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StickstoffStickstoff--Fixierung Fixierung und Regulation der Photosynthese und Regulation der Photosynthese
für die Stickstofffür die Stickstoff--FixierungFixierung
Teil I:Teil I:Teil I: Teil I: StickstoffStickstoff--FixierungFixierung
Stickstoff-Kreislauf (I)
combustioncombustion, Haber-Bosch
von: www.esf.edu/efb/schulz/limnology/nitrogen.html
Stickstoff-Kreislauf (II): biologische Prozesse
Im Wasser An Land
von: www.oceanography.geol.ucsb.edu von: www.hypersoil.uni-muenster.de
Stickstoff-Kreislauf (III): an biologischen Prozessen beteiligte Verbindungen
NO3-
Verbindungen
3
NitritNitrit--OxidaseOxidase NitratNitrat--ReduktaseReduktase
NONO2
-
NO
Anammox N2OH2NOH
N2
NH3
An biologischer N-Fixierung beteiligte Organismen
Anabaena Trichodesmium AzotobacterGloeotheceAnabaena TrichodesmiumRhizobienAzolla
AzotobacterGloeothece
Summengleichung der biologischen Stickstoff-Fixierung
N2 + 8H+ + 16 MgATP + 8e-
2NH + H + 16 MgADP + 16 P2NH3 + H2 + 16 MgADP + 16 Pi
Mechanismus der biologischen Stickstoff-FixierungNit C b kt iNitrogenase von Cyanobakterien
Das Fe-Protein
Nitrogenase: P-Cluster
Nitrogenase: M-Cluster
Struktur von Mayer and Smith, 1999, Auflösung 1.6 Å: Entdeckung des zentralenEntdeckung des zentralen Stickstoffs
Nitrogenase: Mechanismus der Stickstoff-Reduktion
Nitrogenase: Vermutliche Intermediate der Stickstoff-Reduktion
Barney B_et al (2006) Breaking the N2 triple bond- insights into the nitrogenase mechanism. DaltonTransactions 2277-84
Teil II:Teil II:Regulation der Photosynthese für die StickstoffRegulation der Photosynthese für die Stickstoff--FixierungFixierung
Evolution der biologischen Stickstoff-Fixierung im Vergleich zur Photosynthesey
Berman-Frank I_Lundgren P_Falkowski P_2003_Research in Microbiology154_157-164
Strategien der Regulation der Photosynthese für die Stickstoff-Fixierung in CyanobakterienStickstoff-Fixierung in Cyanobakterien
Berman-Frank I_Lundgren P_Falkowski P_2003_Research in Microbiology154_157-164
Einzellige Cyanobakterien
Regulation der Photosynthese für die Stickstoff-Fixierung in Einzelligen Cyanobakterien (II)Einzelligen Cyanobakterien (II)
glycogen storage begins
light period:max. photosynthetic capacity
glycogen storage begins
d l ti flight period: carbon + energy storage
down regulation of photosynthesis
maximum glycogen storagel ti f
nitrogen fixation beginsup regulation ofphotosynthesis
dark period: nitrogen fixation
i it fi timaximum nitrogen fixationmaximum respiration
Heterocysten bildende Cyanobakterien
vegetative Zellenvegetative Zellen
Pro-Heterocyste
Heterocyste
Von: Culture service of Instituto de Bioquímica Vegetal y Fotosíntesis, Sevilla, Spain
Aus:El-Shehawy et al 2003 Physiol Plant 119 (1), 49-55
Heterocysten-Differenzierung:V t il k t P t d Chl h llVerteilungskarten von Parametern der Chlorophyll-
Fluoreszenzkinetik
Maximale Fluoreszenz-Quantenausbeute (Fm)
13 h 36 h 55 h 112 h
25 µm
13 h 36 h 55 h 112 h
Photosystem II -Aktivität (Fv/Fm)y ( v m)
Ferimazova N, Setlík I, Küpper H, unpublished
Heterocysten-Differenzierung:Veränderung von Parametern der Chlorophyll-g p y
Fluoreszenzkinetik
Ferimazova N, Setlík I, Küpper H, unpublished
Aktivitätszyklus von TrichodesmiumTrichodesmium
xatio
n
hl a
-1 h
-1)
25
30
35
v/F m
1.0
1.1y
Nitr
ogen
fix
l C2H
2 µg
c
15
20
25
Rel
ativ
e F v
0 7
0.8
0.9
Trichodesmium-Blüte
N
(nm
ol
0
5
10
0 5
0.6
0.7
00.5
l a-1
h-1
)
40
50
60
tion
a-1 h
-1)
-6
-4
-2
M O
2 µ
g ch
l
20
30
40
ark
resp
irat
O2
µg c
hl a
-12
-10
-8
GP
(µM
-10
0
10 Da
(µM
-18
-16
-14Kolonien: “Tuft” und “Puff”
Local time (h)
8 10 12 14 16 18 20 22-20 -20
Berman-Frank I, Lundgren P, Chen Yi-B, Küpper H, Kolber Z, Bergman B, Falkowski P (2001) Science 294, 1534-1537
Co-Lokalisation von Nitrogenase und PSII in Trichodesmium
D1 Protein (grün) and Nitrogenase (rot). Grosses Bild: Overlay, kleines Bild: nur Nitrogenase (Immunofärbung)Nitrogenase (Immunofärbung)
Berman-Frank I, Lundgren P, Chen Yi-B, Küpper H, Kolber Z, Bergman B, Falkowski P (2001) Science 294, 1534-1537
Inhibitor-Tests: Notwendigkeit von PSII-Aktivität für die Stickstoff-Fixierung in Trichodesmiumg
Influence of DCMU (10 µM), ascorbic acid (100 µM), and DTT (100 µM) were tested for cultures incubated under aerobic (white columns) and anaerobic (bluetested for cultures incubated under aerobic (white columns) and anaerobic (blue columns) conditions. Changes in nitrogenase activity as measured by acetylene reduction.
Berman-Frank I, Lundgren P, Chen Yi-B, Küpper H, Kolber Z, Bergman B, Falkowski P (2001) Science 294, 1534-1537
Nachweis von Mehler-Reaktion während der Stickstoff-Fixierungg
Färbung mit DAB (Diaminobenzochinon) zeigt die intrazelluläre Verteilung von H2O2 als braune Farbe in allen Zellen
Mehler-Reaktion: H2O + 2O2 --> H2O2+O2Mehler Reaktion: H2O 2O2 H2O2 O2
Berman-Frank I, Lundgren P, Chen Yi-B, Küpper H, Kolber Z, Bergman B, Falkowski P (2001) Science 294, 1534-1537
PSII-Aktivität in Trichodesmium: Chl-Fluoreszenzkinetikunterschiedliche Verteilungen der Basisfluoreszenz zu
10ells
) "very bright"= bright type II
brighttype I
normal
w F
0
verschiedenen Aktivitätsstadien
10
iden
tical
ce = bright type IItype I
low
Non-diazotrophic period5
ghbo
urin
g i Non-diazotrophic period
0
ups
of n
eig
10
ells
or g
rou
Diazotrophic period
5
obje
cts
(c
p p
0 10 20 30 40 50 600
Num
ber o
f
0 10 20 30 40 50 60N
F0
Küpper H, Ferimazova F, Setlík I, Berman-Frank I (2004) Plant Physiology 135, 2120-33
PSII-Aktivität in Trichodesmium: Korrelation der „bright cells“ mit der Stickstoff-Fixierung
vity tio
n)n-1
)
cells mit der Stickstoff-Fixierung
Nitrogenaseactivity
nase
act
iven
e re
duct
lture
)-1.m
in12
Nitr
oge
((m
l eth
yl.(m
l cu l
% b i ht ll
468
10 % bright cells
right
cel
ls
024
0 4
% B
r
(µM
)
0.2
0.3
0.4
cent
ratio
n Chl
06:00 09:00 12:00 15:00 18:00 21:00 00:000.0
0.1
Chl
con
c
06 00 09 00 00 5 00 8 00 00 00 00 control 5% oxygen 50% oxygen
Küpper H, Ferimazova F, Setlík I, Berman-Frank I (2004) Plant Physiology 135, 2120-33
PSII-Aktivität in Trichodesmium: An- und Abschalten der bright cells“An- und Abschalten der „bright cells
Küpper H, Ferimazova F, Setlík I, Berman-Frank I (2004) Plant Physiology 135, 2120-33
Küpper H, Ferimazova F, Setlík I, Berman-Frank I (2004) Plant
Physiology 135, 2120-33
PSII-Aktivität in Trichodesmium: An- und Abschalten der bright cells“ (II)An- und Abschalten der „bright cells (II)
Küpper H, Andresen E, Wiegert S, Šimek M, Leitenmaier B, Šetlík I (2009) Biochim. Biophys. Acta (Bioenergetics) 1787, 155-167
Reversible coupling of individual
...as a basis for diazotrophic photosynthesisof individual
phycobiliproteins...photosynthesis
Küpper H, Andresen E, Wiegert S, Šimek M, Leitenmaier B, Šetlík I (2009) Biochim.
Biophys. Acta (Bioenergetics) 1787, 155-167
Zusammenfassung: derzeitige Hypothese zur Regulation der Photosynthese für die Stickstoff-Fixierung in Trichodesmium
Licht initiiert die Photosynthese
E i d R d kti ä i l t fü diR d kti d PQ P l
Photosynthese für die Stickstoff Fixierung in Trichodesmium
Energie und Reduktionsäquivalent für die CO2-Assimilation
Reduktion des PQ-Pools
Induktion eines State 2 --> State 1-Übergangs St t 1 Z ll h b i h h F (“b i htState 1 - Zellen haben ein hohes F0 (“bright cells type I”) wegen überschüssiger PBSs
Sauerstoffverbrauch übersteigt Sauerstoffproduktion:
Stimulation d. pseudozyklischen Elektronentransports hohe Atmungsraten während der frühen Lichtperiode
Sauerstoffverbrauch übersteigt Sauerstoffproduktion: Gelegenheit zur Stickstoff-Fixierung
Kohlenhydrate werden verbrauchtKohlenhydrate werden verbraucht
Atmung geht zurück, Übergang zum “normal F0 inactive”- oder “quenching”- Zustand
Sauerstoffkonzentrationen in der Zelle steigen an
Nitrogenase wird gehemmt, keine weitere N2-Fixierung bis zum nächsten Tag, die Zellen kehren zum Ausgangszustand zurück
Alle Folien meiner Vorlesungen im Internet unter
http://www.uni-konstanz.de/FuF/Bio/kuepper/Homepage/AG_Kuepper_education.html
(auch zu finden über Homepage der Biologie Arbeitsgruppen Küpper)
weiterführende Literatur als pdf auf Anfrage