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i
UNIVERSIDAD TÉCNICA PARTICULAR DE LOJA
La Universidad Católica de Loja
TITULACIÓN DE MÉDICO
Patrones de resistencia bacteriana de los microorganismos más comunes en el hospital de SOLCA de Loja en los meses de junio a noviembre de 2010.
Trabajo de fin titulación
AUTORA:
Guadalima Malla, Liliana Marley
DIRECTOR:
Romero Ramírez, Servio Antonio, Dr.
LOJA – ECUADOR 2012
ii
Doctor
Servio Antonio Romero Ramírez
DOCENTE – DIRECTOR DE TESIS
CERTIFICA:
Que el presente trabajo de investigación, realizado por la
estudiante LILIANA MARLEY GUADALIMA MALLA, ha sido
cuidadosamente revisado por la suscrita, por lo que he podido
constatar que cumple con todos los requisitos de fondo y de forma
establecidos por la Universidad Técnica Particular de Loja y por el
Área Biológica, Departamento de Ciencias de la Salud y Titulación
de Médico, por lo que autorizo su presentación.
Lo Certifico.
Loja, 05 de Noviembre de 2012
………………………………….
Dr. Servio Romero
DOCENTE – DIRECTOR DE TESIS
CERTIFICACIÓN DEL DIRECTOR DE TESIS
iii
ACTA DE DECLARACIÓN Y CESIÓN DE DERECHOS DE AUTOR
““Yo, LILIANA MARLEY GUADALIMA MALLA declaro ser autora del
presente trabajo y eximo expresamente a la Universidad Técnica Particular
de Loja, y a sus representantes legales de posibles reclamos o acciones
legales.
Adicionalmente declaro conocer y aceptar la disposición del Art. 67 del
Estatuto Orgánico de la Universidad Técnica Particular de Loja que en su
parte pertinente textualmente dice: “Forman parte del patrimonio de la
Universidad la propiedad intelectual de investigaciones, trabajos científicos o
técnicos de tesis de grado que se realicen a través, o con el apoyo
financiero, académico o institucional (operativo) de la Universidad”.
….……………………………..
LILIANA MARLEY GUADALIMA MALLA
AUTORA
CESIÓN DE DERECHOS
C.I.: 1104863905
iv
DECLARACIÓN DE AUTORÍA
AUTORÍA
“Las ideas, conceptos, procedimientos y resultados vertidos en el presente
trabajo, son de exclusiva responsabilidad de su autora”.
………………………………………... ………………………………….
LILIANA MARLEY GUADALIMA MALLA DR. SERVIO ROMERO RAMÍREZ
AUTORA DIRECTOR DE TESIS
v
Parece que fue ayer cuando la oruga se convirtió en mariposa abrió sus alas
y decidió volar. Hace seis años dispuse convertir en realidad el sueño de una
niña que desde la infancia deseaba ser MÉDICO; éste trabajo está dedicado
a:
Dios, el ser supremo que me ayudó a levantarme cuando había caído, me dio
luz en las tinieblas de mi vida y me fortaleció con sabiduría.
A mis padres: Ángel y Esperanza, personas maravillosas que con amor me
acompañaron en este camino, y me alentaron cuando ya no tenía fuerza. A
mis hermanos: Santiago (+) que a pesar que nunca vio la luz del mundo me
cuida desde el cielo; y a Belkys que cambió mi vida con dulzura y me enseñó
a valorar las minúsculas aventuras.
A mis abuelos: Elsa, Máximo, Francisca (+) y Miguel (+); quienes con sus
consejos me enseñaron a no desfallecer. A mis tíos, y primos que me
brindaron cariño cuando más lo necesitaba.
A las verdaderas amigas que compartieron este sueño mutuo que hoy
termina.
LILIANA
DEDICATORIA
vi
El tiempo ha transcurrido, y la cima que un día decidí escalar poco a poco he
llegado a culminar y hoy a pesar de las adversidades, alegrías y tristezas
puedo sonreír ante el trabajo cumplido. Infinitas gracias a Dios que me brindó
la vida y permitió crecer en el seno de una familia maravillosa. A mis Padres y
hermanos, por el calor de hogar, por la sonrisa y abrazo sinceros cuando se
habían cerrado las puertas.
Mi gratitud a la Universidad Técnica Particular de Loja a través de la Escuela
de Medicina que me abrió hace 6 años sus puertas y permitió mi formación
académica y espiritual. Es aquí donde aprendí que el ser humano no solo es
materia sino espíritu; y que no solo es importante sanar su enfermedad sino
también su alma.
A los maestros que me impartieron sus conocimientos, y brindaron exigencias
para hacer de mí una mejor profesional, que me dieron su amistad
desinteresada y ayudaron a perfeccionar el espíritu altruista de Médico.
Agradezco de manera especial al Dr. Servio Antonio Romero Ramírez quien
tuvo la iniciativa de esta investigación y me ayudó a desarrollarla, por dedicar
un valioso espacio a este proyecto, por su disponibilidad y paciencia. Porque
a través del tiempo y más que un excepcional maestro lo considero un Padre
y amigo que ha guiado oportunamente mi vocación.
AGRADECIMIENTO
vii
Reconocimiento exclusivo al Hospital de SOLCA de Loja, noble Institución en
la cual he realizado la presente investigación, a su Director Médico: Dr. José
Molina; y Coordinadora de Laboratorio: Dra. Katherine Acurio, por la
colaboración prestada.
A las personas con quienes compartí mi formación en centros de Atención
Médica como: Externado Rotativo I: Subcentro de Salud Héroes del Cenepa,
y San Cayetano. Externado Rotativo II: SOLCA – Loja, Clínica San Agustín, y
Hospital Militar, donde desarrollé mis destrezas, y aptitud médica.
A mi querido Hospital “Manuel Ygnacio Monteros” IESS – Loja, el lugar donde
realicé mi año de Internado Rotativo, a sus Directivos, Personal Médico y de
Enfermería, por el calor humano y por la forma desinteresada que me
enseñaron el arte de la Medicina Práctica.
Simplemente gracias a todos por hacer de mí una profesional, con valores y
principios que consagrará su vida al servicio de la humanidad, practicando mi
profesión con conciencia y dignidad ya que la salud de mis pacientes será el
objetivo prioritario de mí trabajo.
La Autora
AGRADECIMIENTO
viii
ÍNDICE DE CONTENIDOS
PATRONES DE RESISTENCIA BACTERIANA DE LOS MICROORGANISMOS MÁS COMUNES EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE
LOJA EN LOS MESES DE JUNIO A NOVIEMBRE DE 2010 CERTIFICACIÓN DEL DIRECTOR DE TESIS ................................................................. ii
CESIÓN DE DERECHOS .................................................................................................... iii
DECLARACIÓN DE AUTORÍA ........................................................................................... iv
DEDICATORIA ....................................................................................................................... v
AGRADECIMIENTO ............................................................................................................. vi
ÍNDICE DE CONTENIDOS ................................................................................................ viii
ÍNDICE DE TABLAS ............................................................................................................. xi
ÍNDICE DE GRÁFICOS ...................................................................................................... xii
ABREVIATURAS ................................................................................................................. xiv
RESUMEN............................................................................................................................. 15
1. INTRODUCCIÓN ......................................................................................................... 16
1.1. ANTECEDENTES ........................................................................................ 16
1.2. DELIMITACIÓN ........................................................................................... 17
1.3. JUSTIFICACIÓN .......................................................................................... 18
2. OBJETIVOS ................................................................................................................. 19
2.1. OBJETIVO GENERAL ................................................................................. 19
2.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS ........................................................................ 19
3. MARCO INSTITUCIONAL ......................................................................................... 20
3.1. HISTORIA .................................................................................................... 20
3.2. MISIÓN ........................................................................................................ 21
3.3. VISIÓN......................................................................................................... 21
3.4. SERVICIOS ................................................................................................. 22
3.4.1. CONSULTA EXTERNA ............................................................................. 22
3.4.2. DEPARTAMENTO DE IMAGEN ............................................................... 22
3.4.3. DEPARTAMENTO DE PATOLOGÍA ......................................................... 22
3.4.4. DEPARTAMENTO DE LABORATORIO CLÍNICO..................................... 23
3.4.5. ÁREAS MÉDICAS..................................................................................... 23
4. MARCO TEÓRICO CONCEPTUAL ......................................................................... 25
4.1. CAPÍTULO I ................................................................................................. 25
ix
RED NACIONAL DE VIGILANCIA DE RESISTENCIA BACTERIANA (REDNARBEC) ............................................................................................... 25
4.2. CAPÍTULO II ................................................................................................ 28
RESISTENCIA BACTERIANA ........................................................................ 28
4.2.1 Mecanismos de Resistencia ........................................................................ 30
4.2.2. Antibiograma ........................................................................................... 34
4.2.3. Indicaciones para las pruebas de susceptibilidad .......................................... 36
4.2.4. Criterios de Interpretación de las Pruebas de Susceptibilidad ........................ 36
4.3 CAPÍTULO III ............................................................................................... 38
EL USO RACIONAL DE LOS ANTIMICROBIANOS........................................ 38
4.3.1. Consecuencias del uso incorrecto de los medicamentos ................................ 39
4.3.2. Factores que contribuyen al uso incorrecto de los medicamentos .................. 40
4.3.3. Medidas para mejorar el uso racional de los medicamentos .......................... 42
5. METODOLOGÍA .......................................................................................................... 44
5.1. TIPO DE ESTUDIO ...................................................................................... 44
5.2. UNIVERSO .................................................................................................. 44
5.3. MUESTRA ................................................................................................... 44
5.3.1. Criterios de Inclusión: ................................................................................ 44
5.3.2. Criterios de exclusión: ............................................................................... 45
5.4. OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES .................................................. 45
5.5. ÁREA DE INVESTIGACIÓN ........................................................................ 45
5.6. MÉTODOS Y TÉCNICAS DE RECOLECCIÓN DE DATOS ......................... 46
5.7. PLAN DE TABULACIÓN Y ANÁLISIS .......................................................... 46
5.8. RECURSOS ................................................................................................ 46
5.8.1. Recursos humanos .................................................................................... 46
5.8.2 Recursos materiales ................................................................................... 47
6. RESULTADOS E INTERPRETACIÓN ..................................................................... 48
6.1. DATOS GENERALES .................................................................................. 48
6.1.1. CULTIVOS REALIZADOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA ........................... 48
6.1.2. TIPO DE CULTIVO SEGÚN EL RANGO DE SEXO .............................................. 49
6.1.3. TIPO DE CULTIVO SEGÚN EL RANGO DE EDAD .............................................. 50
6.1.4. UROCULTIVOS .......................................................................................... 52
6.1.5. CULTIVOS NASOFARÍNGEOS ....................................................................... 54
x
6.1.6. HEMOCULTIVOS ....................................................................................... 56
6.1.7. CULTIVOS DE SECRECIÓN VAGINAL ............................................................. 58
6.2. DATOS ESPECÍFICOS ................................................................................ 59
6.2.1 SENSIBILIDAD Y RESISTENCIA DE LOS GÉRMENES AISLADOS EN UROCULTIVOS SEGÚN EL SEXO ................................................................................................. 59
6.2.2 SENSIBILIDAD Y RESISTENCIA DE LOS GÉRMENES AISLADOS EN CULTIVOS NASOFARÍNGEOS SEGÚN EL SEXO ....................................................................... 70
6.2.3. SENSIBILIDAD Y RESISTENCIA DE LOS GÉRMENES AISLADOS EN HEMOCULTIVOS SEGÚN EL SEXO ................................................................................................. 80
6.2.4 SENSIBILIDAD Y RESISTENCIA DE LOS GÉRMENES AISLADOS EN CULTIVOS DE SECRECIÓN VAGINAL ......................................................................................... 86
6.3. COMPARACIÓN DE LOS PATRONES DE RESISTENCIA BACTERIANA EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA CON LOS HOSPITALES MIEMBROS DE LA RED NACIONAL DE VIGILANCIA DE RESISTENCIA BACTERIANA DEL ECUADOR (REDNARBEC) ................................................................................ 91
7. DISCUSIÓN .................................................................................................................. 93
8. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES .......................................................... 95
8.1. CONCLUSIONES ........................................................................................ 95
8.2. RECOMENDACIONES ................................................................................ 97
9. BIBLIOGRAFÍA ............................................................................................................ 98
10. ANEXOS .................................................................................................................. 101
ANEXO N° 1: CODIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS ............................... 101
ANEXO N° 2: CODIFICACIÓN DE ANTIBIÓTICOS .......................................... 102
ANEXO N° 3: HOJA DE DATOS DE EXCEL .................................................... 104
ANEXO N° 4: ANTIBIOTICOS DE PRIMERA ELECCIÓN EN ATENCION PRIMARIA ........................................................................................................ 114
xi
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla Nº 1: Tipo de cultivo en el Hospital de SOLCA de Loja ............................. 48
Tabla Nº 2: Tipo de cultivo según el rango de sexo ............................................ 49
Tabla Nº 3: Tipo de cultivo según el rango de edad ........................................... 51
Tabla Nº 4: Gérmenes en Urocultivos según el rango de sexo ........................... 52
Tabla Nº 5: Gérmenes en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de sexo ........ 54
Tabla Nº 6: Gérmenes en Hemocultivos según el rango de sexo ....................... 56
Tabla Nº 7: Gérmenes en Cultivos de Secreción Vaginal ................................... 58
Tabla Nº 8: Niveles de Sensibilidad de Escherichia coli en Urocultivos en el Sexo Masculino ........................................................................................................... 60
Tabla Nº 9: Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos en el Sexo Masculino .......................................................................................... 62
Tabla Nº 10: Niveles de Sensibilidad de Escherichia coli en Urocultivos en el Sexo Femenino ................................................................................................... 65
Tabla Nº 11: Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Urocultios en el Sexo Femenino .......................................................................................... 68
Tabla Nº 12: Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino .................................................................. 70
Tabla Nº 13: Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino .................................................................. 73
Tabla Nº 14: Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino .................................................................. 75
Tabla Nº 15: Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino .................................................................. 78
Tabla Nº 16: Niveles de Sensibilidad de Pseudomona aeruginosa en Hemocultivos en el Sexo Masculino .................................................................... 80
Tabla Nº 17: Niveles de Sensibilidad de Streptococcus agalactiae en Hemocultivos en el Sexo Masculino .................................................................... 82
Tabla Nº 18: Niveles de Sensibilidad de Neisseria meningitidis en Hemocultivos en el Sexo Femenino .......................................................................................... 84
Tabla Nº 19: Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos de Secreción Vaginal .......................................................................................... 86
Tabla Nº 20: Niveles de Sensibilidad de Gardnerella vaginalis en Cultivos de Secreción Vaginal ............................................................................................... 89
xii
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Grafico N° 1:Tipo de cultivo en el Hospital de SOLCA de Loja ........................... 49
Grafico N° 2:Tipo de cultivo según el rango de sexo .......................................... 50
Grafico N° 3:Tipo de cultivo según el rango de edad ......................................... 51
Grafico N° 4:Gérmenes en Urocultivos en el Sexo Femenino ............................ 53
Grafico N° 5:Gérmenes en Urocultivos en el Sexo Masculino ............................ 53
Grafico N° 6:Gérmenes en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino ......... 55
Grafico N° 7:Gérmenes en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino ......... 55
Grafico N° 8:Gérmenes en Hemocultivos en el Sexo Femenino ........................ 57
Grafico N° 9:Gérmenes en Hemocultivos en el Sexo Masculino ........................ 57
Grafico N° 10:Gérmenes en Cultivos de Secreción Vaginal ............................... 59
Gráfico Nº 11:Niveles de Sensibilidad de Escherichia coli en Urocultivos en el Sexo Masculino .................................................................................................. 61
Gráfico Nº 12:Resistencia de Escherichia coli en Urocultivos según el rango de Sexo Masculino .................................................................................................. 62
Gráfico Nº 13:Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos en el Sexo Masculino ....................................................................... 63
Gráfico Nº 14:Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos según el rango de Sexo Masculino.................................................................................... 64
Gráfico Nº 15:Niveles de Sensibilidad de Escherichia coli en Urocultivos en el Sexo Femenino ................................................................................................... 66
Gráfico Nº 16:Resistencia de Escherichia coli en Urocultivos según el rango de Sexo Femenino ................................................................................................... 67
Gráfico Nº 17:Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos en el Sexo Femenino ........................................................................ 69
Gráfico Nº 18:Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos según el rango de Sexo Femenino .................................................................................... 69
Gráfico Nº 19:Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino .................................................................. 71
Gráfico Nº 20:Resistencia de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de Sexo Masculino ..................................................................... 72
Gráfico Nº 21:Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino .................................................................. 74
Gráfico Nº 22:Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de Sexo Masculino ............................................. 74
xiii
Gráfico Nº 23:Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino .................................................................. 76
Gráfico Nº 24:Resistencia de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de Sexo Femenino ..................................................................... 77
Gráfico Nº 25:Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino .................................................................. 79
Gráfico Nº 26:Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de Sexo Femenino.............................................. 79
Gráfico Nº 27:Niveles de Sensibilidad de Pseudomonas aeruginosa en Hemocultivos en el Sexo Masculino .................................................................... 81
Gráfico Nº 28:Resistencia de Pseudomonas aeruginosa en Hemocultivos según el rango de Sexo Masculino ................................................................................ 81
Gráfico Nº 29:Niveles de Sensibilidad de Streptococcus agalactiae en Hemocultivos en el Sexo Masculino .................................................................... 83
Gráfico Nº 30:Resistencia de Streptococcus agalactiae en Hemocultivos según el rango de Sexo Masculino.................................................................................... 83
Gráfico Nº 31:Niveles de Sensibilidad de Neisseria meningitidis en Hemocultivos en el Sexo Femenino .......................................................................................... 85
Gráfico Nº 32:Resistencia de Neisseria meningitidis en Hemocultivos según el rango de Sexo Femenino .................................................................................... 85
Gráfico Nº 33:Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos de Secreción Vaginal .......................................................................................... 87
Gráfico Nº 34:Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Cultivos de Secreción Vaginal ............................................................................................... 88
Gráfico Nº 35:Niveles de Sensibilidad de Gardnerella vaginalis en Cultivos de Secreción Vaginal ............................................................................................... 90
Gráfico Nº 36:Resistencia de Gardnerella vaginalis en Cultivos de Secreción Vaginal en el Sexo Femenino ............................................................................. 90
xiv
ABREVIATURAS
AAM: Agente antimicrobiano
AB: Antibiótico
AC. NALI: Ácido Nalidíxico
ACOX: Ácido Oxolínico
AMIKA: Amikacina
AMOXI: Amoxicilina
AMOXI/A.CLAVU: Amoxicilina/Ácido
Clavulánico
AMPI: Ampicilina
AMPI/SULBAC: Ampicilina/Sulbactam
AZITRO: Azitromicina
CEFADRO: Cefadroxil
CEFOTA: Cefotaxima
CEFTA: Ceftazidima
CEFTRIA: Ceftriaxona
CEFURO: Cefuroxima
CIPRO: Ciprofloxacino
CLARITRO: Claritromicina
CLINDA: Clindamicina
DICLOXA: Dicloxacilina
ERITRO: Eritromicina
FAO: Organización para la Agricultura y
la Alimentación.
FOSFO: Fosfomicina
GENTA: Gentamicina
HA: Hospital Alcívar
HCAM: Hospital Carlos Andrade Marín
IMIP: Imipenem
KANA: Kanamicina
LEVO: Levofloxacina
LINCO: Lincomicina
LINE: Linezolid
METRO: Metronidazol
NETIL: Netilmicina
NITRO: Nitrofurantoína
NORFLO: Norfloxacina
OFLOXA: Ofloxacina
OIE: Organización Internacional de
Epizootias
OMS: Organización Mundial de la Salud
OXACI: Oxacilina
PENI: Penicilina
RAB: Resistencia a los antibióticos
REDNARBEC: Red Nacional de
Resistencia Bacteriana de Ecuador
SISO: Sisomicina
SOLCA: Sociedad de Lucha contra el
Cáncer
SMX: Sulfametoxazol
TETRA: Tetraciclina
TMP/SMX: Trimetroprim/Sulfametoxazol
VANCO: Vancomicina
15
RESUMEN
La resistencia bacteriana es un fenómeno creciente caracterizado por la refractariedad de
los microorganismos al efecto del AB generado principalmente por el uso indiscriminado
de éstos. Este proyecto de investigación fue de tipo descriptivo, observacional, con un
enfoque cuantitativo en el Hospital de SOLCA de Loja, con el objetivo de determinar los
Patrones de Resistencia Bacteriana de los microorganismos más comunes, mediante el
análisis de cultivos. Para la obtención de la información empleamos la técnica de
inspección de registros los mismos que fueron ingresados en la hoja de recolección de
datos. Partiendo de los resultados obtenidos se estableció prevalencia del germen y su
sensibilidad frente a los AB y se comparó con patrones de resistencia bacteriana de otros
hospitales de Quito, Guayaquil, y Cuenca publicados en la página web de REDNARBEC.
Se determinó que existe sensibilidad variable a antibióticos de moderado espectro
bactericida entre estas casas de Salud y resistencia progresiva a los bacteriostáticos en
nuestra ciudad.
ABSTRACT
Bacterial resistance is a growing phenomenon characterized by refractoriness of
microorganisms to the AB effect mainly due to the indiscriminate use of these. This
research was descriptive, observational, with a quantitative approach SOLCA Hospital of
Loja, in order to determine the bacterial resistance patterns of common microorganisms by
analyzing crop. To obtain employ information technology for inspection of records that
were entered them in the data collection sheet. Based on the results were established
germ prevalence and its sensitivity to AB and compared with patterns of antimicrobial
resistance from hospitals in Quito, Guayaquil, and Cuenca and published on the website of
REDNARBEC. It was determined that there is variable sensitivity to antibiotics of moderate
bactericidal spectrum between these health houses and progressive resistance to the
bacteriostatic in our city.
16
1. INTRODUCCIÓN
1.1. ANTECEDENTES
Los antibióticos han ayudado a transformar muchas patologías que alguna vez fueron
mortales, en problemas controlables de salud, especialmente en los países desarrollados.
Sin embargo, en los países en vía de desarrollo y en los países subdesarrollados, casi la
mitad (47%) de las muertes de menores de cinco años, es atribuida a las infecciones
respiratorias, gastrointestinales y a la sepsis neonatal, a pesar de que podrían ser
prevenidas y tratadas1. Es así que desde su descubrimiento, hace más de ocho décadas,
los antibióticos fueron vistos como "balas mágicas" que cambiarían radicalmente el
tratamiento de la enfermedad infecciosa, desde entonces han tenido éxito en la reducción
y prevención de la muerte por enfermedades infecciosas.
Durante la Segunda Guerra Mundial, a partir del ingreso de la penicilina en el uso clínico,
numerosos antibióticos nuevos fueron desarrollados. Los antibióticos salvaron millones de
vidas y las infecciones bacterianas dejaron de ser una amenaza para el ser humano. Y es
en los años 80 el auge de la utilización masiva de cefalosporinas y aminoglucósidos
propiciando el desarrollo de resistencias y con frecuencia el fenómeno de tolerancia lo
que supone que, para conseguir un efecto bactericida, se debe asociar un inhibidor de la
pared (penicilinas o glucopéptidos) con los aminoglucósidos2.
Cuando hablamos de la habilidad de las bacterias de alterarse a sí mismas en una
variedad de ingeniosas formas para sobrevivir a la presencia de concentraciones de
antibióticos que deberían matarlas normalmente; nos referimos a resistencia a los
antibióticos. De tal manera que dichas bacterias tienen varios mecanismos para hacer
esto: pueden prevenir que el antibiótico entre a la célula, producir enzimas que destruyen
el antibiótico, alterar su estructura de modo que el antibiótico no se adhiera a ellas o
lanzar al antibiótico fuera de la célula bacteriana.
Datos estadísticos de los países subdesarrollados y en vías de desarrollo indican que la
falta de acceso a antibióticos efectivos, donde los medicamentos esenciales son más
(1) Cornejo-Juárez P, Velásquez-Acosta C, Sandoval S, Gordillo P, Volkow-Fernández P. Patrones de resistencia Bacteriana en urocultivos en un hospital oncológico. Salud Publica Mex. 2007;49:330-336. (2) Cars O, 2008. “La resistencia bacteriana, una amenaza subestimada contra la salud pública” Taller-Seminario Internacional Restablecer la salud de los ecosistemas para contener la resistencia bacteriana, 12-21.
17
necesarios3, ocasiona que el 70% de las infecciones neonatales adquiridas en los
hospitales podrían no ser tratadas exitosamente con el régimen de tratamiento
recomendado empíricamente por la Organización Mundial de la Salud (OMS), aún en los
países de altos ingresos, donde los antibióticos más nuevos están disponibles y
asequibles, las consecuencias de la resistencia a los antibióticos se están volviendo
claramente visibles.
Por otro lado, la OMS estima que más de la mitad de los medicamentos son prescritos,
dispensados o vendidos inapropiadamente y la mitad de todos los pacientes fallan en
tomar tales medicamentos correctamente. Las indicaciones médicas incorrectas así como
el uso indebido de agentes antimicrobianos, administración, ruta, dosis y duración del
tratamiento son también factores de riesgo para crear resistencia.
La paradoja es que a pesar del crecimiento de los problemas de resistencia a los
antibióticos, hay una alarmante tendencia a la baja en la investigación y desarrollo de
nuevos antibióticos. Esto conlleva a que los clínicos estén ahora enfrentando una
situación en la que la probabilidad de éxito de los tratamientos empíricos con antibióticos
sea reducida significativamente y donde los pacientes están algunas veces infectados con
bacterias resistentes a todos los antibióticos disponibles, lo que significaría que los
tratamientos médicos deberán regresar a la “era pre antibiótica”4.
1.2. DELIMITACIÓN
La presente investigación fue llevada a cabo por la autora, en calidad de Profesional en
Formación de la Carrera de Medicina, previo a la obtención del título de Médico, en el
Hospital de SOLCA de Loja, el mismo que presta sus servicios para mejorar las
condiciones de vida de la población lojana garantizando un nivel satisfactorio de
accesibilidad a servicios de asistencia médica de calidad.
(3) Paz M, 2008 “Resistencia bacteriana, la realidad en América Latina”, Taller-Seminario Internacional Restablecer la salud de los ecosistemas para contener la resistencia bacteriana, 22-31 (4) García C. Rev Chil Infect 2005; Resistencia bacteriana en Chile; 20 (Supl 1): S11 - S23.
18
Además ha cumplido con los estándares sanitarios oficiales de acreditación, sobre todo
los referidos a espacio físico, infraestructura y personal, impuestas por el Misterio de
Salud Pública del Ecuador quien lo reconoce como de Nivel II.
1.3. JUSTIFICACIÓN
La consecuencia más importante de la resistencia bacteriana es el fracaso de la terapia
antimicrobiana con el consiguiente aumento de la morbi-mortalidad y aumento en los
costos. La resistencia bacteriana es un fenómeno biológico natural, de modo que cada
vez que se pone en uso un nuevo agente antimicrobiano (AAM) en la práctica clínica, el
laboratorio de microbiología detecta cepas resistentes. El fenómeno de la resistencia
bacteriana es muy dinámico: tiene múltiples causas donde la más importante ha sido el
uso y abuso de los AAM; sin embargo, el relajamiento en las prácticas de control de
infecciones, el aumento del uso de dispositivos y procedimientos médicos invasores y
hospederos más susceptibles también han jugado un rol importante en el último tiempo.
En América Latina, existen cepas de la tuberculosis, la diarrea, el cólera, la neumonía y
otras bacterias resistentes a los antibióticos. Para comprender la gravedad del problema,
recordemos que la diarrea y la neumonía son las principales causas de enfermedad y
muerte entre los niños menores de 5 años en la región.
En Ecuador el panorama es igualmente crítico. Cuando se diseminó la epidemia del
cólera en 1998, se descubrieron cepas multiresistentes a la acción de los antibióticos de
uso común. Sin embargo; la tónica es el desconocimiento sobre esta realidad en el interior
de la misma Comunidad Médica Ecuatoriana, y a pesar de la importancia extrema de este
problema, son pocas las investigaciones existentes sobre este tema tanto a nivel regional
como nacional; desde este punto de vista me propuse hacer un estudio de tipo descriptivo
sobre la microbiología y resistencia antimicrobiana en el Hospital de SOLCA de Loja de
las muestras clínicas, de cultivos de sangre, orina, secreciones nasofaríngeas y vaginales
realizadas en el periodo de tiempo comprendido entre Junio y Noviembre de 20105.
(5) “La resistencia en América Latina y el Ecuador”, 2007, Revista ReAct Latinoamérica, págs. 2-3.
19
2. OBJETIVOS
2.1. OBJETIVO GENERAL
Determinar los Patrones de Resistencia Bacteriana en el Hospital de SOLCA de Loja,
mediante el análisis de los cultivos de sangre, orina, secreciones nasofaríngeas y
vaginales realizados durante el período Junio a Noviembre de 2010, para establecer los
patógenos prevalentes y la relación con los antibióticos de uso más común en la práctica
hospitalaria.
2.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS
2.2.1. Establecer los microorganismos de mayor predominio aislados en los cultivos
de orina, sangre, secreciones nasofaríngeas y vaginales en el Hospital de
SOLCA de Loja.
2.2.2. Determinar los niveles de sensibilidad de las cepas tanto hospitalarias como
las de consulta externa en el Hospital de SOLCA de Loja, mediante el análisis
de diferentes cultivos.
2.2.3. Comparar los patrones de resistencia bacteriana con Hospitales de Quito,
Guayaquil y Cuenca a través de las publicaciones de la Red Nacional de
Vigilancia de Resistencia Bacteriana del Ecuador.
20
3. MARCO INSTITUCIONAL
3.1. HISTORIA
El 23 de Agosto de 1962 ocurre el nacimiento de SOLCA en Loja, con la participación de
lo más representativo del mundo médico, social y cultural de la Ciudad, que acogieron con
entusiasmo la iniciativa del Doctor Leoncio Cordero Jaramillo, miembro del Núcleo de
SOLCA de Cuenca, de organizarse para luchar contra la terrible enfermedad del cáncer.
En la trayectoria luminosa de SOLCA de Loja se han sucedido varios directorios
precedidos por destacados profesionales, así, el Dr. Rafael Castillo Unda, Dr. Víctor Arias,
Dr. Vicente Burneo, Dr. Enrique García, Dr. Reinaldo Vivanco, Dr. Jorge Tulio Ruíz, Dr.
Vicente Rodríguez Witt, Dr. Mauricio Romo Molina, Ec. Owaldo Burneo y el Ing. Vinicio
Suárez Burneo, quienes se entregaron con mística al noble objetivo de la solidaridad
humana, logrando poner muy en alto el nombre de la Institución.
El Comité de amigos de SOLCA de Loja inició sus labores en un estrecho y vetusto local
en el antiguo Hospital “San Juan de Dios”, en donde se estableció un pequeño laboratorio
citológico e histopatológico6.
Desde el inicio, uno de los primeros problemas de SOLCA fue la difícil penuria económica
por la que atravesaba, lo que le obligó a gestionar la ayuda de Instituciones ocales como
fueron: Municipio de Loja y la Junta de Asistencia Social.
El 19 de Junio de 1981 logra tener un propio local mediante gestiones y ayuda altruista
del Municipio de Loja, quien le donó 2.180 m2, en el norte de la Ciudad.
(6) Revista Médica: Instituto del Cáncer SOLCA Núcleo de Loja. Mayo 2010.
21
El directorio elegido de 1983 resuelve iniciar la construcción de un edificio para
proporcionar atención de consulta externa y ampliar los laboratorios de histopatología y
citología; es así como el 20 de Abril de 1990 se inaugura el Hospital Oncológico de Loja,
constituyendo un acontecimiento histórico que marcaba el inicio de una etapa de
esperanza en la lucha contra el cáncer.
Mediante un gran número de gestiones nuestro Centro Oncológico adquiere un moderno
equipo de imagen que incluye un tomógrafo axial computarizado, un laboratorio clínico e
histopatológico, un equipo completo de cirugía y además comienza a preparar y
especializar a su personal médico y en el 2002 se consiguió la donación de un equipo
moderno de Medicina Nuclear. Luego de un arduo y sacrificado trabajo y con
financiamiento especial el 1 de Septiembre de 2004 se concluyó e inauguró el nuevo y
funcional edificio de SOLCA que además de proporcionar comodidad y facilidades al
paciente contribuyó al embellecimiento arquitectónico de la ciudad.
Gracias al entusiasmo del actual Director Ing. Suárez Bermeo ha sido la adquisición de
nuevos y modernos equipos médicos: Tomógrafo Axial Multicorte, tres equipos Láser para
la unidad de Cobalto, un Servidor para el Registro de Tumores y otro para el Centro de
Cómputo, un equipo de criocirugía y algunos equipos para el área de Radioterapia.
3.2. MISIÓN
Conducir en su jurisdicción la lucha contra el cáncer, a través de la promoción, educación,
prevención, diagnóstico precoz y tratamiento oportuno, con el fin de disminuir la morbi -
mortalidad y brindarle una mejor calidad de vida al paciente.
3.3. VISIÓN
Brindar atención integral de excelencia a sus usuarios y usuarias, para lo cual está
certificado por normas de calidad y proporcionando las prácticas docentes y la
investigación oncológica.
22
3.4. SERVICIOS
3.4.1. CONSULTA EXTERNA
Cirugía.
Dermatología.
Ginecología.
Gastroenterología.
Urología.
Medicina Interna.
Oncología Clínica.
Pediatría Oncológica.
Radioterapia.
Medicina Nuclear.
Psicología Clínica.
Medicina Física y Rehabilitación.
Terapia del Dolor.
Banco de Sangre.
3.4.2. DEPARTAMENTO DE IMAGEN
Rayos X.
Ecografía.
Doppler Color.
Tomografía.
Mamografía.
Fluoroscopía.
Resonancia Magnética.
Gammagrafía
Angiogammagrafía.
Linfogrammagrafía.
3.4.3. DEPARTAMENTO DE PATOLOGÍA
Exámenes histopatológicos de biopsias, piezas quirúrgicas.
Estudios transoperatorios por congelación.
23
Tinciones especiales de PAS, Zhiel Nelsen, Tricrómico y Grocot.
Inmunohistoquímica de material de biopsias y piezas quirúrgicas.
Citología de líquidos corporales, PAAF (Punción aspiración con aguja fina).
Citología ginecológica (Papanicolaou).
3.4.4. DEPARTAMENTO DE LABORATORIO CLÍNICO
Exámenes:
Sangre.
Orina.
Heces
Secreciones.
Cultivos.
Medulogramas.
Enzimas.
Pruebas hormonales.
Marcadores tumorales.
Electrolitos
3.4.5. ÁREAS MÉDICAS
Medicina Preventiva.
Radioterapia.
Yodoterapia.
Gastroenterología Clínica.
Quimioterapia Ambulatorio.
Oncología Clínica.
Cirugía
Quirófano.
Diagnóstico.
De esta manera SOLCA de Loja contribuye con la atención de la ciudadanía lojana,
actualmente se ha implementado la sala de juegos para niños que adolecen del cáncer.
24
El proyecto para este año es la implementación del Albergue que permita que los
familiares de los enfermos de cáncer puedan alojarse en el mismo, en condiciones de
dignidad, con el fin de aliviar el dolor del familiar enfermo y disminuir los costos que le
significa la permanencia en esta Ciudad y que aumenta la ansiedad y angustia del
paciente y su entorno. 7
“Aun cuando mis huesos y mi carne no sean fuertes para erguirme, aun cuando mis
sueños se desvanezcan con el suave vaivén de la mística brisa que acaricia mi pelo cano
y envejecida piel, aun cuando Dios me esté llamando a su coro celestial, aun así, estaré
vivo, inmortal en la roca de tu amor y la esencia de mis hijos”
(7) www.solcaloja.med.ec/historia/47años_secretaria-salud/2010/html45683.
25
4. MARCO TEÓRICO CONCEPTUAL
4.1. CAPÍTULO I
RED NACIONAL DE VIGILANCIA DE RESISTENCIA BACTERIANA (REDNARBEC)
Red Nacional de Resistencia Bacteriana de Ecuador (REDNARBEC) es la organización
que ha presentado datos de resistencia bacteriana tanto a nivel comunitario como
hospitalario en el Ecuador.
Se creó en abril de 1999 tan solo con 5 hospitales y obedeció a la tendencia mundial de
ese entonces, conocer que pasaba con la resistencia en varias áreas geográficas. Se
había reconocido a la resistencia bacteriana como un problema de Salud Pública. Los
objetivos principales de la Red de vigilancia fueron mejorar la calidad de los laboratorios
de microbiología y conocer los patrones de resistencia bacteriana de varios hospitales del
país8.
Hace 9 años la Red cuenta con 18 hospitales, tanto estatales como privados y ha logrado
conocer que patrones de resistencia se presentan en los microorganismos causantes de
procesos infecciosos tanto hospitalarios como comunitarios. Actualmente el centro
coordinador de la Red es el Hospital Vozandes de Quito.
4.1.1. Reseña Histórica
Se crea la Red Nacional de Vigilancia de Resistencia Bacteriana-Ecuador
(REDNARBEC), el 22 de abril de 1999, frente a la necesidad de conocer la magnitud de
este problema en el país. Para ello se realizó un estudio previo de los laboratorios de
microbiología que estarían en capacidad de cumplir con el protocolo establecido.
Los principales puntos dentro de este protocolo eran:
(8) http://www.rednarbec.org/index.php?option=com_content&view=article&id=65&Itemid=54
26
Ingresar los datos de las cepas que se aíslan en la rutina de trabajo, en el sistema
WHONET (Red de la Organización Mundial de la Salud para monitoreo de la
resistencia bacteriana) y entregarlo mensualmente al centro coordinador (Hospital
Vozandes, Quito) a través de un disquete.
Realizar quincenalmente el control de calidad interno.
Dos veces al año someterse a un control de calidad externo.
Realizar la prueba de difusión con discos de sensibilidad.
Seguir las normas establecidas en el NLCCS (National Committee for Clinical
Laboratory Standars), actualmente CSLI.
Los objetivos específicos de este sistema de vigilancia fueron:
Determinar los niveles de sensibilidad de la cepas tanto hospitalarias como las de
consulta externa y emergencia.
Identificar los microorganismos causales de los diversos procesos infecciosos.
Sensibilizar al personal médico, de enfermería, administración hospitalaria, y otros
relacionados con salud sobre este problema.
Crear un consenso entre todas las unidades operativas sanitarias involucradas en la
red para realizar los mismos procedimientos.
Fortalecer los laboratorios de microbiología hospitalarios9.
Por lo anterior expuesto la Red no tiene como único objeto recolectar datos de
sensibilidad de las cepas, sino también mejorar la calidad de los laboratorios de
microbiología hospitalarios. El mantenimiento del estudio y los resultados conseguidos
responden al interés, esfuerzo y dedicación de numerosas personas, y el
desenvolvimiento de la misma ha sido posible gracias a la voluntad desinteresada de
todos sus miembros de ofrecer una mejor calidad de asistencia.
(9) Zurita J. Red Nacional de Vigilancia de Resistencia Bacteriana. Ecuador. 2001. Boletín de la Red. Informe No 1.
27
4.1.2 Miembros de la Red
Actualmente son miembros de REDNARBEC:
Centro Médico Imbabura - Ibarra
Clínica Santa Ana - Cuenca
Hospital Alcívar - Guayaquil
Hospital Carlos Andrade Marín - Quito
Hospital de las Fuerzas Armadas No. 1 - Quito
Hospital de Niños Baca Ortiz - Quito
Hospital Enrique Garcés - Quito
Hospital Homero Castanier - Azogues
Hospital Luis Vernaza - Guayaquil
Hospital Pablo Arturo Suárez - Quito
Hospital Quito No. 1 de la Policía - Quito
Hospital San Vicente de Paúl - Ibarra
Hospital SOLCA - Cuenca
Hospital SOLCA - Quito
Hospital Vozandes - Quito
Hospital Vozandes - Shell
Hospital Ycaza Bustamante - Guayaquil
Maternidad Isidro Ayora - Quito
28
4.2. CAPÍTULO II
RESISTENCIA BACTERIANA
Representa es un fenómeno creciente caracterizado por una refractariedad parcial o total
de los microorganismos al efecto del antibiótico generado principalmente por el uso
indiscriminado e irracional de éstos y no sólo por la presión evolutiva que se ejerce en el
uso terapéutico10.
Se define como la capacidad natural o adquirida de una bacteria de permanecer
refractaria a los efectos bactericidas o bacteriostáticos de un antibiótico11. Desde el inicio
mismo de la era antibiótica (aparición de la penicilina) se ha descrito el fenómeno de la
resistencia, se destaca en los años sesenta la aparición de la resistencia a la meticilina y
posteriormente diversos mecanismos de resistencia a los betalactamicos (betalactamasas
de espectro extendido, neumococo resistente a la penicilina) y a vancomicina
(Enterococcus vancomicino resistente, Staphylococcus aureus con sensibilidad
disminuida a la vancomicina) y la descripción de los diversos mecanismos de resistencia a
las quinolonas dentro de los que se destacan los mecanismos de eflujo.
En la clínica resulta en la imposibilidad de realizar el control de la infección y la
erradicación del agente patógeno causal, con el consiguiente aumento en la mortalidad
por enfermedades infecciosas; y en el laboratorio se expresa como un incremento
significativo en la concentración mínima (CIM) para inhibir el crecimiento del
microorganismo en el antibiograma.
La aparición de resistencia se produce por dos factores fundamentales:
Existencia de genes determinantes de la aparición de un mecanismo de resistencia,
que pueden ser transferidos entre células bacterianas de una misma cepa o varias
diferentes, convirtiendo la resistencia en un fenómeno transferible.
(10) Campoverde N, 2008, “La diversidad de caras de las bacterias”, Taller-Seminario Internacional Restablecer la salud de los ecosistemas para contener la resistencia bacteriana, 94-103.
(11) Goodman E Glimaan; Las bases farmacológicas de la terapéutica; 2007
29
El uso amplio de antibióticos que ejercen una presión de selección que favorece la
supervivencia de cepas que portan y expresan genes determinantes de resistencia.
La Resistencia puede, en consecuencia originarse en mutaciones al azar de genes
localizados en los cromosomas o en sitios extracromosómicos como los plásmidos, que
confieren resistencia (es decir un fenómeno primario no relacionado con el uso previo de
un antibiótico), o como consecuencia del uso repetitivo y extendido de un determinado
compuesto.
Las mutaciones pueden ser sólo cambios microevolutivos, es decir que comprometen un
par de nucléotidos en la estructura del DNA, mientras que los macroevolutivos involucran
grandes segmentos del mismo incluyendo inversiones, duplicaciones, inserciones,
deleciones y transposiciones. Es decir que pueden existir mutaciones de genes
preexistentes o adquisición de nuevos genes.
Los plásmidos son secuencias de DNA circular, autónomas, de 10.000 a 40.0000 pares
de bases. Pueden experimentar autorreplicación y portan genes relacionados con la
virulencia y la resistencia. La transferencia de material genético entre plásmidos o entre
un plásmido y un cromosoma se realiza a través de elementos génicos denominados
transposones.
Los transposones poseen un sistema autónomo que promueve la recombinación aleatoria
de secuencias no homólogas de DNA y produce rearreglos cromosómicos. Son incapaces
de replicarse autónomamente y por lo tanto deben localizarse en estructuras con
capacidad de replicación como cromosomas y plásmidos.
Algunos transposones denominados conjugativos pueden movilizarse entre cromosomas
heterólogos sin requerir de plásmidos en el proceso. Se denomina transposición al
mecanismo por el cual el transposón replica en el cromosoma o plásmido donante y se
inserta en el cromosoma o plásmido receptor. Esto conduce a la dispersión de genes de
resistencia y a la generalización las bacterias patógenas.
30
4.2.1 Mecanismos de Resistencia
El fenómeno de resistencia tiene un sustrato genético intrínseco o adquirido que se
expresa fenotípicamente por mecanismos bioquímicos. De esta manera puede observarse
la resistencia desde el ambiente biológico y otro el bioquímico.
Se conoce como resistencia natural a los mecanismos permanentes determinados
genéticamente, no correlacionables con el incremento de dosis del antibiótico. Un ejemplo
de esto es la resistencia de la Pseudomona aeruginosa, a las bencilpenicilinas y
altrimetoprin sulfametoxazol; bacilos gram negativos aeróbicos a clindamicina.
La resistencia adquirida aparece por cambios puntuales en el DNA (mutación) o por la
adquisición de éste (plásmidos, trasposones, integrones).En el primero se dan casos tales
como la transformación de una Betalactamasa en una Betalactamasa de espectro
extendido o como en el caso de mutaciones de los genes que codifican las porinas con el
consecuente bloqueo del ingreso del antibiótico al interior del microorganismo12.
Desde el punto de vista molecular y bioquímico existen básicamente tres mecanismos que
pueden ocurrir simultáneamente, por medio de los cuales una bacteria puede hacerse
resistente al efecto del antibiótico, siendo éstos:
Inactivación del antibiótico.
Alteración del sitio blanco del antibiótico.
Barreras de permeabilidad.
4.2.1.1. Destrucción e inactivación del antibiótico
Se realiza mediante la producción de enzimas que hidrolizan el antibiótico. Son ejemplos
de esta la producción de B-lactamasa, B-lactamasa de amplio espectro, eritromicina
estereasa y enzimas modificadoras de aminoglucósidos, cloranfenicol, lincosamidas y
estreptograminas.
(12) http://med.javeriana.edu.co/publi/vniversitas/serial/v43n1/0026%20Resistencia.PDF
31
Los antibióticos, B-lactámicos como penicilina, oxacilina, cefalosporinas, actúan
inhibiendo la enzima D-alanil D-alanin carboxipeptidasa (PBPS) encargada de la síntesis
de la pared. La B-lactamasa hidroliza el enlace amida del anillo penicilánico o
cefalosporínico resultando un derivado ácido inactivo. Se trata de un sistema enzimático
amplio, común y eficiente de resistencia frecuentemente producidas por bacterias Gram
negativas, para las cuales se han elaborado múltiples clasificaciones, siendo la más
aceptada la de Bush. Pueden clasificarse de acuerdo con su forma de producción en:
Localización genética (cromosomas o plásmidos).
Exposición genética (constitutiva o inducida).
Producción primaria (dependiente de microorganismo).
Sustrato mayor (depende de la clase de antibiótico).
Igualmente por su amplia difusión se deben reconocer algunas codificadas por plásmidos:
Enzimas de amplio espectro que hidrolizan las bencilpeni-cilinas y cefaloridina.
Oxacilinasas que degradan oxacilinas y similares (OXA-1, OXA-2) la tipo A producida
por Staphylococus aureus, enterobacterias (TEM-1, SMV-1) éstas últimas (E. Coli y
Klebsiella pneumoniae respectivamente) de alta importancia pues codifican la
Blactamasa de amplio espectro capaz de hidrolizar cefalosporinas de tercera
generación y monobactámicos.
Carbecilinasas que hidrolizan penicilina.
Betalactamasas de espectro extendido.
Oximino B-lactamasa diferentes a las Betalactamasas de espectro extendido.
Enzimas que hidrolizan cefamicinas y oximinobetalac-támicos y son resistentes a la
inhibición del clavulanato.
Carbapenemasas.
Otra vía para inactivación del antibiótico es la “modificación enzimática” del mismo. Este
es el caso de las enzimas modificadoras de aminoglucósidos codificadas en plásmidos;
entre las principales enzimas responsables de catalizar la modificación, están la
acetiltransferasa (AAC), fosfatidil transferasa (APH) y adenil transferasa (ANT o AAD).
Cuando un aminoglucósido es inactivado ya no puede unirse a la subunidad 30s
ribosomal y por lo tanto no pueden interferir en la síntesis de proteínas.
32
El mecanismo de resistencia a eritromicina es común a lincosamidas y estreptograminas
(grupo MLS). La producción de eritromicina esterasas, cataliza la hidrólisis del anillo de
lactona del antibiótico. Se han descrito Estearasa I y II confinadas a Gram negativos. La
modificación del cloranfenicol la realiza una enzima intracelular, cloranfenicol
acetiltransferasa (CAT), existente tanto en Gram positivos como en Gram negativos. Esta
enzima acetila los dos grupos hidroxilo y previene la unión del cloranfenicol al ribosoma
50S.
4.2.1.2 Barreras de permeabilidad
Componentes básicos:
La estructura de la membrana externa de la bacteria.
Las porinas. Canales inespecíficos que excluyen el antibiótico por tamaño molecular.
Características fisicoquímicas del antimicrobiano. En el caso de los medicamentos
hidrofílicos (imipenem) requieren presencia de porinas para su transporte al interior de
la célula.
Mecanismos de resistencia:
Entrada disminuida:
Permeabilidad de la membrana externa: Claramente definida en los
microorganismos Gram negativos que poseen una membrana lipídica externa que
constituye una barrera intrínseca para la penetración de antibiótico.
Permeabilidad de la membrana interna: Consiste en una modificación energética
que compromete el transportador aniónico que lleva el antibiótico hacia el interior
de la célula. La presencia de capa lipídica en la membrana actúa como un
mecanismo de resistencia para medicamentos hidrofóbicos.
Porinas: Canales de difusión presentes en la membrana externa de la bacteria. De
la modificación por mutación de estas proteínas se genera una disminución del
33
paso del antibiótico. Éste es el mecanismo empleado por Salmonella typhimurium
(OmpC) contra cefalosporinas de primera generación, Serratia marcescens, E. Coli
y Pseudomonas aeruginosa contra aminoglucósidos y carbapenem.
Eflujo activo: Debido a la presencia de proteínas de membrana especializadas. Se
altera la producción de energía y se disminuye no solamente la entrada del antibiótico
sino que a su vez las bacterias reducen la concentración del antibiótico y se promueve
la extracción activa del mismo. Confiere resistencia a tetraciclinas, fluoroquinolonas,
cloranfenicol y b-lactámicos, antisépticos y desinfectantes de tipo amonio cuaternario.
4.2.1.3 Alteración del sitio blanco
En este mecanismo de resistencia bacteriana se modifican algunos sitios específicos de la
anatomía celular, como pared celular, subunidad 50s, 30S ribosomales, etc. De esta
manera la modificación de enzimas catalizadoras en la producción de proteoglicanos
celulares, conferirán resistencia a los b-lactámicos dados que es esta enzima su sitio de
acción.
La resistencia a las quinolonas de gérmenes como Pseudomonas aeruginosa, Citrobacter
freundii, Escherichia Coli y Staphylococcus aureus obedece a la modificación por
mutación de los genes GyrA y Gyr B que codifican para las topoisomerasas II y IV.
Característicamente las mutaciones mencionadas se presentan como cromosómicas y no
como plásmidos.
Un mecanismo similar se presenta para sulfonamidas y trimetoprim donde se presentan
modificaciones de la sintetasa de hidropteorato y dihidrofolato reductasa. La rifampicina
actúa sobre la subunidad 13 de la RNA polimerasa, inhibiendo la extensión del RNA
durante su síntesis. La resistencia a rifampicina se presenta cuando cambios en un
aminoácido de esta subunidad alteran la unión del antibiótico a la RNA polimerasa.
Esta resistencia es común en enterobacterias y puede desarrollarse en Staphylococcus,
N. meningitidis y H. influenzae. Respecto a las demás estructuras ribosomales
encontramos modificaciones a nivel de múltiples subunidades como 30s, 50s. Sitios de
acción de aminoglucósidos, lincosamidas, macrólidos y tetraciclinas. Por ejemplo: la
34
metilación ARN ribosomal de la subunidad 50S es el mecanismo de resistencia de S.
aureus, Bacteroides fragilis y Clostridium perfringens a tetraciclinas, cloranfenicol y
macrólidos. El mecanismo de resistencia (ribosomal) a gentamicina, tobramicina y
amikacina es poco frecuente y consiste en la mutación del péptido S12 de la subunidad
30S. Cabe destacar en este punto los mecanismos de meticilino resistencia por
producción de una proteína ligadora de penicilina (PBP), la resistencia a penicilina por S.
pneumoniae, la resistencia a glicopéptidos por S. aureus.
4.2.2. Antibiograma
La selección apropiada y uso de un agente antimicrobiano están basados en las
características del organismo etiológico y en el patrón de susceptibilidad, el huésped y el
fármaco.
Los antibiogramas son reportes de test de susceptibilidad a los agentes antimicrobianos y
están indicados para cultivos bacterianos clínicamente relevantes (por ejemplo: fluidos
normalmente estériles o sitios clínicamente infectados) cuando la susceptibilidad no
puede ser precedida.
4.2.2.1. Métodos de Detección de Susceptibilidad Antimicrobiana
Método de Microdilución en Caldo
La concentración Inhibitoria Mínima (CIM) está definida como la más baja concentración
de un agente antimicrobiano que inhibe el crecimiento bacteriano. Es un método
cuantitativo que utiliza diluciones dobles seriadas del antimicrobiano y se expresa el
resultado en μg/mL.
Método de Difusión en Disco
El método de difusión en disco está basado en la presencia o ausencia de una zona de
inhibición de crecimiento, que se mide en milímetros. La interpretación de la prueba está
35
basada en la correlación entre el diámetro de la zona de inhibición (mm) con la CIM
(μg/mL) para cada antimicrobiano y microorganismo13.
Método de Agar Dilución
Se usa para determinar la susceptibilidad antimicrobiana, incorpora el antimicrobiano
dentro del agar y cada placa contiene una concentración diferente de antimicrobiano. La
suspensión de la bacteria se ajusta al estándar de turbidez 0.5 McFarland y se hace una
dilución para que la concentración final del inóculo sea de 104 UFC. Este método es
recomendado para microorganismos exigentes como N. gonorrhoeae.
Método E test
La prueba E test determina la susceptibilidad de forma cuantitativa, se basa en el uso de
unas tiras o "epsilómetros" (AB Biodisk, Sweden) las cuales contienen un gradiente
exponencial continuo de antibiótico y una escala interpretativa. El gradiente de antibiótico
cubre un amplio rango de concentraciones correspondientes aproximadamente a 15
diluciones dobles de CIM. Estas concentraciones están diseñadas para corresponder con
los puntos de corte correspondientes a cada antimicrobiano.
El procedimiento es exactamente igual al usado en el método de difusión en disco pero en
vez de observar una zona circular de inhibición, se observa una zona elíptica. La CIM del
antibiótico se determina en el punto donde la elipse de crecimiento bacteriano intercepta
la escala de concentración de la tira.
Métodos Comerciales
Los métodos comerciales frecuentemente utilizan puntos de corte o diluciones en
concentraciones específicas que permiten diferenciar entre las categorías de
interpretación. Cuando los sistemas comerciales son usados se deben seguir las
recomendaciones de la manufactura en cuanto a almacenamiento, inoculación,
incubación ye interpretación. De acuerdo a la FDA la tasa aceptable de errores mayores
es menor de 1.5% y de errores muy mayores es menor de 3% de los aislamientos.
(13) http://www.cdc.gov/ncidod/dbmd/gss/publications/documents/ArgentinaLevelI/Manual_procedimientos.pdf
36
4.2.3. Indicaciones para las pruebas de susceptibilidad14
Las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana están indicadas para cualquier organismo
que esté implicado en un proceso infeccioso y en el cual se requiera una terapia
antimicrobiana; con mayor frecuencia se realizan en aquellos organismos que pertenecen
a una especie capaz de presentar resistencia a los agentes antimicrobianos de primera
línea más utilizados y que tengan estandarizados los criterios de interpretación. Es
importante que estos aislamientos clínicos sean recuperados de muestras tomadas
adecuadamente.
Las pruebas de susceptibilidad no están indicadas cuando la infección es debida a un
microorganismo del cual se conoce su susceptibilidad a cierto fármaco (ej. La
susceptibilidad de S. pyogenes a penicilina). Aislamiento de S. pyogenes proveniente de
pacientes alérgicos a la penicilina, las pruebas de susceptibilidad a eritromicina u otro
macrólido están indicadas para detectar resistencia a estos antibióticos. Sin embargo
cuando la naturaleza de la infección no es clara y en la muestra se observa mezcla de
diferentes microorganismos o flora normal, las pruebas de susceptibilidad no están
indicadas ya que pueden generar un uso inapropiado de un antibiótico.
4.2.4. Criterios de Interpretación de las Pruebas de Susceptibilidad
Estos criterios están basados en la respuesta in vitro de un microorganismo a un agente
antimicrobiano con niveles alcanzados en sangre o tejidos del antimicrobiano dosificado.
Los puntos de corte y su interpretación se generan teniendo en cuenta los criterios
microbiológicos, criterios de farmacocinética/farmacodinamia y clínicos. Los siguientes
son los criterios de interpretación actualmente sugeridos:
Susceptible: Cuando el microorganismo es inhibido por las concentraciones
alcanzadas por el agente antimicrobiano cuando la dosis recomendada es usada para
el sitio de la infección.
(14) http://www.cdc.gov/ncidod/dbmd/gss/publications/documents/ArgentinaLevelI/Manual_procedimientos.pdf
37
Intermedia: Cuando el microorganismo presenta una CIM del agente antimicrobiano
cercano a los niveles de antibiótico usualmente alcanzados en sangre o tejidos y para
los cuales la respuesta puede ser más baja que para los aislamientos susceptibles. La
categoría intermedia implica la eficacia clínica en sitios del cuerpo donde el fármaco
es concentrado fisiológicamente o cuando se puede utilizar una dosis más alta de lo
normal.
Resistente: Cuando el aislamiento no es inhibido por las concentraciones séricas del
antimicrobiano normalmente alcanzadas a dosis normales.
No susceptible: Cuando el microorganismo solamente tiene la categoría de
interpretación de susceptible, debido a la ausencia o rara ocurrencia de resistencia.
Los aislamientos que tienen CIM por encima o un diámetro de la zona debajo de los
valores indicados para el puto de corte como susceptible, puede ser reportado “no
susceptible”.
Un aislamiento que es interpretado como no susceptible no significa que tenga un
mecanismo de resistencia. Es posible que los aislamientos con una CIM en el punto
de corte de susceptible, carezcan de mecanismo de resistencia y se pueden encontrar
dentro de las cepas del tipo salvaje.
Para aislamientos que se encuentran en esta categoría de “no susceptible la
identificación y susceptibilidad antimicrobiana puede realizarse
38
4.3 CAPÍTULO III
EL USO RACIONAL DE LOS ANTIMICROBIANOS
Indudablemente el uso racional de los antimicrobianos es la herramienta fundamental
para evitar entrar en la época post-antibiótica. La resistencia a los antimicrobianos un
problema que genera preocupación internacional. Las tres organizaciones internacionales
que tienen responsabilidades sobre este tema, la Organización de las Naciones Unidas
para la Agricultura y la Alimentación (FAO), la Organización Internacional de Epizootias
(OIE) y la Organización Mundial de la Salud (OMS), han mostrado, reiteradamente, su
interés en el tema y han producido documentos aportando recomendaciones para la
utilización adecuada de este tipo de fármacos.
Estas organizaciones, hasta la fecha han coincidido en una serie de recomendaciones,
reflejadas en publicaciones que abarcan las siguientes áreas:
Responsabilidad de las autoridades regulatorias y otras con poder de decisión.
Calidad de manufactura.
Marketing, distribución y ventas de este tipo de productos.
Agentes promotores del crecimiento.
Monitorización de resistencia y utilización de antimicrobianos.
Uso prudente de antimicrobianos.
Uso profiláctico de antimicrobianos.
Entrenamiento y educación.
Investigación.
Además de la organización de grupos de trabajo, publicación de documentos y difusión de
material bibliográfico para conocimiento de técnicos y público en general, estas
organizaciones internacionales siguen adelante con su política de aportar soluciones a
este tema, que es una preocupación mundial15.
(15) Solórzano Armando, et al, 2008, Sensibilidad y Resistencia, vigilancia antibiótica.htm.
39
La terapéutica racional es un terreno dinámico, en que el avance del conocimiento va
volviendo obsoletas las viejas recetas quimioterápicas. Clásicamente, se ha medicado con
antibióticos siguiendo planes de administración o regímenes de dosificación, que
permitían mantener concentraciones de droga en plasma y tejidos en forma continuada,
durante un período suficiente para la total curación de la dolencia.
La curación se obtiene por muerte bacteriana de una gran parte de la población y
eliminación de los miembros sobrevivientes por activa participación del organismo16. De
allí que sea tan importante el estado de inmunocompetencia del paciente para la curación.
Pacientes inmunodeprimidos necesitan especial cuidado, dado que los quimioterápicos,
en este caso, actúan sin la ayuda de las defensas del organismo. Hay una serie de
consideraciones importantes que hacer para la cabal comprensión de este tema.
4.3.1. Consecuencias del uso incorrecto de los medicamentos
El uso incorrecto de los medicamentos ocurre en todos los países, es nocivo para los
pacientes y constituye un desperdicio de recursos17. Entre sus consecuencias se
encuentran:
Resistencia a los antimicrobianos: El uso excesivo de antibióticos aumenta la
resistencia a los antimicrobianos y el número de medicamentos que dejan de ser
eficaces para combatir las enfermedades infecciosas. Muchos procedimientos
quirúrgicos y los tratamientos antineoplásicos no son posibles sin antibióticos para
luchar contra las infecciones. La resistencia prolonga las enfermedades y las
estancias hospitalarias, y puede llegar a causar la muerte; su costo es de US$ 4–5 mil
millones al año en los Estados Unidos de América, y de € 9 mil millones al año en
Europa.
Reacciones adversas a los medicamentos y los errores de medicación: Las
reacciones adversas a los medicamentos originadas por su uso erróneo o por
reacciones alérgicas pueden ser causa de enfermedad, sufrimiento y muerte.
(16) Gómez Leonardo, 2008.Evolution of bacterial resistance to antibiotics during the last three decades. International Microbiology. (17) Suárez V, 2008, “Uso indebido de antibióticos: el rol de la comunidad, los profesionales de la salud y los servicios de salud”, Taller-Seminario Internacional Restablecer la salud de los ecosistemas para contener la resistencia bacteriana, 110-116.
40
Se calcula que las reacciones adversas a los medicamentos cuestan millones de
dólares al año.
El desperdicio de recursos: Un 10 a 40% de los presupuestos sanitarios nacionales
se gasta en medicamentos. La compra de medicamentos directamente por el usuario
puede causar graves dificultades económicas a los pacientes y a sus familias. Si los
medicamentos no se prescriben y usan adecuadamente, se desperdician miles de
millones de dólares de fondos públicos y personales.
La pérdida de confianza del paciente: El uso excesivo de medicamentos escasos
contribuye a menudo al agotamiento de existencias y al aumento de los precios hasta
niveles inasequibles, lo cual merma la confianza del paciente. Los malos resultados
sanitarios debidos al uso inadecuado de los medicamentos también pueden reducir la
confianza.
4.3.2. Factores que contribuyen al uso incorrecto de los medicamentos
Falta de conocimientos teóricos y prácticos: Las dudas sobre el diagnóstico, la
falta de conocimientos de los prescriptores sobre los enfoques diagnósticos óptimos,
la inexistencia de información independiente, como pueden ser las directrices clínicas,
y de oportunidades para efectuar un seguimiento de los pacientes o el temor a
posibles pleitos son factores que contribuyen a la prescripción y dispensación
inadecuadas de los medicamentos18
.
Promoción de los medicamentos inapropiada y contraria a la ética por parte de
las empresas farmacéuticas: La mayoría de los prescriptores obtienen la
información sobre los medicamentos de las empresas farmacéuticas, y no de fuentes
independientes, como las directrices clínicas. Esto puede conducir a menudo al uso
excesivo. En algunos países está permitida la publicidad de medicamentos que
necesitan receta dirigida directamente al consumidor, lo cual puede llevar a los
pacientes a presionar a los médicos pidiéndoles medicamentos innecesarios.
(18) Córdova N. Resistencia bacteriana a antimicrobianos : su importancia en la toma de decisiones en la práctica diaria.
2009;3345:9. Cornejo M. Resistenciabacteriana . 2008;9(2):53-55.
41
Beneficios de la venta de medicamentos: En muchos países los minoristas
prescriben y venden medicamentos sin necesidad de receta. Cuanto más vendan
mayores serán sus ingresos, lo cual conduce al consumo excesivo de medicamentos,
y en particular de los más caros.
Disponibilidad de medicamentos sin restricciones: En muchos países la
prescripción de medicamentos como los antibióticos se hace libremente, sin necesidad
de receta. Esto conduce al consumo excesivo, a la automedicación inapropiada y a la
inobservancia de los regímenes posológicos19.
Sobrecarga de trabajo del personal sanitario: Muchos prescriptores apenas tienen
tiempo para dedicar a cada paciente, lo cual puede estar en el origen de diagnósticos
y tratamientos deficientes. En esas circunstancias, se basan en hábitos de
prescripción porque no tienen tiempo para actualizar sus conocimientos sobre los
medicamentos.
Medicamentos inasequibles: En lugares donde los medicamentos son inasequibles,
los pacientes pueden no comprar las cantidades necesarias para un tratamiento
completo o no comprar ningún medicamento en absoluto. En lugar de ello pueden
buscar alternativas como los medicamentos de calidad no garantizada adquiridos a
través de Internet u otras fuentes, o los medicamentos que han sido prescritos a sus
familiares o amigos.
Inexistencia de políticas farmacéuticas nacionales coordinadas: Las políticas
básicas recomendadas por la OMS para garantizar el uso apropiado de los
medicamentos solo se aplican en menos de la mitad de los países. Dichas políticas
incluyen medidas e infraestructuras apropiadas para monitorizar y reglamentar el uso
de los medicamentos, y para capacitar y supervisar a los profesionales sanitarios que
realizan las prescripciones.
(19) Hardman Joel G, et al, 2008, Bases Farmacológicas de la Terapéutica, Editorial Mc Graw-Hill Interamericana, 9ª
edición, Vol. II México, Pág. 1066-1091.
42
4.3.3. Medidas para mejorar el uso racional de los medicamentos
La OMS asesora a los países para que ejecuten programas nacionales de fomento del
uso racional de los medicamentos mediante estructuras y medidas de política, información
y educación, tales como:
Creación de organismos nacionales que coordinen las políticas sobre el uso de los
medicamentos y hagan un seguimiento de sus repercusiones.
Formulación de directrices clínicas basadas en datos probatorios destinadas a la
capacitación, supervisión y apoyo a la toma de decisiones relacionadas con los
medicamentos20.
Elaboración de listas de medicamentos esenciales para ser utilizadas en la adquisición
de medicamentos y los reembolsos de los seguros.
Creación de comités distritales y hospitalarios de medicamentos y tratamientos que
apliquen intervenciones para mejorar el uso de los medicamentos y efectúen un
seguimiento de sus efectos.
Inclusión en los estudios universitarios de cursos de farmacoterapia basados en
problemas concretos.
Inclusión de la formación médica continua como requisito para ejercer la profesión;
Oferta de información pública independiente y no sesgada sobre los medicamentos,
tanto para el personal sanitario como para los consumidores.
Fomento de la educación de la población en materia de medicamentos.
Eliminación de los incentivos económicos que facilitan la prescripción incorrecta, como
la venta de medicamentos con ánimo de lucro por parte de los prescriptores, que ven
así aumentados sus ingresos.
(20) Benavides-Plascencia L, Aldama-Ojeda AL, Vázquez HJ. Vigilancia de los niveles de uso de antibióticos y perfiles de
resistencia bacteriana en hospitales de tercer nivel de la Ciudad de México. Salud Publica Mex 2005;47:219-226
43
Formulación de reglamentaciones que garanticen que las actividades de promoción se
ajustan a criterios éticos.
Financiación suficiente para garantizar la disponibilidad de medicamentos y personal
sanitario.
La estrategia más eficaz para mejorar el uso de los medicamentos en la atención primaria
en los países en desarrollo consiste en una combinación de la formación y la supervisión
del personal sanitario, la educación de los consumidores y el suministro de medicamentos
apropiados en cantidades suficientes. Separadamente, todas estas intervenciones tienen
un impacto reducido.
44
5. METODOLOGÍA
5.1. TIPO DE ESTUDIO
El presente proyecto de investigación fue de tipo descriptivo, observacional, con un
enfoque cuantitativo, basado en un diseño no experimental, en el Hospital de SOLCA de
Loja, en el período Junio a Noviembre de 2010 con el objetivo de determinar los Patrones
de Resistencia Bacteriana de los microorganismos más comunes, mediante el análisis de
cultivos de sangre, orina, secreciones nasofaríngeas y vaginales.
Partiendo de los resultados obtenidos se comparó con los Patrones de Resistencia
Bacteriana de los Hospitales: Carlos Andrade Marín de la Ciudad de Quito (HCAM),
Alcívar de la Ciudad de Guayaquil (HA), y SOLCA de la Ciudad de Cuenca, publicados en
la página web de la Red Nacional de Vigilancia de Resistencia Bacteriana del Ecuador
(REDNARBEC).
5.2. UNIVERSO
En esta investigación el universo se conformó por los cultivos realizados tanto en consulta
externa como en hospitalización, durante los meses de Junio a Noviembre de 2010 en el
Hospital de SOLCA de Loja.
5.3. MUESTRA
La muestra estuvo constituida por todos los cultivos que cumplieron con los criterios que
se mencionan a continuación:
5.3.1. Criterios de Inclusión:
Cultivos realizados en el período Junio a Noviembre de 2010 en el Hospital de
SOLCA de Loja.
Cultivos de origen: sanguíneo, urinario, secreciones nasofaríngeas y vaginales.
45
5.3.2. Criterios de exclusión:
Cultivos que se realicen fuera del período Junio a Noviembre de 2010.
Cultivos cuyo origen sea diferente al ya mencionado.
5.4. OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES
VARIABLE
DEFINICIÓN CONCEPTUAL
INDICADORES
ESCALA
Microorganismo
de mayor predominio
Mayor frecuencia de los microorganismos en aislamientos de los diferentes cultivos.
Bacterias
Tipo de bacteria
Niveles de
sensibilidad de las cepas
bacterianas
Fenómeno en el cual un germen es afectado o no por concentraciones terapéuticas de un antibiótico
Sensibilidad Resistencia
- Sensibilidad - Mediana sensibilidad - Resistencia
Relación de resistencia bacteriana
Comparación de resultados del Hospital de SOLCA de Loja con otros Hospitales del Ecuador.
Resistencia/ antibiótico
- Concordante - Discordante
Género
Características biológicas y fisiológicas que definen entre hombre y mujer.
- Masculino - Femenino
- Masculino - Femenino
5.5. ÁREA DE INVESTIGACIÓN
La presente investigación fue realizada en el Hospital de SOLCA de Loja, de las muestras
clínicas, de cultivos de sangre, orina, secreciones nasofaríngeas y vaginales realizadas en
el periodo de tiempo comprendido entre Junio a Noviembre de 2010.
46
5.6. MÉTODOS Y TÉCNICAS DE RECOLECCIÓN DE DATOS
Para la obtención de la información se empleó la técnica de inspección de registros la cual
permitió la revisión de los resultados de aquellos cultivos tanto del microorganismo
causante de la patología como del grado de sensibilidad a los distintos antibióticos, que
posteriormente fueron registrados en la Hoja de Datos elaborada en Microsoft Excel, la
misma que incluyó: sexo, edad, tipo de cultivo, nombre del microorganismo, y los
antibióticos a los cuales es sensible, medianamente sensible y resistente.
Para facilitar el procedimiento de toma de datos en el Anexo 3 se realizó la codificación
tanto de los microorganismos (Anexo 1) como de los antibióticos usados en los
respectivos cultivos (Anexo 2). Con la información así obtenida y registrada se tabuló para
su procesamiento.
5.7. PLAN DE TABULACIÓN Y ANÁLISIS
Los datos se presentaron en forma textual, tabular y gráficos confeccionados en Microsoft
Excel.
Finalmente los resultados obtenidos fueron comparados entre el Hospital de SOLCA de
Loja, con los Hospitales: Carlos Andrade Marín de la Ciudad de Quito (HCAM), Alcívar de
la Ciudad de Guayaquil (HA), y SOLCA de la Ciudad de Cuenca, los mismos que son
Miembros de la Red Nacional de Vigilancia de Resistencia Bacteriana del Ecuador
(REDNARBEC).
5.8. RECURSOS
5.8.1. Recursos humanos
Este proyecto de fin de Carrera fue realizado por la autora, en calidad de Profesional en
Formación de la Carrera de Medicina, aspirante a obtener el Título de Médico, para lo cual
se contó con el asesoramiento del Dr. Servio Antonio Romero Ramírez como Director de
Tesis.
47
5.8.2 Recursos materiales
Se utilizaron los siguientes materiales:
Computadora.
Dispositivo de Almacenamiento.
Material de oficina.
Hojas de papel bond.
Fotocopias.
Hoja de recolección de Datos.
Hoja de resultados de los Cultivos.
48
6. RESULTADOS E INTERPRETACIÓN
6.1. DATOS GENERALES Para cumplir el objetivo general, de establecer los gérmenes prevalentes de los
cultivos incluidos en la investigación, se cuantificó dicha variable, de lo que se
obtuvo lo siguiente:
6.1.1. CULTIVOS REALIZADOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Esta investigación fue realizada en el Hospital de SOLCA de Loja, de Junio a Noviembre
del año 2010, en 250 cultivos. (Ver Tabla N° 1). De los cuales correspondió a: urocultivo
48% (n=119); nasofaríngeo 26% (n=66); secreción vaginal 21% (n=52) y hemocultivo 5%
(n=13). (Ver Gráfico N° 1).
Tabla Nº1
Tipo de cultivo en el Hospital de SOLCA de Loja
CULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
CULTIVO MASCULINO FEMENINO TOTAL %
UROCULTIVO 29 90 119 47,6
HEMOCULTIVO 8 5 13 5,2
NASOFARINGEO 38 28 66 26,4
SEC. VAGINAL 0 52 52 20,8
TOTAL 75 175 250 100
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
49
Grafico N° 1
Tipo de cultivo en el Hospital de SOLCA de Loja
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora.
6.1.2. TIPO DE CULTIVO SEGÚN EL RANGO DE SEXO
El 70% (n=175) fue de origen femenino y 30% (n=75) de sexo masculino. (Ver Tabla N°
2). Dentro del sexo femenino, en particular el 51,4% (n=90) correspondió a urocultivo;
2,9% (n=5) a hemocultivo; 16,0% (n=28) a cultivo nasofaríngeo y 29,7% (n=52) a
secreción vaginal. Mientras que en el sexo masculino se encontró 38,7% (n=29) de
urocultivo; 10,7% (n=8) a hemocultivo; y 50,6% (n=38) a cultivo nasofaríngeo. (Ver Gráfico
N° 2).
Tabla Nº 2
Tipo de cultivo según el rango de sexo
CULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
CULTIVO M % F % TOTAL %
UROCULTIVO 38,7
30
51,4
70
119 47,6
HEMOCULTIVO 10,7 2,9 13 5,2
NASOFARINGEO 50,6 16.0 66 26,4
SEC. VAGINAL 0 29,7 52 20,8
TOTAL 100 100 250 100
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
48%
5%
26%
21% UROCULTIVO
HEMOCULTIVO
NASOFARINGEO
SEC. VAGINAL
50
Grafico N° 2
Tipo de cultivo según el rango de sexo
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
6.1.3. TIPO DE CULTIVO SEGÚN EL RANGO DE EDAD
Los 250 cultivos fueron clasificados según el rango de edad, y correspondieron: 3,2%
(n=8) a edades comprendidas entre 0 a 4 años; 5,2% (n=13) entre 5 a 18 años; el 78,4%
(n=196) entre 19 a 65 años y el 13,2% (n=33) restante eran pacientes mayores a 65 años.
(Ver Tabla N°3).
Del rango estimado entre 0 a 4 años, el 62,5% (n=5) correspondió a urocultivo; el 37,5%
(n=3) a hemocultivo, sin encontrar datos de urocultivo y secreción vaginal. En los cultivos
de entre 5 a 18 años se encontró 15,4% (n=2) de urocultivo; 7,7% (n=3) de hemocultivo;
69,2% (n=44) de origen nasofaríngeo y 7,7% (n=48) de secreción vaginal.
El rango total de 19 a 65 años se constituyó por urocultivos en un 51,5% (n=101);
hemocultivo 1,6% (n=3); de origen nasofaríngeo en un 22,4% (n=44) y de secreción
vaginal en un 24,5% (n=48). Y el rango de pacientes mayores a 65 años fue conformado
por un porcentaje de 48,4% (n=16) de urocultivos; 18,1% (n=6) de hemocultivos; 24,4%
(n=8) de nasofaríngeos y el restante 9,1% (n=3) de secreción vaginal. (Ver Gráfico N° 3).
38,7
51,4
10,7 2,9
50,6
16
0
29,7
0
20
40
60
80
100
M % F %
UROCULTIVO HEMOCULTIVO NASOFARINGEO SEC. VAGINAL
51
Tabla Nº 3
Tipo de cultivo según el rango de edad
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Grafico N° 3
Tipo de cultivo según el rango de edad
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Para cumplir el primer objetivo específico, de establecer los gérmenes de mayor
predominio aislados en los cultivos incluidos en la investigación, se cuantificó
dicha variable según el sexo, de lo que se obtuvo lo siguiente:
CULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
CULTIVO
0 - 4 AÑOS
5 - 18 AÑOS
19 - 65 AÑOS
> 65 AÑOS
TOTAL %
f % f % f % f %
UROCULTIVO 0 0 2 15,4 101 51,5 16 48,4 119 47,6
HEMOCULTIVO 3 37,5 1 7,7 3 1,6 6 18,1 13 5,2
NASOFARINGEO 5 62,5 9 69,2 44 22,4 8 24,4 66 26,4
SEC. VAGINAL 0 0 1 7,7 48 24,5 3 9,1 52 20,8
TOTAL 8 100 13 100 196 100 33 100 250 100
% 3,2 5,2 78,4 13,2 100
0
15,4
51,5 48,4
37,5
7,7 1,6
18,1
62,5 69,2
22,4 24,4
0 7,7
24,5
9,1
0102030405060708090
100
% % % %
0 - 4 AÑOS 5 - 18 AÑOS 19 - 65 AÑOS > 65 AÑOS
UROCULTIVO HEMOCULTIVO NASOFARINGEO SEC. VAGINAL
52
6.1.4. UROCULTIVOS
Cuantificación de urocultivos según el rango de sexo: (Ver Tabla N°4).
Tabla Nº 4
Gérmenes en Urocultivos según el rango de sexo
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
6.1.4.1. GÉRMENES DE UROCULTIVOS SEGÚN EL RANGO DE SEXO
En el sexo femenino existió predominio de E. Coli (n=74) que correspondió a 81,3%;
seguido de Staphylococcus epidermidis (n=7) con 7,7%; posteriormente Klebsiella spp
(n=4) con 4,4%, luego Enterobacter aerogenes (n=3) con 3,3%, también Chlamydia
Trachomatis (n=2) con 2,2% y finalmente Cándida albicans (n=1) con 1,1%. (Ver Gráfico
Nº 4).
De los urocultivos realizados en el sexo masculino, se evidenció predominio de E. Coli
(n=25) con 89,2%; seguido de Staphylococcus epidermidis (n=2) con 7,4% y Klebsiella
spp (n=1) con 3,4%. (Ver Gráfico Nº 5).
UROCULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
SEXO MASCULINO FEMENINO
GERMEN f % f %
Staphylococcus epidermidis 2 7,4 7 7,7 Enterobacter aerogenes 0 0 3 3,3
Escherichia coli 25 89,2 74 81,3 Klebsiella spp 1 3,4 4 4,4
Cándida albicans 0 0 1 1,1 Chlamydia 0 0 2 2,2
TOTAL 28 100 91 100
53
Grafico N° 4
Gérmenes en Urocultivos en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Grafico N° 5
Gérmenes en Urocultivos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
8% 3%
81%
5% 1%
2%
Staphylococcus epidermidis
Enterobacter aerogenes
Escherichia coli
Klebsiella spp
Candida albicans
Chlamydia Trachomatis
7%
89%
4%
Staphylococcus epidermidis
Escherichia coli
Klebsiella
54
6.1.5. CULTIVOS NASOFARÍNGEOS
Cuantificación de cultivos nasofaríngeos según el rango de sexo: (Ver Tabla N° 5).
Tabla Nº 5
Gérmenes en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de sexo
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
6.1.5.1. GÉRMENES DE CULTIVOS NASOFARÍNGEOS SEGÚN EL RANGO DE SEXO
En los cultivos nasofaríngeos tuvo predominio en el sexo femenino el Staphylococcus
aureus (n=10) con 35,7%; continuando con Staphylococcus epidermidis (n=8) con 28,6%;
luego Streptococcus pneumoniae (n=4) con 14,2%; también Streptococcus agalactiae
(n=3) con un 10,7%; finalmente Haemophilus influenzae y Klebsiella spp (n=1) con 3,6%
respectivamente. (Ver Gráfico Nº 6).
En el sexo masculino, en orden de frecuencia sobresalieron: Staphylococcus aureus
(n=16) con 42,1%; luego Staphylococcus epidermidis (n=12) con 31,6%; Streptococcus
pneumoniae e Haemophilus influenzae (n=3) con 7,9%; también Streptococcus agalactiae
(n=2) con 5,3% y en última instancia tanto para Streptococcus pyogenes como para
Rickettsia (n=1) con 2,6%. (Ver Gráfico Nº 7).
CULTIVOS NASOFARINGEOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
SEXO MASCULINO FEMENINO
GERMEN f % f %
Staphylococcus aureus 16 42,1 10 35,7
Staphylococcus epidermidis 12 31,6 8 28,6
Streptococcus pneumoniae 3 7,9 4 14,2
Streptococcus pyogenes 1 2,6 1 3,6
Streptococcus agalactiae 2 5,3 3 10,7
Haemophilus influenzae 3 7,9 1 3,6
Klebsiella spp 0 0 1 3,6
Rickettsia 1 2,6 0 0
TOTAL 38 100 28 100
55
Grafico N° 6
Gérmenes en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Grafico N° 7
Gérmenes en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
36%
29%
14%
3%
11%
3% 4% Staphylococcus aureus
Staphylococcus epidermidis
Streptococcus pneumoniae
Streptococcus pyogenes
Streptococcus agalactiae
Haemophilus influenzae
Klebsiella spp
42%
31%
8%
3% 5%
8%
3% Staphylococcus aureus
Staphylococcus epidermidis
Streptococcus pneumoniae
Streptococcus pyogenes
Streptococcus agalactiae
Haemophilus influenzae
Rickettsia
56
6.1.6. HEMOCULTIVOS
Cuantificación de hemocultivos según el rango de sexo: (Ver Tabla N° 6).
Tabla Nº 6
Gérmenes en Hemocultivos según el rango de sexo FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
6.1.6.1. GÉRMENES EN HEMOCULTIVOS SEGÚN EL RANGO DE SEXO
Dentro de los hemocultivos en el sexo femenino existió los siguientes resultados:
Staphylococcus epidermidis, Enterobacter aerogenes, Klebsiella spp, Pseudomona
aeruginosa, y Neisseria meningitidis (n=1) con 20% respectivamente. (Ver Gráfico Nº 8).
Razón por la cual únicamente se consideró al microorganismo más representativo, en el
cual se estableció su sensibilidad y resistencia, éste fue Neisseria meningitidis, que
sobresalió también en el sexo masculino en segunda instancia.
Por el contrario en el sexo masculino prevalecieron: Pseudomona aeruginosa (n=3) con
37,5%; Neisseria meningitidis (n=2) en 25%; Staphylococcus aureus, Staphylococcus
epidermidis y Streptococcus agalactiae con (n=1) el 12,5% respectivamente. (Ver Gráfico
Nº 9). Aquí se estableció sensibilidad y resistencia para Streptococcus agalactiae, como
muestra representativa, ya que como se evidenció éste microorganismo mostró similitud
de porcentaje con los anteriores.
HEMOCULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
SEXO MASCULINO FEMENINO
GERMEN f % f %
Staphylococcus aureus 1 12,5 0 0
Staphylococcus epidermidis 1 12,5 1 20
Streptococcus agalactiae 1 12,5 0 0
Enterobacter aerogenes 0 0 1 20
Klebsiella spp 0 0 1 20
Pseudomona aeruginosa 3 37,5 1 20
Neisseria meningitidis 2 25 1 20
TOTAL 8 100 5 100
57
Grafico N° 8
Gérmenes en Hemocultivos en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Grafico N° 9
Gérmenes en Hemocultivos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
12%
12%
13%
38%
25% Staphylococcus aureus
Staphylococcus epidermidis
Streptococcus agalactiae
Pseudomona aeruginosa
Neisseria meningitidis
20%
20%
20%
20%
20%
Staphylococcus epidermidis
Enterobacter aerogenes
Klebsiella spp
Pseudomona aeruginosa
Neisseria meningitidis
58
6.1.7. CULTIVOS DE SECRECIÓN VAGINAL
Cuantificación de cultivos en secreción vaginal. (Ver Tabla N° 7).
Tabla Nº 7
Gérmenes en Cultivos de Secreción Vaginal
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
6.1.7.1. GÉRMENES EN CULTIVOS DE SECRECIÓN VAGINAL
En un total de 52 cultivos de secreción vaginal se obtuvo los siguientes resultados:
Staphylococcus epidermidis (n=22) con 42,3%; Gardnerella vaginalis (n=10) con 19,2%;
Staphylococcus aureus (n=6) con 11,5%; Enterobacter aerogenes y Chlamydia
Trachomatis (n=4) con 7,7% cada uno; Klebsiella spp (n=2) con 3,9%; finalmente
Streptococcus viridans y Streptococcus agalactiae (n=1) con 1,9% respectivamente. (Ver
Gráfico Nº 10).
CULTIVOS DE SECRECIÓN VAGINAL EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
GERMEN f %
Staphylococcus aureus 6 11,5
Staphylococcus epidermidis 22 42,3
Streptococcus viridans 1 1,9
Streptococcus agalactiae 1 1,9
Enterobacter aerogenes 4 7,7
Escherichia coli 2 3,9
Gardnerella vaginalis 10 19,2
Klebsiella spp 2 3,9
Chlamydia Trachomatis 4 7,7
TOTAL 52 100
59
Grafico N° 10
Gérmenes en Cultivos de Secreción Vaginal
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
6.2. DATOS ESPECÍFICOS
De acuerdo al segundo objetivo específico a nivel de sensibilidad de las cepas
bacterianas tanto Hospitalarias como de Consulta Externa en el Hospital de SOLCA
de Loja se realizó el análisis de los diferentes cultivos, considerando el rango de
sexo del paciente.
6.2.1 SENSIBILIDAD Y RESISTENCIA DE LOS GÉRMENES AISLADOS EN UROCULTIVOS
SEGÚN EL SEXO
6.2.1.1 Urocultivos del Sexo Masculino
Sensibilidad y resistencia de Escherichia coli. (Ver Tabla N° 8).
En sexo masculino hubo sensibilidad del 67% para Fosfomicina; 57% Nitrofurantoína;
47% Gentamicina; 45% Vancomicina; 42% Eritromicina; 40% Netilmicina; 33%
Ampicilina/Sulbactam; 28% Dicloxacilina; 25% Ofloxacina; 20% para Amikacina y
Oxacilina; 17% Imipenem; 15% Trimetroprim/Sulfametoxazol; 14% Tetraciclina; 9%
Cefadroxil; 8% para Ampicilina y Piperacilina/Tazobactam. (Ver Gráfico N°11).
11%
42%
2% 2%
8% 4%
19%
4% 8%
Staphylococcus aureus
Staphylococcus epidermidis
Streptococcus viridans
Streptococcus agalactiae
Enterobacter aerogenes
Escherichia coli
Gardnerella vaginalis
Klebsiella spp
Chlamydia trachomatis
60
En el Gráfico N° 12, se evidencia en el sexo masculino los niveles de resistencia para
Claritromicina, Penicilina y Colistin 100%; Amoxicilina/Ácido Clavulánico 83%; Lincomicina
80%; Cefuroxima y Ácido Nalidíxico 78%; Ampicilina, Piperacilina/Tazobactam y
Ceftriaxona 75%; Cefalexina, Amoxicilina y Norfloxacina 67%; Levofloxacina 58%;
Ampicilina/Sulbactam 56%; Cefadroxil y Clindamicina 55%; Trimetroprim/Sulfametoxazol
54%; Ofloxacina, Cefazolina y Ciprofloxacino 50%; Oxacilina 40%; Dicloxacilina,
Vancomicina e Imipenem 33%; Netilmicina 30%; Gentamicina 26%; Amikacina y
Azitromicina 20%; Nitrofurantoína 18%; Fosfomicina y Tetraciclina 14%; Eritromicina 7%.
Tabla Nº 8
Niveles de Sensibilidad de Escherichia coli en Urocultivos en el Sexo Masculino
UROCULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Masculino
Escherichia coli
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Fosfomicina 14 8 67 4 29 2 14
Gentamicina 19 8 47 6 32 5 26
Eritromicina 15 7 47 7 47 1 7
Nitrofurantoína 11 5 57 4 36 2 18
Dicloxacilina 18 5 28 7 39 6 33
Vancomicina 6 4 45 0 0 2 33
Netilmicina 10 4 40 3 30 3 30
Ampicilina/Sulbactam 9 3 33 1 11 5 56
Ofloxacina 8 2 25 2 25 4 50
Imipenem 12 2 17 6 50 4 33
Trimetroprim/Sulfametoxazol 13 2 15 4 31 7 54
Amikacina 5 1 20 3 60 1 20
Oxacilina 5 1 20 2 40 2 40
Tetraciclina 7 1 14 5 71 1 14
Cefadroxil 11 1 9 4 36 6 55
Ampicilina 12 1 8 2 17 9 75
Piperacilina/Tazobactam 12 1 8 2 17 9 75
Ceftazidima 1 0 0 1 100 0 0
Claritromicina 1 0 0 0 0 1 100
Colistin 1 0 0 0 0 1 100
Cefazolina 2 0 0 1 50 1 50
Norfloxacina 3 0 0 1 33 2 67
61
Penicilina 3 0 0 0 0 3 100
Ceftriaxona 4 0 0 1 25 3 75
Azitromicina 5 0 0 4 80 1 20
Lincomicina 5 0 0 1 20 4 80
Amoxicilina 6 0 0 2 33 4 67
Cefalexina 6 0 0 2 33 4 67
Ácido Nalidíxico 9 0 0 2 22 7 78
Cefuroxima 9 0 0 2 22 7 78
Ciprofloxacino 10 0 0 5 50 5 50
Clindamicina 11 0 0 5 45 6 55
Amoxicilina/Ácido Clavulánico 12 0 0 2 17 10 83
Levofloxacina 12 0 0 5 42 7 58
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 11
Niveles de Sensibilidad de Escherichia coli en Urocultivos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
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Gráfico Nº 12
Resistencia de Escherichia coli en Urocultivos según el rango de Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Sensibilidad y resistencia de Staphylococcus epidermidis (Ver Tabla N° 9).
En urocultivos del sexo masculino, Staphylococcus epidermidis mostró sensibilidad para
Lincomicina con el 100 %; así también para Ciprofloxacino, Clindamicina y Eritromicina
en un 50%. (Ver Gráfico N°12). En cuanto a resistencia, como indica el Gráfico N° 13, se
encontró un 100% para Azitromicina, Netilmicina, Dicloxacilina, Imipenem, Ofloxacina y
Tetraciclina; y en 50% para Ciprofloxacino, Clindamicina, Eritromicina, Cefadroxil y
Cefuroxima.
Tabla Nº 9
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos en el Sexo Masculino
UROCULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Masculino
Staphylococcus epidermidis
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Lincomicina 1 1 100 0 0 0 0
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FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 13
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Ciprofloxacino 2 1 50 0 0 1 50
Clindamicina 2 1 50 0 0 1 50
Eritromicina 2 1 50 0 0 1 50
Azitromicina 1 0 0 0 0 1 100
Netilmicina 1 0 0 0 0 1 100
Tetraciclina 1 0 0 0 0 1 100
Trimetroprim/Sulfametoxazol 1 0 0 1 100 0 0
Cefadroxil 2 0 0 1 50 1 50
Cefuroxima 2 0 0 1 50 1 50
Dicloxacilina 2 0 0 0 0 2 100
Imipenem 2 0 0 0 0 2 100
Ofloxacina 2 0 0 0 0 2 100
Vancomicina 2 0 0 2 100 0 0
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Gráfico Nº 14
Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos según el rango de Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
6.2.1.2 Urocultivos del Sexo Femenino
Sensibilidad y resistencia de Escherichia coli. (Ver Tabla N° 10). Así también se determinó el nivel de sensibilidad de Escherichia Coli en el sexo femenino,
y se obtuvo los siguientes resultados: 100% Cefazolina; 50% Vancomicina; 47%
Gentamicina; Fosfomicina 40%; Nitrofurantoína, Amoxicilina y Amikacina 32%;
Dicloxacilina 31%; Azitromicina 29%; Cefadroxil 27%; Cefalexina 26%; Netilmicina,
Norfloxacina y Levofloxacina 25%; Ceftriaxona y Ofloxacina 23%; Ampicilina/Sulbactam y
Piperacilina/Tazobactam 22%; Eritromicina 18%; Cefuroxima y Claritromicina 17%;
Tetraciclina 14%; Imipenem y Ampicilina 10%; Clindamicina 9%; Ciprofloxacino y Colistin
6%; Ácido Nalidíxico 5% y Trimetroprim/Sulfametoxazol 3%. (Ver Gráfico N°15).
La Resistencia estuvo reflejada en los siguientes resultados: Tigeciclina 100%; Colistin
94%; Amoxicilina/Ácido Clavulánico y Penicilina 86%; Claritromicina 75%; Clindamicina
68%; Ampicilina/Sulbactam 62%; Ciprofloxacino 61%; Lincomicina 60; Cefalexina y
Tetraciclina 57%; Ácido Nalidíxico 55%; Trimetroprim/Sulfametoxazol 54%; Amoxicilina y
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Cefotaxima 50%; Piperacilina/Tazobactam, Ceftriaxona y Ofloxacina 46%; Levofloxacina
44%; Imipenem 43%; Azitromicina 35%; Nitrofurantoína y Cefuroxima 32%; Dicloxacilina y
Oxacilina 25%; Amikacina 18%; Netilmicina 15%; Gentamicina 14%; Vancomicina 13%; y
Fosfomicina 12%. (Ver Gráfico N°16).
Tabla Nº 10
Niveles de Sensibilidad de Escherichia coli en Urocultivos en el Sexo Femenino
UROCULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Femenino
Escherichia coli
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Gentamicina 58 27 47 23 40 8 14
Fosfomicina 50 20 40 24 48 6 12
Dicloxacilina 48 15 31 21 44 12 25
Nitrofurantoína 37 12 32 13 35 12 32
Amikacina 28 9 32 14 50 5 18
Levofloxacina 32 8 25 10 31 14 44
Ampicilina/Sulbactam 37 8 22 6 16 23 62
Piperacilina/Tazobactam 37 8 22 12 32 17 46
Amoxicilina 22 7 32 4 18 11 50
Cefadroxil 26 7 27 7 27 12 46
Cefuroxima 41 7 17 21 51 13 32
Cefalexina 23 6 26 4 17 13 57
Azitromicina 17 5 29 6 35 6 35
Netilmicina 20 5 25 12 60 3 15
Eritromicina 28 5 18 15 54 8 29
Vancomicina 8 4 50 3 38 1 13
Ceftriaxona 13 3 23 4 31 6 46
Ofloxacina 13 3 23 4 31 6 46
Tetraciclina 21 3 14 6 29 12 57
Ampicilina 30 3 10 5 17 22 73
Lincomicina 10 2 20 2 20 6 60
Claritromicina 12 2 17 1 8 9 75
Imipenem 21 2 10 10 48 9 43
Clindamicina 22 2 9 5 23 15 68
Ciprofloxacino 33 2 6 11 33 20 61
Ácido Nalidíxico 38 2 5 15 39 21 55
66
Cefazolina 1 1 100 0 0 0 0
Norfloxacina 4 1 25 3 75 0 0
Colistin 16 1 6 0 0 15 94
Trimetroprim/Sulfametoxazol 39 1 3 17 44 21 54
Tigeciclina 1 0 0 0 0 1 100
Cefotaxima 2 0 0 1 50 1 50
Penicilina 7 0 0 1 14 6 86
Oxacilina 8 0 0 6 75 2 25
Amoxicilina/Ácido Clavulánico
36 0 0 5 14 31 86
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 15
Niveles de Sensibilidad de Escherichia coli en Urocultivos en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
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Gráfico Nº 16
Resistencia de Escherichia coli en Urocultivos según el rango de Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Sensibilidad y resistencia de Staphylococcus epidermidis (Ver Tabla N° 11).
El nivel de sensibilidad representado en el Gráfico N° 17 de Staphylococcus epidermidis
en el sexo femenino fue de 100% para Netilmicina y Penicilina; 80% para Vancomicina;
33% Azitromicina, Cefalexina y Ofloxacina; 17% para Trimetroprim/Sulfametoxazol y 14%
para Cefadroxil.
En el Gráfico N° 18 se observó el nivel de resistencia de Staphylococcus epidermidis en el
sexo femenino: Ácido Nalidíxico, Ampicilina/Sulbactam, Levofloxacina y Oxacilina 100%;
Trimetroprim/Sulfametoxazol 83%; Tetraciclina e Imipenem 67%; Dicloxacilina 60%;
Ceftriaxona 50%; Clindamicina y Lincomicina 40%; Ofloxacina 33%; Cefadroxil 29%;
Cefuroxima 20%; y Azitromicina con 17%.
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Antibióticos R %
68
Tabla Nº 11
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos en el Sexo Femenino
UROCULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Femenino
Staphylococcus epidermidis
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Vancomicina 5 4 80 1 20 0 0
Netilmicina 2 2 100 0 0 0 0
Azitromicina 6 2 33 3 50 1 17
Penicilina 1 1 100 0 0 0 0
Cefalexina 3 1 33 2 67 0 0
Ofloxacina 3 1 33 1 33 1 33
Trimetroprim/Sulfametoxazol 6 1 17 0 0 5 83
Cefadroxil 7 1 14 4 57 2 29
Ácido Nalidíxico 1 0 0 0 0 1 100
Ampicilina/Sulbactam 1 0 0 0 0 1 100
Levofloxacina 1 0 0 0 0 1 100
Ceftriaxona 2 0 0 1 50 1 50
Oxacilina 3 0 0 0 0 3 100
Tetraciclina 3 0 0 1 33 2 67
Cefuroxima 5 0 0 4 80 1 20
Clindamicina 5 0 0 3 60 2 40
Dicloxacilina 5 0 0 2 40 3 60
Eritromicina 5 0 0 5 100 0 0
Lincomicina 5 0 0 3 60 2 40
Ciprofloxacino 6 0 0 6 100 0 0
Imipenem 6 0 0 2 33 4 67
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
69
Gráfico Nº 17
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora.
Gráfico Nº 18
Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Urocultivos según el rango de Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
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6.2.2 SENSIBILIDAD Y RESISTENCIA DE LOS GÉRMENES AISLADOS EN CULTIVOS
NASOFARÍNGEOS SEGÚN EL SEXO
6.2.2.1. Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino
Sensibilidad y resistencia de Staphylococcus aureus. (Ver Tabla N°12)
La sensibilidad para Staphylococcus aureus en el sexo masculino estuvo marcada por:
Claritromicina, Levofloxacina y Norfloxacina con 100%; Netilmicina 80%; Vancomicina
64%; Cefalexina con 50%; Azitromicina 43%; Ampicilina y Gentamicina con 33%;
Penicilina 25%; Eritromicina 22%; Oxacilina con 14%; Dicloxacilina con 13%; y
Ciprofloxacino con 10%, como se observa en el Gráfico N° 19. Fue resistente para los
siguientes antibióticos: Amoxicilina, Ácido Nalidíxico, Piperacilina/Tazobactam, Amikacina,
Amoxicilina/Ácido Clavulánico y Ampicilina/Sulbactam con el 100%; Lincomicina 80%;
Dicloxacilina 75%; Ampicilina, Ofloxacina, Trimetroprim/Sulfametoxazol e Imipenem con
67%; Oxacilina 57%; Penicilina 50%; Tetraciclina 40% Eritromicina, Gentamicina y
Clindamicina con 33%; Ciprofloxacino con 30%; Cefadroxil con 29%; Cefalexina 25% y
Cefuroxima 17%. (Ver Gráfico N°20).
Tabla Nº 12
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino
CULTIVOS NASOFARÍNGEOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Masculino
Staphylococcus aureus
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Vancomicina 11 7 64 4 36 0 0
Netilmicina 5 4 80 1 20 0 0
Azitromicina 7 3 43 4 57 0 0
Cefalexina 4 2 50 1 25 1 25
Eritromicina 9 2 22 4 44 3 33
Claritromicina 1 1 100 0 0 0 0
Levofloxacina 1 1 100 0 0 0 0
Norfloxacina 1 1 100 0 0 0 0
Ampicilina 3 1 33 0 0 2 67
Gentamicina 3 1 33 1 33 1 33
71
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 19
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Penicilina 4 1 25 1 25 2 50
Oxacilina 7 1 14 2 29 4 57
Dicloxacilina 8 1 13 1 13 6 75
Ciprofloxacino 10 1 10 6 60 3 30
Ácido Nalidíxico 1 0 0 0 0 1 100
Amoxicilina 1 0 0 0 0 1 100
Nitrofurantoína 1 0 0 1 100 0 0
Piperacilina/Tazobactam 1 0 0 0 0 1 100
Amikacina 2 0 0 0 0 2 100
Amoxicilina/Ácido Clavulánico 2 0 0 0 0 2 100
Ampicilina/Sulbactam 2 0 0 0 0 2 100
Ceftriaxona 2 0 0 2 100 0 0
Ofloxacina 3 0 0 1 33 2 67
Lincomicina 5 0 0 1 20 4 80
Tetraciclina 5 0 0 3 60 2 40
Cefuroxima 6 0 0 5 83 1 17
Trimetroprim/Sulfametoxazol 6 0 0 2 33 4 67
Cefadroxil 7 0 0 5 71 2 29
Clindamicina 9 0 0 6 67 3 33
Imipenem 9 0 0 3 33 6 67
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Antibióticos R % MS % S %
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Gráfico Nº 20
Resistencia de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Sensibilidad y resistencia de Staphylococcus epidermidis. (Ver Tabla N°13)
Dentro de los cultivos nasofaríngeos se encontró sensibilidad para: Claritromicina del
100%; Vancomicina del 67%; Tetraciclina del 43%; Cefadroxil del 36%; Netilmicina del
33%; Cefalexina del 30%; Azitromicina y Clindamicina del 20%; Dicloxacilina del 18%;
Eritromicina del 17%; Ciprofloxacino del14% y Cefuroxima del 8%. (Ver Gráfico N°21).
El nivel de resistencia para Amoxicilina y Lincomicina fue del 100%; para Oxacilina del
90%; Ofloxacina del 83%; Trimetroprim/Sulfametoxazol del 71%; Imipenem del 69%;
Clindamicina y Eritromicina del 67%; Azitromicina del 60%; Levofloxacina del 50%;
Cefalexina 40%; Cefuroxima del 31%; Dicloxacilina del 27%; Tetraciclina del 29%;
Cefadroxil del 21%; Ciprofloxacino del 14%; Vancomicina del 13%. (Ver Gráfico N°22).
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Tabla Nº 13
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino
CULTIVOS NASOFARINGEOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Masculino
Staphylococcus epidermidis
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Vancomicina 15 10 67 3 20 2 13
Cefadroxil 14 5 36 6 43 3 21
Tetraciclina 7 3 43 2 29 2 29
Cefalexina 10 3 30 3 30 4 40
Azitromicina 15 3 20 3 20 9 60
Clindamicina 15 3 20 2 13 10 67
Dicloxacilina 11 2 18 6 55 3 27
Eritromicina 12 2 17 2 17 8 67
Ciprofloxacino 14 2 14 10 71 2 14
Claritromicina 1 1 100 0 0 0 0
Netilmicina 3 1 33 2 67 0 0
Cefuroxima 13 1 8 8 62 4 31
Amoxicilina 1 0 0 0 0 1 100
Ampicilina/Sulbactam 1 0 0 1 100 0 0
Gentamicina 1 0 0 1 100 0 0
Norfloxacina 1 0 0 1 100 0 0
Levofloxacina 2 0 0 1 50 1 50
Ofloxacina 6 0 0 1 17 5 83
Lincomicina 9 0 0 0 0 9 100
Oxacilina 10 0 0 1 10 9 90
Imipenem 13 0 0 4 31 9 69
Trimetroprim/Sulfametoxazol 14 0 0 4 29 10 71
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
74
Gráfico Nº 21
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 22
Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
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R %
75
6.2.2.2. Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino
Sensibilidad y resistencia de Staphylococcus aureus. (Ver Tabla N°14)
En cuanto a la sensibilidad para Staphylococcus aureus en cultivos nasofaríngeos se
evidenció: Cefalexina con 67%; Amoxicilina y Penicilina con 50; Azitromicina y
Vancomicina con 43%; Eritromicina con 40%; Ampicilina con 33%; Cefuroxima y
Ciprofloxacino con 29%; Cefadroxil con 20% y Trimetroprim/Sulfametoxazol con 17%.
(Ver Gráfico N° 23).
En resistencia antibiótica se obtuvo lo siguiente: Amoxicilina/Ácido Clavulánico,
Levofloxacina, Ácido Nalidíxico, Oxacilina, Lincomicina y Ampicilina/Sulbactam con 100%;
Dicloxacilina y Tetraciclina con 67%; Clindamicina con 57%; Amoxicilina, Ofloxacina y
Trimetroprim/Sulfametoxazol con 50%; Cefuroxima e Imipenem con 43%; Cefadroxil 40%;
Ampicilina con 33%; Vancomicina y Ciprofloxacino con 29%; Eritromicina 20% y
Azitromicina con 14%. (Ver Gráfico N° 24).
Tabla Nº 14
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino
CULTIVOS NASOFARÍNGEOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Femenino
Staphylococcus aureus
Antibiótico N° S MS R
f f % f % f %
Azitromicina 7 3 43 3 43 1 14
Vancomicina 7 3 43 2 29 2 29
Cefalexina 3 2 67 1 33 0 0
Eritromicina 5 2 40 2 40 1 20
Cefuroxima 7 2 29 2 29 3 43
Ciprofloxacino 7 2 29 3 43 2 29
Amoxicilina 2 1 50 0 0 1 50
Penicilina 2 1 50 1 50 0 0
Ampicilina 3 1 33 1 33 1 33
Cefadroxil 5 1 20 2 40 2 40
Trimetroprim/Sulfametoxazol 6 1 17 2 33 3 50
76
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 23
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Ácido Nalidíxico 1 0 0 0 0 1 100
Ampicilina/Sulbactam 1 0 0 0 0 1 100
Claritromicina 1 0 0 1 100 0 0
Piperacilina/Tazobactam 1 0 0 1 100 0 0
Amoxicilina/Ácido Clavulánico 2 0 0 0 0 2 100
Levofloxacina 2 0 0 0 0 2 100
Lincomicina 2 0 0 0 0 2 100
Ofloxacina 2 0 0 1 50 1 50
Tetraciclina 3 0 0 1 33 2 67
Oxacilina 4 0 0 0 0 4 100
Dicloxacilina 6 0 0 2 33 4 67
Clindamicina 7 0 0 3 43 4 57
Imipenem 7 0 0 4 57 3 43
0
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%
Antibióticos
R %
MS %
S %
77
Gráfico Nº 24
Resistencia de Staphylococcus aureus en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Sensibilidad y resistencia de Staphylococcus epidermidis. (Ver Tabla N°15) Para Staphylococcus epidermidis la sensibilidad dentro de los cultivos nasofaríngeos en el
sexo femenino estuvo representada por: Amoxicilina/Ácido Clavulánico, Ampicilina y
Norfloxacina con el 100; seguido por Cefadroxil con 56%; Ofloxacina con 50%;
Eritromicina con 38%; Ciprofloxacino, Cefalexina, y Tetraciclina con 25%; Azitromicina con
22%; Oxacilina y Trimetroprim/Sulfametoxazol con 14%; Cefuroxima, Dicloxacilina y
Vancomicina con 13%; finalmente Clindamicina con 16% como se pude visualizar en el
Gráfico N° 25.
Así también el nivel de resistencia representado en el Gráfico N° 26 fue demostrado por
los siguientes antibióticos: 100% para Ácido Nalidíxico, Gentamicina y Nitrofurantoína;
Oxacilina con 86%; Lincomicina con 83%; Imipenem 78%; Trimetroprim/Sulfametoxazol
57%; Clindamicina con 56%; Eritromicina 38%; Dicloxacilina, Ciprofloxacino, Cefalexina y
Tetraciclina con 25%; también Eritromicina con 11%.
0102030405060708090
100
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je %
Antibióticos
R %
78
Tabla Nº 15
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino
CULTIVOS NASOFARINGEOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Femenino
Staphylococcus epidermidis
Antibiótico N° S MS R
f f % f % f %
Cefadroxil 9 5 56 4 44 0 0
Eritromicina 8 3 38 2 25 3 38
Ciprofloxacino 8 2 25 4 50 2 25
Azitromicina 9 2 22 6 67 1 11
Amoxicilina/Ácido Clavulánico 1 1 100 0 0 0 0
Ampicilina 1 1 100 0 0 0 0
Norfloxacina 1 1 100 0 0 0 0
Ofloxacina 2 1 50 1 50 0 0
Cefalexina 4 1 25 2 50 1 25
Tetraciclina 4 1 25 2 50 1 25
Oxacilina 7 1 14 0 0 6 86
Trimetroprim/Sulfametoxazol 7 1 14 2 29 4 57
Cefuroxima 8 1 13 3 38 4 50
Dicloxacilina 8 1 13 5 63 2 25
Vancomicina 8 1 13 7 88 0 0
Clindamicina 9 1 11 3 33 5 56
Ácido Nalidíxico 1 0 0 0 0 1 100
Amoxicilina 1 0 0 1 100 0 0
Ampicilina/Sulbactam 1 0 0 1 100 0 0
Colistin 1 0 0 1 100 0 0
Gentamicina 1 0 0 0 0 1 100
Nitrofurantoína 1 0 0 0 0 1 100
Levofloxacina 2 0 0 2 100 0 0
Piperacilina/Tazobactam 2 0 0 2 100 0 0
Lincomicina 6 0 0 1 17 5 83
Imipenem 9 0 0 2 22 7 78
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
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Antibióticos R % MS % S %
Gráfico Nº 25
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 26
Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Cultivos Nasofaríngeos según el rango de Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
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TA
NIT
RO
OX
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RO
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OX
I/Á
. CLA
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Antibióticos R %
80
6.2.3. SENSIBILIDAD Y RESISTENCIA DE LOS GÉRMENES AISLADOS EN HEMOCULTIVOS
SEGÚN EL SEXO
6.2.3.1. Hemocultivos en el Sexo Masculino
Sensibilidad y resistencia de Pseudomona aeruginosa (Ver Tabla N°16)
El nivel de sensibilidad para Pseudomona aeruginosa en el sexo masculino estuvo
representado por Amikacina y Gentamicina del 100%; Ciprofloxacino e Imipenem del
50%. (Ver gráfico n°27). Mientras que fue resistente para Amoxicilina/Ácido Clavulánico,
Claritromicina, Levofloxacina, Ofloxacina¸ Oxacilina, Vancomicina y Ampicilina/Sulbactam
con el 100% y Piperacilina/Tazobactam e Imipenem del 50%. (Ver Gráfico N°28).
Tabla Nº 16
Niveles de Sensibilidad de Pseudomona aeruginosa en Hemocultivos en el Sexo Masculino
HEMOCULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Masculino
Pseudomonas aeruginosa
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Amikacina 2 2 100 0 0 0 0
Gentamicina 2 2 100 0 0 0 0
Ciprofloxacino 2 1 50 1 50 0 0
Imipenem 2 1 50 0 0 1 50
Amoxicilina/Ácido Clavulánico
1 0 0 0 0 1 100
Cefotaxima 1 0 0 1 100 0 0
Claritromicina 1 0 0 0 0 1 100
Clindamicina 1 0 0 1 100 0 0
Levofloxacina 1 0 0 0 0 1 100
Ofloxacina 1 0 0 0 0 1 100
Oxacilina 1 0 0 0 0 1 100
Penicilina 1 0 0 1 100 0 0
Vancomicina 1 0 0 0 0 1 100
Ampicilina/Sulbactam 2 0 0 0 0 2 100
Cefuroxima 2 0 0 2 100 0 0
Piperacilina/Tazobactam 2 0 0 1 50 1 50
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
81
Gráfico Nº 27
Niveles de Sensibilidad de Pseudomonas aeruginosa en Hemocultivos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 28
Resistencia de Pseudomonas aeruginosa en Hemocultivos según el rango de Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
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Antibióticos
R %
MS %
S %
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OX
I/Á
.CLA
VU
CLA
RIT
RO
LEV
O
OFL
OX
A
OX
AC
I
VA
NC
O
AM
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SULB
AC
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PP
L/TZ
B
AM
IKA
GEN
TA
CIP
RO
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Antibióticos
R %
82
Sensibilidad y resistencia de Streptococcus agalactiae. (Ver Tabla N°17) Existió sensibilidad del 100% en hemocultivos en el sexo masculino para Amikacina, y
Vancomicina. (Ver Gráfico N° 25). Así también se mostró sensibilidad media para
Amoxicilina/Ácido Clavulánico y Cefotaxima y por el contrario resistencia del 100% para
Cefalexina, Ceftazidima, Imipenem, Levofloxacina y Piperacilina/Tazobactam. (Ver Gráfico
N° 26).
Tabla Nº 17
Niveles de Sensibilidad de Streptococcus agalactiae en Hemocultivos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
HEMOCULTIVOS EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Masculino
Streptococcus agalactiae
Antibiótico
N ° S MS R
f f % f % f %
Amikacina 1 1 100 0 0 0 0
Vancomicina 1 1 100 0 0 0 0
Amoxicilina/Ácido Clavulánico 1 0 0 1 100 0 0
Cefalexina 1 0 0 0 0 1 100
Cefotaxima 1 0 0 1 100 0 0
Ceftazidima 1 0 0 0 0 1 100
Ciprofloxacino 1 0 0 1 100 0 0
Imipenem 1 0 0 0 0 1 100
Levofloxacina 1 0 0 0 0 1 100
Piperacilina/Tazobactam 1 0 0 0 0 1 100
83
Gráfico Nº 29
Niveles de Sensibilidad de Streptococcus agalactiae en Hemocultivos en el Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 30
Resistencia de Streptococcus agalactiae en Hemocultivos según el rango de Sexo Masculino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
0102030405060708090
100P
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Antibióticos
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R %
84
6.2.3.2. Hemocultivos en el Sexo Femenino
Sensibilidad y resistencia de Neisseria meningitidis.(Ver Tabla N°18)
Para Neisseria meningitidis en hemocultivos en el sexo femenino existió sensibilidad del
100% para Amoxicilina/Ácido Clavulánico, Ampicilina/Sulbactam y Penicilina;
paulatinamente decrece ubicándose a niel medio Cefuroxima, Ciprofloxacino y
Cloranfenicol, como se demuestra en el Gráfico N°31.
Por el contrario fue resistente en el 100% para Piperacilina/Tazobactam y Vancomicina
como se indica en el Gráfico N° 32.
Tabla Nº 18
Niveles de Sensibilidad de Neisseria meningitidis en Hemocultivos en el Sexo Femenino
HEMOCULTIVOS EN EL HOPSITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Femenino
Neisseria meningitidis
Antibiótico
N ° S MS R
f f % f % f %
Amoxicilina/Ácido Clavulánico 1 1 100 0 0 0 0
Ampicilina/Sulbactam 1 1 100 0 0 0 0
Penicilina 1 1 100 0 0 0 0
Cefuroxima 1 0 0 1 100 0 0
Ciprofloxacino 1 0 0 1 100 0 0
Cloranfenicol 1 0 0 1 100 0 0
Piperacilina/Tazobactam 1 0 0 0 0 1 100
Vancomicina 1 0 0 0 0 1 100
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
85
Gráfico Nº 31
Niveles de Sensibilidad de Neisseria meningitidis en Hemocultivos en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 32
Resistencia de Neisseria meningitidis en Hemocultivos según el rango de Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
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Antibióticos
R %
MS %
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E %
Antibióticos
R %
86
6.2.4 SENSIBILIDAD Y RESISTENCIA DE LOS GÉRMENES AISLADOS EN CULTIVOS DE
SECRECIÓN VAGINAL
6.2.4.1. Cultivos de Secreción Vaginal
Sensibilidad y resistencia de Staphylococcus epidermidis. (Ver Tabla N° 19) La sensibilidad para Staphylococcus epidermidis en cultivos de secreción vaginal estuvo
representada para Vancomicina del 76%; Fosfomicina del 67%; Gentamicina y Amikacina del
50%; Piperacilina/Tazobactam del 40%; Levofloxacina del 38%; Amoxicilina/Ácido Clavulánico
y Claritromicina del 33%; Cefalexina y Oxacilina del 25% Dicloxacilina y Eritromicina del 21%;
Clindamicina del 16%; Cefadroxil del 15%; Azitromicina y Tetraciclina del 13%; Cefuroxima del
7%; Ciprofloxacino, Imipenem y Trimetroprim/Sulfametoxazol del 6%. (Ver Gráfico N° 33). En
cambio el nivel de resistencia que se aprecia en el Gráfico N° 34 fue dado por: Amoxicilina,
Ampicilina, Ceftriaxona, Lincomicina y Ampicilina/Sulbactam del 100%¸ Ofloxacina del 88%;
Trimetroprim/Sulfametoxazol del 83%; Azitromicina del 73%; Clindamicina del 68%; Ácido
Nalidíxico 67%; Eritromicina del 64%; Oxacilina y Tetraciclina 63%; Imipenem 53%;
Gentamicina y Levofloxacina del 50%; Dicloxacilina del 47%; Ciprofloxacino 41%;
Amoxicilina/Ácido Clavulánico y Claritromicina del 33; Cefalexina del 25%; Cefadroxil 23 %;
Piperacilina/Tazobactam 20%; Cefuroxima del 13%.
Tabla Nº 19
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos de Secreción Vaginal
CULTIVOS DE SECRECIÓN VAGINAL EN EL HOSPITAL SOLCA DE LOJA
Sexo Femenino
Staphylococcus epidermidis
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Vancomicina 17 13 76 4 24 0 0
Dicloxacilina 19 4 21 6 32 9 47
Levofloxacina 8 3 38 1 13 4 50
Eritromicina 14 3 21 2 14 9 64
Clindamicina 19 3 16 3 16 13 68
Fosfomicina 3 2 67 1 33 0 0
Gentamicina 4 2 50 0 0 2 50
Piperacilina/Tazobactam 5 2 40 2 40 1 20
Cefalexina 8 2 25 4 50 2 25
87
Oxacilina 8 2 25 1 13 5 63
Cefadroxil 13 2 15 8 62 3 23
Azitromicina 15 2 13 2 13 11 73
Amikacina 2 1 50 1 50 0 0
Amoxicilina/Ácido Clavulánico 3 1 33 1 33 1 33
Claritromicina 3 1 33 1 33 1 33
Tetraciclina 8 1 13 2 25 5 63
Cefuroxima 15 1 7 12 80 2 13
Ciprofloxacino 17 1 6 9 53 7 41
Imipenem 17 1 6 7 41 9 53
Trimetroprim/Sulfametoxazol 18 1 6 2 11 15 83
Ampicilina/Sulbactam 1 0 0 0 0 1 100
Netilmicina 1 0 0 1 100 0 0
Nitrofurantoína 1 0 0 1 100 0 0
Ácido Nalidíxico 3 0 0 1 33 2 67
Amoxicilina 3 0 0 0 0 3 100
Ampicilina 4 0 0 0 0 4 100
Ceftriaxona 4 0 0 0 0 4 100
Lincomicina 5 0 0 0 0 5 100
Ofloxacina 8 0 0 1 13 7 88
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 33
Niveles de Sensibilidad de Staphylococcus epidermidis en Cultivos de Secreción Vaginal
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
0102030405060708090
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Antibióticos
R %
MS %
S %
88
Gráfico Nº 34
Resistencia de Staphylococcus epidermidis en Cultivos de Secreción Vaginal
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Sensibilidad y resistencia de Gardnerella vaginalis. (Ver Tabla N°20)
La sensibilidad identificada para Gardnerella vaginalis en cultivos de secreción vaginal
estuvo representada por: Norfloxacina y Vancomicina del 100%; Ampicilina del 75%;
Azitromicina, Trimetroprim/Sulfametoxazol, Ampicilina/Sulbactam, Ceftazidima, Colistin,
Metronidazol, Nitrofurantoína del 50%; Clindamicina 25%; Ácido Nalidíxico 20%;
Gentamicina y Tetraciclina del 17%; y Fosfomicina del 14%. (Ver Gráfico N° 35).
El nivel de Resistencia para Gardnerella vaginalis fue para Cefalexina, Cefuroxima,
Ofloxacina, Amoxicilina, Amoxicilina/Ácido Clavulánico, Levofloxacino, Lincomicina,
Oxacilina, Claritromicina, y Eritromicina del 100%; Tetraciclina de 83%; Ciprofloxacino
67%; Ácido Nalidíxico 60%; Colistin, Ciprofloxacino, Amikacina, Piperacilina/Tazobactam,
Sulfametoxazol del 50%; Gentamicina del 33%; Azitromicina 17% y Fosfomicina del 14%.
Ver Gráfico N° 36).
0102030405060708090
100
Po
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je %
Antibióticos R %
89
Tabla Nº 20
Niveles de Sensibilidad de Gardnerella vaginalis en Cultivos de Secreción Vaginal
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
CULTIVOS DE SECRECIÓN VAGINAL EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA
Sexo Femenino
Gardnerella vaginalis
Antibiótico
N° S MS R
f f % f % f %
Ampicilina 4 3 75 1 25 0 0
Azitromicina 6 3 50 2 33 1 17
Trimetroprim/Sulfametoxazol 6 3 50 3 50 0 0
Norfloxacina 2 2 100 0 0 0 0
Vancomicina 1 1 100 0 0 0 0
Ampicilina/Sulbactam 2 1 50 1 50 0 0
Ceftazidima 2 1 50 1 50 0 0
Colistin 2 1 50 0 0 1 50
Metronidazol 2 1 50 1 50 0 0
Nitrofurantoína 2 1 50 0 0 1 50
Clindamicina 4 1 25 1 25 2 50
Ácido Nalidíxico 5 1 20 1 20 3 60
Gentamicina 6 1 17 3 50 2 33
Tetraciclina 6 1 17 0 0 5 83
Fosfomicina 7 1 14 5 71 1 14
Cefadroxil 1 0 0 1 100 0 0
Cefalexina 1 0 0 0 0 1 100
Cefuroxima 1 0 0 0 0 1 100
Ofloxacina 1 0 0 0 0 1 100
Amikacina 2 0 0 1 50 1 50
Amoxicilina 2 0 0 0 0 2 100
Amoxicilina/Ácido Clavulánico 2 0 0 0 0 2 100
Imipenem 2 0 0 2 100 0 0
Levofloxacina 2 0 0 0 0 2 100
Lincomicina 2 0 0 0 0 2 100
Oxacilina 2 0 0 0 0 2 100
Piperacilina/Tazobactam 2 0 0 1 50 1 50
Sulfametoxazol 2 0 0 1 50 1 50
Claritromicina 4 0 0 0 0 4 100
Ciprofloxacino 6 0 0 2 33 4 67
Dicloxacilina 6 0 0 0 0 6 100
Eritromicina 6 0 0 0 0 6 100
90
0102030405060708090
100
Po
rce
nta
je %
Antibióticos R %
Gráfico Nº 35
Niveles de Sensibilidad de Gardnerella vaginalis en Cultivos de Secreción Vaginal
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
Gráfico Nº 36
Resistencia de Gardnerella vaginalis en Cultivos de Secreción Vaginal en el Sexo Femenino
FUENTE: Hoja de Datos - Excel ELABORACIÓN: La autora
0102030405060708090
100
Po
rce
nta
je %
Antibióticos R % MS % S %
91
6.3. COMPARACIÓN DE LOS PATRONES DE RESISTENCIA BACTERIANA EN EL HOSPITAL DE SOLCA DE LOJA CON LOS HOSPITALES MIEMBROS DE LA RED NACIONAL DE VIGILANCIA DE RESISTENCIA BACTERIANA DEL ECUADOR (REDNARBEC)
De acuerdo al tercer objetivo específico de esta investigación y tomando en
consideración al Hospital Carlos Andrade Marín de Quito (HCAM), Hospital Alcívar
de Guayaquil (HA) y SOLCA Cuenca, según publicaciones de REDNARBEC, se
estiman los siguientes resultados:
En estas tres entidades de Salud, dentro de los Urocultivos el germen predominante
aislado tanto en el sexo masculino como femenino fue la Escherichia Coli.
Al igual que en el Hospital Carlos Andrade Marín de Quito (HCAM) de Quito como en el
Hospital Alcívar de Guayaquil (HA), la E. Coli muestra resistencia para las Aminopenicilinas
(Ampicilina) con cifras superiores al 50% en el sexo femenino y masculino, seguidos de
Sulfonamidas (Trimetroprim/Sulfametoxazol), cefalosporinas de segunda generación y
quinolonas; por el contrario en SOLCA Loja se distingue resistencia absoluta a
Tetraciclinas (Tigeciclina21); como también para Amoxicilina/Ácido Clavulánico y Penicilina
en el sexo femenino; mientras que en sexo masculino se muestra resistencia para
Macrólidos, Penicilina y Colistin22. En SOLCA Cuenca el Trimetroprim/Sulfametoxazol es
al antibiótico con mayor resistencia en el sexo femenino seguido de Ampicilina y
Ciprofloxacino; mientras que no existen resultados para el sexo masculino.
La sensibilidad en SOLCA Loja en el sexo femenino dentro de los urocultivos es para
Fosfomicina; Nitrofurantoína; aminoglucósidos; y algunas cefalosporinas de segunda
generación, de forma similar como en SOLCA Cuenca; mientras que en HCAM y HA el
mayor porcentaje de sensibilidad es para Amikacina en ambos sexos seguidos por
Fosfomicina y Nitrofurantoína como en nuestra entidad de investigación.
(21) Antibiótico de la clase glicilciclinas, agente bacteriostático, evita los mecanismos de resistencia a las tetraciclinas, al inhibir la síntesis proteica por unión a la subunidad ribosómica 30S. (22) Producido por ciertas cepas de la bacteria Bacillus polymyxa var. Colistinus, es un antibiótico polimixina, mezcla de
polipéptido cíclico colistin A y B, efectivo contra todos los bacilos Gram-negativos.
92
Con respecto a los cultivos nasofaríngeos se aisló Staphylococcus aureus en ambos
sexos tanto en el HCAM de Quito como en SOLCA Cuenca 23y SOLCA Loja. Mostrando
resistencia para las aminopenicilinas (Ampicilina y Amoxicilina), también es notable para
quinolonas e inhibidores de las betalactamasas; mientras que en SOLCA Cuenca se
identificó para Penicilinas resistentes a las Penicilinasas (Oxacilina), en HA24 de Guayaquil
no se encuentran datos significativos. La sensibilidad para Staphylococcus aureus en
HCAM de Quito y SOLCA Cuenca es para Vancomicina alrededor del 100%, continuado
con los aminoglucósidos; mientras que en SOLCA Loja en el sexo masculino está
representada para macrólidos selectivamente seguidos de aminoglucósidos; y en sexo
femenino en cambio sobresalen las cefalosporina de primera y segunda generación; así
como también sulfonamidas.
En hemocultivos en SOLCA Loja se determinó principalmente a Pseudomona aeruginosa
en el sexo masculino siendo ésta resistente para inhibidores de las betalactamasas
(Amoxicilina/Ácido Clavulánico y Ampicilina/Sulbactam), macrólidos, quinolonas, y
Vancomicina en el 100%; y sensible a Amikacina e Imipenem en el 50%. Mientras que en
SOLCA Cuenca el antibiótico con mayor resistencia para este mismo germen es
Amikacina, mostrando sensibilidad para Piperacilina/Tazobactam e Imipenem similar a los
hemocultivos en el sexo femenino en SOLCA Loja. En segundo lugar se aisló a Neisseria
meningitidis que en forma similar al HA de Guayaquil no presenta resistencia significativa
a los antibióticos, destacando así su similitud en sensibilidad para Cloranfenicol como en
SOLCA Loja.
(23) http://www.rednarbec.org/images/pdf/solca-cuenca.pdf (24) http://www.rednarbec.org/images/pdf/hpalcivar.pdf
93
7. DISCUSIÓN Actualmente en todo el mundo el incremento de la resistencia a los antibióticos está
comprometiendo los tratamientos de las enfermedades más comunes. Llama la atención
que en los países de bajos y medios ingresos, el 70% de las infecciones neonatales
adquiridas en el hospital, no pueden ser tratadas con éxito usando las recomendaciones
de la Organización Mundial de la Salud (OMS),25 como se muestra en un estudio dado a
conocer en 2009, en un evento paralelo a la Asamblea Mundial de la Salud, se informaba
que casi la mitad de los pacientes de un centro hospitalario de Uganda (30 de 62) no
respondieron a los antibióticos disponibles, a causa de la resistencia bacteriana (86% de
recién nacidos).
En América Latina la resistencia a los antibióticos (RAB) es uno de los problemas de
salud pública más preocupantes; sin duda, el mal uso y el abuso de antibióticos son la
causa directa, pero es muy importante reconocer que se trata de un problema multicausal,
por un lado está la alta prevalencia de enfermedades infecciosas, el incremento de la
pobreza, el alto costo de los medicamentos, y por otro la ausencia de controles de
calidad, con la venta libre de medicamentos en las tiendas y farmacias.
En lo referente al uso de antibioticoterapia en la práctica hospitalaria, basándose en las
recomendaciones del Ministerio de Salud Pública26, como terapia frente a Escherichia coli
se indica el uso de Fosfomicina y Nitrofurantoína, como de primera elección, o
Aminoglucósidos, Cefalosporinas de primera generación, Ceftazidima, Ceftriaxona,
Quinolonas, Ampicilina/Sulbactam, Amoxicilina/clavulánico, y Trimetroprim/Sulfametoxazol
Es así que concordantemente como se aprecia en los resultados de esta investigación
podemos considerar óptima para la práctica sanitaria también a Fosfomicina ya que
muestra sensibilidad del 67% en urocultivos aislados, continuando con Nitrofurantoína en
un 57%, aminoglucósidos 47%; y algunas cefalosporinas de primera y segunda
generación; dato significativo que demuestra similitud con los miembros de RENACBER
como son SOLCA Cuenca y con menor porcentaje con HCAM y HA.
(25) http://www.who.int/world-health-day/bacteria-lresistance/2011/es/index.html (26) http://www.saluddealtura.com/fileadmin/PDF/VADEMECUM/Tabla_eleccion_antibioticos_atencion_primaria.pdf
94
De acuerdo a la literatura (Anexo 4) dentro de los cultivos nasofaríngeos los antibióticos
de elección para Staphylococcus aureus, capaz de producir una amplia gama de
enfermedades, que van desde infecciones del tracto respiratorio, cutáneas y de las
mucosas; otras relativamente benignas, tales como foliculitis, forunculosis o conjuntivitis,
hasta enfermedades de riesgo vital, obtuvimos que en el sexo femenino sobresalen
cefalosporinas de primera generación (Cefazolina, Cefalexina, Cefalotina, Cefadroxilo) e
Isoxazolilpenicilinas (Oxacilina y Dicloxacilina) siendo éstos resultados también
concluyentes en esta investigación ya que mostró sensibilidad del 50% para Cefalexina,
en menor porcentaje para Oxacilina con 14%; y Dicloxacilina con 13%, en contraparte a
lo que ocurre en HCAM de Quito y SOLCA Cuenca donde se evidenció sensibilidad del
100% para Vancomicina.
Pseudomona aeruginosa fue aislada en hemocultivos de las entidades de la Red, al igual
que en el Anexo 427; identificando en este último como fármacos de elección a los
Aminoglucósidos, Ceftazidima y quinolonas independientemente del sexo; y en
contraparte a nuestra investigación en el Hospital de SOLCA de Loja por el nivel de
sensibilidad se sugieren Amikacina y Gentamicina seguidos de macrólidos, pero esto en
el sexo masculino. Por el contrario en el sexo femenino en el Hospital de SOLCA de Loja
a nivel de los hemocultivos sobresalieron: Staphylococcus epidermidis, Enterobacter
aerogenes, Pseudomona aeruginosa, Neisseria meningitidis y Klebsiella spp con el mismo
porcentaje, mostrando sensibilidad para los carbapenems. En HCAM de Quito hay datos
sobre Salmonella spp, Escherichia Coli, Streptococcus pneumoniae, en aislamiento de
hemocultivos, mientras que en nuestra unidad de Salud no existieron datos semejantes de
dichos gérmenes.
Finalmente en el Hospital de SOLCA de Loja como unidad de Salud en la cual se realizó
esta investigación se determinó que en las muestras de cultivos de secreción vaginal se
aisló significativamente a Staphylococcus epidermidis mostrando sensibilidad para
Vancomicina del 76%; Fosfomicina del 67%; Gentamicina y Amikacina del 50% y
cefalosporinas de tercera generación; en cambio el nivel de resistencia fue determinado
por: Amoxicilina, Ampicilina, Ceftriaxona, Lincomicina y Ampicilina/Sulbactam del 100%,
continuando con Isoxazolilpenicilinas y algunas sulfonamidas.
(27) http://www.saluddealtura.com/Tabla_eleccion_antibioticos_atencion_primaria.pdf
95
8. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
8.1. CONCLUSIONES
En el Hospital de SOLCA de Loja, se realizó la presente investigación en 250 cultivos
correspondientes a los meses de Junio a Noviembre del 2010, y se determinó que el
germen más frecuente dentro de los urocultivos 48% (n=119) tanto en pacientes de
sexo masculino como femenino fue Escherichia Coli; en los de origen nasofaríngeo
26% (n=66) de ambos sexos el Staphylococcus aureus; mientras que en hemocultivos
5% (n=13) en el sexo masculino sobresale Pseudomona aeruginosa y en los de sexo
femenino se aisló a Staphylococcus epidermidis, Enterobacter aerogenes,
Pseudomona aeruginosa, Neisseria meningitidis y Klebsiella spp en igual porcentaje,
finalmente en cultivos de secreción vaginal 21% (n=52) se determinó principalmente a
Staphylococcus epidermidis.
El nivel de sensibilidad para Escherichia Coli, fue determinado por Fosfomicina y
Nitrofurantoína, mostrándose superiores a las cefalosporinas de primera y segunda
generación en ambos sexos dentro de los urocultivos en nuestra localidad. En cultivos
nasofaríngeos los antibióticos de elección para Staphylococcus aureus tanto en
sexo femenino como en el masculino fueron los macrólidos, quinolonas y
cefalosporinas de primera generación con una sensibilidad aproximada y superior al
50%. La Pseudomona aeruginosa muestra sensibilidad a los aminoglucósidos
seguidos de macrólidos en el sexo masculino. Por el contrario en el sexo femenino en
SOLCA Loja sobresalieron: Staphylococcus epidermidis, Enterobacter aerogenes,
Pseudomona aeruginosa, Neisseria meningitidis y Klebsiella spp; los mismos que
mostraron sensibilidad para los carbapenems, y en cultivos de secreción vaginal
donde se aisló a Staphylococcus epidermidis tuvo sensibilidad para Vancomicina,
Fosfomicina, macrólidos y cefalosporinas de tercera generación.
Tanto en el HCAM de Quito, HA de Guayaquil, SOLCA Cuenca y SOLCA Loja en los
urocultivos la E. Coli mostró marcada resistencia en las dos primeras casas de salud
para las Aminopenicilinas con cifras superiores al 50% en el sexo femenino y
masculino, seguidos de Sulfonamidas, y cefalosporinas de segunda generación;
mientras que un nuestra entidad de investigación se estableció predominantemente
96
resistencia ante las Tetraciclinas, como también para Amoxicilina/Ácido Clavulánico y
Penicilina en el sexo femenino; mientras que en sexo masculino mostró resistencia
para Macrólidos. El Staphylococcus aureus fue aislado en cultivos nasofaríngeos en
ambos sexos tanto en el HCAM de Quito como en SOLCA Cuenca y SOLCA Loja, y
evidenció resistencia para las aminopenicilinas, así como también para quinolonas e
inhibidores de las betalactamasas; mientras que en SOLCA Cuenca para Penicilinas
resistentes a las Penicilinasas, y en él HA de Guayaquil no se encuentran datos
significativos. En hemocultivos en el Hospital de SOLCA de Loja sobresalió
Pseudomona aeruginosa en el sexo masculino siendo selectivamente resistente para
inhibidores de las betalactamasas en el 100%; y por el contrario en SOLCA Cuenca
presenta resistencia ante la Amikacina. Según los resultados arrojados en esta
investigación dentro de los cultivos de secreción vaginal se encontró
predominantemente a Staphylococcus epidermidis siendo resistente a
Aminopenicilinas, y cefalosporinas de tercera generación.
97
8.2. RECOMENDACIONES
Invitar a los principales hospitales del país a formar parte de la Red de Vigilancia
de Resistencia Bacteriana del Ecuador (REDNARBEC) con la finalidad de crear
una Red activa y creativa que promueva la conciencia social, movilice a la
comunidad y a los profesionales de la salud a la acción, la investigación y la
promoción de la salud, encaminadas a detener la resistencia a los antibióticos.
Poner énfasis en la prevención y el tratamiento de las infecciones, incluyendo el
uso apropiado de antibióticos; con campañas educativas encabezadas por comités
médicos, para modificar conductas de automedicación antibiótica.
Actualizar y crear periódicamente nuevas investigaciones de patrones de
sensibilidad bacteriana en la localidad, con la finalidad de conocer datos reales
acerca de la resistencia bacteriana a los antibióticos de forma que el personal
médico los conozca al momento de prescribir los fármacos.
Participar de forma conjunta con la industria farmacéutica para que asuma la
promoción responsable de los antimicrobianos y lograr un comportamiento
comercial ético.
Promover el mejoramiento de la formación básica del estudiante de medicina en el
uso de antimicrobianos, la resistencia a los mismos, espectro y costo, así como
actualizar en forma constante al personal médico y docente vinculados.
98
9. BIBLIOGRAFÍA
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Panamericana de Infectología. Sup 1:S41-44.
101
10. ANEXOS
ANEXO N° 1: CODIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS
CODIFICACIÓN MICROORGANISMOS
GRAM POSITIVOS
Staphylococcus albus a1
Staphylococcus aureus a2
Staphylococcus coagulasa negativo a3
Staphylococcus coagulasa positivo a4
Staphylococcus epidermidis a5
Staphylococcus saprophiticus a6
Streptococcus pneumoniae a7
Streptococcus pyogenes a8
Streptococcus viridans a9
Streptococcus agalactiae a10
GRAM NEGATIVOS
Alcaligenes faecalis b1
Citrobacter freudii b2
Enterobacter aerogenes b3
Escherichia coli b4
Gardnerella vaginalis b5
Haemophilus influenzae b6
Klebsiella spp b7
Klebsiella pneumoniae b8
Moraxella catharralis b9
Neisseria catharralis b10
Proteus b11
Pseudomona aeruginosa b12
Neisseria meningitidis b13
OTROS
Diplococo previo c1
Cándida albicans c2
Chlamydia c3
Rickettsia c4
102
ANEXO N° 2: CODIFICACIÓN DE ANTIBIÓTICOS
CODIFICACIÓN ANTIBIÓTICOS Ácido Nalidíxico A1
Ácido Oxolínico A2
Amikacina A3
Amoxicilina A4
Amoxicilina/Ácido Clavulánico A5
Ampicilina A6
Ampicilina/Sulbactam A7
Azitromicina A8
Cefadroxil C1
Cefalexina C2
Cefazolina C3
Cefepima C4
Cefotaxima C5
Ceftazidima C6
Ceftriaxona C7
Cefuroxima C8
Ciprofloxacino C9
Claritromicina C10
Clindamicina C11
Cloranfenicol C12
Colistin C13
Dicloxacilina D1
Eritromicina E1
Estreptomicina E2
Fosfomicina F1
Furantoína F2
Gentamicina G1
Imipenem I1
Kanamicina K1
Levofloxacina L1
Lincomicina L2
Linezolid L3
Meropenem M1
Metronidazol M2
Netilmicina N1
Nitrofurantoína N2
Norfloxacina N3
Ofloxacina O1
Oxacilina O2
103
Penicilina P1
Piperacilina/Tazobactam P2
Rifampicina R1
Sisomicina S1
Sulfametoxazol S2
Tetraciclina T1
Tigeciclina T2
Trimetroprim/Sulfametoxazol T3
Vancomicina V1
104
ANEXO N° 3: HOJA DE DATOS DE EXCEL
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
1 x x x b3 N3 A8 A1 A4 A5 T3 N1 C9
2 x x x b4 C2 G1 A1 F1 N3 C9 A7 P2 L2 T3
3 x x x b7 C1 C9 A8 A1 G1 A7 T3 L2 A4 A6 F1 N3 C13
4 x x x b4 F1 A1 G1 A7 N3 C2 L2 A4 T3 A6 A8
5 x x x a7 C7 A4 A8 C9 V1 E1 D1 P1 O2 G1 C13
6 x x x a10 C9 V1 I1 C3 N3 T1 C11 O1 E1 C13 T1 L1
7 x x x b4 F1 A7 N3 L2 A4 C9 C1 A6 P2 A1 G1 C3
8 x x x b4 E1 D1 N1 T1 A7 C2 C1 G1 A8 C10 C11
9 x x x b4 D1 P2 N1 A5 C7 T1 C8 N3 L1 O2
10 x x x b5 N3 A8 A1 T3 C13 A3 C9
11 x x x a2 A8 C9 D1 V1 C11 C1 T3 O2 I1 C8
12 x x x b4 F1 A3 I1 A7 P2 C2 A6 C8 C9 C1 T3 C13
13 x x x b4 F1 N1 A4 G1 A3 A6 C8 A5 A7 P2 A1 T3 C2
14 x x x a5 V1 I1 D1 C8 C9 C11 C1 T3 C10 O1 A8
15 x x x a5 V1 C1 C8 A7 C9 I1 D1 T3 O2 C11 C2
16 x x x b5 N3 A1 T1 F1 C9 T3 P2 L2
17 x x x b4 A4 N2 P2 A7 A5 C1 C8 C9 T3
18 x x x b4 A6 G1 C1 F1 A1 N2 P2 T3 C8 C9 I1 C13
19 x x x a5 D1 C10 C5 V1 C11 C1 P2 O2 A8 C9 I1 T3 L1
20 x x x a2 V1 I1 P2 A3 O1 A6 C8 A8 C11 T3 L2
21 x x x b4 N2 G1 C1 P2 F1 A3 T3 A6 C8 I1 A1 T1 C13
22 x x x a5 C1 E1 V1 A8 D1 O2 C8 C9 C11 I1 T3 L2
23 x x x b4 C1 G1 C8 I1 A1 N2 T3 A6 C9 A5 A7
24 x x x b4 O2 A6 C1 G1 C13 C8 A7 P2 I1 T1 N2 C9 T3
25 x x x a5 O2 F1 C8 A8 C9 V1 I1 C11 D1 C8 T3
105
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
26 x x x b3 A8 A3 C9 I1 A1 T1 T3 A6 C8 C1 A7 P1
27 x x x b4 F1 N1 A4 A8 C5 T1 C9 T3 C11 C7 C8
28 x x x b13 P1 A7 A5 C8 C9 C12 P2 V1
29 x x x a5 V1 C11 C8 N2 C2 O2 A8 C9 C1 I1 T3
30 x x x a2 V1 N1 O1 E1 C9 T1 C2 C11 C1 I1 T3 L2
31 x x x c3 D1 A8 F1 C9 C8 C7 E1 N2 T3 I1
32 x x x a5 C1 N1 A8 C9 O2 C8 V1 C11 I1 C2 T3
33 x x x b3 C1 G1 N1 C10 C11 T1 C8 T3 P1 A7
34 x x x a10 V1 A3 C9 C5 A5 C6 L1 C2 I1 P2
35 x x x b4 C1 F1 G1 C8 P1 I1 A1 N1 T3 A6 C9 A7
36 x x x a5 O2 C8 A8 V1 C9 C11 C1 I1 N2 T3 C2
37 x x x b4 E1 C9 A7 C2 V1 T1 O1 P1 I1 A5
38 x x x b12 G1 A3 C9 C5 C8 P1 C11 I1 A7 A5 P2 O1
39 x x x c4 A3 A7 F1 G1 C8 C9 A1 T1 E1 A5 N2 T3
40 x x x b4 E1 NI T3 C6 A6 C11 N1 O1 V1 P2 A5 I1
41 x x x c2 D1 T1 C12 E1 G1 F1 C9 O2 A7 P2
42 x x x b4 N2 F1 I1 A6 C8 C9 C1 A7 A1 G1 C13 T3
43 x x x a5 D1 C1 C2 V1 A8 C9 C11 T3 O2 C8 I1
44 x x x a7 A1 C9 L1 I1 A3 T3 C8 N2 C1 C13 A7 P2
45 x x x b7 A3 G1 C5 C7 A7 A5 P2 C9 O2 I1
46 x x x a7 P1 A4 A8 E1 A5 A7 O1 C8 D1 A1 C1
47 x x x b4 C3 C2 A7 A5 C9 O2 L1 N2 T3 P2 I1
48 x x x a2 O2 D1 C2 A8 C11 E1 T1 A5 A6 L2
49 x x x a2 A4 C8 P1 A6 A8 D1 C11 C9 E1 C1
50 x x x b4 A3 L1 C8 F1 C9 E1 A6 C5 N2 P2 A7 C2
106
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
51 x x x a2 O1 V1 C2 C8 D1 E1 L1 G1 A5 C9 C1
52 x x x b4 D1 G1 T3 N2 C9 A8 C8 T1 C11 A1 A5
53 x x x b4 O2 T1 E1 C3 D1 C11 I1 N2 L1 P2 A6
54 x x x a2 V1 C2 C8 A8 C9 C11 N1 L2 O1 I1 D1
55 x x x c3 D1 O2 A8 G1 T3 T1 A5 I1 N2 C9
56 x x x c3 A8 E1 T3 N2 D1 O1 A1 A6 L2 T1 P2
57 x x x a2 V1 N1 A8 E1 C9 C11 C1 O2 C8 C2 T3 I1
58 x x x b4 A7 G1 A6 C8 C1 P2 N2 A3 T3 C9 A5 I1 C13
59 x x x b4 F1 A1 G1 N1 A6 C8 C9 C1 A5 A7 P2
60 x x x b4 T1 C1 D1 N2 F1 O2 P2 A5 C9 C10 V1 L2
61 x x x b4 G1 F1 C9 D1 A1 C7 A3 I1 A6 A7 A5
62 x x x a5 N2 C2 V1 C11 O2 C8 A8 C9 C1 I1 T3
63 x x x b7 A1 N1 F1 G1 A6 C8 C9 C1 A7 P2 I1 T3 C13
64 x x x a5 N1 T3 V1 A8 C9 C11 C2 O2 C1 C8 I1
65 x x x b7 G1 F1 N1 A1 P2 I1 T3 A6 C9 A7 C1
66 x x x a5 V1 C11 N1 C2 O2 E1 C1 I1 A8 C8 T3
67 x x x b4 F1 G1 C9 C7 D1 C1 C11 I1 A5 A3 N2
68 x x x a2 E1 A8 V1 C9 N2 C7 O2 P2 P1 A6 A1 A3
69 x x x a5 D1 A8 T3 N1 C9 V1 O1 C11 I1 C1 C8
70 x x x b7 A7 G1 C8 C1 C9 P2 I1 A1 T3 A6 C13
71 x x x a8 P1 E1 O1 V1 A8 A6 T1 F1 A3 V1 C9
72 x x x b4 F1 D1 C1 E1 N1 T3 C10 C7 P2 C11 A1
73 x x x b4 O1 N1 C10 G1 T1 A8 T3 A6 I1 C9 A3
74 x x x c3 E1 A8 D1 O2 N2 T3 A1 C9 P2 I1 C11
75 x x x b4 D1 F1 G1 C1 E1 N1 T1 A6 I1 P2 A5 C9
107
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
76 x x x a5 O1 T3 C1 L2 V1 E1 A8 C9 C8 I1 D1 C11
77 x x x b3 A1 A8 A3 C9 T1 T3 I1 A6 A7 C1 P1
78 x x x a5 C1 C11 C8 V1 A8 C9 D1 O2 L2 E1 I1 T3
79 x x x b13 P1 A6 C11 C8 I1 A7 A1 V1 A5 C9 L1 C1
80 x x x b4 F1 G1 N2 T3 D1 E1 C1 A1 A6 C11 A3 C2
81 x x x b4 D1 E1 C8 G1 F1 T1 C11 A5 P2 I1 L2 C13
82 x x x b12 A3 G1 I1 C9 P2 C8 L1 O2 V1 A7 C10
83 x x x b4 V1 T1 C10 C8 C9 T3 O1 L2 A8 E1 C11 I1 D1
84 x x x b4 A7 F1 A6 C8 P2 I1 A1 G1 A3 L1 A5 C13
85 x x x a5 V1 C9 C8 C13 T1 T3 C11 O2 L2 A8 E1 I1 D1
86 x x x a5 C2 V1 C9 T1 C11 C8 D1 I1 E1 O1 A8 L2
87 x x x b6 C7 A8 C11 O1 L1 T3 C9 P1 G1 A1 A4
88 x x x a5 C10 T3 V1 D1 C1 C8 O1 A1 E1 C9 C11 I1
89 x x x b7 L1 G1 N2 A5 A7 I1 A6 C8 P2 A1 A3 C1 F1 C13
90 x x x b4 E1 D1 F1 G1 O2 C9 T1 C11 A8 C1 A6
91 x x x b4 F1 G1 E1 D1 C7 C10 T3 P1 L1 N2 A7
92 x x x b4 C8 N1 C1 L1 F1 G1 A3 A6 A5 A7 P2 A1 C13
93 x x x b4 N2 D1 T3 C9 C8 A8 E1 P1 T1 O2 C2
94 x x x a7 D1 C8 C2 V1 O1 A8 E1 C9 C11 I1 T1 T3
95 x x x b3 A5 E1 A3 P2 C1 C9 L1 A6 N2 D1 C2
96 x x x b3 A3 G1 A7 C8 C9 L1 P2 C1 A6 A5 F1 N1 C13
97 x x x b4 C9 A6 F1 G1 N2 T3 A8 A1 P2 O1 L1
98 x x x b4 G1 E1 D1 T3 O1 C8 C9 F1 N1 A5 A3
99 x x x a5 A8 C11 A5 V1 C8 I1 T3 L1 E1 D1 G1
100 x x x a5 C11 C9 A8 V1 C8 O2 C7 I1 D1 T3 L1 C2
108
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
101 x x x a5 E1 D1 C9 C11 O1 T1 T3 I1 C8 A8
102 x x x b4 C1 G1 F1 T1 E1 C8 P1 A6 N1 O1 C11
103 x x x b4 C1 L1 D1 T3 G1 A5 A8 P2 C11 N2
104 x x x b12 L1 G1 I1 D1 T3 A4 C8 C2 A7 A5 P2 A3 C11
105 x x x a5 C9 E1 V1 C1 C8 T1 I1 C11 O1 A8 D1
106 x x x a5 G1 V1 C9 I1 D1 E1 L1 T1 A8 C8 C10
107 x x x a5 V1 E1 C8 C9 C1 O1 A4 C11 D1 T3 I1 T1
108 x x x a5 D1 V1 C9 I1 C8 A8 E1 O2 C1 C11 T1 T3
109 x x x b7 C13 C2 G1 A3 A1 I1 P2 C8 A6 A5 A3 T1 C9
110 x x x a5 C9 V1 T1 C8 D1 C1 L2 O2 A8 E1 C11 T3 I1
111 x x x b4 L1 V1 E1 G1 D1 N1 D1 C1 P1 C11 C2
112 x x x b4 D1 E1 F1 C8 F1 G1 T1 C9 N2 C11 A1
113 x x x a5 V1 C8 C1 O1 L2 E1 C9 C11 D1 T1 T3
114 x x x b7 G1 L1 P2 I1 A3 A4 C8 A7 A5 T3 F1 D1 C13
115 x x x b4 F1 V1 N1 T3 D1 C8 O1 A1 C1 A4 P1
116 x x x b4 F1 A3 A6 C8 L1 A5 A7 A1 G1 N2 T3 C13 C2
117 x x x a2 V1 C1 C8 P2 I1 E1 T3 O2 A6 A4 L2 C9 C11 A7 A5 T1 D1
118 x x x a5 L2 C11 V1 T3 O1 C8 E1 C9 I1 N1 D1 C1
119 x x x b4 L1 A3 D1 C13 I1 F1 A6 C8 A7 A5 P2 G1 N2 C2
120 x x x b4 I1 N1 O1 L1 G1 D1 E1 P2 A6 C11 C2
121 x x x b5 A7 N2 C13 P2 I1 F1 G1 A3 A4 C8 L1 A5 D1 C2
122 x x x a5 A8 E1 C1 V1 C8 C9 T1 D1 O2 L2 C11 I1 T3
123 x x x a5 V1 C2 C1 C7 O1 D1 I1 A8 C11 E1 G1
124 x x x b4 I1 F1 L1 A6 C8 A7 A5 A1 G1 T3 C1
125 x x x b4 A7 I1 L2 C8 A5 F1 G1 T3 C1
109
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
126 x x x a2 C8 C2 A8 I1 O2 C11 D1 T3 V1
127 x x x a5 C11 V1 C8 C1 L2 A8 O2 E1 T1 D1 T3 I1
128 x x x b4 O1 E1 V1 F1 D1 A8 C9 C11 P1 T3 C2
129 x x x b4 A4 F1 A1 G1 C8 N2 T3 C1 C9 A7 A5 I1 P2
130 x x x c3 D1 A8 E1 O1 C7 N1 T3 P1 C1 L1
131 x x x b4 L1 C13 P2 G1 F1 C8 A3 N1 A4 A7 A6 A1 D1
132 x x x b5 A6 T3 A8 F1 D1 N1 T1 A4 C9 A1
133 x x x b5 T3 A8 F1 A6 T1 C9 C11 C10 E1 D1 G1
134 x x x b4 A4 F1 E1 A1 G1 D1 N1 T3 A7 C10 C13
135 x x x a2 V1 G1 N1 C8 C1 T3 C9 C11 O2 D1 I1
136 x x x a2 N1 V1 T3 G1 C11 C8 C1 O1 D1 I1 C9
137 x x x a2 C10 A8 P1 V1 C7 I1 T1 E1 A5 A7 A3 D1
138 x x x b6 A5 A4 A8 O2 P1 A3 C10 L1 C11 C2
139 x x x b4 C11 A6 C8 A3 L1 P2 F1 N2 A4 A1 C13
140 x x x b4 F1 I1 C7 C8 G1 E1 C9 T1 O1 D1 L1
141 x x x b4 A7 V1 G1 A4 C11 D1 T3 E1 F1 A5 A6
142 x x x b4 L1 O1 T3 A8 N1 E1 F1 G1 D1 T1 A1
143 x x x b4 G1 D1 A7 N2 A3 F1 P2 C8 A6 L1 A5 C2
144 x x x a2 V1 C9 C1 C8 O2 L2 E1 C11 I1 T3 D1 T1
145 x x x b4 N1 T3 D1 C9 O1 A8 E1 G1 F1 L2 A4
146 x x x a5 E1 C2 C8 C9 A8 V1 C1 O2 L2 C11 I1 T1 D1 T3
147 x x x b5 A6 F1 T3 A8 G1 F1 C9 E1 C10 A5 T1
148 x x x b4 D1 G1 N2 E1 C8 T1 C9 A4 O2 T1 P1 V1
149 x x x b4 F1 V1 O2 C9 N2 A4 E1 A5 T3 D1 A1 N1
150 x x x b7 F1 G1 A3 N1 C8 L1 A6 C8 A7 A5 P2 A1 T3 C13
110
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
151 x x x b4 E1 F1 V1 G1 A4 C9 N2 T3 L2 D1 A1
152 x x x b3 G1 C1 A7 A5 C8 N2 A6 C9 P2 A3 T3 I1 C13
153 x x x a5 V1 C2 C1 N1 C8 O1 E1 C9 C11 I1 T3
154 x x x a5 A5 L1 O2 A8 T1 C1 P2 I1 C7 A6 E1 G1
155 x x x a5 C2 E1 A8 D1 C1 O2 L2 C8 C9 C11 I1 T1
156 x x b4 G1 A8 F1 D1 C11 A4 T3 N2 E1 C9
157 x x x a5 V1 O2 C8 C9 C2 T1 D1 C1 L2 I1 A8 E1 C11 T3
158 x x x a5 C11 V1 C8 C9 T3 C1 C2 O2 A8 E1 L1 T3 I1
159 x x x b4 A4 G1 E1 D1 T3 N2 T1 D1 A8 C10 L2 C2
160 x x x b4 N2 F1 D1 E1 G1 C11 T3 O2 L1 C9 A5 A5 C7
161 x x x a2 V1 A8 E1 C8 C9 C1 C2 C11 T1 O2 I1 L1 T3
162 x x x a5 C1 V1 T1 C8 I1 C2 L2 O1 A8 E1 C9 C11 T3
163 x x x a5 T1 E1 C9 V1 A8 C2 C8 I1 C1 L2 O2 C11 T3
164 x x x b4 C2 E1 G1 D1 T1 L1 O1 I1 T3 N2 C7
165 x x x a5 V1 N1 C2 C8 C9 C11 I1 C1 A8 T3 O2
166 x x x b4 D1 F1 A4 C9 C11 E1 G1 N1 T1 O1 L1
167 x x x b4 A3 A7 N1 A4 C8 L1 P2 F1 N1 G1 D1 A5 C2
168 x x x a5 C2 V1 C1 D1 I1 C8 C9 E1 A8 C11 O1 T3
169 x x x b4 A8 O1 P2 E1 F1 N1 T1 A5 G1 D1 A1
170 x x x a5 C1 C2 C8 A8 E1 C9 C11 I1 T1 D1 T3 L2 O2
171 x x x a2 P1 V1 A6 C9 C10 A8 C11 I1 A5 A1 L2
172 x x x b4 T1 N1 F1 A3 T1 D1 E1 G1 O1 V1 C2
173 x x x b4 L2 G1 C1 P2 F1 A3 D1 N1 A7 A5 A6 A1 C2
174 x x x b4 O1 L1 C2 E1 F1 T3 V1 N1 D1 A4 C10
175 x x x b5 A8 G1 A6 F1 T3 C10 A4 E1 D1 A1 T1
111
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
176 x x x b4 G1 D1 N2 D1 C8 F1 A5 A6 L1 D1 C11
177 x x x a2 A6 P1 V1 C11 I1 C9 E1 G1 D1 T3
178 x x x a5 O1 A8 L2 C8 E1 C9 C1 C11 I1 T1 D1 T3
179 x x x b4 P2 C8 F1 C11 A6 D1 T1 E1 G1 T2 C9
180 x x x a8 C1 A3 L1 F1 A8 A7 P2 A5 G1 D1 T3 C2
181 x x x b4 D1 G1 P2 A3 N2 C7 A6 L1 C10 E1 T1
182 x x x b4 A3 G1 A8 C8 D1 C10 L1 F1 D1 E1 C9
183 x x x b4 N2 F1 A3 D1 N1 T3 L1 P2 C10 A4 C8 A6
184 x x x b5 A6 F1 A8 G1 A7 O1 L1 C9 E1 G1 D1
185 x x x a5 A8 V1 O1 C7 E1 C1 L2 T3 I1 D1 A7
186 x x x a5 D1 V1 C2 C8 I1 C1 O1 A8 E1 C9 C11 T3
187 x x x b4 F1 G1 D1 N2 E1 C11 C9 T3 L1 A6 L2
188 x x x a5 V1 P1 E1 C1 L2 C9 D1 T1 C7 A1 L1
189 x x x b4 A4 C8 D1 N2 A8 A7 C9 O2 C11 A1 T1
190 x x x b4 D1 N2 G1 E1 A4 C9 A5 O2 A1 T3 L1
191 x x x b4 F1 G1 E1 A5 I1 E1 L1 D1 T3 O1 C7
192 x x x b4 G1 A7 A6 I1 F1 A1 N2 C11 L1 C10 E1 N2 T3
193 x x x a5 V1 C8 A8 E1 C9 C11 O1 L2 I1 D1 T3 C1
194 x x x a2 C1 E1 V1 A8 C8 I1 O1 L2 C9 C11 D1 T3
195 x x x a2 T3 I1 A8 C9 C2 L2 V1 C11 O1 C1 D1 E1
196 x x x b4 A3 G1 I1 A4 C8 L1 A7 A5 P2 A1 N1 C1 C11
197 x x x b4 G1 N2 I1 C8 L1 A7 A5 P2 F1 A1 D1 T3 C1
198 x x x a5 V1 C9 I1 T3 O1 L2 A8 E1 C11 D1 C2
199 x x x a2 P1 A6 V1 C7 E1 G1 D1 A8 C10 C11 L1
200 x x x b4 A6 A7 G1 C2 C11 P2 I1 F1 A1 A3 L1 A5
112
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
201 x x x a5 A8 A5 A6 A4 E1 D1 V1 I1 P2 A1
202 x x x b4 C8 C2 P2 G1 N2 F1 A3 A1 C13 D1 A7 A5 L1 A6
203 x x x b4 C7 L1 G1 A8 A1 C9 D1 N2 T3 P1 C1
204 x x x a5 V1 P2 L1 C9 E1 D1 A1 A6 A7 A5 A8
205 x x x a7 E1 O1 P1 C11 G1 V1 D1 T3 C9
206 x x x a7 C11 P1 V1 E1 A8 L2 C9 G1 P2 C8
207 x x x a5 G1 T1 C8 D1 P2 A1 C1 C11 L1
208 x x x b4 A3 G1 P2 I1 C8 C11 A5 A7 A1 T3 C2
209 x x x b4 C2 G1 V1 P2 A8 E1 A6 C7 L1 A1 C8
210 x x x b4 G1 A3 N1 A4 C8 L1 A5 A7 A1 D1 P2
211 x x x b4 N2 G1 P2 C8 L1 A1 A3 A6 A5 A7 D1
212 x x x b5 T3 V1 C1 C9 I1 O2 C11 A8 D1 L2
213 x x x b4 V1 A8 C9 I1 T3 O1 L2 C11 D1 C1
214 x x x a5 C1 V1 I1 O2 L2 A8 C9 C11 D1 T3
215 x x x a5 V1 E1 C1 I1 T3 O2 C11 D1 A8 C9 L2
216 x x x a5 D1 C1 V1 C9 I1 C11 T3 E1 A8 O2 L2
217 x x x b4 G1 N2 C2 C8 F1 A1 A3 A4 A5 A7 P2 C13
218 x x x b4 N2 L1 A3 C8 I1 P2 A5 G1 D1 C1 A6
219 x x x a2 C9 E1 T3 C2 O1 V1 I1 L1 C8 D1 A8
220 x x x a5 A3 C2 F1 P2 C11 C7 L1 T3 D1 A6 A4
221 x x x a5 L1 P2 F1 D1 A3 C2 A6 A4 C7 C11 T3
222 x x x b4 C2 C7 P2 G1 A3 N2 F1 A1 A4 A7 A5 C13
223 x x x a2 A8 E1 V1 C8 C9 I1 T1 D1 C1 O2 L2 C11
224 x x x a2 E1 A8 C9 I1 T1 C8 O1 V1 C11 D1 T3 C1
225 x x x b4 N2 A3 I1 A6 C8 G1 A7 A5 P2 C2 D1
113
#
SEXO
EDAD
TIPO DE CULTIVO
MIC
RO
OR
GA
NIS
MO
ANTIBIÓTICO
MA
SCU
LIN
O
FEM
ENIN
O
0-9
AÑ
OS
10
-19
AÑ
OS
20
-64
AÑ
OS
>65
AÑ
OS
NA
SOFA
RIN
GEO
HEM
OC
ULT
IVO
UR
OC
ULT
IVO
VA
GIN
AL
SENSIBLE
MEDIANA SENSIBILIDAD
RESISTENTE
226 x x x a5 A8 C10 N3 O1 L1 G1 C9 A4 E1 C2
227 x x x b4 P2 A8 C7 G1 D1 N3 O1 C1 A1 A8 T1 L2 C13
228 x x x a5 C1 N3 D1 T1 A7 P2 O1 L1 E1 G1 C11
229 x x x a5 V1 C1 C11 C9 C2 O2 L2 A8 D1 T3
230 x x x c3 C1 V1 D1 C8 T3 C11 C9 E1 A8 L2 O2
231 x x x a2 C9 D1 V1 C8 C11 O1 T3
232 x x x a2 V1 C9 C1 C8 D1 C11 O1 L2 A8 E1 T3
233 x x x a5 T1 T3 D1 C9 E1 A8 V1 C8 L2 O1 C11 C1
234 x x x b4 L1 G1 D1 C1 C11 P2 F1 A1 C8 A7 A5 G1
235 x x x a11 L2 C8 V1 C9 I1 T3 C1 O2 A8 E1 C11 D1
236 x x x a11 V1 C9 D1 I1 C1 T3 C11 E1 A8 C8 O2 L2
237 x x x a11 L2 E1 C1 C2 V1 A8 C9 I1 T3 D1 C11 O2
238 x x x b4 N2 A1 C1 C2 C8 L1 A7 A5 P2 G1 A3 T3
239 x x x b4 L2 N3 O2 C11 D1 N2 T3 C1 P2 A7 C7 A3 C13
240 x x x b4 E1 A7 A6 D1 N2 L1 G1 O1 N3 C7 A8
241 x x x a11 C9 G1 E1 C8 A3 D1 A6 O2 L2 C13
242 x x x a11 C7 N2 L1 C1 E1 G1 C9 N3 O1 C13
243 x x x b4 C10 A8 D1 G1 L1 O2 A5 C9 T1 C7 A4
244 x x x a11 C2 C9 I1 D1 C1 T3 C11 E1 A8 V1 O1 L2
245 x x x b4 A7 G1 N2 I1 C8 C1 L1 A5 P2 A1 D1 T3
246 x x x a2 V1 C9 I1 O1 L2 C8 C1 C11 E1 T3 D1
247 x x x b5 M2 C6 C11 S2 D1 E1 N2 A1 O2 T1
248 x x x a2 L1 N3 E1 A8 C1 O2 V1 A4 A7 C9 P1
249 x x x b3 I1 G1 D1 V1 P2 C9 G1 C7 A6 S2 C12
250 x x x b5 C6 C11 M2 S2 E1 G1 T1 A1 C10 F1
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ANEXO N° 4: ANTIBIÓTICOS DE PRIMERA ELECCIÓN EN ATENCIÓN PRIMARIA
