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ECOLE NATIONALE VETERINAIRE DE LYON
Année 2007 - Thèse n° ……
CYTOLOGIE PAR PONCTION ECHOGUIDEE DU FOIE ET DU PANCREAS CHEZ LE CHIEN ET LE CHAT
-APPORT AU DIAGNOSTIC EN MEDECINE INTERNE- ETUDE RETROSPECTIVE SUR 213 CAS
THESE
Présentée à l’UNIVERSITE CLAUDE-BERNARD - LYON I (Médecine - Pharmacie)
et soutenue publiquement le 12 novembre 2007 pour obtenir le grade de Docteur Vétérinaire
par
CICOLINI Charlotte Née le 25 novembre 1982
à Lons le Saunier
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A Monsieur le Professeur Jean-Yves SCOAZEC Professeur à la Faculté de médecine de Lyon
Qui nous a fait l’honneur de présider notre jury de thèse Hommage respectueux
A Madame le Professeur Corinne FOURNEL Professeur à l’Ecole Nationale Vétérinaire de Lyon
Qui nous a guidé dans la réalisation de ce travail Qu’elle trouve ici le témoignage de notre reconnaissance
A Monsieur le Maître de conférences Thierry MARCHAL Maître de conférences à l’Ecole Nationale Vétérinaire de Lyon
Pour sa participation à notre jury Sincères remerciements
Au Docteur Michel LABADIE Groupement de Recherche Cytologique Pour son accueil au sein de son laboratoire, l’intérêt qu’il a porté à notre travail, l’apport de son expérience en médecine humaine et sa présence à notre jury Aux imageurs de l’Imagerie Médicale Vétérinaire de Paris
Pour leur aide dans la réalisation de ma thèse, leur accueil ainsi que leur gentillesse Aux vétérinaires qui ont accepté de participer à notre étude
Pour avoir pris le temps de répondre aux questionnaires A Babette, Slimania et Catherine, Pour leur patience et leur gentillesse
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A mes parents, Sans qui mon rêve ne se serait jamais réalisé
Pour votre présence à chaque fois que j’en avais besoin Recevez ici le témoignage de mon amour et de ma reconnaissance A mes grands-parents, à Sabine, à Jean Claude et à toute ma famille, Merci pour votre soutien, votre amour et votre confiance en moi A mes amis de l’école : Aurélia, Sandra, Mathilde, Floriane, Emilie, Iz, Anne, Neige, Tatay et tous les autres, Pour tous ces fous rires, ces soirées crêpes, raclette, pizzas et bien d’autres, et pour votre soutien dans les moments difficiles A mes amis Francs-Comtois : Chïna, Séverine et les autres
Pour tous les bons moments passés ensemble A mes amis plongeurs,
Pour ces belles aventures sous-marines, et pour celles à venir Aux vétérinaires canins et mixtes, proches et lointains, Pour m’avoir transmis leur passion, pour leur confiance et pour m’avoir fait progresser au cours de mes stages Aux vétérinaires de Landos et de Chatenoy,
Pour m’avoir permis de démarrer dans la vie active A la mémoire de mon grand-père Je sais que tu aurais aimé être là
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TABLE DES MATIERES
TABLE DES MATIERES ....................................................................................................... 9
TABLE DES FIGURES......................................................................................................... 12
TABLE DES TABLEAUX .................................................................................................... 12
TABLE DES PHOTOGRAPHIES ....................................................................................... 13
LISTE DES ABREVIATIONS ............................................................................................. 14
INTRODUCTION.................................................................................................................. 15
PREMIERE PARTIE : ETUDE BIBLIOGRAPHIQUE ................................................... 17
I. Indications et contre-indications des prélèvements échoguidés................................. 19 A. Indications des prélèvements échoguidés .................................................................... 19
1) Généralités................................................................................................................ 19 2) Indications échographiques des ponctions hépatiques et pancréatiques .................. 19
B. Avantages de la cytoponction par rapport à la biopsie................................................. 20 1) Les caractéristiques de la lésion ............................................................................... 20 2) Anesthésie ................................................................................................................ 20 3) Complications........................................................................................................... 20 4) Rapidité de lecture.................................................................................................... 20
C. Contre-indications et complications............................................................................. 20 1) Contre-indications .................................................................................................... 20 2) Complications........................................................................................................... 21
(a) Hémorragies ..................................................................................................... 21 (b) Péritonite .......................................................................................................... 21 (c) Essaimage tumoral ........................................................................................... 21 (d) Fréquence des complications ........................................................................... 22
II. Matériel et techniques de prélèvement......................................................................... 22 A. Matériel ........................................................................................................................ 22
1) Sondes et guides ....................................................................................................... 22 2) Aiguilles à cytoponction........................................................................................... 23
B. Préparation de l’animal ................................................................................................ 23 1) Examen clinique....................................................................................................... 23 2) Contention ................................................................................................................ 23 3) Préparation du site.................................................................................................... 24
C. Techniques de prélèvement.......................................................................................... 24 1) Généralités................................................................................................................ 24
(a) Repérage du site ............................................................................................... 24 (b) Préparation du matériel .................................................................................... 24 (c) Prélèvement avec ou sans guide....................................................................... 24
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2) Cytoponctions du foie .............................................................................................. 25 3) Particularité des cytoponctions du pancréas............................................................. 26 4) Nouvelle technique de prélèvement : par échoendoscopie ...................................... 27
III. Préparation des lames.................................................................................................... 27 A. Etalement des prélèvements ......................................................................................... 27 B. Colorations ................................................................................................................... 28
1) Coloration de Romanowsky ..................................................................................... 28 2) Colorations bichromes et trichromes........................................................................ 28 3) Réaction à l’Acide Périodique Schiff (PAS)............................................................ 28 4) Coloration aqueuse................................................................................................... 29 5) Colorations spéciales................................................................................................ 29
IV. Interprétation des résultats ........................................................................................... 29 A. Aspect normal et physiopathologique .......................................................................... 29
1) Foie........................................................................................................................... 29 2) Pancréas.................................................................................................................... 30
B. Aspect des lésions ........................................................................................................ 30 1) Foie........................................................................................................................... 30
(a) Lipidose hépatique féline ................................................................................. 30 (b) Cholangiohépatite féline .................................................................................. 30 (c) Hépatose induite par les corticoïdes................................................................. 30 (d) Hépatopathies inflammatoires non spécifiques................................................ 31 (e) Hématopoïèse extramédullaire......................................................................... 31 (f) Toxicité au cuivre du Bedlington et du West Highland white terrier .............. 31 (g) Hyperplasie nodulaire, adénome hépatique (hépatome) ou adénocarcinome .. 31 (h) Adénome ou carcinome des cellules des voies biliaires .................................. 32 (i) Tumeurs métastatiques du foie............................................................................. 32
2) Pancréas.................................................................................................................... 32 (a) Pancréatites....................................................................................................... 32 (b) Carcinome pancréatique................................................................................... 32 (c) Tumeurs des cellules de Langerhans................................................................33
V. Fiabilité des résultats ..................................................................................................... 33 A. Comparaison entre cytoponctions et biopsies .............................................................. 33 B. Précision des cytoponctions ......................................................................................... 33 C. Facteurs influençant la précision des cytoponctions .................................................... 33
VI. Données statistiques en matière d’affection hépatique et pancréatique chez le chien et le chat................................................................................................................................... 34
DEUXIEME PARTIE : ETUDE EXPERIMENTALE ...................................................... 37
I. Aspect cytologique des prélèvements du foie et du pancréas chez le chien en situations physiologiques et pathologiques banales............................................................. 39
A. Matériel et méthode...................................................................................................... 39 B. Résultats ....................................................................................................................... 39
II. Etude rétrospective des résultats fournis par l’examen cytologique du foie et du pancréas chez le chien et le chat sur une série de 213 cas................................................... 42
A. Matériel et méthode...................................................................................................... 42
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B. Résultats ....................................................................................................................... 42
TROISIEME PARTIE : DISCUSSION............................................................................... 49
I. Qualité des échantillons ................................................................................................. 51
II. Etude statistique des résultats....................................................................................... 51 A. Certitude du diagnostic................................................................................................. 51 B. Corrélation avec les hypothèses diagnostiques échographiques .................................. 53 C. Corrélation avec le suivi clinique et les résultats histologiques obtenus ..................... 54
1) Corrélation avec le suivi clinique............................................................................. 54 2) Corrélation avec les résultats histologiques ............................................................. 55
D. Corrélation avec les résultats de la bibliographie......................................................... 57
CONCLUSION....................................................................................................................... 59
ANNEXES............................................................................................................................... 61 Annexe 1 : Questionnaire envoyé aux vétérinaires référents ................................... 61 Annexe 2 : Lettre accompagnant le questionnaire ................................................... 62 Annexe 3 : Fiche d’anamnèse accompagnant les prélèvements cytologiques ......... 63 Annexe 4 : Tableau complet..................................................................................... 64
BIBLIOGRAPHIE ................................................................................................................. 93
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TABLE DES FIGURES
Figure 1 : Voies d’abord préférées lors de prélèvement d’une lésion suspecte ................ 22 Figure 2 : Technique d’écrasement ...................................................................................... 28 Figure 3 : Répartition des diagnostics cytologiques probables selon les catégories......... 52
TABLE DES TABLEAUX Tableau 1 : Résultats de 600 cas de ponction à l’aiguille fine chez le chien...................... 34 Tableau 2 : Résultats de 307 cas de ponction à l’aiguille fine chez le chat ....................... 35 Tableau 3 : Classement des résultats des prélèvements hépatiques chez le chien et le chat
.......................................................................................................................................... 43 Tableau 4 : Répartition des résultats dans la catégorie tumeur chez le chien et le chat . 43 Tableau 5 : Répartition des résultats dans la catégorie surcharge et dégénérescence chez
le chien et le chat............................................................................................................. 45 Tableau 6 : Répartition des résultats dans la catégorie inflammation chez le chien et le
chat................................................................................................................................... 46 Tableau 7 : Certitude du diagnostic selon les catégories .................................................... 52 Tableau 8 : Corrélation entre hypothèses diagnostiques échographiques formulées et
résultats cytologiques ..................................................................................................... 53 Tableau 9 : Corrélation entre les résultats cytologiques et les suivis cliniques ................ 55 Tableau 10 : Résultats cytologiques et histologiques .......................................................... 56
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TABLE DES PHOTOGRAPHIES Photographie 1 : Prélèvement hépatique échoguidé (Imagerie médicale Vétérinaire,
Paris)................................................................................................................................ 25 Photographie 2 : Visualisation de l’aiguille (flèche grise) sur l’écran de l’échographe lors
d’une ponction hépatique (service d’imagerie, ENVL).............................................. 26 Photographie 3 : Hépatocytes normaux (x 40) (Laboratoire d’Hématologie, ENVL)..... 40 Photographie 4 : Hépatocytes normaux (x 40) (Laboratoire d’Hématologie, ENVL)..... 40 Photographie 5 : Pancréas normal, acini et canaux pancréatiques (x 20) (Laboratoire
d’Hématologie, ENVL) .................................................................................................. 41 Photographie 6 : Pancréas normal, acini pancréatiques (x 100) (Laboratoire
d’Hématologie, ENVL) .................................................................................................. 41 Photographie 7 : Hépatocarcinome chez un chat (x 40) (LCV, GRC) .............................. 44 Photographie 8 : Sarcome hépatique (x 40) (LCV, GRC) ..................................................44 Photographie 9 : Dégénérescence ballonisante (surcharge glycogénique) (x 40) (LCV,
GRC)................................................................................................................................ 45 Photographie 10 : Lipidose (x 10) (LCV, GRC) .................................................................. 46 Photographie 11 : Hépatite neutrophilique marquée chez un chien (x 25) (LCV, GRC) 47 Photographie 12 : Infiltration lymphomateuse du pancréas exocrine chez un chien ...... 47
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LISTE DES ABREVIATIONS BE : bilan d’extension
BEG : bon état général
bioch : biochimique
écho : échographique
ENVL : Ecole Nationale Vétérinaire de Lyon
GRC : Groupement de Recherche Cytologique
HD : hypothèse (s) diagnostique (s)
hyperéch : hyperéchogène
hypoéch: hypoéchogène
j : jour (s)
LCV : Laboratoire de Cytologie Vétérinaire
m : mois
MGG: May-Gründwald-Giemsa
PAL : Phosphatases alkalines
PAS : Réaction à l’Acide Périodique Schiff
PUPD : polyuro-polydipsie
RAS : pas d’anomalie majeure observée
sem : semaine (s)
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INTRODUCTION L’échographie est un examen complémentaire très utilisé en médecine vétérinaire. En raison du manque de spécificité des images échographiques du foie et du pancréas chez les carnivores domestiques, cet examen peut être associé à un examen cytologique pour parvenir à une orientation diagnostique solide et parfois à un diagnostic de certitude. Les prélèvements sont obtenus par ponctions échoguidées à l’aiguille fine. Elles sont rapides, et ne demandent pas d’équipement spécifique.
La première partie de cet ouvrage est consacrée à l’étude bibliographique des cytoponctions hépatiques et pancréatiques chez le chien et le chat, sur leurs indications et leurs contre-indications, le matériel et les méthodes nécessaires aux prélèvements et l’interprétation de ces prélèvements. La seconde partie comporte deux études. D’abord une étude expérimentale, elle a pour but de donner l‘aspect cytologique des prélèvements du foie et du pancréas chez le chien en situations physiologiques et pathologiques banales. Elle est suivie d’une étude rétrospective portant sur 213 résultats cytologiques hépatiques et pancréatiques chez des chiens et des chats. La troisième partie est consacrée à la discussion des résultats cytologiques obtenus lors de notre étude rétrospective, leur comparaison aux examens échographiques, aux suivis cliniques, aux résultats histologiques et aux résultats trouvés dans la littérature.
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PREMIERE PARTIE :
ETUDE BIBLIOGRAPHIQUE
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I. Indications et contre-indications des prélèvements échoguidés
A. Indications des prélèvements échoguidés
1) Généralités
L’échographie est un examen complémentaire très sensible pour dépister les anomalies
de l’abdomen, mais aussi très peu spécifique (28), dans ce cas les cytoponctions échoguidées peuvent être d’une grande aide pour le diagnostic. Les cytoponctions échoguidées ne requièrent pas d’équipement très spécialisé, donnent des résultats rapides (9) et elles sont peu onéreuses. L’utilisation des prélèvements échoguidés permet d’éviter de pratiquer une intervention chirurgicale pour obtenir des échantillons de tissu (19).
2) Indications échographiques des ponctions hépatiques et pancréatiques
Les ponctions hépatiques sont souvent indiquées en raison du manque de spécificité
des images lésionnelles visibles à l’échographie, par exemple une image d’hépatomégalie peut correspondre à une lipidose, un lymphome, une tumeur myéloproliférative, un mastocytome, une hépatopathie stéroïdienne ou une amyloïdose (35). De plus, les lésions hépatiques diffuses (surcharge, inflammation, …) sont très fréquentes chez les carnivores domestiques et le plus souvent elles n’entraînent pas ou peu de modifications des images échographiques (29).
Les ponctions hépatiques seront indiquées lors de modification des structures à
l’échographie : parenchyme d’échostructure modifiée, hépatomégalie, présence d’une structure anormale ou d’une masse, et/ou présence d’une adénopathie hépatique associée. Elles seront également indiquées lorsque l’échographie n’aura pas montré d’anomalie mais que d’autres examens (clinique, hématologique, biochimique,…) seront en faveur d’une atteinte du foie. Ainsi une élévation des paramètres biochimiques hépatiques sanguins (alanine aminotransférase, phosphatases alcalines ou bilirubine libre) associée à des symptômes comme des troubles digestifs, une polyuro-polydispsie, une ascite ou un ictère sont des indications à une ponction hépatique (7). Les ponctions hépatiques peuvent aussi être indiquées lors de recherche de métastases dans le cadre du bilan d’extension d’un processus tumoral (42).
Les ponctions pancréatiques sont principalement indiquées lors de suspicion de
pancréatite, de processus tumoral ou d’obstruction biliaire extra-hépatique (25). Les affections pancréatiques sont souvent difficiles à diagnostiquer. De plus, les tumeurs et les pancréatites ont souvent un aspect similaire à l’échographie (36), généralement sous forme de zone hypoéchogène (5). Une altération de l’échogénicité et un effet de masse peuvent être trouvés dans de nombreux cas de pancréatite, d’où l’intérêt de l’examen cytologique pour les différencier d’un processus tumoral (6).
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B. Avantages de la cytoponction par rapport à la biopsie
1) Les caractéristiques de la lésion
La ponction à l’aiguille fine est préférée à la biopsie lorsque la lésion à prélever fait
moins de 1 cm de largeur (40), et lorsque la lésion est très vascularisée puisque le risque d’hémorragie est plus faible avec une aiguille qui a un plus petit diamètre (26).
2) Anesthésie
Du fait de la plus petite taille des aiguilles et de la rapidité de l’acte, les prélèvements à
l’aiguille fine sont le plus souvent réalisés sans tranquillisation ni anesthésie contrairement à la biopsie.
3) Complications
Les prélèvements réalisés par cytoponction présentent moins de risques de
complications que les prélèvements par biopsie. Les aiguilles utilisées pour les cytoponctions sont plus petites que celles utilisées pour les biopsies, les prélèvements à l’aiguille fine sont donc moins traumatisants pour l’organe prélevé que les biopsies (40). Lors de pénétrations accidentelles dans des structures adjacentes comme le tube digestif, le prélèvement à l’aiguille fine ne semble pas augmenter l’incidence des complications septiques. Par contre, lors de biopsie l’effraction est plus importante ; il est donc nécessaire d’éviter le tube digestif (28).
4) Rapidité de lecture
Dans un milieu hospitalier, les prélèvements de cytoponction peuvent être lus très
rapidement après la ponction contrairement aux biopsies qui nécessitent différents traitements avant la lecture.
C. Contre-indications et complications
1) Contre-indications
Les prélèvements par ponction à l’aiguille fine sont généralement considérés comme
les moins risqués. Ils restent néanmoins contre-indiqués lors de troubles sévères de l’hémostase (7) ; il est donc conseillé de réaliser un bilan d’hémostase en cas de doute. Lorsque le taux de plaquettes est inférieur à 20000/mm3, la cytoponction est contre-indiquée (35). Tous les éléments pouvant favoriser une hémorragie à la suite du prélèvement sont aussi contre-indiqués ; ainsi, on évite de prélever les tumeurs hypervascularisées ou les organes
21
congestionnés. Les ponctions hépatiques sont déconseillées lors d’obstruction biliaire extra-hépatique, la bile sous pression pouvant provoquer par la suite une péritonite (7).
Selon certains auteurs, les ponctions du pancréas pourraient provoquer la libération
d’enzymes protéolytiques à l’origine d’une pancréatite nécrosante (7). Afin d’éviter ces complications, il convient de prélever la lésion en traversant le moins possible de tissu sain, de limiter le nombre de passages dans cet organe et de s’assurer de la présence réelle d’une masse avant d’entreprendre la ponction (43).
2) Complications
Les complications possibles lors de prélèvements échoguidés sont plus ou moins
importantes en fonction de l’expérience de l’opérateur, du type de prélèvement (cytoponction ou biopsie), de l’organe prélevé et de la nature de la lésion. Elles sont cependant moins importantes que lors de prélèvement à l’aveugle (21), celui-ci n’étant pratiquement plus utilisé à l’heure actuelle.
(a) Hémorragies
Les hémorragies sont les complications les plus fréquentes lors de prélèvements à
l’aiguille ; elles restent néanmoins assez rares. Elles sont le plus souvent minimes et s’arrêtent spontanément en l’absence de troubles de l’hémostase, surtout lorsque les aiguilles utilisées pour le prélèvement sont de faible calibre (37). Le risque d’hémorragie est plus élevé chez les animaux présentant des troubles de la coagulation et lors de prélèvements de lésions hypervascularisées.
(b) Péritonite
Les complications infectieuses sont rares. Elles sont possibles lorsqu’un abcès ou une
lésion infectée sont prélevés. La ponction accidentelle d’un organe adjacent en particulier d’une anse intestinale ne semble pas augmenter l’incidence des complications (28). Enfin, rarement, les voies biliaires peuvent être ponctionnées accidentellement et être responsables de péritonite.
(c) Essaimage tumoral
La dissémination néoplasique sur le trajet de ponction est une complication rare.
L’essaimage tumoral le long du trajet de l‘aiguille a été rapporté chez l’homme lors de ponction de processus tumoraux pancréatiques et hépatiques (1). Le risque d’essaimage augmente avec la taille de l’aiguille et le nombre de passages effectués. Certaines précautions sont importantes à respecter : utiliser une aiguille avec un diamètre le plus fin possible, limiter le nombre de passages et choisir le trajet de la ponction pour avoir une marge de tissu sain (d’au moins 1 cm) entre la lésion et le reste de l’organisme (1).
22
Figure 1 : Voies d’abord préférées lors de prélèvement d’une lésion suspecte
(d) Fréquence des complications
Selon une étude portant sur 195 chiens et 51 chats, où 233 biopsies et 70
cytoponctions échoguidées ont été réalisées sur ces animaux. Seuls 1,2 % des sujets ayant subi des biopsies ont présenté des complications majeures (ponction des voies biliaires et hémorragie) et 5,6 % ont manifesté des hémorragies localisées mineures. Aucune complication n’a été observée sur les animaux ayant subi des ponctions à l’aiguille fine (26).
Chez l’homme, la fréquence des complications après ponction à l’aiguille fine est très faible. Selon une étude portant sur 11700 patients ayant subi des ponctions abdominales à l’aiguille fine, seuls 0,55 % ont présenté des complications (4).
II. Matériel et techniques de prélèvement
A. Matériel
1) Sondes et guides
Les sondes linéaires ou sectorielles peuvent être utilisées. Si la lésion est superficielle
il est préférable d’utiliser une sonde linéaire car les sondes sectorielles engendrent des artefacts dans le champ proche, ce qui peut gêner la visualisation de la lésion et le prélèvement de celle-ci (37). Un bloc d’éloignement gélifié peut être utilisé, il présente la particularité d’être complètement transonore. Ceci permet d’éloigner la sonde de la peau et, ainsi, de placer une lésion superficielle dans une zone où l’image est de meilleure qualité (28).
23
Un guide peut être utilisé, il est fixé à la sonde juste avant le prélèvement. Les guides
peuvent être à usage unique ou réutilisables (dans ce cas ils devront être stérilisés entre chaque utilisation). Lors de l’utilisation d’un guide, l’imageur utilisera de préférence un échographe doté d’un logiciel qui permet la visualisation en superposition avec l’image du trajet de l’aiguille appelé « cheminée à biopsie » (7).
2) Aiguilles à cytoponction
Des aiguilles fines de 20 ou 22G sont utilisées. La taille de l’aiguille dépend de la
profondeur de la lésion à prélever : on utilisera des aiguilles à ponction rachidienne (Spinocan®) de 9 cm de long, ou des aiguilles de type Chiba au biseau plus court de 9, 15 ou 20 cm de long (7).
Si le site de prélèvement n’est pas trop profond, de simples aiguilles à injection peuvent être utilisées.
L’aiguille est connectée directement à une seringue stérile de 10 ml ou elle peut être connectée à une tubulure elle-même connectée à une seringue stérile (28). On peut aussi ponctionner directement avec l’aiguille non montée, que l’on adaptera ensuite à la seringue pour en expulser le contenu (cf. III). Cela permet une manipulation plus facile au cours de la ponction.
B. Préparation de l’animal
1) Examen clinique
Un examen clinique complet est réalisé au préalable. En fonction de cet examen et des
hypothèses diagnostiques, il est préférable de réaliser un bilan hématologique et biochimique (8, 21).
2) Contention
Si l’animal est suffisamment coopératif, le prélèvement pourra être réalisé sans
sédation. Dans le cas contraire, il sera nécessaire d’utiliser une tranquillisation voire une anesthésie générale si l’animal est très agité. En effet, cela limitera les risques de lacération et d’hémorragie (28).
Les anesthésies locales sont déconseillées car leurs injections sont le plus souvent moins bien tolérées que la ponction elle-même (30).
L’animal est placé en décubitus dorsal comme pour un examen échographique ; l’avant de l’animal peut être surélevé, ce qui permet au foie de descendre dans l’abdomen (23).
24
3) Préparation du site
Le gel échographique est retiré car il peut générer des artéfacts cytologiques s’il se
dépose accidentellement sur le prélèvement. La zone de réalisation du prélèvement est tondue, nettoyée puis désinfectée chirurgicalement sur une surface assez large autour du site de ponction (28). De l’alcool ou une autre solution désinfectante est ensuite utilisé pour permettre un bon contact entre la sonde et la peau de l’animal.
C. Techniques de prélèvement
1) Généralités
(a) Repérage du site
Un examen échographique classique est réalisé dans un premier temps ; il permet de
repérer l’organe ou la lésion à prélever. Le lieu de prélèvement est choisi pour que le trajet de l’aiguille soit le plus court possible et qu’il n’y ait pas d’organes interposés (28).
(b) Préparation du matériel
La sonde est enveloppée dans un gant ou une enveloppe stérile qui sont préalablement
remplis avec du gel (37). Si l’emploi du guide est indiqué, il doit être posé après que la sonde ait été enveloppée. Ces mesures ne sont indiquées que dans le cadre de prélèvements par biopsie. Pour les cytoponctions, on se contente de nettoyer la sonde avec une solution antiseptique.
(c) Prélèvement avec ou sans guide
Le prélèvement sans guide est aussi appelé « à main libre ». Il nécessite plus
d’expérience pour maintenir l’aiguille dans le plan de coupe, mais il permet une grande liberté avec un plus grand choix de voies d’abord et les lacérations tissulaires dans ce cas sont souvent plus limitées. Lors du prélèvement avec guide, le trajet de l’aiguille est matérialisé sur l’écran par deux lignes superposées à l’image échographique : c’est la « cheminée de biopsie ». La visualisation de l’aiguille est plus aisée puisqu’elle reste dans le plan de coupe, mais le prélèvement sans guide est préféré car il permet une plus grande amplitude de mouvement (22). L’aiguille est enfoncée à travers la peau en visant la lésion à prélever, elle est enfoncée perpendiculairement ou obliquement à la sonde lorsque l’on n’a pas de guide. Le biseau de l’aiguille est tourné vers le haut pour faciliter la visualisation de celle-ci.
25
2) Cytoponctions du foie
Les prélèvements sont généralement effectués dans les lobes médial et latéral gauches,
à distance du diaphragme, des vaisseaux hilaires centraux et de la vésicule biliaire (37). Cependant, le site de ponction peut être imposé en cas de lésion unique ou focale multiple. La position de l’aiguille est choisie en tenant compte de son déplacement éventuel lors du prélèvement, afin d’être certain que l’aiguille ne pénètre pas dans les structures anatomiques adjacentes. Une distance de sécurité de deux à trois centimètres semble convenable. Une forte pression doit souvent être exercée sur l’abdomen pour déplacer les viscères digestifs adjacentes, sauf dans le cas d’une hépatomégalie développée. Il est préférable de toujours utiliser un abord rétro-xyphoïdien. En effet, par voie intercostale, il existe un risque non négligeable de pénétration dans l’espace pleural ce qui peut provoquer un pneumothorax (29). Ce risque augmente quand on choisit un espace de plus en plus crânial.
Photographie 1 : Prélèvement hépatique échoguidé (Imagerie médicale Vétérinaire, Paris)
L’opérateur peut suivre le trajet de l’aiguille sur son écran jusqu’à la lésion à
ponctionner. L’aiguille apparaît sous la forme d’un point puis d’un trait hyperéchogène sans cône d’ombre associé. Le repérage de la pointe de l’aiguille peut être facilité par un léger mouvement oscillant d’avancée et de recul. Elle peut être également repérée en injectant une petite quantité de solution saline qui provoque l’apparition d’une petite zone hypoéchogène et qui marque ainsi l’emplacement de la pointe de l’aiguille (42).
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Photographie 2 : Visualisation de l’aiguille (flèche grise) sur l’écran de l’échographe lors d’une ponction hépatique (service d’imagerie, ENVL)
Il est important de réaliser la ponction assez rapidement, car au delà de dix secondes le
traumatisme tissulaire active le système de coagulation ce qui peut obturer l’aiguille et diminuer la qualité de la cytoponction (30). Le prélèvement peut être réalisé de deux façons différentes : soit par aspiration en tirant sur le piston de l’aiguille soit par capillarité en faisant plusieurs mouvements de va et vient avec l’aiguille dans la lésion. Les prélèvements par capillarité sont souvent préférés ; le volume récolté est moins important mais la qualité est meilleure car il y a moins d’hémodilution. Le prélèvement est arrêté dès l’apparition de sang dans la seringue pour limiter l’hémodilution (24). Trois à cinq prélèvements sont ainsi réalisés dans différentes zones de la lésion (31). Une fois la ponction réalisée, il est important de maintenir la sonde en place afin de déceler une éventuelle hémorragie ou tout écoulement suspect (7).
3) Particularité des cytoponctions du pancréas
Les techniques de prélèvement sur le pancréas sont les mêmes que celles du foie
décrites précédemment. Elles présentent quelques particularités : chez l’homme, elles sont pratiquées lors de collections liquidiennes pancréatiques. L’aspiration est parfois difficile en raison de l’obturation de la lumière par des débris cellulaires et tissulaires (29). Comme on l’a décrit précédemment, des complications rares de pancréatite aiguë ont été observées, surtout lorsque du tissu sain est traversé. De ce fait et contrairement aux recommandations pour les autres organes abdominaux, dans le cas du pancréas il convient de pénétrer directement dans la lésion plutôt que de traverser d’abord le parenchyme sain (29). Lors de la ponction d’une lésion cavitaire, il est souhaitable de vidanger la lésion complètement, afin d’éviter que le reste du contenu ne se répande dans l’abdomen (risque de péritonite ou d’essaimage tumoral).
27
4) Nouvelle technique de prélèvement : par échoendoscopie
Cette méthode est utilisée en médecine humaine, elle nécessite l’utilisation d’une
petite sonde incorporée à l’extrémité d’un endoscope. L’échoendoscope est introduit directement dans le tube digestif (8). Des prélèvements par aspiration à l’aiguille fine peuvent être réalisés pendant l’échoendoscopie (16). La sonde échographique peut être positionnée à proximité des organes adjacents au tube digestif comme le foie et le pancréas (38). Cette technique permet de repérer plus facilement les lésions pancréatiques même de petite taille et de réaliser des cytoponctions sur cet organe qui est peu accessible (45). Le risque de complication avec cette méthode est très faible mais elle nécessite une anesthésie générale (38).
III. Préparation des lames
A. Etalement des prélèvements
Une fois le prélèvement réalisé, il est placé sur une lame. Pour cela, l’aiguille
contenant le prélèvement est retirée de la seringue, la seringue est remplie d’air puis l’aiguille est replacée sur la seringue. Le prélèvement est poussé à la surface d’une lame en enfonçant rapidement le piston de la seringue. La goutte formée doit avoir la taille d’une tête d’épingle. Si elle est trop petite, les cellules pourraient se rompre lors de l’étalage et si elle est trop grosse, il devient difficile d’étaler finement les cellules sur la lame (27). Une ou plusieurs lames peuvent être réalisées en fonction de la quantité récoltée. Il est conseillé d’effectuer au moins trois étalements pour avoir les meilleures chances d’en avoir un correct et de permettre plusieurs colorations si besoin (24). Le prélèvement est ensuite étalé immédiatement à la surface de la lame à l’aide d’une autre lame selon plusieurs techniques d’étalement : la méthode d’écrasement ou la méthode d’étirement vers l’arrière suivi d’un étalement vers l’avant (technique d’étalement des frottis sanguin). La fixation est réalisée en laissant les lames sécher à l’air pour les colorations de type Romanowsky ; le séchage doit être effectué rapidement pour obtenir des détails cytoplasmiques et nucléaires optimaux. Les prélèvements doivent être préservés de toute vapeur de formol qui génère des sous colorations sévères (35). Certaines colorations nécessitent une « fixation humide » avec de l’éthanol comme le colorant de Papaniclaou, les colorants bichromes ou trichromes (27).
28
Figure 2 : Technique d’écrasement
B. Colorations
1) Coloration de Romanowsky
C’est la coloration la plus souvent utilisée en cytologie de routine. Elle comprend
plusieurs colorations dont celle de Wright, de Giemsa, de Wright-Giemsa, de May-Gründwald-Giemsa (MGG) ainsi que des colorations rapides développées pour être utilisées en clinique (27). Ce sont des colorations à base d’alcool à utiliser sur des cellules séchées à l’air. Les propriétés tinctoriales varient considérablement entre les différentes colorations de Romanowsky, surtout entre les différents types de coloration rapide de Wright. Le cytotechnicien doit connaître l’aspect des précipités de colorants pour éviter de les interpréter par erreur comme des agents infectieux. Ce sont des colorations rapides et faciles à réaliser (24).
2) Colorations bichromes et trichromes
Ces colorations sont appliquées sur des cellules qui ont immédiatement subi une
fixation humide. La coloration de Papanicolaou n’est pas utilisée couramment en médecine vétérinaire car elle demande une préparation plus longue, elle est plus compliquée que la coloration MGG (18) et elle ne permet pas d’évaluer les caractéristiques tinctoriales du cytoplasme. En revanche elle accentue les détails nucléaires et permet de détecter précocement les aberrations morphologiques indiquant une dysplasie ou une néoplasie (34).
3) Réaction à l’Acide Périodique Schiff (PAS)
Cette coloration est utilisée pour mettre en évidence les constituants des tissus
caractérisés par des groupements voisins glycol ou hydroxyamine. Le glycogène, la mucine, l’acide hyaluronique, la fibrine, la hyaline et d’autres éléments présentent une réaction positive avec cette coloration qui va du rose au rouge cramoisi (18).
29
4) Coloration aqueuse
Il s’agit du nouveau bleu de méthylène. C’est un colorant à base d’eau qui permet un
examen immédiat après son application sur des cellules séchées à l’air. Il a été remplacé par la coloration de Romanowsky. Il reste intéressant pour vérifier la richesse des lames, la présence d’une inflammation ou la présence de certains agents infectieux (27).
5) Colorations spéciales
Les colorations cytochimiques et immunochimiques permettent de différencier les
lignées cellulaires ou de trouver la famille d’origine. Elles sont intéressantes lorsque les cellules sont peu différenciées dans le cadre d’un processus tumoral (27). Leur utilisation en routine reste encore exceptionnelle.
IV. Interprétation des résultats
A. Aspect normal et physiopathologique
1) Foie
L’aspiration d’un foie normal fournit une lame modérément riche en cellules. Les
cellules hépatiques sont nombreuses sur les lames mais elles manifestent une forte tendance à se regrouper en amas plans. Elles sont le plus souvent rencontrées sous forme de travée ou d’amas (11).
Les hépatocytes constituent la majeure partie des cellules provenant d’un foie normal (35), ils sont isolés ou en placard et ils ont des limites cellulaires bien visibles. Dans l’espèce canine, les hépatocytes sont 4 à 5 fois plus grands que les hématies. Leurs noyaux sont arrondis, ils contiennent un nucléole bien visible. Le cytoplasme est légèrement basophile avec des granulations fines rosées à bleues correspondant au réticulum endoplasmique. Quelques hépatocytes provenant d’un foie normal peuvent être binucléés, contenir un macronucléole ou des vacuoles cytoplasmiques. Divers pigments peuvent être visualisés, en particulier la lipofushine et les pigments biliaires. Ces pigments biliaires de couleur bleu-vert intrahépatiques ou intracaniculaires peuvent être visibles en faible quantité (3).
De petits placards de cellules épithéliales biliaires et, parfois, de cellules endothéliales ou de cellules hématopoïétiques en différenciation peuvent être observés. Les cellules de l’épithélium biliaire sont plus petites que les hépatocytes à rapport nucléo-cytoplasmique élevé, arrondies et d’aspect régulier, à limites cellulaires bien distinctes (3).
Les prélèvements hépatiques sont très souvent contaminés par du sang, cela peut poser problème lors d’une suspicion d’inflammation (10). Les neutrophiles et les lymphocytes peuvent provenir du sang. En cas de doute, on conseillera de réaliser un hémogramme.
30
2) Pancréas
Les préparations cytologiques du tissu pancréatique contiennent souvent un grand
nombre de cellules lysées ou de matériel cellulaire rompu. L’extrême fragilité des cellules et l’activité cellulaire protéolytique entraînent une dégradation rapide des cellules après leur mort. Une disposition cellulaire en acinus est parfois visible. Les cellules intactes ont des limites cellulaires peu distinctes et un cytoplasme basophile finement granuleux qui reflètent l’activité fonctionnelle de ces cellules. La vacuolisation du cytoplasme est variable. Plusieurs placards de cellules serrées à vacuolisations cytoplasmiques nettes peuvent représenter des cellules des îlots de Langerhans. Les noyaux sont petits avec des nucléoles peu visibles (3).
B. Aspect des lésions
On n’abordera que les lésions les plus souvent rencontrées en cytolopathologie
concernant le foie et le pancréas dans l’espèce canine et féline.
1) Foie
(a) Lipidose hépatique féline
L’accumulation de lipides dans les hépatocytes est assez fréquente chez le chien et le
chat. Les hépatocytes contiennent des petites vacuoles claires qui représentent l’accumulation de lipides, les vacuoles sont nombreuses dans le cytoplasme. Souvent les hépatocytes contiennent de fines granulations intracytoplasmiques constituées d’un pigment vert-brun représentant soit de la lipofushine soit des pigments biliaires. Chez les chats très ictériques, la bile peut remplir les espaces intracanaliculaires. Parfois, de grandes vacuoles indépendantes peuvent repousser le noyau vers la périphérie (3).
(b) Cholangiohépatite féline
On retrouve une infiltration de cellules inflammatoires associées à une cholestase
marquée, de la nécrose, une hyperplasie des hépatocytes et des structures biliaires (11). Il est impossible de différencier les hépatites suppurées chroniques des hépatites aiguës en cytologie. Lors de cholangite lymphocytaire, il y a un nombre modéré de lymphocytes et de plasmocytes mélangés aux hépatocytes. L’histologie est nécessaire pour différencier la cholangite lymphocytaire d’un lymphome bien différencié. Dans les deux types de cholangite, la cholestase intrahépatique et intracanaliculaire peuvent être nettes (3).
(c) Hépatose induite par les corticoïdes
Les dépôts de glycogène apparaissent sous la forme de vacuoles cytoplasmiques à
l’intérieur des hépatocytes. L’accumulation de glycogène crée un aspect en « plume d’oiseau » du cytoplasme, avec des vacuoles « entrelacées de mèches de cytoplasme bleu ».
31
Ces lésions vacuolaires mal définies contrastent avec les délimitations vacuolaires à l’emporte pièce observées lors de lipidose hépatique (3). Le volume des hépatocytes peut tripler lors d’accumulation de glycogène (35). Ces lésions peuvent être associées à de la dégénérescence hépatocytaire également responsable d’un aspect vacuolaire et claire du cytoplasme.
(d) Hépatopathies inflammatoires non spécifiques
Les hépatites chez le chien et le chat peuvent avoir différentes causes : virales
(adénovirus, herpes virus, coronavirus), bactériennes (clostridies, leptospires, …), parasitaires (toxoplasme) ou toxiques (44). Les aspirations à l’aiguille fine permettent d’identifier les cellules qui prédominent lors de processus inflammatoire hépatique. Diverses cellules inflammatoires (polynucléaires, lymphocytes, plasmocytes, …) peuvent être observées. Elles peuvent être associées à de la nécrose, de l’hyperplasie ou/et de la cholestase (11). La cytologie ne permet pas de déterminer la localisation du processus inflammatoire sur le plan architectural et son étendue (35), seule l’histologie le permet. Ces informations sont nécessaires pour différencier de nombreuses lésions et donner leur pronostic (3).
(e) Hématopoïèse extramédullaire
Le foie des animaux adultes garde son aptitude à produire des cellules
hématopoïétiques (35). Quelques précurseurs hématopoïétiques peuvent être observés dans le foie normal. Dans certaines conditions pathologiques (insuffisance médullaire réelle ou relative), le nombre de ces cellules augmente spectaculairement. Les différents stades des lignées granulocytaire, érythrocytaire et mégacaryocytaire sont alors observés. Les derniers stades de chaque lignée cellulaire prédominent comme dans la moelle osseuse.
(f) Toxicité au cuivre du Bedlington et du West Highland white terrier
L’accumulation de cuivre dans le foie des Bedlington et des West Highland white
terriers entraîne une hépatite chronique active et une insuffisance hépatique progressive. Sur les cytoponctions des foies atteints, on note un faible nombre de cellules inflammatoires mixtes mélangées à des hépatocytes. Les hépatocytes contiennent des granules translucides pâles qui se colorent à l’acide rubéanique et représentent des inclusions de cuivre (3).
(g) Hyperplasie nodulaire, adénome hépatique (hépatome) ou adénocarcinome
Les lésions d’hyperplasie se retrouvent fréquemment chez les vieux chiens, le plus
souvent chez les chiens de plus de huit ans. Le nombre de nodules peut varier de quelques uns à plusieurs (35). Dans le cas d’hyperplasie, les hépatocytes peuvent prendre plusieurs formes. Le plus souvent, on note la présence de grandes cellules binucléées, contenant un grand nucléole bien visible.
La différenciation entre un hépatome et un carcinome bien différencié est difficile à
l’histologie et souvent impossible par cytologie. La mise en évidence à l’histologie de
32
modifications architecturales (croissance infiltrante, remaniements vasculaires, ….) sont des critères importants que le cytologiste ne peut observer (3). Lors d’adénome, on observe des hépatocytes d’apparence relativement normale qui peuvent avoir une légère anisocytose et anisocaryose (35). L’aspect cytologique des hépatocarcinomes est très variable allant de cellules très bien différenciées à des cellules très pléomorphes pouvant présenter des atypies et des bizzareries cytonucléaires marquées (12). Les hépatocytes malins ont souvent un à trois nucléoles bien visibles et des formes atypiques multinucléées peuvent exister (3). Un hépatocarcinome doit toujours être considéré dans le diagnostic différentiel d’une lésion hépatique isolée hyperéchogène (17). Les hépatocarcinomes représentent moins de 1% de l’ensemble des tumeurs chez le chien (15), et 52% des tumeurs primitives du foie (39).
(h) Adénome ou carcinome des cellules des voies biliaires
Chez les chiens et les chats, la nature diffuse des carcinomes des canaux biliaires
augmente les possibilités de détection cytologique. Les cellules sont cuboïdes, à anisocaryose modérée. Elles ont un fort rapport nucléo-cytoplasmique et renferment un gros nucléole. Les formations acineuses trabéculaires ou papillaires sont fréquentes (3).
(i) Tumeurs métastatiques du foie
Les cellules métastatiques peuvent être détectées sur les prélèvements par
cytoponction du foie. Cependant, la détermination précise de l’origine tumorale peut s’avérer difficile selon le degré de différenciation (3).
2) Pancréas
(a) Pancréatites
Une pancréatite peut provoquer une accumulation locale de liquide, qui peut avoir les
caractéristiques d’un transudat modifié ou d’un exsudat purulent stérile. Les prélèvements sont souvent stériles et comportent des neutrophiles incrustés dans un fond protéique (2).
(b) Carcinome pancréatique
Les carcinomes pancréatiques chez le chien et le chat paraissent essentiellement
originaires des cellules acineuses du pancréas exocrine (20). Les échantillons cytologiques prélevés sur des carcinomes pancréatiques contiennent des débris cellulaires et des cellules inflammatoires du fait de la nécrose tumorale et souvent de la contamination intestinale. La contamination du pancréas est fréquente. Les cellules tumorales intactes présentent les caractères habituels de malignité, à savoir un fort rapport nucléo-cytoplasmique, une anisocaryose et une hyperchromasie. Les détails cytoplasmiques sont souvent non visibles, même s’il est fréquent d’observer des granulations bleues. Souvent, ces tumeurs exhibent un arrière-fond sale bleu-gris qui représente une dégradation cellulaire protéolytique (3).
33
(c) Tumeurs des cellules de Langerhans
Les tumeurs des cellules de Langerhans sont rarement diagnostiquées chez le chien et
le chat. La tumeur la plus fréquente est l’insulinome. Même si le diagnostic cytologique de ces tumeurs est rare, leurs métastases, fréquentes au niveau du foie, sont parfois observées. Les cellules tumorales ont un aspect neuroendocrinien typique décrit précédemment (3).
V. Fiabilité des résultats
A. Comparaison entre cytoponctions et biopsies
Il est intéressant de corréler les résultats obtenus par cytoponction et ceux obtenus par
biopsie dans le cas de prélèvements hépatiques. On trouve des résultats très différents selon les études : de 29 à 80% de résultats similaires entre les cytoponctions et les biopsies (13, 41). Ces différences peuvent être expliquées par des différences de méthode de prélèvements et d’interprétation des résultats obtenus. Les différences de diagnostic sont fréquentes lors d’inflammation. Ainsi, les hépatites sont souvent sous-diagnostiquées lors de cytoponction par rapport aux biopsies (46).
B. Précision des cytoponctions
Différentes études ont été réalisées pour déterminer la précision des cytoponctions.
Parmi celles-ci, on peut citer l’étude de Menard et Papageorges portant sur 600 chiens et 307 chats ayant subi des cytoponctions échoguidées du foie. Lorsque les ponctions étaient combinées à l’échographie, un diagnostic était obtenu dans 97% des cas pour les chiens et 98% pour les chats (32, 33).
En médecine humaine, la précision des cytoponctions est très élevée. Une étude portant sur 193 patients ayant subi des ponctions à l’aiguille fine de différents organes a montré une précision de 94% (47). Concernant le pancréas, lorsqu’une masse pancréatique est présente un diagnostic par ponction à l’aiguille fine est obtenu dans 50 à 80% des cas chez l’homme (6). Dans une autre étude en médecine humaine portant sur des ponctions à l’aiguille fine du pancréas et d’autres masses abdominales, le diagnostic est obtenu dans 85% des cas sans complication clinique (20).
C. Facteurs influençant la précision des cytoponctions
Différents facteurs peuvent influencer la précision des cytoponctions. Le premier facteur est la méthode et le déroulement du prélèvement. Les résultats
obtenus seront différents si les prélèvements sont réalisés sous échographie, lors d’une laparotomie ou post mortem (13).
La qualité du prélèvement et la quantité de cellules présentes dans le prélèvement influencent le résultat des cytoponctions. La qualité de préparation des lames peut aussi
34
influencer ces résultats. L’aspect de la lésion est important : la localisation et la taille de la lésion vont influencer les résultats. Ainsi, une lésion diffuse aura plus de chance d’être représentée dans le prélèvement (41) qu’une lésion localisée et de petite taille (14).
La nature de la lésion influence également le résultat. Par exemple, les lésions cavitaires comme les hémangiosarcomes ou les lésions kystiques fourniront moins de cellules. Les cytoponctions de ce type de lésion auront plus de probabilité d’être non diagnostiques que celles provenant de lésions compactes (41).
VI. Données statistiques en matière d’affection hépatique et pancréatique chez le chien et le chat
Nous allons exposer les résultats de deux études réalisées par Menard et Papageorges
sur 600 chiens et sur 307 chats dans les tableaux suivants (32, 33).
Tableau 1 : Résultats de 600 cas de ponction à l’aiguille fine chez le chien
Résultats cytologiques Nombre de cas (Pourcentage)
Hépatites 318 (53%)
Tumeurs
136 (22,6%) Hépatocarcinomes : 14 (2,3%)
Lymphomes : 23 (3,8%) Histiocytoses malignes : 3 (0,5%)
Sarcomes : 14 (2,3%) Métastases : 30 (5%)
Carcinomes indifférenciés : 22 (3,6%) Hépatopathies vacuolaires 62 (10,3%)
Nodules bénins 13 (2,1%) Hépatopathies vacuolaires
associées à une hépatite 23 (3,8%)
Autres 33 (5,5%) Non interprétables 15 (2,5%)
35
Tableau 2 : Résultats de 307 cas de ponction à l’aiguille fine chez le chat
Résultats cytologiques Nombre de cas (Pourcentage)
Hépatites 150 (48,8%) Lipidoses 133 (43,3%)
Tumeurs
64 (20,8%) Hépatocarcinome : 4 (1,3%)
Lymphome : 26 (8,5%) Mastocytose systémique : 4 (1,3%) Carcinome indifférencié : 2 (0,6%)
Métastases : 11 (3,7%) Cholestases 2 (0,6%) Normaux 2 (0,6%)
Non interprétables 5 (1,6%)
Dans une autre étude réalisée en 1988 sur 52 animaux (21 chats et 31 chiens), 20 résultats de cytoponction ont été obtenus et classés : 2 cas « normal » (soit 10%), 1 cas « hyperplasique » (soit 5%), 1 cas « inflammatoire » (soit 5%), 5 cas « dégénératif » (soit 25%), 4 cas « tumoral » (soit 20%) et 4 cas étaient non diagnostiques (23).
36
37
DEUXIEME PARTIE :
ETUDE EXPERIMENTALE
38
39
I. Aspect cytologique des prélèvements du foie et du pancréas chez le chien en situations physiologiques et pathologiques banales
A. Matériel et méthode
Des cytoponctions hépatiques et pancréatiques ainsi que des biopsies hépatiques ont
été réalisées post mortem sur des chiens décédés (par euthanasie) à l’Ecole Nationale Vétérinaire de Lyon. Sept chiens de différentes races ont été ponctionnés quelques heures après leur mort (maximum 6 heures). Une laparotomie a été réalisée sur ces chiens pour permettre le prélèvement du foie et du pancréas. Les ponctions à l’aiguille fine du foie ont été faites sur les lobes gauches en périphérie et au centre. Deux techniques ont été utilisées à chaque prélèvement : la ponction par aspiration et la ponction par capillarité. L’étalement a été réalisé en utilisant la méthode d’écrasement et les lames ont été fixées par séchage à l’air. Les lames ont été colorées avec la coloration MGG et une lame a été colorée avec la coloration PAS. Les biopsies ont été faites, comme les cytoponctions, en périphérie et au centre des lobes gauches du foie chez cinq chiens. Elles ont été réalisées à l’aide d’une incision en côte de melon avec un scalpel. Nous avons utilisé trois différents fixateurs pour chaque prélèvement par biopsie : le formol, le Fine Fixx et l’Excell ; et ceci afin de comparer la qualité de fixation de ces deux derniers produits à celle du formol.
B. Résultats
Deux cas n’ont pas pu être exploités : concernant le premier cas, les lames ne
comportaient pas assez de matériel cellulaire, et concernant le deuxième, les prélèvements présentaient un état de lyse avancée.
Les cytoponctions ont montré dans un cas une dégénérescence, une vacuolisation des hépatocytes ainsi que des signes d’hépatite.
Chez un chien présentant un lymphome hépatique, seul le pancréas a été prélevé, il n’a pas montré d’anomalie majeure.
Pour les trois autres, cas nous avons obtenu des lames d’assez bonne qualité, elles ne montraient pas d’anomalie majeure. Elles nous ont fourni des images de référence présentées ci-dessous.
40
Photographie 3 : Hépatocytes normaux (x 40) (Laboratoire d’Hématologie, ENVL)
Photographie 4 : Hépatocytes normaux (x 40) (Laboratoire d’Hématologie, ENVL)
Amas d’hépatocytes normaux et cellules de canal biliaire
41
Photographie 5 : Pancréas normal, acini et canaux pancréatiques (x 20) (Laboratoire d’Hématologie, ENVL)
Photographie 6 : Pancréas normal, acini pancréatiques (x 100) (Laboratoire d’Hématologie, ENVL)
42
En qui concerne les biopsies hépatiques, nous n’avons pas vu d’anomalie majeure (seul un prélèvement présentait une infiltration portale eosinophilique focale). Les deux différents fixateurs utilisés ont pu être comparés au formol :
- les prélèvements fixés avec le Fine Fixx présentaient une mauvaise coloration des hématies ainsi qu’une rétraction des hépatocytes.
- Les prélèvements fixés avec Excell présentaient des précipités bruns dans les hépatocytes et une coloration moyenne des hématies.
Le formol semble donc être le meilleur fixateur pour les prélèvements hépatiques.
II. Etude rétrospective des résultats fournis par l’examen cytologique du foie et du pancréas chez le chien et le chat sur une série de 213 cas
A. Matériel et méthode
213 résultats de cytoponctions hépatiques et pancréatiques ont été collectés, ils
concernent des cytoponctions échoguidées réalisées dans le service d’imagerie de l’ENVL et par des vétérinaires extérieurs adressés au laboratoire de cytologie vétérinaire (LCV), groupement de recherche cytologique (GRC) de 2005 à mai 2007. Pour chaque cas, nous avons récolté l’anamnèse, les commémoratifs ainsi que les résultats de l’examen échographique à partir des données fournies par les vétérinaires référents ou en consultant la base de données de la clinique de l’ENVL (pour les animaux prélevés dans cette même clinique). Les donnée, concernant le suivi des animaux après les cytoponctions ont été récoltées à l’aide d’un questionnaire envoyé aux vétérinaires référents (cf. annexe). Pour quelques cas les vétérinaires ou les propriétaires ont été contactés directement par téléphone.
Les résultats ont été répertoriés dans un tableau comprenant la description de l’animal, les signes cliniques, les résultats échographiques ainsi que les hypothèses diagnostiques formulées, les résultats cytologiques et le suivi de l’animal. Les résultats ont été classés sur la base du diagnostic cytologique en sept grandes catégories :
• absence d’anomalie majeure • hyperplasie, dysplasie et incertitude • surcharge et dégénérescence • inflammation • tumeur • autre • pancréas
B. Résultats
Nous avons exclu de notre étude 9 cas qui n’étaient pas exploitables : ils présentaient
tous des prélèvements trop restreints en matériel cellulaire pour permettre une analyse cytologique fiable.
43
Au total, 204 cas ont pu être exploités chez 145 chiens et 59 chats. Nous avons récolté 194 prélèvements hépatiques et 10 prélèvements pancréatiques.
Dans un souci de clarté, les résultats ont été classés dans un tableau (cf. annexes). Les cas concernant les prélèvements hépatiques ont été classés en différentes catégories comme indiqué précédemment : 22 cas ont été classés dans la catégorie « absence d’anomalie majeure », 35 cas dans la catégorie « hyperplasie, dysplasie et incertitude », 48 cas dans la catégorie « surcharge et dégénérescence », 26 dans la catégorie « inflammation », 56 dans la catégorie « tumeur » et 7 cas dans la catégorie « autre ». Dans la catégorie « tumeur », nous avons classé les résultats cytologiques selon le type tumoral : 30 tumeurs de type carcinome, 4 tumeurs de type sarcome, 16 tumeurs de type lymphome et hémopathie maligne, 4 tumeurs de type histiocytose et 2 tumeurs de type mastocytose systémique.
A partir du tableau obtenu, nous avons développé ci-dessous des tableaux simplifiés. Nous avons ajouté des images cytologiques pathologiques, obtenus à partir de nos cas, représentant les différentes catégories.
Tableau 3 : Classement des résultats des prélèvements hépatiques chez le chien et le chat
Catégorie Chien (pourcentage) Chat (pourcentage) Total (pourcentage)
Absence d’anomalie majeure
13 (9,5%) 9 (15,8%) 22 (11,3%)
Hyperplasie, dysplasie et incertitude
34 (24,8%) 1 (1,7%) 35 (18%)
Surcharge et dégénérescence
34 (24,8%) 14 (24,5%) 48 (24,7%)
Inflammation 23 (16,9%) 3 (5,3%) 26 (13,4%) Tumeur 29 (21,2%) 27 (47,4%) 56 (28,9%) Autre 4 (2,9%) 3 (5,3%) 7 (3,6%) Total 137 57 194
Tableau 4 : Répartition des résultats dans la catégorie tumeur chez le chien et le chat
Type tumoral Chien (pourcentage) Chat (pourcentage) Carcinomes 5 (3,6%) 12 (21%) Sarcomes 4 (2,9%) 0
Lymphomes et hémopathies malignes
9 (6,6%) 7 (12,3%)
Histiocytoses 4 (2,9%) 0 Mastocytoses 0 2 (3,5%) Métastases 6 (4,3%) 6 (10,5%)
Autre 1 (0,7%) 0
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Photographie 7 : Hépatocarcinome chez un chat (x 40) (LCV, GRC)
Photographie 8 : Sarcome hépatique (x 40) (LCV, GRC)
A gauche hépatocytes avec cholestase et à droite cellules sarcomateuses
45
Tableau 5 : Répartition des résultats dans la catégorie surcharge et dégénérescence chez le chien et le chat
Type surcharge et
dégénérescence Chien (pourcentage) Chat (pourcentage)
Stéatose/lipidose 7 (5,1%) 13 (22,8%) Dégénérescence et/ou
surcharge glycogénique 25 (18,2%) 0
Amyloïdose 1 (0,7%) 0 Indéterminé 1 (0,7%) 1 (1,7%)
Photographie 9 : Dégénérescence ballonisante (surcharge glycogénique) (x 40) (LCV, GRC)
46
Photographie 10 : Lipidose (x 10) (LCV, GRC)
Tableau 6 : Répartition des résultats dans la catégorie inflammation chez le chien et le chat
Type inflammatoire Chien (pourcentage) Chat (pourcentage) Hépatite mixte 12 (8,7%) 2 (3,5%)
Infiltration lymphocytaire 2 (1,5%) 1 (1,7%) Hépatite neutrophilique 6 (4,4%) 0 Hépatite eosinophilique 2 (1,5%) 0
Indéterminé 1 (0,7%) 0 Abcès 1 (0,7%) 0
47
Photographie 11 : Hépatite neutrophilique marquée chez un chien (x 25) (LCV, GRC)
Sur les 10 prélèvements pancréatiques obtenus, 3 concernaient des lésions inflammatoires, 5 concernaient des processus tumoraux dont 2 lymphomes et 3 adénocarcinome, un prélèvement concernait un kyste et un prélèvement concernait une hyperplasie.
Photographie 12 : Infiltration lymphomateuse du pancréas exocrine chez un chien
(x 100) (LCV, GRC)
Un acinus pancréatique normal au centre entouré de cellules lymphomateuses
48
Nous avons reçu 141 réponses aux questionnaires envoyés ; dans 8 cas, les vétérinaires référents n’ont pas eu de nouvelles des animaux qu’ils avaient prélevés.
Nous n’avons pu obtenir que 8 comptes rendus histologiques dans toutes nos réponses.
49
TROISIEME PARTIE :
DISCUSSION
50
51
I. Qualité des échantillons
Sur les 213 cas collectés, 67 prélèvements présentaient un fond hémorragique soit 31,6 % des cas, 25 cas présentaient un matériel cellulaire insuffisant soit 11,7 %. Parmi ces cas, 9 ont été retirés de l’étude du fait de leur pauvreté en matériel qui ne permettait d’analyse cytologique fiable. Il faut noter que dans un cas, les lames avaient déjà été colorées ce qui a gêné l’examen cytologique.
On peut remarquer que les prélèvements sont souvent hémorragiques et plus particulièrement dans le cas des prélèvements hépatiques. Le type de prélèvement, par capillarité ou par aspiration, n’était pas mentionné. Il aurait été intéressant qu’il soit précisé car les prélèvements par aspiration sont souvent d’avantage contaminés par du sang (cf. II. C. 2.). La présence d’un fond hémorragique sur les lames ne compromet pas la lecture de celles-ci sauf dans le cas des processus inflammatoires. En effet, la quantification de l’inflammation devient plus délicate (cf. IV. A. 1.).
On note l’importance de vérifier après l’étalement si les lames sont suffisamment riches en matériel pour permettre un examen cytologique optimum, l’importance de la compétence des imageurs réalisant les prélèvements et de la nécessité de réaliser des cytoponctions multiples et de bonne qualité. En effet, la qualité et la représentativité des échantillons sont les seuls garants des imprécisions et des erreurs de diagnostic par défaut. Pour illustrer ces propos, nous pouvons citer comme exemple le cas 7V020047 : les conclusions de l’examen étaient une stéatose sans infiltration mastocytaire. Quelques semaines plus tard, l’animal est décédé ; à l’autopsie, une infiltration des nœuds lymphatiques iléo-coliques, de la peau et du foie et les résultats histologiques obtenus ont donné un mastocytome de grade III peu différentié en cours de diffusion métastatique et d’éclosion multicentrique tégumentaire dont multiples métastases dans le parenchyme hépatique. Nous pouvons expliquer cette divergence par le fait que les échantillons cytologiques n’étaient pas représentatifs de l’ensemble du foie. Il faut souligner la bonne qualité de la plupart des prélèvements réalisés. Ainsi, nous avons compté 93 prélèvements d’excellente qualité soit 43,9 % des cas.
II. Etude statistique des résultats
A. Certitude du diagnostic
Les résultats obtenus ont été classés selon la certitude du diagnostic cytologique : en
certitude lorsque un diagnostic cytologique a été établi et ils ont été classés en probabilité lorsqu’un diagnostic cytologique probable a été donné ou que plusieurs hypothèses ont été émises.
52
Tableau 7 : Certitude du diagnostic selon les catégories
Catégorie Certitude (pourcentage)
Probabilité (pourcentage)
Total
Absence d’anomalie majeure 20 (90,9%) 2 (9,1%) 22 Hyperplasie, dysplasie et
incertitude 5 (14,3%) 30 (85,7%) 35
Surcharge et dégénérescence 32 (66,7%) 16 (33,3%) 48 Inflammation 6 (23,1%) 20 (76,9%) 26
Tumeur 34 (60,7%) 22 (39,3%) 56 Autre 2 (28,6%) 5 (71,4%) 7
Pancréas 7 (70%) 3 (30%) 10 Total 106 (52%) 98 (48%) 204
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Probabilité
Figure 3 : Répartition des diagnostics cytologiques probables selon les catégories
On peut noter que les catégories « hyperplasie, dysplasie et incertitude » et « inflammation » présentent proportionnellement le plus de résultats probables, c’est à dire où le diagnostic cytologique n’était pas donné avec certitude.
Ces observations peuvent s’expliquer, dans le cas d’une inflammation légère ou modérée du foie, par le fait que la présence de cellules inflammatoires peut être due à une réelle inflammation ou à une contamination sanguine (cf. IV. A. 1). De ce fait, un diagnostic d’inflammation légère ou modérée ne peut être établi avec certitude sans connaissance de l’hémogramme de l’animal. En ce qui concerne la catégorie « hyperplasie, dysplasie et incertitude », la différentiation cytologique entre un nodule d’hyperplasie, un hépatome et un
53
hépatocarcinome bien différentié est délicate (cf. IV. B. 1. g.). Ainsi le diagnostic d’hyperplasie est rarement donné avec certitude.
Enfin, pour la catégorie « absence d’anomalie majeure », on a obtenu un pourcentage
de certitude assez élevé mais il est important de noter que les résultats cytologiques sont le plus souvent donnés sous réserve de la représentativité des échantillons. En effet, on ne peut pas exclure que les ponctions réalisées n’aient pas concerné les zones pathologiques.
B. Corrélation avec les hypothèses diagnostiques échographiques
On a comparé les hypothèses diagnostiques, formulées par les vétérinaires référents
lors de l’examen échographique de l’animal prélevé, aux résultats cytologiques. Pour chaque catégorie, ils ont été classés selon leur corrélation : en corrélé, non corrélé et incertitude. Les cas classés en corrélé sont les cas pour lesquels au moins une des hypothèses diagnostiques formulées pouvait être corrélée au résultat cytologique. Les cas classés en non corrélé sont les cas pour lesquels aucune des hypothèses formulées ne pouvait être corrélée au résultat cytologique. Les cas restants, ne pouvant pas être classés en corrélé ou non corrélé, ont été classés en incertitude.
Tableau 8 : Corrélation entre hypothèses diagnostiques échographiques formulées et résultats cytologiques
Catégorie Corrélé (pourcentage)
Non corrélé (pourcentage)
Incertitude Nombre de cas
Absence d’anomalie majeure
2 (15,4%) 11 (84,6%) 0 13
Hyperplasie, dysplasie et incertitude
12 (44,4%) 13 (48,1%) 2 27
Surcharge et dégénérescence
22 (71%) 9 (29%) 0 31
Inflammatoire 12 (63,2%) 6 (31,6%) 1 19 Tumoral 34 (85%) 6 (15%) 0 40
Autre 1 (20%) 4 (80%) 0 5 Pancréas 5 (83,3%) 1 (16,7%) 0 6
Total 88 (62,4%) 50 (35,5%) 3 141
En ce qui concerne la catégorie « absence d’anomalie majeure », nous constatons que la proportion de cas non corrélés est importante, ceci peut s’expliquer par :
- les compétences de l’imageur, on peut se demander si oui ou non une image lésionnelle a bien été identifiée.
- la nécessité du prélèvement, en effet on peut penser que si l’imageur a réalisé
des prélèvements par cytoponction c’est qu’il pensait que les images qu’il voyait devaient correspondre à une lésion.
54
- la représentativité des échantillons obtenus, ainsi on peut se demander si les échantillons étaient bien représentatifs du foie.
- la qualité des échantillons, on peut remarquer que les prélèvements présentant un
matériel insuffisant sont en plus grande proportion (6 cas sur 22) dans cette catégorie.
Pour la catégorie « hyperplasie », la forte proportion de cas non corrélés peut
s’expliquer par le fait que le plus souvent lorsqu’un imageur a une ou plusieurs images nodulaires, il pense en premier lieu à un processus tumoral avant un nodule d’hyperplasie.
Pour la catégorie « surcharge et dégénérescence », il est intéressant de constater que
lorsqu’il a une divergence entre les hypothèses formulées et le résultat cytologique, les hypothèses formulées le plus fréquemment sont des processus inflammatoires ou des processus tumoraux.
Pour la catégorie « inflammation », dans 3 cas non corrélés (sur 5 cas) les résultats
cytologiques étaient une hépatite modérée, on peut se poser la question pour ces cas de la difficulté du diagnostic cytologique lors d’inflammation légère ou modérée et de la réelle présence de cette inflammation. Enfin pour la catégorie « tumeur », on obtient la plus grande proportion de cas corrélés, en effet l’hypothèse de tumeur est celle qui est le plus souvent formulée. Dans 4 cas non corrélés (sur 6 cas) une hypothèse de processus tumoral avait bien été formulée mais le type tumoral ne correspondait pas.
C. Corrélation avec le suivi clinique et les résultats histologiques obtenus
1) Corrélation avec le suivi clinique
On a comparé les résultats cytologiques aux suivis cliniques collectés. Pour chaque
catégorie, ils ont été classés selon leur corrélation : corrélé, non corrélé et incertitude. Les résultats ont été classés en corrélé lorsque le suivi clinique et échographique obtenu (lorsqu’il était fourni) pouvaient être mis en corrélation logiquement avec le résultat cytologique. Par exemple lorsqu’on a obtenu un diagnostic cytologique de tumeur et un suivi avec une dégradation de l’état général puis décès de l’animal, le cas a été classé en corrélé. A l’inverse les cas dont les suivis cliniques ne pouvaient pas être mis en relation avec les résultats cytologiques ont été classés en non corrélé. Les cas ne pouvant être classés ni en corrélé ni en non corrélé ont été classés en incertitude.
55
Tableau 9 : Corrélation entre les résultats cytologiques et les suivis cliniques
Catégorie Corrélé (pourcentage)
Non corrélé (pourcentage)
Incertitude Nombre de cas
Absence d’anomalie majeure
10 (58,8%) 4 (23,5%) 3 17
Hyperplasie, dysplasie et incertitude
9 (52,9%) 6 (35,3%) 2 17
Surcharge et dégénérescence
25 (71,4%) 4 (11,4%) 6 35
Inflammatoire 14 (77,8%) 4 (22,2%) 0 18 Tumoral 36 (87,8%) 2 (4,9%) 3 41
Autre 3 (42,9%) 0 4 7 Pancréas 5 (83,3%) 1 (16,7%) 0 6
Total 102 (72,3%) 21 (14,9%) 18 141 Nous devons être très prudent dans l’interprétation de ces résultats car, dans la plupart des cas, les données fournies par les vétérinaires référents étaient assez limitées, peu de suivis échographiques ont été réalisés et lors du décès des animaux peu d’autopsies ont été effectuées. Ainsi on a obtenu peu d’information sur les causes des décès qui pouvaient n’avoir aucune relation avec le diagnostic cytologique.
On peut néanmoins noter que les résultats cytologiques sont compatibles avec les suivis cliniques dans plus de 50% des cas toutes catégories confondues.
2) Corrélation avec les résultats histologiques
Nous avons obtenu 8 résultats histologiques présentés dans le tableau ci-dessous avec
les résultats cytologiques associés.
56
Tableau 10 : Résultats cytologiques et histologiques
Description du cas Résultats cytologiques Résultats histologiques
Chien, Labrador retriever, Femelle,
13 ans 6V110190
Pas d’anomalie majeure observée, discrète inflammation neutrophilique
Hépatite suppurée chronique et diffuse associée à une
dégénérescence hépatocellulaire et à une
cholestase
Chien, Yorkshire terrier, Femelle,
12 ans C-6-0137
Nodules d’hyperplasie avec dégénérescence et possible fibrose
Hépatopathie stéroïde induite modérée à marquée, hépatite
réactionnelle minime, hépatite portale neutrophilique et lymphocytaire minime
Chien, Labrador retriever, Mâle castré,
5 ans 6V110183
Surcharge glycogénique et/ou dégénérescence associée à un très
discret degré d’hépatite. Une hépatose stéroïdienne doit être
recherchée en priorité
Identiques aux résultats cytologiques
Chien, Bouvier Bernois, Femelle,
8 ans 7V020047
Stéatose sans infiltration mastocytaire
Mastocytome de grade III peu différentié en cours de
diffusion métastatique et d’éclosion multicentrique
tégumentaire
Chien, Croisé, Femelle, 8 ans
7V020132
Carcinome évoquant en priorité une métastase d’un carcinome
extrahépatique avec nécrose ganglionnaire tumorale extensive, on peut envisager une origine primitive
pancréatique exocrine
Carcinome anaplasique d’origine digestive
envahissant totalement le tissus graisseux abdominal avec métastases hépatiques
Chien, Croisé, Mâle, 10 ans
6V090052
Tumeur hépatique qui évoque en priorité une métastase d’un carcinome extra-hépatique
Métastases hépatiques multiples d’un carcinome
pancréatique exocrine Chat, Siamois, Femelle, 13 ans
L07-2275
Hépatocarcinome relativement bien différencié
Carcinome hépatocellulaire
Chat, Américan Curl, Femelle stérilisée,
8 ans 6V030156
Tumeur hépatique, l’aspect cytologique évoque prioritairement une tumeur bénigne des cellules des
canaux biliaires. On ne peut cependant pas totalement exclure un
cholangiocarcinome ou un carcinome à petites cellules
métastatique, importante lipidose
Tumeur d’histogénèse indéterminée
(hépatoblastome ?)
Les quelques résultats histopathologiques obtenus illustrent essentiellement, sans
pouvoir être statistiquement représentatifs, la corrélation globalement satisfaisante pour les diagnostics de tumeur (exception faite de l’infiltration mastocytaire).
57
D. Corrélation avec les résultats de la bibliographie
En comparant nos résultats avec les résultats trouvés dans la littérature (cf. VI.), nous
pouvons constater que la proportion de diagnostic cytopathologique de néoplasie est approximativement la même, environ 20% des cas.
En ce qui concerne les hyperplasies, les processus inflammatoires et les surcharges, les résultats sont sensiblement différents par rapport aux trois principales études statistiques qui différent par ailleurs entre elles. en effet dans deux études menées par les même auteurs l’une chez le chien et le chat (32, 33) les processus inflammatoires sont plus représentés et inversement les hyperplasies et les surcharges le sont moins. A l’inverse dans la troisième étude (23) la proportion de diagnostics de « surcharge et/ou dégénérescence » est la même, mais le nombre de résultats d’hyperplasie et d’inflammation est inférieur à ceux obtenus dans notre étude.
Des études statistiques ultérieures menées sur de grandes séries seront nécessaires à l’appréciation de l’incidence effective des différentes pathologies hépatiques chez les carnivores domestiques.
58
59
CONCLUSION
L’échographie est un examen complémentaire réalisé en routine en médecine vétérinaire, mais il est très peu spécifique dans l’étude des lésions du foie et du pancréas. A l’issue de cet examen, un certain nombre d’hypothèses diagnostiques peuvent être formulées par l’imageur. La réalisation de prélèvements par cytoponction à la suite de cet examen va permettre de resserrer l’éventail des hypothèses diagnostiques émises voire d’établir un diagnostic de certitude. La cytoponction à l’aiguille fine est en effet une méthode rapide et peu invasive qui reçoit donc un nombre très limité de contre-indications en particulier dans l’exploration des masses et organes profonds. Cependant, la qualité et la représentativité des échantillons cytologiques fournis sont les conditions préalables indispensables à la fiabilité de cet examen morphologique qui dépendent entièrement de la performance du clinicien ou de l’imageur qui réalise les prélèvements.
Ce travail a eu pour but d’apprécier la pertinence des résultats cytologiques sur les cytoponctions du foie et du pancréas qui représentent les deux organes internes les plus fréquemment explorés par cette méthode en médecine vétérinaire. Des prélèvements par cytoponction post-mortem réalisés sur sept chiens nous ont permis d’apprécier l’aspect cytologique du foie et du pancréas en situation physiologique et pathologique banale.
L’étude rétrospective des cas pathologiques a porté sur 213 cas, 194 prélèvements
hépatiques et 10 prélèvements pancréatiques collectés chez 145 chiens et 59 chats sur une période d’environ deux ans. Les prélèvements hépatiques ont été classés sur la base du diagnostic cytologique en grandes catégories : 22 cas « absence d’anomalie majeure », 35 cas « hyperplasie, dysplasie et incertitude », 48 cas « surcharge et dégénérescence », 26 cas « inflammation », 56 cas « tumeur » et 7 cas « autre ». Nous avons volontairement retiré de l’étude 9 cas qui n’étaient pas exploitables.
Cette étude nous a permis de constater que, globalement, les résultats cytologiques
étaient en corrélation avec les hypothèses diagnostiques formulées lors de l’examen échographique (62,4%), et avec l’évolution clinique des animaux (72,3%). Cependant, il existe de notables variations au sein des différentes catégories. Ainsi, si les corrélations s’avèrent étroites entre hypothèses cliniques et échographiques, résultats cytologiques et suivis cliniques pour les processus tumoraux et les surcharges, elles paraissent moins évidentes pour les processus inflammatoires, difficiles à quantifier par le cytopathologiste sur les prélèvements hépatiques à l’exception des cas sévères, et pour les hyperplasies nodulaires qui sont le plus souvent suspectes de processus tumoraux à l’échographie, mais dont le suivi clinique, pour les cas exploitables, semble conforter le diagnostic cytologique de bénignité.
60
61
ANNEXES
Annexe 1 : Questionnaire envoyé aux vétérinaires référents
Questionnaire
Concernant le � chien � chat de Mlle Mme Mr
I. Quelle a été l’évolution clinique de l’animal suite aux cytoponctions ?
II. Est-ce qu’un suivi échographique a été réalisé ? Si oui indiquer les
conclusions
III. A-t-il été réalisé un examen histopathologique des tissus concernés par la cytoponction ? Si oui, indiquer le résultat
IV. Dans le cas où l’animal serait décédé, a-t-il été réalisé une autopsie sur l’animal ? Si oui, indiquer les anomalies observées
62
Annexe 2 : Lettre accompagnant le questionnaire
63
Annexe 3 : Fiche d’anamnèse accompagnant les prélèvements cytologiques
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CICOLINI CHARLOTTE
CYTOLOGIE PAR PONCTION ECHOGUIDEE DU FOIE ET DU PANCREAS CHEZ LE CHIEN ET LE CHAT - APPORT AU DIAGNOSTIC EN MEDECINE INTERNE - ETUDE RETROSPECTIVE SUR 213 CAS
Thèse Vétérinaire : Lyon , 12 novembre 2007
RESUME :
La réalisation de cytoponctions à la suite d’un examen échographique apporte une grande aide dans l’établissement d’un diagnostic de certitude, mais ceci sous réserve d’avoir des échantillons de bonne qualité et représentatifs. C’est une méthode rapide et peu invasive qui reçoit un nombre très limité de contre-indications.
Notre première étude nous a fourni des images cytologiques de référence du foie et du pancréas. Dans notre étude rétrospective de cas pathologiques collectés chez 145 chiens et 59 chats, nous avons obtenu 194 prélèvements hépatiques et 10 pancréatiques. Les prélèvements hépatiques ont été classés en grandes catégories cytologiques dont 35 « hyperplasie, dysplasie et incertitude », 48 « surcharge et dégénérescence », 26 « inflammation », et 56 « tumeur ».
A l’issue de cette étude, nous avons pu constater que, globalement, les résultats cytologiques étaient en corrélation avec l’examen échographique effectué (62,4%) et avec l’évolution clinique des animaux (70,9%).
MOTS CLES : - CYTOLOGIE - FOIE - PANCREAS - CHIEN - CHAT
JURY :
Président : Monsieur le Professeur Jean-Yves SCOAZEC
1er Assesseur : Madame le Professeur Corinne FOURNEL 2ème Assesseur : Monsieur le Docteur Thierry MARCHAL Maître
de Conférences Membre invité : Monsieur le Docteur Michel LABADIE
DATE DE SOUTENANCE : 12 Novembre 2007
ADRESSE DE L’AUTEUR :
Route de Chapois 39300 LES NANS
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