Embed Size (px)
Citation preview
KANDUNGAN NUTRISI DAN KECERNAAN IN VITRO
LEGUM PAKAN TERNAK DI KAWASAN NUKLIR
PASAR JUMAT
MOCHAMMAD HILAL ZUHRI
PROGRAM STUDI BIOLOGI
FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI
UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH
JAKARTA
2019 M / 1440 H
KANDUNGAN NUTRISI DAN KECERNAAN IN VITRO
LEGUM PAKAN TERNAK DI KAWASAN NUKLIR
PASAR JUMAT
SKRIPSI
Sebagai Salah Satu Syarat untuk Memperoleh Gelar Sarjana Sains
Pada Program Studi Biologi Fakultas Sains dan Teknologi
Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta
MOCHAMMAD HILAL ZUHRI
11140950000059
PROGRAM STUDI BIOLOGI
FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI
UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH
JAKARTA
2019 M / 1440 H
iv
ABSTRAK
Mochammad Hilal Zuhri. Kandungan Nutrisi dan Kecernaan In Vitro
Legum Pakan Ternak di Kawasan Nuklir Pasar Jumat. Skripsi. Program
Studi Biologi. Fakultas Sains dan Teknologi. Universitas Islam Negeri
Syarif Hidayatullah Jakarta. 2019. Dibimbing oleh Wahyudin Teguh
Sasongko dan Etyn Yunita
Identifikasi tanaman legum sebagai bahan pakan ternak ruminansia di Kawasan
Nuklir Pasar Jumat, serta analisis kandungan nutrisi dan nilai kecernaan in vitro
perlu dilakukan untuk menjadi dasar pembuatan formula ransum. Penelitian ini
bertujuan untuk menganalisis jenis legum di Kawasan Nuklir Pasar Jumat, nilai
kandungan nutrisi dan kecernaan in vitro yang menggunakan DaisyII Incubator.
Pengambilan sampel menggunakan metode purposive sampling. Sampel
diidentifikasi dan dilakukan analisis proksimat serta analisis kecernaan
menggunakan DaisyII Incubator selama 48 jam. Hasil identifikasi tanaman legum
di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat didapatkan 5 jenis legum yaitu Arachis
hypogea, Indigofera zollingeriana, Leucaena leucocephala, Gliricidia sepium
dan Vigna radiata. Tanaman L. leucocephala dan I. zollingeriana memiliki nilai
protein kasar tertinggi (31,36% dan 28,98), serta rendah akan kandungan neutral
detergent fiber (33,16% dan 41,84%), dan acid detergent fiber (21,43% dan
21,94%). Hasil analisis ini juga menunjukkan bahwa kedua tanaman legum
tersebut memiliki nilai relative feed value yang tergolong kategori “prime” dan
nilai in vitro true digestibility yang tinggi (73,47% dan 74,99%). Penelitian ini
menunjukkan bahwa L. leucocephala dan I. zollingeriana merupakan tanaman
legum yang potensial dikembangkan dalam formula ransum, dibandingkan
dengan jenis legum lainnya.
Kata kunci: kandungan nutrisi, kecernaan in vitro, legum, ruminansia
v
ABSTRACT
Mochammad Hilal Zuhri. Nutrient Content and In Vitro Digestibility of
Legumes as Feeding in Kawasan Nuklir, Pasar Jumat. Undergraduete
Thesis. Departement of Biolgy. Faculty of Science and Technology. State
Islamic University Syarif Hidayatullah Jakarta. 2019. Advised by
Wahyudin Teguh Sasongko and Etyn Yunita
Identification, nutrient content and in vitro digestibility of Legume forage as
ruminant feeding, in Kawasan Nuklir Pasar Jumat was needed to know for
making ruminant rations. The aim of this study was to analyze the type of
legume in Kawasan Nuklir Pasar Jumat, the value of the nutrient content and in
vitro digestibility using DaisyII Incubator. Samples were taken by using
purposive sampling methode. Samples were identified, analyzed the nutrient
content and in vitro digestibility using DaisyII Incubator along 48 hours. The
results showed that the legumes identification were found 5 kinds such as
Arachis hypogea, Indigofera zollingeriana, Leucaena leucocephala, Gliricidia
sepium and Vigna radiata. Leucaena leucocephala and Indigofera zollingeriana
were contained high crude proteint (31,36% and 28,98%), low neutral detergent
fiber value (33,16% and 41,84%), and low acid detergent fiber value too
(21,34% and 21,94%). Two legumes had high relative feed value and included
“prime” forage, and high in vitro true digestibility (73,47% and 74,99%). This
study showed that L. leucocephala and I. zollingeriana were potential to be
developed in feed rations than others.
Keywords: in vitro digestibility, legume, nutrient content, ruminant
vi
KATA PENGANTAR
Puji dan syukur saya panjatkan ke hadirat Tuhan Yang Maha Esa atas
segala kelimpahan rahmat dan karunia-Nya, sehingga penulis diberikan
kemudahan dalam menyusun skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh
gelar sarjana sains pada Program Studi Biologi, Fakultas Sains dan Teknologi,
Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta. Skrispsi berjudul
“Kandungan Nutrisi dan Kecernaan In Vitro Legum Pakan Ternak di
Kawasan Nuklir Pasar Jumat”.
Penulis menyampaikan rasa terimakasih kepada semua pihak atas segala
bimbingan dan bantuan yang telah diberikan kepada penulis selama menyusun
skrispsi ini. Ucapan terimakasih terutama ditunjukkan kepada:
1. Prof. Dr. Lily Surayya Eeka Putri, M. Env. Stud selaku Dekan Fakultas
Sains dan Teknologi UIN Syarif Hidayatullah Jakarta yang telah
memberikan izin pelaksanaan penelitian.
2. Dr. Priyanti, M.Si dan Narti Fitriana, M.Si selaku Ketua dan Sekretaris
Program Studi Biologi Fakultas Sains dan Teknologi UIN Syarif
Hidayatullah Jakarta yang telah membantu adiministrasi untuk penelitian
dan skripsi.
3. Wahidin Teguh Sasongko, M.Sc selaku Pembimbing 1 yang telah
membimbing saya dalam menyusun skripsi.
4. Etyn Yunita, M.Si selaku Pembimbing 2 yang telah membimbing saya
dalam menyusun skripsi.
5. Teguh Wahyono, S.Pt, M.Si dan Shintia Nugrahini Wahyu Hardani, A.md
selaku pembimbing yang telah membimbing kerja di Laboratorium.
6. Pusat Aplikasi Isotop dan Radiasi Badan Tenaga Nuklir Nasional (PAIR-
BATAN) Laboratorium Biologi, bidang nutrisi ternak yang telah
menyediakan tempat, alat, dan bahan dalam pelaksanaan penelitian.
7. Orang tua penulis yang telah memberikan izin, dukungan materi dan moril,
serta mendoakan sampai saat ini.
8. Teman-teman Program Studi Biologi Fakultas Sains dan Teknologi UIN
Syarif Hidayatullah Jakarta Angkatan 2014 yang telah memberi banyak
dukungan moril kepada penulis.
vii
Demikianlah skripsi ini disusun, semoga bermanfaat bagi para pembaca
untuk menambah ilmu pengetahuan dan wawasan.
Jakarta, Agustus 2019
Penulis
viii
DAFTAR ISI
Halaman
ABSTRAK ............................................................................................................ iii
ABSTRACT ............................................................................................................v
KATA PENGANTAR .......................................................................................... vi
DAFTAR ISI ...................................................................................................... viii
DAFTAR TABEL ................................................................................................ ix
DAFTAR GAMBAR ..............................................................................................x
DAFTAR LAMPIRAN ........................................................................................ xi
BAB I. PENDAHULUAN
1.1. Latar Belakang .........................................................................................1
1.2. Rumusan Masalah ....................................................................................2
1.3. Tujuan Penelitian .....................................................................................2
1.4. Manfaat Penelitian ..................................................................................2
1.5. Kerangka Berfikir ....................................................................................3
BAB II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1. Hijauan Pakan Ternak ..............................................................................4
2.2. Legum ......................................................................................................4
2.3. Ruminansia ..............................................................................................6
2.4. Sistem Pencernaan Ruminansia ...............................................................7
2.5. Uji Kecernaan In vitro (Daisy Ankom) ...................................................9
2.6. Nutrisi Ruminansia ................................................................................10
BAB III. METODE PENELITIAN
3.1. Waktu dan Tempat Penelitian .............................................................12
3.2. Alat dan Bahan ....................................................................................12
3.3. Cara Kerja ...........................................................................................12
3.4. Analisis Data .......................................................................................18
BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Hasil Pengambilan Sampel Legum di Kawasan Nuklir Pasar Jumat ..19
4.2. Profil Nutrisi Tanaman Legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat .......26
4.3. Nilai Kecernaan In vitro Tanaman Legum di Kawasan Nuklir,
Pasar Jumat ..........................................................................................28
BAB V. PENUTUP
5.1. Kesimpulan ..........................................................................................30
5.2. Saran ....................................................................................................30
DAFTAR PUSATAKA ........................................................................................31
LAMPIRAN .........................................................................................................36
ix
DAFTAR TABEL
Halaman
Tabel 1. Kebutuhan nutrisi untuk pertumbuhan beberapa ruminansia .....................7
Tabel 2. Hasil identifikasi tanaman legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat ........19 Tabel 3. Profil Nutrisi Tanaman Legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat ............26 Tabel 4. Nilai relative feed value, total digestive nutrient, dan in vitro
digestibility tanaman legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat ................28
x
DAFTAR GAMBAR
Halaman
Gambar 1. Kerangka berpikir ...................................................................................3 Gambar 2. Proses pencernaan pada ruminansia (Campbell et al., 2008) .................9 Gambar 3. Ciri-ciri morfologi A. hypogea .............................................................20 Gambar 4. Ciri-ciri morfologi G. sepium ...............................................................21 Gambar 5. Ciri-ciri morfologi I. zollingeriana ......................................................23
Gambar 6. Ciri-ciri morfologi L. leucocephala ......................................................24
xi
DAFTAR LAMPIRAN
Halaman
Lampiran 1. Dokumentasi kegiatan penelitian.....................................................36 Lampiran 2. Hasil konversi presentase hemiselulosa dan Non Fiber
Carbohydrate (NFC) pada legum di Kawasan Nuklir,
Pasar Jumat (%BK). .......................................................................37 Lampiran 3. Hasil uji ANOVA tanaman legume di Kawasan Nuklir, Pasar
Jumat...............................................................................................38 Lampiran 4. Hasil uji Duncan pada Berat Organik (BO) tanaman legum ...........39 Lampiran 5. Hasil uji Duncan pada Lemak Kasar (LK) tanaman legum.............40 Lampiran 6. Hasil uji Duncan pada Neutral Detergent Fiber (NDF) tanaman
legum ..............................................................................................41
Lampiran 7. Hasil uji Duncan pada Hemiselulosa tanaman legum .....................42 Lampiran 8. Hasil uji Duncan pada Acid Detergent Fiber (ADF) tanaman
legum ..............................................................................................43 Lampiran 9. Hasil uji Duncan pada Dry Matter Digestibility (DMD)
tanaman legum...............................................................................44 Lampiran 10. Hasil uji Duncan pada Dry Matter Intake (DMI) tanaman
legum ..............................................................................................45 Lampiran 11. Hasil uji Duncan pada Relative Feed Value (RFV) tanaman
legum ..............................................................................................46
Lampiran 12. Hasil uji Duncan pada In Vitro True Digestibility (IVTD)
tanaman legum................................................................................47
1
BAB I
PENDAHULUAN
1.1. Latar Belakang
Hijauan merupakan kebutuhan mendasar bagi ternak ruminansia.
Ketersediaan hijauan sebagai sumber pakan sangat diperlukan untuk memenuhi
kebutuhan pakan ternak. Sebesar 60-70% produktivitas ternak ditentukan oleh
kualitas pakan, akan tetapi sumber pakan ternak ruminansia yang biasa digunakan
adalah pakan berkualitas rendah seperti hijauan rumput dengan kandungan protein
6-10% (Kushartono dan Nani, 2004). Ternak dapat memperoleh protein dari
rumput, akan tetapi umumnya tidak cukup untuk pertumbuhannya. Saat ini mulai
berkembang beberapa penelitian terbaru tentang hijauan sebagai pakan. Salah satu
tanaman yang dapat dijadikan bahan pakan adalah tanaman legum. Tanaman
legum dapat menyediakan tambahan protein karena kandungan protein dalam
daunnya jauh lebih tinggi daripada rumput. Daun legum juga menyediakan
mineral-mineral esensial dan vitamin bagi pertumbuhan ternak (Trisnadewi et al.,
2013).
Beberapa jenis legum tropis sering digunakan sebagai bahan pakan karena
memliki kandungan nutrisi yang baik. Tanaman legum yang sering digunakan
sebagai bahan pakan seperti Calliandra calothyrus, Acacia villosa, Leucaena
leucocephal dan Sesbania grandiflora memiliki nilai protein kasar masing-masing
28,6%, 31,1%, 30,6% dan 31,2% (Jayanegara et al., 2018). Legum juga
merupakan sumber vitamin A, oleh karenanya pemberian rumput yang
dikombinasikan dengan legum sangat disarankan karena disamping relatif murah
dan mudah dibudidayakan, daun legum dapat mengurangi kebutuhan akan
konsentrat yang harganya relatif mahal (Prawiradiputra, 2012).
Tanaman legum yang berada di Kawasan Nuklir Pasar Jumat belum
teridentifikasi, baik dari segi jenis maupun kandungan nutrisi. Legum yang telah
diidentifikasi dan dievaluasi kandungan nutrisinya, akan dilakukan proses
kecernaan secara in vitro menggunakan cairan rumen yang diambil dari hewan
sapi di Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI) Bogor. Penggunaan
instrumen DaisyII Incubator untuk analisis degradibilitas pakan belum banyak
digunakan. DaisyII Incubator memberikan nilai akurasi dalam memprediksikan
nilai degradibilitas pakan (Mabsjeesh, 2000). Oleh karena itu, penelitian mengenai
2
identifikasi jenis serta kandungan nutrisi (protein kasar, lemak kasar, serat kasar)
dan kecernaan legum perlu dilakukan. Hal ini penting bagi kebutuhan ternak
ruminansia di kandang terpadu, melihat perlu adanya kajian untuk mendapatkan
formulasi ransum yang tepat.
1.2. Rumusan Masalah
Rumusan masalah dalam penelitian ini adalah jenis legum apa saja yang
digunakan sebagai bahan pakan ternak di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat, serta jenis
mana yang memiliki nilai kandungan nutrisi dan nilai kecernaan secara in vitro
yang baik?
1.3. Tujuan Penelitian
Tujuan dari penelitian ini adalah menganalisis jenis legum di Kawasan
Nuklir Pasar Jumat yang digunakan sebagai pakan ternak, serta mendapatkan jenis
legum dengan nilai kandungan nutrisi dan nilai kecernaan in vitro yang baik.
1.4. Manfaat Penelitian
Manfaat dari penelitian ini adalah memudahkan peneliti untuk melakukan
penelitian selanjutnya, dan validasi akurasi data penelitian yang menggunakan
legum yang berada di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat, serta mengetahui formula
ransum yang tepat untuk dijadikan pakan di kandang terpadu BATAN.
3
1.5. Kerangka Berfikir
Gambar 1. Kerangka berpikir
Hijauan sebagai
bahan pakan
60-70%
produktivitas ternak
Rumput rendah
protein Legum tinggi protein
Legum di Kawasan
Nuklir Pasar Jumat
belum teridentifikasi
identifikasi jenis dan
kandungan nutrisi
Uji kecernaan secara in vitro
Data jenis, kandungan nutrisi, dan
nilai kecernaan legum di Kawasan
Nuklir Pasar Jumat
Formula ransum
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
2.1. Hijauan Pakan Ternak
Hijauan adalah semua bentuk bahan pakan berasal dari tanaman rumput atau
legum baik yang sudah dipotong maupun belum dipotong yang berasal dari lahan
dalam keadaan segar (Akoso, 1996). Hijauan yang digunakan sebagai pakan
biasanya dari bagian vegetatif tanamana yang berupa bagian hijauan meliputi
daun, batang, kemungkinan juga sedikit bercampur dengan bagian generatif
(Reksohardiprodjo, 1985).
Hijauan merupakan sumber pakan utama bagi ternak ruminansia dan
berfungsi tidak hanya sebagai pengenyang tetapi juga berfungsi sebagai sumber
nutrisi, yaitu protein, energi, vitamin dan mineral hijauan yang bernilai gizi tinggi
cukup memegang peranan penting karena dapat menyumbangkan zat pakan yang
lebih ekonomis dan berhasil guna bagi ternak (Herlinae, 2003). Setiana (2000)
melaporkan bahwa hijauan merupakan bagian penting dalam sistem produksi
peternakan terutama sebagai pakan ternak ruminansia, karena lebih dari 75%
pakannya berasal dari hijauan. Keberhasilan produksi suatu peternakan sangat
tergantung kepada kualitas pakan dan jenis ternak yang dipelihara, oleh karena itu
ketersediaan hijauan pakan sepanjang masa dan memilih hijauan yang berkualitas
unggul adalah sangat penting
Hijauan secara umum dapat dibagi atas dua golongan yaitu rumput
(Graminae), dan legum (Fabaceae) (Kamal, 1998). Perbedaan jenis hijauan antara
legum dan rumput secara umum adalah pada kandungan nutrisinya yaitu pada
kandungan serat kasar dan protein kasar.
2.2. Legum
Legum secara umum adalah termasuk tumbuhan semak dan pohon yang
dapat dijumpai di daerah tropik. Legum termasuk ke dalam suku Fabaceae
anggota dari bangsa Fabales yang dicirikan dengan buah bertipe polong
(Simpson, 2010 dalam APG IV, 2016). Suku ini terdiri atas 18.000 yang
tergolong ke dalam 650 marga diseluruh dunia (Langran et al., 2010 dalam
Irsyam dan Priyanti, 2016). Legum dibagi menjadi tiga kelompok, yaitu legum
yang tumbuh menjalar, legum yang tumbuh tegak berupa pohon, dan legum hasil
5
sisa tanaman pangan. Legum yang tumbuh menjalar digunakan sebagai penutup
tanah pada perkebunan, seperti sentro, kalopo dan kudzu. Legum yang tumbuh
tegak biasanya ditanam dipingiran kebun atau sebagai pagar hidup, seperti
lamtoro, gamal, dan kaliandra. Legum hasil sisa tanaman pangan merupakan hasil
usaha tani seperti kacang tanah dan kacang kedelai (Rukmana, 2005). Hijauan
legum baik perdu atau pohon mempunyai perakaran yang dalam (akar tunggang)
untuk mendapatkan air maupun nutrisi sehingga mempunyai kemampuan untuk
berfungsi sebagai tanaman penghijauan reklamasi daerah kritis. Beberapa jenis
legum pohon biasanya digunakan sebagai pagar hidup, atau sebagai tanaman
pelindung di perkebunan.
Legum yang sering digunakan sebagai bahan pakan ternak merupakan salah
satu kebesaran Allah SWT dalam menciptakan tumbuh-tumbuhan dan kebesaran-
Nya dalam setiap proses pertumbuhan. Dan sebagai tanda untuk terus melakukan
penelitian dari proses tumbuh pertamakali sampai tumbuhan tersebut berbuah.
Karena dalam setiap proses dan bagian dari tumbuhan tersebut tedapat manfaat
yang banyak. Allah SWT berfirman dalam Surat Al-An’am ayat 99:
ه و ل الذي و اء من أ نز اء السم جن ا م جن ا ش يء ك ل ن ب ات به ف أ خر منه ف أ خر
ضرا با منه نخرج خ اكبا ح ت ر من م ا من النخل و لعه ان ط نات د اني ة قنو ج ن و م
يت ون أ عن اب الز ان و م الر شت بها و ير م غ ت ش ابه و وا م ره إلى انظ ر ر إذ ا ث م ي نعه أ ثم إن و
ي ؤمن ون ل ق وم آلي ات ذ لك م في
“Dan Dialah yang menurunkan air hujan dari langit, lalu Kami tumbuhkan
dengan air itu segala macam tumbuh-tumbuhan maka Kami keluarkan dari
tumbuh-tumbuhan itu tanaman yang menghijau. Kami keluarkan dari tanaman
yang menghijau itu butir yang banyak, dan dari mayang korma mengurai tangkai-
tangkai yang menjulai, dan kebun-kebun anggur, dan (Kami keluarkan pula)
zaitun dan delima yang serupa dan yang tidak serupa. Perhatikanlah buahnya di
waktu pohonnya berbuah dan (perhatikan pulalah) kematangannya.
Sesungguhnya pada yang demikian itu ada tanda-tanda (kekuasaan Allah) bagi
orang-orang yang beriman”
Legum memiliki kandungan protein yang lebih tinggi dibandingkan
rumput. Kandungan protein pada legum lebih dari 20%, sedangkan pada rumput
6
kurang dari 10%. Selain kandungan protein yang tinggi, legum mengandung
mineral seperti kalsium, fosfor, magnesium, tembaga dan kobal (Sudarmono dan
Sugeng, 2008).
Penggunaan hijauan legum pohon sebagai sumber protein pada ransum
mempunyai bebrapa keuntungan, antara lain: dapat menyediakan protein cukup
tinggi, murah, mudah didapat dan pasokan terjamin sepanjang tahun,
mengandung sejumlah tannin sehingga dapat mencegah kembung dan
melindungi dari degradasi protein yang berlebihan oleh mikroba rumen, memiliki
kemampuan adaptasi yang baik pada berbagai jenis lahan, dan memiliki banyak
kegunaan lainnya (Manurung, 1996).
2.3. Ruminansia
Ruminansia merupakan hewan ternak yang termasuk ke dalam golongan
poligastrik jika dilihat dari saluran pencernaannya. Hewan ruminansia terbagi
menjadi dua, yaitu ruminansia besar seperti sapi, kerbau, bison, dan ruminansia
kecil, seperti kambing, rusa, dan domba. Ruminansia juga memamah pakan yang
telah dicerna sehingga disebut hewan memamah biak (Hakim et al., 2010).
Ruminansia adalah mamalia berkuku genap seperti sapi, kerbau, domba,
kambing, rusa, dan kijang yang merupakan ordo Artyodactila. Nama ruminansia
berasal dari bahasa latin ruminare yang artinya mengunyah kembali atau
memamah biak sehingga dalam bahasa Indonesia dikenal sebagai hewan
memamah biak (Hakim et al., 2010). Ruminsia merupakan ternak masa depan
yang mampu meningkatkan kesejahteraan manuisa karena hewan ini dapat
memanfaatkan bahan yang tidak dimanfaatkan manusia, seperti limbah pertanian
yang tidak dimakan oleh manusia dapat dikonversikan ke dalam makanan berniali
gizi yang tinggi dan dapat dimakan oleh ruminansia.
Produktivitas ternak ruminansia sebagian besar ditentukan oleh kualitas dan
kuantitas pakan yang dikonsumsi. Kualitas pakan mencakup pengertian
kandungan berbagai zat gizi, seperti energi, protein, mineral, vitamin serta
kandungan zat-zat anti nutrisi sepertitannin, lignin dan senyawa-senyawa
sekunder lain. Interaksi antar komponen zat gizi maupun zat antinutrisi perlu
mendapatkan perhatian dalam upayamenyusun formula pakan yang efisien dan
memenuhi kebutuhan ternak untuk berproduksi tinggi (Haryanto, 2012). Berikut
merupakan tabel kebutuhan nutrisi ruminansia domba untuk pertumbuhannya:
7
Tabel 1. Kebutuhan nutrisi untuk pertumbuhan beberapa ruminansia (Jayanegara
et al., 2017).
Keterangan: TDN = Total Digestible Nutrient
2.4. Sistem Pencernaan Ruminansia
Hewan ruminansia merupakan hewan pemamah biak yang mempunyai
lambung ganda dan terdiri dari empat bagian, yaitu rumen, retikulum, omasum,
abomasum. Proses pencernaan ruminansia dibagi menjadi tiga tahapan, yaitu
pencernaan secara mekanis (di dalam mulut), fermentatif (oleh mikroba dalam
rumen) dan kimiawi (oleh enzim-enzim pencernaan di abomasum dan usus)
(Rianto dan Purbowanti, 2009).
Pencernaan di dalam mulut meliputi prehensi (pengambilan pakan dengan
lidah), mastikasi (pengunyahan), dan deglutisi (Frandson, 1996). Pakan dalam
mulut akan di tarik oleh lidah dan dihancurkan menggunakan gigi. Selain itu,
proses pencernaan di dalam mulut dibantu saliva yang disekresikan dari glandula
parotid, glandula mandibular, dan glandula sublilngual. Saliva dalam mulut
ruminansia memiliki peran penting dalam proses pencernaan di rumen, karena
mengandung urea, fosfor (P), dan natrium (Na) yang dapat dimanfaatkan oleh
Berat
(kg)
PBB
(g/hari)
Lokal (g/hari) Priangan (g/hari) Fat Tailed (g/hari)
BK TDN PK BK TDN PK BK TDN PK
10 0 324 152 35 324 159 36 324 155 36
50 433 289 60 433 202 51 433 216 52
100 544 427 85 544 245 66 544 277 69
150 654 564 110 654 288 81 654 338 86
15 0 439 206 48 439 215 49 439 210 48
50 549 343 73 549 258 64 549 271 65
100 659 481 97 659 301 79 659 332 82
150 769 618 122 769 344 94 769 393 99
20 0 545 255 59 545 267 61 545 260 60
50 655 393 84 655 310 76 655 321 77
100 765 530 109 765 353 91 765 382 93
150 875 668 134 875 396 105 875 443 110
25 0 644 302 70 644 315 72 644 307 71
50 754 439 95 754 358 87 754 368 88
100 864 577 120 864 401 102 864 429 104
150 974 714 145 974 444 117 974 490 121
30 0 738 346 80 738 361 83 738 353 81
50 848 484 105 848 404 98 848 414 98
100 958 621 130 958 447 112 958 475 115
150 1068 759 155 1068 490 127 1068 536 132
8
mikroba dalam rumen. Saliva juga mengandung senyawa alkali yang berikatan
dengan senyawa karbon yaitu buffer bicarbonate, yang sangat berguna dalam
menjaga pH rumen agar tidak turun terlalu tajam (Hungate, 1966). Pakan yang
telah melalui proses mastikasi dan pencampuran dengan saliva akan mengalami
proses deglutisi melalui esofagus menuju rumen. Esofagus ruminansia bertugas
mengalirkan pakan dari mulut ke rumen juga mengalirkan pakan dari rumen ke
mulut untuk mengalami proses re-mastikasi (Frandson, 1996).
Rumen merupakan kantong yang besar sebagai tempat penampungan dan
pencampuran bahan pakan untuk proses fermentasi oleh mikroorganisme. Fungsi
utama rumen adalah tempat untuk mencerna serat kasar dan zat-zat pakan lainnya
dengan bantuan mikroba (Rianto dan Purbowati, 2009). Pakan dalam rumen akan
dicerna oleh mikroorganisme di dalam nya, seperti bakteri, protozoa dan fungi
dalam jumlah relatif sedikit. Aktifitas mikroorganisme dalam rumen dapat
berlangsung dengan baik pada pH 6,5-6,8 (Parish et al., 2009). Temperatur yang
ada di dalam rumen berkisar antara 38-42oC (Rahmadi et al., 2003). Pakan yang
telah dicerna di dalam rumen akan di lanjutkan ke omasum melalui retikulum.
Omasum merupakan suatu organ seferis yang terisi oleh laminae muscular
yang turun dari bagian dorsum atau bagian atap. Membran mukosa yang menutupi
laminae, ditebar dengan papillae yang pendek dan tumpul yang akan menggiling
hijauan atau serat-serat sebelum masuk ke abomasum (Frandson, 1996). Fungsi
omasum adalah untuk digesti, menyaring partkel pakan yang besar, absorpsi dan
mengatur arus ingesta ke abomasum (Prihartini, 2013).
Abomasum atau perut sejati pada ruminansia berfungsi seperti perut pada
ternak non-ruminansia. Fungsi lain abomasum adalah mengatur pencernaan secara
enzimatis dan kimiawi (Prihartini, 2013). Dinding abomasum memiliki
kelenjarkelenjar pencernaan yang menghasilkan cairan lambung berupa
pepsinogen, garam anorganik, mukosa, asam hidroklorat (HCl) dan faktor
interistik yang penting untuk absorpsi vitamin B12 secara efisien. Pepsinogen
merupakan bentuk inaktif dari enzim pepsin yang nantinya akan diaktifkan dengan
kondisi asam di dalam lambung. Enzim pepsin bertugas untuk menghidrolisis
protein menjadi polipeptida dan sedikit asam amino. Pakan yang telah dicerna di
abomasum akan memasuki usus halus (Rianto dan Purbowati, 2009).
9
Usus halus merupakan organ pencernaan yang memiliki fungsi penyerapan
zat-zat makanan. Usus halus terdiri atas 3 bagian, yaitu duodenum, jejenum dan
ileum (Frandson, 1996). Zat-zat makanan seperti karbohidrat, protein dan lemak
akan dipecah oleh enzim-enzim di dalam usus halus menjadi senyawa lebih
sederhana sehingga mudah diserap oleh dinding usus halus (Rianto dan Purbowati,
2009). Sisa hasil pencernaan dari usus halus akan dilanjutkan ke usus besar akan
dicerna kembali dengan bantuan enzim dan mikroorganisme di caecum sehingga
menghasilkan vitamin-vitamin B yang dapat diserap tubuh ternak. Materi yang
tidak dapat dicerna di usus besar akan dikeluarkan berupa feses melaui rektum
(Prihartini, 2013).
Gambar 2. Proses pencernaan pada ruminansia (Campbell et al., 2008)
2.5. Uji Kecernaan In Vitro (Daisy Ankom)
McDonald et al. (2002) menyatakan bahwa kecernaan suatu pakan
didefinisikan sebagai bagian dari pakan yang tidak diekskresikan melalui feses
dan diasumsikan bagian tersebut diserap oleh hewan. Biasanya ini dinyatakan
berdasarkan bahan kering (BK) dan apabila dinyatakan dalam persentase maka
disebut koefisien cerna (Tillman et al., 1991). Nilai kecernaan pakan ternak dapat
dilakukan dengan metode in vitro. Kecernaan secara in vitro dipengaruhi oleh
pencampuran pakan, cairan rumen dan inokulan, pH kondisi fermentasi,
pengaturan suhu fermentasi, lamanya waktu inkubasi, ukuran partikel sampel dan
larutan penyangga. Teknik kecernaan in vitro memiliki keuntungan cepat dan
10
murah. Metode in vitro juga dapat digunakan untuk mengetahui konsentrasi
produk akhir fermentasi. Selain teknik in vitro memiliki lebih efisien
dibandingkan dengan teknik in vivo yang memiliki keterbatasan dan sulit
diaplikasikan ketika ketersediaan pakan yang akan diuji terbatas jumlahnya (Baan
et al., 2004).
Metode in vitro sebaiknya dilakukan terlebih dahulu sebelum memberikan
pakan pada ternak. Hungate (1966) menyatakan terdapat hubungan positif antara
kecernaan pakan in vitro dan in vivo sehingga sebelum melakukan uji langsung
kepada ternak, uji in vitro dapat dilakukan terlebih dahulu untuk melihat kualitas
kecernaan pakan dan pengaruh pakan pada kondisi rumen. Uji kecernaan secara in
vitro sudah biasa digunakan untuk mengevaluasi mutu nutrien bahan pakan, untuk
mendukung data analisis kimia dari bahan pakan.
2.6. Nutrisi Ruminansia
Nutrisi adalah substansi organik yang dibutuhkan organisme untuk fungsi
normal dari sistem tubuh, pertumbuhan, dan pemeliharaan kesehatan. Nutrisi
didapatkan dari makanan dan cairan yang selanjutnya diasimilasi oleh tubuh.
Nutrisi yang dibutuhkan oleh hewan ruminansia ada yang berupa anorganik dan
organik. Nutrisi berupa anorganik seperti air, udara dan mineral. Sedangkan
nutrisi organik berupa karbohidrat, lemak kasar, protein kasar dan vitamin
(Tillman et al., 1991).
Karbohidrat adalah senyawa yang terbentuk dari molekul karbon, hidrogen
dan oksigen. Karbohidrat terdiri atas zat gula sederhana atau monosakrida yang
memiliki atom karbon ataun enam atom karbon dan zat gula kompleks atau
berupa polisakarida yang terdiri atas polimer dari monosakarida. Fungsi utama
karbohidrat adalah penghasil energi didalam tubuh. (Tillman et al., 1991). Serat
kasar termasuk kedalam karbohidrat yang didalam nya termasuk NDF dan ADF
sebagai zat bahan pembentuk dinding sel tanaman, yang termasuk golongan ini
adalah lignin, selulosa, hemiselulosa, dan pentosan-pentosan. Serat kasar
merupakan bahan organik yang tidak larut dalam asam alkali lemah serta tidak
dapat dicerna oleh enzim dari alat pencernaan. Serat kasar memiliki peranan untuk
mengisi dan menjaga upaya alat pencernaan bekerja baik serta mendorong
kelenjar pencernaan dalam menghasilkan enzim (Kanisius, 1983).
11
Seperti hal nya karbohidrat, protein kasar adalah nama kumpulan dari dua
puluh lebih asam amino, dan tiap asam amino mempunyai fungsi khusus dalam
metabolisme. protein adalah senyawa organik kompleks yang mempunyai berat
molekul tinggi, seperti halnya karbohidrat dan lipida. Protein mengandung unsur-
unsur karbon, hidrogen, dan oksigen, tetapi sebagai tambahannya semua protein
mengandung nitrogen (Tillman et al., 1991). Selain itu protein dinyatakan esensial
bagi kehidupan karena zat tersebut meupakan protoplasma aktif dalam sel hidup.
Beberapa fungsi protein dalam tubuh termasuk yaitu memperbaiki jaringan,
pertumbuhan jaringan baru, metabolisme untuk energi, metabolisme kedalam zat-
zat vital dalam fungsi tubuh, enzim–enzim yang esensial bagi fungsi yang nomal
dan hormon–hormon bagi tubuh (Anggorodi, 1994).
Ekstrak eter merupakan istilah yang dipakai untuk senyawa yang diperoleh
dari ekstraksi bahan makan menggunakan pelarut lemak, yang biasanya adalah
eter. Sehingga dapat dikatakan esktrak eter adalah nama umum yang dipakai
untuk lemak atau lipida. Ekstrak eter dalam bahan makanan ternak yang berasal
dari hewan biasanya terdiri dari gliserol dan tiga asam lemak, yang biasa disebut
lemak. Namun, bahan makanan ternak yang berasal dari tanaman, sterol, lignin
dan berbagai produk seperti vitamin A, vitamin D, karotin seringkali menyusun
lebih dari 50% lemak makanan (Tillman et al., 1991).
12
BAB III
METODE PENELITIAN
3.1. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Januari sampai Maret 2019 di
Laboratorium Nutrisi Ternak, dan seluruh area Pusat Aplikasi Isotop dan Radiasi,
Badan Tenaga Nuklir Nasional (PAIR-BATAN), Pasar Jumat, Jakarta Selatan.
3.2. Alat dan Bahan
Alat yang digunakan pada penelitian ini adalah gunting dahan Tasco, koran,
plastik sampel, timbangan analitik Fujitsu kapasitas 210 mg, cawan porselen, oven
Fisher suhu 100℃, oven Heraeus suhu 60℃, tanur Pyrolabo suhu 600℃, shoxlet
Labconco, magnetic stirrer, desikator, Fiber Analyzer Opsis Liquid Line, Analytic
Titro Line 5000, gelas ukur, hot plate, centrifuge, grinder Fritsch, dan gelas piala
ukuran 100 ml.
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah, sampel pakan legum,
cairan rumen sapi jantan berfistula dari kandang terpadu Laboratorium Peternakan
Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI), larutan methanol dan ether 2:1,
larutan aseton, Neutral Detergent Solution (NDS) yang terdiri dari NDS
konsentrat 119,96 g, sodium sulfite 40 g, glycol 20 ml, H2O 2000 ml, enzim alfa
amylase 8 ml, Acid Detergent Solution (ADS) terdiri dari ADS powder 40 g,
H2SO4 55,6 ml, H2O 1945 ml, KH2PO4 10 g, MgSO4∙7H2O 0,5 g, CaCl∙2H2O 0,1
g, Urea 0,5 g, Na2CO3 15 g, Na2S∙9H2O 1 g.
3.3. Cara Kerja
3.3.1. Pengambilan Sampel dan Identifikasi Legum
Pengambilang sampel legum dilakukan di daerah Kawasan Nuklir, Pasar
Jumat. Pengambilan sampel menggunakan metode purposive sampling dengan
mendatangi tempat tumbuhnya legum yang diberi tahu oleh petugas kandang
terpadu PAIR BATAN, Pasar Jumat. Sampel diambil terlebih dahulu diidentifikasi
untuk menentukan jenisnya. Identifikasi dilakukan dengan melihat bagian
generatif dan vegetatif menggunakan buku Weeds of Rice in Indonesia (Soerjani et
al., 1986). Sampel yang telah diidentifikasi diambil bagian tangkai, daun, bunga
dan akar sebanyak 1kg untuk dilakukan pengujian proksimat dan kecernaan.
13
3.3.2. Persiapan Sampel
Persiapan sampel dilakukan dengan tujuan untuk membuat bahan pakan
agar sesuai dengan ukuran sampel untuk pengujian selanjutnya, yakni sampel
berbentuk serbuk dengan ukuran 1 mm. Bahan pakan yang digunakan yakni
berbagai jenis legum yang telah didapat dari hasil identifikasi. Sampel legum yang
telah diambil dimasukkan ke dalam koran lalu dimasukkan ke dalam oven dengan
suhu 60℃ selama 48 jam. Kemudian dihaluskan menggunakan grinder. Sampel
legum yang telah dihaluskan, dibungkus dengan plastik untuk kemudian dilakukan
analisis proksimat dan kecernaan in vitro.
3.3.3. Pengukuran Kandungan Nutrisi Legum
Pengukuran kandungan nutrisi bertujuan untuk mengetahui kualitas
sampel legum. Analisis kandungan nutrisi menggunakan analisis proksimat
berdasarkan Association of Analytical Chemist (AOAC, 2005) untuk pengukuran
Bahan Kering (BK), Bahan Organik (BO), Protein Kasar (PK), Lemak Kasar
(LK), dan analisis serat berdasarkan analisis Van Soest (1980). Profil serat yang
diukur adalah kandungan Neutral Detergent Fiber (NDF) dan Acid Detergent
Fiber (ADF). Pengukuran NDF dan ADF dalam penelitian ini menggunakan alat
Fiber Analyzer ANKOM200.
3.3.4. Pengukuran Bahan Kering dan Bahan Organik (AOAC, 2005)
Pengukuran BK dan BO bertujuan menjadi dasar analisis kandungan nutrisi
lain yang digunakan sebagai parameter pada penelitian ini. Cawan porselen
dipanaskan didalam oven 100oC selama 1 hari dan dimasukkan ke dalam desikator
selama 45 menit. Sampel ditimbang di neraca analitik dengan mengisi sampel
yang telah dipotong kecil ke dalam cawan porselen yang telah disiapkan
sebelumnya sebanyak 1 g. Cawan yang telah berisi sampel dikeringkan didalam
oven 100oC selama 1 hari. Lalu dimasukkan desikator selama 45 menit dan
ditimbang kembali beratnya. Sampel yang telah ditimbang, dimasukkan kedalam
tanur 600oC selama 1 hari, lalu dimasukkan ke dalam desikator selama 45 menit
dan ditimbang beratnya. Prosedur tersebut untuk mengetahui BK dan BO bahan
segar.
Sampel yang sudah disiapkan sebelumnya dimasukkan dalam kantung koran
dan dikeringkan dalam oven 60oC ditimbang 0,5 g dicawan porselen yang juga
14
telah dipanaskan sebelumnya. Kemudian dimasukkan ke dalam oven 100oC
selama 1 hari. Sampel yang telah kering dimasukkan ke dalam desikator dalam
waktu 45 menit kemudian ditimbang berat nya. Kemudian dimasukkan kembali
dalam mesin tanur 600oC selama 1 hari, lalu dimasukkan ke dalam desikator
selama 45 menit dan ditimbang berat nya. Kadar BK dan BO dihitung
menggunakan rumus:
Keterangan:
B0 : berat cawan kosong (g)
Bt100oC : berat cawan setelah dari oven 100oC (g)
Bt600oC : berat cawan setelah dari tanur 600oC (g)
3.3.5. Pengukuran Lemak Kasar (AOAC, 2005)
Kertas saring ditimbang menggunakan neraca analitik lalu ditambahkan
sampel seberat 0,5 g. Kertas saring yang telah diisi sampel dilipat dan dipanaskan
didalam oven 100oC selama 1 hari. Kemudian sampel dimasukkan ke dalam
soxhlet. Soxhlet yang telah diisi sampel dihubungkan dengan labu didih dan diisi
dengan pelarut Chloroform ditambah Etanol 2:1. Soxhlet dihibungkan dengan
kondensor dan keran air dinyalakan. Pemanas dinyalakan selama 8 jam. Setelah 8
jam pemanas dimatikan dan aliran air ditutup. Sampel dalam soxhlet diambil dan
diletakkan di cawan petri untuk dipanaskan didalam oven 100oC selama 1 hari.
Lalu diukur berat sampel tersebut.
Keterangan:
A : berat sampel (g)
B : berat kertas saring (g)
C : berat kertas saring + sampel setelah dioven 100oC
15
3.3.6. Pengukuran Protein Kasar (AOAC, 2005)
Metode Kjeldhal digunakan untuk mengukur kadar protein kasar pada
sampel. Sampel legum dimasukkan ke dalam labu Kjeldhal sebanyak 1 g,
ditambahkan 1 g selenium mix dan 5 ml H2SO4 pekat. Sampel didestruksi selama 2
jam hingga larutan berubah menjadi jernih. Labu Kjeldhal dipasangkan pada
rangkaian alat Protein Analyzer OpsisLine dan ditambahkan 10 ml NaOH 40%.
Hasil destilasi ditampung dalam Erlenmeyer yang sebelumnya telah diisi dengan 2
metyl red. Proses destilasi selama 5 menit dengan hasil destilasi berwarna ungu.
Destilat yang berwarna ungu kemudian dititrasi dengan HCl 0,2 N pada alat
Analytic TitroLine 5000, hingga terbentuk warna merah muda yang tidak hilang
selama 30 detik. Kadar protein dihitung dengan rumus:
%𝑁𝑖𝑡𝑟𝑜𝑔𝑒𝑛 = (𝑣𝑜𝑙 𝑡𝑖𝑡𝑟𝑎𝑠𝑖)𝑥 0,2 𝑥 14
𝐵𝑒𝑟𝑎𝑡 𝑆𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑥 100%
%𝑃𝑟𝑜𝑡𝑒𝑖𝑛 = %𝑁𝑖𝑡𝑟𝑜𝑔𝑒𝑛 𝑥 6,25
3.3.7. Pengukuran NDF dan ADF (Van Soest, 1980)
Pengukuran NDF diawali dengan pembuatan reagent Neutral Detergent
Solution (NDS). Konsentrat NDS ditimbang dalam gelas piala sebanyak 119,96 g,
glycol 20 ml, sodium sulphite 40 g, bahan dilarutkan dalam akuades 2 L
menggunakan gelas piala ukuran 100 ml. Larutan dihomogenkan sampai larutan
jernih.
Filter bag ditimbang (W1), lalu masing-masing sampel legum diambil
sebanyak 0,5 g (W2), dan dimasukkan ke dalam filter bag lalu dipress. Filter bag
sebanyak 25 terdiri dari 24 sampel yang diukur, satu filter bag kosong sebagai
blanko (C1). Filter bag dimasukkan ke dalam Fiber Analyzer ANKOM200,
kemudian dituangkan reagent NDS dan dijalankan selama 75 menit. Setelah itu,
keran pembuangan dibuka agar reagent NDS terbuang. Sampel dibilas dengan air
panas dengan suhu 70℃ yang telah dicampur dengan enzim α amylase sebanyak 4
ml selama 5 menit, dan dilakukan sebanyak dua kali pengulangan. Pembilasan
terakhir hanya menggunakan air panas saja selama 50 menit. Sampel dikeluarkan
dan direndam dalam acetone selama 3 menit, lalu dipanaskan ke dalam oven pada
suhu 100℃ selama 2 jam. Setelah itu, sampel dimasukkan ke dalam silica gel bag
16
selama 30 menit lalu sampel ditimbang. Nilai NDF dapat dihitung menggunakan
rumus:
Keterangan:
W1 : Berat kantung saring
W2 : Berat sampel
W3 : Berat kering serat setelah NDF
C1 : Blanko setelah NDF
Pengukuran ADF diawali dengan pembuatan reagent Acid Detergent
Solution (ADS). H2SO4 55,6 ml dilarutkan menggunakan akuades 2 L dalam gelas
piala ukuran 100 ml, lalu ditambahkan ADS powder yang telah ditimbang
sebanyak 40 g. Larutan dihomogenkan sampai larutan jernih.
Filter bag ditimbang (W1), lalu masing-masing sampel legum diambil
sebanyak 0,5 g (W2), dan dimasukkan ke dalam filter bag lalu dipress. Filter bag
sebanyak 25 terdiri dari 24 sampel yang diukur, satu filter bag kosong sebagai
blanko (C1). Filter bag dimasukkan ke dalam Fiber Analyzer ANKOM200,
kemudian dituangkan reagent NDS dan dijalankan selama 60 menit. Setelah itu,
keran pembuangan dibuka agar reagent NDS terbuang. Sampel dibilas dengan air
panas dengan suhu 70℃ selama 5 menit, dan dilakukan sebanyak tiga kali
pengulangan. Sampel dikeluarkan dan direndam dalam acetone selama 3 menit,
lalu dipanaskan ke dalam oven pada suhu 100℃ selama 2 jam. Setelah itu, sampel
dimasukkan ke dalam silica gel bag selama 30 menit lalu sampel ditimbang. Nilai
ADF dapat dihitung menggunakan rumus:
Keterangan:
W1 : Berat kantung saring
W2 : Berat sampel
W3 : Berat kering serat setelah ekstraksi
C1 : Blanko setelah ADF
3.3.8. Pengambilan Ciran Rumen
Uji in vitro dilakukan dengan mengambil cairan rumen terlebih dahulu dari
hewan ruminansia yang berfistula. Cairan rumen dalam penelitian ini
menggunakan hewan sapi jantan yang belum diberi pakan. Cairan rumen diambil
17
sebanyak 2 L dimasukkan ke dalam toples yang telah disiapkan. Toples berisi
cairan rumen di masukkan ke dalam cool box berisi air panas dengan suhu 39℃.
Cairan rumen dalam toples dituangkan ke dalam blender dan diberi CO2 dengan
kondisi mesin dinyalakan dengan kecepatan tinggi selama 30 detik. Hal ini
bertujuan untuk mengeluarkan mikroba yang melekat dan memastikan populasi
mikroba yang representatif untuk fermentasi in vitro. Cairan rumen dalam blender
dituangkan melewati 4 kain tipis ke dalam labu erlenmeyer 5 L yang diletakkan di
dalam bak berisi air panas 39℃.
3.3.9. Uji In Vitro dengan DaisyII Incubator ANKOM (Ankom Procedure)
Filter bag ditimbang (W1), lalu masing-masing sampel legum diambil
sebanyak 0,5 g (W2) dan dimasukkan ke dalam filter bag kosong sebagai blanko
(C1). Filter bag dimasukkan ke dalam tabung pencernaan DaisyII Incubator
ANKOM. Pemanasan dilakukan pada kedua buffer A dan B hingga suhu 39℃.
Dalam wadah terpisah 266 ml larutan B ditambahkan ke dalam 1330 ml larutan A
dengan rasio 1:5. Jumlah yang tepat dari A ke B harus disesuaikan untuk
mendapatkan pH akhir 6,8 pada suhu 39℃. Campuran buffer A dan B sebanyak
1660 ml ditambahkan ke dalam masing-masing tabung pencernaan. Tabung
pencernaan dengan sampel dan larutan buffer ditempatkan ke DaisyII Incubator
ANKOM, lalu saklar panas dan agitasi dihidupkan. Suhu didalam tabung
dibiarkan selama 20-30 menit agar seimbang.
Tahap selanjutnya dilakukan inkubasi. Tabung pencernaan diambil dari
DaisyII Incubator ANKOM, lalu ditambahkan 400 ml inokulum ke dalam larutan
buffer dan sampel. Tabung pencernaan diisi dengan gas CO2 selama 30 detik dan
ditutup. Lalu diinkubasi selama 48 jam dan dibuang cairan rumen dari tabung
pencernaan. Sampel dipisahkan dan dibilas dengan air bersih. Setelah kantung
sampel dibilas, selanjutnya dilakukan prosedur NDF. Nilai in vitro dihitung
menggunakan rumus:
18
Keterangan:
W1 : Berat kantung saring
W2 : Berat sampel
W3 : Berat akhir setelah in vitro dan NDF
C1 : Blanko
Nilai pakan relatif atau Relative Feed Value (RFV) didapatkan dari hasil uji
nutrisi Neutral Detergent Fiber (NDF) dan Acid Detergent Fiber (ADF) pada
sampel. Indeks RFV dapat dihitung menggunakan rumus:
𝐷𝑟𝑦 𝑀𝑎𝑡𝑡𝑒𝑟 𝐷𝑖𝑔𝑒𝑠𝑖𝑏𝑖𝑙𝑡𝑦 (𝐷𝑀𝐷, %) = 88,9 − (𝐴𝐷𝐹%𝑥0,779)
𝐷𝑟𝑦 𝑀𝑎𝑡𝑡𝑒𝑟 𝐼𝑛𝑡𝑎𝑘𝑒 (𝐷𝑀𝐼, 𝑙𝑖𝑣𝑒 𝑤𝑒𝑖𝑔ℎ𝑡, %) =120
𝑁𝐷𝐹%
𝑅𝑒𝑙𝑎𝑡𝑖𝑣𝑒 𝐹𝑒𝑒𝑑 𝑉𝑎𝑙𝑢𝑒 (𝑅𝐹𝑉, %) =𝐷𝑀𝐷𝑥𝐷𝑀𝐼
1,29
Berdasarkan standar penilaian mutu yang diterapkan oleh Hay Marketing
Task Force of American and Grassland Council, nilai RFV berdasarkan prime
>151, 1 (premium) 151-125, 2 (good) 124-103, 3 (fair) 102-87, 4 (poor) 86-75, 5
(reject) <75 (Rohweder et al., 1978).
3.4. Analisis Data
Data yang didapat (jenis legum, nutrisi pakan dan kecernaan in vitro)
dianalisis dengan one way analysis of variance (ANOVA) dan diuji
menggunakan Duncan Multiple Range Test (DMRT) untuk parameter analisis
prokismat dan kecernaan in vitro pada software SPSS 20.0.
19
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Hasil Pengambilan Sampel Legum di Kawasan Nuklir Pasar Jumat
Hasil pengamatan sifat dan ciri tanah di lokasi menunjukkan bahwa sifat
kimia tanah Kawasan Nuklir, Pasar Jumat adalah latosol dengan tekstur pasir
(3%), debu (57%), liat (40%), dan pH agak masam (5,6); kandungan P2O5 sangat
tinggi (61 mg/100 g tanah), K2O sangat tinggi (11 mg/100 g tanah), sebaliknya
kandungan bahan organik sangat rendah (C-Organik 1,1% dan N-total 0,16%)
(Flatian, 2017).
Karakteristik lingkungan di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat mampu
menunjang pertumbuhan semua jenis legum dengan baik. Jenis tanaman legum
memiliki bintil akar yang dapat menambat nitrogen (N) bebas dengan bantuan
bakteri rhizobium. Hal ini menguntungkan, baik dalam akumulasi nitrogen (N)
dalam tanah maupun peningkatan kandungan nitrogen (N) bagi pertumbuhan
tanaman. Selain itu, tanaman legum baik digunakan sebagai bahan organik karena
memiliki nisbah C/N yang rendah jika dibandingkan dengan tanaman non legum
dengan nisbah C/N yang jauh lebih tinggi, yang menyebabkan proses
pendekomposisian lebih lama dan proses mineralisasi hara lebih lambata dari
tanaman legum (Isrun, 2010).
Hasil identifikasi terhadap tanaman yang meliputi karakteristik akar, batang,
daun dan buah, didapatkan 5 jenis legum yang digunakan sebagai bahan pakan
ternak.
Tabel 2. Hasil identifikasi tanaman legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat
Jenis Nama Lokal Habitus
Arachis hypogea
Gliricida sepium
Indigofera zollingeriana
Leucaena leucocephala
Vigna radiata
Kacang tanah
Gamal
Nila
Lamtoro
Kacang hijau
Terna
Pohon
Pohon
Pohon
Terna
Tanaman legum yang biasa digunakan sebagai pakan ternak memiliki 2
macam habitus yaitu pohon dan terna. Pohon adalah kelompok tumbuhan berkayu
yang saat dewasa (masak fisiologis) memiliki ukuran batang yang besar dengan
tinggi lebih dari 5 m. Terna adalah tumbuhan tidak berkayu yang yang tingginya
20
kurang dari 1 m, atau yang berdaur hidup pendek, dan pada umumnya hidup
berumpun (Indriyanto, 2012).
1) Arachis hypogea
Tanaman A. hypogea atau yang disebut kacang tanah dalam penelitian ini
merupakan tanaman semak yang sengaja di tanam, sehingga hanya dapat ditemui
pada waktu dan tempat tertentu. Tanaman ini dapat tumbuh demgam baik di
lahan Kawasan Nuklir, BATAN, Pasar Jumat. Sumarno (2003) tempat dengan
ketinggian maksimal 1000 mdpl, curah hujan antara 800-1300 mm per tahun,
suhu optimal antara 28-32℃, dan derajat keasaman tanah antara 6-6,5.
Gambar 3. Ciri-ciri morfologi A. hypogea. A. Tipe percabangan lateral tegak; B.
Susunan daun majemuk menjari genap (tetrafoilet); C. Bentuk bunga.
(Sumber: dokumentasi pribadi).
Tanaman A. hypogea memiliki tipe pertumbuhan menjalar. Panjang batang
berkisar antara 30-50 cm. Susunan daun majemuk menjari genap, jumlah helai
daun empat dengan susunan melingkar. Bentuk daun bulat, elips dan agak lancip.
Permukaan daun ada berbulu dan ada yang tidak berbulu. Bunga pada tanaman
kacang tanah berwarna kuning dan bertangkai panjang 3-5 cm yang tumbuh dari
ketiak daun. Buah berbentuk polong terdapat dalam tanah berisi 2-3 biji per
21
polong. Polong yang sudah tua ditandai dengan lapisan warna hitam pada kulit
polong bagian dalam. Morfologi dari tanaman A. hypogea dalam penelitian ini
tidak jauh berbeda dengan dengan penelitian Zulchi dan Puad (2017).
2) Gliricidia sepium
Tanaman G. sepium banyak ditemukan diberbagai tempat di Kawasan
Nuklir, Pasar Jumat. Tanaman dengan usia muda lebih banyak ditemukan
dibandingkan tanaman G. sepium yang sudah dewasa dan cukup tinggi, hal ini
karena adanya penebangan pada beberapa tanaman G. sepium yang sudah sangat
tinggi. Tanaman ini beradaptasi dengan baik sehingga dapat tumbuh di lahan
Kawasan Nuklir, Pasar Jumat. Tilman et al. (2005) melaporkan bahwa G. sepium
dapat tumbuh pada lingkungan dengan temperatur suhu antara 20-30℃ dengan
ketinggian tempat antara 750-1200 mdpl (Tilman et al., 2005).
Gambar 4. Ciri-ciri morfologi G. sepium. A. tangkai anak daun sejajar; B.
Susunan daun majemuk menyirip ganjil; C. Helai daun. (Sumber:
dokumentasi pribadi).
22
Tanaman G. sepium dalam penelitian ini memiliki tinggi hingga 5 m.
Batang berukuran kecil hingga sedang, sering bercabang dari dasar. Susunan daun
menyirip ganjil, pinna 7-11 dengan panjang sekitar 22-30 cm, pinnula 15-23 per
pinna, panjang daun 2-5 cm, dan lebar daun 1-3 cm. Buah berbentuk polong. Biji
3-8 per polong. Mofologi tanaman G. sepium dalam penelitian ini tidak jauh
berbeda dengan penelitian Setiawati (2008).
Sasmita (2013) menyatakan dalam penelitiannya bahwa kandungan protein
dan bahan kering pada G. sepium mudah didegradasi. Selain itu penambahan 30%
G. sepium dalam ransum dapat meningkatkan konsumsi bahan kering sebesar
20,63%, konsumsi serat kasar sebesar 1,54%, dan konsumsi protein sebesar
87,38% (Aprilia, 2010).
3) Indigofera zollingeriana
Indigofera zollingeriana di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat ditemukan subur
namun lebih sedikit dibandingkan tanaman legum lainnya, dan tidak tersebar
pada banyak tempat. Lahan di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat tergolong baik untuk
pertumbuhan tanaman ini. Prawiradiputra et al. (2012). Tanaman I. zollingeriana
atau yang biasa disebut nila dapat tumbuh dari 0 - 1,650 mdpl dan tumbuh subur
ditanah gembur yang kaya akan nutrisi. Tanaman ini dapat hidup pada iklim
panas dan lembab dengan curah hujan tidak kurang dari 1.750 mm/tahun.
Tanaman I. zollingeriana toleran terhadap musim kering, genangan air dan tahan
terhadap kadar garam tinggi, sehigga taaman ini baik baik untuk dibudidayakan
sebagai hijauan pakan ternak didaerah yang memiliki iklim atau cekaman biotik
dan abiotik kurang baik (Hassen et al., 2006).
Tanaman I. zollingeriana dalam penelitian ini memiliki tinggi hingga 7 m
dengan tipe pertumbuhan tegak. Susunan daun majemuk menyirip ganjil, pinna 7-
9 dengan panjang 20-30 cm, pinnula 15-19 per pinna. Panjang daun 3-7 cm.
Bunga tersusun dalam suatu tandan diketiak daun, bertangkai, daun kelopaknya
berbentuk bergerigi lima, daun mahkotanya berbentuk kupu-kupu. Bentuk polong
panjang berwarna hijau dan kecoklatan saat dewasa. Ciri-ciri morfologi dari
tanaman I. zollingeriana dalam penelitian ini tidak berbeda jauh dengan ciri-ciri
morfologi dalam penelitian Heridawan dan Krisnan (2014).
23
Menurut Nur’aini (2017) dalam penelitiannya menyatakan bahwa hijauan
dengan campuran I. zollingeriana dapat meningkatkan komposisi nutrisi pada
ransum dan meningkatkan fermentabilitas secara in vitro.
Gambar 5. Ciri-ciri morfologi I. zollingeriana. A. Tangkai anak daun berseling;
B. Susunan daun majemuk menyirip ganjil; C. Bentuk buah; D.
Bentuk bunga. (Sumber: dokumentasi pribadi).
4) Leucaena leucocephala
Tanaman L. leucocephala pada penelitian ini ditemukan dalam di lahan
kering dengan tanaman-tanaman lain disekitarnya, serta mudah ditemukan
diberbagai tempat dengan ukuran yang bervairasi. Karakteristik lahan di Kawasan
Nuklir, Pasar Jumat, merupakan tempat yang mendukung untuk ditumbuhi
tanaman ini. Prawiradiputra et al. (2012) menyatakan tanaman L. leucocephala
dapat hidup di tanah dengan pH sedang antara pH 5,5 – 6,5 dengan curah hujan
tahunan di atas 760 mm.
24
Leucaena leucocephala memiliki tinggi mencapai 6 m. Susunan daun
majemuk menyirip ganda, pinna 4-10 pasang dengan panjang 3-9 cm, pinnula 11-
18 per pinna. Batang dari tanaman ini berwarna coklat kemerah-merahan.
Buahnya polong berbentuk pipih dan tipis. Biji 15-30 per polong yang terletak
melintang, berbentuk bulat telur dengan warna hijau tua. Ciri-ciri morfologi dari
tanaman L. leucocephala dalam penelitian ini tidak berbeda jauh dengan ciri-ciri
morfologi pada penelitian Irsyam dan Priyanti (2016).
Gambar 6. Ciri-ciri morfologi L. leucocephala. A. Tangkai anak daun berseling;
B. Panjang pinna; C. Susunan daun majemuk menyirip ganda.
(Sumber: dokumentasi pribadi).
Menurut Permana (2012), penambahan legum pohon (Leucaena
luecocepala) dengan rasio 30% pada ransum dapat meningkatkan konsumsi
protein kasar. Konsumsi nutrisi merupakan salah satu faktor penting dalam
menentukan produktivitas ruminansia dan ukuran tubuh (Agheore, 2000).
25
5) Vigna radiata
Vigna radiata atau yang biasa disebut kacang hijau, dalam penelitian ini
menggunakan sampel yang sudah jadi, sehingga tidak melakukan pengambilan
sampel dan identifikasi dari lapangan. Vigna radiata merupakan tanaman asli
India, yang kini banyak tumbuh di Asia Selatan, Afrika, Amerika Selatan dan
Australia. V. radiata merupakan salah satu tanaman pertanian yang memiliki
banyak keunggulan, yaitu tahan terhadap kekeringan sehingga dapat dijadikan
tanaman pertanian alternatif musim kemarau, memiliki produktivitas yang tinggi,
waktu panen yang relatif cepat (55-65 hari), dapat tumbuh pada lahan yang
kurang subur dan menjadi penyubur tanah, serangan hamanya lebih sedikit dan
mudah dibudidayakan (Kasno, 2007).
Lahan di kawasan nuklir, masih tergolong baik untuk pertumbuhan tanaman
V. radiata. Lingkungan yang optimum untuk tanaman V. radiata adalah pada
suhu 27-30℃, sedangkan bijinya dapat ditanam hingga suhu di bawah 15℃.
Tanaman V. radiata dapat tumbuh pada tanah liat berpasir dengan drainase yang
baik dan pada pH dengan kisaran 6,3-7,2. Akar V. radiata dapat menembus tanah
yang liat dan padat, akan tetapi tidak dapat tumbuh pada tanah garam
(Prawiradiputra, 2012)
Kacang hijau memiliki akar tunggang dan akar lateral yang banyak serta
agak berbulu. Biasanya kacang hijau mempunyai akar dengan cabang-cabang
sempurna dan meluas. Tanaman ini mempunyai batang tegak dengan cabang-
cabang menyebar. Tinggi tanaman antar varietas mempunyai variasi antara 30-
110 cm, sedangkan umurnya berkisar antara 50-120 hari tergantung pada lama
penyinaran dan temperatur udara sekitar temperatur tumbuh tanaman ini
(Sumarji, 2013).
Susunan daun merupakan daun majemuk menjari ganjil, tangkai daun
panjang dan berukuran 1,5-12 x 2-10 cm. Karangan bunga terdapat pada ketiak
daun dan mempunyai cabang tangkai bunga panjang. Bunga terdapat dalam
tandan yang setiap tandan terdiri dari 10-20 buah. Bunga berwarna kuning dan
merupakan bunga sempurna. Polong kacang hijau berbentuk bulat panjang
dengan bulu-bulu pendek, panjang polong 6-15 cm dengan 6-16 biji per polong.
Polong muda berwarna hijau, sedangkan polong tua berwarna cokelat atau hitam
yang cenderung untuk pecah sendiri. Biji kacang hijau kecil dan bulat, berwarna
hijau atau hijau kekuningan dengan bobot 100 bijinya antara 3-4 g (Sumarji, 2013).
26
4.2. Profil Nutrisi Tanaman Legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat
Hasil analisis proksimat pada tanaman legum di Kawasan Nuklir, Pasar
Jumat dapat dilihat pada tabel 3. Hasil analisis menunjukkan bahwa kandungan
nutrisi legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat sangat bervariasi. Hal ini
disibebakan oleh banyak faktor, seperti bagian tumbuhan yang dijadikan sampel
dan umur dari tanaman.
Tabel 3. Profil Nutrisi Tanaman Legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat
Jenis legum BO PK* LK NDF ADF
%BK
Arachis hypogea 85,49ab 15,94 2,55a 46,43bc 30,10b
Gliricidia sepium 82,32a 30,73 6,63b 45,92bc 28,57b
Leucaena leucocephala 86,10ab 31,36 9,69c 33,16a 21,43a
Indigofera zollingeriana 87,04ab 28,98 6,63b 41,84b 21,94a
Vigna radiata 89,10b 27,47 5,10ab 48,98c 30,61a
SEM 0,845 2,394 0,645 1,401 1,133
Keterangan: BK = berat kering; BO = berat organik; PK = protein kasar; LK = lemak
kasar; NDF = neutral detergent fiber; ADF = acid detergent fiber; SEM =
standard error of the means; *tanpa adanya pengulangan; superskrip yang
berbeda pada kolom yang sama menunjukkan perbedaan nyata (p<0,05).
Protein kasar tertinggi terdapat pada jenis L. leucocephala dengan nilai
31,36% (p<0,05) (Lampiran 3). Kandungan protein pada L. leucocephala sudah
melebihi minimal standar protein untuk penggemukan yang ditetapkan Badan
Standar Nasional (2009) yaitu 13%. Hasil ini menunjukkan bahwa kandungan
protein kasar pada tanaman L. leucocephala di kawasan nuklir, Pasar Jumat tidak
jauh berbeda dengan hasil penelitian Jayanegara yang memiliki nilai kandugan
protein 30,36% (2018). Nilai kandungan protein kasar pada L. leucaena lebih
besar dibandingkan kandungan protein kasar pada G. sepium karena penggunaan
sampel yang lebih banyak menggunakan bagian daun. Hal ini sesuai dengan
penelitian Aye dan Adegun (2013) yang menyatakan kandungan protein kasar
pada daun L. leucaena lebih besar dibandingkan protein kasar pada daun G.
sepium. Hal ini menunjukkan bahwa L. leucocephala baik digunakan sebagai
pakan tambahan. Protein kasar terendah terdapat pada jenis A. hypogaea dengan
nilai 15,94%, namun tetap telah melebihi minimal standar protein untuk
penggemukan.
27
Lemak kasar tertinggi juga terdapat pada jenis L. leucocephala sebesar
9,59% (p<0,05) (Lampiran 3). Kandungan lemak kasar pada L. leucocephala
telah melebihi nilai maksimal berdasarkan Badan Standar Nasional (2009) yaitu
7%. Kandungan lemak kasar pada pakan ternak dibutuhkan sebagai sumber
energi, namun jika jumlah nya melebihi 6-7% dari bahan kering dapat
mengurangi konsumsi pada pakan ternak ruminansia (Jayanegara, 2009). Lemak
kasar terendah pada legum jenis A. hypogea sebesar 2,5% dari berat kering.
Fraksi NDF merupakan fraksi dinding sel yang terdiri dari hemiselulosa,
selulosa, dan lignin, sedangkan ADF hanya mencakup selulosa dan lignin
(Moller, 2014). Kandungan NDF pada terbesar terdapat pada legum V. radiata
dan A. hypogea sebesar 48,98% dan 46,43%, begitu juga pada kandungan ADF
tertinggi sebesar 30,61% dan 30,10%. Kandungan NDF dari hasil yang
didapatkan masih dibawah nilai standar maksimal NDF (Badan Stadarisasi
Nasional, 2009) 35-36% dari berat kering, sedangkan ADF menurut National
Research Council (2001) nilai maksimalnya adalah 17-22%. Kandungan NDF
dan ADF pada tanaman V. radiata dan A. hypogea yang tinggi, juga terlihat dari
kandungan hemiselulosanya (Lampiran 2) yang tergolong cukup tinggi. Selulosa
dan hemiselulosa biasanya berikatan dengan lignin sehingga membentuk ikatan
matriks dan sulit untuk lepas dan terurai, namun hemiselulosa memiliki
kemampuan delignifikasi dengan berikatan dengan polisakarida sehingga lebih
mudah larut dan dicerna dibandingkan dengan selulosa (Nisa et al., 2018).
Nilai NDF dan ADF terendah terdapat pada L. leucocephala karena dinding
selnya tidak banyak mengandung lignin. Hal ini juga dibuktikan dengan kandungan
hemiselulosanya yang rendah (Lampiran 2). Lignin merupakan unsur bahan kimia
pokok yang sering diketahui sebagai penghambat terbesar dalam pencernaan serat
dan pakan secara keseluruhan. Yu et al. (2017) menyatakan bahwa lignin merupakan
suatu polimer yang berikatan dengan phenylpropane sehingga sulit untuk diurai,
lignin bekerja dengan cara menempel pada hemiselulosa dan selulosa dalam dinding
sel. Kandungan lignin yang rendah dapat meningkatkan aktivitas bakteri fibrolitik
dalam mendegradasi serat (Pizzol et al., 2017).
Perbedaan kandungan nutrisi yang didapat dari setiap tanaman disebabkan
umur (fase tumbuh) tanaman (Nelson dan Moser, 1984 dalam Hutabarat et al.,
2017), selain itu komposisi fraksi tanaman seperti rasio daun atau batang juga
ikut mempengarhi kandungan nutrisi setiap pakan (Ugherughe, 1986 dalam
28
Hutabarat et al., 2017). Pertambahan umur tanaman menyebabkan berkurangnya
kandungan nutrisi pada hijauan pakan, terutama pada daun. Penurunan rasio daun
dan batang pada hijauan dewasa dapat digambarkan sebagai indikator
menurunnya nilai nutrisi dan produksi sebagai bagian dari buruknya manajemen
pemotongan karena nutrisi pada hijauan pakan terbesar terdapat pada daun
(Hutabarat et al, 2017). Kandugan protein dalam daun lebih banyak dibandingkan
batang dan akar karena terjadi proses fotosintesis oleh enzim rubisco (Des francs,
1985). Hal ini yang menyebabkan nilai kandungan protein pada A. hypogea dan
V. radiata dalam penelitian lebih sedikit dibandingkan yang lain, karena terdapat
bagian akar yang ikut dijadikan sampel.
4.3. Nilai Kecernaan In vitro Tanaman Legum di Kawasan Nuklir, Pasar
Jumat
Nilai Total Digestible Nutrient (TDN), Relative Feed Value (RFV) dan In
Vitro True Digestibility (IVTD) yang didapatkan dari 5 jenis legum dapat dilihat
pada Tabel 4. Nilai RFV digunakan untuk menentukan kualitas hijauan
berdasarkan estimasi nilai NDF dan ADF, sedangkan IVTD adalah nilali
degradibilitas suatu pakan setelah masa inkubasi secara in vitro selama 48 jam
(Rofiq, 2011).
Tabel 4. Nilai relative feed value, total digestive nutrient, dan in vitro
digenstibility tanaman legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat
Jenis legum RFV Forage
Quality
TDN
(%BK) IVTD
(%/500 mg BK)
Arachis hypogea
Gliricidia sepium
Leucaena leucocephala
Indigofera zolllingeriana
Vigna radiata
SEM
131,67a
135,29a
204,32c
161,03b
123,71a
7,435
Premium
Premium
Prime
Prime
Good
53,25
53,82
62,08
58,04
56,98
68,37ab
64,79a
73,47cd
74,99d
69,89bc
0,976
Keterangan: SEM = standard error of the means, superskrip yang berbeda pada kolom
yang sama menunjukkan perbedaan nyata (p<0,05), forage quality = prime
>151, 1 (premium) 125-151, 2 (good) 103-124, 3 (fair) 87-102, 4 (poor)
75-86, 5 (reject) <75.
29
Nilai RFV L. leucocephala dan I. zollingeriana masing-masing adalah
204,10 dan 161,03. Hal tersebut menunjukkan kualitas kedua legum ini berada
pada tingkat prime. Kualitas keduanya juga tertinggi dibandigkan legum lainnya
(p<0,05) (Lampiran 3). Hasil ini berasosiasi dengan kandungan NDF dan ADF
pada tanaman legum, dimana L. leucocephala dan I. zollingeriana memiliki nilai
NDF dan ADF yang lebih rendah dibandingkan legum lainnya. Pakan dengan
kandungan NDF dan ADF rendah menunjukkan bahwa pakan tersebut memiliki
indeks RFV yang tinggi (Kilic dan Guleycuz, 2017).
Total Digestible Nutrient (TDN) merupakan estimasi total energi dari
keseluruhan nutrisi pakan yang tercerna (Umar, 2015). Hasil perhitungan TDN
tertinggi terdapat pada tertinggi terdapat pada legum jenis L. leucocephala dengan
nilai 62,08% dari berat kering. Nilai tersebut telah melewati standar kebutuhan
TDN sapi pejantan (55%BK) (NRC, 2001), yang menandakan legum tersebut baik
untuk dijadikan sebagai bahan pakan. Nilai TDN dipengaruhi oleh kandungan
nutrisi dari setiap legum, dan semakin banyak nutrisi yang tercerna akan
memberikan sumber energi yang banyak juga untuk ternak (Rofiq, 2011). Nilai
TDN L. leucocephala yang tinggi dalam penelitian ini berasosiasi dengan
rendahnya nilai NDF (Tabel 3) dan dengan tingginya nilai LK (Tabel 3) dan NFC
(Lampiran 2). Jayanegara (2019) menyatakan TDN pada hijauan berkorelasi
negatif dengan nilai NDF dan lignin, akan tetapi berkolerasi positif dengan nilai
NFC dan LK (Jayanegara, 2019).
Nilai IVTD tertinggi terdapat pada jenis legume I. zollingeriana dan L.
leucocephala dengan nilai masing-masing 74,99% dan 73,47%. Hasil ini
merupakan representasi bahwa kedua legum tersebut memiliki nilai degradasi
pakan yang baik jika dibandingkan dengan legum jenis lainnya (p<0,05)
(Lampiran 3). Hasil ini menunjukkan nilai IVTD berasosiasi dengan kandungan
PK pada keduanya yang relatif lebih tinggi serta dengan NDF dan ADF yang lebih
rendah dibandingkan dengan legum lainnya (Tabel 3.). Hal ini didukung oleh
penelitian Jayanegara (2009) yang melaporkan bahwa nilai kecernaan secara in
vitro positif dipengaruhi oleh kandungan protein kasar dan negatif oleh
kandungan NDF dan ADF.
30
BAB V
PENUTUP
5.1. Kesimpulan
Terdapat 5 jenis legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat yang biasa
digunakan sebagai bahan pakan ruminansia. Leucaena leucocephala dan
Indigofera zollingeriana merupakan tanaman legum yang memiliki kandungan
protein kasar tinggi serta nilai in vitro true digestibility yang tergolong baik dan
memenuhi standar, sehingga potensial untuk dikembangkan ke dalam formula
ransum, dibandingkan dengan jenis legum lainnya.
5.2. Saran
Perlu adanya penelitian lanjutan menggunakan kedua jenis legum yang telah
diformulasikan ke dalam pakan ransum, untuk melihat formula yang optimal
untuk pakan ternak ruminansia di kandang terpadu BATAN, Pasar Jumat.
31
DAFTAR PUSATAKA
Akoso, T.B. (1996). Kesehatan sapi. Kanisius, Yogyakarta
Anggorodi. (1994). Ilmu makanan ternak umum. PT. Gramedia Pustaka Utama,
Jakarta.
Angiosperm Phylogeny Group IV. (2016). An update of the angiosperm
phylogeny group classification for the orders and sukues of floweing plants.
Botanical Journal of the Linnean Society. 161, 106-121.
Aprillia, C. (2010). Kecernaan nutrien metode acid insoluble ash dan performa
domba lokal yang diberi moringa oleifera lamk, gliricidia sepium, dan
artocarpus heterophyllus. (Skripsi). Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Aregheore. E. M. (2000). Crop residues and agroindustrial byproduct in four
pasific island countries, availibility, utilization and potential value in
ruminant nutrition. Asian-Aust. J. Anim. Sci. 13, 266-269.
Association of Official Analiytical Chemist. (2005). Official method of analysis.
assosiaciation of official analytical chemist. Benjamin Franklin Station,
Washington.
Aye, P. A., & Adegun, M. K. (2013). Chemical composition and some functional
properties of moringa, leucaena and gliricidia leaf meals. Agriculture and
Biology Journal of North America. 4(1), 71-77.
Baan, A.V.D., W.A. Niekrek, N.F.G. Rethman & R.J. Coertze. (2004). The
determination of digestibility of atriplex nummularia cv de kock (oldman
saltbush) using different in vitro techniq. asian-aust. J. Anim. Sci, 341(1),
95-97.
Badan Standarisasi Nasional. (2009). Pakan konsentrat bagian 2. No.314.2,
Jakarta.
Campbell, N. A., & Reece, J. B. (2008). Biologi edisi kedelapan jilid tiga.
Penerbit Erlangga, Jakarta.
Carr, G. (2010). Fabaceae (Leguminosae). University of Hawaii.
Des Francs, C.C., Thellement, H., & Vienne, D. (1985). Analysis of Leaf Proteins
by Two-dimensional Gel Elecetrophoresis. Plant physiology. 78(1), 178-
182.
Flatian, A. N. (2017). Konstribusi P dari aktivitas mikroba pelarut fosfat, fosfat
alam dan sp-36 berdasarkan teknik isotop 32P. (Pascasarjana). Institut
Pertanian Bogor, Bogor.
Frandson, R.D., (1996). Anatomi dan fisiologi ternak, edisi ke-7. Gajah Mada
University Press, Yogyakarta.
32
Hakim, L., Ciptadi, G., & Nurgiatiningsih, V. M. A. (2010). Model rekording data
performans sapi potong lokal di Indonesia. Jurnal Ternak Tropika. 11(2),
61-73
Haryanto, B. (2012). Perkembangan penelitian nutrisi ruminansia. Wartazoa.
22(4), 169-167
Hassen, A., Rehtman, N. F. G., & Apostolides, Z. (2006). Morphological and
agronomic characterization of Indigofera species using multivariate
analysis. Trop Grassl. 40, 45-59.
Herdiawan, I., & Krisnan, R. (2014). Produktivitas dan pemanfaatan tanaman
leguminosa pohon Indigofera zollingeriana pada lahan kering. Wartazoa.
24(2), 75-82.
Herlinae, (2003). Evaluasi nilai nutrisi dan potensi hijauan asli lahan gambut
pedalaman di Kalimantan tengah sebagai pakan ternak. (Pascasarjana
Tesis). Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Hungate, R. E. (1966). The ruminant and its microbes. New York (USA):
Academic
Hutabarat, J., Erwanto., & Wijaya, A. K. (2017). Pengaruh umur pemotongan
terhadap kadar protein kasar dan serat kasar indigofera zollingeriana. Jurnal
Riset dan Inovasi Peternakan. 1(3), 21-24.
Indriyanto, M. P. (2012). Dendrologi, suatu teori dan praktik menyidik pohon.
Lembaga Penelitian Universitas Lampung, Lampung.
Irsun. (2010). Perubahan serapan nitrogen tanaman jagung dan kadar Al-dd akibat
pemberian kompos tanaman legum dan nonlegum pada insoptisols napu. J.
Agroland. 17(1), 23-29.
Irsyam, A. S. D., & Priyanti. (2016). Suku fabaceae di kampus Universitas Islam
Negeri Hidayatullah, Jakarta, bagian 1: tumbuhan polong berperawakan
pohon. Al-Kauniyah Jurnal Biolgi. 9(1), 44-56.
Jayanegara, A. (2009). Kinetika produksi gas, kecernaan bahan organik dan
produksi gas metana in vitro pada haydan jerami yang disuplemntasi hijauan
mengandung tanin. Media Peternakan. 2, 120-129.
Jayanegara, A., Harahap, R. P., Ridla, M., Laconi, E. B., & Nahrowi. (2018).
Chemical composition and methane emission of some tropical legumes for
indonesia. In, AIP Conference Proceedings, Malang, 1-5.
Jayanegara, A., Ridla, M., Astutui, D. A., Wiryawan, K. G. Laconi, E. B., &
Nahrowi. (2017). Determination of energy and protein requirements of
sheeps in Indonesia using a meta-analytical approach. Media Peternakan.
40(2), 118-127.
33
Jayanegara, A., Ridla, M., Nahrowi, & Laconi, E. B. (2019). Estimation and
validation of total digestible nutrient values of forage and concentrate
feedstuffs. IOP Conf. Ser; Materials Science and Enginering. 546(4), 1-5.
Kamal, M. (1998). Bahan pakan dan ransum ternak. Laboratorium Makanan
Ternak, Jurusan Nutrisi dan Makan Ternak. Universitas Gadjah Mada,
Yogyakarta.
Kanisius, A. A. (1983). Budidaya tanaman padi. Kanisius, Yogyakarta
Kasno, A. (2007). Kacang hijau, alternatif yang menguntungkan ditanam di lahan
kering. Sinartani.
Kilic, U., & Guleycuz, E. (2017). Effects of some additives on in vitro true
digestibility of wheat and soybean straw pellets. Open Life Sci, 17, 1107-
1111.
Kushartono, B., & Nani, I. (2004). Inventarisasi keanekaragaman pakan hijau
guna mendukung sumber pakan ruminansia. pusat penelitian pengembangan
peternakan. Prosiding Temu Teknis Nasional Tenaga Fungsional Pertanian
2004.
Mabjeesch, S. J., Cohen, M., & Arieli, A. (2000). In vitro methods for measuring
the dry matter digestibility of ruminant feedstuffs, comparison of methods
and inoculum source. Journal of Diary Science. 83, 2289-2294.
Manurung, T. (1996). Penggunaan Hijauan legumenosa pohon sebagai sumber
protein rasum sapi potong. Jurnal Ilmu Ternak dan Veteriner. 1(3), 143-148.
McDonald, P., Edward, R. A., Greenhalgh, J. F. D., & Morgan, C. A. (2002).
Animal nutrition. sixth edition. Ashford Colour Press, Gosport.
Measen, L. J. G. V. D., & Somaatmadja S. (1992). Plant resources of South-East
Asia, pulses. Prosea foundation, Bogor.
National Research Council. (2001). Nutrient requirement of dairy cattle. The
National Academy Press, Washington DC.
Nelson, C. J., & Moser, L. E. (1984). Plant Factors Affecting Forage Quality. In.
Forage Quality, Evaluation, and Utilization. Fahrey, G. C., Collins, Jr. M.,
Mertens, D. R., & Moser, L. E. (Eds). American society of agronomy, crop
science society of America, soil science society of America. 115-154.
Nisa, F., Subrata, A., & Pangestu, A. (2018). Kehilangan bahan kering, acid
detergent fiber (ADF) dan N-acid detergent fiber daun Moringa oleifera
secara in vitro. Jurnal Sain Peternakan Indonesia. 13(3), 282-286.
Nur’aini. (2017). Evaluasi nutrisi dan fermentabilitas in vitro campuran legum
Indigofera sp. dan kultivar baru tanaman (Sorgum bicolor). (Skripsi)
Institut Pertanian Bogor, Bogor.
34
Parish, J. A., Rivera, J. D., & Boland, H.T. (2009). Understanding the ruminant
animal digestive system. Mississippi State University
Pizzol, J. G. D., Riberio-filho, H. M. N., Quereuel, A., Le Morvan, A., &
Nidekorm, V. (2017). Complementarities between grasses and legumes from
temperate and subtropical areas on in vitro rumen fermentation
characteristics. Anim. Feed Sci. Technol, 228, 178-175.
Prawiradiputra, B. R., Sutedi, E., Sajimin, Fanindi. A. (2012). Hijauan pakan
ternak untuk lahan sub-optimal. IAARD Press, Bogor.
Prihartini, I., & Khotimah, K. (2013). Produksi probiotik rumen berbasis bakteri
lignochloritik dan aplikasi pada ternak sapi perah. Jurnal Gamma 1(7), 27-
31.
Rahmadi, D., Sunarso, J., Achmadi, E., Pangestu, A., Muktiani, M., Christiyanto.,
& Surono. (2003). Ruminologi dasar. Universitas Diponegoro, Semarang.
Reksohadiprodjo, S. (1985). Produksi tanaman hijauan makanan ternak tropik.
BPFE, Yogyakarta.
Rianto, E., & Purbowati, E. (2009). Panduan lengkap sapi potong. Penebar
Swadaya, Jakarta.
Rofiq, M. N., & Sofia, S. (2011). Evaluasi kecernaan in vitro penggunaan ekstrak
minyak cengkeh beberapa dosis pada rumen sapi perah dengan metode
daisyii incubator. Prosiding Seminar Nasional dan Kongres I ISAA. BPPT,
Serpong.
Rohweder, D. A., Barnes, R. F., & Jorgensen, N. (1991). Methods for dietary
fiber, neutral detergent fiber and nonstarch polysaccharides in relation to
Animal Nutrition. J. Diary Sci. 74, 3583-3597.
Rukmana, H. R. (2005). Budidaya rumput unggul dan hijauan makanan ternak.
Kanisius, Yogyakarta.
Sasmita, T. E. (2013). Degradasi in vitro asam fitat rumput dan legum oleh
konsorsium bakteri rumen pencerna serat asal kerbau. (Skripsi). Institut
Pertanian Bogor, Bogor.
Serra, S. D., Serra, A. B., Ichinohe, T., & Fujihara, T. (1996). Ruminal
solubilization of macrominerals in selected Philippine forages. Asian-Aust.
J. Anim. Sci, 9 (1), 75-81.
Setiana, M. G. (2000). Pengenalan jenis hijauan makanan ternak unggul.
Departemen Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak. Institut Pertanian Bogor,
Bogor.
Setiawati. (2008). Tumbuhan pestisida nabati dan cara pembuatannya. Balai
Penelitian Sayuran, Bogor.
35
Simon, A.J. & Stewart, J. L. (1998). Gliricidia sepium a multi purpose forage tree
legum (http://www.fao. Org.) Acces date: April, 14th 2019.
Simpson, M. G. (2010). Plant systematics. Elsevier Academic Press, California.
Soerjani, M., Koestermans, A.J.G.H., & Tjitrosoepomo, G. (1986). Weeds of rice
in Indonesia. Balai Pustaka, Jakarta.
Sumarji. (2013). Pengaruh waktu pemupukan dan pemberian pupuk pelengkap
cair (Ppc) terhadap pertumbuhan dan produksi tanaman padi (Oriza Sativa
L) varietas ciherang. Manajemen Agribisnis. 13(1), 83-89.
Tillman, A. D., Hartadi, H., Reksohadiprojo, S., Prawirokusumo, S., &
Lebdosoekojo, S. (1991). Ilmu makanan ternak dasar. Universitas Gadjah
Mada, Yogyakarta.
Trisnadewi, A. A. A. S., Cakra, I. G. L. O., Mudita, I. M., Wirawan, I. W.,
Puspani, E., & Budiasa, I. K. M. (2013). Aplikasi formulasi ransum dengan
menggunakan hijauan leguminosa sebagai pakan dasar penyusunan ransum
sapi di desa Jungutan kabupaten Karangasem. Udayana Mengabdi. 12(1),
35-37.
Ugherughe, P. O. (1986). Relationship between digestibility of bromus intermis
plant parts. J. Agro. Crop. Sci. 157, 136-143.
Van Soest, P. J., & Robertson, J. B. (1980). System of analysis for evaluating
fibrous feeds. In, Pigden, W. W., Batch, C. C., & Graham, M. (eds).
Standarization of Analytical Metodology for Feeds. I.D.R.C., Canada.
Yu, J., Peterson, N., Balmey, J., & Millan, M. (2010). Cellulose, xylan and lignin
interaction during pyrolysis of lignosellulosic biomass. Journal of The
Science and Technology of Fuel Energy. 191, 140-149.
Zulchi, T., & Puad, H. (2017). Keragaman morfologi dan kandungan protein
kacang tanah (Arachis hypogea L.). Bul. Plasma Nutfah. 23(2), 91-100.
36
LAMPIRAN
Lampiran 1. Dokumentasi kegiatan penelitian
(A) (B) (C)
(D) (E) (F)
(G)
(H)
(I)
Keterangan:
(A) Pengambilan sampel legum
(B) Pengukuran berat sampel
(C) Pengukuran serat kasar
(D) Penggilingan sampel legum
(E) Alat Fiber analyser ANKOM200
(F) Sampel dalam filter bag
(G) Alat DaisyII incubator
(H) Kandang terpadu PAIR-BATAN
(I) Neraca analitik
37
Lampiran 2. Hasil konversi presentase hemiselulosa dan Non Fiber Carbohydrate
(NFC) pada legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat (%BK).
Jenis legum Hemiselulosa NFC
Arachis hypogea 16,33 21,02
Gliricidia sepium 17,35 -0,96
Leucaena leucocephala 11,73 11,89
Indigofera zolllingeriana 19,89 9,59
Vigna radiata 18,37 7,55
38
Lampiran 3. Hasil uji ANOVA tanaman legum di Kawasan Nuklir, Pasar Jumat.
ANOVA
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
OM
Between Groups 98.155 4 24.539 2.122 .128
Within Groups 173.475 15 11.565
Total 271.629 19
LK
Between Groups 108.278 4 27.070 8.125 .001
Within Groups 49.977 15 3.332
Total 158.255 19
NDF
Between Groups 615.170 4 153.792 17.584 .000
Within Groups 131.195 15 8.746
Total 746.365 19
Hemi
Between Groups 152.857 4 38.214 5.618 .006
Within Groups 102.032 15 6.802
Total 254.888 19
ADF
Between Groups 402.712 4 100.678 17.688 .000
Within Groups 85.380 15 5.692
Total 488.092 19
DMD
Between Groups 195.874 4 48.968 12.915 .000
Within Groups 56.873 15 3.792
Total 252.746 19
DMI
Between Groups 3.641 4 .910 16.692 .000
Within Groups .818 15 .055
Total 4.459 19
RFV
Between Groups 17234.408 4 4308.602 17.120 .000
Within Groups 3774.960 15 251.664
Total 21009.368 19
IVTD
Between Groups 265.286 4 66.322 10.274 .000
Within Groups 96.833 15 6.456
Total 362.119 19
39
Lampiran 4. Hasil uji Duncan pada Berat Organik (BO) tanaman legum
OM
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2
2.00 4 82.31625
1.00 4 85.48800 85.48800
3.00 4 86.10375 86.10375
4.00 4 87.04000 87.04000
5.00 4 89.10075
Sig. .089 .186
Means for groups in homogeneous subsets are
displayed.
40
Lampiran 5. Hasil Uji Duncan pada Lemak Kasar (LK) tanaman legum
LK
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2 3
1.00 4 2.55125
5.00 4 5.10175 5.10175
2.00 4 6.63225
4.00 4 6.63250
3.00 4 9.69375
Sig. .067 .278 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
41
Lampiran 6. Hasil uji Duncan pada Neutral Detergent Fiber (NDF) tanaman
legum
NDF
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2 3
3.00 4 33.16325
4.00 4 41.83675
2.00 4 45.91850 45.91850
1.00 4 46.42850 46.42850
5.00 4 48.97975
Sig. 1.000 .054 .185
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
42
Lampiran 7. Hasil uji Duncan pada Hemiselulosa tanaman legum
Hemi
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2
3.00 4 11.73475
1.00 4 16.32675
2.00 4 17.34700
5.00 4 18.36775
4.00 4 19.89800
Sig. 1.000 .093
Means for groups in homogeneous subsets are
displayed.
43
Lampiran 8. Hasil ji Duncan pada Acid Detergent Fiber (ADF) tanaman legum
ADF
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2
5.00 4 18.36775
3.00 4 21.42850
4.00 4 21.93875
2.00 4 28.57125
1.00 4 30.10175
Sig. .062 .379
Means for groups in homogeneous subsets are
displayed.
44
Lampiran 9. Hasil uji Duncan pada Dry Matter Digestibility (DMD) tanaman
legum
DMD
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2
5.00 4 65.05275
1.00 4 65.45050
2.00 4 66.64300
4.00 4 71.80950
3.00 4 72.20700
Sig. .291 .777
Means for groups in homogeneous subsets are
displayed.
45
Lampiran 10. Hasil uji Duncan pada Dry Matter Intake (DMI) tanaman legum
DMI
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2 3
5.00 4 2.45225
1.00 4 2.59275 2.59275
2.00 4 2.61775 2.61775
4.00 4 2.89100
3.00 4 3.64425
Sig. .357 .106 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
46
Lampiran 11. Hasil uji Duncan pada Relative Feed Value (RFV) tanaman legum
RFV
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2 3
5.00 4 123.71825
1.00 4 131.66100
2.00 4 135.29250
4.00 4 161.03600
3.00 4 204.32050
Sig. .344 1.000 1.000
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
47
Lampiran 12. Hasil uji Duncan pada In Vitro True Digestibility (IVTD) tanaman
legum
IVTD
Duncan
perlakuan N Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4
2.00 4 64.79600
4.00 4 68.36750 68.36750
5.00 4 69.89825 69.89825
3.00 4 73.46925 73.46925
1.00 4 74.99975
Sig. .065 .408 .065 .408
Means for groups in homogeneous subsets are displayed.
a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 4.000.
