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Análisis Físico-Químico del suelo del parque Tagle
Autoras
Rodríguez Cruz Adriana y Sánchez Lara Karla Citlallin
Asesora
Dra. Norma Mireles López
Nivel
BACHILLERATO
Área
QUÍMICA
Modalidad
INVESTIGACIÓN EXPERIMENTAL
Asesoría
LOCAL
Escuela
CENTRO UNIVERSITARIO MÉXICO A.C.
Clave
1009
2
Análisis Físico-Químico del suelo del parque Tagle Rodríguez Cruz Adriana y Sánchez Lara Karla Citlallin
Centro Universitario México A.C
Resumen El gobierno mexicano invierte recursos sembrando plantas en lugares públicos
que mueren rápidamente, por esto es necesario determinar la relación de las
propiedades químicas del suelo con el tipo de plantas en función de la viabilidad.
La Ciudad está situada en una planicie lacustre, la parte central se llenó de
material limo-arenoso y limo-arcilloso. Las propiedades de los suelos que
afectan la selección de especies viables son: profundidad, estructura, fertilidad y
acidez. Las bulbosas son plantas herbáceas perennes que cuentan con órganos
subterráneos.
Los objetivos de este trabajo fueron:
• Determinar propiedades químicas del suelo del parque Tagle para
determinar nutrientes y el tipo de planta viable para su siembra.
Se extrajeron cinco muestras de suelo para obtener propiedades como
absorción, carbonatos, bicarbonatos, cloruros y dureza total.
Se observó una transición rápida entre el suelo grumoso y el suelo limoso. Se
encontraron altos porcentajes de carbonatos en el estrato intermedio y en la
parte superficial presencia de calcio, cloruros, bicarbonatos y elevada presencia
de carbonatos en estratos intermedios, que favorece la rápida destrucción de
materia orgánica. Los suelos de los jardines de esta ciudad son regados con
aguas tratadas lo que provoca presencia de cloruros en la superficie generando
salinidad del suelo. En base a las características químicas de este suelo, se
concluye que la mayor parte de las plantas no se adaptarían a él. Las plantas
bulbosas prefieren suelos ácidos y se adaptan a condiciones ambientales no
propicias. Algunas propuestas son: Azucena rosa, Amarilis, Begonia tuberosa,
Caña de las Indias y Dalia.
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Planteamiento del problema
En la actualidad nuestro gobierno realiza gastos innecesarios, afectando el
presupuesto para obras públicas o mejoramiento de la calidad de vida sus
ciudadanos. Esto se puede demostrar ya que varios centros recreativos no están
en buenas condiciones, o cuando se invierte para mejorar su calidad,
posteriormente no se les proporciona el mantenimiento necesario.
En función de este antecedente surge el motivo de ésta investigación, puesto
que los parques y camellones de la Delegación Coyoacán se encuentran
totalmente abandonados. Cabe añadir que pese a algunas medidas que se
llevan a cabo por parte del gobierno, como es el riego continuo de las pocas
plantas, éstas no se encuentran en las condiciones favorables para su
crecimiento. Debido a ésta situación preocupante se inició el presente proyecto
con el fin de proponer una solución que mejore las circunstancias por lo que es
necesario determinar la relación de las propiedades químicas del suelo con el
tipo de plantas existentes, para de esa manera hacer una “siembra científica” en
función del precio y la viabilidad.
En el parque Tagle, lo único que se observa son pastos y algunos árboles, a
éstos se les otorga poca mano de obra y por lo mismo se encuentran
abandonados. En este “centro recreativo” no encontramos alguna especie que le
de vida y algunas especies que se han intentado sembrar mueren rápidamente.
Debido a ésta realidad, el proyecto realizado propone informar cuales son las
características químicas del suelo y las necesidades nutricionales de las plantas
que deberán ser sembradas. Esto contribuyendo al ahorro de presupuesto por
parte del gobierno y la mejora de servicios a su ciudadanía.
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Objetivos
• Determinar las propiedades químicas del Jardín Tagle, ubicado en la
Delegación Coyoacán de la Ciudad de México.
• Obtener las características químicas para determinar nutrientes y el tipo
de planta de ornato viable para su siembra.
Marco Teórico
1.1 Suelos
“El suelo es la cubierta superficial de la mayor parte de la Tierra. Es un agregado
de minerales no consolidados y de partículas orgánicas producidas por la acción
combinada del viento, el agua y los procesos de desintegración orgánica.
Representa todo tipo de material terroso quedando excluidas las rocas sanas,
ígneas o metamórficas en los depósitos sedimentarios altamente cementados
que no se ablanden o desintegren rápidamente por la acción de la intemperie”.
(Badillo J. y Rodríguez R, 1975. pp. 199).
Los suelos se forman por la acción combinada de la naturaleza física y
composición mineral del material de origen, del cual hereda sus propiedades. El
clima en el cual se encuentran, provoca la alteración química de la vida vegetal y
animal, que son los responsables de la alteración biológica.
Los componentes primarios del suelo son:
• Compuestos inorgánicos no disueltos, producidos por la meteorización
y la descomposición de las rocas superficiales como la arena y la
grava que en su mayor parte son químicamente inactivas. No
obstante, las pequeñas partículas inorgánicas sirven como depósitos
de los que las raíces de la planta extraen nutrientes. El tamaño y la
naturaleza de estas partículas inorgánicas diminutas determinan en
5
gran medida la capacidad de un suelo para almacenar agua, vital para
todos los procesos de crecimiento de las plantas.
• Distintos tipos de materia orgánica. La formación y el mantenimiento
de un suelo rico en minerales y materia orgánica constituye un ciclo
que se renueva constantemente. Los nutrientes son absorbidos por las
plantas desde el suelo, éstas a su vez, son alimento de organismos
heterótrofos que cuando mueren devuelven los nutrientes al suelo.
• Agua requerida por las plantas y los organismos subterráneos. La
importancia de esta radica en que arrastra varias sustancias minerales
en disolución, grandes cantidades de oxígeno y dióxido de carbono
disueltos.
• Gases: Principalmente están contenidos en el suelo: oxígeno,
nitrógeno y dióxido de carbono. El oxígeno es importante para el
metabolismo de las plantas ya que permite el crecimiento de
organismos responsables de la descomposición de materia orgánica.
• Los elementos del suelo más importantes para la nutrición de las
plantas incluyen fósforo, potasio, sodio, azufre, nitrógeno, calcio,
hierro, magnesio y en cantidades pequeñas boro, cobre, manganeso y
zinc. Además de absorber estos elementos del suelo, las plantas
también pueden absorberlos en los lugares de intercambio iónico
movilizándose a favor del gradiente hacia la raíz utilizando la corriente
de agua.
1.2 Suelos en la Ciudad de México
Los suelos de la Ciudad de México son mezclas complejas de minerales
cristalinos y no cristalinos, son arcillas heterogéneas, volcánicos, lacustres, con
una proporción y variedad de microfósiles. Estos adicionan compuestos solubles
generados por la alteración de sus exoesqueletos y a la vez forman parte de la
microestructura del suelo (Díaz-Rodríguez et al., 1998. pp. 150-180). Debido a
esta composición, su comportamiento se influye, y por lo tanto los suelos de la
ciudad no pueden considerarse dentro de una clasificación simple.
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La ciudad de México está situada en una planicie lacustre. Hace 700,000 años,
una gran actividad volcánica formó la sierra de Chichinautzin, debido a esto la
cuenca de México, que hasta entonces era exorreica, se cerró (Mooser, 1963.
pp. 120-130) y se obstruyó el drenaje que iba al río Balsas, creando así
depósitos de agua que dieron origen a varios lagos; de igual manera, los ríos
que descendían de las sierras colindantes, depositaron materiales muy diversos
en los mismos. La parte central de la cuenca se llenó de material limo-arenoso,
limo-arcilloso y emisiones de cenizas y pómez; provenientes de los volcanes del
Sur. Por el brusco cambio de pendiente de los ríos, se localizan grandes
depósitos aluviales al pie de las sierras de composición muy variable y
estratificación cruzada, estos dieron evidencia a una dinámica erosiva debido a
periodos de lluvia intensa.
En base a una gran cantidad de sondeos realizados a diferentes profundidades,
por Marsal y Mazari en 1959, se definieron tres zonas en la ciudad de México: la
zona del Lago, la zona de Transición y la zona de Lomas. La zona del lago es la
zona lacustre, la zona de Transición es material predominantemente arenoso, y
la zona de Lomas se refiere al suelo firme que contiene tobas volcánicas y rocas
intemperizadas.
Los suelos lacustres son aquellos cimentados sobre un lago o cualquier cuerpo
de agua. Se forman mediante procesos de erosión y transporte. El
comportamiento de estos suelos depende de su composición y su estructura.
Si se quieren observar los mecanismos de adaptación de las plantas,
dependiendo de las diferentes condiciones edafológicas, se deberá estudiar la
rizosfera. Esta es la porción de suelo directamente influenciada por las raíces,
suele tener un grosor de 1 a 4mm y se diferencia por sus propiedades físico-
químicas del resto del suelo. Las cuales se determinan por los tres
componentes del suelo:
7
1. Las características físico-químicas del suelo: nutrientes, pH, estructura y
contenido hídrico.
2. La presencia de microorganismos que están en alta concentración en la
rizosfera: Tipo de microorganismo, metabolismo y nutrición mineral.
3. Las raíces de las plantas: su crecimiento, nutrición y rizodeposiciones,
sustancias o estructuras celulares que son aportadas por las raíces al
suelo.
1.3 Fertilidad de los suelos
La fertilidad de los suelos depende del material originario del cual proviene y del
clima que lo produce. Los suelos sujetos a altos niveles de precipitación o
lacustres, son generalmente ácidos, ya que los nutrientes minerales solubles se
lixiviarán rápidamente. En general, las diferentes especies de árboles y plantas
adaptadas a suelos específicos siendo estos, ácidos, alcalinos o neutros, no
prosperan en otro tipo de suelo.
Las propiedades principales de los suelos que afectan la selección de especies
viables para ciertos tipos de suelo son la profundidad, estructura, fertilidad y
acidez.
• Profundidad Al seleccionar las especies, este factor es fundamental ya que
afecta el crecimiento de raíces. Algunas plantas, no toleran sequías o en el caso
en que tengan raíces superficiales no deben ser sembradas en suelos poco
profundos. También debe considerarse que en los lugares muy húmedos deben
sembrarse especies tolerantes a suelos inundados.
• Estructura La estructura de los suelos, afectará el movimiento del agua y a su
vez su retención, aireación y la penetrabilidad de las raíces. Los barros pesados
y compactos tienen la capacidad de retener más agua que los arenosos, aunque
los suelos arenosos favorecen el desarrollo de raíces.
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• Fertilidad Al seleccionar a las especies, se debe considerar la tolerancia a
suelos infértiles o aquellas que no tienen la capacidad de adaptarse a pobres
nutrientes o suelos degradados.
• Acidez Debido a que la productividad de algunas especies se ve limitada por
acidez o alcalinidad excesiva. Es fundamental considerar este factor antes de
elegir a una especie.
Algunos factores adicionales que pueden influenciar en el éxito al sembrar
nuevas especies, son: la naturaleza de la vegetación ya existente en el lugar
planeado para las nuevas especies, la contaminación ambiental.
1.4 Bulbosas
Las bulbosas son plantas herbáceas perennes. Cuentan con órganos
subterráneos y su función es el almacenamiento de sustancias de reserva que
permitirán el desarrollo de la nueva planta y la multiplicación, la cual es asexual
puesto que están provistas de yemas vegetativas.
La adaptación de las bulbosas es morfológica y fisiológica. La primera, se
distingue por la presencia de órganos subterráneos que almacena alimentos y
tiene las yemas vegetativas como bulbos, tubérculos, rizomas, cormos y raíces
tuberosas. La fisiológica destaca por la perdida de los tallos, hojas y flores;
cuando las temporadas adversas se presentan. De esta manera se mantienen
vivos los órganos de reserva subterráneos, estas adaptaciones suceden en tres
etapas:
• Fase de desarrollo vegetativo: El bulbo, da lugar a una planta completa,
ya que contiene las sustancias de reserva y las yemas vegetativas. En
esta etapa las diferentes partes de la planta se desarrollan a través del
alimento provisto por el bulbo el cual se agota.
• Fase de recuperación: En esta etapa las hojas devuelven al bulbo la
energía que de él tomaron para brotar por medio de la fotosíntesis, en
9
donde se da la producción de alimento a partir de la energía luminosa.
Debido a las condiciones desfavorables las partes aéreas de las plantas
mueren. De esta manera los alimentos cedidos al bulbo, no se consumen
y éste, está preparado para formar una nueva planta.
• Fase de almacenamiento y descanso: Ésta etapa se da bajo tierra, o en
un lugar seco y fresco, de esta manera se protege de las condiciones
desfavorables esperando que llegue la temporada propicia, para reiniciar
el ciclo. Durante esta fase el bulbo almacena nuevas sustancias
alimenticias y a su vez desarrolla nuevas yemas vegetativas para la
reproducción.
En base a los diferentes tipos de órganos, se les distinguen en bulbos, rizomas,
cormos, tubérculo caulinar, y tubérculo radical. Los bulbos son los órganos que
están compuestos por hojas engrosadas y carnosas que funcionan como
escamas foliares llamadas catáfilos. Son yemas adaptadas a vivir bajo la tierra.
Cuentan con una yema terminal que producirá un tallo central del cual saldrán
raíces llamadas discos, debido a que crecen más en grosor que en longitud y
una yema axilar que es la encargada de originar un nuevo bulbo. En cuanto a su
reproducción, los bulbos emiten "hijuelos" en la base que son los que se usan
para la reproducción vegetativa.
De acuerdo a las estaciones del año las bulbosas más recomendadas para su
buen desarrollo son:
• Primavera: Tulipanes, Jacinto, Narciso, Lirio, Anémona, Fritilaria,
Ranúnculo.
• Verano: Begonia, Caña de las Indias, Dalia, Fresia, Gladiolo, Azucena,
Crocosmia.
• Otoño: Amarilis, Nerine, Azafrán otoñal.
• Invierno: Ciclamen, Escila, Dicentra, Campanilla de invierno, Nazareno.
Hipótesis
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• Si el jardín Tagle carece de nutrientes, entonces las plantas pueden ser
escasas.
• Si el tipo de suelo y la cantidad de nutrientes es específico entonces la
posibilidad de crecimiento de plantas será limitado.
• Si se da la escasez de plantas en el jardín Tagle, entonces la zona puede
estar contaminada.
Desarrollo
Material
• Tubo de PVC (1m)
• 4 varillas de metal
• Taladro
• 5 contenedores de plástico
• 3 coladores
• 4 espátulas
• 20 cajas de Petri
• Matraz Erlenmeyer
• 20 vasos de precipitado
• Potenciómetro
Sustancias
• Solución 2molar de HCl
• Soluciones Buffer (para
calibración)
1. Planificación y elaboración de un tubo de PVC, para extracción de muestras
de suelo (Figura 1).
2. Obtención de cinco muestras, los cuales están en función de la profundidad
de los diferentes estratos del suelo, en el Parque Tagle ubicado en Miguel
Ángel de Quevedo. (Figura 2 y Figura 2.1).
3. Secado y Tamizado de las muestras: Separación de tierra fina y gruesa
(Figura 3).
4. Preparación de la pasta saturada, tanto del suelo fino como del grueso, para
determinar la absorción de agua y porosidad del suelo (Figura 4).
2
5. En cajas de Petri se colocaron muestras de los diferentes estratos, se
hidrataron hasta llegar al punto de saturación y posteriormente se dejó
evaporar el agua por un tiempo de cuatro semanas, en las cuales se fue
pesando hasta comprobar que no había más pérdida de masa (Figura 5).
6. Se elaboró una solución 2 molar de HCl para determinar la presencia de
carbonatos y bicarbonatos.
7. Se extrajeron 15 submuestras de cada estrato, y se les fue agregando ml de
la solución dos molar antes descrita.
8. Obtención del pH con ayuda de un potenciómetro de las pastas saturadas.
9. Se determinó la cantidad de carbonatos y bicarbonatos presentes en cada
estrato (Apéndice A).
10. Se determinó los cloruros por el método de Argentometría de cada uno de
los estratos (Apéndice B).
11. Se determinó la cantidad de calcio por titulación de Ácido Etilendiamino
Tetraacético (EDTA) (Apéndice C).
12. Se determinó la dureza total por titulación de EDTA (Apéndice D).
Resultados
Las muestras que se tomaron fueron las siguientes.
Tabla 1. Muestras
Profundidad
de la
muestra
Muestra Tierra Fina
(g) Tierra Gruesa
(g)
Porcentaje de Tierra
Total
60cm 1 825.8
186.9
24.39%
48cm 2 A 703.8
338.85
25.11%
36cm 2 B 437.3
262.1
16.84%
3
24cm 3 A 459
263.9
17.41%
12cm 3 B 448.1
225.1
16.21%
Total 2874 1276.85 100%
Tabla 2. Absorción de agua de cada una de las muestras
Pasta Fina Hidratada (g)
1 2A 2B 3A 3B
113.9 122.7 126.4 108.7 124.3 Semana 1
141.2 124 124.5 109.8 151.4
108.2 116.2 115.3 102 115.9 Semana 2
136.2 115.2 117.7 100.1 141.3
92.4 101.5 101.1 89.1 98.2 Semana 3
111.5 101.9 99.6 89.9 122.6
79.3 67.4 82.2 76.2 78.3 Semana 4
94.7 65.2 84.8 77.0 88.6
4
Absorción de agua (Tierra fina)
60.00
70.00
80.00
90.00
100.00
110.00
120.00
130.00
140.00
Semana 1 Semana 2 Semana 3 Semana 4
12A2B3A3B
Gráfica 1. Deshidratación de la pasta fina saturada Tabla 3. Pasta gruesa hidratada
Pasta Gruesa Hidratada (g)
1 2A 2B 3A 3B
35.9 29.9 49.1 55.9 56.5Semana 1
48.5 33.5 52.5 64.6 57.6
34.6 30.1 45.8 61.7 54.4Semana 2
46.6 33.6 51.5 51.6 56.3
36.1 25.8 38.5 43.3 43.7Semana 3
27.5 23.9 37.2 49.9 44.5
35.8 25.7 38.3 43.1 43.4Semana 4
27.3 23.7 37.5 49.6 44.2
5
Absorción de Agua (Tierra Gruesa)
20.00
25.00
30.00
35.00
40.00
45.00
50.00
55.00
60.00
65.00
Semana 1 Semana 2 Semana 3 Semana 4
12A2B3A3B
Gráfica 2. Deshidratación de la pasta gruesa saturada
Tabla 4. Comparación de la absorción de tierra fina vs. gruesa
Total (%) absorción de agua
MuestraTierra Fina
Tierra Gruesa
1 40.50 10.65 2A 57.05 7.00 2B 41.95 12.90 3A 29.42 13.90 3B 54.40 13.25
Tabla 5. Presencia de Carbonatos
Muestra a 2molar
1(ml HCl) 2A 2B 3ª 3B
1 0.7 1.0 0.8 0.8 0.8
2 0.8 1.0 0.8 0.8 0.8
6
3 0.8 1.0 0.7 0.12 0.8
4 0.7 1.1 0.7 0.8 0.8
5 0.7 1.1 0.10 0.8 0.7
6 0.7 1.1 0.7 0.12 0.8
7 0.7 0.9 0.7 0.8 0.7
8 0.7 1.3 0.12 0.8 0.12
9 0.6 0.8 0.12 0.8 0.8
10 0.8 1.0 0.8 0.12 0.8
11 0.7 9.0 0.12 0.8 0.8
12 0.7 1.3 0.12 0.12 0.8
13 0.8 0.8 0.8 0.8 0.8
14 0.8 0.8 0.9 0.12 0.8
15 0.8 1.1 0.12 0.8 0.8
Tabla 6. Determinación del pH de los diferentes estratos
pH Tierra fina
Muestra 1
Muestra 2 A
Muestra 2 B
Muestra 3 A
Muestra 3 B
1 5.44 6.42 6.23 6.33 6.52
2 5.78 5.82 6.70 6.42 6.40
7
pH
5.5
5.7
5.9
6.1
6.3
6.5
6.7
1 2A 2B 3A 3B
Gráfica 3. Comparativa del pH en diferente sustratos Tabla 7. Concentración de bicarbonatos.
HCO3 Muestra (mg/l) 1
0.62
2 A 0.72
2 B
0.85
3 A
1.25
3 B
1.11
Bicarbonatos (mg/l)
0.50.60.70.80.9
11.11.21.3
1 2A 2B 3A 3B
8
Gráfica 4. Comparación de cantidad de bicarbonatos de los diferentes estratos. Tabla 8. Concentración de cloruros.
Cl-1 Muestra (mg/l) 1
1.24
2 A
1.36
2 B
1.41
3 A
1.24
3 B
1.8
9
Carbonatos (mg/l)
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
1 2A 2B 3A 3B
Gráfica 5. Comparación de la cantidad de cloruros. Tabla 9. Concentración de carbonatos
CO3 2 Muestra (mg/l) 1
0.84
2 A
1.68
2 B
0.52
3 A
3.01
3 B
2.1
.
Cloruros (mg/l)
1.2
1.3
1.4
1.5
1.6
1.7
1.8
1.9
1 2A 2B 3A 3B
10
Gráfica 6. Comparación de cantidad de carbonatos
Análisis e interpretación de Resultados.
Al realizar la extracción de muestras en el parque Tagle, pudimos observar como
existía una transición rápida de sedimentos, entre el suelo grumoso y el suelo
limoso, pues al extraer la muestra resultó más sencillo a mayor profundidad. Lo
cual se comprobó al determinar la composición del suelo en las muestras 2 A,
2 B y también en la superficie (3 A). A su vez, el tamizado mostraba esa
transición en las muestras tomadas a una altura aproximadamente de 40cm.
Las muestras alcanzaron una absorción máxima de 60%, ésta se encontró en
los estratos 2 A y 3 A, lo cual representa un porcentaje bajo de absorción,
puesto que un suelo con buenas características, absorbe un 200% su peso.
En nuestro suelo encontramos la presencia de altos porcentajes de carbonatos
sobretodo en estrato intermedio 2 A, 2 B Y 3 A, lo cual nos va a repercutir en la
cantidad de materia orgánica y humus. Como consecuencia se verá afectado el
intercambio de iones positivos y negativos, así como la absorción de elementos
esenciales para el desarrollo de la planta.
El pH máximo que presentó en nuestro suelo, fue a la profundidad del estrato
2 B con un promedio de 6.46, esto nos da la pauta de un suelo ácido que va a
afectar la viabilidad de cualquier planta que se quiera sembrar pues la condición
óptima de fertilidad es la neutralidad.
11
Se pudo observar, de acuerdo al análisis realizado, que en la superficie
(muestra 3 A), hubo mayor presencia de calcio. Ya que al realizar la extracción
de suelos en el parque Tagle, la superficie del suelo tuvo mayor dificultad que
los siguientes estratos. La parte superficial del suelo (muestra 3 A) presentó
mayor cantidad de cloruros, los cuales nos indican que este estrato es más
salino. La presencia de bicarbonatos, se acentuó también en la parte superficial
(muestra 3 A).
Conclusiones
De acuerdo a la estratigrafía del estudio realizado recientemente por Marshal y
Mazzari, de la zona lacustre de la ciudad de México. Podemos clasificar al
muestreo realizado en el parque Tagle, como perteneciente a la zona de
transición (arenas con gravas y arenas limosas).
Debido a que se observó una rápida transición de los sedimentos grumosos a
los limosos, y que existen variaciones rápidas del suelo, con respecto a la
profundidad de los mismos y su composición. Fue más fácil la extracción de las
muestras 2 A, 2 B y 3 A. Con ésta información, podemos suponer que hubo dos
erupciones volcánicas, ya que se encuentran dos distintas fases de los estratos,
que contienen material predominantemente arenoso, entrando así a la zona de
Transición (Figura 6).
Al realizar un análisis comparativo entre la absorción de suelo fino y grueso
(Figura 7). Se pudo concluir que el suelo fino absorbe con mayor cantidad de
agua. Motivo por el cual todos los estudios químicos se realizaron en el suelo
fino, ya que al absorber mayor cantidad de agua, hay mayores cationes y
aniones disueltos en ella.
Un suelo con buena absorción, absorbe un 200% su peso, por su parte el suelo
del parque Tagle tiene una absorción máxima de 60% circunstancia que afectará
la adaptación y el crecimiento de las plantas con requerimientos altos de agua y
12
nutrientes, ya que los nutrientes que estas requieren, son obtenidos mediante
estas vía a favor del gradiente de concentración hacia la raíz. Por lo tanto con
este déficit hídrico existirá un déficit de nutrientes. La mayor absorción de agua
se presentó en la superficie de los estratos (muestra 3 A) y a una profundidad de
40cm (muestra 2 A).
En nuestras muestras pudimos observar la elevada presencia de carbonatos,
sobretodo en la zona intermedia (2 A, 2 B) y la superficie (3 A), esto bloquea la
absorción de ciertos nutrientes indispensables para la planta como hierro,
manganeso, zinc, potasio, fosfóro y cobre. Así mismo podemos concluir que un
alto porcentaje de carbonatos va a favorecer la rápida destrucción de la materia
orgánica en el suelo, empobreciendo al humus, (complejo de macromoléculas en
estado coloidal constituido por proteínas, azúcares, ácidos orgánicos, minerales,
etc). Pues al tener carga negativa, permiten absorber cationes H+ y cationes
metálicos como Ca 2+, Mg2+, K+ y Na+, acción de la que se ve disminuida en
nuestro suelo
La acidez del suelo se ve afectada como consecuencia del intercambio de iones
positivos y negativos. Los protones (H+) presentes en éste, pueden tener como
origen la reacción del CO2 con el agua.
Debido a la presencia de calcio en la superficie del suelo (muestra 3 A), éste fue
más duro. Como hubo presencia de calcio se puede intuir que también existe
una presencia de magnesio. Estos dos elementos no favorecen el crecimiento
de las plantas.
Se conoce que los suelos del parque Tagle, al igual que todos los jardines de la
Ciudad de México, son regados con aguas tratadas. Por lo que podemos intuir
que es la causa de la presencia de cloruros en la superficie de la tierra (muestra
3 A). Esto repercute en la composición del suelo ya que la presencia de cloruros
es la causante de la salinidad en la tierra. Lo cual no es un factor favorable para
la siembra de plantas.
13
Al regar los jardines con aguas tratadas y por efecto de la lluvia ácida se puede
intuir que; además de ser causante de la salinidad, también es causante de la
poca presencia de materia orgánica; ya que esta es degradada en las aguas
tratadas a partir de microorganismos (Figura 8).
Se pudo observar la presencia de bicarbonatos en la parte superficial del suelo
(muestra 3 A), esto es porque la Ciudad de México, principalmente la zona Sur,
es una zona altamente contaminada y al mezclarse el dióxido de carbono con el
agua se produce ácido carbónico y ácido carbonoso que posteriormente se
degrada en el suelo. Al reaccionar los bicarbonatos con el magnesio, litio, calcio,
y algunos otros componentes. Se generan carbonatos, lo que propicia
condiciones inadecuadas (mencionadas anteriormente) para el crecimiento de
plantas.
CO2 + H2O H2CO3 CO2 + H2O H2CO2
Formación del ácido carbónico Formación del ácido carbonoso
En base a las características químicas que se obtuvieron del suelo del parque
Tagle, se pudo concluir que la mayor parte de las plantas no pueden adaptarse a
dichas condiciones para poder vivir, por lo mismo en el camellón de Av.
Universidad y Miguel Ángel de Quevedo, al igual que en el parque Tagle, sólo
podemos encontrar: pastos, algunas bulbosas y cactáceas que se han adaptado
a suelos arcillosos y arenosos (Figura 9, 9.1, 9.2).
Debido a que nuestro suelo se encontraba en la zona de Transición, se encontró
que, de acuerdo a las características químicas del parque Tagle, las plantas
ornamentales ideales para su siembra son las bulbosas. Puesto que estas
prefieren los suelos ácidos para desarrollarse, también sus adaptaciones
fisiológicas permiten un desarrollo apto aún cuando las condiciones ambientales
no son las propicias.
14
En esta investigación se concluyó que es primordial tomar como base un análisis
físico-químico del suelo para después sembrar en primera instancia a especies
nativas de la región para que su adaptación se presente con mayor facilidad, y
posteriormente se intente sembrar especies que sean exóticas. Por estos
motivos se recomienda sembrar: la Azucena rosa (Amaryllis belladona) puesto
que era la única planta en el jardín Tagle y florece desde mediados de invierno
hasta el verano (Figura 10), la Amarilis (Hippeastrum) ya que su origen es de
América Central, florece de primavera hasta principio de verano (Figura 10.1), la
Begonia tuberosa (Begonia x tuberhybrida) proviene de varias especies
americanas y florece en cualquier estación del año(Figura 10.2), la caña de las
indias (Canna indica), su origen es de Centroamérica y florece en verano hasta
el otoño (Figura 10.3)y la más nativa la dalia (Dahlia) es originaria de México y
puede florecer desde el principio del verano hasta finales del otoño (Figura 10.4).
REFERENCIAS
Bibliográficas
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conservación de suelos. Asentamiento El Jauri, La Fortuna, San Carlos.
Tesis, Santa Clara, I.T.C.R. Escuela de Agronomía, 1996.
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(1999)Técnicas biológicas selectas de laboratorio de campo. Ciudad de
México: 2da edición editorial: Limusa pp. 203-213.
15
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Direcciones electrónicas
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determinación de la composición de un suelo.
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limitaciones del campo en la producción de arroz
http://www.fao.org/docrep/006/y2778s/y2778s04.htm 11/9/06
• Rodríguez L. J. (2005) Relaciones entre la planta y el suelo. http://www.elergonomista.com/fisiologiavegetal/mineral.htm . 9/29/06
• Ruíz. I. B. (2002) Manual para reforestación para América Tropical de
http://www.fs.fed.us/global/iitf/IITF-GTR-18.pdf 2/6/07
16
17
Apéndice A
Determinación de Carbonatos y Bicarbonatos.
Cuando se le agrega a la muestra de agua indicador de fenoftaleína y aparece
un color rosa, esto indica que la muestra tiene un pH mayor que 8.3 y es
indicativo de la presencia de carbonatos.
Se procede a titular con HCl valorado, hasta que el color rosa cambie a incoloro,
con esto, se titula la mitad del CO3=.
En seguida se agregan unas gotas de indicador de azul de bromofenol,
apareciendo una coloración azul y se continúa titulando con HCl hasta la
aparición una coloración azul y se continua titulando con HCl hasta la aparición
de una coloración verde. Con esto, se titula los bicarbonatos (HCO3-) y la mitad
restante de los carbonatos (CO3=).
Desarrollo
Materiales
• Matraz Erlenmeyer
• 5 jeringas de insulina
• 15 tubos de ensaye
• gradilla
Sustancias
• Fenoftaleina
• HCl 0.01N
• Bromofenol
• Agua
1. Se colocó 5 ml de muestra de agua en un matraz Erlenmeyer de 125 ml.
2. Se agregaron 3 gotas de indicador fenoftaleína al 0.25%.
3. Se calculó CO3=.
4. Se agregaron 3 gotas de azul de bromofenol 0.04% al mismo matraz
apareciendo un color azul (Figura 1).
5. Se continuó titulando con HCl 0.01N hasta la aparición un color azul.
6. Se continuó titulandolo con HCl 0.01N hasta la aparición de un color
verde (Figura 2).
2
7. Se calculó HCO3.
Cálculos:
muestrademlxNxTdel
Meq HCO 10003 =
Donde:
T = ml. de HCl gastados en dos titulaciones.
V = ml. Gastados en la primera titulación.
N = Normalidad de HCl
Figura 1. Titulación de bromofenol Figura 2. Titulación con HCl
3
Apéndice B
Determinación de Cloruros por Argentometría
Para analizar los cloruros, la muestra, a un pH neutro o ligeramente alcalino, se
titula con nitrato de plata (AgNO3), usando como indicador cromato de potasio
(K2CrO4).
El cloruro de plata AgCl, precipita cuantitativamente primero, al terminarse los
cloruros, el AgNO3 reacciona con el K2CrO4 formando un precipitado rojo ladrillo
de Ag2CrO4 .
Desarrollo
Materiales
• Matraz Erlenmeyer
• 5 jeringas de insulina
• 15 tubos de ensaye
• Gradilla
Sustancias
• Fenoftaleina
• Na2CO3 0.1N
• AgNO3
• H2SO4 0.1N
• Agua
• K2CrO4 al 5%.
1. Se colocó 5 ml. de la muestra de agua en un matraz Erlenmeyer de 125ml.
2. Se ajustó el pH entre 7.0 a 8.3 añadiéndosele:
• 2 gotas de Na2CO3 0.1N.
• 2 gotas de Fenoftaleína (0.25%) produciendose un color rosa.
• Se añadieron las gotas de H2SO4 0.1N AgNO3 a incoloro.
1. Se agregaron 3 gotas de K2CrO4 al 5%.
2. Se tituló con AgNO3 0.01N hasta que viró de amarillo a rojo ladrillo (Figura 1).
2
Cálculos
muestrademlxNxV
delMeq
Cl1000
2 =+
Donde
V = ml de AgNO3
N = Normalidad del AgNO3
Figura 1. Titulación con AgNO3
3
Apéndice C
Análisis de Calcio por titulación con EDTA
En el análisis de calcio la muestra es tratada con NaOH 4N para obtener un pH
de entre 12 y 13, lo que produce la precipitación del magnesio en forma de
Mg(OH)2. Enseguida se agrega el indicador muréxida que forma un complejo de
color rosa con el ion calcio y se procede a titular una solución de EDTA hasta la
aparición de un complejo color púrpura.
Desarrollo
Materiales
• Matraz Erlenmeyer
• 5 jeringas de insulina
• 15 tubos de ensaye
• Gradilla
Sustancias
• NaOH 4N
• Indicador muréxida
• Ácido etilendiamina
tetraacético 0.01N
• Agua
1. Se colocó una alícuota de 5 ml. de agua en un matraz Erlenmeyer de 125
ml.
2. Se agregaron 50 gotas de NaOH 4 N.
3. Se añadieron 50 ml de muréxide y se tituló con EDTA 0.01N hasta que
viró de rosa a púrpura (Figura 1).
Cálculos:
MxNxV
delMeq
Ca1000
2 =+
2
Donde
V = ml gastados de la solución EDTA.
N = Normalidad de la solución EDTA.
M = ml de muestra de agua utilizada.
Figura 1. Titulación con EDTA
3
Apéndice D
Análisis de Dureza Total por titulación con EDTA:
Dureza Temporal: Esta determinada por el contenido de carbonatos y
bicarbonatos de calcio y magnesio. Puede ser eliminada por ebullición del
agua y la posterior eliminación de precipitados formados por filtración.
Dureza Permanente: está determinada por todas las sales de calcio y magnesio
excepto carbonatos y bicarbonatos.
Dureza como CaCO3 Interpretación
0-7 agua suave
75-15 agua poco dura
150-300 agua dura
> 300 agua muy dura
En agua potable el limite máximo permisible es de 300mg/l de dureza.
A la muestra de agua que contiene los iones calcio y magnesio se le añade el
buffer de PH 10, posteriormente, se le agregó el indicador eriocromo negro T
(ENT), que hace que se forme un complejo de color púrpura, enseguida se
procede a titular con EDTA (sal disódica) hasta la aparición de un color azul.
Desarrollo
Materiales
• Matraz Erlenmeyer
• 5 jeringas de insulina
• 15 tubos de ensaye
• Gradilla
Sustancias
• Buffer pH 10
• Indicador eriocromo negro T
• Ácido etilendiamina
tetraacético 0.01N
2
1. Se colocaron 5ml de la muestra de agua en un matraz Erlenmayer de
125ml.
2. Se agregaron 5 gotas de buffer pH 10.
3. Se añadieron 3 gotas de eriocromo negro T.
4. Se tituló con EDTA (sal disódica) 0.01 N.
5. Viró de púrpura a azul.
Cálculos
muestrademlxNxV
ydelMeq
MgCa1000
22 =++
Dónde:
V = mi gastados de EDTA
N = Normalidad del EDTA
Cálculos para Magnesio:
meq/l Mg2+ = [meq/l (Ca2+ y Mg2+)]-(meq/l Ca2+)
Figura 1. Titulación con EDTA
3
Apéndice E
Figura 1. Tubo de PVC Figura 2. Extracción de muestras
Figura 2.1. Mapa del parque Tagle
4
Figura 3. Tamizado Figura 4. Saturación de la tierra fina y gruesa
Figura 5. Secado de muestras
Figura 6. Mapa de la zona de transición
5
Grafica comparativa: Total (%) absorción de agua
0.00
10.00
20.00
30.00
40.00
50.00
60.00
1 2A 2B 3A 3B
Tierra FinaTierra Gruesa
Figura 7. Gráfica comparativa de la absorción de agua
00.20.40.60.8
11.21.41.61.8
1 2A 2B 3A 3B
Comparativa de cloruros y bicarbonatos
ClHCO3
Figura 8. Gráfica comparativa de concentración de cloruros y bicarbonatos
6
Figura 9 Camellón sobre Miguel A. Figura 9.1. Cactácea en Av. Universidad
Figura 9.2 Parque Tagle Figura 10. Azucena
Figura 10.1 Amarilis Figura 10.1 Begonia tuberosa
7
Figura 10.3 Caña de las indias
Figura 10.4 Dalia
