Reproduction sexuée des Embryophytes

B5

Plant feuillé de Polypode

Face inférieure d’une feuille

Sores nus Fronde

Nervure principale

Détail d’un sore

2 mm

100 µm

Déhiscence d’un sporange

100 µm

100 µm

Les spores

10 µm

Germination d’une sporeAtlas de Biologie végétale (Dunod) page 97

20 µm

Le prothalle (vue ventrale)

archégones

anthéridies

lame cordiforme chlorophyllienne

rhizoïdes

1 mm

zar : zone des archégones

cm : coussinet médian

an : anthéridies

Atlas de Biologie végétale (Dunod) page 97

B3.1b - Les anthéridies : gamétanges mâles

10 µm10 µm

10 µm

Atlas de BV (Dunod) p. 97

Spermatozoïdes flagellés et nageurs

1 µm

Atlas de Biologie végétale (Dunod) page 96

B3.1c - Les archégones : gamétanges femelles

20 µm

20 µm

col pluricellulaire

Développement du nouveau sporophyte sur le prothalle

prothalle

jeune fougère

5 mm

sporange

Plante feuillée (fougère)

Embryon àdéveloppement

immédiat

Méiospores (N)

Cellules mèresdes spores (2N)

MéioseZygote (2N)

ProthalleSpermatozoïde

Archégone

Oosphère Spermatozoïde

Anthéridie

FécondationZoïdogamie

B5.2 - Cycle de reproduction du polypode

SPOROPHYTE (2N)

DIPLOPHASE

GAMETOPHYTE (N)

HAPLOPHASE

Dissémination de l'espèce

Dispersion de l'information

génétique

Pistil ou gynécée

6 étamines formant l'androcée

Fleur de Lis

Périanthe = sépales + pétales

CT ovaire cfdiapo suivante

Formation du sac embryonnaireDans le nucelle de l’ovule, dans l’ovaire

1 mm1 carpelle

ovule

sac embryonnaire

B5.4a - L’ovule des angiospermes

0,5 mm

Cellule mère des mégaspores ou cellule sporogène : diploïde

10 µm

Méiose

10 µm

Mitoses

Stade 2 noyaux Stade 8 noyaux

100 µm

Atlas de BV tome 2 (Dunod) p.

B5.4b – Le gamétophyte femelle

100 µm

np = noyaux polaires

so = synergides + oosphère

Pistil ou gynécée

6 étamines formant l'androcée

Fleur de Lis

Périanthe = sépales + pétales

CT d'anthère

cf diapo suivante

Avant la méiose

100 µm

Atlas de BV tome 2 (Dunod) p.

100 µm

Début de méiose (prophase I)Atlas de BV tome 2 (Dunod) p.

Détail de la méiose dans l’anthère

Fin de la méiose

100 µm

Anthère mûre

1 mm

Détail de la paroi

10 µm

1 mm

B5.5 – Libération du pollen par la déhiscence des an thères

0,2 mm

De la microspore au grain de pollen

Pollinisation chez la violette (Viola odorata, Violariées)

Fleurs pétalifères allogames

CL pistil

Fleur d'Orchidéehttp://www.snv.jussieu.fr/bmedia/Pollinisation/Orch i.htm

1= Tépales 2= Pièces fertiles3= Anthère portant 2 pollinies4= Etamine stérile 5= Rostellum. 6= Labelle 7et 8 = Ovaire d'autres fleurs 9= Style + stigmate.

http://en.wikipedia.org/wiki/File:Orchis_sambicina_anatomia.jpg

Inflorescence des Poacées.Pollinisation anémogame

Épillet

Glume3 étamines avec

long filet et anthère pendante

La sauge commune. Pollinisation entomogamehttp://www.snv.jussieu.fr/bmedia/Pollinisation/sauge1.htm

Arum maculatum (Aracées)

spadice

fleurs stériles

fleurs mâles

fleurs femelles

Inflorescence

Fleur de l’Ophrys abeille

http://pedagogie.ac-amiens.fr/svt/spip/article-imprim.php3?id_article=203

B5.6 - Pollinisation entomogame chez la sauge

1 cm

Germination des tubes polliniques sur le stigmate

1 cm 0,1 mm

Détail d’un tube pollinique

0,1 mm

Styles compacts

Linaire Tomate

Styles creux

Entrée du tube pollinique par le micropyle

La double fécondation

B5.8 Développement embryonnaire de la capselle

B5.8b Développement embryonnaire de la capselle

hypocotyle

La graine de Ricin (Vue externe)

5 mm

Chalaze

Raphé

Tégument externe

Hile

Caroncule (recouvrant le micropyle)

Coupes longitudinales d'une graine de Ricin (après suppression du tégument externe)

1 cm

Tégument interne

Albumen

Cotylédon foliacé

Axe embryonnaire

Tégument interne

Albumen

Cotylédon foliacé

Gemmule

Tigelle

Radicule

Axe embryonnaire

Em

bryon

Coupe sagittale

Séparation suivant le plan intercotylédonaire

Coupe longitudinale sagittale d'une graine de Haricot (téguments ôtés)

Cicatrice du cotylédon enlevé

Gemmule

Hypocotyle

Radicule

Axe

embryonnaire

5 mm

Cotylédon tubérisé

Cotylédon tubérisé

Transformation de l'ovaire de Capselle en fruit : croisssance

Fruits charnus

Baie Drupe

Épicarpe

Mésocarpe

Endocarpe

Fruits secs

Déhiscent

Indéhiscent

B5-9. Modifications métaboliques accompagnant la maturation des fruits charnus.

C2H4 rejeté µl.kg-1.h-1

20

40

60

80

CO2 rejeté ml.kg-1.h-1

0

6 93 jours

CO2

C2H4

temps

20

40

60

50

amidon

glucides réducteurs

0

6 93 jours

temps

a - Rejets gazeux lors de la maturation de bananes b - Teneur en glucides lors de la maturation de bananes

30

10

% massique

0 0

B5-9. Modifications métaboliques accompagnant la maturation des fruits charnus.

2

4

6

8

Teneur en malate (% masse fraîche)

0

10 155 jours

temps

c - Teneur en acide organique dans des disques de pommes conservés à 12 °C

0

10

12

2

4

6

8

0

10 155 jours

temps

d - Pigments et constituants des parois lors de la maturation des poires .

0

10

(u.a.)

composés pectiques

chlorophylles

Autochorie

Ecballium (baie déhiscente)Balsamine (capsule)

Anémochorie

Samares

Erable

Pissenlit

Akène à aigrette Inflorescence ailée

Tilleul

Zoochorie

Akène crochus de la Benoîte

Ectozoochorie Endozoochorie

Tous les fruits charnus

graine àdéveloppement

différéÉtaminesCarpelles

Fleur

Plante feuillée

AlbumenEmbryon OvuleSacs

polliniques

Cellules mères des spores (2N)

MÉIOSEDOUBLE FÉCONDATION

SIPHONOGAMIE

Macrospore (N)

Zygote accessoire (3N)

Zygote principal (2N)

Sac embryonnaire

Pollen

Mitoses Mitose

Mitosegamétogénèse

GerminationDeveloppement

B5.7 - Cycle de reproduction d’une angiosperme

Microspores (N)

Dissémination de l'espèce

Dispersion de l'information

génétique

GAMETOPHYTES (N) . HAPLOPHASE

SPOROPHYTE (2N)

DIPLOPHASE

Gamètes mâles

Gamètes femelles