UNIVERSIDAD TÉCNICA DE AMBATO MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
LARINGOTRAQUEITIS INFECCIOSA AVIAR
• Iván González
• AMBATO – ECUADOR
DEFINICIÓN
La laringotraqueitis infecciosa
aviar (VLTI) es una enfermedad
respiratoria aguda, altamente
contagiosa que afecta a pollos de
todas las edades; puede resultar
en pérdidas graves en la
productividad debida a la
mortalidad y menor producción
de huevos en gallinas.
SINÓNIMOS, HISTORIA
SINÓNIMOS
Descrita como:
a) Laringotraqueítis
b) Laringotraqueítis infecciosa
c) Difteria aviar (error)
d) Bronquitis infecciosa (error)
HISTORIA
Esta enfermedad fue descrita por vez primera en 1925, existen reportes de que pudo haber existido antes de este año.
En 1930 se utilizó el término laringotraqueitis y en 1931 se adoptó la denominación de laringotraqueitis infecciosa por el Comité Especial de Enfermedades de Aves de la Asociación Médico Veterinaria Norte Americana.
HISTORIA
1934, Brandly y Bushnell idearon
un método para la inmunización
de pollos basada en la aplicación
de virus virulento a la cloaca;
siendo laringotraqueitis la
primera enfermedad viral de
importancia para la que se
desarrollo una vacuna efectiva.
Está considerada dentro de las Enfermedades de
Declaración Obligatoria por la Organización
Mundial de Sanidad Animal (OIE, 2005).
Situación de la enfermedad:
HISTORIA EN ECUADOR
La investigación realizada por la Universidad San Francisco de Quito - USFQ, como proyecto de postgrado. (marzo 2011 - marzo 2012).
Las muestras fueron recolectadas de granjas ubicadas en 7 provincias del país, resultando aves positivas en granjas ubicadas en las provincias de: Cotopaxi, Tungurahua y La Concordia. 3 focos positivos VLTI, bajo PCR (reacción en cadena de la polimerasa).
HISTORIA EN PERÚ
El problema fue reportado inicialmente en
granjas de Chincha en Perú, principalmente en
postura comercial con mortalidades que llegaron
hasta un 20- 23%, luego en Lima en aves de pelea
y crianzas de pollos de carne. (CEVA, 2009).
Situación de la enfermedad:
Presente en Uruguay
desde 1956.
Diagnosticada en Brasil
recién en 2.002
OCURRENCIA Y RELEVANCIA ECONÓMICA
LT con resultados: crecimiento conversión alimenticia bajo el rango con elevada mortalidad en Broiler.
Laringotraqueitis se distribuye en todo el mundo, pero es con frecuencia regional en prevalencia o incidencia estacional.
Disminución de la producción de huevos se produce tras la exposición de los lotes maduros susceptibles.
OCURRENCIA Y RELEVANCIA ECONÓMICA
Las cepas LT son de moderadas a fuertes con resultados con mayor morbilidad y la mortalidad en gallinas y pollos con una pérdidas de hasta 50%, la misma que es concurrente con el estrés ambiental y otras infecciones.
Disminución de la producción de huevos se produce tras la exposición de los lotes maduros susceptibles.
ETIOLOGÍA
AGENTE ETIOLÓGICO
El agente causal de la laringotraqueítis es un virus
ADN con envoltura.
Familia: Herpesviridae
Subfamilia: Alphaherpesvirindae
Género: Varicellovirus
Especie:Gallid herpesvirus 1
Sólo hay un tipo antigénico y éste
afecta únicamente al aparato
respiratorio de las aves con
virulencia variable entre cepas.
-Los herpesvirus son frágiles a las condiciones medio ambientales.
-El virus se inactiva por el calor cuando está expuesto a 55º C por 15 min. o 38º C por 72 horas.
CARACTERÍSTICAS DEL AGENTE ETIOLÓGICO
CARACTERÍSTICAS DEL AGENTE ETIOLÓGICO
-El VLT se inactiva en menos de 1 min. con soluciones de cresol al 3% o por acción de una solución de soda cáustica (NaOH) al 1%.
El precalentamiento de los galpones por 3
días a 37,8º C, disminuye la carga viral o la
inactivación del virus.
Las superficies pueden ser fácilmente
descontaminadas con los desinfectantes iodóforos o
las mezclas de halógenos y detergentes.
La inactivación completa
de la contagiosidad del
VLT fue obtenida con
peróxido de hidrógeno al
5%.
CARACTERÍSTICAS DEL AGENTE ETIOLÓGICO
ESPECIES SUSCEPTIBLES
Los pollos son los huéspedes naturales primarios afectados. Aunque la enfermedad afecta todas las edades, los signos más característicos se observan en aves adultas. Puede afectar a los faisanes, las perdices y los pavos.
El virus de LTV, no
causa infección en
humanos.
PATOGENIA
PATOGENIA
Se debe tener en cuenta que la excreción viral ocurre
uno a dos días antes de la aparición de los signos
clínicos.
El período de
incubación de la VLTI
es generalmente de
6 a 12 días.
PATOGENIA
TRANSMISIÓN
El virus ingresa al organismo a través de la vía respiratoria ó a través de la conjuntiva y se encuentra principalmente en la tráquea y exudados de las vías aéreas superiores.
La infección se transmite por contacto directo con
exudados respiratorios expectorados o aerosoles.
TRANSMISIÓN
Las aves también pueden infectarse a través del personal, los visitantes y los equipos contaminados; los perros, las ratas y los pájaros también pueden actuar como vectores mecánicos.
REPLICACIÓN Y LATENCIA
La replicación activa del VLT ocurre en la tráquea durante la primera semana posterior a la infección.
La eliminación viral es máxima
durante los 7 a 10 días
posteriores a la aparición de
los primeros signos clínicos.
REPLICACIÓN Y LATENCIA
A partir del fin de la excreción viral activa, se establece una fase de infección latente en el tejido nervioso, particularmente por invasión del virus al ganglio trigémino, y la tráquea.
Nervio trigemino
Replicación Viral
1. Fijación a receptores de la célula
2. Fusión de envoltura con membrana del huésped
3. Nucleocápside pasa al citoplasma de allí
transportada a membrana nuclear
4. DNA liberado rige la actividad del núcleo
5. Transcripción y replicación
REPLICACIÓN Y LATENCIA
°°Demostrado por re-aislamiento del virus a partir de la séptima semana después de la infección mediante hisopados traqueales repetidos, y a dos meses después de la infección a partir de cultivos de tráquea.
La infección latente es el mecanismo de subsistencia donde el virus evade la respuesta inmune del huésped y persiste en las parvadas o lotes.
REACTIVACIÓN DE INFECCIONES LATENTES
El estado de latencia del virus es por lo tanto de gran importancia epidemiológica.
Aunque las aves que sobreviven a la enfermedad son inmunes, desafortunadamente son portadoras sanas y pueden permanecer infectivas hasta por dos años y continuar excretando el virus en forma intermitente.
RESPUESTA INMUNE
La respuesta por anticuerpos neutralizantes del virus se detecta en suero dentro de los 5 a 7 días posteriores a la infección. Esta respuesta inmune se mantiene en bajos niveles por un año o más
Los anticuerpos maternales para la LTI no protegen a la descendencia contra la infección ni interfieren con la vacunación
SÍNTOMAS Y LESIONES
CUADRO CLÍNICO
• Cuadro agudo, con elevada morbilidad (90%) y letalidad del 10-20-70% (muy variable).
• Disnea, jadeos y tos (expectoración de sangre).
• Secreción nasal, conjuntivitis, cianosis de la cabeza.
• Muerte a los pocos días por asfixia o recuperación en 2-3 semanas.
• Caída de la puesta transitoria, recuperación a valores normales sin pérdida de calidad..
• Virulencia alta
CUADRO CLÍNICO • Virulencia alta
CUADRO CLÍNICO
• Cuadro leve, con baja morbilidad y letalidad (2-5%).
• Complicaciones bacterianas
Signos respiratorios de menor intensidad: conjuntivitis
exudado nasal
edema de párpados
ruidos respiratorios y sacudidas de cabeza
Disminución de la producción de huevos sin pérdida de la calidad.
• Virulencia media o baja
LESIONES
• Edema sinusal.
• Inflamación mucopurulenta de laringe y tráquea con hemorragias, necrosis y formación de membranas difteroides.
• Coágulos sanguíneos en tráquea en fases terminales (hallazgo significativo).
• No suelen estar afectados pulmones ni sacos aéreos.
LESIONES Microscópicamente:
cuerpos de inclusión IN en
células epiteliales en los
primeros días y descamación
posterior del epitelio
necrótico.
•Regeneración total del epitelio hacia los 10-12 días de la infección.
Ojos almendrados o
achinados
Edema facial:
Secreción ocular:
Congestión en tráquea:
Disnea con extensión del cuello
Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos
Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos
Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos
Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos
Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos
Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos
DIAGNÓSTICO
TÉCNICAS DE DIAGNÓSTICO
a) Aislamiento del virus
b) Microscopía electrónica
c) Immunofluorescencia
d) Inmunodifusión en gel de agar
e) Enzimoinmunoensayo
f) Histopatología
g) Métodos moleculares a) Protocolo de la PCR
b) PCR en tiempo real
c) Polimorfismo de longitud de los fragmentos de restricción (RFLP)
Identificación del agente
TÉCNICAS DE DIAGNÓSTICO
a) Neutralización vírica
b) Inmunodifusión en gel de agar
c) Prueba de inmunofluorescencia indirecta
d) Enzymoinmunoensayo
Pruebas serológicas
DIAGNÓSTICO
En epizootias de la forma aguda o típica:
observa la alta letalidad, los síntomas
respiratorios (disnea inspiratoria y
traqueítis hemorrágica).
El diagnóstico presuntivo de
campo es correcto con un %
elevado de los casos.
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
Además su característica principal
es la descamación de células
traqueales que producen zonas
hemorrágicas.
Es un herpes virus se caracterizan por su alta
sensibilidad a los desinfectantes, pueden establecer
infecciones latentes porque periódicamente el virus
puede reactivarse y ser diseminado.
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
• Coriza Infecciosa: Presencia de moco en fosas nasales, laringe y parte superior de tráquea (moco sanguinolento ausente).
• Influencia Aviar/ Bronquitis infecciosa /New Castle: Presencia de tráqueas congestionadas sin formación de pseudomembranas.
• Viruela Aviar: Presencia de pústulas en cavidad oral y esófago. Presencia de corpúsculos de inclusión intracitoplasmáticos
CLASIFICACIÓN DE
VACUNAS
VACUNAS : VIVAS ATENUADAS
• Seguras
• Eficaces
• Aplicación por vía ocular
• No son efectivas en agua o spray
• Se pueden usar en broiler ( laboriosas), reproductoras y
ponedoras
• Mínima tasa o ausencia tasa de transmisión
ORIGINADAS EN TEJIDO (TCO):
VACUNAS : VIVAS ATENUADAS
• Efectivas para controlar brotes
• Revierten a la virulencia
• Producen infecciones latentes
• Altamente transmisibles
• Usadas en broiler ( 12-14 días)
• Se pueden usar vía agua de bebida
EMBRION DE POLLO (CEO)
VACUNA VECTORIZADA
• No revierte a virulenta
• Inocua
• Evita la diseminación y
latencia en el ave del virus
de campo y vacunal
• Adecuada duración de
inmunidad
VACUNAS POR VECTORES
Puntos a favor
Inocuidad.
No hay reversión a la virulencia.
No hay diseminación del virus.
No hay reacción vacunal.
Se replican en el huésped (bajas dosis)
Proteínas son procesadas en el huésped, por lo tanto las proteínas están en la forma correcta para ser protectoras.
Eficacia y protección contra los agentes en la vacuna.
Adecuada duración de la inmunidad.
Puntos en contra
•Anticuerpos maternos a
los genes insertados o a
los vectores pueden
inhibir el crecimiento del
vector. •Pruebas de inocuidad toman
mas tiempo (USDA)
•Pruebas disponibles actualmente para evaluar la respuesta inmune pueden no detectar anticuerpos a la vacuna.
APLICACIÓN DE VACUNAS
TIPOS DE VACUNACIÓN
Según el tipo de producción:
Ponedoras: de origen de embrión de
pollo (CEO),
Pollos: de origen de cultivo de tejido
(TCO),
SPF: libres de agentes patogénicos específicos.
COFAL: células de cultivo primario de fibroblasto de
embriones.
Según el lugar de aplicación:
Vacuna recombinante en la
incubadora,
Vacuna viva atenuada en el
campo.
Según el numero de ave:
Vacunación masiva (agua, aerosol, en huevo),
Vacunas individuales (gotas en los ojos, gotas nasales, cepillado de la cloaca, subcutánea, intramuscular).
TIPOS DE VACUNACIÓN
Vacunación en huevo:
Se utiliza 500 ml de diluyente/10.000 dosis de vacuna
para administrar una dosis de| 0,05 ml por huevo.
PUNCIÓN ALAR:
Insertar el aplicador
en el pliegue del ala
evitando las plumas,
músculo, hueso y
vasos sanguíneos (0.01
mL dosis/ave).
PUNCIÓN ALAR
Con doble aplicador:
-Pegar 2 lancetas
-Aumentar la cantidad de diluyente: 1000 dosis=10ml de diluyente, doble lanceta incrementar el diluyente en un 50% = 15ml para 1000 dosis de vacuna
PUNCIÓN ALAR
PUNCIÓN ALAR
Perdido o no vacunado= sin nódulo
% evaluación de 90% = aceptable, % evaluación de 95%= deseable
0= sin nódulo detectable
1= nódulo muy pequeño (< 2mm)
2= nódulo pequeño (2 – 5mm)
3= nódulo normal ( 5 – 10mm)
4= nódulo grande (> 10mm)
EVALUACION DE NODULOS Y AREA
DE INFLAMACION:
PUNCIÓN ALAR
EVALUACION DE NODULOS Y AREA DE INFLAMACION:
3 días
post -infección
EVALUACION DE NODULOS Y AREA DE INFLAMACION:
4 días
post -infección
EVALUACION DE NODULOS Y AREA DE INFLAMACION:
5 días
post -infección
EVALUACION DE NODULOS Y AREA DE INFLAMACION:
6 días
post -infección
-Inmunidad es
demostrada por mas de
37 semanas post-
vacunación
-Protección por mas de
60 semanas
VACUNAS VECTORIZADAS
ECUADOR:
INNOVAX ILT
Vacuna recombinante:
(vector) de Marek (EM) y
la laringotraqueitis infecciosa
(LTI).
Es una vacuna recombinante (vector) innovadora con virus del herpes del pavo (HVT) insertado con dos genes protectores de glucoproteína del virus de la LTI.
+ Gentamicina
INNOVAX ILT
Vacunación:
En embriones de pollo sanos de 18 días de incubación por vía en huevo,
Vacunación de pollos sanos de un día de edad por vía subcutánea
+ Gentamicina
VECTORMUNE FP-LT
El virus de la viruela aviar ha sido genéticamente modificado para expresar antígenos protectivos clave del virus de la Laringotraqueítis aviar (LT)
Vacuna recombinante:
(vector) viruela aviar y
la laringotraqueitis infecciosa
(LTI).
VECTORMUNE FP-LT
-LT (DONANTE): virus que dona un gen el cual produce un antígeno protector
-FP(VECTOR): virus atenuado el cual contiene una región no esencial de ADN, en el cual puede hacerse la inserción de genes.
VECTORMUNE FP-LT
Vacunación:
Aplicación mediante punción en
el ala de pollos sanos,
susceptibles, de ocho semanas de
edad o mayores, pero al menos 4
semanas antes de que las aves
entren a postura -
VECTORVAC FP-LT
Vacuna viva, recombinante:
Viruela aviar y
Laringotraqueítis aviar
Contiene virus de Viruela Aviar
vectorizada con gen glicoproteína B
del virus de Laringotraqueítis
Infecciosa.
VECTORVAC FP-LT
Vacunación:
Inyección intradérmica, en el pliegue
alar con doble aguja acanalada,
vacunación de aves sanas
TERAPIA COADYUVANTE
Paracetamol: 100gr x cada kilo de peso en
agua de bebida, Antiinflamatorio y analgésico.
Yodo en el agua de bebida 0.5ml por litro ayuda
en los procesos de cicatrización.
Bromexina 0.5 ml a 1.0 ml por litro de agua de bebida, expectorante.
ANTIBIÓTICOTERAPIA
Enrofloxacinas cada 12 horas durante 10 días
a una dosis de 50 ml cada 100 litros de agua.
Cloranfenicol: 20 mg / Kg por 3 á 5 días
En infección
bacteriana
secundaria
PROFILAXIS
Peróxido de hidrogeno
En aspersiones en pisos y
paredes desinfectante. Mantener una adecuada cuarentena y control de personal y eliminación de vectores, animales muertos y residuos de productos.
BIBLIOGRAFÍA
http://manualdeavicultura.blogspot.com/2009/08/diagnostico-de-la-laringotraqueitis.html
http://www.veterinaria.org/revistas/vetenfinf/nfondevila/ltiecuador2012.htm
http://www.senasa.gov.ar/Archivos/File/File2821-laringotraqueitis-infecciosa.pdf
http://www.elsitioavicola.com/articles/1925/el-control-de-laringotraqueitis#sthash.bsqfpdEI.dpuf
http://issuu.com/hitsoft/docs/pdf
http://web.oie.int/esp/normes/mmanual/pdf_es_2008/2.03.03.%20Laringotraque%C3%ADtis%20infecciosa%20aviar.pdf
http://www.amevea.org/index.php?option=com_content&view=article&id=177:actualidades-en-el-control-de-la-laringotraqueitis-infecciosa-aviar&catid=33&Itemid=412