştir. Fare derisine enjekte

edildiğinde, IL-29’un mürin karşılığı, T-hücrelerinin lokal infıltrasyonuna, T-hücresinin

sitokin ekspresyonuna ve indüklenen iltihaplanma sonucunda deri kalınlaşmasına neden

olmuştur. Sedef hastalığına sahip bireylerin ciltlerinde CXCR3A ligand ekspresyonu,

CXCL11 kan plazma düzeylerinde anlamlı artış ile ve artmış CXCL10 seviyeleri ile

ilişkiliyken, IL-29 ile en düşük uyarımlı ligandın (CXCL9) kan konsantrasyonları

değiştirilmemiştir. Bu nedenle CXCL11’in kandaki seviyesi, IL-29 ve IFN-γ’nın lokal

aktivitesi için bir biyobelirteç olabilir (186). CXCL9’un çalışmamızda da değişmediği

sonucuyla paralel olmasıyla beraber, bu bilgiler birlikte düşünüldüğünde, çalışmamızda

CXCR3A ekspresyonunun hastalarda sağlıklı bireylere göre artmış olması ve CXCL9

ekspresyonunun değişmemiş olması CXCL11 ve CXCL10 ligandlarının ilişkili

olabileceğine ve araştırılmaları gerektiğine işaret etmektedir.

PV’de diğer bir semptom hepatomegalidir. Hepatomegali ile hepatik fibroz

arasındaki ilişki önceki çalışmalarda kanıtlanmıştır (187). CXCR3; fibroblastlar, epitel

ve endotel hücreler, düz kas hücreleri, aktive olmuş T lenfositleri ve dendritik hücreler

66

üzerinde ifade edilir. Bu hücreler ya CXCR3A’yı ya varyantı olan CXCR3B’yi ya da

her ikisinin dengeli bir kombinasyonunu ifade eder (92). CXCL4-CXCR3 yolağının

uyarılması, karaciğer fibrogenezine katkıda bulunan kemokinlerin de kaynağı olan

karaciğer hücrelerinin proliferasyonunu ve aktivasyonunu artırır (188). CXCL4

shRNA'sının, karaciğer hücrelerinde fibroz ile ilişkili proteinlerin (CXCR3, EGFR,

JAK2, STAT3 ve Collagen IV) ekspresyonunu anlamlı ölçüde azalttığı bulunmuştur

(189). Bu durum, hastalarda CXCR3A ekspresyon artışının PV hastalarında

hepatomegaliye katkı sağlıyor olabileceğini göstermektedir.

Hücre yüzey reseptör ekspresyonu sonuçlarımız ile CXCR3A ve CXCR3B

mRNA seviyesindeki ekspresyon sonuçlarımız arasında ters bir korelasyon tespit

edilmiştir. Yani CXCR3A mRNA seviyesini hastalarda artmış durumuda tespit edilmiş

ancak CXCR3 hücre yüzey reseptörünün hastalarda azalmış durumda olduğu sonucunu

elde edilmiştir. mRNA translasyon sonucu proteine çevrildiği için, genellikle mRNA ve

protein seviyeleri arasında bir tür korelasyon olduğu varsayılır. Genellikle mRNA

düzeyi ve protein seviyesi arasında tespit edilen zayıf korelasyonların nedenleri

mevcuttur ve bunlar karşılıklı olarak uyumlu olmayabilir. Bu ters korelasyonun

nedenleri arasında, henüz yeterince tanımlanamamış olan ve mRNA'yı proteine

çevirmeyle ilişkili çok sayıda, karmaşık ve çeşitli post-transkripsiyonel mekanizmaların

varlığı düşünülebilir. Ayrıca, proteinler in vivo yarı ömürlerinde büyük ölçüde farklılık

gösterebilirler. Ubikuitin-proteazom sistemi (UPS), ökaryotik hücrelerde hücre içi

proteinlerin bozulmasından sorumlu ana hücresel mekanizmadır ve proliferasyon, hücre

döngüsü kontrolü, transkripsiyonel düzenleme ve stres tepkisi dahil olmak üzere

hücresel süreçlerin düzenlenmesinde anahtar rol oynar (190). Ayrıca, hücre yüzey

reseptörleri bir şekilde kesime uğrayarak seruma karışmış olabilir. Son olarak hem

protein hem de mRNA deneylerinde teknik olarak net bir sonuç elde etme yeteneğimizi

sınırlandıran önemli zorluklar mevcutttur (191,192).

Nitekim yapılan deneylerde yaşamış olduğumuz teknik sorunlar arasında UPL

probun sonuç vermemesi gelmekteydi. UPL probun çalışmamasının sebebi primerler ile

probun birbirlerine karışmalarının kolaylığına sebep olması olabilir. Bu durum UPL

probların dezavantajlarından birisidir (193).

Çalışmamızda, CXCR3 mRNA ve protein düzeylerinde ekspresyon

seviyelerinin ters çıkmasının daha olası bir sebebi reseptör internalizasyonudur.

67

GPCR'nin internalizasyonu ve geri dönüşüm mekanizmaları hakkında elde edilen

bilgiler son zamanlarda artmıştır. İnternalizasyon bir kez gerçekleştiğinde, bir GPCR

için iki durumdan biri mümkündür; ligandın ayrılması ve fonksiyonel reseptörün

plazma membranına geri dönüşü veya bozunması gerçekleşebilir. Bir transfeksiyon

sistemiyle CXCR3'ün CXCL11 ile indüklenmiş internalizasyonunun meydana geldiği

bulunmuştur (194). PBMC’ler ile yapılan bir çalışmada CXCL11'in taze izole edilmiş

hücreler üzerindeki etkinliğinin CXCL9 ve CXCL10’a göre daha yüksek olduğu

belirgin bir şekilde tespit edilmiştir. Yani, CXCL11 CXCR3'ün internalizasyonunu

önemli bir şekilde uyarmıştır (152). Bu durum, çalışma sonuçlarımıza göre, CXCL11

ekspresyonunun PV’de artmış olabileceği şüphesini doğurmaktadır.

CXCR3B ifadesinin azalması tümör ilişkili-anjiyogenezde azalmayla ve tümöre

bağımlı immünite ile ilişkilidir. CXCR3B, anti-migrasyon ve anti-anjiyogenez

durumlarını sağladığı için her iki izoformu değil de CXCR3A'nın biyobelirteç olarak

hedeflenmesinin tercih edilebileceği ifade edilmiştir (151).

Yeni izole edilmiş kök hücrelerde CXCR3 mesajcı RNA’sının çok düşük

seviyelerde ifade edildiği önceki çalışmalarda gösterilmiştir. Ancak bu ifadenin GM-

CSF tarafından büyük ölçüde arttığı gerçek zamanlı kantitatif polimeraz zincir

reaksiyonu tekniği ile gösterilmiştir (167). Çalışmamızda GM-CSF uygulanan kök

hücrelerde CXCR3 ifadesinde değişiklik gerçekleşmemiştir. Bunun sebebinin son

tüketim tarihi geçmiş GM-CFS kullanımı olduğu düşünülmüştür.

Bu çalışma PV hastalığında CXCR3A/CXCR3B dengesinin bozulmuş olduğunu

gösteren literatürdeki ilk çalışmadır. Çalışma ayrıca bu reseptörlere özgün olarak

bağlanan kemokinlerden CXCL10 ve CXCL11’in de PV progresyonunda etkili

olabileceğine işaret etmektedir.

PV’de CXCR3A/CXCR3B dengesi, inflamasyon ve kanser progresyonu ile

ilişkili olabilir. PV’de artmış CXCR3A ifadesinin ve azalmış CXCR3B ifadesinin

altında yatan mekanizma ile kanser gelişimi ve progresyonundaki rollerini anlamak için

ilave çalışmalar gerekmektedir.

68

KAYNAKLAR

1. Vardiman JW, Thiele J, Arber DA, Brunning RD, Borowitz MJ, Porwit A, ve

ark. The 2008 revision of the World Health Organization (WHO) classification

of myeloid neoplasms and acute leukemia: rationale and important changes.

Blood 2009; 114(5): 937-951.

2. Arber DA, Orazi A, Hasserjian R, Thiele J, Borowitz MJ, Le Beau MM, ve ark.

The 2016 revision to the World Health Organization (WHO) classification of

myeloid neoplasms and acute leukemia. Blood 2016: blood-2016-2003-643544.

3. Vainchenker W, Kralovics R. Genetic basis and molecular pathophysiology of

classical myeloproliferative neoplasms. Blood 2017; 129(6): 667-679.

4. Geyer J, Orazi A. Myeloproliferative neoplasms (BCR‐ABL1 negative) and

myelodysplastic/myeloproliferative neoplasms: current diagnostic principles and

upcoming updates. International journal of laboratory hematology 2016;

38(S1): 12-19.

5. Kaplan JB, Stein BL, McMahon B, Giles FJ, Platanias LC. Evolving therapeutic

strategies for the classic Philadelphia-negative myeloproliferative neoplasms.

EBioMedicine 2016; 3: 17-25.

6. Geyer HL, Mesa RA. Therapy for myeloproliferative neoplasms: when, which

agent, and how? Blood 2014; 124(24): 3529-3537.

7. Tefferi A. Mutations galore in myeloproliferative neoplasms: would the real

Spartacus please stand up? : Nature Publishing Group; 2011.

8. Klampfl T, Gisslinger H, Harutyunyan AS, Nivarthi H, Rumi E, Milosevic JD,

ve ark. Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms. New

England Journal of Medicine 2013; 369(25): 2379-2390.

9. Nangalia J, Massie CE, Baxter EJ, Nice FL, Gundem G, Wedge DC, ve ark.

Somatic CALR mutations in myeloproliferative neoplasms with nonmutated

JAK2. New England Journal of Medicine 2013; 369(25): 2391-2405.

10. Pikman Y, Lee BH, Mercher T, McDowell E, Ebert BL, Gozo M, ve ark.

MPLW515L is a novel somatic activating mutation in myelofibrosis with

myeloid metaplasia. PLoS medicine 2006; 3(7): e270.

11. Pardanani AD, Levine RL, Lasho T, Pikman Y, Mesa RA, Wadleigh M, ve ark.

MPL515 mutations in myeloproliferative and other myeloid disorders: a study of

1182 patients. Blood 2006; 108(10): 3472-3476.

12. Emanuel RM, Dueck AC, Geyer HL, Kiladjian J-J, Slot S, Zweegman S, ve ark.

Myeloproliferative neoplasm (MPN) symptom assessment form total symptom

score: prospective international assessment of an abbreviated symptom burden

scoring system among patients with MPNs. Journal of clinical oncology 2012;

30(33): 4098.

13. Geyer HL, Scherber RM, Dueck AC, Kiladjian J-J, Xiao Z, Slot S, ve ark.

Distinct clustering of symptomatic burden among myeloproliferative neoplasm

69

patients: retrospective assessment in 1470 patients. Blood 2014; 123(24): 3803-

3810.

14. Barbui T, Thiele J, Passamonti F, Rumi E, Boveri E, Ruggeri M, ve ark.

Survival and disease progression in essential thrombocythemia are significantly

influenced by accurate morphologic diagnosis: an international study. Journal of

Clinical Oncology 2011; 29(23): 3179-3184.

15. Tefferi A, Rumi E, Finazzi G, Gisslinger H, Vannucchi A, Rodeghiero F, ve ark.

Survival and prognosis among 1545 patients with contemporary polycythemia

vera: an international study. Leukemia 2013; 27(9): 1874.

16. Gangat N, Caramazza D, Vaidya R, George G, Begna K, Schwager S, ve ark.

DIPSS-plus: A refined dynamic international prognostic scoring system (DIPSS)

for primary myelofibrosis that incorporates karyotype, platelet count and

transfusion status. Am Soc Hematology; 2010.

17. Passamonti F, Cervantes F, Vannucchi AM, Morra E, Rumi E, Pereira A, ve ark.

A dynamic prognostic model to predict survival in primary myelofibrosis: a

study by the IWG-MRT (International Working Group for Myeloproliferative

Neoplasms Research and Treatment). Blood 2010; 115(9): 1703-1708.

18. Cervantes F, Dupriez B, Pereira A, Passamonti F, Reilly JT, Morra E, ve ark.

New prognostic scoring system for primary myelofibrosis based on a study of

the International Working Group for Myelofibrosis Research and Treatment.

Blood 2009; 113(13): 2895-2901.

19. Kaifie A, Kirschner M, Wolf D, Maintz C, Hänel M, Gattermann N, ve ark.

Bleeding, thrombosis, and anticoagulation in myeloproliferative neoplasms

(MPN): analysis from the German SAL-MPN-registry. Journal of hematology &

oncology 2016; 9(1): 18.

20. Mesa R, Miller CB, Thyne M, Mangan J, Goldberger S, Fazal S, ve ark.

Myeloproliferative neoplasms (MPNs) have a significant impact on patients’

overall health and productivity: the MPN Landmark survey. BMC cancer 2016;

16(1): 167.

21. Scherber R, Dueck AC, Johansson P, Barbui T, Barosi G, Vannucchi AM, ve

ark. The Myeloproliferative Neoplasm Symptom Assessment Form (MPN-

SAF): international prospective validation and reliability trial in 402 patients.

Blood 2011: blood-2011-2001-328955.

22. Johansson P, Mesa R, Scherber R, Abelsson J, Samuelsson J, Birgegård G, ve

ark. Association between quality of life and clinical parameters in patients with

myeloproliferative neoplasms. Leukemia & lymphoma 2012; 53(3): 441-444.

23. Abelsson J, Andréasson B, Samuelsson J, Hultcrantz M, Ejerblad E, Johansson

B, ve ark. Patients with polycythemia vera have worst impairment of quality of

life among patients with newly diagnosed myeloproliferative neoplasms.

Leukemia & lymphoma 2013; 54(10): 2226-2230.

24. Mesa RA, Niblack J, Wadleigh M, Verstovsek S, Camoriano J, Barnes S, ve ark.

The burden of fatigue and quality of life in myeloproliferative disorders

(MPDs). Cancer 2007; 109(1): 68-76.

70

25. da Costa Cacemiro M, Cominal JG, Tognon R, de Souza Nunes N, Simões BP,

de Figueiredo-Pontes LL, ve ark. Philadelphia-negative myeloproliferative

neoplasms as disorders marked by cytokine modulation. Hematology,

Transfusion and Cell Therapy 2018.

26. Cruse JM. History of medicine: the metamorphosis of scientific medicine in the

ever-present past. Am J Med Sci 1999; 318(3): 171-180.

27. Sigerist HE. A History Of Medicine Volume 2. 1961.

28. FAHREUS R. The suspension-stability of the blood. Acta Med Scand. 1921; 55:

1-228.

29. Hirsch E. Generalized osteosclerosis with chronic polycythemia vera. Arch

Pathol 1935; 19: 91-97.

30. Vaughan JM, Harrison C. Leuco‐erythroblastic anæmia and myelosclerosis. The

Journal of Pathology 1939; 48(2): 339-352.

31. Rosenthal N, ERF LA. Clinical observations on osteopetrosis and myelofibrosis.

Archives of Internal Medicine 1943; 71(6): 793-813.

32. Heller EL, Lewisohn MG, Palin WE. Aleukemic myelosis: chronic nonleukemic

myelosis, agnogenic myeloid metaplasia, osteosclerosis, leuko-erythroblastic

anemia, and synonymous designations. The American journal of pathology

1947; 23(3): 327.

33. Dameshek W. Some speculations on the myeloproliferative syndromes. Blood

1951; 6(4): 372-375.

34. Tefferi A. The history of myeloproliferative disorders: before and after

Dameshek. Leukemia 2008; 22(1): 3.

35. Kralovics R, Passamonti F, Buser AS, Teo S-S, Tiedt R, Passweg JR, ve ark. A

gain-of-function mutation of JAK2 in myeloproliferative disorders. New

England Journal of Medicine 2005; 352(17): 1779-1790.

36. Spivak JL. The chronic myeloproliferative disorders: clonality and clinical

heterogeneity. Paper presented at: Seminars in hematology2004.

37. James C, Ugo V, Le Couédic J-P, Staerk J, Delhommeau F, Lacout C, ve ark. A

unique clonal JAK2 mutation leading to constitutive signalling causes

polycythaemia vera. Nature 2005; 434(7037): 1144.

38. Levine RL, Wadleigh M, Cools J, Ebert BL, Wernig G, Huntly BJ, ve ark.

Activating mutation in the tyrosine kinase JAK2 in polycythemia vera, essential

thrombocythemia, and myeloid metaplasia with myelofibrosis. Cancer cell

2005; 7(4): 387-397.

39. Baxter EJ, Scott LM, Campbell PJ, East C, Fourouclas N, Swanton S, ve ark.

Acquired mutation of the tyrosine kinase JAK2 in human myeloproliferative

disorders. The Lancet 2005; 365(9464): 1054-1061.

40. Levine RL, Loriaux M, Huntly BJ, Loh ML, Beran M, Stoffregen E, ve ark. The

JAK2V617F activating mutation occurs in chronic myelomonocytic leukemia

and acute myeloid leukemia, but not in acute lymphoblastic leukemia or chronic

lymphocytic leukemia. Blood 2005; 106(10): 3377-3379.

71

41. Hinds DA, Barnholt KE, Mesa RA, Kiefer AK, Do CB, Eriksson N, ve ark.

Germ line variants predispose to both JAK2 V617F clonal hematopoiesis and

myeloproliferative neoplasms. Blood 2016; 128(8): 1121-1128.

42. Hirsch P, Mamez A, Belhocine R, Lapusan S, Tang R, Suner L, ve ark. Clonal

history of a cord blood donor cell leukemia with prenatal somatic JAK2 V617F

mutation. Leukemia 2016; 30(8): 1756.

43. McKerrell T, Park N, Moreno T, Grove CS, Ponstingl H, Stephens J, ve ark.

Leukemia-associated somatic mutations drive distinct patterns of age-related

clonal hemopoiesis. Cell reports 2015; 10(8): 1239-1245.

44. Steensma DP, Bejar R, Jaiswal S, Lindsley RC, Sekeres MA, Hasserjian RP, ve

ark. Clonal hematopoiesis of indeterminate potential and its distinction from

myelodysplastic syndromes. Blood 2015; 126(1): 9-16.

45. Scott LM, Tong W, Levine RL, Scott MA, Beer PA, Stratton MR, ve ark. JAK2

exon 12 mutations in polycythemia vera and idiopathic erythrocytosis. New

England Journal of Medicine 2007; 356(5): 459-468.

46. Levine RL, Gilliland DG. Myeloproliferative disorders. Blood 2008; 112(6):

2190-2198.

47. Vainchenker W, Constantinescu SN. JAK/STAT signaling in hematological

malignancies. Oncogene 2013; 32(21): 2601.

48. Bandaranayake RM, Ungureanu D, Shan Y, Shaw DE, Silvennoinen O, Hubbard

SR. Crystal structures of the JAK2 pseudokinase domain and the pathogenic

mutant V617F. Nature Structural and Molecular Biology 2012; 19(8): 754.

49. Shan Y, Gnanasambandan K, Ungureanu D, Kim ET, Hammarén H, Yamashita

K, ve ark. Molecular basis for pseudokinase-dependent autoinhibition of JAK2

tyrosine kinase. Nature Structural and Molecular Biology 2014; 21(7): 579.

50. Leroy E, Dusa A, Colau D, Motamedi A, Cahu X, Mouton C, ve ark.

Uncoupling JAK2 V617F activation from cytokine-induced signalling by

modulation of JH2 αC helix. Biochemical Journal 2016; 473(11): 1579-1591.

51. Lu X, Levine R, Tong W, Wernig G, Pikman Y, Zarnegar S, ve ark. Expression

of a homodimeric type I cytokine receptor is required for JAK2V617F-mediated

transformation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United

States of America 2005; 102(52): 18962-18967.

52. Ugo V, Marzac C, Teyssandier I, Larbret F, Lécluse Y, Debili N, ve ark.

Multiple signaling pathways are involved in erythropoietin-independent

differentiation of erythroid progenitors in polycythemia vera. Experimental

hematology 2004; 32(2): 179-187.

53. LaFave LM, Levine RL. JAK2 the future: therapeutic strategies for JAK-

dependent malignancies. Trends in pharmacological sciences 2012; 33(11): 574-

582.

54. Cisowski J, Sayin V, Liu M, Karlsson C, Bergo M. Oncogene-induced

senescence underlies the mutual exclusive nature of oncogenic KRAS and

BRAF. Oncogene 2016; 35(10): 1328.

72

55. Tefferi A. Pathogenesis of myelofibrosis with myeloid metaplasia. Journal of

Clinical Oncology 2005; 23(33): 8520-8530.

56. Plo I. p53 at the crossroads of MPN treatment. Blood 2014; 124(5): 668-669.

57. Arranz L, Sánchez-Aguilera A, Martín-Pérez D, Isern J, Langa X, Tzankov A,

ve ark. Neuropathy of haematopoietic stem cell niche is essential for

myeloproliferative neoplasms. Nature 2014; 512(7512): 78.

58. Fleischman AG, Aichberger KJ, Luty SB, Bumm TG, Petersen CL, Doratotaj S,

ve ark. TNFα facilitates clonal expansion of JAK2V617F positive cells in

myeloproliferative neoplasms. Blood 2011; 118(24): 6392-6398.

59. Tapper W, Jones AV, Kralovics R, Harutyunyan AS, Zoi K, Leung W, ve ark.

Genetic variation at MECOM, TERT, JAK2 and HBS1L-MYB predisposes to

myeloproliferative neoplasms. Nature communications 2015; 6: 6691.

60. Saliba J, Saint-Martin C, Di Stefano A, Lenglet G, Marty C, Keren B, ve ark.

Germline duplication of ATG2B and GSKIP predisposes to familial myeloid

malignancies. Nature genetics 2015; 47(10): 1131.

61. Harutyunyan AS, Giambruno R, Krendl C, Stukalov A, Klampfl T, Berg T, ve

ark. Germline RBBP6 mutations in familial myeloproliferative neoplasms.

Blood 2016; 127(3): 362-365.

62. Weaver CT, Hatton RD, Mangan PR, Harrington LE. IL-17 family cytokines

and the expanding diversity of effector T cell lineages. Annual review of

immunology 2007; 25: 821-852.

63. Watford WT, Moriguchi M, Morinobu A, O'Shea JJ. The biology of IL-12:

coordinating innate and adaptive immune responses. Cytokine Growth Factor

Rev 2003; 14(5): 361-368.

64. Lackie J. A dictionary of biomedicine. Oxford University Press; 2010.

65. Schulte W, Bernhagen J, Bucala R. Cytokines in sepsis: potent

immunoregulators and potential therapeutic targets--an updated view. Mediators

of inflammation 2013; 2013: 165974.

66. Graves DT, Jiang Y. Chemokines, a family of chemotactic cytokines. Critical

reviews in oral biology and medicine : an official publication of the American

Association of Oral Biologists 1995; 6(2): 109-118.

67. Stow JL, Murray RZ. Intracellular trafficking and secretion of inflammatory

cytokines. Cytokine Growth Factor Rev 2013; 24(3): 227-239.

68. Van der Meide PH, Schellekens H. Cytokines and the immune response.

Biotherapy (Dordrecht, Netherlands) 1996; 8(3-4): 243-249.

69. Luster AD. Chemokines—chemotactic cytokines that mediate inflammation.

New England Journal of Medicine 1998; 338(7): 436-445.

70. Locati M, Massimo, Murphy M, Philip M. Chemokines and chemokine

receptors: biology and clinical relevance in inflammation and AIDS. Annual

review of medicine 1999; 50(1): 425-440.

71. Thelen M. Dancing to the tune of chemokines. Nature immunology 2001; 2(2):

129.

73

72. Thelen M, Stein JV. How chemokines invite leukocytes to dance. Nature

immunology 2008; 9(9): 953.

73. Zlotnik A, Yoshie O. The chemokine superfamily revisited. Immunity 2012;

36(5): 705-716.

74. Blanchet X, Langer M, Weber C, Koenen RR, von Hundelshausen P. Touch of

chemokines. Frontiers in immunology 2012; 3: 175.

75. Romagnani P, Lasagni L, Annunziato F, Serio M, Romagnani S. CXC

chemokines: the regulatory link between inflammation and angiogenesis. Trends

in immunology 2004; 25(4): 201-209.

76. Russo RC, Garcia CC, Teixeira MM, Amaral FA. The CXCL8/IL-8 chemokine

family and its receptors in inflammatory diseases. Expert review of clinical

immunology 2014; 10(5): 593-619.

77. Keeley EC, Mehrad B, Strieter RM. Chemokines as mediators of tumor

angiogenesis and neovascularization. Experimental cell research 2011; 317(5):

685-690.

78. Bachelerie F, Ben-Baruch A, Burkhardt A, Combadiere C, Farber J, Graham G,

ve ark. Update on the extended family of chemokine receptors and introducing a

new nomenclature for atypical chemokine receptors. Pharmacol Rev 2013;

66(1): 71P-79.

79. Corsiero E, Nerviani A, Bombardieri M, Pitzalis C. Ectopic lymphoid structures:

powerhouse of autoimmunity. Frontiers in immunology 2016; 7: 430.

80. Opdenakker G, Proost P, Van Damme J. Microbiomic and posttranslational

modifications as preludes to autoimmune diseases. Trends in molecular

medicine 2016; 22(9): 746-757.

81. Steen A, Larsen O, Thiele S, Rosenkilde MM. Biased and g protein-independent

signaling of chemokine receptors. Frontiers in immunology 2014; 5: 277.

82. Mortier A, Van Damme J, Proost P. Overview of the mechanisms regulating

chemokine activity and availability. Immunology letters 2012; 145(1-2): 2-9.

83. Mortier A, Gouwy M, Van Damme J, Proost P. Effect of posttranslational

processing on the in vitro and in vivo activity of chemokines. Experimental cell

research 2011; 317(5): 642-654.

84. Moelants EA, Mortier A, Van Damme J, Proost P. In vivo regulation of

chemokine activity by post‐translational modification. Immunology & Cell

Biology 2013; 91(6): 402-407.

85. Metzemaekers M, Van Damme J, Mortier A, Proost P. Regulation of chemokine

activity–a focus on the role of dipeptidyl peptidase IV/CD26. Frontiers in

immunology 2016; 7: 483.

86. Allen SJ, Crown SE, Handel TM. Chemokine: receptor structure, interactions,

and antagonism. Annu. Rev. Immunol. 2007; 25: 787-820.

87. Moser B. Chemokines: role in immune cell traffic. European cytokine network

2003; 14(4): 204-210.

74

88. Moser B, Willimann K. Chemokines: role in inflammation and immune

surveillance. Annals of the rheumatic diseases 2004; 63(suppl 2): ii84-ii89.

89. Mantovani A. The chemokine system: redundancy for robust outputs.

Immunology today 1999; 20(6): 254-257.

90. Bacon K, Baggiolini M, Broxmeyer H, Horuk R, Lindley I, Mantovani A, ve

ark. Chemokine/chemokine receptor nomenclature. J. Leukoc. Biol 2001; 70:

465-466.

91. Metzemaekers M, Vanheule V, Janssens R, Struyf S, Proost P. Overview of the

mechanisms that may contribute to the non-redundant activities of interferon-

inducible CXCR3 ligands. Frontiers in Immunology 2017; 8: 1970.

92. Van Raemdonck K, Van den Steen PE, Liekens S, Van Damme J, Struyf S.

CXCR3 ligands in disease and therapy. Cytokine & growth factor reviews 2015;

26(3): 311-327.

93. Groom JR, Luster AD. CXCR3 ligands: redundant, collaborative and

antagonistic functions. Immunology & Cell Biology 2011; 89(2): 207-215.

94. Luster AD, Unkeless JC, Ravetch JV. γ-Interferon transcriptionally regulates an

early-response gene containing homology to platelet proteins. Nature 1985;

315(6021): 672.

95. Farber JM. A macrophage mRNA selectively induced by gamma-interferon

encodes a member of the platelet factor 4 family of cytokines. Proceedings of

the National Academy of Sciences 1990; 87(14): 5238-5242.

96. Lee H-H, Farber J. Localization of the gene for the human MIG cytokine on

chromosome 4q21 adjacent to INP10 reveals a chemokine “mini-cluster”.

Cytogenetic and Genome Research 1996; 74(4): 255-258.

97. Loetscher M, Gerber B, Loetscher P, Jones SA, Piali L, Clark-Lewis I, ve ark.

Chemokine receptor specific for IP10 and mig: structure, function, and

expression in activated T-lymphocytes. Journal of Experimental Medicine 1996;

184(3): 963-969.

98. Tensen CP, Flier J, van der Raaij-Helmer EM, Sampat-Sardjoepersad S, van der

Schors RC, Leurs R, ve ark. Human IP-9: A Keratinocyte-Derived High Affinity

CXC-Chemokine Ligand for the IP-10/Mig Receptor (CXCR3) 1. Journal of

investigative dermatology 1999; 112(5): 716-722.

99. Cole KE, Strick CA, Paradis TJ, Ogborne KT, Loetscher M, Gladue RP, ve ark.

Interferon–inducible T cell alpha chemoattractant (I-TAC): a novel Non-ELR

CXC Chemokine with potent activity on activated T cells through selective high

affinity binding to CXCR3. Journal of Experimental Medicine 1998; 187(12):

2009-2021.

100. Erdel M, Theurl M, Meyer M, Duba H-C, Utermann G, Werner-Felmayer G.

High-resolution mapping of the human 4q21 and the mouse 5E3 SCYB

chemokine cluster by fiber-fluorescence in situ hybridization. Immunogenetics

2001; 53(7): 611-615.

101. Loos T, Dekeyzer L, Struyf S, Schutyser E, Gijsbers K, Gouwy M, ve ark. TLR

ligands and cytokines induce CXCR3 ligands in endothelial cells: enhanced

CXCL9 in autoimmune arthritis. Laboratory Investigation 2006; 86(9): 902.

75

102. Proost P, Vynckier AK, Mahieu F, Put W, Grillet B, Struyf S, ve ark. Microbial

Toll‐like receptor ligands differentially regulate CXCL10/IP‐10 expression in

fibroblasts and mononuclear leukocytes in synergy with IFN‐γ and provide a

mechanism for enhanced synovial chemokine levels in septic arthritis. European

journal of immunology 2003; 33(11): 3146-3153.

103. Proost P, Verpoest S, Borne D, Van K, Schutyser E, Struyf S, ve ark. Synergistic

induction of CXCL9 and CXCL11 by Toll‐like receptor ligands and interferon‐γ

in fibroblasts correlates with elevated levels of CXCR3 ligands in septic arthritis

synovial fluids. Journal of leukocyte biology 2004; 75(5): 777-784.

104. Kaplan G, Luster AD, Hancock G, Cohn ZA. The expression of a gamma

interferon-induced protein (IP-10) in delayed immune responses in human skin.

Journal of Experimental Medicine 1987; 166(4): 1098-1108.

105. Zipfel P, Bialonski A, Skerka C. Induction of members of the IL-8/NAP-1 gene

family in human T lymphocytes is suppressed by cyclosporin A. Biochemical

and biophysical research communications 1991; 181(1): 179-183.

106. Wright TM, Farber J. 5'regulatory region of a novel cytokine gene mediates

selective activation by interferon gamma. Journal of Experimental Medicine

1991; 173(2): 417-422.

107. Wong P, Severns CW, Guyer NB, Wright TM. A unique palindromic element

mediates gamma interferon induction of mig gene expression. Molecular and

cellular biology 1994; 14(2): 914-922.

108. Ohmori Y, Hamilton TA. IL-4-induced STAT6 suppresses IFN-gamma-

stimulated STAT1-dependent transcription in mouse macrophages. The Journal

of immunology 1997; 159(11): 5474-5482.

109. Tensen CP, Flier J, Rampersad SS, Sampat-Sardjoepersad S, Scheper RJ,

Boorsma DM, ve ark. Genomic organization, sequence and transcriptional

regulation of the human CXCL 111 gene. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-

Gene Structure and Expression 1999; 1446(1-2): 167-172.

110. Ohmori Y, Hamilton TA. Cooperative interaction between interferon (IFN)

stimulus response element and kappa B sequence motifs controls IFN gamma-

and lipopolysaccharide-stimulated transcription from the murine IP-10

promoter. Journal of Biological Chemistry 1993; 268(9): 6677-6688.

111. Majumder S, Zhou LZ-H, Chaturvedi P, Babcock G, Aras S, Ransohoff RM.

p48/STAT-1α-containing complexes play a predominant role in induction of

IFN-γ-inducible protein, 10 kDa (IP-10) by IFN-γ alone or in synergy with TNF-

α. The Journal of Immunology 1998; 161(9): 4736-4744.

112. Rani MS, Foster GR, Leung S, Leaman D, Stark GR, Ransohoff RM.

Characterization of β-R1, a gene that is selectively induced by interferon β (IFN-

β) compared with IFN-α. Journal of Biological Chemistry 1996; 271(37):

22878-22884.

113. Proost P, Struyf S, Loos T, Gouwy M, Schutyser E, Conings R, ve ark.

Coexpression and interaction of CXCL10 and CD26 in mesenchymal cells by

synergising inflammatory cytokines: CXCL8 and CXCL10 are discriminative

76

markers for autoimmune arthropathies. Arthritis research & therapy 2006; 8(4):

R107.

114. Loetscher M, Loetscher P, Brass N, Meese E, Moser B. Lymphocyte‐specific

chemokine receptor CXCR3: regulation, chemokine binding and gene

localization. European journal of immunology 1998; 28(11): 3696-3705.

115. Sebastiani S, Allavena P, Albanesi C, Nasorri F, Bianchi G, Traidl C, ve ark.

Chemokine receptor expression and function in CD4+ T lymphocytes with

regulatory activity. The Journal of Immunology 2001; 166(2): 996-1002.

116. Wacleche VS, Goulet J-P, Gosselin A, Monteiro P, Soudeyns H, Fromentin R,

ve ark. New insights into the heterogeneity of Th17 subsets contributing to HIV-

1 persistence during antiretroviral therapy. Retrovirology 2016; 13(1): 59.

117. Abboud G, Desai P, Dastmalchi F, Stanfield J, Tahiliani V, Hutchinson TE, ve

ark. Tissue-specific programming of memory CD8 T cell subsets impacts

protection against lethal respiratory virus infection. Journal of Experimental

Medicine 2016; 213(13): 2897-2911.

118. Inngjerdingen M, Damaj B, Maghazachi AA. Expression and regulation of

chemokine receptors in human natural killer cells. Blood 2001; 97(2): 367-375.

119. Qin S, Rottman JB, Myers P, Kassam N, Weinblatt M, Loetscher M, ve ark. The

chemokine receptors CXCR3 and CCR5 mark subsets of T cells associated with

certain inflammatory reactions. The Journal of clinical investigation 1998;

101(4): 746-754.

120. Suga H, Sugaya M, Miyagaki T, Ohmatsu H, Okochi H, Sato S. CXCR3

deficiency prolongs Th1-type contact hypersensitivity. The Journal of

Immunology 2013; 190(12): 6059-6070.

121. Hasegawa H, Inoue A, Kohno M, Lei J, Miyazaki T, Yoshie O, ve ark.

Therapeutic effect of CXCR3-expressing regulatory T cells on liver, lung and

intestinal damages in a murine acute GVHD model. Gene therapy 2008; 15(3):

171.

122. Mohan K, Cordeiro E, Vaci M, McMaster C, Issekutz TB. CXCR3 is required

for migration to dermal inflammation by normal and in vivo activated T cells:

differential requirements by CD4 and CD8 memory subsets. European journal

of immunology 2005; 35(6): 1702-1711.

123. Hickman HD, Reynoso GV, Ngudiankama BF, Cush SS, Gibbs J, Bennink JR,

ve ark. CXCR3 chemokine receptor enables local CD8+ T cell migration for the

destruction of virus-infected cells. Immunity 2015; 42(3): 524-537.

124. Groom JR, Luster AD. CXCR3 in T cell function. Experimental cell research

2011; 317(5): 620-631.

125. Rabin RL, Park MK, Liao F, Swofford R, Stephany D, Farber JM. Chemokine

receptor responses on T cells are achieved through regulation of both receptor

expression and signaling. The Journal of Immunology 1999; 162(7): 3840-3850.

126. Yamamoto J, Adachi Y, Onoue Y, Adachi YS, Okabe Y, Itazawa T, ve ark.

Differential expression of the chemokine receptors by the Th1‐and Th2‐type

effect or populations within circulating CD4+ T cells. Journal of leukocyte

biology 2000; 68(4): 568-574.

77

127. Kim CH, Rott L, Kunkel EJ, Genovese MC, Andrew DP, Wu L, ve ark. Rules of

chemokine receptor association with T cell polarization in vivo. The Journal of

clinical investigation 2001; 108(9): 1331-1339.

128. Patil RS, Shah SU, Shrikhande SV, Goel M, Dikshit RP, Chiplunkar SV. IL17

producing γδT cells induce angiogenesis and are associated with poor survival in

gallbladder cancer patients. International journal of cancer 2016; 139(4): 869-

881.

129. Poggi A, Carosio R, Fenoglio D, Brenci S, Murdaca G, Setti M, ve ark.

Migration of Vδ1 and Vδ2 T cells in response to CXCR3 and CXCR4 ligands in

healthy donors and HIV-1–infected patients: competition by HIV-1 Tat. Blood

2004; 103(6): 2205-2213.

130. Poggi A, Zancolli M, Catellani S, Borsellino G, Battistini L, Zocchi M.

Migratory Pathways of γδ T Cells and Response to CXCR3 and CXCR4

Ligands. Annals of the New York Academy of Sciences 2007; 1107(1): 68-78.

131. Graves CL, Li J, LaPato M, Shapiro MR, Glover SC, Wallet MA, ve ark.

Intestinal epithelial cell regulation of adaptive immune dysfunction in human

type 1 diabetes. Frontiers in immunology 2017; 7: 679.

132. Muehlinghaus G, Cigliano L, Huehn S, Peddinghaus A, Leyendeckers H, Hauser

AE, ve ark. Regulation of CXCR3 and CXCR4 expression during terminal

differentiation of memory B cells into plasma cells. Blood 2005; 105(10): 3965-

3971.

133. García-López MÁ, Sánchez-Madrid F, Rodríguez-Frade JM, Mellado M,

Acevedo A, García MI, ve ark. CXCR3 chemokine receptor distribution in

normal and inflamed tissues: expression on activated lymphocytes, endothelial

cells, and dendritic cells. Laboratory investigation 2001; 81(3): 409.

134. Goldberg S, Van Der Meer P, Hesselgesser J, Jaffer S, Kolson D, Albright A, ve

ark. CXCR3 expression in human central nervous system diseases.

Neuropathology and applied neurobiology 2001; 27(2): 127-138.

135. Jinquan T, Jing C, Jacobi HH, Reimert CM, Millner A, Quan S, ve ark. CXCR3

expression and activation of eosinophils: role of IFN-γ-inducible protein-10 and

monokine induced by IFN-γ. The Journal of Immunology 2000; 165(3): 1548-

1556.

136. Hartl D, Krauss-Etschmann S, Koller B, Hordijk PL, Kuijpers TW, Hoffmann F,

ve ark. Infiltrated neutrophils acquire novel chemokine receptor expression and

chemokine responsiveness in chronic inflammatory lung diseases. The Journal

of Immunology 2008; 181(11): 8053-8067.

137. Ichikawa A, Kuba K, Morita M, Chida S, Tezuka H, Hara H, ve ark. CXCL10-

CXCR3 enhances the development of neutrophil-mediated fulminant lung injury

of viral and nonviral origin. American journal of respiratory and critical care

medicine 2013; 187(1): 65-77.

138. Berchiche YA, Sakmar TP. CXC chemokine receptor 3 alternative splice

variants selectively activate different signaling pathways. Molecular

pharmacology 2016: mol. 116.105502.

78

139. Lasagni L, Francalanci M, Annunziato F, Lazzeri E, Giannini S, Cosmi L, ve

ark. An alternatively spliced variant of CXCR3 mediates the inhibition of

endothelial cell growth induced by IP-10, Mig, and I-TAC, and acts as

functional receptor for platelet factor 4. Journal of Experimental Medicine 2003;

197(11): 1537-1549.

140. Furuya M, Yoneyama T, Miyagi E, Tanaka R, Nagahama K, Miyagi Y, ve ark.

Differential expression patterns of CXCR3 variants and corresponding CXC

chemokines in clear cell ovarian cancers and endometriosis. Gynecologic

oncology 2011; 122(3): 648-655.

141. Korniejewska A, McKnight AJ, Johnson Z, Watson ML, Ward SG. Expression

and agonist responsiveness of CXCR3 variants in human T lymphocytes.

Immunology 2011; 132(4): 503-515.

142. Ehlert JE, Addison CA, Burdick MD, Kunkel SL, Strieter RM. Identification

and partial characterization of a variant of human CXCR3 generated by

posttranscriptional exon skipping. The Journal of Immunology 2004; 173(10):

6234-6240.

143. Zohar Y, Wildbaum G, Novak R, Salzman AL, Thelen M, Alon R, ve ark.

CXCL11-dependent induction of FOXP3-negative regulatory T cells suppresses

autoimmune encephalomyelitis. The Journal of clinical investigation 2014;

124(5): 2009-2022.

144. Struyf S, Salogni L, Burdick MD, Vandercappellen J, Gouwy M, Noppen S, ve

ark. Angiostatic and chemotactic activities of the CXC chemokine CXCL4L1

(platelet factor-4 variant) are mediated by CXCR3. Blood 2011; 117(2): 480-

488.

145. Waldman T, Kinzler KW, Vogelstein B. p21 is necessary for the p53-mediated

G1 arrest in human cancer cells. Cancer research 1995; 55(22): 5187-5190.

146. Bunz F, Dutriaux A, Lengauer C, Waldman T, Zhou S, Brown J, ve ark.

Requirement for p53 and p21 to sustain G2 arrest after DNA damage. Science

1998; 282(5393): 1497-1501.

147. Lee T-H, Chuang L-Y, Hung W-C. Induction of p21 WAF1 expression via Sp1-

binding sites by tamoxifen in estrogen receptor-negative lung cancer cells.

Oncogene 2000; 19(33): 3766.

148. Struyf S, Burdick MD, Proost P, Van Damme J, Strieter RM. Platelets release

CXCL4L1, a nonallelic variant of the chemokine platelet factor-4/CXCL4 and

potent inhibitor of angiogenesis. Circulation research 2004; 95(9): 855-857.

149. Thompson BD, Jin Y, Wu KH, Colvin RA, Luster AD, Birnbaumer L, ve ark.

Inhibition of Gαi2 activation by Gαi3 in CXCR3-mediated signaling. Journal of

Biological Chemistry 2007; 282(13): 9547-9555.

150. Curiel TJ, Coukos G, Zou L, Alvarez X, Cheng P, Mottram P, ve ark. Specific

recruitment of regulatory T cells in ovarian carcinoma fosters immune privilege

and predicts reduced survival. Nature medicine 2004; 10(9): 942.

151. Wu Q, Dhir R, Wells A. Altered CXCR3 isoform expression regulates prostate

cancer cell migration and invasion. Molecular cancer 2012; 11(1): 3.

79

152. Meiser A, Mueller A, Wise EL, McDonagh EM, Petit SJ, Saran N, ve ark. The

chemokine receptor CXCR3 is degraded following internalization and is

replenished at the cell surface by de novo synthesis of receptor. The Journal of

Immunology 2008; 180(10): 6713-6724.

153. Sauty A, Colvin RA, Wagner L, Rochat S, Spertini F, Luster AD. CXCR3

internalization following T cell-endothelial cell contact: preferential role of IFN-

inducible T cell α chemoattractant (CXCL11). The Journal of Immunology

2001; 167(12): 7084-7093.

154. Rajagopal S, Bassoni DL, Campbell JJ, Gerard NP, Gerard C, Wehrman TS.

Biased agonism as a mechanism for differential signaling by chemokine

receptors. Journal of Biological Chemistry 2013; 288(49): 35039-35048.

155. Smith JS, Alagesan P, Desai NK, Pack TF, Wu J-H, Inoue A, ve ark. CXC motif

chemokine receptor 3 splice variants differentially activate beta-arrestins to

regulate downstream signaling pathways. Molecular pharmacology 2017; 92(2):

136-150.

156. Angiolillo AL, Sgadari C, Taub DD, Liao F, Farber JM, Maheshwari S, ve ark.

Human interferon-inducible protein 10 is a potent inhibitor of angiogenesis in

vivo. Journal of Experimental Medicine 1995; 182(1): 155-162.

157. Strieter R, Kunkel S, Arenberg D, Burdick M, Polverini P. Interferon γ-

Inducible Protein-10 (IP-10), a Member of the CXC Chemokine Family, Is an

Inhibitor of Angiogenesis. Biochemical and biophysical research

communications 1995; 210(1): 51-57.

158. Proost P, Schutyser E, Menten P, Struyf S, Wuyts A, Opdenakker G, ve ark.

Amino-terminal truncation of CXCR3 agonists impairs receptor signaling and

lymphocyte chemotaxis, while preserving antiangiogenic properties. Blood

2001; 98(13): 3554-3561.

159. Maione TE, Gray GS, Petro J, Hunt AJ, Donner AL, Bauer SI, ve ark. Inhibition

of angiogenesis by recombinant human platelet factor-4 and related peptides.

Science 1990; 247(4938): 77-79.

160. Hensbergen PJ, Wijnands PGB, Schreurs MW, Scheper RJ, Willemze R, Tensen

CP. The CXCR3 targeting chemokine CXCL11 has potent antitumor activity in

vivo involving attraction of CD8+ T lymphocytes but not inhibition of

angiogenesis. Journal of Immunotherapy 2005; 28(4): 343-351.

161. Addison CL, Arenberg DA, Morris SB, Xue Y-Y, Burdick MD, Mulligan MS,

ve ark. The CXC chemokine, monokine induced by interferon-gamma, inhibits

non-small cell lung carcinoma tumor growth and metastasis. Human gene

therapy 2000; 11(2): 247-261.

162. Romagnani P, Annunziato F, Lasagni L, Lazzeri E, Beltrame C, Francalanci M,

ve ark. Cell cycle–dependent expression of CXC chemokine receptor 3 by

endothelial cells mediates angiostatic activity. The Journal of clinical

investigation 2001; 107(1): 53-63.

163. Aoki Y, Niihori T, Inoue S, Matsubara Y. Recent advances in RASopathies.

Journal of human genetics 2016; 61(1): 33-39.

80

164. Mondet J, Hussein K, Mossuz P. Circulating cytokine levels as markers of

inflammation in philadelphia negative myeloproliferative neoplasms: diagnostic

and prognostic interest. Mediators of inflammation 2015; 2015.

165. Fulop T, Larbi A, Douziech N, Levesque I, Varin A, Herbein G. Cytokine

receptor signalling and aging. Mechanisms of ageing and development 2006;

127(6): 526-537.

166. Shurin GV, Yurkovetsky ZR, Chatta GS, Tourkova IL, Shurin MR, Lokshin AE.

Dynamic alteration of soluble serum biomarkers in healthy aging. Cytokine

2007; 39(2): 123-129.

167. Jinquan T, Quan S, Jacobi HH, Jing C, Millner A, Jensen B, ve ark. CXC

chemokine receptor 3 expression on CD34+ hematopoietic progenitors from

human cord blood induced by granulocyte-macrophage colony-stimulating

factor: chemotaxis and adhesion induced by its ligands, interferon γ–inducible

protein 10 and monokine induced by interferon γ. Blood 2000; 96(4): 1230-

1238.

168. Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using real-

time quantitative PCR and the 2− ΔΔCT method. methods 2001; 25(4): 402-408.

169. Callahan MK, Williams KA, Kivisäkk P, Pearce D, Stins MF, Ransohoff RM.

CXCR3 marks CD4+ memory T lymphocytes that are competent to migrate

across a human brain microvascular endothelial cell layer. Journal of

neuroimmunology 2004; 153(1): 150-157.

170. Springer TA. Traffic signals for lymphocyte recirculation and leukocyte

emigration: the multistep paradigm. Cell 1994; 76(2): 301-314.

171. Baggiolini M. Chemokines and leukocyte traffic. Nature 1998; 392(6676): 565.

172. Glaser J, Gonzalez R, Perreau VM, Cotman CW, Keirstead HS. Neutralization

of the chemokine CXCL10 enhances tissue sparing and angiogenesis following

spinal cord injury. Journal of neuroscience research 2004; 77(5): 701-708.

173. Kelsen SG, Aksoy MO, Yang Y, Shahabuddin S, Litvin J, Safadi F, ve ark. The

chemokine receptor CXCR3 and its splice variant are expressed in human

airway epithelial cells. American Journal of Physiology-Lung Cellular and

Molecular Physiology 2004; 287(3): L584-L591.

174. Chakraborty K, Bose A, Pal S, Chattopadhyay U, Baral R. Interferon-α2b

Restores the Impaired Chemotactic Activity of Peripheral Blood Mononuclear

Cells from Head and Neck Squamous Cell Carcinoma Patients by Modulating

CXC Receptor Ligand Interaction. Journal of Interferon & Cytokine Research

2007; 28(8): 487-500.

175. Chakraborty K, Bose A, Pal S, Sarkar K, Goswami S, Ghosh D, ve ark. Neem

leaf glycoprotein restores the impaired chemotactic activity of peripheral blood

mononuclear cells from head and neck squamous cell carcinoma patients by

maintaining CXCR3/CXCL10 balance. International immunopharmacology

2008; 8(2): 330-340.

176. Datta D, Contreras AG, Grimm M, Waaga-Gasser AM, Briscoe DM, Pal S.

Calcineurin inhibitors modulate CXCR3 splice variant expression and mediate

81

renal cancer progression. Journal of the American Society of Nephrology 2008;

19(12): 2437-2446.

177. Romagnani P, Beltrame C, Annunziato F, Lasagni L, Luconi M, Galli G, ve ark.

Role for interactions between IP-10/Mig and CXCR3 in proliferative

glomerulonephritis. Journal of the American Society of Nephrology 1999;

10(12): 2518-2526.

178. Romagnani P, Lazzeri E, Lasagni L, Mavilia C, Beltrame C, Francalanci M, ve

ark. IP-10 and Mig production by glomerular cells in human proliferative

glomerulonephritis and regulation by nitric oxide. Journal of the American

Society of Nephrology 2002; 13(1): 53-64.

179. Lu H, Ouyang W, Huang C. Inflammation, a key event in cancer development.

Molecular cancer research 2006; 4(4): 221-233.

180. Perwez Hussain S, Harris CC. Inflammation and cancer: an ancient link with

novel potentials. International journal of cancer 2007; 121(11): 2373-2380.

181. Maeda H, Akaike T. Nitric oxide and oxygen radicals in infection,

inflammation, and cancer. BIOCHEMISTRY C/C OF BIOKHIMIIA 1998; 63:

854-865.

182. Ma B, Khazali A, Wells A. CXCR3 in carcinoma progression. Histology and

histopathology 2015; 30(7): 781.

183. Lleo A, Zhang W, Zhao M, Tan Y, Bernuzzi F, Zhu B, ve ark. DNA methylation

profiling of the X chromosome reveals an aberrant demethylation on CXCR3

promoter in primary biliary cirrhosis. Clinical epigenetics 2015; 7(1): 61.

184. Kumar DSS, Wells A. CXCR3 epigenome switches splice variants in prostate

cancer. AACR; 2013.

185. Urra S, Fischer MC, Martínez JR, Véliz L, Orellana P, Solar A, ve ark.

Differential expression profile of CXCR3 splicing variants is associated with

thyroid neoplasia. Potential role in papillary thyroid carcinoma oncogenesis?

Oncotarget 2018; 9(2): 2445.

186. Witte E, Kokolakis G, Witte K, Warszawska K, Friedrich M, Christou D, ve ark.

Interleukin-29 induces epithelial production of CXCR3A ligands and T-cell

infiltration. Journal of Molecular Medicine 2016; 94(4): 391-400.

187. Walters JH, Mc GI. The mechanism of malarial hepatomegaly and its

relationship to hepatic fibrosis. Transactions of the Royal Society of Tropical

Medicine and Hygiene 1960; 54: 135-145.

188. Wasmuth H, Weiskirchen R. Pathogenesis of liver fibrosis: modulation of

stellate cells by chemokines. Zeitschrift fur Gastroenterologie 2010; 48(1): 38-

45.

189. Li J, Liu B, Shi Y, Xie K-L, Yin H-F, Yan L-n, ve ark. CXCL4 Contributes to

the Pathogenesis of Chronic Liver Allograft Dysfunction. Journal of

immunology research 2016; 2016.

190. Leestemaker Y, de Jong A, Witting KF, Penning R, Schuurman K, Rodenko B,

ve ark. Proteasome Activation by Small Molecules. Cell chemical biology 2017;

24(6): 725-736.e727.

82

191. Baldi P, Long AD. A Bayesian framework for the analysis of microarray

expression data: regularized t-test and statistical inferences of gene changes.

Bioinformatics 2001; 17(6): 509-519.

192. SZALLASI Z. Genetic network analysis in light of massively parallel biological

data acquisition. Biocomputing'99: World Scientific; 1999:5-16.

193. Lauriat T. Universal Probe Library From Roche. 2006; 26 Jun,

https://www.biocompare.com/Product-Reviews/40920-Universal-Probe-Library-

From-Roche/.

194. Colvin RA, Campanella GS, Sun J, Luster AD. Intracellular domains of CXCR3

that mediate CXCL9, CXCL10, and CXCL11 function. Journal of Biological

Chemistry 2004; 279(29): 30219-30227.

83

HAM VERİLER

84

FORMLAR

85

ETİK KURUL KARAR

86

PATENT HAKKI İZNİ

87

İNTİHAL RAPORU İLK SAYFASI

88

ÖZGEÇMİŞ

Kişisel Bilgiler

Adı Cemil Soyadı Altunay

Doğ.Yeri Antakya Doğ.Tar. 27.07.1992

Uyruğu T.C. TC Kim No 19697052728

Email [email protected] Tel +90 531 765 48 02

Eğitim Düzeyi

Mezun Olduğu Kurumun Adı Mez. Yılı

Doktora

Yük.Lis.

Lisans Gebze Teknik Üniversitesi 2015

Lise Selim Nevzat Şahin Anadolu Lisesi 2010

İş Deneyimi (Sondan geçmişe doğru sıralayın)

Görevi Kurum Süre (Yıl - Yıl)

1

. Stajyer Berlin Teknik Üniversitei 3 ay (2014)

2

. Stajyer

Max Delbrück Center for Molecular

Medicine 2 ay (2013)

3

. -

89

Yabancı

Dilleri

Okuduğunu

Anlama* Konuşma* Yazma*

YÖKDİL

Puanı

(Diğer)

Puanı

İngilizce İyi İyi İyi 90,00

*Çok iyi, iyi, orta, zayıf olarak değerlendirin

Sayısal Eşit Ağırlık Sözel

ALES Puanı 85,89623 85,29008 72,07582

(Diğer)

Puanı

Bilgisayar Bilgisi

Program Kullanma becerisi

Microsoft Office İyi

Yayınları/Tebligleri Sertifikaları/Ödülleri

- Basic Management Skills Symposium 07.2016

Basic Management Science

Training Programs: 1) Social Engineering I-II 2) Problem Solving Techniques 3)

Time Management 4) 9 Easy Rules for Successful in Business 5) Basic Management

Skills

-ITU BIOTECH ''16 International Congress on Biotechnology and Life Science

07.05.2016

Istanbul Technical University, Istanbul, Turkey

-5th Course in Next Generation Sequencing 04-06.05.2016

Europen School of Genetic Medicine - Istanbul University, Istanbul, Turkey

- Laboratory Processes Course in Biobanking 05.2016

90

Istanbul University - 05.2016

-İÜKÖK Stem Cell Symposium 02.04.2016-03.04.2016

Istanbul University - 02.04.2016-03.04.2016 (16 Hours)

-IX. IUGEN Molecular Biology and Genetics Students’ Winter School 24-

26.02.2012

Istanbul University, Istanbul, Turkey

Özel İlgi Alanları (Hobileri):

91