Un nuevo escorpión del género Ananteris Thorell, 1891 ... 65-81.pdf · 1975). La clasificación y nomenclatura del esternón siguen a Soleglad y Fet (2003). Resultados Ananteris

Resumen. Se describe Ananteris riomachensis sp. nov. del piedemonte norte de la sierra de Perijá,Estado Zulia, en el noroccidente de Venezuela. La nueva especie representa el primer registro delgénero para este sistema montañoso, e incrementa a 31 el número de especies conocidas para estetaxón en el país. Se incluye información sobre variación morfológica y algunos aspectos de la historianatural de esta nueva especie; así como también, la lista de chequeo actualizada de las especiespertenecientes al género Ananteris.

Palabras clave. Ananteris riomachensis sp. nov. Buthidae. Scorpiones. Taxonomía. Venezuela.

A new scorpion of the genus Ananteris Thorell, 1891 (Scorpiones, Buthidae) from Sierrade Perijá, Venezuela

Abstract. We described Ananteris riomachensis sp. nov. from the Sierra de Perijá north piedmont,Zulia State, northwestern Venezuela. The new species represents the first record of the genus for thismountain system, and increments to 31 the number of known species for the taxa in the country.Morphological variation and natural history data on the new species, as well as an updated checklistof the Ananteris species are included.

Key words. Ananteris riomachensis sp. nov. Buthidae. Scorpiones. Taxonomy. Venezuela.

Introducción

El género Ananteris Thorell, 1891 está constituido por escorpiones muy pequeños,

crípticos, errantes, de locomoción veloz, con un espolón tarsal en el tercer y cuarto par

de patas, telson alongado y peines carentes de fulcros. Estos habitan diversos ambien-

tes, desde sabanas abiertas y rastrojos hasta bosques tropicales lluviosos. El género

exhibe un patrón de distribución disjunta de origen gondwaniano, con especies presen-

tes en África, Centroamérica y Suramérica (Fet y Lowe 2000).

El catálogo de los escorpiones de Venezuela (Rojas-Runjaic y De Sousa 2007) lista

30 especies de Ananteris, lo cual representa el 15,6% de los escorpiones conocidos para

el país, y 50% de las 60 especies referidas para el género (Rein 2007, The Scorpion

Files, http://www.ub.ntnu.no/scorpion-files/buthidae.php). Esta cifra ubica a

Venezuela en primer lugar en cuanto a diversidad de especies de Ananteris, y al género

Un nuevo escorpión del género Ananteris Thorell, 1891(Scorpiones, Buthidae) para la sierra de Perijá, Venezuela

Fernando J. M. Rojas-Runjaic, Carlos Portillo-Quintero y Adolfo Borges

Memoria de la Fundación La Salle de Ciencias Naturales 2008, 169: 65-81

66 Un nuevo Ananteris para la sierra de Perijá, Venezuela

en cuestión como el segundo más especioso en el país (luego de Tityus). Este creciente

número de especies de Ananteris ya había sido previsto por Lourenço (1982) y

González-Sponga (1984) con base en la amplitud de su distribución y la diversidad de

ambientes que habita.

En este trabajo se describe una especie nueva de Ananteris para la sierra de Perijá

en el Estado Zulia (nor-occidente de Venezuela). Esta nueva especie representa el

primer registro del género para este sistema montañoso colombo-venezolano y eleva a

31 el número de especies conocidas para el taxón en Venezuela.

Materiales y Métodos

Se revisaron 23 ejemplares, recolectados durante muestreos nocturnos mediante el

empleo de luz ultravioleta, los cuales fueron preservados en etanol (70% v/v) y deposi-

tados en las colecciones de arácnidos del Museo de Biología de la Universidad del

Zulia (MBLUZ) y del Museo de Historia Natural La Salle (MHNLS).

La identificación se llevó a cabo siguiendo las claves taxonómicas disponibles

(Lourenço 1982, González-Sponga 1996, 2006) y por comparación con las descrip-

ciones de especies pertenecientes al mismo género, geográficamente más cercanas

(Borelli 1910, Vachon 1977, Lourenço 1991, Rojas-Runjaic 2005, González-Sponga

2006). Adicionalmente se revisaron ejemplares de A. claviformis González-Sponga,

2006; A. barinensis González-Sponga, 2006; A. curariensis González-Sponga, 2006;

A. diegorojasi Rojas-Runjaic, 2005; A. meridana González-Sponga, 2006; A. sanchezi

González-Sponga, 2006; A. turumbanensis González-Sponga, 1980; A. venezuelensis

González-Sponga, 1972 y A. zuliana González-Sponga, 2006.

La descripción, caracterización morfométrica e ilustraciones se realizaron a partir

del holotipo macho y de un paratipo hembra. Se empleó una lupa estereoscópica con

cámara clara y un lente ocular provisto de escala micrométrica. Se siguió la nomen-

clatura y criterios morfométricos propuestos por Stahnke (1970) y empleados por

González-Sponga (1972, 1980), y la tricobotriotaxia propuesta por Vachon (1974,

1975). La clasificación y nomenclatura del esternón siguen a Soleglad y Fet (2003).

Resultados

Ananteris riomachensis sp. nov.

(Figuras 1 y 2, Tablas 1 y 2)

Ananteris sp.: Rojas-Runjaic y Armas, 2007: 63.

Holotipo. MBLUZ 273 , recolectado en el fundo “La Orchila”, río Maché, Sierra

de Perijá, Municipio Mara, Estado Zulia, Venezuela (10°48’44”N-72°21’13”O; 227 m

s.n.m.), por Fernando Rojas-Runjaic, el 10 de agosto de 2003.

Paratipos. MBLUZ 240, 242 y 243 y MBLUZ 241 y 244 , recolectados en el

fundo “La Orchila”, río Maché, Sierra de Perijá, Municipio Mara, Estado Zulia,

67Mem. Fund. La Salle de Cienc. Nat. 169

Venezuela (10°48’44”N-72°21’13”O; 227 m s.n.m.), por Fernando Rojas-Runjaic y

Carlos Portillo, 29 de junio de 2001; MBLUZ 271, 272, 275, 278, 279 y 280 y

MBLUZ 274, 276 y 277 , recolectados en el fundo “La Orchila”, río Maché, Sierra

de Perijá, Municipio Mara, Estado Zulia, Venezuela (10°48’44”N-72°21’13”O; 227 m

s.n.m.), por Fernando Rojas-Runjaic, el 10 de agosto de 2003; MBLUZ 286, 287, 288,

289, MHNLS 1216 y 1217 y MHNLS 1218 y 1219 , por Fernando Rojas-Runjaic,

el 06 de junio de 2004.

Etimología. El epíteto específico “riomachensis” alude al río Maché, tributario de

segundo orden del río Cachirí, y en cuya cuenca habita esta especie.

Diagnosis. (1) longitud total: 19,94 mm y 25,95 mm; (2) mano de los quelíceros

ampliamente reticulada de pardo-oscuro; (3) mano de la quela generalmente sin

dentículo en su lado interno; (4) tricobotrio Eb2 distal a Eb3; (5) en el dedo fijo,

tricobotrio db proximal a est; (6) dientes pectíneos: 16 a 18 en hembras y 17 a 18 en

machos; (7) caparazón, terguitos y apéndices intensamente pigmentados de pardo-

Tabla 1. Caracteres morfométricos del holotipo macho (MBLUZ 273) y de un paratipo hembra(MBLUZ 280) de Ananteris riomachensis sp. nov., expresados en milímetros. L= largo;A= ancho; H= alto.

Holotipo Paratipo

MBLUZ 273 MBLUZ 280

Caparazón, L/A 2,50/2,48 3,50/3,43

Pedipalpo, L 8,03 10,63

Fémur, L/A 2,30/0,58 3,00/0,81

Patela, L/A 2,58/0,72 3,55/1,09

Quela, L 3,15 4,08

Mano, L/A/H 0,90/0,55/0,60 1,25/0,93/0,90

Dedo móvil, L 2,50 3,10

Mesosoma, L 4,25 5,30

Opérculo genital, L/A 0,45/0,68 0,45/1,08

Peine, L 2,10 2,30

Metasoma, L 13,19 17,15

I, L/A/H 1,38/1,43/1,19 1,68/2,00/1,56

II, L/A/H 1,50/1,35/1,16 2,23/1,90/1,53

III, L/A/H 1,68/1,35/1,19 2,40/1,83/1,56

IV, L/A/H 2,45/1,33/1,23 3,13/1,78/1,63

V, L/A/H 3,25/1,25/1,23 4,03/1,75/1,53

Telson, L 2,93 3,68

Vesícula, L/A/H 1,95/0,93/0,85 2,42/1,25/1,05

L total 19,94 25,95

Caracteres morfométricos


oscuro; (8) carenas medianas laterales completas en los segmentos del metasoma I y II,

y vestigiales en el tercio o mitad proximal del segmento III; (9) tegumento intercarenal

ventral y lateral del V segmento del metasoma, con granulación densa y gruesa; (10)

vesícula con carena mediana-ventral vestigial, formada por pequeños gránulos

espaciados entre sí; (11) esternitos de color amarillo inmaculado; (12) segmentos del

metasoma con coloración de fondo pardo-rojiza.

Figura 1. a) Vista lateral del metasoma (holotipo , MBLUZ 273), obsérvese las carenas medianaslaterales completas en los segmentos I y II y vestigial en la mitad proximal del III; b y c)Opérculo genital y peines de la hembra (paratipo, MBLUZ 280) y del macho (holotipo,MBLUZ 273) respectivamente, obsérvese el dimorfismo sexual exhibido en la lamelabasal mediana; d) Vista dorsal del quelícero derecho. Las líneas de escala representan 1mm.

Comparaciones. Los caracteres arriba señalados distinguen a Ananteris

riomachensis de todas las demás especies del género, pero particularmente de las

geográficamente más cercanas, por las siguientes características (los comentarios entre

paréntesis corresponden a A. riomachensis):

A. barinensis con dentículo en el lado interno de la mano (generalmente sin

dentículo en el lado interno de la mano), Eb2 proximal a Eb3 (Eb2 distal a Eb3),

esternitos VI y VII manchados de pardo-oscuro (esternitos sin manchas), tegumento

intercarenal del segmento VII del metasoma con granulación escasa (densa y finamen-

te granuloso).


Figura 2. Ananteris riomachensis sp. nov. (holotipo , MBLUZ 273): a) Vista dorsal del pedipalpoderecho, b) Vista externa de la patela, c) Vista externa de la mano y dedo fijo, d) Vistaventral de la mano. La línea de escala representa 1 mm.


A. claviformis con dentículo en el lado interno de la mano, 18 a 20 dientes

pectíneos en hembras y 19 a 20 en machos (16 a 18 en hembras y 17 a 18 en machos),

carenas medianas laterales completas en los segmentos I a III del metasoma y vestigia-

les en la mitad proximal del IV (completas sólo en los segmentos I a II, y vestigiales en

la mitad o tercio proximal del III), y tegumento intercarenal del segmento V del

metasoma con gránulos dispersos.

A. columbiana muestra una carena mediana-ventral acentuada sobre la vesícula

(carena mediana-ventral vestigial), y tiene manchas oscuras en el esternito VII

(esternito VII sin manchas).

A. curariensis el tricobotrio Eb2 de la mano ligeramente proximal a Eb3, 18

dientes pectíneos en hembras y 19 a 20 en machos, carenas medianas laterales comple-

tas en los segmentos I a III del metasoma, y tegumento intercarenal del segmento V

del metasoma con escasos gránulos.

A. diegorojasi muestra el caparazón, terguitos y apéndices pigmentados de pardo-

claro (intensamente pigmentados de pardo-oscuro), el esternito VII manchado de

pardo-oscuro, presenta carenas medianas laterales completas en los segmentos I a III

del metasoma y vestigiales en la mitad proximal del IV, el tricobotrio Eb2 de la mano

es proximal a Eb3, y el tegumento intercarenal del segmento V del metasoma presenta

gránulos dispersos.

A. meridana presenta una mayor talla corporal, con hembras de 29,68 mm

(hembras de hasta 25,95 mm), las manos de los quelíceros sólo con una banda distal

pardo-oscura dispuesta transversalmente, sin reticulación (mano de los quelíceros

ampliamente reticulada de pardo-oscuro), tricobotrio db del dedo fijo distal a est (db

proximal a est), tricobotrio V2 de la mano externa a V1 (tricobotrios V1-2 alineados

medioventralmente), 18 dientes pectíneos en hembras y 18 a 19 en machos, carenas

ventrales del segmento IV del metasoma ausentes (dos carenas ventrales en el

segmento IV), lamela basal mediana pentagonal en hembras (de forma alargada en

hembras), y tegumento intercarenal del segmento V del metasoma finamente granu-

loso, con escasos gránulos grandes.

A. sanchezi presenta dentículo en la superficie interna de la mano, tricobotrio db

del dedo fijo distal a est, 18 dientes pectíneos en hembras y machos, carenas medianas

laterales completas en los segmentos I a III del metasoma, y tegumento intercarenal

del segmento V del metasoma liso, con escasos gránulos.

A. zuliana presenta un dentículo en la superficie interna de la mano, 17 a 19

dientes pectíneos en hembras y 18 a 21 en machos, caparazón, terguitos y apéndices

con pigmentación pardo-clara, y tegumento intercarenal del segmento V del metaso-

ma con gránulos dispersos.

Descripción del holotipo. Caparazón: borde anterior con dos suaves concavidades

que van desde la línea media hasta la parte anterior del segundo ojo lateral,

brevemente interrumpidas por una ligera convexidad granulosa, anterior e interna al

primer ojo lateral. Ojos laterales dispuestos en el ángulo latero-anterior, y bordeados

en su parte posterior por una fila irregular de gránulos. Mitad distal de los bordes


lateroanteriores y bordes laterales con un engrosamiento del tegumento claramente

delimitado por una fila uniforme de pequeños gránulos; este engrosamiento muestra

una superficie regular, coriácea y con pequeños gránulos esparcidos; más amplio en la

parte central de los bordes laterales. Ángulo lateroposterior romo y amplio; borde

posterior sinuoso, con un par de convexidades paramedianas. Surcos: medio-anterior

poco profundo, densamente granuloso y más pronunciado a nivel proximal. Surco

ocular medio profundo y estrecho; latero-oculares ausentes; medio-posterior, llano y

granuloso en sus tercios proximal y medio, en el tercio distal profundo, estrecho y liso;

marginales posteriores cortos, acentuados y coriáceos en su borde anterior, llanos y

coriáceos en el posterior; posterolaterales poco acentuados, irregulares, lisos y con

algunos gránulos esparcidos; posterotransversos vestigiales. Carenas: sólo presentes las

superciliares, formadas por gránulos pequeños y ligeramente espaciados. El resto del

caparazón muestra una densa granulación en las áreas pardo-oscuras, es coriáceo y

con escasos gránulos sobre las áreas de color ocre; los gránulos son brillantes y de

tamaño más o menos uniforme.

Terguitos. carena mediana ausente en el I, presente en la mitad distal del II y

ocupando los dos tercios posteriores en el III al VI; en el VII está representada

proximalmente por una elevación tegumentaria sutil y granulosa que se estrecha

rápidamente en sentido posterior; las carenas paramedianas y laterales son conspicuas,

formadas por gránulos altos y uniformemente alineados. Tegumento de los terguitos

con densa granulación de tamaño variado sobre las áreas oscuras, coriáceo y con

escasa o ninguna granulación sobre las áreas claras.

Esternón. Tipo 1 (sensu Soleglad y Fet 2003), de forma pentagonal; apex acumi-

nado, botón apical bastante bajo; depresión posterior amplia y profunda; arista

externa alta y estrecha.

Opérculo genital (Figura 1c). Dividido, con dos pequeñas muescas en los bordes

posterolaterales. Peines: (Figura 1c) sin fulcros, con tres lamelas marginales,

densamente pilosos; ocho lamelas medianas en cada peine, incluyendo la lamela basal

media; esta última de forma cuadrangular. 17-18 dientes pectíneos.

Esternitos. III a VI con tegumento liso, con escasa y fina granulación sobre los

bordes laterales y ángulos postero-laterales; esternito VII con densa y fina granulación,

con un par de carenas paramedianas vestigiales dispuestas en la mitad distal, y con

algunas setas esparcidas, principalmente hacia los bordes. Estigmas lineales, dispuestos

oblicuamente.

Metasoma (Figura 1a). Segmentos I a IV con carenas dorsales, dorsales-laterales,

ventrales-laterales y ventrales paramedianas completas, conspicuas y aserradas;

dorsales con un dentículo terminal de mayor tamaño, dorsales-laterales también con

dentículo terminal mayor en los segmentos I a III; carenas medianas-laterales

completas, conspicuas y aserradas en los segmentos I y II, vestigiales en la mitad

proximal del III. Tegumento intercarenal ventral y lateral de los segmentos I a IV

densa y finamente granuloso. Tegumento intercarenal dorsal con densa granulación

sobre las manchas pardo-oscuras triangulares; en el tegumento intercarenal


dorsolateral los gránulos se disponen principalmente en la mitad distal. El segmento V

con sólo cinco carenas (dorsolaterales, ventrolaterales y ventral mediana) de iguales

características a las de los segmentos anteriores; tegumento intercarenal coriáceo, con

granulación densa y gruesa, excepto en la superficie dorsal donde se hace más fina y

escasa.

Telson (Figura 1a). Vesícula alongada y sutilmente más ancha que alta, con una

carena mediana-ventral vestigial, formada por cinco gránulos pequeños espaciados

entre sí, y un gránulo distal ligeramente más grande; con cuatro surcos longitudinales,

llanos y lisos, que se extienden sobre la vesícula, desde su base a la del acúleo, de estos

surcos, dos son ventrales, muy llanos y de igual anchura en toda su extensión, los otros

dos, laterales, anchos en su base y estrechándose a medida que se extienden hacia la

base del acúleo. Tegumento liso y lustroso, con algunos gránulos redondos sobre la

superficie lateral y ventral, con un gránulo medio-ventral de mayor tamaño dispuesto

justo por debajo del tubérculo subaculear, este último es cónico, sin tubérculos laterales

y con un par de largas setas en su base. Acúleo grande y robusto.

Queliceros. Típicos de la familia Buthidae (Figura 1d).

Pedipalpos. Tricobotriotaxia tipo A, configuración ß con todos los artejos

pedipalpares ortobotriotáxicos (Vachon 1974, 1975). Tricobotrios distribuidos como se

muestra en las figura 2a, b, c y d. Fémur (Figura 2a): carenas dorsointerna y dorso-

externa formadas por una fila sinuosa de gránulos cónicos y ligeramente espaciados

entre sí, ambas se comunican en sus extremos proximales mediante una fila de

gránulos de iguales características dispuestos en el margen proximal del artejo;

mediana-externa vestigial, representada por un borde anguloso con gránulos de

tamaño variable esparcidos y algunos tubérculos coronados de setas espiniformes;

mediana-interna vestigial, representada por gránulos de diversos tamaños y

regularmente alineados, con algunas setas espiniformes; ventrointerna formada por

pequeños gránulos cónicos, espaciados y uniformemente alineados; ventroexterna

ausente; tegumento intercarenal coriáceo, con gránulos escasos y muy pequeños sobre

la superficie dorsal. Patela (Figuras 2a y b): carenas dorsointerna y mediana-dorsal

vestigiales, representadas por una fila sinuosa y discontinua de pequeños gránulos

espaciados; la dorsointerna se extiende por delante del tricobotrio d1, pasa por el lado

interno de d2, y escasamente alcanza el tricobotrio i, lugar en que desaparece;

mediana-interna formada por varios gránulos espiniformes espaciados y decrecientes

hacia el extremo distal; ventrointerna vestigial, constituida sólo por dos o tres gránulos

piramidales coronados de setas espiniformes; dorsoexterna y ventroexterna ausentes.

Quela (Figuras 2a, c y d): carenas ausentes, tegumento coriáceo y sin granulación, con

algunas setas espiniformes dispuestas sobre el borde proximal de la mano, tricobotrio

Eb2 ligeramente distal a Eb3. Dedos de la mano con abundante pilosidad, en especial

los extremos distales; tricobotrio est inferior a eb, esb y et, tricobotrios est y et

dispuestos entre db y dt, y tricobotrio et distal al tercer dentículo accesorio externo del

dedo fijo. Dedo fijo con seis filas de dentículos, siete en el dedo móvil; la primera fila

de dentículos del dedo móvil es recta y tan larga como la suma de las tres siguientes,


las demás son gradualmente más cortas, inician en el lado externo con dos dentículos

de mayor tamaño, y terminan en un gran dentículo interno.

Patas. Trocánter con gránulos pequeños, redondos y esparcidos sobre la superficie

prolateral, con algunas setas pequeñas y finas sobre la parte ventral. Fémur: con

carenas formadas por una fila de gránulos cónicos ligeramente espaciados; tegumento

intercarenal liso, con gránulos dispersos sobre la superficie prolateral, superficie

retrolateral lisa; con una seta espiniforme hacia el extremo distal de la carena

prolateral-ventral. Patela: con cuatro carenas prolaterales, vestigiales o ausentes en el

par de patas I, vestigiales en el II, conspicuas y formadas por pequeños gránulos

cónicos y muy juntos entre sí en los pares III y IV. Tegumento intercarenal con

abundantes gránulos en la superficie prolateral de los pares I y II; coriáceo y sin

gránulos en los pares III y IV. Cuatro o cinco setas espiniformes dispuestas

ventralmente a lo largo de la patela. Tibia y basitarso: con un par de carenas dorsales

(prolateral y retrolateral) finas pero conspicuas, en los pares de patas III y IV; con

abundantes setas en posición ventral, dispuestas en tres filas. Espolón tibial presente en

la parte ventral de la articulación tibia-basitarso de los pares de patas III y IV; extremo

distal de la superficie ventral del basitarso de los pares I a IV con una espina prolateral

bífida y una retrolateral. Tarso: con abundantes setas sobre la superficie ventral.

Coloración en preservativo. Caparazón: Pardo oscuro, con áreas estrechas y

alargadas de color ocre, irregulares pero más o menos simétricas, correspondiendo con

las áreas sin granulación. Tubérculo ocular mediano, base de los ojos laterales y bordes

latero-anteriores, laterales y posteriores, de color pardo oscuro intenso, casi negro.

Terguitos. De color pardo oscuro el I al VI, con áreas de color ocre distribuidas de

la siguiente manera: dos alargadas y dispuestas de manera oblicua a los lados de la

parte posterior de la cresta media, dos largas y estrechas en forma de ángulo agudo,

ubicadas a los lados de la cresta media con sus vértices orientados hacia ésta, y otras

dos dispuestas sobre los bordes laterales. El terguito VII con una mancha ocre en

forma de “V” en posición media y con dos manchas transversales, de menor tamaño

y simétricas, a cada lado de la “V”; todas dispuestas sobre el tegumento intercarenal.

Esternitos. De color amarillo inmaculado.

Metasoma. Coloración de fondo pardo-rojizo, con carenas intensamente pigmen-

tadas de un pardo oscuro que se extiende a los espacios intercarenales en el extremo

distal de cada segmento; entre las carenas dorsales de los segmentos I y II se observa

una mancha triangular, la cual presenta tres proyecciones alargadas hacia la parte

proximal en los segmentos III y IV (más acentuadas en el IV). El V segmento es de

color pardo-rojizo en el tegumento intercarenal de su tercio proximal, con algunas

proyecciones hacia el extremo distal, este último con los bordes de color pardo-rojizo;

resto del tegumento pardo-oscuro, casi negro. En el telson, la vesícula es de color pardo

rojizo en su porción proximal, dorso, surcos laterales y surcos ventrales, y pardo-

amarillenta la base del acúleo y tubérculo subaculear; pardo-oscuro en los espacios

intersurcos de los costados y vientre; el acúleo de color pardo-rojizo intenso.


Pedipalpos. Coxa ventral e internamente amarilla, pigmentada de pardo-oscuro

sobre el lado externo. Trocánter amarillo, con una pequeña mancha dorsal de color

pardo-oscuro. Fémur pardo-oscuro en los lados dorsal e interno, más tenue sobre los

lados externo y ventral; con pequeñas áreas amarillas rodeando los tricobotrios de la

porción dorsal-proximal, también sobre el tegumento intercarenal externo y sobre las

porciones proximal y distal del lado ventral. Patela de color pardo-oscuro, con dos

manchas alargadas de color ocre, de disposición externa-proximal, algunas pequeñas

y dispersas sobre la porción externa-distal, y lado ventral pardo claro vermiculado de

amarillo. Mano de la quela amarilla, con los dedos de color pardo claro, más tenue

hacia el extremo distal.

Patas. Coxa amarilla. Trocánter amarillo con una pequeña mancha prolateral

pardo-oscura. Fémur amarillo, con una mancha prolateral de color pardo-oscuro,

estrecha a nivel proximal y expandida sobre los tercios medio y distal. Patela amarilla,

con una mancha pardo-oscuro que ocupa la mitad proximal de la superficie prolateral;

el extremo distal también pigmentado de pardo oscuro. Tibia y basitarso con

pigmentación parda, tenue en el tercio proximal, con dos proyecciones estrechas,

longitudinales y muy tenues, que se extienden hasta la mitad del artejo. Tarso amarillo.

Esternón, Opérculo y Peines: amarillos.

Variación y dimorfismo sexual. Las variaciones registradas, en su mayoría

muestran vinculación con el dimorfismo sexual, por cuanto tienen lugar entre

hembras y machos. Entre ellas se cuentan: el surco medio-posterior del caparazón,

densamente granuloso y más pronunciado a nivel proximal en machos, pero más llano,

con gránulos de menor tamaño y espaciados en hembras; el surco interocular, en

hembras llano y coriáceo, sin granulación y tan ancho como la mitad del diámetro de

cada ojo, en machos más profundo y estrecho (menor que el diámetro de un ojo); el

tegumento del caparazón, que en machos muestra una densa granulación en las áreas

pardo-oscuras, en tanto que en hembras la granulación es menos densa. Así mismo, las

áreas de color ocre sobre el caparazón son más conspicuas en machos que en hembras.

El tegumento del esternito VII también muestra variación entre sexos, con

granulación más densa y conspicua en machos que en hembras. De igual manera, en

las patelas de los pedipalpos, la carena mediana-dorsal es vestigial en machos pero

ausente en hembras.

Los peines son más largos y pilosos, y los dientes pectíneos más grandes en machos

que en hembras. Las lamelas basales medianas muestran un marcado dimorfismo

sexual, siendo cuadrangulares a trapezoidales en machos y alargadas en hembras

(Figura 1b y c).

El número de lamelas medianas de los peines muestra variación entre individuos,

e incluso entre los dos peines de un mismo ejemplar. Para los 12 machos de la serie tipo

se registró la siguiente variación (lado derecho - lado izquierdo (porcentaje)): 7-7

(25,0%), 7-8 (16,7%), 8-7 (16,7%), 8-8 (33,3%), y 8-9 (8,3%); en tanto que para las 11

hembras fue la siguiente: 6-6 (9,1%), 7-6 (9,1%), 7-7 (45,4%), 7-8 (9,1%), 8-7 (18,2%), 8-

8 (9,1%).


El número de dientes pectíneos también exhibe variación tanto entre individuos

como entre pares de peines de un mismo individuo. Ejemplares machos tienden a

presentar un número más elevado de dientes por peine que las hembras (Tabla 2). La

variación registrada respecto al número de dientes entre pares de peines, para machos

fue: 17-17 (33,3%), 17-18 (41,7%), 18-17 (8,3%), y 18-18 (16,7%); en tanto que para

hembras fue: 16-16 (45,4%), 16-17 (18,2%), 17-16 (18,2%), 17-17 (9,1%), y 17-18 (9,1%).

Las carenas medianas-laterales del metasoma se presentan bien definidas y

completas en los segmentos I y II pero aparecen de forma vestigial en tercio (47,8%), o

mitad proximal (43,5%) del segmento caudal III, e incluso pueden estar ausentes

(8,7%). No parece haber una diferencia marcada entre machos y hembras respecto a la

variación de estas carenas.

Finalmente, tres ejemplares machos (MBLUZ 274, 276 y MHNLS 1217) presentan

un pequeño dentículo en el lado interno de la mano de la quela.

Distribución. Conocida sólo de la localidad tipo (Figura 3).

Historia natural. A. riomachensis parece ser una especie asociada al sustrato de

arbustales secundarios, y de áreas abiertas y potreros donde la vegetación es rala y

constituida principalmente de gramíneas y herbáceas. Habita bajo rocas, en la hojaras-

ca, entre raíces de árboles y en las grietas del suelo. Ocasionalmente es hallada en el

ecotono del bosque riparino. La vegetación circundante corresponde a bosques

tropófilos piemontanos semideciduos (Huber y Alarcón 1988).

El hecho de hallarse estos escorpiones con mayor frecuencia en zonas de creci-

miento vegetal secundario (arbustales, pastizales, vegetación rala), evidencia que la

especie es tolerante a la intervención antrópica y que hace provecho de estas áreas

modificadas.

A. riomachensis habita en simpatría con otras cuatro especies: Tityus perijanensis

González-Sponga, 1994; Tityus wayuu Rojas-Runjaic y Armas, 2007; Chactas yupai

González-Sponga, 1994 y Opisthacanthus sp.

Sexo N DE

16 17 18

Hembra 22 14 7 1 16,4 0,6

Macho 24 14 10 17,4 0,5

XX

Número de dientes pectíneos

Tabla 2. Variación del número de dientes pectíneos en Ananteris riomachensis sp. nov. N= númerode peines examinados; = media aritmética; DE= desviación estándar.XX


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3.

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En agosto de 2003 se observó una hembra con una cría a cuestas ya en fase de

desmonte. Adicionalmente otras dos hembras fueron halladas en estado de gravidez

durante las recolectas de julio de 2001 y de agosto de 2003; luego de la disección de

estas se constató la presencia de 28 embriones en estado avanzado de desarrollo para

una (MBLUZ 242), y 22 embriones poco desarrollados para la otra (MBLUZ 279).

Material examinado

Ananteris barinensis: MHNLS 1118, 1120, 1221 (topotipos), y 1119 (topotipo),recolectados en la hacienda La Mira, sector Las Guayabitas, km 17 vía Barinas-Barrancas,Municipio Cruz Paredes, Estado Barinas, Venezuela (08°43’49’’N-70°07'59’’O, 175 ms.n.m.), por F. Rojas-Runjaic, el 15 de abril de 2006.

Ananteris claviformis: MAGS 2374 (paratipo), recolectado en Aguas Calientes, dos kms aleste de Ureña, Municipio Pedro M. Ureña, Estado Táchira, Venezuela (07°55’00’’N-72°25’36’’O, 370 m s.n.m.), por J. C. Sánchez, el 20 de agosto de1975.

Ananteris curariensis: MAGS 4280 (paratipo), recolectado en el km 4 vía Curarí-Píritu,Municipio Píritu, Estado Falcón, Venezuela (11°22’02’’N-69°08’02’’O, 100 m s.n.m.), por A.R. Delgado, J. A. González y M. A. González-Sponga, el 31 de agosto de 1982.

Ananteris diegorojas: MBLUZ 109 (holotipo), 058-060, 100-108 (paratipos), y 061, 110-113 (paratipos ), recolectados en la urbanización “El Prado”, Municipio Pampanito,Estado Trujillo, Venezuela (09°25’32’’N-70°27’16’’O, 480 m s.n.m, por F. Rojas-Runjaic, el20 de enero de 2003.

Ananteris meridana: MAGS 4420 (holotipo), recolectado a dos km de Mesa Bolívar, vía LaLibertad, Municipio Antonio Pinto Salinas, Estado Mérida, Venezuela (08°28’32’’N-71°35’30’’O, 1000 m s.n.m.), por A. R. Delgado, J. A. González y M. A. Gozález-Sponga,el 23 de diciembre de 1982.

Ananteris sanchezi: MAGS 2359 (paratipo), recolectado en Adaure, Municipio Falcón,Estado Falcón, Venezuela (11°52’56’’N-69°58’20’’O, 100 m s.n.m.), por J. C. Sánchez, el 24de julio de 1975.

Ananteris turumbanensis: MHNLS 845 (paratipo), recolectado en San Martín deTurumbán, margen izquierda del río Cuyuní, frente a la isla Anacoco, Estado Bolívar,Venezuela (06°48’30’’N-61°11’00’’O, 100 m s.n.m.), por L. J. Joly, el 21 de agosto de 1979.

Ananteris venezuelensis: MHNLS 784 (paratipo), recolectado en el km 70, carretera ElDorado-Santa Elena de Uairén, Estado Bolívar, Venezuela (1450 m s.n.m.), por LuisAndreani, el 18 de abril de 1973; MHNLS 785 y 786 (paratipos), recolectado en el km126, carretera El Dorado-Santa Elena de Uairén, Estado Bolívar, Venezuela (1450 ms.n.m.), por Luís Andreani, el 18 de abril de 1973.

Ananteris zuliana: MBLUZ 221, 224, 226, 228-236 (topotipos), 218-220, 222, 223, 225 y227 (topotipos), recolectados en el parque “Burro Negro”, Municipio Lagunillas, EstadoZulia, Venezuela (10°12’00’’N-71°01’48’’O, 250 m s.n.m.), por F. Rojas-Runjaic, el 01 dejunio de 2003.


Agradecimientos. Los autores expresan su agradecimiento a Manuel A. González-Sponga,por permitir la revisión del material tipo de su colección personal. A la Sra. Ángela González ya sus hijos Jordano y Moisés, del fundo “La Orchila”, por su cordialidad durante las visitas a lalocalidad y por su apoyo y gran interés sobre el desarrollo de estudios biológicos en esa zona delpiedemonte perijanero. Finalmente, agradecen a Luís de Armas (Instituto de Ecología ySistemática de La Habana, Cuba) y Leonardo De Sousa (Universidad de Oriente, Venezuela)por sus valiosas observaciones sobre una versión preliminar de este manuscrito.

Bibliografía.

BORELLI, A. 1910. Descrizione di un nuovo scorpione del Venezuela. Bolletino del Mussei diZoología ed Anatomia Comparata della R. Università di Torino 25(630):1-3.

FET, V. Y G. LOWE. 2000. Family Buthidae C. L. Koch, 1837. Pp 54-286. En: V. Fet, W. D.Sissom, G. Lowe y M. E. Braunwalder (Eds.), Catalog of the scorpions of the world (1758-1998). The New York Entomological Society, New York, EUA.

GONZÁLEZ-SPONGA, M. A. 1972. Ananteris venezuelensis (Scorpionida: Buthidae) nueva especiede la Guayana de Venezuela. Memoria de la Sociedad de Ciencias Naturales La Salle 32(93):205-214.

GONZÁLEZ-SPONGA, M. A. 1980. Ananteris turumbanensis n. sp. (Scorpionida: Buhtidae) nuevaespecie de la Guayana de Venezuela. Memoria Sociedad de Ciencias Naturales La Salle40(113): 95-107.

GONZÁLEZ-SPONGA, M. A. 1984. Escorpiones de Venezuela. Cuadernos Lagoven, EditorialCromotip, Caracas, Venezuela. 126 pp.

GONZÁLEZ-SPONGA, M. A. 1996. Guía para identificar escorpiones de Venezuela. CuadernosLagoven, Editorial Arte, Caracas, Venezuela. 203 pp.

GONZÁLEZ-SPONGA, M. A. 2006. Arácnidos de Venezuela. El género Ananteris Thorell 1891, enVenezuela (Scorpionidae: Buthidae). Serie de libros arbitrados del Vicerrectorado deInvestigación y Postgrado, UPEL, Caracas, Venezuela. 223 pp.

HUBER, O. Y C. ALARCÓN. 1988. Mapa de vegetación de Venezuela (1:2000000). Ministerio delAmbiente y de los Recursos Naturales Renovables y The Nature Conservancy, Editorial ArteS.A, Caracas, Venezuela.

LOURENÇO, W. R. 1982. Révision du genre Ananteris Thorell, 1891 (Scorpiones, Buthidae) etdescription de six espèces nouvelles. Bulletin du Muséum National d´Histoire Naturelle 4(1-2): 119-151.

LOURENÇO, W. R. 1991. Les scorpions de Colombie, II. Les faunes des régions de Santa Martaet de la cordillère orientale. Approche biogéographique (Arácnida: Scorpiones).Senckenbergiana Biologica 71(4-6): 275-288.

ROJAS-RUNJAIC, F. J. M. 2005. Un nuevo escorpión del género Ananteris Thorell (Scorpiones:Buthidae) para Venezuela. Anartia 19: 1-13.

ROJAS-RUNJAIC, F. J. M. y L. De Sousa. 2007. Catálogo de los escorpiones de Venezuela(Arachnida: Scorpiones). Boletín de la Sociedad Entomológica Aragonesa 40: 281-307.

SOLEGLAD, M. E. Y V. FET. 2003. The scorpion sternum: structure and phylogeny (Scorpiones:Orthosteni). Euscorpius 5: 1-34.

STAHNKE, H. L. 1970. Scorpion nomenclature and mensuration. Entomological News 81: 297-316.


VACHON, M. 1974. Étude des caractères utilisés pour classer les familles et les genres duScorpions. (Arachnides). 1.- La trichobotriotaxie en Arachnologie. Sigles trichobothriaux ettypes de trichobothriotaxie chez les Scorpions. Bulletin du Muséum National d´HistoireNaturelle 3(140): 857-958.

VACHON, M. 1975. Sur lútilisation de la trichobothriotaxie du bras des pédipalpes des scorpions(Arachnides) dans le classement des genres de la famille des Buthidae Simon. ComptesrendusHebdomadaires des Seances de l’Académie des Sciences de Paris 281(21): 1597-1599.

VACHON, M. 1977. Contribution a létude des scorpions Buthidae du nuoveau monde. I.Complement a la connaissance de Microtityus rickyi Kj.-W. 1956 de líle de la Trinite. II.Description dúne nouvelle espece et dún nouveau genre mexicains: Darcheniabernadettae. III. Cle de determination des genres de Buthidae du nouveau monde. ActaBiologica Venezuelica 9(3): 283-302.


Anexo 1. Lista de chequeo de los escorpiones del género Ananteris.

Especie Distribución

01. Ananteris ashmolei Lourenço, 1981 Ecuador

02. Ananteris asuncionensis González-Sponga, 2006 Venezuela

03. Ananteris balzanii Thorell, 1891 Brasil, Paraguay,

Argentina, Bolivia

04. Ananteris barinensis González-Sponga, 2006 Venezuela

05. Ananteris cachimboensis Lourenço, Motta & da Silva, 2006 Brasil

06. Ananteris capayaensis González-Sponga, 2006 Venezuela

07. Ananteris caracensis González-Sponga, 2006 Venezuela

08. Ananteris catuaroi González-Sponga, 2006 Venezuela

09. Ananteris caucaguitensis González-Sponga, 2006 Venezuela

10. Ananteris charlescorfieldi Lourenço, 2001 Bolivia

11. Ananteris chirimakei González-Sponga, 2006 Venezuela

12. Ananteris claviformis González-Sponga, 2006 Venezuela

13. Ananteris coineaui Lourenço, 1982 Guyana Francesa

14. Ananteris columbiana Lourenço, 1991 Colombia

15. Ananteris cryptozoicus Lourenço, 2005 Brasil

16. Ananteris cumbensis González-Sponga, 2006 Venezuela

17. Ananteris curariensis González-Sponga, 2006 Venezuela

18. Ananteris cussinii Borelli, 1910 Venezuela, Trinidad y

Tobago

19. Ananteris dekeyseri Lourenço, 1982 Brasil

20. Ananteris deniseae Lourenço, 1997 Brasil

21. Ananteris diegorojasi Rojas-Runjaic, 2005 Venezuela

22. Ananteris ehrlichi Lourenço, 1994 Colombia

23. Ananteris elguapoi González-Sponga, 2006 Venezuela

24. Ananteris elisabethae Lourenço, 2003 Guyana Francesa

25. Ananteris evellynae Lourenço, 2004 Brasil

26. Ananteris feae (Borelli, 1911) Guinea, Guinea-Bisau

27. Ananteris festae Borelli, 1899 Ecuador

28. Ananteris franckei Lourenço, 1982 Brasil

29. Ananteris gorgonae Lourenço & Flórez, 1989 Colombia

30. Ananteris guiripaensis González-Sponga, 2006 Venezuela

31. Ananteris guyanensis Lourenço & Monod, 1999 Guyana Francesa

32. Ananteris inoae González-Sponga, 2006 Venezuela

33. Ananteris leilae Lourenço, 1999 Colombia

34. Ananteris luciae Lourenço, 1984 Brasil

35. Ananteris maniapurensis González-Sponga, 2006 Venezuela

36. Ananteris maranhensis Lourenço, 1987 Brasil

37. Ananteris mariaelenae Lourenço, 1999 Ecuador

38. Ananteris mariaterezae Lourenço, 1982 Brasil

39. Ananteris mauryi Lourenço, 1982 Brasil

40. Ananteris meridana González-Sponga, 2006 Venezuela

41. Ananteris miryamae Botero-Trujillo, 2007 Colombia

42. Ananteris nairae Lourenço, 2004 Brasil

43. Ananteris norae González-Sponga, 2006 Venezuela

44. Ananteris paoensis González-Sponga, 2006 Venezuela


Anexo 1. Continuación.

Especie Distribución

45. Ananteris paracotoensis González-Sponga, 2006 Venezuela

46. Ananteris plataensis González-Sponga, 2006 Venezuela

47. Ananteris platnicki Lourenço, 1993 Costa Rica, Panamá

48. Ananteris principalis González-Sponga, 2006 Venezuela

49. Ananteris pydanieli Lourenço, 1982 Brasil, Guyana

Francesa, Surinam

50. Ananteris riocaurensis González-Sponga, 2006 Venezuela

51. Ananteris riochicoi González-Sponga, 2006 Venezuela

52. Ananteris riomachensis sp. nov. Venezuela

53. Ananteris sabineae Lourenço, 2001 Guyana Francesa

54. Ananteris sanchezi González-Sponga, 2006 Venezuela

55. Ananteris sepulvedai González-Sponga, 2006 Venezuela

56. Ananteris singularis González-Sponga, 2006 Venezuela

57. Ananteris terueli Kovarík, 2006 Bolivia

58. Ananteris tolimana Teruel & García, 2007 Colombia

59. Ananteris turumbanensis González-Sponga, 1980 Venezuela

60. Ananteris venezuelensis González-Sponga, 1972 Venezuela, Brasil,

Guyana

61. Ananteris zuliana González-Sponga, 2006 Venezuela

Recibido: 09 febrero 2007Aceptado: 14 junio 2008

Fernando J. M. Rojas-Runjaic1, Carlos Portillo-Quintero2 y Adolfo Borges3

1 Museo de Historia Natural La Salle, Apartado Postal 1930, Caracas 1010-A, [email protected]

2 Earth and Atmospheric Sciences Department, University of Alberta, Edmonton, Alberta, CanadaT6G 2E3. [email protected]

3 Laboratorio de Toxinas Animales, Centro de Biociencias y Medicina Molecular, Instituto deEstudios Avanzados (IDEA), Caracas, Venezuela. [email protected]

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