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Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 1
Zirkulierende Immunkomplexe Pathophysiologie
Referentin: Dr. med. Helen Joller-Jemelka
FAMH Immunolgie Zürich
6. IMMUNDIAGNOSTISCHES MEETINGModerne Diagnostik und Therapie
immunologisch bedingter ErkrankungenDresden, 7.–9. Oktober 2008
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 2
Zirkulierende Immunkomplexe (IK)
• Eine nicht kovalente Bindung einesAntigens mit seinem spezifischenAntikörper
• Die Bildung von Immunkomplexen istunter physiologischen Bedingungennormal
• Ist abhängig von der Antigenexpositiondauer– limitierte Antigenexposition transiente IK– langdauernde Antigenexposition IK - Erkrankung
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 3
Bestandteile der Immunkomplexe (IK)
Bestandteil 1: Antigene (Ag)• Fremdsubstanzen (partikuläre oder lösliche)
– Bakterien, Viren, Parasiten, Pilze und deren Endo- / Exotoxine• Autoantigen(e)
– z.B. oxidierte Form von low density Lipoprotein, IL8, etc.• Natürliche und „man made“ Agressoren
– exogene Antigene, Medikamente, etc.• Entartete Zellen mit verändertem „self“, Zelltrümmer, etc.
Die Beschaffenheit des Antigenepitops (monovalent, multivalent)können die Struktur der Immunkomplexe variieren.
Bestandteil 2: Antikörper (AK)• Immunglobuline
– poly-, monoklonale, verschiedene Klassen/Subklassen
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 4
Interaktionen von Antigenen und Antikörpern
Wasserstoffbrückenbildung
elektrostatische Bindung
van-der-Waals-Kräfte
hydrophobe Wechselwirkung
Wasserausschluss
- -
-
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 5
Struktur der Immunkomplexe (IK)
Antikörperüberschuss(kleine Komplexe)
Äquivalenzzone(grosse Komplexe)
Antigenüberschuss(mittelgrosse Komplexe)
- löslich- monovalent- geringe C-Aktivierung- lange Persistenz
- nicht löslich- hohe C-Aktivierung- IK Deposition- Phagozytiert
- löslich- C-Aktivierung- lange Persistenz- Dissemination
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 6
Abhängigkeit der IK - Deposition
• Haemodynamische Faktoren:– Hohe Durchflussrate– Hoher Druck
• Exponierte Organe– Glomerulus– Chorioid Plexus– Synovium– Haut– Lunge
Ivan Roitt, 2002
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 7
Biologische Funktion der IK
Die biologische Funktion der zirkulierendenImmunkomplexen besteht aus:
• Neutralisation und anschliessenderElimination des Antigens
• Interaktion mit Komplement
• Interaktion mit Fc Rezeptorenauf Zelloberfläche
• Interaktion mit C Rezeptorenauf Zelloberfläche
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 8
Das Komplementsystem
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 9
BiologischeFunktion desKomplements
Grob / Joller 2001
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 10
Transport und Entfernung von IK
CR1 (C3b/C4b Rezeptor):
• als Vermittler von Transport und Entfernung
• exprimiert auf Erythrozyten, mononukläre Zellen, Neutro- philen, B-Lymphozyten, epithelial- und follikulär-dendritischen Zellen
• Genetik:– Anzahl der E-CR1 ist angeboren– Regulation durch 2 autonsomale
Allele– Polymorphysmus (Genotypen)
HH (homozygote high density) HL (heterozygote) LL (homozygote low density)
Ivan Reutt, 2002
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 11
Pathomechanismen der IK Erkrankungen
Pathomechanismen:
• Ablagerung
• Entzündliche Reaktion
• Bindung an verschiedene Zelltypen an ihre Fc- und C-Rezeptoren
– Systemische Dissemination– Effektormechanismen durch
sezernierte Zellmediatoren
Ivan Reutt, 2002
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 12
Mediatoren der EntzündungszellenZellart Zellprodukt Effekt
Thrombozyt vasoaktive Amine Aggregation
Neutrophile Granuloproteasen Toxizität
saure Hydrolasen (Katepsin A, D, E)
neutrale Proteasen (Katepsin G)
Elastasen / Kollagenasen
Lysozym
MPO
Kinin, Anaphylotoxin Bildung
O-2 Metaboliten (Radikale) Toxizität
Plättchen akt. Faktor (PAF) aktivierend, aggregierend
Makrophagen Zytokine (IL1, TNF alpha) Effekte auf Lymphozyten
Metabolismus
Fieber
Chemotaxis
Adhesionsmoleküle Adhesion
Prostaglandin Vasodilatation, Bronchodilatation
Granuloproteasen siehe oben
O-2 Metaboliten Toxizität
Eosinophile Major basic Protein Zytotoxizität, ADCC
PAF siehe oben
Basophile/Mastzellen Histamin / Heparin Vasodilatation, Bronchodilatation
Kontraktur der glatte Muskulatur
PAF siehe oben
Prostaglandin D2 Vasodilatation
Bronchokonstriktion
Lymphozyten Zytokine T- Helfer1 / T- Helfer2
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 13
Rolle sezernierter Substanzen
Rolle der Interleukine (Zytokine), Interferone, TNF und Adhesions-moleküle bei IK-Erkrankungen:
• E-Selektin beeinflusst Adhesion von Leukozytenan aktivierte endotheliale Zellen und bewirkt „rolling“.
• “Trigering“: Aktivierung von Integrinen, die ihreKonfiguration ändern. Chemokine stehen im engenKontakt zu Proteoglykanen.
• Ligandenpaare Integrin und Adhesionsmoleküle(ICAM-1, VCAM-1, IGS Rezeptor) entstehen.
• Produktion von Proinflamatorischen Zytokinen(TNF alpha, IL-1 beta, IFN gamma , IL-6 , IL-8).
• Liganden von IK und Toll-like Rezeptor (TLR) stimulierenMonozyten zur IL-10 Produktion, die Hyperaktivität derB-Lymphozyten und gesteigerte Antikörperproduktion verursacht.
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 14
Rolle sezernierter Substanzen
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 15
Wirkung des Interferons alpha
• Plasmacytoide Dendritische Zellen (pDC) produzierten Interferon alpha• Interferon alpha wirkt modulatorisch auf verschiedene Zelltypen.• beeinflusst B-T Zellkooperation• dysreguliert Apoptose (führt zu erhöhter Autoantigen Zirkulation)• IK Bildung• IK Bindung via Fc gamma Rezeptor II (CD32) an dendritische Zellen und INF alpha Produktion• Präsentation an autoreaktive T-Lymphozyten
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 16
Bestimmungsmethoden der IK
Bestimmungsmethoden
A) im Gewebe – Histologie,charaktreristische Zeichen der Entzündung
B) im Blut und in den Körperflüssigkeiten
I) Antigenspezifische Methoden
II) Antigen-Nichtspezifische Methoden
III) Komplementmethoden
IV) Zelluläre Methoden
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 17
(I) Antigen spezifische Methoden
1) Immunpräzipitation mit anti – human IgG und / oderC und Detektion von bekannten Antigen im Präzipitat
2) Sucrose density Gradient Fraktionierung undDetektion des Antigens / IgG resp. C inentsprechenden Fraktionen
3) Elektronenmikroskopie nach Ultrazentrifugation
4) DNAse Behandlung von anti-DNS IK
5) reine Zellsuspension Fc- und C-Rezeptorenpositiver Zellen und Identifikation des Antigensmit FITC oder Jod125 markierten spezifischen Antikörper
6) IK Dissoziation und Bestimmung des Antigens
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 18
(I) Antigen spezifische Methoden
Studie zur Immundissoziation der IK
A) Bei hitzestabilen Antigenen (p24 des HIV) eineKochmethode nach Schüpbach
B) Dissoziation durch pH Sturz (Glycin Behandlung)
a) Bestimmungen bei Hepatitis B Befund „anti - HBc allein“aa) 9 751 gesunde Blutspender getested
51 (0.5%) „anti HBc allein“ positiv 2 (4%) HBV - PCR positiv11 (22%) HBsAg nach IK-Dissoziation positiv
bb) 81 Drogenabhängige mit dem Befund „anti - HBc allein“32 (39%) HBV - PCR positiv14 (17%) HBsAg nach IK-Dissoziation positiv
cc) 67 HIV Infizierte „anti - HBc allein“ positiv60 (88%) HBV - PCR positiv15 (22%) HBsAg nach IK-Dissoziation positiv
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 19
(I) Antigen spezifische Methoden
b) Bestimmung der HCV - RNS und des HCV Antigensin gereinigten polyklonalen Kryopräzipitatenaa) 10 Patienten CAH - C (HCV - RNS positiv, HCVAg im Serum negativ)
Kryoglobulinkonzentration 3.4 - 8.3 g/l HCV - RNS im KRYO bei allen 10 Patienten positiv HCVAg bei allen im KRYO positiv (2.06-115.3 pg/ml) HCV RIBA im KRYO 10 x positiv anti - c22
bb) 5 Patienten CAH - C (HCV - RNS nicht nnwb., HCVAg im Serum neg.)Kryoglobulinkonzentration 1.89 - 7.30 g/lHCV - RNS im KRYO bei 3 (60 %) positivHCVAg im KRYO bei 3 (60%) positiv (1.80 - 11.0 pg/ml)HCV RIBA im KRYO positiv anti - c22
cc) 4 Patienten mit sekundärer Kryoglobulinämie (RA, SLE, Lymphom, Essentielle)Anti - HCV Serologie wiederholt negativ,HCVAg und HCV RNS im Serum nicht nnwb.Kryoglobulinkonzentration 0.57 - 5.00 g/lHCV - RNS im KRYO bei allen positivHCVAg im KRYO bei allen positiv (1.90 - 5.70 pg/ml)HCV RIBA im KRYO alle anti - p22 positiv
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Bestimmungsmethoden der IK
Bestimmungsmethoden
A) im Gewebe – Histologie,charaktreristische Zeichen der Entzündung
B) im Blut und in den Körperflüssigkeiten
I) Antigenspezifische Methoden
II) Antigen-Nichtspezifische Methoden
III) Komplementmethoden
IV) Zelluläre Methoden
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 21
Antigen - Nichtspezifische Methoden
1. Ultrazentrifugation
2. Sucrose Density Gradient - Detektion von IgG und C(Immunelektrophorese, Immunfixation, radiale Diffusion)
3. PEG Präzipitation (3% PEG 6000) – Vorsicht beiHypergammaglobulinaemien, eine Bestätigungvon Antigen resp. Ig ist notwendig
4. Kryoglobulin - NachweisAntikörper Typisierung (Immunelektrophorese,Immunfixation) und C1 oder C3 Nachweis
5. Nachweis Antiglobuline - Rheumafaktoren(Nephelometrie, ELISA)
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 22
Bestimmungsmethoden der IK
Bestimmungsmethoden
A) im Gewebe – Histologie,charaktreristische Zeichen der Entzündung
B) im Blut und in den Körperflüssigkeiten
I) Antigenspezifische Methoden
II) Antigen-Nichtspezifische Methoden
III) Komplementmethoden
IV) Zelluläre Methoden
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 23
Komplementmethoden
Methode 1: C1q Bindung/PEG Präzipitation (RIA, ELISA)
Wichtig: Nur C1q bindende IK werden gemessen
EDTA Zugabe verhindert Inkorporation vonC1q I125 in endogenes hochmolekulares C1qrs Komplex
• Störfaktoren– freies DNS inhibiert C1q - Bindung an IK– Anti - C1q Antikörper bei Patient– Bildung von spontanen Aggregaten
• Präanalytik: Nur frisch gefrorene Proben einsetzen• Keine Antigenidentifikation• Standardisierung durch kommerzielle Testsysteme verbessert• NG 80 µgHAG/ml
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Komplementmethoden
Mehtode 2: Monoklonal C3d (ELISA)
Wichtig: Bietet die Möglichkeit zur Erfassung allerIg-Klassen über alle C-Aktivierungswege(kommerzielle Testsysteme nur für IgG)
• Störfaktoren– Plasma anstatt Serum– Anti-C3d Antikörper bei Patient– Vorherige Hitzedeaktivierung– Wiederholtes Gefrieren und Auftauen von Proben
• Keine Antigenidentifikation• Standardisierung nach WHO Standard• NG 10 µgHAG/ml
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 25
Bestimmungsmethoden der IK
Bestimmungsmethoden
A) im Gewebe – Histologie,charaktreristische Zeichen der Entzündung
B) im Blut und in den Körperflüssigkeiten
I) Antigenspezifische Methoden
II) Antigen-Nichtspezifische Methoden
III) Komplementmethoden
IV) Zelluläre Methoden
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 26
Zelluläre Methoden
Methode: Raji Cell Test mit Lymphoblasten Zellen aus Kultur(Burkitt’ Lymphom)
Wichtig: Bindung der IK über Fc und C Rezeptoren- Low affinity Rezeptoren für IgG- Hochaffine Rezeptoren für C1q, C3b, C3d
• Störfaktoren– Anti-Lymphozytäre Antikörper bei Patient
• Kommerzielle Testsysteme• Ermöglicht sowohl Ig auch Antigen Nachweis• NG 5-12 µgHAG/ml
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 27
IK - Testsysteme im Vergleich
Krankheiten
IK Test
Rheumatoide
Arthritis
Systemischer
Lupus
Erythematodes
Diabetes Mellitus Endokarditis
Nephelometrie 87.5 21 35 37.2
PEG - IgG 92.3 33 30 45.8
PEG - C4 29 12.5 30 17.8
C1q - Bindung 82 69 28 42.9
Insulin - Anti-Insulin - - 60 -
Positive Ergebnisse in Prozent [%]
Quelle: J.M. Kilpatrick, 1983
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 28
IK - Assoziierte Erkrankungen
Ivan Reutt, 2002
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 29
Nierenbeteiligung bei IK - Erkrankungen
Ivan Reutt, 2002
IK – Glomerulonephritis (GN) Goodpasture
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 30
IK – Induzierte Glomerulonephritiden (GN)
Wichtig: 80-90% aller Glomerulonephritiden (GN) sind Immunkomplex assoziiert und Folgen einer Ablagerung von zirkulierenden IK auf Basis eines Infektes
Pathogenesis : - Erreger Tropismus / Persistenz- Direkter cytopathischer Effekt- Antikörperproduktion- Grösse der zirkulierender IK- / C-Aktivierung- Haemodynamische Faktoren- Ablagerung, Deposition der IK in der Niere- Akkumulation v. Zellen / Entzündung / Cytokinnetzwerk- Gewebeschädigung, autoimmune Kreuzreaktion
Beispiele: Akute GN: Parvovirus B19, Hepatitis A, Masern, EBV, etc. Chronische GN: Hepatitis B , C, Parvovirus B19, etc.Interstitielle Nephritis: Hanta-, Corona-, Dengue-, Coxsackie-Viren, CMV, etc.
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 31
IgA Nephropathie
Wichtig: - Weltweit meist vorkommende Form der GN- 40-60% entwickeln die Endphase (TNI)
Pathogenese: - Abweichende IgA Glykosylation- Galaktose Mangel im O-linked Glykan der IgA schweren Kette- GalNAc Residuen- Verzögerte Elimination des Gal-Defizienten IgA1- Anti-Glykan Antikörperproduktion (Typ IgG / IgA1)- Ablagerung der IK im Glomerulum- C-Aktivierung / Entzündung
Labor: Nachweis IgA1-IgG IK (48%)C3 IK (44%)Keine IgM RF
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 32
Rheumatoide Arthritis
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 33
Extraartikuläre Manifestationen
Wichtig: Rheumatoide Arthritis weist sehr häufigextraartikuläre Manifestationen auf.
• Vaskulitis - Immunkomplexvermittelt
• Kardiovaskuläre Komplikationen IK mit oxidierter Form des LDL
• Expression von Adhesionsmolekülen
• Adhesion auf Endothelzellen
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 34
Rheumatoide Arthritis
Pathogenese: - genetische Faktoren HLA DR4 und HLA DR1- Infektionen, toxische Substanzen- T-Zellen, postkapilläre Venole, Antigenpräsentation eines arthritogenes Peptids- Zytokinproduktion- Polyklonale B-Zell Aktivierung über TLR (IL10 Prod.)- Rheumafaktoren und IK (z.B. zitrulinierte Proteine, ctr. Fibrin, Vimentin)- Komplementaktivierung- Makrophagen und monozytoide DC Aktivierung- Proinflamatorische Zytokine (TNF alpha, IL1, GM-CSF)- IK in synovial Flüssigkeit – Zytokin abh. Entzündung- Proliferation , Aktivierung von Fibroblasten- Synovitis, Chondrozyten Fibroblastenwachstums-Fakt.
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 35
Endothelialzellen bei IK - Erkrankungen
Ivan Reutt, 2002
IK – Depositen auf endothelialen Zellen
IgG IgM
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 36
Endothelialzellen bei IK - Erkrankungen
Pathogenese: - zirkulierende Immunkomplexe und Depositen auf Endothelium- C1q-Rezeptor auf endothelialer Zellmembran- Aktivierung des Komplements und phagozytierenden Zellen- Endothelium spez. Antigene (Grösse 20-200 kD), binden:
- DNS – DNS Histon Komplex- Ribosomale Proteine- Fibronektin- Beta 2 Glykoprotein
- Induzieren Apoptose unabhängig von Fc-Rezeptoren- Freisetzung von „self“ Ag, somit Produktion von
anti - endothelialen Antikörper:- Vaskulitis- Nekrose- Thrombose
Beispiele: - infektbedingte Vaskulitis (HBV, HCV, HIV)- mehrheitlich ethiologisches Agens jedoch unbekannt (SLE)- essentielle Kryoglobulinämie
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 37
Therapie
• Elimination der zirkulierenten Immunkomplexen– Antigenelimination– Plasmapherese
• Immunglobulin i.v. – moduliert Fc- und C-Rezeptorenverschiedener Entzündungszellen
• monoklonale Antikörper - anti aktivierte C-Komponentenanti - Zytokine
• TP10 – löslicher CR1 – inhibiert C3 und C5 Konvertase• Blokade Fc gamma Rezeptoren mit CD 16A Ig• künstlich hergestellte Immunkomplexe als Therapeutikum
(HBsAg-Anti-HB IK)
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 38
Routine Diagnostik der IK
Empfehlung für die Routine Diagnostik:
• präanalytische Phase berücksichtigen und einhalten
• Immer zwei Messmethoden, die auf unterschiedlichenTestprinzipien basieren, anwenden.
• Quantitative Messung einzelner C-Komponenten( mindestens C3, C4, C-B)
• Aktivität der 3 Komplement-Aktivierungswegen(klassischer, alternativer und Lektin) überprüfen.
Dr. med. Helen Joller-Jemelka, Dresden 2008 Folie 39
Besten Dank für Ihre Aufmerksamkeit!