Upload
others
View
8
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
Karl-Magnus Lövnord
Clinical Conversion Specialist
BD Diagnostics - Preanalytical Systems, Stockholm, Sverige
Preanalytiska faktorer inom koagulation
och provtagningsrör
I detta seminarie
1. Vikten av balans inom hemostasen
2. Översikt av den preanalytiska fasen
3. Viktiga preanalytiska faktorer och dess påverkan
4. Rekomendationer
Balansen inom koagulation
Trombocyter
Blod kärl
Koagulation Fibrinolys
Blod koagel Blödning
Obalans i hemostasen
Risken med för hög heparin dos: Blödning
Trombocyter
Blod kärl
Koagulation
Fibrinolys Blod koagel
Blödning
Obalans i hemostasen
Risk med för låg heparin dos: Trombos
Trombocyter
Blod kärl Koagulation
Fibrinolys
Blod koagel
Blödning
Översikt av den preanalytiska fasen
CLSI. H3-A6, Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture;
Approved Standard - Sixth Edition, Vol. 27 No.26
Remisser,
kontroll av
rätt analyser,
märkning av
rör
Kontrollera
patient ID,
remiss, rör
Kontrollera
om patient är
fastande om
så krävs
Provtagning
material Val av kanyl Typer av rör
Patient I stol
eller säng
Stas
< 1 min Kontroll kärl Handskar Desinfektion Utför
provtagning
Korrekt
rörföljd
Kompress, plåster
Rätt antal Korrekt avfall
av stickande
skärande
Kontroll rör Kontroll
etiketter
Ev speciell
hantering,
kyla, värme
etc
Skicka
prover till
labb enligt
direktiv
Blandning av rör
Fyllnad av
rör
Centrifugering Tid och
stabilitet
Typ av kanyl
– Storlek
– Typ
• Kanyl eller butterfly
• Hemolys
• Ven kollapsar
• Otillräcklig provvolym
Faktorer Påverkan
Kanyl Butterfly
Rör
• Trombocyt aktivering relaterat till
ytkontakten i provtagningsrören är
viktiga faktorer som kan påverka.
• Viktiga val att göra
– Molaritet (Citrat koncentration)
– Fyllnadsvolym
– Glas eller plast
– Konstant Headspace i röret
– Propp (låg koncentration av Ca2+,
Zn2+, Mg2+)
• Ven kolappsar (fyllnadsvolym)
• Trombocytaktivering (Headspace)
• Mg2+ in stoppers (Van Den Besselaar et al., 2001;
2003 & 2005)
Faktorer Påverkan
Typer av rör: Headspace
Head space
2.7 mL 1.8 mL
BD VacutainerTM Plus Citrate Tube
Provtagningsteknik
• Uppnå korrekt provtagning • Felaktig provtagning
– Hemolys
– Trombocyt aktivering
Faktorer Påverkan
Stas
• Stas skall kontrolleras
≤ 1 minut • Stas på längre än >1 min:
– Kärl drar ihop sig
– Ökning av vävnadsvätska
(PF4)
Faktorer Påverkan
Rörföljd
• Om flera rör skall tas
– Ta alltid citrat rör 1st (såvida inte
blododling skall tas)
Faktorer
Butterlfy
+ Slaskrör
• Om butterfly skall användas
– Använd slaskrör
• Om inte slask rör används med butterfly
– Påverkan på fyllnad: mindre fyllnad!
1. Trombocut aktivering (PF4)
2. PF4-Heparin bindningar
3. Förlängd aPTT
Påverkan
PF4-Heparin Binding
False long aPTT
Platelet Factor 4 Release
Incomplete Draw
Platelet Activation
• Om citrat rör inte tas först:
– Risk för kors kontaminering av tillsats:
1. Koagulations aktivator överförs till citrat rör
2. Risk för att prov börja koagulera
3. Risk för felaktiga resultat
Rörföljd
Blandning av rör
• Blandning av blod och citrat
• 3-4 blandningar
• Otillräcklig blandning :
– Dålig homogenitet mellan tillsats
och blod
– Fibrin, microkoagel
• Överdriven blandning:
– Hemolys
– Trombocyt aktivering
Felaktiga aPTT resultat
Felaktig dosering heparin
= 1 blandning
Faktorer Påverkan
Tube Type Time
(min)
x g (RCF) Temperature
(°C)
Glass Na Citrate &
CTAD
15 1500 25
PET Na Citrate 10-15 2000-2500 25
Centrifugering
• CLSI (H21-A5): 1500 x g (RCF), minst 15
min, RT
• Platelet Poor Plasma (platelet count
<10,000/μL per CLSI H18-A4 guideline)
• Låg fart/Tid:
– Platelet Poor Plasma not achieved
• Hög fart/Tid:
– Haemolysis
Tube Type Time
(min)
x g (RCF) Temperature
(°C)
Platelet-rich 5 150-200 25
Platelet-poor 10 1000-2000 25
Platelet-free 15-30 2000-3000 25
Different Types of Plasma Guder et al., 2009, 4th Ed
Faktorer Påverkan
Rekomendationer
1. Korrekt provtagningsteknik för att minimera hemolys och trombocyt
aktivering.
2. Fyll rören till korrekt nivå markering på rören. Detta säkerställer korrekt
förhållande mellan blod och tillsats.
3. Blanda rören 3-4 gånger direkt efter provtagning för att säkerställa att
citraten skall ge korrekt antikoagulantia effekt.
4. Kontrollera korrekt inställningar I centrifug, g-kraft (RCF), tid och broms
tid är tillräcklig för att ge en god separering av provet
5. Pipetera plasma försiktigt efter centrifugering.
Interna Referenser
BD White Papers: 1. Evaluation of BD Vacutainer® Sodium Citrate (0.109M) Plus Tubes Using the ELECTRA 1400C™ Analyzer
2. Evaluation of BD Vacutainer® Plus (0.109M) and BD Vacutainer® Glass (0.105M) Sodium Citrate Tubes for
PT and APTT Using the IL ACL Futura™ Analyzer
3. Evaluation of BD Vacutainer® Plus (0.109M) and BD Vacutainer® Glass (0.105M) Sodium Citrate Tubes for
PT, APTT, and Heparin Anti-Xa Using the IL ELECTRA 1400C™ and Diagnostica Stago® STA
4. Evaluation of BD Vacutainer® Plus (0.109M) and BD Vacutainer® Glass (0.105M) Sodium Citrate Tubes for
Prothrombin Fragment 1.2 Levels
5. Evaluation of BD Vacutainer® Sodium Citrate (0.109M) Plus Tubes Using the Diagnostica Stago STA®
Hemostasis Analyzer
6. Evaluation of BD Vacutainer® Sodium Citrate (0.109M) Plus Tubes Using the Diagnostica Stago STA®
Hemostasis Analyzer
7. Evaluation of BD Vacutainer® (0.109M) Plus and BD Vacutainer® (0.105M) Glass Sodium Citrate Tubes for
Platelet Counts Using the Beckman Coulter® STKS Analyzer and Sysmex® K1000
8. Evaluation of BD Vacutainer® Plus (0.109M) and BD Vacutainer® Glass (0.105M) Sodium Citrate Tubes For
PT, APTT, and Fibrinogen Using the Dade Behring BCS and Diagnostica Stago STA
9. Evaluation of 0.129 M 2.7 and 1.8 mL BD Vacutainer™ Plus Sodium Citrate Tubes Using The Electra
1400C™ Analyzer
Externa referenser
1. Adcock et al., 1997. Effect of 3.2% vs 3.8% Sodium Citrate Concentration on Routine Coagulation
Testing. Coagulation and Transfusion Medicine. 107(1); 105-110.
2. Adcock et al., 1997. Minimum specimen Volume Requirements for routine coagulation testing. Am
J Clin Pathol 109(5); 595-9.
3. Siegel et al., 1998. Monitoring Heparin Therapy: aPTT Results from Partial- vs Full-Draw Tubes.
Am J Clin Pathol 110; 184-7.
4. Kratz et al., 2005. A comparison of Glass and Plastic Blood Collection Tubes for routine and
specialised coagulation assays: A comprehensive Study. 130(1), 39-44.
5. Van Den Besselaar et al., 2000.
6. Oddoze et al., Stability study of 81 analytes in human whole blood, in serum and in plasma. Clinical
Biochemistry 45 (2012) 464–469.
7. Guder W.G, Narayanan S, Wisser H. and Zawta B. Diagnostic Samples: From the Patient to the
Laboratory. Fourth Edition. Darmstadt, Germany: Wiley-VCH; 2009r
8. CLSI H21-A5 guideline, Vol. 28, No. 5, 2008.
9. CLSI H18-A4 guideline, Vol. 30, No. 10, 2010.