Embed Size (px)
Citation preview
PENGARUH KEPADATAN BIBIT INOKULUM YANG BERBEDA
TERHADAP PERTUMBUHAN Nitzschia sp.
PADA KULTUR OUTDOOR
SKRIPSI
Oleh :
LA ALFIAN WALID
C1K013045
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS MATARAM
2018
PENGARUH KEPADATAN BIBIT INOKULUM YANG BERBEDA
TERHADAP PERTUMBUHAN Nitzschia sp.
PADA KULTUR OUTDOOR
Oleh :
LA ALFIAN WALID
C1K013045
SKRIPSI
Sebagai Salah Satu Syarat untuk Memperoleh Gelar Sarjana Perikanan
Pada Fakultas Pertanian
Universitas Mataram
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS MATARAM
2018
KATA PENGANTAR
Segala puji dan syukur Penulis panjatkan kehadirat Allah SWT atas segala
rahmat dan karunia-Nya, sehingga penelitian dengan judul Pengaruh Kepadatan Bibit
Inokulum terhadap Pertumbuhan Nitzschia sp. pada Kultur Outdoor dapat
diselesaikan dengan baik.
Penyusunan laporan penelitian ini tidak lepas dari berbagai pihak, oleh karena
itu penulis mengucapkan terimakasih yang sebesar-besarnya kepada Bapak Ir.
Saptono Waspodo, M.Si., selaku dosen pembimbing I dan Bapak Bagus Dwi Hari
Setyono, S.Pi., M.P., selaku dosen pembimbing II atas saran, bimbingan, nasihat serta
dukungannya kepada Penulis dengan penuh kesabaran.
Penulis menyadari bahwa dalam penyusunan laporan penelitian ini masih jauh
dari kata sempurna. Oleh karena itu, Penulis dengan senang hati menerima segala
saran dan kritik yang bersifat membangun dari pembaca demi perbaikan laporan
penelitian ini. Penulis berharap laporan penelitian ini dapat bermanfaat bagi semua
pihak tanpa terkecuali.
Mataram, September 2018
Penulis
DAFTAR ISI
Halaman
HALAMAN PERNYATAAN. ............................................................................ i
HALAMAN PENGESAHAN. ............................................................................ ii
KATA PENGANTAR ....................................................................................... iii
DAFTAR ISI ...................................................................................................... iv
DAFTAR TABEL .............................................................................................. vi
DAFTAR GAMBAR ........................................................................................ vii
ABSTRAK ....................................................................................................... viii
RINGKASAN ..................................................................................................... x
I. PENDAHULUAN ....................................................................................... 1
1.1 Latar Belakang ....................................................................................... 1
1.2 Tujuan ................................................................................................... 2
1.3 Manfaat ................................................................................................. 2
II. TINJAUAN PUSTAKA ............................................................................. 3
2.1 Klasifikasi dan Morfologi ...................................................................... 3
2.2 Habitat dan Penyebaran ......................................................................... 4
2.3 Reproduksi ............................................................................................. 4
2.4 Kandungan Gizi ..................................................................................... 6
2.5 Kualitas Air ............................................................................................ 7
2.6 KW 21 ................................................................................................... 7
III. METODOLOGI ......................................................................................... 10
3.1 Waktu dan Tempat. .............................................................................. 10
3.2 Alat dan Bahan ..................................................................................... 11
3.3 Metode Penelitian ................................................................................ 11
3.4 Prosedur Penelitian .............................................................................. 11
3.5 Parameter Penelitian ............................................................................ 14
3.6 Analisis Data ....................................................................................... 15
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN ................................................................. 16
4.1 Laju Pertumbuhan Relatif .................................................................... 16
4.2 Kepadatan Penempelan Nitzschia sp. .................................................. 17
4.2 Parameter Kualitas Air ........................................................................ 20
V. KESIMPULAN ............................................................................................ 22
5.1 Kesimpulan .......................................................................................... 22
5.2 Saran .................................................................................................... 22
DAFTAR PUSTAKA ....................................................................................... 23
DAFTAR TABEL
Tabel Halaman
1. Kandungan Gizi ............................................................................................ 7
2. Alat dan Bahan ............................................................................................ 10
3. Kepadatan Penempelan Sel Nitzschia sp..................................................... 18
DAFTAR GAMBAR
Gambar Halaman
1. Nitzschia sp .................................................................................................. 3
2. Siklus Hidup Nitzschia sp ............................................................................. 5
3. Fase Pertumbuhan Fitoplankton .................................................................... 6
4. Tata letak wadah penelitian ......................................................................... 12
5. Grafik Uji Lanjut BNT Laju Pertumbuhan Relatif .................................... 17
6. Grafik Penempelan Populasi Sel Nitzschia sp. ........................................... 18
7. Populasi sel Nitzschia sp. ............................................................................ 20
ABSTRAK
Kegiatan budidaya perikanan banyak memanfaatkan fitoplankton sebagai
pakan alami untuk biota terutama pada stadia larva. Masalah utama dalam
pembenihan larva hewan gastropoda adalah adanya tingkat kematian yang tinggi
pada fase larva yang menempel pada substrat. Keberhasilan penempelan larva
dipengaruhi oleh kecocokan substrat dan kecukupan pakan yang menempel pada
substrat. Nitzschia sp. merupakan diatom yang bersifat bentik dan memiliki nutrisi
yang baik untuk pertumbuhan awal larva. Salah satu faktor yang mempengaruhi
pertumbuhan fitoplankton adalah bibit inokulum. Tujuan dari penelitian ini adalah
untuk mengetahui kepadatan bibit inokulum yang optimal terhadap pertumbuhan
Nizstchia sp. pada kultur outdoor. Penelitian ini menggunakan 5 perlakuan dan 3
ulangan dengan kombinasi yang berbeda P1 (250.000 sel/ml), P2 (500.000 sel/ml),
P3 (750.000 sel/ml), P4 (1.000.000 sel/ml), dan P5 (1.250.000 sel/ml). Hasil
penelitian menunjukkan bahwa perbedaan bibit inokulum yang berbeda memberikan
hasil yang berbeda nyata terhadap pertumbuhan Nitzschia sp. pada kultur outdoor.
Perlakuan dengan kepadatan bibit inokulum 250.000 sel/ml laju pertumbuhan relatif
tertinggi adalah 1.150 % dan kepadatan penempelan yang tinggi adalah 3.126.667
sel/cm2
Kata kunci : Nitzschia sp., Perbedaan bibit inokulum, Pertumbuhan
ABSTRAC
Many aquaculture activities utilize phytoplankton as a natural feed for biota,
especially in larval stages. The main problem in hatching of gastropodic animal
larval is the high mortality rata in the larval phase attached to the substrate. The
success of larval attachment is influenced by the suitability of the substrate and the
adequacy of the feed attached to the substrate. Nitzschia sp. is a diatom that is
benthic and has good nutrition for the initial growth larvae. One of the factors that
influence phytoplankton growth is the inoculums seed. The purpose of this research
was to determine the optimal inoculums seed density on the growth of Nitzschia sp. in
outdoor culture. This research used 5 treatments and 3 replications with different
combinations P1 (250.000 cells/ml), P2 (500.000 cells/ml), P3 (750.000 cells/ml), P4
(1.000.000 cells/ml), P5 (1.250.000 cells/ml). The result showed that different
inoculums sedds gave significantly different results on the growth of Nitzschia sp. in
outdoor culture. The treatment with inoculums seed density of 250.000 cell/ml the
highest relative groqth rate was 1.150 % and the high density f the attachment was
3.126.667 cells/cm2.
Keyword : Nitzschia sp., different in inoculums seeds., growth
RINGKASAN
La Alfian Walid. Pengaruh Kepadatan Bibit Inokulum yang Berbeda terhadap
Pertumbuhan Nitzschia sp. pada Kultur Outdoor. Dibimbing oleh : Saptono
Waspodo dan Bagus Dwi Hari Setyono.
Kegiatan budidaya perikanan banyak memanfaatkan fitoplankton sebagai
pakan alami untuk biota terutama pada stadia larva. Masalah utama dalam
pembenihan larva hewan gastropoda adalah adanya tingkat kematian yang tinggi
pada fase larva yang menempel pada substrat. Keberhasilan penempelan larva
dipengaruhi oleh kecocokan substrat dan kecukupan pakan (diatom) yang menempel
pada pada permukaan substrat. Nitzschia sp. merupakan fitoplankton yang bersifat
bentik dan memiliki toleransi yang luas terhadap suhu, salinitas dan pH sehingga
mudah untuk dibudidayakan (dikultur). Selain itu Nitzschia sp. memiliki nutrisi yang
baik untuk pertumbuhan awal larva.
Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui kepadatan bibit inokulum yang
optimal terhadap pertumbuhan Nizstchia sp. pada kultur outdoor. Metode yang
digunakan pada penelitian ini adalah metode eksperimen dengan melakukan
percobaan dan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) menggunakan lima
perlakuan, yaitu kepadatan bibit inokulum 250.000 sel/ml, 500.000 sel/ml, 750.000
sel/ml, 1.000.000 sel/ml, dan 1.250.000 sel/ml.
Hasil penelitian menunjukkan bahwa analisis keragaman (ANOVA) laju
pertumbuhan relatif pada taraf nyata 5% menunjukan bahwa pengaruh bibit inokulum
yang berbeda memberikan hasil yang berbeda nyata terhadap pertumbuhan Nitzschia
sp. Perlakuan dengan kepadatan bibit inokulum 250.000 sel/ml memiliki laju
pertumbuhan relatif tertinggi adalah 1.150 % dan kepadatan penempelan yang tinggi
adalah 3.126.667 sel/cm2.
I. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Kegiatan budidaya perikanan banyak memanfaatkan fitoplankton sebagai
pakan alami untuk biota terutama pada stadia larva. Fitoplankton yang digunakan
sebagai pakan harus memiliki beberapa syarat yaitu syarat fisik, syarat kimia, syarat
biologi, dan syarat pengelolaan. Syarat fisik antara lain sesuai dengan bukaan mulut,
pergerakannya lambat dan sinambung, warna yang mudah dilihat oleh larva, dan
mempunyai daya apung. Syarat kimia yaitu menpunyai kandungan gizi yang lengkap
antara lain protein, karbohidrat, lemak, vitamin, dan mineral (Kairuman, 2003 dalam
Arief, 2009).
Syarat biologi antara lain tidak membahayakan bagi larva yang dipelihara,
tidak mencemari lingkungan, tidak mengandung racun maupun logam berat, dan
tidak berperan sebagai inang suatu organisme pathogen maupun parasit. Syarat
pengelolaan antara lain mudah didapatkan dan mudah dibudidayakan (Priyambodo
dan Triwahyuningsih, 2001).
Menurut Setyono (2009a), bahwa masalah utama dalam pembenihan larva
hewan gastropoda adalah adanya tingkat kematian yang tinggi pada fase larva yang
menempel pada substrat. Keberhasilan penempelan larva dipengaruhi oleh kecocokan
substrat dan kecukupan pakan (diatom) yang menempel pada pada permukaan
substrat.
Diatom merupakan fitoplankton yang termasuk dalam kelas
Bacillariophyceae yang hidup bersifat planktonik, ada juga yang bersifat bentik yang
menempel pada substrat (Setyono, 2009b). Salah satu diatom yang bersifat bentik
adalah Nitzschia sp. Nitzschia sp. merupakan diatom yang memiliki toleransi yang
luas terhadap suhu, salinitas dan pH sehingga mudah untuk dibudidayakan (dikultur).
Selain itu Nitzschia sp. memiliki nutrisi yang baik untuk pertumbuhan awal larva.
Menurut Widianingsih dkk (2011), Nitzschia sp. mengandung protein 33%, lemak
21%, dan karbohidrat 28%. Larva hewan gastropoda yang memanfaatkan Nitzschia
sp. sebagai pakan antara lain adalah abalon (Haliotis sp.) (Setyono, 2009), dan larva
siput gonggong (Strombus turturela sp.) (Dody, 2013).
Salah satu faktor yang mempengaruhi pertumbuhan fitoplankton Nitzschia sp.
yang bersifat bentik (menempel) pada kegiatan kultur adalah bibit inokulum.
Inokulum adalah bibit kultur yang diperoleh dari stok bibit atau sering disebut bibit
starter (Sapta, 2002 dalam Padang, 2014). Inokulum merupakan salah satu faktor
yang penting dalam kultur fitoplankton. Menurut Subakti (2013), perbedaan
kepadatan bibit inokulum akan menyebabkan proses adaptasi yang berbeda terhadap
lingkungan seperti nutrisi, suhu, pH, salinitas, dan intensitas cahaya sehingga dapat
mempengaruhi pertumbuhan fitoplankton.
Berdasarkan uraian diatas maka perlu dilakukan penelitian tentang pengaruh
bibit inokulum yang berbeda terhadap pertumbuhan Nitzschia sp. pada kultur
outdoor.
1.2 Tujuan Penelitian
Adapun tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui kepadatan bibit
inokulum yang optimal terhadap pertumbuhan Nizstchia sp. pada kultur outdoor.
1.3 Manfaat Penelitian
Hasil penelitian ini diharapkan dapat bermanfaat bagi penulis dan dapat
diaplikasikan dalam kegiatan budidaya laut, disamping itu dapat digunakan sebagai
bahan referensi bagi penelitian selanjutnya.
II.TINJAUAN PUSTAKA
1.1 Klasifikasi dan Morfologi Nitzschia sp.
Berikut adalah taksonomi dari Nitzschia sp.
Kingdom : Plantae
Phylum : Bacillariophyta
Sub phylum : Diatomeae
Class : Bacillariales
Order : Bacillariophyceae
Family : Bacillariaceae
Genus : Nitzschia
Species : Nitzschia sp. (Hasle, 1972 dalam Tomas, 1997).
Gambar 1. Nitzschia sp. (sumber : Dokumentasi Pribadi)
Diatom mudah dibedakan dari dinoflagelata karena diatom hidup dalam suatu
kotak gelas yang unik dan tidak memiliki alat – alat gerak. Kotak ini terdiri dari dua
bagian yang dinamakan katup. Bagian hidup diatom terdapat dalam kotak ini. Kotak
terbuat dari silikon dioksida, yaitu bahan utama pembuat gelas, berhiaskan lubang –
lubang besar kecil dengan pola – pola yang khas menurut spesies diatom (Nybakken,
1992).
Diatom merupakan organisme bersel tunggal dan banyak diantara jenis – jenis
diatom membentuk rangkaian berupaka koloni. Diatom juga disebut sebagai
ganggang kersik, dimana dinding selnya mengandung silikat (SiO2) (Astuti dkk,
2012). Diatom memiliki ciri khas yaitu dinding selnya terdiri dari epitheca (dinding
sel bagian atas) dan hipotheca (dinding sel bagian bawah) yang saling menutupi pada
masing – masing tepinya (Tomas, 1997). Ordo pennales berbentuk lonjong,
memanjang seperti gada, seperti perahu, atau seperti ketupat. Dinding selnya
mengandung pasir silikat (SiO2). Oleh karena itu sering dinamakan sebagai ganggang
kersik atau ganggang kelikir (Mudjiman, 2004).
2.2 Habitat dan Penyebaran
Diatom merupakan produsen primer yang terbanyak. Mereka terdapat di
semua bagian lautan, tetapi teramat melimpah di daerah permukaan dan lintang
tinggi, dimana terdapat air dingin yang penuh zat hara (Romimohtarto dan
Juwana,1999).
Alga intertidal memerlukan cahaya dengan panjang gelombang terpanjang
(merah) yang diserap oleh air dengan cepat, dan cenderung banyak ditemukan di
daerah intertidal yang lebih tinggi. Alga intertidal utama di bagi ke dalam 3 kelompok
yaitu merah, cokelat, dan hijau (Nybakken, 1992).
Pergerakan dan kecepatan arus yang berbeda arah menyebabkan perubahan
fluktuasi kelimpahan diatom. Arus akan membawa diatom yang akan terdistribusi
dan dapat menumpuk pada suatu tempat tertentu (Astuti dkk, 2012).
2.3 Reproduksi
Fitoplankton anggota ordo pennales berkembang biak dengan pembelahan
sel. Sebuah sel induk akan terbelah menjadi dua sel anak. Salah satu sel anak akan
mendapatkan bagian tutup kotak dan sel anak yang satunya lagi mendapatkan bagian
dasar kotak (Mudjiman, 2004).
Pada proses reproduksi, tiap diatom membelah dirinya menjadi dua. Satu
belahan dari bagian hidup diatom akan menempati katup atas (epiteka). Belahan yang
lain menempati katup bawah (hipoteka). Kemudian setiap belahan akan membentuk
suatu katup atas atau katup bawah baru. Karena katup – katup baru ini disekresi dari
dalam katup yang lama, maka seraya proses ini berlangsung melalui beberapa
generasi, ukuran diatom akan mengecil. Dengan demikian ukuran individu – individu
dari spesies yang sama tetapi dari generasi yang berlainan akan berbeda. Tetapi
proses reduksi ukuran ini terbatas sampai suatu generasi tertentu. Bila generasi ini
telah tercapai, diatom akan meninggalkan kedua katupnya dan terbentuklah apa yang
dinamakan oksosspora (Nybakken, 1992).
Seperti halnya dengan diatom lainnya Nitzschia sp. berkembangbiak dengan
proses sporulasi. Silikat sangat penting berperan dalam pembelah sel dan dipakai
sebagai untuk proses metabolisme (Thomas, 1997).
Gambar 2. Siklus hidup Nitzschia sp. (sumber : After Hasley dan Syversen, 1997
dalam Graham dan Wilcox, 2000)
Pertumbuhan plankton dibedakan dalam empat fase, yaitu fase persiapan
petumbuhan, fase pertumbuhan, fase tetap, dan fase kematian. Untuk mendapatkan
kualitas bibit yang baik, sebaiknya bibit diambil dari akhir fase pertumbuhan
(Priyambodo dan Wahyuningsih, 2000).
Y
X
Keterangan
Y = Kepadatan sel
X = Waktu pertumbuhan
1 = Fase istirahat
2 = Fase eksponensial
3 = Fase stasioner
4 = Fase kematian
Gambar 3. Fase pertumbuhan fitoplankton (sumber : Priyambodo dan Wahyuningsih,
2000)
2.4 Kandungan Gizi
Pakan alami seperti Nitzschia sp. merupakan pakan alami yang sangat cocok
untuk larva, terutama non ikan seperti abalon, kerang mutiara, teripang, dan udang
karena mengandung nilai gizi yang tinggi (Kurniastuti, 1992 ; Kurniawati, 2007
dalam Syaputra, 2013).
Nitzschia sp. mengandung protein 33%, lemak 21%, dan karbohidrat 28%.
Lipid berfungsi sebagai sumber energi cadangan apabila sel kekurangan karbohidrat
sebagai sumber energi utama. Walaupun sedikit kandungan dari total lipid, namun
salah satu penelitian Salah satu cara untuk meningkatkan kandungan lipid pada
Nitzschia sp. adalah dengan memanipulasi faktor lingkungan, salah satunya adalah
dengan perlakuan salinitas dalam kultur mikroalga (Widyaningsih dkk, 2011).
Berikut ini adalah kandungan gizi dari Nitzschia sp. menurut Ben Amotz
(1984) ; Isnasetyo (1992) ; Kurniawati (2007) dalam Syaputra (2013)
Tabel 1. Kandungan gizi Nitzschia sp.
No Jenis nutrisi Komposisi (%)
1 Karbohidrat 28
2 Protein 33
3 Lemak 21
4 Abu 31
5 Zat tidak diketahui 18
2.5 Kualitas Air
Menurut Efendi (2003) dalam Astuti dkk (2012) bahwa pH 7 – 8,5
dibutuhkan bagi kehidupan fitoplankton. Kisaran suhu 25 – 30oC merupakan suhu
yang sesuai bagi kehidupan Fitoplankton (Inasetyo dan Kurniastuty, 1995 dalam
Astuti dkk, 2012). Salinitas merupakan salah satu sifat kimia air yang secara langsung
maupun tidak langsung dapat mempengaruhi pertumbuhan dan kehidupan organisme
air. Nitzschia sp. dapat tumbuh pada salinitas antara 0-35 ppt dan tumbuh optimal
pada salinitas 20-25 ppt (Sudjiharno, 2002 dalam Widyaningsih dkk, 2011).
2.6 Media KW 21
KW 21 adalah media kultur produksi Jepang berbentuk cairan yang terdiri
dari beberapa unsur dan senyawa kimia yang dikemas dalam botol ukuran 1 liter.
Dalam 1 liter KW 21 mengandung unsur dan senyawa- senyawa kimia yaitu nitrogen
49 gram/liter, buffer phospat 4 gram/liter, boric acid, manganese, cobalt, zink,
EDTA, amino acid complex, dan vitamin mix (B1, B12, biotin dan lain - lain) (Ali,
2009).
2.6.1 Nitrogen (N)
Nitrogen terdapat dalam beberapa keadaan di laut. Yang terbanyak terdapat
dalam bentuk nitrogen molekuler (N2) yang berlipat ganda jumlahnya daripada nitrit
(NO2) atau nitrat (NO3). Nitrogen memegang peranan kritis dalam daur organik
dalam menghasilkan asam – asam amino yang membuat protein (Romimohtarto dan
Juana, 1999).
2.6.2 Phosphate (P)
Fosfor terdapat di laut dalam berbagai keadaan. Sebagian terdapat dalam
senyawa organik seperti protein dan gula, sebagian dalam butiran – butiran kalsium
fosfat (CaPO4) dan besi fosfat (FePO4) anorganik, dan sebagian terlarut sebagai fosfat
anorganik. Fosfor merupakan bahan dasar pembentukan asam nukleat (Romimohtarto
dan Juana, 1999).
2.6.3 Magnesium (Mg)
Unsur magnesium merupakan kation sel utama dan bahan dasar klorofil.
Kation sel utama, kofaktor anorganik banyak reaksi enzimatik berfungsi di dalam
penyatuan substrat dan enzim (Graham dan Wilcox, 2000).
2.6.4 Boric Acid (Asam Borat)
Asam borat berfungsi sebagai transportasi karbohidrat dalam tubuh, berperan
dalam pembentukan sel, sebagai anti mikroba, sebagai anti herbivora, dan fungsi
allelopathik (Graham dan Wilcox, 2000).
2.6.5 Cobalt (Co)
Cobalt merupakan zat yang terdapat dalam jumlah terbatas di laut dan
termasuk unsur esensial untuk proses kehidupan. Unsur hara cobalt sangat
dibutuhkan oleh organisme dalam memfiksasi nitrogen atau mengikat nitrogen
(Nybakken, 1992).
2.6.6 Zink (Zn)
Unsur zink (Zn) berfungsi sebagai enzim untuk melarutkan carbon dalam air,
enzim untuk merubah Cu/Zn superoksida, enzim dehidrogenase alkohol, dan enzim
dehidrogenase glutamic (Graham dan Wilcox, 2000).
2.6.7 EDTA
Unsur EDTA berfungsi untuk menahan beberapa logam dalam larutan
sedemikian rupa sehingga dapat dipastikan sampai ke sel dengan mengkomplekskan
ion – ion kalsium plasma (Rifai, 2002).
2.6.8 Amino Acid Complex dan Vitamin
Asam amino merupakan senyawa – senyawa organic yang mengandung
gugusan amino (NH2) dan karboksil (COOH) dan merupakan senyawa dasar
pembentukan protein. Vitamin adalah sekumpulan senyawa organik yang dibutuhkan
dalam jumlah sedikit untuk metabolisme dan pertumbuhan mahluk hidup, berfungsi
sebagai koenzim atau komponen koenzim (Rifai, 2002).
III.METODOLOGI
3.1 Waktu dan Tempat
Penelitian ini dilakukan selama sepuluh hari pada bulan Februari 2018 yang
bertempat di Laboratorium pribadi Desa Sandik, Kecamatan Batulayar, Kabupaten
Lombok Barat, Propinsi NTB.
3.2 Alat dan Bahan
Adapun alat dan bahan yang digunakan pada penelitian ini dapat dilihat pada
tabel 2.
Tabel 2. Alat dan Bahan Penelitian
No Alat dan Bahan Fungsi
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14 15
Wadah kultur 3500 ml
Plate plastik
1,5 cm x 1,5 cm
Selang dan batu aerasi
Saringan berukuran 10 µm dan 45
µm
Mikroskop binokuler
Haemocytometer
Pipet transfer
Pipet Pasteur
Hand counter
Lampu neon
Lux meter
Cover glass
Lampu Bunsen
pH paper Refraktometer
Untuk tempat memelihara fitoplankton
Untuk sampling fitoplankton
Untuk pengaduk tetap media kultur
Untuk menyaring air laut
Untuk mengamati kepadatan fitoplankton
Untuk menghitung kepadatan populasi
Untuk mentransfer larutan Na2SiO3 ke
media
Untuk pipet transfer saat pengamatan
Untuk menghitung kepadatan sel populasi
fitoplankton secara manual
Untuk sumber cahaya pada malam
hari(198 – 350 Lux)
Untuk mengukur intensitas cahaya
Untuk penutup preparat dan
haemocytometer
Untuk sterilisasi pipet saat pengamatan
Untuk mengukur pH air Untuk mengukur salinitas
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
Thermometer
Gelas ukur
Wadah plastik ukuran 10 ml
Blower
Air laut steril
Nitzschia sp.
Alkohol 96%
Alkohol 5 %
Aquades
KW 21
Larutan Na2SiO3
Untuk mengukur suhu
Untuk mengukur volume air laut dan
media
Untuk tempat pengenceran plankton yang
menempel pada plate plastik
Untuk menyuplai udara ke dalam wadah
Untuk media kultur fitoplankton
Untuk bibit inokulum
Untuk sterilisasi saat pengamatan
Untuk melepaskan sel fitoplankton yang
menempel pada plate plastik
Untuk membersihkan alat pengamatan
Untuk media kultur
Untuk sumber silikat
3.3 Metode Penelitian
Metode yang dipakai dalam penelitian ini adalah metode Eksperimen, yaitu
metode penelitian dengan mengadakan serangkaian kegiatan percobaan atau beberapa
unit percobaan untuk melihat suatu hasil yang dapat ditunjukkan kedudukan atau
hubungan klausal antara variabel-variabel yang diamati atau diselidiki (Achmadi,
1993).
3.4. Prosedur Penelitian
3.4.1 Rancangan Penelitian
Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL). RAL
dipergunakan untuk merancang/menata dan menganalisis data suatu percobaan
dimana faktor lingkungan, yaitu segala sesuatu di luar faktor yang dicobakan dapat
dikendalikan dan diseragamkan (Yitnosumarto, 1993). Penelitian ini menggunakan
lima perlakuan dan tiga ulangan dengan kombinasi yang berbeda :
A = 250.000 sel/ml
B = 500.000 sel/ml
C = 750.000 sel/ml
D = 1.000.000 sel/ml
E = 1.250.000 sel/ml
Sistem pengacakan yang digunakan pada penelitian ini yaitu dengan sistem
undi, dimana setiap perlakuan dan ulangan posisinya tergantung dari undian atau
kertas yang diambil secara acak. Pada kertas yang digunakan dituliskan perlakuan
dan ulangannya. Adapun hasil pengundian dapat dilihat pada gambar 2.
Gambar 4. Tata letak wadah penelitian
3.4.2 Persiapan Penelitian
3.4.2.1 Persiapan Laboratorium
Ruang outdoor kultur fitoplankton harus dilengkapi dengan instalasi air,
blower sebagai sumber udara, lampu neon dengan intensitas cahaya antara 198 - 350
luks.
3.4.2.2 Sterilisasi Alat
Alat-alat yang dipakai pada waktu kultur terlebih dahulu dicuci dengan
deterjen dan kemudian dibilas dengan air tawar sampai bersih. Untuk peralatan yang
terbuat dari pyrex, kaca, dan saringan (plankton net) dilakukan dengan sterilisasi
basah yaitu dengan cara direbus dengan air panas (suhu 100 oC) selama 10 menit.
Untuk peralatan yang terbuat dari polytiline dan plastik seperti, wadah kultur,
konektor aerasi, slang aerasi dan batu aerasi sterilisasi dilakukan dengan cara
C1 E2
E1 A2
B1 D3 E3
C2
A1
A3
B3
D2 B2
D1
C3
direndam dengan air panas (suhu 100 oC) beberapa saat. Pembilasan atau perendaman
dilakukan pada saat peralatan tersebut akan di pakai.
3.4.2.3 Sterilisasi Bahan
Air laut yang akan digunakan sebagai media kultur disterilisasi melalui
beberapa tahap, yaitu, air laut yang di ambil dari bak penampung di saring dengan
penyaring berukuran 45 µm. Kemudian air laut direbus sampai suhu 100 oC atau
sampai mendidih. Setelah dingin air laut disaring menggunakan penyaring berukuran
10 µm. Setelah itu air laut tersebut siap untuk digunakan.
3.4.2.4 Persiapan Wadah Percobaan dan Pemberian Media Kultur
Wadah percobaan dibersihkan dengan air tawar, setelah kering wadah diisi
dengan air laut steril sebanyak 2,5 liter dan diberi aerasi. Kemudian air laut diberi
media kultur (KW 21) sebanyak 2,5 ml (1 ml/L) dengan cara dilarutkan secara
perlahan-lahan sampai tercampur merata (homogen) dan ditambah 0,25 ml Na2SiO3
(0,1 ml/L). Kemudian plate plastik diletakan pada posisi vertikal dan secara acak
pada dasar wadah. Untuk pencahayaan di atas wadah kultur digantung lampu neon
dengan intensitas cahaya antara 198 – 350 lux. Menurut Ali dan Madisaeni (2011)
Nitzschia sp. memiliki rentang intensitas cahaya antara 85 – 400 lux.
3.4.2.5 Penebaran Bibit Inokulum
Pada penelitiaa ini, kepadatan bibit inokulum (starter) yang dipakai adalah
250.000 sel/ml, 500.000 sel/ml, 750.000 sel/ml, 1.000.000 sel/ml, dan 1.250.000
sel/ml. Bibit Nitzschia sp. ditebarkan secara merata pada permukaan bak percobaan
sedangkan untuk mengetahui jumlah sel inokulum yang akan dijadikan bibit dihitung
dengan menggunakan rumus seperti berikut:
Dimana :
N1 = Jumlah bibit (inokulum)
N2 = Jumlah per ml yang diharapkan
V1 = Volume fitoplankton yang diperlukan untuk inokulasi
V2 = Volume media kultur (Djajirah, 1995).
3.4.2.6 Cara Pengambilan Sampel
Untuk menghitung Nitzschia sp. yang menempel digunakan plate plastik
dengan ukuran 1,5 cm x 1,5 cm yang diletakan secara vertikal pada dasar wadah
kultur. Pengambilan sampel Nitzschia sp. dilakukan dengan cara semua permukaan
plate plastik di gerus menggunakan alkohol 5% sebanyak 4,5 ml dengan memakai
pipet pasteur dan ditampung dalam wadah berukuran 10 ml. Sebelum dilakuakn
pengamatan dan perhitungan kepadatan sel Nitzschia sp. sampel harus diaduk sampai
merata (homogen). Sampling Nitzschia sp. yang menempel dan dilakukan setiap hari.
3.4.2.7 Pengukuran Parameter Kualitas Air
Parameter kualitas di ukur setiap hari, adapun paremeter kualitas air yang
diukur yaitu suhu, salinitas, dan pH. Pengukuran suhu menggunakan thermometer,
pengukuran pH menggunakan pH paper, dan pengukuran salinitas menggunakan
refraktometer. Pengukuran dilakukan dengan mengambil sampel air dalam 15 wadah
kultur untuk pengukuran suhu, salinitas, dan pH.
3.5 Parameter
Parameter yang diamati dalam percobaan ini adalah laju pertumbuhan relatif
(RGR) dan kepadatan populasi sel Nitzschia sp. yang menempel pada plate plastik
dengan luas 4,5 cm2 di dalam wadah percobaan. Parameter pendukung pertumbuhan
Nitszchia sp. yaitu suhu, pH, dan salinitas.
3.5.1. Menghitung Laju Pertumbuhan Relatif (RGR)
Untuk menghitung laju pertumbuhan relatif (RGR) dihitung menggunakan
rumus :
RGR = (
)
Dimana :
RGR = Laju Pertumbuhan Relatif (%)
C0 = Kepadatan Awal sel
Ct = Kepadatan Akhir sel
3.5.2. Menghitung Kepadatan Populasi Sel Nitzschia sp.
Untuk mengetahui kepadatan sel Nitzschia sp. dihitung dengan menggunakan
haemocytometer dan handcounter dan diamati dengan mikroskop pada perbesaran
300 kali. Kepadatan populasi sel Nitzschia sp. dihitung dengan menggunakan rumus :
Dimana :
M = Jumlah sel yang terhitung
N = Jumlah hasil cacahan dalam 25 kotak
104= Kostanta
3.6 Analisis Data
Analisis data hasil penelitian dianalisis secara statistik menggunakan Analysis
of Variance (ANOVA) signifikansi 5 % (0,05). Apabila terdapat pengaruh yang
berbeda nyata, maka dilakukan uji lanjut dengan uji beda nyata terkecil (BNT).
BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Laju Pertumbuhan Relatif (RGR)
Laju pertumbuhan relatif adalah penambahan jumlah populasi fitoplankton
per satuan waktu (hari) dibandingkan dengan kepadatan populasi hari ke nol
(Mukminah, 2010). Dalam penelitian ini, penghitungan laju pertumbuhan relatif
fitoplankton Nitzschia sp. dilakukan dengan menghitung kepadatan populasi sel awal
dan kepadatan populasi sel tertinggi. Perlakuan P1 (250.000 sel/ml) menghasilkan
laju pertumbuhan relatif tertinggi adalah 1.150 % kemudian perlakuan P2 (500.000
sel/ml) adalah 598 %, perlakuan P3 (750.000 sel/ml) adalah 428 %, perlakuan P4
(1.000.000 sel/ml) adalah 241 %, dan perlakuan P5 (1.250.000 sel/ml) adalah 83 %.
Penelitian ini menunjukkan bahwa semakin tinggi bibit inokulum
menghasilkan laju pertumbuhan relatif menurun. Perbedaan laju pertumbuhan relatif
pada masing – masing perlakuan disebabkan karena perbedaan bibit inokulum pada
awal inokulasi. Menurut Subakti (2013), perbedaan kepadatan bibit inokulum akan
menyebabkan proses adaptasi yang berbeda terhadap lingkungan seperti nutrisi, suhu,
pH, salinitas, dan intensitas cahaya sehingga dapat mempengaruhi pertumbuhan
fitoplankton.
Perlakuan P1 (250.000 sel/ml) mempunyai laju pertumbuhan relatif yang
tertinggi adalah 1.150 % disebabkan karena proses adaptasi yang cepat dengan
kondisi lingkungan dan nutrisi yang tersedia pada media kultur. Pernyataan ini
diperkuat oleh Mukminah (2010), proses adaptasi fitoplankton pada kondisi
lingkungan dan nutrisi akan mempengaruhi tinggi atau rendahnya laju pertumbuhan
relatif. Perlakuan P5 mempunyai laju pertumbuhan yang paling rendah adalah 83%.
Berdasarkan hasil perhitungan statistik sumber keragaman (ANOVA)
(Lampiran 2) menunjukkan bahwa pengaruh kepadatan bibit inokulum yang berbeda
memberikan hasil yang berbeda nyata (signifikan) terhadap laju pertumbuhan relatif
Nitzschia sp. pada kultur outdoor dengan taraf nyata 5%.
Gambar 5. Grafik Uji Lanjut BNT Laju Pertumbuhan Relatif (RGR)
Hasil uji lanjut BNT taraf 5 % (Lampiran 4) menunjukan hasil perlakuan P1
(250.000 sel/ml) berbeda nyata dengan perlakuan P2 (500.000 sel/ml), perlakuan P3
(750.000 sel/ml), perlakuan P4 (1.000.000 sel/ml), dan perlakuan P5 (1,250.000
sel/ml).
4.2. Kepadatan Penempelan Nitzschia sp.
Berdasarkan hasil penelitian yang berjudul pengaruh bibit inokulum yang
berbeda terhadap pertumbuhan Nitzschia sp. pada kultur outdoor diperoleh hasil
penempelan Nitzschia sp. pada plate antara lain kepadatan bibit inokulum 250.000
sel/ml adalah 3.126.667 sel/cm2, perlakuan dengan kepadatan bibit inokulum 500.000
sel/ml adalah 3.490.000 sel/cm2, perlakuan dengan kepadatan bibit inokulum 750.000
sel/ml adalah 3.966.667 sel/cm2, perlakuan dengan kepadatan bibit inokulum
1.000.000 sel/ml adalah 3.416.667 sel/cm2, dan perlakuan dengan kepadatan bibit
inokulum 1.250.000 sel/ml adalah 2.290.000 sel/cm2. Hasil perhitungan kepadatan
populasi sel Nitzschia sp. dapat dilihat pada Tabel 4.
a
b
c
d
e
0
200
400
600
800
1000
1200
1400
P1= 250.000 P2=500.000 P3=750.000 P4 = 1.000.000 P5 = 1.250.000
Laju
Pertu
mb
uh
an
Rela
tif
(%)
Perlakuan (sel/ml)
Tabel 4. Hasil Perhitungan Penempelan Populasi Sel Nitzschia sp.
Pengamatan
(hari ke - )
Perlakuan (N x 105sel/cm
2)
P1 P2 P3 P4 P5
1 3,93±2,26 11,53±2,25 9,43±3,86 12,60±1,68 9,33±5,19
2 15,73±3,25 15,60±1,51 20,83±4,17 15,46±3,12 12,63±5,79
3 18,53±2,14 17,06±1,79 22,83±4,25 16,60±3,17 13,93±4,69
4 21,30±2,33 24,90±4,90 27,83±5,50 26,23±5,35 16,76±1,64
5 14,53±0,41 27,63±4,97 30,66±5,50 21,63±2,91 17,56±6,56
6 24,96±3,25 30,30±5,00 33,03±6,00 27,90±7,48 17,60±5,30
7 25,83±2,92 30,70±4,32 34,16±5,34 29,00±6,92 19,36±6,20
8 29,00±2,64 33,16±4,36 36,83±5,05 31,63±6,31 21,20±5,40
9 31,26±2,48 34,90±4,48 39,66±5,79 34,16±5,92 22,90±6,51
Kepadatan penempelan populasi sel Nitzschia sp. mulai dari hari pertama
kultur (setelah inokulasi) sampai hari kesembilan menunjukkan penambahan jumlah
kepadatan populasi sel. Hal ini menunjukkan bahwa fitoplankton Nitzschia sp. mulai
tumbuh dalam media kultur KW 21. Fitoplankton Nitzschia sp. mulai memanfaatkan
nutrisi dalam media KW 21 untuk pertumbuhannya. Grafik penempelan populasi sel
Nitzschia sp. dapat dilihat pada Gambar 5.
Gambar 6. Grafik Penempelan Populasi Sel Nitzschia sp.
Keterangan P1= 250.000 sel/ml P2=500.000 sel/ml P3=750.000 sel/ml P4 =
1.000.000 sel/ml P5 = 1.250.000 sel/ml
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Kep
ad
ata
n (
N x
10
5 s
el/c
m2)
Penempelan (Hari)
P1
P2
P3
P4
P5
Berdasarkan grafik penempelan populasi sel Nitzschia sp. (Gambar 5)
menunjukkan bahwa fitoplankton Nitzschia sp. memiliki fase adaptasi yang berbeda
pada setiap perlakuan. Fase adaptasi disebut juga fase istirahat. Pada fase ini, sel
diatom beradaptasi dengan medium dan lingkungan kulturnya (suhu, salinitas, dan
pH). Diatom sudah bermetabolisme sehingga ukuran selnya meningkat. Namun
diatom belum menunjukkan pertumbuhan populasi (kenaikan jumlah sel) yang nyata,
karena masih dalam proses adaptasi. Dalam adaptasi ini, diatom sudah mulai
memanfaatkan nutrien yang ada, meskipun belum optimum, sehingga beberapa enzim
yang terkait pembelahan selnya juga belum tersintesis dengan optimal (Armanda,
2013). Perlakuan P1 (250.000 sel/ml) dan P3 (750.000 sel/ml) memiliki waktu
adaptai satu hari, perlakuan P2 (500.000 sel/ml) dan P4 (1.000.000 sel/ml) memiliki
waktu adapatasi tiga hari hari, dan perlakuan P5 (1.250.000 sel/ml) memiliki waktu
adaptasi sembilan hari.
Fase selanjutnya dari pertumbuhan Nitzschia sp. adalah fase ekspnensial. Pada
fase ini, jumlah sel mengalami peningkatan secara cepat. Puncak pertumbuhan
populasi diatom terjadi pada fase ini. Fase ini adalah bukti sel telah berhasil
beradaptasi dan optimal dalam pemanfaatan nutriennya (Armanda, 2013). Masing –
masing perlakuan menujukkan waktu yang berbeda dalam memasuki fase
eksponensial. Perlakuan P1 (250.000 sel/ml) dan P3 (750.000 sel/ml), memasuki fase
eksponensial pada hari kedua. Perlakuan P2 (500.000 sel/cm) dan P4 (1.000.000
sel/ml) memasuki fase eksponensial pada hari keempat, dan perlakuan P5 (1.250.000
sel/ml) tidak terlihat fase eksponensial.
Fase stationer dan kematian tidak dapat terlihat pada penelitian ini karena
pemeliharaan kultur terbatas sampai sembilan hari. Pada hari kesepuluh,
penghitungan kepadatan populasi sel Nitzschia sp. tidak dapat dilakukan karena
populasi sel Nitschia sp. sudah sangat padat. Hal ini disebabkan karena Nitzschia sp.
yang bersifat bentik. Menurut Ilhami dkk (2015), Nitzschia sp. tergolong dalam
diatom yang bersifat bentik dan tidak memiliki alat gerak.
Gambar 7. Populasi sel Nitzschia sp. yang sangat padat
Penurunan kepadatan populasi sel Nitzschia sp. yang tersaji pada Gambar 5
dan Tabel 4 terjadi pada hari kelima pada perlakuan P1(250.000 sel/ml) dan P4
(1.000.000 sel/ml). Penurunan kepadatan populasi sel Nitzschia sp. diduga
disebabkan karena penurunan suhu media kultur. Menurut Simanjuntak (2009),
penurunan suhu dapat menyebabkan berkurangnya kepadatan populasi plankton
dikarenakan terjadi penurunan reaksi kimia sehingga laju fotosintesis menurun.
Penurunan suhu dapat terjadi karena kultur fitoplankton yang bersifat outdoor
sehingga perubahan faktor lingkungan seperti suhu mengikuti perubahan lingkungan
(Ali dan Madisaeni, 2011).
4.3. Parameter Kualitas Air
Parameter kualitas air yang diamati pada penelitian pengaruh bibit inokulum
yang berbeda terhadap pertumbuhan Nitzschia sp. pada kultur outdoor adalah suhu,
pH, dan salinitas.
4.3.1. Salinitas
Salinitas merupakan konsentrasi garam terlarut pada satuan air dan dijadikan
sebagai salah satu faktor pembatas bagi pertumbuhan dan perkembangan fitoplankton
(Ilhami dkk, 2015). Berdasarkan hasil pengukuran salinitas diperoleh kiasaran
salinitas pada masing - masing perlakuan selama kultur Nitzschia sp. berkisar antara
32 – 35 ppt. Menurut Syaputra (2010), Nitzschia sp. memiliki kisaran salinitas yang
cukup luas yaitu 15 – 35 ppt sedangkan salinitas optimal untuk pertumbuhanya
adalah 25 – 35 ppt.
4.3.2. Suhu
Kenaikan suhu dapat menurunkan kelarutan oksigen dan meningkatkan
toksisitas polutan. Penurunan suhu dapat mengakibatkan penurunan kepadatan
fitoplankton krena penurunan reaksi kimia dan fotosintesis (Simanjuntak, 2009).
Kisaran suhu 25 – 30 oC merupakan suhu yang sesuai bagi kehidupan Fitoplankton
(Inansetyo dan Kurniastuty, 1995). Berdasarkan hasil pengukuran suhu diperoleh
kisaran suhu pada masing – masing perlakuan selama kultur Nitzschia sp. berkisar
antara 28 – 31 oC.
4.3.3. Derajat Keasaman (pH)
Derajat keasaman (pH) dapat mempengaruhi metabolisme dan pertumbuhan
fitoplankton dalam beberapa hal, antara lain mengubah keseimbangan dari karbon
organik, mengubah ketersediaan nutrient dan dapat mempengaruhi fisiologis sel
(Padang, 2014). Berdasarkan hasil pengukuran pH diperoleh kiasaran pH pada
masing - masing perlakuan selama kultur Nitzschia sp. berkisar antara 7 - 9. Menurut
Syaputra (2010), kisaran pH untuk kultur fitoplankton berkisar antara 7 – 9.
BAB V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1. Kesimpulan
Dari pembahasan tersebut diperoleh beberapa kesimpulan sebagai berikut :
1. Pengaruh bibit inokulum yang berbeda memberikan hasil yang berbeda nyata
terhadap pertumbuhan Nitzschia sp. pada kultur outdoor.
2. Perlakuan dengan kepadatan bibit inokulum 250.000 sel/ml memiliki laju
pertumbuhan relatif tertinggi adalah 1.150 % dan kepadatan penempelan sel
yang tinggi adalah 3.126.667 sel/cm2.
5.2. Saran
Disarankan untuk melakukan kultur fitoplankton Nitzschia sp. secara outdoor
menggunakan bibit inokulum dengan kepadatan bibit inokulum 250.000 sel/ml
karena memiliki laju pertumbuhan relatif tertinggi dan kepadatan penempelan yang
tinggi.
DAFTAR PUSTAKA
Achmadi, A. 1993. Metodologi Penelitian. Bumi Aksara. Jakarta.
Ali, L. 2011. Percobaan Kultur Fitoplankton (Isochrysis sp.) dalam Media Kultur KW
21 pada Kultur Skala Laboratorium. Warta Oseanografi, Vol. XXV, No.
2.
Ali, L. 2011. Percobaan Kultur Outdoor Fitoplankton (Nitzhchia sp.) Sebagai Pakan
Larva Abalon (Haliotis asinina). Warta Oseanografi, Vol. XXV, No. 2.
Arief dkk. 2009. Pengaruh Pemberian Pakan Alami dan Pakan Buatan terhadap
Pertumbuhan Benih Ikan Betutu (0xyeleotris marmorata Bleeker). Jurnal
Ilmiah Perikanan dan Kelautan. Vol. 1, No. 1
Armanda, D. T. 2013. Pertumbuhan Kultur Mikroalga Diatom Skeletonema costatum
(Greville) Cleve Isolat Jepara pada Medium f/2 dan Medium Conway.
Jurnal Bioma. Vol. 2, No. 1
Astuti dkk. 2012. Kelimpahan Beberapa Jenis Mikroalga Diatom di Perairan Pulau
Gumilamo Magaliho Halmahera Utara. Jurnal Ilmu dan Teknologi
Kelautan Tropis. Vol. 4, No. 1.
Dody, S. 2013. Sumberdaya Siput Gonggong Kepulauan Bangka Belitung. Pusat
Penelitian Oseanografi Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia. Jakarta.
Graham, L, E, dan Wilcox, L, W. 2000. Algae. The IOC Scince and Communication
Centre on Harmful Algae University of Copenhagen. Copenhagen.
Ilhami dkk, 2011. Pengaruh Perbedaan Umur Panen Terhadap Kandungan Lemak
Nitzschia sp. Jurnal Biologi Tropis. Vol.15(2) : 145 – 155.
Inansetyo dan Kurniastuti, 1995. Teknik Kultur Fitoplankton dan Zooplankton.
Kanisius. Yogyakarta.
Lebau dan Robert. 2003. Diatom Cultivation and Biotechnologycally Relevant
Products. Appl Microbiol Biotechnol.Vol. 60, No. 612-623.
Mazlan dan Hashim, 2016. The Effect of Cultivation Techniques on the Growth Rate
of Marine Microalgae Species from the Coastal Waters of Kudat Sabah
Malaysia. Pertanika J. Trop. Agric. Sci. 39 (4): 495 – 505.
Mudjiman, A. 2004. Makanan Ikan. Penebar Swadaya. Jakarta.
Mukminah. 2010. Studi Pertumbuhan Tetraselmis sp. dengan Konsentrasi Media
Diatom yang Berbeda pada Skala Laboratorium. Skripsi Fakultas
Pertanian Universitas Mataram.
Nybakken, J, W. 1992. Biologi Laut Suatu Pendekatan Ekologis. Gramedia. Jakarta.
Padang, A. 2014. Pertumbuhan Fitoplankton Cocolithophote sp. di Wadah Terkontrol
dengan Kepadatan Inokulum yang Berbeda. Jurnal Ilmiah Agribisnis dan
Perikanan. Vol. 6, No. 3
Priyambodo, K dan Wahyuningsih, T. 2000. Budidaya Pakan Alami intuk Ikan.
Penebar Swadaya. Jakarta.
Rifai, M, A. 2002. Kamus Biologi. Balai Pustaka.Jakarta.
Romimohtarto., Juwana. 1999. Biologi Laut Ilmu Pengetahuan tentang Biota Laut.
Pusat Penelitian dan Pengembangan Oseanografi – LIPI. Jakarta.
Setyono, D, E. 2009a. Abalon Biologi dan Reproduksi. Ikatan Sarjana Oseanografi
Indonesia (ISOI). Jakarta.
Setyono, D, E. 2009b. Abalon Teknologi Pembenihan. Ikatan Sarjana Oseanografi
Indonesia (ISOI). Jakarta.
Simanjuntak, M. 2009. Hubungan Faktor Lingkungan Kimia Fisika terhadap
Distribusi Plankton di Perairan BelitungTimur Bangka Belitung.Jurnal
Perikanan. XI (1) : 31 – 45.
Suantika, dkk. 2008. Pengaruh Kepadatan Awal Inokulum terhadap Kualitas Kultur
Chaetoceros gracilis (Schütt) pada Sistem Batch. Institut Teknologi
Bandung.
Subakti, P, K, A. 2013. Pengaruh Intensitas Cahaya terhadap Pertumbuhan
Fitoplankton Pavlova lutheri. Skripsi Program Studi Budidaya Perairan
Universitas Mataram.
Syaputra, O, O. 2013. Pengaruh Bibit Inokulum yang Berbeda terhadap
Pertumbuhan Nitzschia sp. Skala Laboratorium di UPT. Loka
Pengembangan Bio Industri Laut Pusat Penelitian Oseanografi LIPI
Mataram Kecamatan Pemenang Kabupaten Lombok Utara. Skripsi
Fakultas Perikanan Universitas 45 Mataram.
Tomas, C, R. 1997. Identifying Marine Phytoplankton. Academic Press. Florida.
Widianingsih, dkk. 2011. Kajian Kadar Total Lipid dan Kepadatan Nitzschia sp.
yang Dikultur dengan Salinitas yang Berbeda. Jurusan Ilmu Kelautan,
Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Diponegoro.
Yitnosumarto, S. 1993. Percobaan Perancangan Analisis dan Interprestasinya. PT
Gramedia Pustaka Utama. Jakarta.
LAMPIRAN
Lampiran 1A. Hasil Perhitungan Kepadatan Populasi Sel Nitzschi sp. dengan Bibibt
Inokulum 250.000 sel/ml
No Hari pengamatan Ulangan (sel/cm2) Rata- rata
(sel/cm2) A1 A2 A3
1 Pertama 250.000 250.000 250.000 250.000
2 Kedua 310.000 220.000 650.000 393.333
3 Ketiga 1.460.000 1.940.000 1.320.000 1.573.333
4 Keempat 1.750.000 2.100.000 1.710.000 1.853.333
5 Kelima 1.990.000 2.400.000 2.000.000 2.130.000
6 Keenam 1.420.000 1.440.000 1.500.000 1.453.333
7 Ketujuh 2.170.000 2.500.000 2.820.000 2.496.667
8 Kedelapan 2.250.000 2.700.000 2.800.000 2.583.333
9 Kesembilan 2.600.000 3.000.000 3.100.000 2.900.000
10 Kesepuluh 2.850.000 3.200.000 3.330.000 3.126.667
Lampiran 1B. Hasil Perhitungan Kepadatan Populasi Sel Nitzschi sp. dengan Bibibt
Inokulum 500.000 sel/ml
No Hari pengamatan Ulangan (sel/cm2) Rata- rata
(sel/cm2) B1 B2 B3
1 Pertama 500.000 500.000 500.000 500.000
2 Kedua 1.150.000 930.000 1.380.000 1.153.333
3 Ketiga 1.610.000 1.680.000 1.390.000 1.560.000
4 Keempat 1.800.000 1.820.000 1.500.000 1.706.667
5 Kelima 2.010.000 2.990.000 2.470.000 2.490.000
6 Keenam 2.200.000 2.950.000 3.140.000 2.763.333
7 Ketujuh 2.660.000 2.830.000 3.600.000 3.030.000
8 Kedelapan 2.710.000 2.950.000 3.550.000 3.070.000
9 Kesembilan 2.950.000 3.200.000 3.800.000 3.316.667
10 Kesepuluh 3.100.000 3.390.000 3.980.000 3.490.000
Lampiran 1C. Hasil Perhitungan Kepadatan Populasi Sel Nitzschi sp. dengan Bibibt
Inokulum 750.000 sel/ml
No Hari pengamatan Ulangan (sel/cm2) Rata- rata
(sel/cm2) C1 C2 C3
1 Pertama 750.000 750.000 750.000 750.000
2 Kedua 500.000 1.120.000 1.210.000 943.333
3 Ketiga 2.240.000 1.610.000 2.400.000 2.083.333
4 Keempat 2.450.000 1.800.000 2.600.000 2.283.333
5 Kelima 2.750.000 2.250.000 3.350.000 2.783.333
6 Keenam 3.100.000 2.500.000 3.600.000 3.066.667
7 Ketujuh 3.660.000 2.610.000 3.640.000 3.303.333
8 Kedelapan 3.700.000 2.800.000 3.750.000 3.416.667
9 Kesembilan 3.950.000 3.100.000 4.000.000 3.683.333
10 Kesepuluh 4.250.000 3.300.000 4.350.000 3.966.667
Lampiran 1D. Hasil Perhitungan Kepadatan Populasi Sel Nitzschi sp. dengan Bibibt
Inokulum 1.000.000 sel/ml
No Hari pengamatan Ulangan (sel/cm2) Rata- rata
(sel/cm2) D1 D2 D3
1 Pertama 1.000.000 1.000.000 1.000.000 1.000.000
2 Kedua 1.200.000 1.450.000 1.130.000 1.260.000
3 Ketiga 1.880.000 1.500.000 1.260.000 1.546.667
4 Keempat 1.950.000 1.710.000 1.320.000 1.660.000
5 Kelima 2.100.000 3.170.000 2.600.000 2.623.333
6 Keenam 2.500.000 2.000.000 1.990.000 2.163.333
7 Ketujuh 3.650.000 2.430.000 2.290.000 2.790.000
8 Kedelapan 3.700.000 2.500.000 2.500.000 2.900.000
9 Kesembilan 3.890.000 2.850.000 2.750.000 3.163.333
10 Kesepuluh 4.100.000 3.050.000 3.100.000 3.416.667
Lampiran 1E. Hasil Perhitungan Kepadatan Populasi Sel Nitzschi sp. dengan Bibibt
Inokulum 1.250.000 sel/ml
No Hari pengamatan Ulangan (sel/cm2) Rata- rata
(sel/cm2) E1 E2 E3
1 Pertama 1.250000 1.250.000 1.250.000 1.250000
2 Kedua 820.000 1.500.000 480.000 933.333,3
3 Ketiga 1.190.000 1.760.000 840.000 1.263.333
4 Keempat 1.500.000 1.800.000 880.000 1.393.333
5 Kelima 1.650.000 1.890.000 1.490.000 1.676.667
6 Keenam
1.590.000 1.200.000 2.480.000
1.756.667
7 Ketujuh
1.280.000 1.500.000 2.500.000
1.760.000
8 Kedelapan 1.370.000 1.840.000 2.600.000 1.936.667
9 Kesembilan 1.520.000 2.010.000 2.830.000 2.120.000
10 Kesepuluh 1.720.000 2.150.000 3.000.000 2.290.000
Lampiran 2. Analisis Keragaman Pertumbuhan Relatif Nitzschia sp.
Tabel Data Pertumbuhan Relatif Nitzschia sp. pada setiap perlakuan
Perlakuan Ulangan Total
1 2 3
A 1040 1180 1232 3452
B 520 578 696 1794
C 466 340 480 1286
D 310 205 210 725
E 37 72 140 249
Total 7506
Tabel Sidik Ragam Kepadatan Tertinggi Nitzschia sp.
Sumber
Ragam
db JK KT Uji F
F hitung F tabel
Perlakuan
Acak
4
10
2.036.051,6
60.204
509.012,9
6.020,4
84,54802
3,48
Total 14 2.096.255,6
Karena F hitung = 84,54802 > F table = 3,48 maka perbedaan bibit inokulm
berpengaruh terhadap pertumbuhan relatif Nitzschia sp.
Uji lanjut BNT
Perlakuan Rata-rata Notasi
α = 5%
P1 1150,66 a
P2 598 b
P3 428,66 c
P4 241,66 d
P5 83 b e
Lampiran 3. Parameter Kualitas Air
Tabel parameter kualitas air
No Hari pengamatan Salinitas (ppt) Suhu (
oC) pH
P1 P2 P3 P4 P5 P1 P2 P3 P4 P5 P1 P2 P3 P4 P5
1 Pertama 33 32 32 33 32 31 31 31 30 31 7 7 7 7 7
2 Kedua 33 33 33 33 33 30 30 31 30 31 7 7 7 7 7
3 Ketiga 32 33 33 33 33 30 30 30 30 30 7 7 7 7 7
4 Keempat 33 33 33 33 33 29 30 30 30 30 8 7 7 7 8
5 Kelima 34 34 34 35 35 30 29 29 29 29 8 8 8 8 8
6 Keenam 35 35 35 35 35 28 28 28 28 28 8 8 8 8 8
7 Ketujuh 35 35 35 35 35 29 29 29 29 29 8 8 9 8 8
8 Kedelapan 35 35 35 35 35 30 30 30 30 30 9 9 9 9 9
9 Kesembilan 35 35 35 35 35 30 30 30 30 30 9 9 9 9 9
19 Kesepuluh 35 35 35 35 35 31 30 30 30 30 9 9 9 9 9
Lampiran 4. Foto –Foto Kegiatan
No Foto Kegiatan Keterangan
1
Sterilisasi Alat
2
Sterilisasi Bahan
3
Persiapan wadah
dan Pemberian
Media KW 21
4
Penebaran Bibit
Inokulum
5
Pengambilan
Sampel
6
Pengukuran
Parameter
Kualitas Air
7
Menghitung
Kepadatan
Fitoplankton
RIWAYAT PENULIS
La Alfian Walid, lahir pada tanggal 9 Agustus 1995, di Tulehu Kota
Ambon. Penulis merupakan anak ke dua dari empat bersaudara, dari
pasangan La Ali dan Nurhayati. Penulis menyelesaikan Pendidikan
Sekolah Dasar di SDN 1 Pemenang, NTB pada tahun 2007. Pada
tahun yang sama penulis melanjutkan Pendidikan ke SMP 1
Gunungsari, NTB dan tamat pada tahun 2010. Penulis melanjutkan Pendidikan ke
SMA 1 Gunungsari dan tamat pada tahun 2013. Pada tahun yang sama, Penulis
terdaftar sebagai mahasiswa di Program Studi Budidaya Perairan Universitas
Mataram.
