SIPHONAPTERA DE LA COSTA SUR-OCCIDENTAL DE AMÉRICA

SIPHONAPTERA DE LA COSTA SUR-OCCIDENTAL DE AMÉRICA

(PRIMERA LISTA Y DISTRIBUCIÓN ZOO-GEOGRAFICA)

Por el Dr. ATILIO MACCHIAVELLO

Epidemiólogo de Za Ojkina Sanitaria Panamericana

Durante los trabajos epidemiológicos relacionados con la peste bubó- nica, el A. y sus colaboradores han examinado unas 500,000 pulgas durante los últimos 15 años, en Chile, Peru,” y Ecuador,* la mayor parte de origen murino, reduciendose la fauna pulida de las ratas domesticas a una docena de especies, a lo menos en la costa sur-occidental de América. Las recientes investigaciones sobre peste selvática y rural, en el Norte del Perú, han proporcionado la oportunidad de obtener roedores y pulgas diferentes de los que se acostumbraba examinar anteriormente. La dificultad en encontrar literatura entomológica hace creer oportuno resumir los nuevos hallazgos en relación a sifonápteros, en una lista tentativa de las especies descritas en la costa sur-occidental de América, algunas de las cuales pueden adquirir importancia futura como vectoras de peste. Hay escasez de informaciones sobre el genero Polygenis, que juega papel preponderante en la transmisi6n y manten- ción de la peste selvática en el foco recientemente descubierto en la frontera peruano-ecuatoriana.

La lista que sigue no es total y las referencias son incompletas. Los autores que mencionan especies púlidas, no lo hacen con la precisión deseable respecto a huéspedes o sitios de recolección. Muchas de las clasificaciones no han sido realizadas por entornologos, ni por zoólogos. Asi, por ejemplo, las pulgas clasificadas en Ecuador como Ceratophyllus fasciatus probablemente corresponden a i?osopsyllus londiniensis, ya que la primera no se encuentra en ese pais. Hasta donde es posible, las designaciones zoológicas se han modernizado de acuerdo con la nomen- clatura utilizada por Cabrera, Yepes y Wiedner, en la obra “Mamíferos Sud-Americanos.”

La bibliografía sobre Xiphonaptera de esta zona es casi totalmente extranjera. Los autores nacionales se ocupan más bien de problemas de entomología aplicados a la medicina y en especial en relación a la peste bubónica. De estos trabajos se extrajeron datos relativos a la reparti- ción zoo-geográfica de especies ya descritas. La parte más importante de esta lista se refiere a las especies pulidas que parasitan roedores.

* En el Perú, el Sr. B. Mostajo P. nos prestó valiosa ayuda en la recolección de pulgas de ratas, en las zonas pestosas. Lo mismo, en Ecuador, el personal del Servicio Antipeetoso. Los Dres. Carro1 Fox, Jellison y Jordan han cooperado examinando algunos materiales, especialmente dudosos, o de zonas bajo investi- gación inicial.

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Muchos de los datos mencionados son inéditos. Las investigaciones a que se refiere este trabajo se desarrollaron en Chile de 1929 hasta 1939, período en que el autor fue Jefe del Servicio Nacional Antipestoso; en Ecuador, se realizaron en 194041 y desde 1942 a 1944, primero como Epidemiólogo de la Oficina Sanitaria Panamericana y luego como Direc- tor del Instituto Nacional de Higiene; en el Per& las primeras investigaciones se hicieron en 1941, y se reanudaron a fines de 1944 hasta la fecha (1947). Se ha contado con la cooperación de los respectivos servicios de sanidad y antipestosos, estando 10s estudios más recientes financiados por una subvención del Instituto de Asuntos Interamericanos.

Evidentemente muchos AA. citados no son entomólogos, ignorándose el grado de certeza que exista en sus determinaciones taxonómicas. Hay necesidad de mayores estudios sobre la fauna púIida y su distribución zoológica y geográfica en América. Los géneros y especies que no corresponden a roedores han sido insuficientemente estudiados y a veces sólo se conoce el ejemplar tipo del género que sirvió para establecerlo. En otros casos las series observadas son pequeñas y corresponden a una sola localidad. Aunque es evidente que existen variantes geográfkas de muchas especies de pulgas, no se pretende aquf establecerlas.

La bibliograffa correspondiente a las primeras descripciones taxonómicas se agrega a los nombres gen&icos o específicos. La cita de los autores en conexión con Ia repartición zoo-geográfica de las especies se hace Ga extenso en cada caso, con referencias a la bibliografía general y en la forma en uso. Sólo se exceptúan las referencias al autor del presente trabajo, marcadas simplemente (M), siguiéndose la indicación del año del hallazgo y a veces de la indicación (inéd.) que indica el carácter del mismo.

Valiosa ayuda en Ia confección de la lista ha prestado el reciente catá- logo de Pulgas de1 Mundo, de Costa Lima y Hathaway, manteniendo las divisiones adoptadas por estos autores, exceptuada la designacibn del orden, en que preferimos Siphonaptera a Suctoria.

La presente lista nos marca un punto de partida para investigaciones más extensas sobre este asunto, sin perder de vista la finalidad epidemio- lógica.

Orden SIPHONAPTERA Latreiile, 1825 (Fam. iVat. Regn. Anim., p. 334)

A.-Familia PULICIDAE Stephens, 1829 (Sgst. Cat. Brit. Iris., 2: 328)

Sub-familia PULICINAE Tiraboschi, 1904 (Arch. Paras., 8: 242)

I.-GLnero PULEX Linne, 1758

l.-PTJLEX IRRITANS IRRITANS Linne, 1758 (Syst. Nat., 10 ed. p. 614, part.) Costa Lima y Hathaway, 1946, Pulgas, p. 93

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(a) Hombre.-En Chde la mencionan Demarla y Gallinato en San- tiago (1929), Vidal en Valparaíso (1929) y Gallinato en Santiago y Arica (1931), así como M. en las siguientes localidades: Antofagasta, Iquique, Tocopilla, Taltal, Arica, Mejillones y Caleta CoIoso, de la Costa Norte de Chile (1932-1939); en Pica, Tarapacá (1934); en Calama, Chuquica- mata, San Pedro de Atacama y 14 poblados de 10s alrededores, hasta 4,200 metros de altura, en los Andes, al interior de Antofagasta (1933) ; en Salamanca (Valle del Choapa) y Los Vilos (1937) ; en Copiapó y La Serena (1930) ; en Santiago, Valparafso, San Carlos, Chillán, Concepción, San Javier, San Fabián de AIico, Talca, Linares (193739) ; y en Puerto Montt y Ancud (1938).

En Perú, Eskey, Long, Mostajo, Colichón, Ramos Díaz la mencionan como abundante para la Costa y Sierra peruanas, siendo predominante en ésta. Despulgues de ponchos han sido realizados frecuentemente por estos autores, obteniéndose cantidades variables de P. irritans, a veces varios centenares en un individuo. EI autor ha hecho hallazgos similares, habiendo constatado personalmente la existencia de P. ZrrZtuns sobre hombre en la Provincia del Callao y en los Departamentos de Tumbes, Piura, Lambayeque, Cajamarca, Libertad, Ancash, Lima e Ica, envarios centenares de localidades ubicadas desde el nivel del mar hasta cercade 4,000 metros de alturas, desde la costa, hasta el Río Marañón (Balzas). (1941 y 1944-7).

En Ecuador, Suárez la encuentra sobre hombres, en Quito, Guaytacama, Latacunga, Salcedo, Ambato, Guamote, Pungalá, Guasuntos y Guaya- quil; Miño, en los mismos sitios (menos Salcedo), y además en Rio- bamba, Cebadas, Aehupallas, AIausí, Huigra, Cuenca y Cañar; (1933) ; Eskey, se refiera a ella como una “peste” de la Sierra ecuatoriana; Sáenz Vera (inéd.) la encuentra en todas las poblaciones de la Provincia de Chimborazo y Loja. En 1940 y 1941, el autor con S&enz Vera, realizaron un censo púlido en hombres de la Sierra. En 1940, sobre 6,143 pulgas recolectadas sobre hombres y SUS ropas, en los sectores de Alausí, Sibambe, Guasuntos, Guamote, Riobamba, Huigra, Flores, Pungalá y Quimiag, y en un total de 54 localidades, 98.33yo fueron P. irritans. En 1941, sobre 7,225, recolectadas en 70 localidades de la misma Sierra interandina, ~610 130 n6 fueron P. irritans. El A. ha comprobado además esta pulga sobre hombres, en Quito, Ibarra, Guayaquil, Loja y El Oro, Matará y Hda. Bolasbamba, en la frontera con el Perú.

En Bolivia, se conoce la elevada incidencia de P. irritans en las Iocali- dades de Ia Sierra, pero no hay menciones específicas sobre su distri- bución. El A. la ha constatado en La Paz.

(b) Perro (C%nis fcwwZaris).-En Chile, M. en Antofagasta, Iquique, Santiago, San Carlos (1932-39). En Perú, M. en Chincha, Lima, Huacho, Trujillo, Piura, Tumbes, Lancones (Los Encuentros, Jabonillos, La Chorrera) y Huancabamba (Soccha, aprox. 2,000 metros de altura

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y Cascamache, aprox. 3,300 m). En Ecuador, Suárez (1927) la encuentra en perros de Quito, y Guaytacama (aproximadamente 2 y 30%) ; Miño (1933), en Quito, Huigra, Cañar y Cuenca; eI A. (1940), en Aguaysacte, Huigra, Lutumbug y GUZO, formando el 5% de 1556 pulgas de este origen. En Riobamba, Ambato, Alausí, Guamote, Quito y Guayaquil, la proporción de P. irritans sobre perros fue menor del 1%. Ocasional- mente, la pulga del hombre predomina sobre la Ctenoeephalides canis.

(c) Gato (Felis domestkus).-En Chile, el A. la ha encontrado en Antofagasta e Iquique; en Per& en Lima, Huacho, Cajamarca y Celen- din; y en Z&uador, en Ambato y Quito. Suárez (1927) la menciona en Guaytacama, Ecuador.

(d) Conejos.-En Chile, M., en Antofagasta, sobre conejosen cautiverio (Oryctolugus cunzkz& (?) ; lo mismo en Perú, Huacho, (1945 inéd.). En Ecuador, Miño, en Guamote, Cuenca, Ambato, Alausf. En Ecuador, Suárez (1927), en Alausí, sobre Sylvilagus sp. (undinus?) y el A. (1946) sobre SyZvvZZagus sp. de la zona rural de Huancabamba (Siclamache), Perú, capturados en las cercanías de viviendas humanas, a cerca de 2,000 m. de altura.

(e) Cavia porceZZus.-Mostajo, Long (1935), Colichón (1934), Ramos Dfaz (1938), en Perú, mencionan la frecuencia con que P. irritans se encuentran sobre cobayos de la Sierra que conviven con el hombre. Ramos Díaz, calcula en 50% dicha frecuencia. M. la encuentra en cobayos de Lima, Huaral, Huacho (Hualmay), Paramonga, Raquia, Ha- cienda Chuquisongo (Sierra de Otusco), Contumazá, Villa Eten y Moche.

En Ecuador, Suárez (1927) sobre 593 cobayos de Alausí, Pueblo Viejo, Guasuntos, Sanganao, Tolte, Sibambe, Nizag, Guaytacama, Latacunga, Salcedo, Riobamba, Arabato, Guamote, Pungalá y Quito, recolecta poco menos de 7,500 P. irritans (indice aprox. de 12.5) siendo en ocasiones la pulga predominante o exclusiva. Miño (1933), Ia señala como ausente en cobayos de Latacunga, Guasuntos, Cebadas, PungaIá; como ocasional, en cobayos de Quito, Guaytacama, Ambato, Guamote, Achupallas, Alausí, Huigra, Cuenca y Cañar, y frecuente, sólo en Riobamba. Sáenz Vera, para diversas localidades de la Sierra no especifkadas, pero de la Provincia de Chimborazo, menciona que la P. irritans forma un 20% del total de las pulgas de cobayos. El A. con Sáenz Vera, analizaron la situación exacta del problema de la frecuencia de la pulga del hombre en cobayos de la Sierra Ecuatoriana, pues a menudo se la ha inculpado de ser vectora de la peste de estos animales al hombre (ver M. 1943). Sobre 10,116 pulgas de cobayo recolectadas en 76 localidades de los sectores de Alausi, Sibambe, Guasuntos, Guamote, Riobamba, Huigra, Flores, Pungalá y Quimiag (1940), 718 fueron P. irritans y correspondieron a 49 localidades. La frecuencia total de esta pulga en cobayos fue 7.1yo, siendo en el sector Guamote de lS%, en Riobamba, de 5.5%, en Flores, de 4.7% y en Quimiag, de 2.7%. No hubo P. irritanos en cobayos, en 13

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localidades de Alausi, 2 de Sibambe, 5 de Guamote, 2 de Guasuntos, 2 de Huigra, 1 de Pungalá y 2 de Quimiag. En 1941, sobre 5696 pulgas recolectadas en cobayos, en 43 localidades de los mismos sectores, solo 0.53yo resultaron P. irritans, correspondiendo a cobayos de 4 de los 3 sectores estudiados y a las 6 localidades siguientes: Guasuntos, Cumbilla, Candelaria, Licto, Chimbacalle y Tilange. Este resultado concuerda con el de Eskey, 1930 que solo encontró 8 pulgas de hombre en más de 100 cobayos serranos.

,

(f) Cavia uperea.-En Chib, en animales en cautiverio, el A. la encuentra en Antofagasta y Calama.

(g) Cavia aperea paZZidior.-En la Hacienda San Pablo, Ica, Perú, M. las encuentra en lotes de pulgas recolectadas por B. Mostajo hijo y Gilmour .

(h) Rattus sp.-Muy frecuentemente en la literatura se menciona el hallazgo de P. Zrritans sobre “ratas,” sin determinación de especie; pero conociéndose que en las localidades mencionadas la población murina doméstica consiste exclusivamente de R. rattus rattus, R. r. aZexandr&s y R. norvegicus. En ChiZe, Demaria y Gallinato la indican en San- tiago (1929), Vidal en Valparaiso y Gallmato en Arica (1930). En Per&, Eskey, Long y Mostajo, Colichón, Ramos Dial;, en Lima y puertos principales de la costa norte del Perú. En Ecuador, Eskey (1930) la encuentra 7 veces sobre más de 4,000 ratas examinadas en Guayaquil. En Quito, 48 en 83 ratas. Sáenz Vera la menciona en ratas de las Provincias de Chiiborazo y Loja; Suárez, en toda la Sierra; Miño, (1933) en Quito, Guaytacama, Latacunga, Ambato, Riobamba, Gua- suntos, Cebadas y Alausi, como ocasional, siendo más frecuente en Rio- bamba. No la encontró en ratas de Guamote, Achupallas, Pungalá y Huigra.

(i) Rattus rattus ratlus.-En ChiZe, el A. la encuentra en Antofagasta, Iquique, Mejillones, Tocopilla y Taltal; en Perú, en Tumbes, Trujillc, Chuquizongo, Conchor y Cajamarca; en Ecuador, en Alausí, Guasuntos, Pungalá y Hacienda Bolasbamba (frontera con Perú). Suárez (1927) y Martmez (1939), en Ambato.

(j) Rattus raftus aZexundrinus.--En Chile (M, 1929-39), en Antofa- gasta, Iquique y Tocopilla; en Peti (1944-47, inéd.) en las Haciendas Las Vegas, Alpas, Cochas y Leticia, de Barranca; en las Haciendas San Andrés, Monserrate, Encalada y Trujillo; en Puerto Eten, Villa Eten, Cayalti, Piura y Tumbes; en Ecuador, en Loja y Bolasbamba (1942 y 1946). En este pafs Suárez (1927) encuentra 28 ejemplares sobre 162 R. alexandrinus capturados en Quito, Guaytacama, Latacunga y Ambato, y Martínez, en Ambato. Suárez no las encuentra en Salcedo, Riobamba, Alausi (escasos ejemplares murinos) ni en 2,285 R. a. de Guayaquil.

(1~) Rattus nmvegicus.-En ChzYe, M. en Antofagasta e Iquique. En Perti, Eskey (1932), en Lima; Macchiavello (1944-47, inéd.) en Chincha,

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Huacho (ciudad y campiña), Huaura, Valle de Sayan (Haciendas El Carmen, Andahuasi e Ingenio), Valle de Santa (Haciendas Tambo Real y Rinconada y sitio Chingoyal), Chimbote, Trujillo, Pacasmayo, Ha- cienda Ucupe y Hacienda Cayaltf, tratandose en todos los casos de por- centajes menores del 1% de las pulgas recolectadas. En Ecuador, Suárez encuentra 17, en 61 R. n. de Quito; 1, en 18 de Latacunga; 2, en 60 de Ambato, y ninguna, en 1108, de Guayaquil. (Ver además tablas sobre la distribución de pulgas en ratas.)

(1) Mus muscuZus.-En Chile, hemos encontrado la pulga del hombre sobre ratones de Antofagasta e Iquique; en Perú, en Huacho y Contu- mazá. En Ecuador, Suárez, sobre 1,792 ¡W. musculus encuentra 37 P. +r&ns, en Quito, Latacunga, Ambato, Guamote, Alausf, Guasuntos y Nizag; Miño, la encuentra ocasionalmente en ratones de Quito, Guay- tacama, Latacunga, Ambato, Guamote, Guasuntos, Cebadas y Alausf.

(m) Didelphis paraguayen.& andina.--En Ecuador, Mino la encuentra comúnmente en raposa (Didelphis?) (1933) ; el autor (194041), la ha encontrado abundantemente en las localidades de Ambato, Alausf, Guamote y Riobamba.

(n) Mustela frenata aureoventr2s (chucum’).-M. en Ambato. (0) Sus scrofa.-La P. Zr&ans es muy abundante en cerdos y sus

chiqueros. El A. ha hecho constataciones directas, en Chile, en Antofa- gasta e Iquique y en Santiago; en Perú, en Huacho, Valle de Santa (Vinzos) y Piura; en Ecuador, en Alausf, Guamote, Ambato y Riobamba.

(p) Gablus gal&-M. en Chile, en Antofagasta; en Per%, en Huacho; en Ecuador, en Ambato.

(q) Zorro (Pseudatopex sp.).-En Ecuador, en Guamote (M., 1943). (r) Lobo (Pseudalopex cuZpaeus).-En Ecuador, en Sibambe (M.,

1943). (s) LugzXum vZsca&.-En Chile, al este de San Pedro de Atacama,

cordillera de los Andes, a cerca de 4,500 m. de altura (M., 1933). (t) Nidos de ratas.-El autor, en sus extensas investigaciones sobre

peste, ha encontrado P. irritans en nidos de ratas en los siguientes lugares: . ChiZe, en Antofagasta, Iquique, Mejillones, Tocopilla, Taltal; Perú, en

Chincha (Sunampe, Victoria y Tambo de Mora), Lima, Huacho, Ha- cienda Alpas, de Barranca, Haciendas Tambo Real y La Rinconada de Santa, Trujillo, Piura, Huancabamba (Siclamache, Soccha y Huaylas), Cajamarca y Tumbes; Ecuador, Shuid, Guamote, Ceceles, Guasuntos, Samborondón y Riobamba.

(u) Pulgas libres.-Hemos constatado la existencia de pulgas del hombre en los pisos de las viviendas, en Chile, desde Chiloe a Arica; en la zona central y norte del Perú, inclusive la Cordillera, hasta el Rfo Marañón (Balzas); en la costa ecuatoriana del Guayas y en la Cordillera y región interandina, desde Loja a Ibarra, en Ecuador.

Pulgas del hombre hemos encontrado libres en el campo, fuera de las

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viviendas humanas, en el Per&, en la campiña de Huacho, en el Valle de Santa (Vinzos), en la campiña de Trujillo (Huamán), en la campiña de Otusco-Usquil (Hacienda Chuquieongo, Conchor, La Quesera, Coina) y en los maizales de los cerros La Meza, Corteza y Pulgueras, distrito de Lancanes, Piura. En el Ecuador, en los maizales de la Quebrada de la Muerte, Cerro Negro, Bolasbamba, y, con menos frecuencia en las campiñas de Ambato y Riobamba, en los meses de verano.

Sub-familia XENOPSYLLINAE Wagner, 1939

Tribu XENOPSYLLINI Wagner, 1939

II.-GBnero XENOPSYLLA Glinkiewicz, 1907 (Sitz. d. k. Ak. d. Wis. Math-Naturw., 116 (Abt. 1): 385.)

2.-XENOPSYLLA ASTIA Rothschild,1911 (Nov. Zool., 18: 117, 1911)

El único hallazgo de esta pulga en Sud América, fue hecho por el A. en Antofagasta Chile, en 1929, constatando 5 ejemplares recolectados sobre R. norvegicus de la zona marltima, después de la importación por dicho puerto de unos 2 millones de kilos de sacos de yute provenientes de la India (M., 1937).

Q.--XENOPSYLLA CHEOPIS (Rothschild, 1903). (Ent. Month. Mag., lô(2): 85-86, 1903

(a) Hombre.-Constatada en Chile, por M. (inéd.) en Taltal, Toco- pilla, Mejillones, Coloso, Antofagasta, Iquique. Nunca encontrada en la zona de salitreras al interior de Antofagasta, ni en Chuquicamata, Chiu-Chiu o San Pedro de Atacama, entre 2,000 y 4,500 m. de altura, hasta los lfmites de Chile con Bolivia. En 193334, se examinaron ecto- parásitos de más de 200 nativos de la zona de San Pedro, sin encontrar X. cheopis. En Perú, Long (1935) encuentra X. cheopis (7) en ponchos y ropas de indios de Huancabamba. Mostajo, Colichón y Ramos Dfaz han hecho observaciones semejantes, sin especificación de localidades, sabiendose que esta pulga se halla ocasionalmente en las ropas de serranos y más frecuentemente en individuos de la Costa. El A. ha encontrado X. cheopis sobre individuos de Chincha, Lima, Huacho, Trujillo y Tumbes, en la Costa y en Cajamarca, Otusco (Colgauro y Hacienda Huallobamba) en la Sierra. No ha encontrado X. cheopis en hombres (ni sobre enfermos de peste) en más de 10 localidades de Huancabamba y 3 de Ayabaca, ni tampoco en el Distrito fronterizo de Lancones, desde Quebrada Seca hasta la frontera con Ecuador. En otras palabras, si bien es cierto que la X. cheopis ha alcanzado a Cajamarca, a 2,750 m. de altura y 387 km. al interior de Trujillo, en cambio todavía no ha pene- trado la Sierra piurana por arriba de 2,000 m. (Huancabamba), encon- trándose en el distrito de Changra, excepcionalmente sobre hombre,

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justamente a esta altura. En Ecuudor, Suárez no encuentra X. cheopis sobre hombre de ninguna de las localidades de la Sierra por él estudiadas; Miño, tampoco la menciona, en 1933, ni Eskey, en 1930. El autor tampoco las encontró en las encuestas de 1940-41, en la Provincia de Chimborazo.

(b) Cav2u aperea o C. porceZZw.-Citas específicas sobre el hallazgo de X. cheopis sobre cobayos no existen en el Perú. Macchiavello las encuentra en Monte Culebra, Huaral, Huacho (Hualmay) y Trujillo, excepcionalmente. En Ecuador, Suárez (1927) no la encuentra sobre 643 cobayos de 15 localidades de la Sierra, incluso Quito y Ambato; Miño (1933) la encuentra solo en cobayos de Huigra, con cierta frecuencia; Eskey, 1930, clasi&a 25 X. cheopis sobre 16 cobayos de Huigra y 2, en mayor numero de cobayos de Alausi, siendo negativa la investi- gación de cobayos de otros lugares del pafs. El autor, 1940-41, sobre más de 16,000 pulgas de cobayo recolectadas en más de 80 localidades de la Provincia de Chimborazo, no encontró X. cheopis.

(c) Canis fumiZiarz’s.-En Chile, M. en Antofagasta. (d) Felis domes&us.-En Chile, M. en Antofagasta. (e) Rattus rattus ruttus.-En Chile, posiblemente Vidal, en Valparaíso;

111. en Antofagasta, Iquique, Taltal y Tocopilla. En Perú, Eskey, Colichón, Ramos Díaz, en Lima y puertos de la Costa norte; el autor en Trujillo, Hacienda Chiclín, Hacienda Pucalá, Cayaltí, Raquia, Colgauro, Piura y Tumbes, y en Cajamarca, a más de 2,700 m. de altura, siendo éste el sitio de mayor altura en que la hemos constatado. Ramos Díaz, en la Montañita, Lambayeque. En Ecuador, Suárez la menciona en Guayaquil, Ambato y Alausí, pero no en Guaytacama, Latacunga, Rio- bamba o Guasuntos. El autor la encuentra en Quito y Shuid, en la Sierra y en Guayaquil.

(f) Ruttus ruttus ulexundrinus.-En Chile, hemos encontrado X. cheopis sobre esta especie, en Antofagasta, Iquique y otros puertos del Norte del pafs. En el Perú, Eskey, Colichón, Ramos Díaz, Long y Mostaj o, la han encontrado en diversas ocasiones, como la pulga principal de esta especie, pero desgraciadamente, fuera de Lima y algunos puertos peruanos, las localidades no han sido mencionadas explícitamente, pu- diendo sin embargo decirse con seguridad que la poseen todas las ratas alejandrinas de la Costa del Perú. El autor, desde 1945 hasta 1947, la ha individualizado en los Valles de Huaura (Zapata, Chonta), Ciudad de Barranca, Haciendas Las Vegas, Alpas, Alpacoto, Potao, Arguay, Puerto y ciudad de Supe, Hacienda San Nicolás, Haciendas Vinzos y La Rinconada, Trujillo y campiña de Huamán, Mampuesto, Pam- pas de Alejandro, Monserrate, Encalada, Pesqueda, Laredo, Barraza, La Merced y Chocope, Moche, Huallobamba (Sierra de Qtusco, 1500 m. aprox.), Puerto Eten, Monsefú, Pucalá, Villa Eten, Tumán, Piura y Tumbes. En Ecuador, Eskey (1930), la señala en Huigra y Guayaquil;

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Suárez (1927) en Latacunga, Salcedo, Ambato y Guayaquil; Miño (1933) no la especifica claramente sobre esta especie, al igual que Sáenz Vera, pero la encuentran en todos los sitios de la Costa en que existe esta especie murina, y en algunos de la Sierra; igual acontece con Eskey para varias localidades de la Sierra; el A. la encuentra en Quito, Ambato y Alausi.

(g) Rattus norvegicus.-En Chile, Demaría y Gallinato (1929) y , Gallinato (1930) y el autor, la señalan en Santiago, y éste ademas, (1929- 39), en Antofagasta, Iquique y otros puertos del Norte del país. En Perú, por los trabajos de Eskey, Mostajo, Colichón, Ramos Díaz, se sabe su ocurrencia en numerosos puertos y ciudades del litoral, pero desgraciadamente estas observaciones no se han publicado con suficiente detalle de localidades. Nuestras investigaciones de 1941 y 1945-47, señalan la X. cheopis sobre esta especie murina en Chincha (ciudad), La Victoria, Cañete (Casa Blanca, San Luis, Hualcará, San Vicente), Mala, Huacho (ciudad, Manchuria, Puerto, campiñas de Amay, Cruz Blanca, Luriana, Santa María, Hualmay, Carqu5.n Chico, Cruz de Cano, Cerro Avispán, Cerro Montero, Zapata, San Lorenzo, Chonta y Tambo Blanco) ; Huaura y Valles de Huaura y de Sayán (Haciendas Loza, Mazo, Chacaca, Acaray, Alcantarilla, Desagravio, Humaya, Caldera, El Car- men, Los Angeles, Ibis, Loreto, Quipico, Manf, Vilcahuaura, Andahuasi, Ingenio, San Felipe, Huanangui) ; San Damián, Barbacay, Aija; Ba- rranca, ciudad y Haciendas Paramonga, Las Vegas, Alpas; Chimbote, Santa y Haciendas del Valle (Tambo Real, La Rinconada, Vinzos, Santa Clara, San Luis, Pueblo Viejo, Tanguchi), Chingoyal, Guadalupe, San Bartolo, Trujillo, Pacasmayo, Hacienda Ucupe, Mocupe, Zaña, Pimentel, Hacienda Cayaltl. En Ecuador, Suárez (1927) en Latacunga, Quito, Ambato y Guayaquil; Eskey, en Guayaquil, y el autor, en este puerto, Babahoyos, Quito, Ambato y Huigra. Eskey examina lotes con X. cheopis, de Quito y Latacunga.

(h) Ratas (Referencia no especificada a Rattus de las tres especies domésticas: rattus, alexanc&nus, norvegz’cus). En Chile, Vidal en Val- paraíso y Gallinato, en Arica, Coquimbo, Iquique y Tocopilla. En Perú, Eskey y Colichón, en toda el área de la Costa. En Ecuador, Miño (1933) en Quito, Latacunga, Ambato, Guasuntos, Alausí y Huigra; Martínez, en Ambato; Eskey (1930), en Guayaquil, Ambato, Quito (9,350 pies de altura), Latacunga y Alausí. Eskey, Suárez y Miño, no la encuentran en ratas de Riobamba, Guaytacama o Guamote. El hallazgo de X. cheopis en Riobamba y Guamote, hecho por primera vez por el autor, en nidos de ratas, fu6 confirmado por Sáenz Vera en ratas de Riobamba, donde parece haberse establecido hacia 1940.

(i) Mus muscdus.-En Chile, M. en Antofagasta, Iquique y Santiago. En Perú, Eskey en Lia, y el autor en Piura, Tumbes, Huacho, Trujillo, y un solo ejemplar en 33 ratones de Los Encuentros (Lancones), posible-


mente llevado con el equipaje y material de nuestro personal, pues el hallazgo no fue repetido. En Ecuador, Suárez en Ambato, Alausf, Guasuntos y Nizag; Eskey, en Alausf, Ambato y Guayaquil, pero nunca en Quito; Mino, en Ambato, Guasuntos, Alausí y Huigra; M. y Martínez, en Ambato y M. en Guayaquil y Alausf. Punín, en Loja.

(j) Xus scrofa.-En Chde, M. en Antofagasta. En Perú, Eskey. (k) Diddphis sp.-En Perú, Eskey; el autor, en Ucupe, y, en Ecuador

en Ambato y AIausi. (1) GaZZus gaZZus.-En Perú, M. en Huacho.

Tribu ARCHmOPSYLLINI Handlirch, 1925 (Han&. Ent., 32033)

III.-Género CTENOCEPHALIDES StiIes & Collins, 1930 (Pd. Health Rep., 45(l): 1309)

4.--CTENOCEPE~LIDES CAKIS (Curtis, 1826) (Bit. EM., 3: 114)

(a) Hombre.-En ChiZe, M. la ha encontrado en ropas y habitaciones humanas, en todo el Norte de Chile, y en el Centro y Sur, hasta ChiloB, existiendo posiblemente más al Sur. La incidencia de esta pulga en personas, es mucho menor que en el Perú o Ecuador, siendo los hallazgos ocasionales. En Pemi, en toda la Costa, también se encuentran ocasionalmente sobre hombre. En Limoncarro, de un solo poncho se reti- raron 1,026 Ct. canis. En la Sierra, su frecuencia es mayor; en Huanca- bamba se encontró con frecuencia en ropas de indios; en Cajamarca, se obtuvieron 3 ejemplares de las ropas de una mujer. En Ecuador, Suárez la encuentra en Quito, Guaytacama, Salcedo, Ambato y Guamote, formando a veces más del 50% de las pulgas recolectadas en indios; Miño, en Quito, Latacunga, Ambato, Riobamba, Guamote, Guasuntos, Cebadas, Achupallas, Pungalá, Alausf, Huigra y Cañar. El autor, en cambio, examinando más de 100 localidades de la Sierra ecuatoriana, la encontró por excepción sobre las ropas examinadas en individuos, siendo en cambio frecuente sobre ropas sin uso colocadas en el suelo o cerca de éste.

(b) Cavia porcellus y Cavila aperea.-En Chde, el autor, en CaIama, Antofagasta e Iquique. En el Perú, en Huacho, Moche, Trujillo y Huancabamba (NI. inéd.). En el Ecuador, Eskey no la menciona en sus hallazgos; Suárez, en Quito, Guaytacama y AIausí, en baja proporcion; Miño, en Guaytacama, Latacunga, Ambato, Riobamba, Cebadas, Pun- galá; el autor, sobre más de 16,000 pulgas de cobayos de más de 70 localidades de la Sierra, solo encontró 16 ejemplares en Guamote y 3 en Aguaysacte.

(c) Can& fam&ar&. Encontrada por el autor en todos 10s perros que ha examinado desde ChiloB a Salinas (Santa Elena) y desde el nivel del

422 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA IMayo

mar hasta 4,500 m. de altura, en la Costa y la Sierra de ChiZe, Per% y Ecuador, a excepción de algunas localidades de la Pampa chilena de Antofagasta y Tarapacá (Oficinas Salitreras), donde la humedad es inferior al 15%. Suárez y Miño, la encuentran en perros de todos los sitios que examinaron en la Sierra ecuatoriana.

(d) Febis cZomesticus.-En Chile, el autor, en Antofagasta y Santiago. En Ecuador, Suárez y Miño, en Guaytacama.

(e) Ratas domésticas.-En Chile, DemarTa y Gallinato, la mencionan en ratas de Santiago, y Gallinato en Arica. En Perú la encuentra el autor, en R. norvegicus, en Chincha (La Victoria y ciudad), Huacho (Amay, Santa Maria, Hualmay y ciudad), en varias Haciendas vecinas a Sayán, en Tambo Real, La Rinconada, Vinzos, Santa Clara, San Luis, Pueblo Viejo y Chimbote, del Valle de Santa, en Pacasmayo, Ucupe y Cayalti. En R. rattus, su hallazgo es excepcional (Trujillo) ; en R. alexandrinus, la hemos encontrado en las localidades de Barranca, Tru- jillo, Cayaltf, Piura y Tumbes y en la Sierra de Trujillo (Huallobamba). En el Ecuador, Suárez la indica en R. norvegicus de Guayaquil y en R. rattus y R. alexandrinus, de Quito; Eskey, ~610 ocasionalmente en Guaya- quil; Miño en ratas de Guaytacama, Latacunga, Quito, Ambato, Rio- bamba, Guamote y Alausi, nunca muy abundante; Martínez, la señala en Ambato, y nosotros en Ambato, Quito, Alausf y Loja.

(f) Mus muscuZus.-En Chile, el autor, en Antofagasta. En Perú, en una ocasión, en Huacho. En Ecuador, Eskey no la encuentra nunca sobre ratones; Suárez, en Quito y Alausí, y Miño en estos puntos y Ambato y Cebadas.

(g) Gallus gaìZus.-El autor, en Antofagasta, Chile, y Huacho, Perú. (h) Lobo.-M. en Guamote, Ecuador. (i) Didelphis paraguayensis andina.-Miño en Quito y M. en Ambato

y Alausí, Ecuador. En Perú, en la zona de Trujillo. (j) Mustelafrenata aureoventris.-M. en Ambato, Ecuador. (k) Sus scrofa.-El autor, en Antofagasta, Chile, y en Vinzos, Ucupe, y

Moche, Per&, a veces muy abundante.

5.-CTENOCEPHALIDES FELIS FELIS (Bouché, 1835) (Nov. Act. Phys. Med. Atad., Caes. Leopold Carol 17(l): 505) Costa Lima y Hathaway, PuEgas. :113.1946

(a) Hombre.-En Chile, Antofagasta (M. inéd.). (b) Rattus rattus.-En Ecuador, Eskey en Guayaquil; el autor, en

Antofagasta, Chile. (c) Rattus aZexandrinus.-En ChiZe, M. en Antofagasta e Iquique; en

Perú, en Trujillo, Piura y Barranca; en Ecuador, en Ambato. (d) Rattus norvegicus.-En Chile, M. en Antofagasta e Iquique; en

Perú, en Huacho, Chiibote y Pacasmayo, excepcionalmente; en Ecuador, Guayaquil y Ambato también muy raras.

W8481 SIPHONAPTERA 423

(e) Felis domestkus.--Común en toda la costa del Pacifico, desde Santiago a Quito.

(f) Canis famzXar~s.-Frecuente; constatada en Santiago, Antofagasta, Iquique, Arica (Chile) ; Chincha, Huacho, Usquil, Ucupe, Lambayeque, (PemZ); Ambato y Alausf, (Ecuador).

(g) Cavia porceZZus.-En Per&, M. en Huaral; en Ecuador, en Hipo- longo (Ambato).

(h) Didelphis sp.-En Ecuador, M. en Ambato, a veces abundante. (i) Mustela frenata aureoventris.-En Ecuador, M. en Ambato. (j) Gallus gaZlus.-En Per& M. en Huacho.

Sub-familia SPILOPSYLLINAE Oudemans, 1909 (Ent. Ber., 2(47): 323)

Tribu SPILOPSYLLINI Beir, 1937 (part.)

IV.-Gdnero HOPLOPSYLLUS Baker, 1905 (Proc. U. S. Nat. Mus., 29: 128.)

Sub-género HOPLOPSYLLUS Baker, 1905

6.-HOPLOPSYLLUS ANDENSIS Jordan,1933 (Nov. Zool., 38: 343)

(a) Thomasomys sp. En Ecuador, Paramo de Guamaní “en el camino a Baiza, Región Oriental,” sirviendo para Ia descripción de Jordan. En el Perú, el autor encuentra un ejemplar sobre SyZviZagus sp. capturado en el caserío de Soccha, Huancabamba, a unos 2,000 m. de altura.

V.-GBnero CEDIOPSYLLA Jordan 1925 (Nov. Zool., 32: 103)

Sub-género CEDIOPSYLLA Jordan, 1925

7.-CEDIOPSPLLA SPILLMANNI Jordan, 1930

(a) Sylvilagus ecaudatus.-En Ecuador, Jordan (1930), sirviendo para la descripción de la especie. En Perú, el autor la encuentra en la zona rural circunvecina a Huancabamba, en tres localidades, entre 2,000 y 3,300 m. de altura.

(b) Cavia porcellus.-En Perú, el autor, en la zona de Soccha y Siclamache, a 10 km. de Huancabamba.

B.-FamiIia HECTOPSYLLIDAE Baker, 1904 (Proc. U. S. Nat. Mus., 27: 373)

Sub-familia HECTOPSYLLINAE Wagner, 1927

XX-Género TUNGA Jarocki, 1838 (Zool., 6: 50)

424 OFICINA SANITARIA PANAMIZRICANA Wwo

%-TUNGA PENETRANS (Linnaeus, 1758) (Xyst. Nat., 10 ed., p. 614, pwrt.)

(a) Hombre.-En Chile, se encuentra con frecuencia sobre hombre, especialmente en los criaderos de cerdos, habiéndola constatado desde San Carlos hasta Arica. En Perú, puede decirse lo mismo para las regiones de la Costa desde Lima a Tumbes y hasta más o menos 200 Km al interior y hasta una altura aproximada de 2,700 m. (Cajamarca), último punto investigado. En Ecuudor, ocasionalmente la hemos encontrado sobre ropas de indios de la zona de Ambato. En 1940-41, encontramos 27 en la Sierra, sobre más de 16,000 pulgas de hombre. Como es sabido, esta pulga tiene la particularidad que la hembra fértil perfora la piel del huésped, encontrándosela a menudo a nivel de los pliegues interdigitales del pie, o debajo de las uñas. La infección secun- daria trae como consecuencia la formación de infartos ganglionares, especialmente en la región inguino-crural, ganglios que suelen confundirse con los bubones pestosos. Los casos erróneamente diagnosticados como peste han sido vistos con gran frecuencia en Per& (Long, Mostajo) y Ecuador.

(b) Xus scrofa (domestz’cus) .- En la Costa Sur Occidental del Pacffico, la hemos encontrado sobre cerdos en todos los lugares en que se han recolectado pulgas sobre estos mamfferos, desde Chiioe hasta Quito. Es mucho más frecuente en los chiqueros que en los animales mismos.

(c) Ratas domésticas.-Al comienzo de las campañas antipestosas en Chile, Perfi y Ecuador, esta pulga fue frecuentemente encontrada sobre las tres especies del género Rattus comunes a estos países. Long y Mostajo (ined.) refieren el hallazgo de R. norveg&s con la cola repleta de nódulos formados por hembras grá;vidas de T. penetrans. Nosotros hemos hecho hallazgos similares en R. norvegicus de Santiago y Anto- fagasta (Chile), Chimbote y Huacho (Perú), Guayaquil y Ambato (Ecuador); menos frecuentemente sobre Rattus rattus y R. alexandr&s, aunque no excepcionalmente.

(d) Raltus frugivorus.-En Perú, en un ejemplar de Chiclayo y otro de Raquia (M. inéd.).

(e) Febis domestz’cus.-En Chile, 6 ejemplares sobre 23 gatos examinados en Antofagasta; en Perú, 2 sobre 1 gato de Huacho; en Ecuador, 5 sobre 17 gatos de Ambato y Alausf.

(f) CanZs famiZZaris.-En Chde, se halla frecuentemente en Anto- fagasta, Tocopilla, Iquique, Serena, Concepción, siendo más frecuente en la zona Norte. En Perú, en 12 lugares de la zona costanera, desde Lima al Norte. En Ecuador, no la encontramos, en más de 100 localidades de la Sierra, ni la mencionan Eskey, Suarez, Miño y Sáenz Vera.

(g) Cabra (Cupra hircuus).-En Peti, al norte de Piura (M. inéd.). (h) Ov& aries.-En Antofagasta y Calama, ChiZe. (i-j) Lama gZama y Lama gluma pacos.-En un lote de llamas y alpacas


del interior de San Pedro de Atacama, encerrado en un chiquero abando- nado. (Chile, cerca del límite con Bolivia.)

(1~) Vicugna wIcugna.-Sesenta y cinco ejemplares en 2 animales, en las mismas condiciones enunciadas en el párrafo anterior.

(1) GaZZzss gaZZus.-En Perú, M. en Huacho. (m) Cuviu porcellus y Cav~u uperea-En Ecuador (M. 1943), el hallazgo

de 1 T. penetrans hembra sobre más de 16,000 pulgas recolectadas en cobayos en cerca de 100 localidades de la Sierra interandina, Provincia de Chimborazo, en 194041.

(n) PuIgas libres.-En terrenos arenosos y en chiqueros, esta pulga es más frecuente que sobre animales.

VII.-GBnero HECTOPSYLLA Frauenfeld, 1860 (Silz. d. K. Alc. Wiss. “Wein,” Muth.-Nat., 40: 462)

9.-HEcTopsYLL.4 PSITTACI Frauenfeld, 1860. (Xitn. d. Ii. Ak. Wiss. Wien, Math.-Nat., 40: 462)

(a) Aparte de los hallazgos anteriores, en Chile, nosotros hemos encontrado esta pulga sobre CoZumba Zivia de Chile y Perú, y en este último país, sobre Tordus sp., lechuza (no clasificada) de la campiña de Huacho y sobre Histiotus montanus (?) de Huaura. También se han encontrado ejemplares sobre Didelphis sp. de Trujillo.

lO.-HECTOPSYLLA CONIGER Jordan & Rothschild, 1906. (Thomps. Yates & Johnst. Lab. Rep. (n.s.)), 7: 59.

En Bolivia, Jordan y Rothschild, sobre Conepatus arepuipaa, de Pampa Olliga.

ll.-HECTOPSPLLA SUAREZI Fox, 1929. (Ent. News, 40: 218)

(a) Hombre.-En Chile y Per& no la hemos encontrado sobre hombre en Ecuador, en dos ocasiones, sobre ropas, en las zonas de Ambato y Alausí.

(b) Cavia aperea-Fox (1929), en Ecuador; el autor, en 1940, sobre 10,116 pulgas de cobayo de 76 localidades de la Provincia de Chimborazo, encontró 9 H. suarezi en Flores y 5 en Quimiag (Guabulag) ; en 1941, sobre 5,696 pulgas de cobayo, encontr6 12, en Flores, También se encontraron ejemplares sobre cobayos de Quito, Alausí y Ambato. Eskey (1930) encuentra 33 H. suurexi, sobre 14 cobayos de Guamote; 1 en cobayos de Riobamba y 14 en cobayos de Nizag (Alausf). Suárez (1927) la recolecta sobre cobayos de Quito, Guaytacama, Latacunga, Salcedo, Guamote, Ambato, Guasuntos y ToIte; Miño, en algunas de estas Iocali- dades y además, en .Riobamba, Cebadas y Pungalá. En Chile, a lo menos algunos ejemplares de cobayos de Antofagasta, examinados por el autor, fueron portadores de esta especie. En Perú, Eskey no la

426 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA Wwo

menciona definidamente, en 1932. El autor la ha encontrado en cobayos sobre todo de la parte norte del pafs, en Trujillo, Lambayeque y Ucupe (1941).

(c) Ratas domesticas.-En Ecuador, Suárez (1927) en R. laorvegicus de Quito y Guaytacama y en R. rattus y R. alexandrinus de este último lugar (32 sobre 174 ratas); Miño (1933) en ratas de Guaytacama; Martfnez, en Ambato; el autor, en Ambato, Alausf, Quito, Riobamba, sobre las 3 especies murinas y ocasionalmente; Eskey, 1 ejemplar en un lote de pulgas de ratas de Quito. En Chile, Macchiavello la encuentra en Antofagasta sobre las 3 especies murinas domésticas, con relativa frecuencia y en Iquique, sobre R. alexandrinus. En el Perú, el autor la ha encontrado sobre R. norvegicus, en Chincha, Huacho, Chimbote y sobre R. alexandrinus, en Trujillo, Piura y Tumbes, siendo más frecuente al Norte del psis. El lugar más alto en que ha sido encontrado, es en Huancabamba, sobre Orynomys, a 2,000 m. de altura.

(d) Mus musculus. En Ecuador, Miño, en Guaytacama.

12.~HECTOPSYLLAESREYI Jordan,1933 (Entomologist, 66: 14)

(a) Cavia aperea .-En Per%, señalada por Eskey. Mencionada en diversas referencias, sin localización geográfica precisa. El autor la encuentra en Huacho; Eskey, en Lima. En Bolivia, se la menciona en cobayos de La Paz. En Ecuador, una parte de las pulgas previamente clasificadas como H. suarexi, han sido H. eskeyi, según pude verificarlo en ejemplares montados de proveniencia desconocida.

(b) Rattus norvegicus.-Encontrada en Perú, por Eskey, posiblemente en Lima; por nosotros en Huacho, con cierta abundancia.

(c) Rattus aZexun&inus.-En Per& ocasionalmente en la zona de Moche y Trujillo.

(d) Gallus ga?lus .-En Perú, sobre gallinas de Huacho, en gran canti- dad (M. inéd.).

(e) Or@oZugus sp (en cautiverio).-En Per& ciudad de Huacho (M. inéd.) .

(f) Canis jamiliaris .-En Perú, en Huacho, por el autor.

VIII.-GEnero RHYNCHOPSYLLUS Hdler, 1880 (AM. Naturg., 4: 82)

X3.-%TYNCHOPSYLLUS PULEX Haller,1830 (Ah. Naturg., 46: 72)

(a) Lechuza (7).-E n P er%, el autor, en la campiña de Huacho. (b) Histiotus sp.-En Per& el autor, en la campiña de Huaura y

ciudad del mismo nombre.

Wd SIPHONAPTERA 427

Sub-familia ECHIDNOPHAGINAE Wagner, 1927 (Am. Mus. 2001. Atad. Sci., U.R.S.S., 28: 454)

IX-Género ECHIDNOPHAGA Olliff, 1886 (Proc. Linn. Soc. N. S. Wales, (2): 1: 172)

la.-ECHIDNOPFUGA GALLINACEA GALLINACEA (Westwood, 1875) (Ent. Mon. Mag., ll: 246)

(a) Hombre.-En Chile, el autor la ha encontrado en Antofagasta e Iquique. En el Perú, en el Valle de Santa y Huacho, y en Ecuador, 6 ejemplares, sobre 7,225 pulgas recolectadas sobre hombres y ropas en la zona interandina, y solo, en la localidad de Pagma, Huigra (1940-41).

(b) Cavia potcellus y Cavia aperea.-En Chile, el autor, en Antofa- gasta; en Perú, en Huacho, Hualmay y Santa. En Ecuador, ni Eskey, ni Suárez, ni Miño, la mencionan, y el autor no la ha encontrado entre más de 16,000 pulgas de cobayos examinadas desde 1940 a 1942.

(c) Ratas domésticas.-En ChiZe, Demarfa, Gallinato y Vidal, no la mencionan para Santiago o Valparaíso. Nosotros la hemos encontrado en Antofagasta, Iquique, Taltal, Tocopilla, Arica, sobre las tres especies murinas domésticas, R. rattus, R. alexandrinus y R. norvegicus. Colichón y Eskey, la encuentran en Per& sin dar detalles sobre la repartición geográfica. El autor la encuentra con menos frecuencia que en Chile, sobre R. norvegicus de Huacho (ciudad y puerto), Amay, Cruz Blanca, Hualmay, Cerro Avispán, Huaura, Hacienda Loza, Hacienda Alcanta- rilla, Hacienda El Carmen, Hacienda Chacaca, y Andahuasi; en R. raltus, de Trujillo y Tumbes, y en R. alexandrinus, de Barranca, Puerto de Supe, Trujillo, Huamán, Mampuesto, Hacienda Santo Tomás, Fundo Pesqueda, Fundo San Andrés, Monsefú y Tumbes. En Ecuador, no se la menciona específicamente.

(d) Canis jamiZiaris.-En Pera, el autor, en Huacho. (e) Didelphis paraguayensis andina.-En Ecuador, Macchiavello en

Ambato. En Perú, en “muca” de la Provincia de Trujillo, y D. marsupialis efensis.

(f) GaElus gal&-Aunque la especie es cosmopolita, no se ha mencionado especialmente en los escritos de los autores consultados en este trabajo; pero si en otros relacionados con veterinaria de aves, siempre en forma vaga y sin precisar repartición geográfica. En Huacho, Per& abundante sobre aves de corral.

(g) CoZumba Zivia.-En Perú, el autor, en Trujillo y Huacho. (h) Orycfolagus cuniculus. -En conejos en cautiverio de Huacho, Pera,

(M. ined.). (i) Sus scroja.-En Per&, Vinzos, Valle de Santa (M. inéd.).

C.-Familia MALACOPSYLLIDAE Baker, 1905 (PTOC. 17. 8. Nai. &fuo., 2% 1%)

428 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA Wwo

Sub-familia RHOPALOPSYLLINAE Oudemans, 1909 (Ent. Ber., 2: 326)

X.-Ghnero RHOPALOPSYLLUS Baker, 1905 (Proc. U. X. Nat. Mus., 29: 128)

1.5.~RHOPALOPSYLLUS CACICUS CACICUS (Jordan & Rothschild, 1908) (Parasitoz., 1: 73)

Jordan y Rothschild, en Per%, Perene, sobre Tatu novemcinctus, y en Huancabamba. Nosotros la hemos encontrado en la zona rural de Huancabamba en Sylvilagus eeaudatus y Cavia porcellus. (Tutu novemc&ctus-Dasypus novemcinctus).

16.-RHOPALOPSYLLUS LUGUBRIS Jordan Bs Rothschild, 1908. (Parasitol., 1: 74)

Originalmente descrita en Bolivia, Charuplaya, sobre Icticyon venaficus y en Perú, Oxapampa, sobre Felis y “hamster.” Mencionada también en Didelphis marsup2alG etensis (Ver Costa Lima, p. 141).

Ii'.---RHOPALOPSYLLUS AUSTRALIS TUPINUS Jordan & Rothschild, 1923. (Ectoparas., 1: 328)

Originalmente descrita en Boliviu, Charuplaya (1917) sobre Icticyon venaticus. Un macho de Perú, Huancabamba, sobre “caehuno.”

XI.-Género POLYGENIS Jordan, 1939 (Nov. ZOOE., 41: 444)

18.-POLYGENIS ROBERT1 (Rothschild, 1905) (Nov. Zool., 12: 479)

Jordan (Ectoparas. 1: 330-331) la menciona en Ecuador, Cudaquiza a 2,500 pies de altura, sobre Oryxomys stolzmanni. La hemos encontrado en Perú, en Dasypus novemc&fus, y en la zona de frontera con Ecuador, en Oligoryzomys longicuudatus stolzmanni.

19.-PoLYoENrs LITUS (Jordan & Rothschild, 1908) (Pura& ., 1: 80)

Posiblemente correspondan a este especie algunas pulgas recolectadas en el Distrito de Lancanes, Piura, cerca de la frontera con Ecuador, en &iurus stramineus nebouxii y cricetinos aún no clasiflcados.

20.-POLYGENIS LITARGUS (Jordan & Rothschild, 1923) (Ectoparas., 1: 340)

Originalmente descrita en ejemplares de Ecuador, San José, al Oeste de Huigra, a 1,750 pies de altura, en Melanomys ( = Oryzomys) phoeopus. En Per& Callejón de Huaylas (Cañón Verrugas) 1 macho recolectado por C. H. Townsend, sobre rata, en 1913. En Perú, la menciona Eskey, 1932, y Ramos Diaz, 1937, en SzIgmodon peruanus, de Trujillo. En la

w4 SIPHONAPTERA 429

frontera de Perú y Ecuador, Departamento de Piura, Distrito de Lanco- nes, Quebradas de Encuentros, Jabonillos y Pasayo, la hemos encontrado en Oryzomys xanthaeolus xanthaeolus, Oryzomys nitidus, Olygoryzomys longicaudatus stolmanni, Rhipidomys equatoris, Akodon mollis orophilus, Sigmodon sim,onsi, Sciurus stramineus nebouxii y Sciurus stramineus stramineus; en la zona rural de Huancabamba, en Akodon mollis orophilus, fylvilagus sp., Oligoryzomys longicaudatus stolzmanni; en ambas localidades, sobre hombre y a campo libre y en nidos en troncos de árboles. En un Cavia porcellus de Soccha, Siclamache, Huancabamba. En el Sur del Perú, en Nazca, sobre Oryzomys xanthaeolus icu.

21 .-POLYGENIS DENDROBIUS (Wagner, 1939). (Zeits. Parasitenk., ll: 63)

Descrita para Bolivia, en Opisthocomus hoazin.

XII.-G&ero TIAMASTUS Jordan, 1939 (Nov. Zool., 41: 444)

22.--!~AMASTUS CAVICOLA (Weyenberg, 1881) (Periód. Zool., 3: 274)

(a) Hombre.-En Chile, en Antofagasta. En Perú, Ramos Dfaz, 1938, en La Montañita, Sierra de Lambayeque; Long, en Huancabamba; nosotros, en Huacho, Paramonga, Valle de Santa, Trujillo, Otusco, Cajamarca, Celendin, Villa Eten, Huancabamba, Tumbes. En Ecuador, Long, 1935, sobre hombres y sus ropas, en Nizag; Suárez no la menciona; Miño, en Guaytacama, Guamote y Cañar. En 1940, sobre 6,143 pulgas de hombre, ~610 103 fueron T. cavicola y correspondieron a solo 2 de 54 localidades examinadas en la zona interandina, Provincia de Chimborazo. En 1941, sobre 7,225 pulgas recolectadas en ropas y habitaciones humanas, de la misma zona, 102 fueron T. cavicola correspondiendo a 6 de 70 localidades examinadas (Sibambe, Puculpala, Gusutús, Flores, Gom- puene y Tilange). Además hemos encontrado esta pulga en ropas de hombre de Ambato y Quito (Valle de Chillos).

(b) Cobayos (Cavia uperea y Cavia porcelZus).-En Chde, el autor la encuentra en la zona norte, en Antofagasta, Iquique, Calama, San Pedro de Atacama, hasta el límite con Bolivia. En Bolivia, es la pulga común del cobayo, sin conocer la distribución geográfica exacta. En Per& se encuéntra abundantemente en toda la Costa y la sierra, habiendo sido señalada por Eskey, Long, Mostajo, Colichón, Ramos días y otros. Nosotros la hemos encontrado invariablemente en todos 10s ejemplares de cobayos que hemos examinado, desde Chincha a Tumbes, y desde los puertos hasta la sierra al oeste del Río Marañón. En Ecuador, ha sido encontrada por Suárez (comunicación personal) aunque no la menciona en sus publicaciones. Eskey, 1930, la señala en Huigra, Guamote, Latacunga, Quito y todo la Sierra, hasta 10,000 pies de altura;

430 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA @favo

pero no en los cobayos u otros animales de la zona costanera o Guaya- quil. Miño, 1933, la menciona en Quito, Guaytacsma, Latacunga, Ambato, Riobamba, Guamote, Guasuntos, Cebadas, Achupallas, Pun- galá, Alausí, Huigra, Cuenca y Cañar. En la encuesta realizada con Sáenz Vera, en 1940, se recolectaron 10,116 pulgas en cobayos de 76 localidades, siendo 8,309 T. cavicola, con un promedio de pulgas por cobayo, de 30.5. En 1941, de 5,696 pulgas recolectadas en cobayos de 43 localidades, menos de 200 correspondieron a otras especies. La encuesta comprendió la zona interandina, sectores de Sibambe, Guasuntos, Riobamba, Chambo, Alausf, Guamote, Huigra, Flores, Pungalá, Qui- miag. También se investigaron separadamente 13 localidades de Tungu- rahua, incluso la ciudad de Ambato y 6 de Cotopaxi, Quito e Ibarra.

(c) Ratas domésticas.-En Chile, no se ha mencionado la presencia de esta pulga en ratas, ni nosotros la encontramos en la zona norte del país. En Perú, Eskey la menciona en 1932, sin especificar huésped ni distribución geográfica. Igualmente Colichón, 1934. Nosotros la encontramos en R. alexandrinus de La Rinconada (Valle de Santa), Trujillo, .Huamán y Piura, y en R. norvegicus, de Huacho, Hualmay, Haciendas Loreto y Chacaca, de Huaura. En Ecuador, Eskey, 1930, menciona 1 ejemplar, en 3 ratas de Guamote; 2, en 62 de Quito; 1, en 14 ratas de Ambato; 1, en 1 rata de Riobamba, y 2, en 7 ratas de Latacunga. Miño, la encuentra ~610 en Latacunga y Ambato, y Martínez y el autor, en Ambato.

(d) ikíus musculus.-En Ecuador, Eskey encuentra 2 T. cavicola sobre 170 M. musculus de Ambato y 8, sobre 5, de Riobamba. Nosotros la hemos encontrado en Alausí, Ambato, Riobamba, Quito y Latacunga; Miño, en Guaytacama y Ambato.

(e) Conejos silvestres.-En Ecuador, Eskey señala que se la halla con cierta frecuencia; en Huancabamba, hemos encontrado escasos ejemplares en conejos (Sylvilagus sp.) capturados en la vecindad de chozas con cobayos.

(f) Kerodon boliviensis.-Descrita por Rothschild, 1904, como Pulex concitus (Nov. Zool., ll: 615), ejemplares provenientes de Sucre, Bolivia.

Sub-familia PARAPSYLLINAE Wagner, 1939.

XIII.-G6nero PARAPSYLLUS Enderlein. 1903 (Deut. Ticfsee. Ezped., 1898-99, 3: 280)

23.-PARAPSYLLUS LONGICORNIS AUSTRALIACUS Rothschild, 1903 (Nov. Zool., 16: 62)

Descrita en 1903, por Rothschild como P. Eongicornis (nec longicornis Enderlein, 1901), solo se ha mencionado en Australia y Chile, en Eu- dypEula minor y Pufinus tenuirostris.

mJ1 SIPHONAPTERA 431.

24.-PARAPSYLLIJS LONGICORNIS HUMBOLDTI Jordan, 1942. (Eos, 18: 18)

Mencionada por Jordan en Chile, Valparaiso, en nidos de .&dypfes humboldti.

XIV.-Género TETRAPSYLLUS Jordan, 1931 (Nvv. zooz., 37: 135)

25.--TETRAPSYLLUS CORFIDII (Rothschild, 1904) (Nov. ZooZ., ll: 619)

Originalmente descrita en Chile, Valparaíso, en Ocfodon degus y Abrocoma bennetti.

26.--TETRAPSPLLUSA~~PLUS (Jordan&Rothschild,1923) (Ecfoparas., 1: 366)

Descrito en Chile, Valparafso, en Akodon longipilis y Rattus rattus, y en Temuco (por error los autores mencionan Termuco), en Rattw norvegicus.

27.--TETRAPSYLLUS COMIS Jordan, 1931 (Nov. Zool., 37: 135)

En Ecuador, Chimborazo, en Sigmodon sp., 1 hembra.

28.-TETRAPSYLLUS LITIS Jordan, 1936. (Nov. Zool., 39: 307).

En Chile, sobre Marmosa elegans (No incluida en Jordan, Eos, 1943.

XV.-Género DELOSTICHUS Jordan, 1942 @os, 1s: ll)

29.-DELOSTICHUS COXALIS (Rothschild, 1909) (Nov. Zool., 16: 62)

En Cltile, Valparaíso, en Ocfodon degus, Akodon olivaceus, Ruttus raftus raftus y Abrocoma bennefti (Jordan y Rothschild).

30.-DELOSTICHUS XENURUS (Rothschild, 1914) (Nov. Zool., 21: 241)

Descrito en Perú, Ninahuanchi, a 13,000 pies de altura, en Lagostomlss sp. (viscacha).

31.-DELOSTICHUS OCTOMPS Jordan, 1942. (Rev. Insf. Bacf. C. Malbrdn, 10: 427)

Encontrado en Chile, flanco oriental de los -4ndes, en Octomys mimax (M. inéd.).

XVI.-Género ECTINORUS Jordan, 1942 (Eos, 18: 11)

32.-ECTINORUS COCYTI (Rothschild, 1904) (Nov. ZooZ.,~ll: 167)


Descrita en CMe, en ratas cavadoras (Octodon degus?) de los Cerros de la Costa y en Valparaíso, en Spatacopus cyanus y Abrocoma bennetti.

XVII.-GBnero DYSMICUS Jordan, 1942 (Eos, 18: 13)

33.-DYSMICUS SIMONSI (Rothschild, 1904) (Nov. zooz., ll: 616)

Descrita para Bolivia, Challapata, en Octodonfomys gliroides, y Potosí, en Akodon albiventer.

34.--DYSMICUS CLA.VIGER (Rothschild, 1914) (Nov. Zool., 21: 239)

Descrita para Perti, cerca de Oroya, 12,000 pies de altura, sobre Lagostomus sp. (viscacha).

%.---DYSMICUS SENTUS (Rothschild, 1914) (Nov. Zool., 21: 241)

Descrita para Perú, cerca de Oroya, en Lagostomus sp.

36.-DYSMICUS VISCACHAE (Wagner, 1937) (Zeik. Pamsitenk., 9: 699)

Descrita para Perú, en Lagostumus sp. D.-Familia ISCHNOPSYLLIDAE Wagner, 1928.

(Am. Mus. Zool. Atad. Sci. U.R.S.S., 28: 454)

Sub-familia ISCHNOPSYLLINAE Wagner, 1928.

XVIII.-G6nero ISCHNOPSYLLUS Westmood, 1883 (Ent. Mont. Mag., 1: 362)

37.-Isc~-~o~sy~~us (cercano a) REDUCTUS. Posible nueva especie, encontrada en Chile, interior de Tarapacá, en

Myotis chiloensis atacamensis (Mac. ined.).

XIX.-GBnero MYODOPSYLLA Jordan & Rothschild, 1911 (Nov. Zool., 18: 88)

38.-MYoDOPSYLLA WOLFFSOHNI (Rothschild, 1903) (Nov. Zool., 10: 321)

Encontrado en Chile en Myotis albescens y sobre murcielago, sin deter- minación de especie.

Xx.-Género STERNOPSYLLA Jordan & Rothschild, 1921 (Ectopnras., 1: 158)

39.----&cERNoPsYLLA DISTINCTA (Rothschild, 1903) (Nov. Zool., 10: 325)

Descrita en murciélagos de Chile, Paraguay y Brasil (Molosus obscurus

l

lQ&?] SIPHONAPTERA 433

obscurus); no hay nuevas menciones sobre su presencia en la costa sur- occidental de América.

$O.-STERNOPSYLLA TEXANA (Fox, 1914) (U. S. Hyg. Lab. Bull., 97: 16).

Mencionada en el Perú, por Eskey, 1932, sobre murciélago, sin deí?nir huésped ni localidad.

E.-Familia STEPHANOCIRCIDAE Wagner, 1936 (Tier. Mitt., 6(2)17: 4) (Zeits. Parasitenk., 9: 714, 1937)

Sub-familia CLEOPSYLLINAE Wagner, 1939 (Aphan., 77)

XXL-Género CLEOPSYLLArRothsehiId, 1914 (Nov. 2001.,21:246)

hl.-CLEOPSYLLA TOWNSEND1 Rothschild, 1914 (Nov. Zool., 21: 247)

Descrita en Ecuador y Per& sobre Sigmodon y Thomasomys.

Sub-familia CRANEOPSYLLINAE Wagner, 1939

XXIL-GBnero TIARAPSYLLA Wagner, 1937 (Zeits. Parasftenk., 9: 70)

42.---TLARAPSYLLATITSCEACKI Wagner,1937 (Zeits. Parasitenk., 9: 709)

Descrita en Lagidium y Lagostomus, de Perú

XX?II.-GBnero NONAPSYLLA Wagner, 1938 (Zeits. Parasitenk., 10: 132)

&.--NONAPSYLLA ROTHSCHILD1 Wagner, 1938 (Zeits. Parasitenk., 10: 132)

Descrita en Opisthocomus hoazin de Bolivia, Rio Yapacani, Santa Cruz,

XXIV.-G6nero CRANEOPSYLLA Rothschild, 1911 (Nos. Zool., 18: 120)

44.-CRANEOPSYLLA WOLFFHIJEGELI (RothschiId, 1909) (Ent. Man. Mag., 45: 8)

En Chile, la hemos encontrado en Akodon sp. de Atacama. En Perú, sobre Cavia aperea pallidior y Oryxomys xanthaeolus ica, de Nazca y Arequipa; sobre Akodon mollis orophilus, de Siclamache, Huancabamba. En Ecuador, sobre ratas silvestres de la Provincia de El Oro y Loja.

434. OFICINA SANITARIA PANAMERICANA Waw

XXV.-Género PLOCOPSYLLA Jordan, 1931 (Nov. Zool., 37: 138)

45.-PLOCOPSPLLA WOLFFSOHNI (Rothschild, 1909) (Ent. Mon. Mag., 45: 9)

Originalmente descrita en Chile, sobre Akodon long+s, Akodon olivaceus y Phyllotis darwinii.

46.--PLOCOPSYLLA PALLAS (Rothschild, 1914) (Nov. Zool., 21: 250)

Descrita originalmente en el Perú.

47.-PLOCOPSYLLAENDERLETNIwa@er, 1933 (Mitt. Zool. Ber., 18: 357)

i:Descrita originalmente para BolGia.

48.-PLOCOPSYLLA ACHILLES (Rothschild,1911) (Nov. Zool., 18: 120)

Descrita en Ecuador, sobre Caenolestes, Oryzomys albiguìaris, Phytlotis xanthopygus y Thomasomys.

49.-PLOCOPSYLLAPHOBOS, Jordan,l931. (Nov. Zool., 37: 139)

Descrita en Ecuador, sobre Thomasomys.

~~.-PL~~~P~YLLA HECTOR Jordan (Nov. zooz., 37: 139)

En Ecuador, sobre Thomasomys.

61 .-PLOCOPSYLLA HEROS Jordan, 1933. (Nov. Zool., 38: 345)

En Ecuador, Jordan, 1933, sobre Crypfotis equatoris, Cryptotis thomasi y Sigmodon sp. (Bermejí, Quebrada Pichan, Pichincha y Chimborazo).

XXVL-Género SPHINCTOPSYLLA Jordan, 1931 (Nov. Zool., 37: 141)

52.-$PHINCTOPSYLLA ARES (Rothschild, 1911) (Nov. Zool., 18: 121).

En Chile, sobre Akodon olivaceus.

~~.--SPHINCTOPSYLLA INCA (Rothschild, 1914) (Nov. Zool., 21: 249, 251)

En Ecuador y Perú, en Oryzomys y Thomasomys.

~~.-$?PHINCTOPSYLLA TOLMERA (Jordan, 1931) (Nov. Zool., 36: 314)

En Ecuador, sobre Neomys, Oryzomys y Thomasomys.

%.--SPHINCTOPSYLLA SPILLMANNI Jordan, 1933. (Nov. Zool., 38: 346)

Descrita para Ecuador, Pichincha, en Caenolestes fuìig&zosus.

F.-Familia HYSTRICHOPSYLLIDAE Baker, 1905 (Proc. U. S. Nat. ikfus., 29: 124, 136, 157)

Sub-familia MACROPSYLLINAE Wagner, 1939 (Aphan., 78.)

XXVIL-Genero CTENOPARIA Rothschild, 1909. (Nov. ZooE., 16: 66)

56.-CTENOPARIA INOPINATA (Rothschild, 1669) (Nov. Zool., 16: 67)

En Chile, sobre Akodon okkaceus.

Sub-familia HYSTRICHOPSYLLINAE Tiroboschi, 1904. (Arch. Paras&, 8: 242, 29G)

XXVIIL-GBnero CTENIDIOSOMUS Jordan, 1931 (Nov. Zool., 36: 311)

57.--CTENI~OSOM~S SPILLMZANNI Jordan,1931 (Nov. ZooE., 36: 311)

Descrita en Neomys: Ecuador. Nosotros la hemos encontrado en nido de roedor de Sicairo, Provincia de EI Oro. En el Perú, tenemos una pequeña serie de Huancabamba, ciudad de HuayIas, retirada de un nido. El macho de esta especie no ha sido descrito. Los machos de Perú, difieren del hnico macho de Ecuador, siendo posible que se trate cuando menos de 2 sub-especies diferentes.

Sub-familia LEPTOPSYLLINAE JelIison & Good, 1942 (Nat. Inst. Health Bd., 178: 8)

Tribu LEPTOPSYLLINI Beier, 1937 (part.)

XXIX.-Gdnero LEPTOPSYLLA Jordan & Rothschild, 1911 (Nov. Zool., 18: S5)

58.~LEPTOPSPLLA SEGRIS (Schönherr, 1816) (KongE. Pet. Akad. Nya Hundl., 32: 98)

(a) Hombre .-Nosotros en Antofagasta, ChiZe, y en Contumazá, Perú, hemos encontrado esta pulga en ropas humanas, dentro de habitaciones, pero nunca sobre ropas en uso, con excepción de un individuo cuidador de un almac&, que dormía sobre sacos.

(b) Ratas.-En Chile, la hemos encontrado en ratas domésticas (R. rattus, R. alexandrinus y R. norvegicus) en los puertos del Norte del pafs, desde Coquimbo a Arica, incluyendo Antofagasta, Tocopilla, Taltal, etc. El grado de infestación de ratas, depende en gran parte de la extensión

436 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA @faYo

y densidad de la poblaci6n de Mus musculus, siendo nula donde no existe esta especie. Sin embargo anotamos mas adelante la observación que en algunas ciudades de la Sierra peruana, la L. seg&, es la única pulga que parasita al género Rattus. Este acontecimiento tiene importancia para explicar ciertos aspectos de la biología púlida. La L. segnis fué señalada en Santiago por Damaría y Gallinato; en Valparaíso, por Vidal; en Coquimbo y Huasca, por Gallinata.

En Perú, Eskey la enumera entre sus hallazgos, posiblemente con relación a Lima y Callao. Long, Mostajo, Ramos Díaz, Colichón, la encuentran sobre ratas en diversos puntos del pafs, sin mencionar huésped, ni repartidón geografica. Ramos Díaz, 1938, la encuentra sobre R. rattus en la Sierra de Lambayeque, La Montañita. Nosotros la hemos encontrado como ectoparásito único de las R. alexandrinus de Contumazá y de Usquil y de R. rattus rattus, de la Zona de Chuquizongo, al interior de Trujillo, Sierra de Otusco. Esta parasitacion exclusiva sc510 se observa a alturas superiores a 2,000 o 2,500 m. en sitios en que no existe X. cheopis. Por debajo de esta altura, ambas especies pueden coexistir sin que la L. segwis sea la predominante. Se la encuentra con frecuencia en la zona costanera del Departamento de La Libertad, en especial en la campiña de Trujillo, siendo más abundante en los nidos de ratas, que en las ratas mismas. Menos frecuentemente se encuentra en Piura y Tumbes. En Rattus rattus de la Costa, no abunda tanto como en la Sierra. La hemos hallado en Trujillo y Piura, y zona de Chiclayo. En Rattus norvegicus, su presencia es ocasional, recolectando pocos ejemplares en el Valle de Chincha, en Chimbote y Valle de Santa (Hacienda Tambo Real), en Huacho y Valle de Sayán y Huaura; en Chilete.

En la zona desierta del Norte de Chile, el M. muscuZu.s es el roedor doméstico por excelencia y no tiene pulgas, debido, como hemos dicho a la baja humedad ambiente, tal vez menor de 150Jo. En los valles de Calama y otros, entre 2,000 y 3,000 m. de altura, reaparece la L. segnis, en proceso de difusión, sobre murinos domésticos.

En Ecuador, Suárez la señala en R. alexandrinus de Quito, Guay- tacama, Latacunga, Ambato, Alausí y Guayaquil; Eskey, señala que es la pulga murina más frecuente en Guamote y Quito, que se encuentra en las ratas de Toda la Sierra, con excepción de Huigra y Riobamba; Martmez, la señala con frecuencia en Ambato, al igual que nosotros; Miño, en los lugares mencionados por Suárez, y además en Guasuntos, Cebadas, Achupallas, Pungalá, Alausi y Huigra. Sobre R. rattus rattus, Suárez la señala especialmente en Guaytacama, Guasuntos y Alausí, y sobre R. norvegicus en Quito, Guaytacama, Guamote y Guayaquil. En 1941-42, la encontramos sobre Rattus de Achupallas, Pungalá y varias localidades de la Provincia de Loja y Zaruma.

f9.$81 SIPHONAPTERA 437

(c) Mus musculus.-Es la pulga propia de esta especie. En C%Ze, se la señala desde Puerto Montt (posiblemente también m8s al sur)

L hasta Arica, con excepción de Ia zona desierta del norte. En Perú, en todo el territorio investigado, de norte a sur y hasta el Río Marañón (Balsas), ocurriendo seguramente también en la montaña. En Ecuador, Eskey la encuentra difundida por toda la Sierra, excepto Huigra y Rio- bamba; pero Suárez, Miño y nosotros, con Sáenz Vera, la encontramos también en estas localidades. Sáenz Vera, Ia encuentra abundante en Loja y El Oro. Es posible que existan variedades o razas, como por ejemplo las L. segn2s de Huancabamba, en que hemos encontrado grados variables de desarrollo del ojo y otras pequeñas peculiaridades Idcales.

(d) Ratas silvestres.-En la zona de Huancabamba, Perú, encontramos excepcionalmente algunas L. segnis sobre Akodon mollis orophilus, capturados en viviendas humanas de la Hacienda Siclamache.

(e) Cavia aperea.-Suárez, en Ecuador, Quito, indica la presencia de esta pulga sobre cobayos; Miño, lo mismo, para Guamote y AIausi. Nosotros con Sáenz Vera, sobre 16,000 pulgas de cobayos de la zona interandina, encontramos solamente 1 L. segnis. En Perú, encontramos algunos ejemplares en cuyes domésticos de Moche, TrujilIo.

5%~LEPTOPSYLLA Sp. Sc510 1 macho, Perú, Hacienda San Damián, en Rattus norvegicus.

Difiere en tamaño y genitalia, de la L. segnis.

Sub-familia NEOPSYLLINAE Oudemans, 1909 (Ent. Ber., 2147): 323.)

XXX.-G6nero TRITOPSYLLA Cunha, 1929 (6% Med., 7(U): 549)

60.--TRITOPSYLLA INTERMEDIA INTERMEDIA (Wagner,l902) (Hor. Soc. Ent. Ross., 35: 22)

En Ecuador, encontrada con frecuencia sobre Didelphis paraguayens2.s an&na, en Ambato y Riobamba. (Mac. inéd.).

Cl.-TRITOPSYLLA INTERMXDIA COPHA (Jordan, 1926) (Nov. Zooí., 33: 391)

En Ecuador, señalada en Didelphis marsupialis.

XXXI.-G6nero NEOTYPHLOCERAS Rothschild, 1914 (Nov. Zool., 21: 244)

~~.-NE~TY~I~L~~ERASROSENBERGI(R~~~~C~~~~,~~~~) (Nov. Zool., ll: 639)

Descrita para Ecuador y Perú, Didelphis azarae, Metachirops opossum, Sigmodon y Thomasomys. Frecuente en cricétidos de Loja (M. inéd.)

438 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA [IdW

63.~NEOTYPHLOCERAS CRASSISPINA CRASSISPINA Rothschild, 1914 (Nov. Zool., 21: 244)

Descrita para Bol&~ia, Perú y Chile, en Didelphis, Phyllotis amicus y Phyllotis arenarius.

64.~NEOTYPHLOCERAS CTUSSISPINA HEMISUS Jordan, 1936. (Nov. zooz., 39: 310)

Descrita para Bolivia, Potosí y Sucre, en Akodon boZiviensis y Akodon abbiventer.

65.-NEOTYPHLOCERAS CRASSISPINA CHILENSIS Jordan, 1936. (Nov. Zool., 39: 310)

Descrita para Chde, en Abrocoma crassispina chilensis, Akodon longipilis, Akodon olivaceus, Marmosa elegans, Oclodon bridgesi, Octodon degus, Phyllotis darwinii, y Rattus rattus rattus.

G.-Familia DOLICHOPSYLLIDAE Oudemaq1909 (hl. Ber., 2(47): 324)

Sub-familia DOLICHOPSYLLINAE Baker, 1905 (Proc. U. S. Nat. Mus., 29: 127, 135, 155)

XXXII.-GBnero ODONTOPSYLLUS Baker, 1905 (Proc. U. S. Nat. Mus., 29: 129, 131)

66.~ODONTOPSYLLUS sp. Ejemplares aún no completamente clasificados, de Sylvilagus sp. de

la Zona de Huancabamba (Soccha y Siclamache).

XXXIII.-Género NOSOPSYLLUS Jordan, 1933 (Nov. Zool., 39: 76)

67.-NOSOPSYLLUS FASCTATUS (Bosc d’Antic, 1801) (Bd. Sci. Soc. Philom., 3: 156, n. 44; ver Costa Lima, Pulgas, p. 285,1946)

(a) Hombre.-Es relativamente frecuente en la costa de Chile, al Sur de Concepción; no se la encuentra en la zona Norte, ni en Per&, ni Ecuador.

(b) Ratas domésticas.-En Chile, Demarfa y Callinato no la obtienen de ratas de Santiago; pero el autor ha podido recolectar algunos ejemplares, en invierno, aunque no en verano. Vidal, en Valparako, en el otoño de 1929, encuentra 46.6yo de N. fasciatus sobre el total de pulgas murinas recolectadas. Gallinato, indica su ocurrencia en Coquimbo. El autor, en sus extensos censos muro-púlidos en la zona norte, durante 10 años, no encuentra ni un solo ejemplar de esta especie. En Perú, tampoco es citada, ni nosotros la hemos encontrado en ninguna de las localidades examinadas de la costa o sierra. En Ecuador, Suárez la menciona en la

19.481 SIPHONAP!FERA 439

Sierra, pero según comprobado por Eskey y C. Fox (comunicación personal), se trata de error de determinación, confundida con íV. londiniensis. Según Mo11 y O’Leary, Ruiz del Río establece que es la pulga predominante en Concepción; pero no teniendo a nuestro alcance el trabajo original, no sabemos si sobre ratas.

68.-Noso~s~L~~~s LONDINIENSIS (Rothschild, 1903) (Ent. Record, 15: 64)

(a) Hombre.-Encontrada excepcionalmente sobre hombre, en Am- bato, Ecuador, por el autor.

(b) Ratas domesticas.-En el Perú, Long, Mostajo, Colichón, Ramos Díaz y Eskey, informan sobre su presencia en la Sierra, pero sin dar huespedes ni distribución geográfica. Nosotros hemos encontrado ejemplares sobre R. alexundrinus y R. rattus, en la zona de Cajamarca y Celendin, pero no en otros puntos de la Sierra, precisándose una investi- gación más extensa.

En Ecuador, Suárez (determin&rdola erróneamente como N.fuscZatus), la halla en R. norvegicus de Quito, Guaytacama y Ambato; en R. norvegicus de estos mismos lugares y de Latacunga y Riobamba, y en R. rattus de Guaytacama, Ambato, Riobamba y Alausf. Eskey, la describe en ratas de la Sierra, por arriba de 8,000 pies de altura. La encontró abundante en Ambato; menos frecuente en Alausf, y no la ha116 en Huigra, a 4,000 pies. También la encuentra en Quito, Latacunga, Rio- bamba, Guaytacama y Guamote. Mino, agrega a esta lista, las localidades de Guasuntos, Cebadas, Achupallas y Pungalá. Nosotros la hemos encontrado en toda la Sierra, especialmente Ambato, desde Si- bambe arriba, hasta las mayores alturas de Guamote, 10,000 pies, y algunos escasos ejemplares en Loja sobre Rattus (7). En Ceceles, encontramos en LIII nido de Phyllotis fruticulus, a 3,000 m. de altura, N. londinknsis infectadas de peste. No la hemos encontrado, por debajo de Huigra, hacia la Costa.

(c) Mus muscuZus.-En Ecuador, Eskey, Martínez y nosotros, la hallamos con frecuencia en los ratones de Ambato. Además, Eskey la señala en Alausi, Quito y Guamote y nosotros en Sibambe, Quito, Gua- mote, Alausi, Shuid y otros puntos vecinos; Suárez, en los mismos lugares y en Riobamba, Pueblo Viejo, Guasuntos, Sanganao y Nizag, y Mino, además, en Pungalá, Achupallas y Cebadas.

(d) Cuz&r aperea y C. porceZEus.-En la encuesta de 1940-41, realizada con Sáenz Vera en la región interandina del Ecuador, encontramos, en 1940, 68 N. Zondiniensis, entre 10,116 pulgas recogidas en cobayos de 76 localidades, correspondiendo los hallazgos a 4 sitios de Alausf (Illaute, Guznag, Panchipala y Aypud), 2 de Guasuntos (Illtus y Tolatús), 1 de Riobamba (Llucud) y en la ciudad de Huigra. La frecuencia fu& de

440 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA Mw

0.66% para todo el lote examinado y 8.9yo para las pulgas de cuyes de las localidades en que se encontraron. En 1941, sobre 5,696 pulgas de cobayos de 43 localidades de los mismos sectores, se encontraron 141 N. Eondiniensis, repartidas en todos los sectores (menos Huigra), aunque solamente en 13 localidades de los mismos.

(e) PhyZZotirsfruticoZus.-En Ecuador, Ceceles. 69.-NOSOPHYLLUS ENDYMIONIS (Rothschild, 1904)

(Nov. Zool., ll: 634) Descrita en Chile, sobre Marmosa elegans.

XXXIV.-Género TRICHOPSYLLA Kolenati, 1863 (Hor. Soc. Ent. Ross., 2: 32)

Sub-ghnero PLEOCHAETIS Jordan, 1933 (Nov. zooz., 39: 77, 79)

Vo.--TRICHOPSYLLA (PLEOCHAETIS) DOLENS QUITANUS Jordan,1931 (Nov. Zoob., 37: 137)

Descrita para Ecuador, en Oryzomys y Thomomys. ~~.-TRICHOPSYLL~ (PLZOCHAETIS) CAMPANIGER (Jordan, 1931)

(Nov. ZooZ., 39: 77) Descrita para Ecuador, en Hesperomys.

72.-TRICHOPSYLLA(PLEOCFIAETIS)EQUATORIS Jordan,1933 (Nov. ZooZ., 38: 344)

Descrita para Ecuador, Quebrada de Pichán, vertiente occidental del Pichincha, en Sigmodon sp., 1 macho tipo, y en Páramo, de Guamani, camino a Baiza, en Oryzomys sp. 1 hembra. En Perú, zona rural de Huancabamba, hemos encontrado una pulga que provisionalmente hemos clasificado en esta especie y que participa, en nuestra opinión, en la transmisión de la peste entre cricetinos de la zona rural. Se encuentra también abundantemente en los nidos de los mismos, bajo las piedras de los trigales. Tal pulga se ha encontrado en Akodon mollis orophiZus, que parece ser su huksped propio, así como en Oligoryzomys Zongicaudatus stobmanni, Cavia porcellus, Sylv8ugus sp. y ropas de hombres enfermos de peste bubónica.

XXXV.-Género CERATOPHYLLUS Curtis, 1832 (í%-le Arrang. Brit. Insects, 201, No. 1136) Brit. Ent., 9, No. 417, 1832)

ya.--CERATOPHYLLUS GALLINAE GALLINAE (Schrank, 1303) (Fauna, Boica, 3: 195, part.)

En libros y revistas de avicultura se hace manción a esta especie como peste de los gallineros. El autor no conoce ninguna mención especifica sobre su existencia en esta parte de América, basada en estudio taxonó- mico competente.

SIPHONAPTERA 441

XXXVI.-Género DASYPSYLLUS Baker, 1905 (Proc. U. S. Nat. Mus., 29: 129)

74.-DASYPSYLLUS ARATJCANUS (Jordan & Rothschild, 1920) (Ectopa~as., 1: 65)

Descrita para Chile, Temuco, en XolmZ’s mrope.

75.-DASYPSYLILJ~ CTENIOPUS (Jordan y Rothschild, 1920) (Ectcparas., 1: 67)

Descrita para Chile, Temuco, en Scyfalopus magelìanicus; tambi&n en Sceitorchilus rubecula.

Sub-familia PYGIOPSYLLINAE (Jordan & Rothschild, 1922) (Ec~oparas., 1: 231) (Costa Lima y Hathaway, PuEgas, 88; omitido en p, 323)

X.XXVII.-Genero CHILIOPSYLLA Rothschild, 1915 (Nov. Zool., 22: 308)

~~.--CIIILIOPSYLLA ALLOPHYLA (Rothschild,1908) (PTOC. 2001. Xoc. London, 625)

Descrita para Chile, en Dromiciops uustralis.

fNDICE TAXONÓMICO

Orden SLPHONAPTERA

Familia PUIJCID~ Sub-familia PULICINAE

Género PULEX Pulex irritans irritans

Sub-familia XENOPSYLLINAE Género XENOPSYLLA

XenopsylIa astia Xenopsylla cheopis

Género CTENOCFEPEALIDES Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis felis

Sub-familia SPILOPSYLLINAE Genero HOPLOPSYLLUS

HoplopsyIlus andensis Gènero CEDIOPSYLLA

Cediopsylla spillmanni

Familia HECTOPSYLLIDAE Sub-familia HZZTOPSYLLINAZI

Género TUNGA Tunga penetrans

Genero HECTOPSYLLA - Hectopsylla psittaci Hectopsylla coniger Hectopsylla suarezi

Hectopsylla eskeyi Género RHYNCHOPSYLLUS

Rhynchopsyllus pulex Sub-familia ECHIDNOPHACINAE

Genero ECHIDNOPHAGA Echidnophaga gallinacea galli-

nacea

Familia MALACOPSYLLIDAE Sub-familia RHOPALOPSYLLINAE

Género REOPALOPSYLLUS Rhopalopsyllus cacicus cacious Rhopalopsyllus Iugubris Rhopalopsyllus australis tu-

pinus Genero POLYGENIS

Polygenis roberti Polygenis litus Polygenis litargus Polygenis dendrobius

Genero TIAMASTUG Tiamastus cavicola

Sub-familia PAILAPSYLLINAE Genero PARAPSYLLUS

442 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA WW40

Parapsyllus longicornis australiacus

Parapsyllus longicornis humboldti

Gbnero TETRAPSYLLUS Totrapsyllus corfidii Tetrapsyllus amplus Tetrapsyllus comis Tetrapsyllus litis

Genero DELOSTICHUS Dclostichus coxalis Delostichus xenurus Delostichus octomys

Género ECTINORUS Ectinorus eocyti

Género DYSMICUS Dysmicus simonsi Dysmicus claviger Dysmicus sentus Dysmicus viscachae

Familia ISCHNOPSYLLIDAE Sub-familia ISCHNOPSYLLINAJI

Género k3CHNOPSYLLUS Ischuopsyllus (cercano al) re-

ductus Genero MYODOPSYLLA

Myodopsylla wolffsohni Genero STERNOPSYLLA

Sternopsylla distincta Sternopsylla texana

Familia S~EPHANOCIRCIDAE Sub-familia CLEOPSYLLINAD

Genero CLEOPSYLLA Cleopsylla townsendi

Sub-familia CRANEOPSYLLINAE Género TIARAPSYLLA

Tiarapsylla titschacki Genero NONAPSYLLA

Nonapsylla rotschildi Genero CRANEOPSYLLA

Craneopsylla wollhuegeli Género PLOCOPSYLLA

Plocopsylla wolffsohni Plocopsylla pallas Plocopsylla enderleini Plocopsylla acbilles Plocopsylla phobos Plocopsytla hector Plocopsylla heros

Género SPHINCTOPSYLLA Sphinctopsylla ares

Sphinctopsylla inca SphinctopsylIa tolmera Sphinctopsylla spillmanni

Familia HYSTRICHOPSYLLIDAE Sub-familia MACROPSYLLINAII

Genero CTENOPARIA Ctenoparia inopinata

Sub-familia HYSTRICHOPSYLLINAE G~~~~~CTENIDIOSOMUS

Ctenidiosomus spillmanni Sub-familia LEPTOPSYLLINAE

Genero LEPTOPSYLLA Leptopsylla segnis Leptopsylla sp.

Sub-familia NEOPSYLLINAE Género TRITOPSYLLA

Tritopsylla intermedia intermedia

Tritopsylla intermedia copha Género NEOTYPHLOCERAS

Neotyphloceras rosenbergi Neotyphloceras crassispioa

crassispina Neotyphloceras crassispina

hemisus Neotyphloceras crassispina

chilensis

Familia DOLICHOPSYLLIDAE Sub-familia DOLICHOPSYLLINAE

Género ODONTOPSYLLUS Odontopsyllus sp.

Genero N~SOPSYLLUS Nosopsyllus fasciatus Nosopsyllus londiniensis Nosopsyllus endymionis

Género TRICAOPSYLLA Sub-género PLEOCRAETIS

Trichopsylla (Pleochaetis) dolens quitanus

Trichopsylla (Pleochaetis) campaniger

Trichopsy (Pleochaetis) equatoris(?)

Genero CERATOPHYZLUS Ceratophyllus gallinae gallinae

Género DASYPSYLLUS Dasypsyllus araucanus Daeypsyllus cteniopus

Sub-familia PYCIOPSYLLINAE. Género CEILIOPSYLLA

Chiliopsylla allophylla


L~STADEH~%PEDESDELASPULGASENCONTRADASENLACOSTA SUR-OCCIDENTAL DE mRICA

En el reciente Catálogo de pulgas del mundo, de Costa Lia y Hatha- way, muchas especies mencionadas en la primera lista, no aparecen con la distribución geográfica correspondiente a los pafses de esta parte de América, ni tampoco la lista completa de los hu&pedes, reserva justa considerando que las referencias bibliográficas en que aparecen no son especializadas.

El presente estudio complementa el anterior, para dar a conocer en forma sistemática los huéspedes de las especies de pulgas mencionadas, y la correspondiente distribución geográfica en relación al hukped.

En ciertos casos se ha estimado de interés señalar 10s sitios en que no se encuentra una determinada especie, o en que no ha sido investigada todavía. Ha parecido de utilidad señalar la frecuencia de ciertos hallazgos con alguna palabra apropiada (común, frecuente, accidental, rara) o en porcentaje, cuando posible.

I.-HOMO SAPIENS (hombre)

(a) Pulexirrilans.-Chile: A lo menos desde PuertoMontt a Arica. Mencionada en Concepción, Ancud, Puerto Montt, Talca, Linares, San Javier, ChiIUn, San Carlos, Santiago, Serena, Copiapó, Los Vilos, VaIparalso, Antofagasta, Chuquica- mata, Calama, San Pedro de Atacama y 14 poblados vecinos, Tocopilla, Mejillones, Coloso, Taltal, Iquique, Pica, Arica. Per& A lo menos en toda la Costa y Sierra. Mencionada hasta 4,000 m. de altura. No hay estudios sobre su existencia en la zona tropical de la montaña. Ecuador: Desde Loja a Manabí y desde la Costa hasta la Sierra a 4,500 m. de altura. No hay estudios sobre su existencia en Esmeraldas y el Oriente. Bolivia: A lo menos en La Paz, y toda la Sierra.

(b) XenopsyEla cheopie.-ChiZe: A lo menos en todo el Norte del país y Santiago. No se encuentra en el Desierto de Atacama, ni en la Cordillera de los Andes, por arriba de 3,000 m. en la zona Norte. Per& De sur a norte y de mar a Sierra, encontr&ndose en Cajamarca, pero no en la zona rural de Huancabamba. Tampoco en Ia zona de frontera con Ecuador, en el Distrito de Lancanes. Ecua- dor: Costa y Sierra, por debajo de 3,000 m. No se encuentra en ciertos puntos de la zona austral, ni en la frontera a nivel de Cazaderos. Riobamba y Guamote pareren recién colonizados por esta especie.

(c) Ctenocephalides canie.-Chile: De Chiloé a Arica (ocasional). Per& Costa y Sierra, incluso Cajamarca y Huancabamba. Ecuador: Sierra, desde Huigra a Quito, incluso Cafiar y Loja.

(d) Ctenocephalides felis felis.-Chile: Antofagasta. Faltan estudios en otros sitios.

(e) Tunga penetrans.-Chile: Desde San Carlos a Arica. Perti: Lima a Tumbes. En la Sierra: Cajamarca (ocasional). Ecuador: Ambato (rara). Pro- vincia de Chimborazo: 27 entre 16,000 pulgas capturadas en el hombre.

(f) HectopsylEa suare&-Ecuador: Ambato y Alausí. No encontrada sobre hombre ni en Chile ni en Per&

(g) Echidnophaga gallinacea.-Chile: Antofagasta e Iquique. Perú: Huacho y Valle de Santa. Ecuador: Provincia de Chímborazo (6 entre 7,225 pulgas, en Pagma) .

(h) Poïygenie Eitargus.-Perú: Distrito de Lancanes (Piura); Cerro Cortezo y Quebrada Jabonillos.

444 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA [MUYO

(i) Tiumastus cauicoEa.-Chile: Antofagasta. PerB: La Montañita (Sierra de Lambayeque) ; zona rural de Huancabamba. En la costa, Huacho, Paramonga, Valle de Santa, Trujillo. También Sierra de La Libertad (Otusco) y Cajamarca. Ecuador: Nizag, Gua+ytacama, Guamote, Sibambe, Puculpala, Gusutds, Flores, Gompuene, Tilange y Provincia de Chimborazo (205 sobre 13,368 pulgas halladas en el hombre).

(j) Leptopsylla segnis.-Chile: Antofagasta. PerzL: Contumaz& (rara}. (k) NosopsylZus Zondiniensis.-Ecuador: Ambato (común). (1) NosopsyZZus jasciatus.-Chile: Al sur de Concepción. (m) TrichopsyZZa (Pleochaetis) sp.-Per$.-Zona rural de Huancabamba.

2.-CANIS FAiWLIARIS (perro)

(a) PuZex irritans.-Chile: San Carlos, Santiago, Antofagasta, Iquique. Perti: Chincha, Lima, Huacho, Trujillo, Piura, Tumbes, Lancanes, Huanca- bamba. Ecuador: Guayaquil, Quito, Guaytacama, Latacunga, Ambato, Rio- bamba, Guamote, Cebadas, Achupallas, Alausí, Huigra, Aguaysacte, Lutumbug, GUSO, Cañas, Cuenca. (1 a 30%).

(b) Xenopsglla cheopis.-Chile: Antofagasta. (c) Ctenocephalides canis.-Desde Chiloe (Chile) a Salinas (Ecuador) y desde

el mar hasta 4,500 m. de altura, excepto en el Desierto de Atacama. (d) Ctenocephalides jelis feZis.-Chile: Santiago, Antofagasta, Iquique, Arica.

Per+: Chincha, Huacho, Ucupe. Lambayeque, Usquil. Ecuador: Ambato, Alausi.

(e) Tunga penetrans.-Chile: Concepc%n, Serena, Tocopilla, Antofagasta, Iquique. Per& Costa (?). Ecuador: No se encontró en n-& de 100 sitios inves- tigados.

(f) Hectopsylla eskeyi.-Perzl: Huacho. (g) Echidnophaga gaZZinacea.-Perti: Huacho.

3.-FELIS DOMESTICUS (gato)

(a) Pulex irritans.-Chile: Antofagasta, Iquique. Per4: Lima, Huacho, Cajamarca, Celendin. Ecuador: Ambato, Alausí, Quito, Guaytacama.

(b) XenopsyZZa cheopis.-Chile: Antofagasta. (c) Ctenocephalides canis.-Chile: Santiago, Antofagasta. Ecuador: Guay-

tacama. (d) Ctenocephalides jelis felis .-Desde Santiago a Quito; desde la Costa a

la Sierra. (e) Tunga penetrans.-Chile: Antofagasta (6 en 23 gatos). Perti: Huacho

(2 en 1 gato). Ecuador: Ambato, Alausí (5 en 17 gatos).

4.--FELIS sp.

(a) Rhopalopsyllus Zugubris.-Perá: Oxapampa.

5.-ICTICYON VENATICUS

(a) Rhopalopsyllus Zugubris.-Bolivia: Charuplaya. (b) Rhopalopsyllus australis tupinus.-Bolivia: Charuplaya.

õ.-CACHUNO

(a) RhopaZopsyZZus australis tupinus.-Perd: Huancabamba.

lQ#4 SIPHONAPTRRA 445

7.-PSEUDALOPEX Bp.

(a) Pulex irritans-Ecuador: Guamote. (b) Ctenocephalides canis.-Ecuador: Guamote.

8.-PSEUDALOPEX CULPAIUS

(a) Pulex imitans-Ecuador: Sibambe.

9.-CAPRA HIRCUS

(a) Tunga penetrans-Per& Piura.

lo.-OVIS ARIES

(a) Tunga penetrans-Chile: Calama, Antofagasta.

ll.-LAMA ow

(a) Tunga penetrans.-Chile: San Pedro de Ataoama.

Ia.-LAMA GLAMA PACOS

(a) Tunga penetrans.-Chile: San Pedro de Atacama.

13.-VICUQNA VICUGNA

(a) Tunga penelrans,-ChiZe: San Pedro de Atacama.

14.-SUS SCROFA

(a) Pulex irritans-Chile: Santiago, Antofagasta, Iquique. Per& Hueeho> Vinzos, Piura. Ecuador: Alausí, Guamote, Ambato, Riobamba.

(b) Xenopsylla cheopis.-Chile: Antofagasta. {c) Ctenocephalides canis.-Chile: Antofagasta. PerS: Hacienda Vinzos,

Hacienda Ucupe, Moche. (d) Tunga penetrans-Desde Chiloé a Quito. (e) Echidnophaga gallinacea.-Perti: Hacienda Viuzos.

lEi.--CONI3PATUS AREQUIPA33

(a) Hectopsylla coniger.-Bolivia.

16.--MUSTELA FRENATA AUREOVENTRIS

(a) Pulex irritans.-Ecuador: Ambato. (b) Ctenocephalides canis.-Ecuador: Ambato. (c) Ctenocephalides felis.-Ecuador: Ambato.

17.~DIDELPHIS sp.

(a) Xenopsylla cheopis-Perti: S. L.; Ucupe. Ecuador: Ambato, AIausí. (b) Cfenocephalides felis-Ecuador: Ambato. (c) Hectopsylla psitacci.-Per-ti: Trujillo. (d) Neotyphloceras crassispina crassispina.-Ecuador y Per%. (e) Trichopsylla (Pleochaetis) equatoris-Ecuador: Pãramo de Guamaul.

l&.-DIDELPHIS AZARAR

(a) Neotyphloceras rosenbergi.-Ecuador y Per&.

446 OFICINA SANITARIA Pz$NAMERICANA

19.-DIDELPHIS MARSUPIALIS

(a) Tritopsylla inlernedia copha.-Ecuador.

20.-DIDELPBIS MARSUPIALIS EITBNSIS

(a) Echidnophaga gaZZinacea.-Per& Trujillo. (b) Rhopalopsyllus lugubris.-Per&

21.-DIDELPHIS PARAGUAYENSIS ANDINA

(a) Pulex irritans.-Ecuador: Ambato, Ala&, Guamote, Riobamba. (b) Ctenocephalides canis.-Ecuador: Quito, Ambato, Alausí. Per& Trujillo. (c) ãchidnophaga gallinocea.-Ecuador: Ambato. Perú: Trujillo. (d) Tritopsylla intermedia intermedia.-Ecuador: Ambato, Riobamba.

%.-MARMOSA ELEGANS

(a) Neotyphloceras crassispina chiZensis.-Chile. (b) NosopsyElus endymionis.-Chile. (c) Tetrapsyllus litis.-Chile.

23.--METACHIROPS OPOSSUI%

(a) Neotyphloceras rosenòergi.-Ecuador y Per&

24.-CAENOLESTES sp.

(a) Plocopsylla achil¿es.-Ecuador.

25.-CAENOLESTES FULIGINOSCS

(a) Sphinclopsylla spillmanni.-Ecuador: Pichincha.

26.-CRYPTOTIS EQUATORIS

(a) Plocopsylla h.eros.-Ecuador.

%.-CRYPTOTIS THOMAS1

(a) Plocopsylla heros.-Ecuador.

ZA-NEOMYS

(a) Ctenidiosomus spil!manni.-Ecuador. (b) Sphinctopsylla tolmera.-Ecuador.

‘XI.-~‘&'htcI~LAGo"

(a) Myodopsylla wolffsohni.-Chile. (b) Sternopsylla texana.-Per&

307Mo~os~us OBSCUEUS OBSCI7RUS

(a) Sternopsylla distincta.-Chile.

31 .-HISTIOTUS sp.

(a) Rhynchopsyllus pulex.-Per%: Huaura.

íw1 SIPHONAPTERA 447

32.-HISTIOTUS MONTANUS

(a) HecfopsyUa pspsittack-Pertit Huaura.

33.-MYOTIS ALBESCENS

(a) kyodopsylla wolffsohni.-Chile.

34.-MYOTIS CEXILOENSIS ATACAMENSIS

(8) Ischnopsyllus ap (cercano a) reductus.-Chile: Tarapac&.

35.-DASYPUS ivovmnxwrus

(a) Rhopalopsyllus ca&us cacicus.-Perd: Perené, Huancabamba. (b) Polygenis robe&.-Per&

36.-ORYCTOLAGTJS CUNICULUS (CrtutiVeriO)

(a) Pubx irritans.-Chile: Antofagaeta. PerlL: Huacho. Ecuador. (b) ~~ectopsglla eskeyi.-Per& Huacho. (c) Echidnophaga gallinacea.-Per& Huacho.

37.-SYLVILAQTJS sp.

(a) Pulex irritans.-Per& Siclamache (IrIuancabamba). Ecuador: Guasun- tos, Cuenca, Ambato, Alausf.

(b) Hoplopsyllus andensis.-Perîi: Soccha (Huancabamba). (c) PoEygenis litargus.-Perti: Huancabamba. (d) Tiamastus cavicola.-Perzl: Huancabamba. Ecuador. (e) Odontopsyllus sp.-Perd: Huancabamba. (f) Trichopsylla (Pleochactis) equatoris (?).-Perti: Huancabamba.

387SYLVILAGUS ECAUDATUS

(a) Cediopsylla spiElmanni.-Ecuador. Per& Zona rural de Huancabamba. (b) Rhopalopsyllus cacicus cacicus.-Per$: Huacabamba.

89.-ABROCO&fA BENNETTI

(a) Delostichus coxalis.-Chile: Valparaíso. (b) Ectinorus co&.-Chile: Valparaiso. (c) Neotyphloceras crassispina chibnsis.-Chile, (d) Tetrapsyllus co$dii.-Chile: Valparafso.

4O.-OCTODON DEGUS

(a) Delostichus coxal&-Chile: Valparaíso. (b) Ectinorus cocyti.-Chile: Valparaíso. (c) Neotyphloceras crassispina chiEensis.-Chile. (d) Tetrapsyllus cor$dii.-Chile: Valparaiso.

41.-OCTODON BRIDGES1

(a) Neotyphloceras crassispina chilensis.-Chile,

448 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA Waw

&.--OCTODONTOMYS QLIROIDES

(a) Dysmicus simonsi.-Bolivia: Challapata.

43.-0CTOMYS MIMAX

(a) Delostichus octomys.-Chile: Flanco oriental de los Andes.

44.-SPALACOPUS CYANUS

(a) Ectinorus cocyti.-Chile: Valparaíso.

&.--LAQIDIU?d VISCACIA

(a) Pulex irritans.-Chile: Este de San Pedro de Atacama. (b) TiarapsyZZa titschacki.-Per&

46.-LAGOSTOMUS Sp.

(a) Delostichus xenurus.-Pemí: Ninahuanchi. (b) Delostichus cEaviger.-Pewí: Cerca de Oroya. (c) Dysmicus sentus.-Perti: Cerca de Oroya. (d) Dysmicus viscachae.-Per& (e) TiarapsylEa titschacki.-Per&

‘iy.--CAVIA PORCELLUS Y c. APEREA

(a) Pulex irritc¿ns.-Chile: Antofagasta, Calama. Perti: Lima, Huaral, Huacho, Raquia, Paramonga, Gtusco, Contumaz&, Villa Eten, Moche. Ecuador: Alausí, Pueblo Viejo, Guasuntos, Sanganao, Tolte, Sibambe, Nizag, Guayta- cama, Latacunga, Salcedo, Riobamba, Ambato, Guamote, Pungalá, Quito, Achu- pallas, Huigra, Cumbilla, Candelaria, Lieto, Chimbacalle, Tilange, Cuenca, Cañar.

(b) Xenopsylla cheopis.-Perti: Monte Culebra, Huaral, Huacho, Trujillo. Ecuador: Huigra, Alausí (rara).

(c) Ctenocephalides canis.-Chile: Calama, Antofagasta, Iquique. Per& Huacho, Huancabamba, Moche, Trujillo. Ecuador: Quito, Guaytacama, Alausí, Latacunga, Ambato, Riobamba, Cebadas, Pungalá, Guamote, Aguaysacte (rara).

(d) Ctenocephalides j’eZis.-Ecuador: Hipolongo (Ambato). (e) Cediopsylla spiZZmanni.-Per&: Soccha y Siclamache (Huancabamba). (f) Tunga penetrans.-Ecuador: Provincia de Chimboraao (1 entre 16,000

pulgas sobre cobayos). (g) Hectopsylla suarezi.-Chile: Antofagasta. Per& Trujillo, Lambayeque,

Ucupe. Ecuador: Quito, Alausí, Ambato, Flores, Quimiag, Guamote, Riobamba, Nizag, Guaytacama, Salcedo, Guasuntos, Tolte, Cebadas, Pungala.

(h) Hectopsylla eskeyi.-Per6: Huacho, Lima. Bolioia: La Paz. (i) Echidnophaga gaZlinacea.-Chile: Antofagasta. PerQ: Huacho, Hualmay,

Valle de Santa. Ecuador: No se encontró entre 16,000 pulgas de cobayo. (j) RhopaZopsyZZus cacicus cacicus.-Perti: Huancabamba. (k) Polygenis Zitargus.-Per&: Soccha, Siclamache (Huancabamba). (1) Tiamastus cavicoZa.-Chile: Antofagasta, Iquique, Calama, San Pedro de

Atacama. Bolivia: Sierra. Perú: Costa y Sierra. Ecuador: Huigra, Guamote, Latacunga, Quito, Guaytacama, Ambato, Riobamba, Guasuntos, Cebadas, Pungala, Achupallas, Alausl, Cuenca, Cañar.

19.44 SIPHONAPTERA 449

(m) Leptopsylla segnis.-Per&: Moche, TrujilIo. Ecuador: Guamote y Alausí. En la Provincia de Chimborazo, 1 en 16,000 pulgas de cobayos.

(n) NosopsylZus Zondiniensis .-Ecuador: Illaute, Guznag, Panchipala, Aypud, Illtus, Tolatus, Llucud y Huigra (0.66% de pulgas de cobayos).

(0) Trichopsylla (Pleochaetis) equatoris (?)-Perd: Huancabamba.

‘%-CAVIA APEREA PALLIDICR

(a) Pulex irritans.-Perú: Ica (Hacienda San PabIo). (b) Craneopsyllo wolffhuegeli.-PerzL: Ica.

&.--KERODON BOLIVIENSIS

(a) Tiamustus cavicola.-Bolz’via: Sucre. (b) Neotyphloceras crassispina hemisus.-Bolivia: Sucre, Potosí.

cO.-SCIURUS STRAMINEUS NEBOUXII

(a) Polygenis litargus-Perti: Distrito de Lancanes. (b) Polygenis Zitus (?).-Perti: Distrito de Lancanes.

51 .-THOMOMYS sp.

(a) Trichopsylla (Pleochaetis) dolens quitanus.-Ecuador.

52.-Mus (MUS) MUSCCLUS MUSCULUS

(a) Pulex irritans.-Chile: Antofagasta, Iquique. Perti: Huacho, Conturna&. Ecuador: Quito, Latacunga, Ambato, Guamote, Alausí, Guasuntos, Nizag, Guay- tacama, Cebadas.

(b) Xenopsylla cheopis.-Chile: Santiago, Antofagasta, Iquique. Per&: Lima, Piura, Tumbes, Huacho, Trujillo, Encuentros (rara). Ecuador: Ambato, Alausí, Guasuntos, Nizag, Huigra, Loja, Guayaquil.

(c) Ctenocephalides canis.-Chile: Antofagasta. Perú: Huacho. Ecuador: Quito, Alausí, Ambato, Cebadas.

(d) Hectopsylla suareai.-Ecuador: Guaytacama. (e) Tiamastus cavicola.-Ecuador: Quito, Ambato, Riobamba, Alsusí, Lata-

tunga, Guaytacama. (f) Leptosylla segnis.-ChiZe: Desde Puerto Montt a Arica. Perú: De Norte

a Sur y desde la Costa hasta la cuenca del Marañón. Resto del país no investigado. Ecuador: Toda la costa y sierra. Oriente no investigado.

(g) Nosopsyllus londinicnsis.-Ecuador: Ambato, Alausi, Quito, Guamote, Sibambe, Schuid, Pueblo Viejo, Guasuntos, Sanganao, Nizag, Pungalá, Achupa- lIas, Cebadas.

63.~RATTUS (domésticos)

(a) Pulex irritans.-Chile: Santiago, Arica. Per%: Lima. Ecuador: Guaya- quil (7 en más de 4,000 ratas), Quito, Chimborazo, Loja, Guaytacama, Latacunga, Ambato, Riobamba, Guasuntos, Cebadas, Alausí.

(b) Xenopsylla cheopis.-Chile: Valparaíso, Coquimbo, Tocopilla, Iquique, Arica. Perú: Toda Ia costa. Ecuador: Quito, Latacunga, Ambato, Guasuntos, Alausí, Huigra, Guayaquil. Riobamba (introducción reciente). No se menciona en Guamote ni en Guaytacama.

450 OFICINA SANITARIA PANAibIERICANA Ww h.

(c) Ctenocephalides canis.-Chile: Santiago, Arica. Ecuador: Guaytacama, Latacunga, Quito, Ambato, Riobamba, Guamote, Alausl, Loja (rara).

(d) Tunga penetrana.-Chile: Zona Norte. Per&: Zona litoral. (e) Polygenis Zitargua.-Perti: Caíí6n de Verrugas. (f) Tiamastua cauicoZa.-Ecuador: Guamote, Quito, Ambato, Riobamba,

Latacunga. (g) Leptopaylla segnia.-Chile: Santiago, Valparaíso, Huasca, Coquimbo.

Perd: Lima, Callao. Ecuador: Guamote, Quito, Ambato, Guasuntos, Cebadas, Achupallas, Pungaltl, Alausí, Huigra, Loja, Zaruma.

(h) Noaopsyllua jaaciatus.-Chale: Concepci@ Valparaíso, Coquimbo. No encontrada m&e al norte.

(i) NOSO~SJJ~~US londinienaia.-Per& Sierra. Ecuador: Sierra sobre 3,000 metros; Ambato, Alausí, Guamote, Guasuntos, Cebadas, Achupallas, PungalS, Sibambe, Ceceles.

!%.-RATTUS RATTUS RATTUS

(a) Pulex irritans.-Chile: Antofagasta, Iquique, Mejillones, Tocopilla, Taltal. Perti: Trujillo, Tumbes, Chuquieongo, Conchor, Cajamarca. Ecuador: Ambato, Alausí, Guasuntos, Pungalá, Hacienda Bolaebamba(?).

(b) XenopaylEa cheopis.-Chile: Valparaíso, Antofagasta, Iquique, Taltal, Tocopilla. Per& Lima, Trujillo, Chiclín, Hacienda Pucalá, Hacienda Cayaltí, Raquia, Colgauro, Piura, Tumbes, Cajamarca, La MontaBita (Lambayeque). Ecuador: Guayaquil, Ambato, Alausí, Quito, Schuid.

(c) Ctenocephalides canis.-Chile: Antofagasta, Iquique. PerQ: Trujillo. Ecuador: Quito.

(d) Ctenocephalides jclia.-Chile: Antofagasta. Ecuador: Guayaquil. (e) Tunga penetrans.-Chile: Antofagasta. (f) Hcctops$la auarezi.-Chile: Antofagasta. Ecuador: Quito, Ambato, Guay-

tacama, Alausí, Riobamba. (g) Echidnophaga gallinacea .-Chile: Antofagasta, Iquique, Tocopilla, Taltal,

Arica. Pera: Trujillo, Tumbes. (h) Tetrapsyllua amplua.-Chile: Valparaíso. (i) Deloslichus coralis.-Chile: Valparaíso. (j) Leptopaylla aegnis.-Chile: Antofagasta, Tocopilla, Taltal y puertos del

Norte. Perti: La Montañita, Hacienda Chuquizongo, Trujillo, Piura, Chiclayo. Ecuador: Guaytacama, Guasuntos, Alausí.

(k) Neotyphloceraa craaaiapina chitenaia.-Chile.

.%.--RATTUS RATTUS ALEXANDRINUS

(a) Pulea: irritans.-Chile: Antofagasta, Iquique, Tocopilla. Perzl: Las Vegas, Alpas, Cochas, Leticia, en Barranca; San AndrBs, Monserrate, Encalada y Trujillo, en La Libertad; Villa Eten, Puerto Eten, Hacienda Cayalt,í, en Chi- clayo; Piura; Tumbes. Ecuador: Loja: Hacienda Bolasbamba( Quito, Guay- tacama, Latacunga, Ambato.

(b) XenopayEEa cheopis.-Chile: Todos los puertos al norte de Valparaíso. Per& Litoral y Sierra hasta 2,000 m. Ecuador: Litoral. En la Sierra: Quito, valles; Ambato, Alausí y Sierra hasta 3,000 m.

(c) Ctenocephalidea canis.-Chile: Antofagasta, Iquique. Perd: Barranca, Trujillo, Hacienda Huallobamba, Hacienda Cayaltl, Piura, Tumbes. Ecuador: Quito.

(d) Ctenocephalidea felia.-Chile: Antofagasta, Iquique. PertZ: Trujillo, Piura, Barranca. Ecuador: Ambato.


(e) Tunga penetrans.-Chile: Antofagasta, Santiago. Per& Costa Norte y litoral.

(f) Heclopsylla suarezi.-Chile: Antofagasta, Iquique. Per& Trujillo, Piura, Tumbes. Ecuador: Guaytacama, Ambato, Alausí, Quito, Riobamba.

(g) Hectopsylla eskeyi.-Perú: Moche, Trujillo. (h) Echidnophaga galtz’fzacea.-CKle: Antofagasta, Tocopilia, Taltal, Iquique,

Arica. Perú: Barranca, Supe, Trujillo y campiña, Monsefú, Tumbes. (i) Tianzaslus cavicola.-Perú: Hacienda Rinconada, Trujillo, HuamBn, Piura. (j) Leptopsylla segnis.-Chile: Puertos del Norte, menos en el Desierto de

Atacama. Perti: Contumaz& Usquil, Trujillo, Piura, Tumbes. Ecuador: Quito Guaytacama, Latacunga, Ambato, Alausl, Guayaquil.

(k) iVosopsyllus londiniensis.-Perú: Cajamarca, Celendin. Ecuador: Quito, Guaytacama, Latacunga, Ambato, Riobamba.

66.-RATTUS RATTUS NORVEGICW

(a) Pulex irritans.-Chile: Antofagasta, Iquique. Perd: Chincha, Lima, Huacho, Huaura, Valle de Sayan (El Carmen, Andahuasi, Ingenio), Valle de Santa (Tambo Real, Rinconada, Chingoyal), Chimbote, Trujillo, Pacasmayo, Ucupe, Cayaltí (en total, menos de 1%). Ecuador: Quito, Latacunga, Ambato (raras).

(b) Xenopsylla cheopis.-Chile: Santiago. Antofagasta, Iquique y puertos del Norte. Perú: Valle de Chincha, Lima, Huacho y campiña, Sayanl Santa, San Damian, Aija, Barbacay, Trujillo, Pacasmayo, Ucupe, Zafia. Ecuador: Lata- tunga, Quito, Ambato, Guayaquil, Babahoyos, Huigra.

(c) Xenopsylla asfia.-Chile: Antofagasta. (d) Ctenocephalides canis.-Chile: Antofagasta. Per21: Chincha, Huacho y

campiña, Valle de Sayan, Tambo Real, Rinconada, Vinzos, Santa Clara, San Luis, Pueblo Viejo, Chimbote, Pacasmayo, Hacienda Ucupe, Hacienda Cayaltí.

(e) Ctenocepl¿alides felis.-Chile: Antofagasta, Iquique. Peal: Huacho, Chimbote, Pacasmayo (muy raras). Ecuador: Guayaquil, Ambato (raras).

(f) Tunga penetrans.-Chile: Santiago, Antofagasta. Perú: Huacho, Chim- bote. Ecuador: Guayaquil, Ambato.

(g) HectopsyEZa suarezi.-Chile: Antofagasta, Santiago. Per& Chincha, Huacho, Chimbote. Ecuadar: Quito, Guaytacama, Ambato, Alausí, Riobamba.

(h) Hecectopsylla eskeyi.-Perti: Lima, Huacho. (i) Echidnophaga galZinacea.-Chile: Antofagasta, Iquique, Taltal, Tocopilla,

Arica. Perzí: Huacho y campiña y 5 haciendas del Valle de Sayán, (j) Tiamastus cavicola.-Perti: Huacho y Valle de Huaura. (k) Tetrapsylbss amplus.-Chile: Temuco. (1) Leptopsylla segnis.-Chile: Antofagasta. Per& Chincha, Chimbote, Santa,

Huacho y Valle de Huaura, Chilete. Ecuador: Quito, Guaytacama, Guamote, Guayaquil.

(m) Leptopsylla ep.-Perd: Hacienda San DamiBn. (n) Nosopsyllus londiniensis .-Ecuador: Quito, Guaytacama, Ambato.

67.-RATTUS RATTUS FRUGIVORUS

(a) Xenopsylla cheopis.-Perdí: Trujillo, Laredo. (b) Tunga peneirans.-Perol: Raquia. (c) Leplopsylla segnis.-Perti: Trujillo.

S8.--AKODON sp. (a) Craneopsylla w?~huegeli.-Chile: Atacamm.

452 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA WW

59.-AKODON ALBIVENTEB

(a) Dysmicus simonsi.-Bolivia: Potosí. (b) Neotyphloeeras crassispina hemisus.-Bolivia: Potosí, Sucre.

60.-AKODON OLIVACEUS

(a) Ctenoparia inopinata.-Chile. (b) Delostichus coxalis.-Chil,e: Valparafso. (c) Neotyphloceras crassispina chilensis.-Chile. (d) Plocopsylla wol.ffsohni.-Chile. (e) Sphinctopsylla ares.-Chile.

61.~AEODON LONGIPILIS

(a) Neotyphloceras crassispina chilensis.-Chile. (b) Plocopsylla wol$sohni.-Chite. (c) Tetrapsyllus amplus.-Chile: Valparaiso.

6%--AEODON MOLLIS

(a) Polygenis sp.-Ecuador: Quebrada La Muerte (Bolasbamba). (b) PoZygen,is litargus.-Ecuador: Cerro Negro (Quebrada La Muerte).

63.-AKoDoN MOLLIS OROPHILUS

(a) Craneopsylla usolffhuegeli.-Perd: Soccha (Huancabamba), Siclamache. (b) Leptopsylla segnis.-Pera: Huancabamba. (c) Trichopsylla (Pleochaetis) equatoris (7) .---Per&: Huancabamba. (d) Polygenis Eitargus.-Perú: Encuentros, Cortozo, La Chorrera, en Lancanes,

Piura; Huancabamba.

64.-AKODON BOLIVIENSIS

(a) Neotyphtoceras crassispina hemisus.-Bolivia: Sucre, Potosí.

66.--HESPEROMYS sp.

(a) Trichopsylla (Pleochaetis) campaniger.-Ecuador.

~~.-ORYZOMYS sp.

(a) Hectopsylla suorezi.-Perzl: Huancabamba. (b) Sphinctopsylla inca.-Per& Ecuador. (c) Sphinctopsylla tolmera. Ecuador. (d) Trichopsylla (Pleochaetis) dolens quilanus.-Ecuador.

67.-ORYZOMYS {MELANOMYS) PHOEOPU~

(a) Polygenis litargus.-Ecuador: San JosB (Huigra).

68.-ORYZOMYS ALBIGULARIS

(a) Plocopsylla achilles.-Ecuador.

60.-ORYZOMYS STOLZMANNI

(a) Polygenis roberti.-Ecuador: Gualaquiza. Per& Encuentros (Piura).

70.~0LIGORYZOMYS LONGICAUDATUS STOLZMANNI

(a) PoEygenis litargus.-Perti: Encuentros, Huancabamba. (b) Trichopsylla (PZeochaetis) equatoris (?).-Perú: Huancabamba.

WI1 SIPHONAPTERA 453

71 .-ORYZOMYS XANTHAEOLUS XbNTEAEOLUG

(a) Polygenis litargus.-Per& Cerros Ccrtezo y La Mesa (Piura).

72.-ORYZOMYS XANTHAEOLUS ICA

(a) Polygenis litargus-Perti: Nazca. (b) Craneopsylla wolffhuegeli.-Perd: Na,zoa. (c) PuEex irritans.-Per& Nazca.

73.-ORYZOMYS NITIDUS

(a) Polygenis litargus.-Perd: Cerro El Cortezo (Piura).

í'k-fhUODON Sp.

(a) Cbopsylla townsendi.-Per% y Ecuador. (b) Neotyphloceras rosenbergi.-Per& Ecuador: Loja. (c) Plocopsylla heros.-Ecuador. (d) Teirapsyllus comis.-Ecuador: Cbimborazo. (e) Trichopsylla (Pleochaetis) equatoris.-Ecuador: Quebrada Pichón

(Picbincha).

75.-SIQ~IODOI PERUANUS

(a) Polygenis li¿argus.-Per&: Trujillo.

76.-SIGMODON SIMONSI

(a) Polygenis Zitargus.-Perti: Encuentros (Piura).

~~.-THo~A~oMY~ ap.

(a) Cleopsylla townsendi.-Per% y Ecuador. (b) Boplopsyllus andensis.-Ecuador: Xrsmo de Guamaní. (c) Neotyphloeeras rose&ergi.-PerQ. (d) Plocopsylla achiEles.-Ecuador. (e) Plocopsylla hector.-Ecuador. (f) Plocopsylla phobos.-Ecuador. (9) Sphinctopsylla inca.-Per% y Ecuador. (h) Sphinclopsylla tolmera.-Ecuador.

~~.-&~IPIDOMYS EQUATORIS

(a) PoZygenis Zitargus .-Per& Los Encuentros (Piura).

7%-PHYLLOTIS DARWIN11

(a) Neolyphloceras crass{spina chilensis.-Chile. (b) Plocopsylla wolffsohnz’.-Chile.

80.-PHYLLOTIS FRUTICOLW

(a) Nosopsyllus londiniensis.-Ecuador: Gtxeles.

81 .-PHYLLOTIS AMICUS

(a) Neotyphloceras craasispina crasskpinu.-Chile, Bolivia y Per&

454 OFICINA SANITARIA PANAMERICANA UfUY0

82.-PHYLLOTIS ARENARIUS

(a) Neotyphloceras crassispina crassispina.-Chile, Bolivia y Perú,.

83.-PHYLLOTIS XANTHOPYGUS

(a) Plocopsylla achilles.-Ecuador,

~~.-<‘HAMSTER'!

(a) Rhopalopsyllus lugubris.-Perzl: Oxapampa.

85.-EUDYPTES HUMBOLDTI

(a) Parapsyllus longicornis humboldti.-Chile.

86.-EUDYPTULA MINOR

(a) Purapsyllus longicornis uustraliacus.-Chile.

87.~PUFFINUS TENUIROSTRIS

(a) Parapsyllus Eongicornis australiaeus.-Chile.

SS.-GALLUS GALLUS

(a) Pulex irritans.-Chile: Antofagasta. Perd: Huacho. Ecuador: Ambato. (b) Xenopsylla cheopis.-Perd: Huacho. (c) Clenocephalides canis.-Chile: Antofagnsta. Perd: Huacho. (d) Ctenocephalides felis.-Per& Huwho. (e) Tunga pene.!rans.-Perzi: Huacho. (f) Hectopsylla eskeyi.-Per%: IIuacho.

(g) Rchidnophaga galEinacea.-Per& Huacho.

89.--OPISTHOCOMUS HOAZIN

(a) Nonapsylla rothschiEdi.-Bolivia: Río Japacani (Santa Cruz). (b) Polygenis dendrobius.-Bolivia.

gO.-COLUMBA LIVIA

(a) Echidnophaga gaEZinacea.-Per%: Trujillo, Huacho. (b) Hectopsylla psittaci.-Chile y Per&

91.-SCYTALOPUS MAGELLANICUS

(a) DusypsyZZus cleniopus.-Chile: Temuco.

92.-SCELORCIiILUS RUBECULA

(a) Dasypsyllus cteniopus.-Chile: Temuco.

%.-XOLMIS PYROPP

(a) Dasypsyllus araucunus.-Chile: Temuco.

9$.-Tuanua sp.

(a) Hectopsylla psittacz’.-Per& Huacho.

gã.-DROMICIOPS AUSTRALIS

(a) Chiliopsyllu allophyllu.-Chile,

96 .-lrkXiUZA'!

(a) Hectopsytta psittaci.-Per& Huacho. (b) Rhynchopsylla putez.-Per&: Huacho.

SIPHONAPTERA

I.NDIC~ m.xo~WIco DE HU&PEDES Y SUS PULGAS

455

CLASB AVES

ORDENSPELENISCIFORMES Familia Spheniscidae

Eudgples humboldti (85) Parapsyllus longicornis hum-

boldti Eudyptula minar (86)

Parapsyllus longicornis australiacus

ORDEN PROCELLABIIFORMES Familia Proceltariidae

Pufinus tenuirostris (87) Parapsyllus longioornis

australiacus ORDEN GALLIFORMES

Familia PhasZanidae GaElus gallus (Gallus domes-

fictas) (88) Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Echidnophaga gallinacea Hectopsylla eskeyi Pulex irritan5 Tunga penetrans Xenopsylfa cheopis

Familia Opisthocomidae Opisthocomus hoozin (89)

Nonapsylla rothschildi Polygenis dendrobius

ORDRNCOLUMBIFORMES Familia Golumbidae

Coolumba Eivia (90) Ecbidnophaga gallinacea Hectopsylla psittaci

ORDENSTRIGTFORNES Familia Strigidae

“Lechuza” (96) Hectopsylla psittaci Rhynchopsyllus pulex

ORDEN PASSERIFORMES Familia Pteroptochidae

Scylalopus magelhnicw (91) Dasypsyllus cteniopus

Scelorchilus rubecula (92) Dasypsyllus cteniopus

Familia Tyrannidae Xolmis pyripe (Taeniopteru

w-w) (93) Dasypsyllus araucanus

Familia Turdidae

Turdm (94) Hectopsylla psittaci

CLASE MAMMALIA

ORDENMARSVPIALIA Familia Didelphidae

Didelphis (17) Ctenocephalides felis Hectopsylla suarezi Neotyphloceras crassispina

crassispina Trichopsylla (Pleochaetis)

equatoris Didelphis azarae (18)

Neotyphloceras rosenbergi Didelphis marsupialis etensis

(23 Echidnophaga gallinacea Rhopalopsyllus lugubris

Didelphis marsupialis (19) Tritopsylla intermedia cophs

Didelphis paraguayensis andzna Cm

Ctenocephalides oanis Echidnophaga gallinacea Pulex irritan8 Tritopsylla intermedia inter-

media Dromiciops australis (95)

ChiliopsylIa allophylla Marmosa elegans (22)

Neotyphlocerae crassispina chilensis

No~opsyllus endymionis Tetrapsyllus litis

Melachirops opossum (?3) Neotyphloceras rosenbergi

Familia Caenolistidae Caenolestes (24)

Plocopsylla achilles Caenolestes fuliginosus (25)

Sphinctopsylla spillmanni ORDEN hSECTIVOR.4

Familia Soricidae Cryptotis equatorb (Blarina

equatoris) (26) Plocopsylla heros

Cryptotis thomasi (Blarina thomasi) (27)

Plocopsylla heros

456 OFICINA SANITARLA PANAMERICANA tMaw

Neomys (28) Ctenidiosomus spillmauni Sphinctopsylla tolmera

ORDEN CHIROPTERA

Murcielago (29) Myodopsylla wolffsohni Sternopsylla texans

Familia Molossidae MoEossus obscurus obscurus (30) . Sternopsylla distincta

Familia Vespertilionidae IIistiotua (31)

Rhynchopsyllus pulex Histiotus montanus (32)

Hectopsylla psittaci Myotis albescens (33)

Myodopsylla wolffsohni Myotis chiloensis atacamensis

(34) Ischnopsyllus sp.

ORDEN PRIMATES Familia Hominidae

Horno sapiens (1) Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Echidnophaga gallinacea Hectopsylla suaresi Leptopsylla segnis Nosopsyllus fasciatus Nosopsyllus londiniensis Polygenis litargus PuIex irritans Tiamastus cavicola Trichopsylla (Pleochaetis)

equatoris (?) Tunga penetrans Xenopsylla cheopis

ORDEN EDINTATA Familia Dasypodidae

Dasypus novemcinctus (35) Polygenis roberti Rhopalopsyllus cacicus caci-

tus ORDEN RODENTIA

SOB-ORDENDUPLICIDENTATA

Familia Leporidae Oryctolagus cuniculus (36)

Echidnophaga gallinacea Hectopsylla eskeyi Pulex irritans

Sylvilagus (37) Hoplopsyllus andensis Odontopsyllus sp. Polygenis litargus

Pulex irritans Tiamastus cavicola Trichopsylla (Pleochaetis)

equatoris (7) Sylvilagus ecaudatus (38)

Cediopsylla spillmanni Rhopalopsyhus cacicus ca-

cicus STJB-ORDEN SIMPLICIDENTATA

Familia Echimyidae Sub-familia Abrocominae

Abrocoma bennetti (39) Delostichus coxalis Eetinorus cocyti Neotyphloceras crassispina

chilensis Tetrapsyllus corfidii

Sub-familia Octodontinae Octodon degus (40)

Delostichus coxalis Ectinorus cocyti Neotyphloceras crassispina

chilensis Tetrapsyllus corfidii

Octodon bridgesi (41) Neotyphloceras crassispina

chilensis Octodontomys gliroides (42)

Dysmicus simonsi Octomys mimax (43)

Delostichus octomys Spalacopus cyanus (44)

Ectinorus cocyti Familia Chinchillidae

Lagidium v;scacia (45) Pulex irritans Tiarapsylla titschacki

Lagostomus (46) Delostichus claviger Delostichus xenurus Dysmicus sentus Dysmicus viscachae Tiarapsylla titschacki

Familia Caviidae Cavia aperea y Cavia porcellus

(47) Cediopsylla spillmanni Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Echidnophaga gallinacea Hectopsylla eskeyi Hectopsylla suarezi Leptopsylla eegnis Nosopsyllus londiniensis

19.44 SIPHONAPTERA 457

Polygenis litargus Pulex irritans Rhopalopsyllus cacicus ca-

cicus Tiamastus cavicola Trichopsylla (Pleochaetis)

equatoris (?) Tunga penetran6 Xenopsylla cheopis

Cavia aperea pallidior (48) Craneopsylla wolffhuegeli Pulex irritan6 Tiamastus cavicola

Kerodon boliviensis (49) Neotyphloceras crassispina

hemisus Tiamastus cavicola

Familia Sciuridas Sciurus stramineus nebouxii

(50) Polygenis litargus Polygenis litus (?)

Familia Heteromyidae Sub-familia Dipodomyinae

Thomomys (51) Trichopsylla (Pleochaetis)

dolens quitanus Familia Muridae Sub-familia Murinae

Mus (Mus) musculus musculw (52)

Ctenocephalides canis Hectopsylla suarezi Leptosylla segnis Nosopsyllus londiniensis Pulex irritans Tiamastus cavicoIa Xenopsylla cheopis

Rattus (53) Ctenocephalides canis Leptopsylla segnis Nosopsyllusfasciatua Nosopsyllus Iondiniensis Polygenis litargus Pulex irritan6 Tiamastus cavicola Tunga penetrans Xenopsylia cheopis

Rattus rattus rattus (54) Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Delostichus coxalis Echidnophaga gallinaces

Hectopsylla suarezi Leptosylla segnis Neotyphloceras crassispina

chilensis PuIex irritans Tetrapsyllus smplus Tunga penetrans Xenopsylla cheopis

Rattus rattus alezandrinnus (55) Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Echidnophaga gallinacea Hectopsylla eskeyi Hectopsylla suarezi Leptopsylla segnis Nosopsyllus fasciatus (7) Nosopsyllus londiniensia Pulex irritan6 Tiamastus cavicola Tunga penetrans Xenopsylla cheopis

Rattus rattus norvegicus (56) Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Echidnophaga gallinacea Hectopsylla eskeyi Hectopsylla suaresi Leptopsylla segnis Leptopsylla sp. Nosopsyllus fasciatus Nosopsyllus londiniensia Pulex irritan6 TetrapsylIus amplus Tiamastus cavicols Tunga penetrans Xenopsylla astia Xenopsylla cheopis

Ruttus rattus frugivoncs (57) Leptopsylla segnis Tunga penetrans Xenopsylla cheopis

Sub-familia Cricetinae Akodon (58)

Craneopsylla wolffhuegeIi Akodon (Abrothrix) longipilis

0-W Neotyphloceras crassispina

chilensis Plocopsylla wolffsohni Tetrapsyllus amplus

Akodon (Akodon) boliviensis

(64)


Neotyphloceras crassispina hemisus

Akodon {Akodon) olivaceus (60) Ctenoparia inopinata Delostichus coxalis Neotyphloceras crassispina

chilensis Plocopsylla wolffsohni Sphinctopsylla ares

Akodon (Bolomys) albiventer (59

Dysmicus simonsi Neotyphloceras crassispina

hemisus Akodon mollis (62)

Polygenis litargus Polygenis sp.

Akodon moElis orophilus (63) Craneopsylla wolffhuegeli Leptopsylla segnis Polygenis litargus Trichopsylla (Pleochaetis)

equatoris (?) Hesperomys (65)

Trichopsylla (Pleochaetis) campaniger

Oryzomys (66) Hectopsylls suaresi Sphinctopsylla inca Sphinctopsylla tolmera Trichopsylla (Pleochaetis)

dolens quitanus Oryxomys (Melanomys) pho-

eopus (67) Polygenis litargus

Oryzomys stolzmanni (69) Polygenis roberti

Oligoryzomys longicaudalus slolzmanni (70)

Polygenis litargus Trichopsylla (Pleoohaetis)

equatoris (?) Oryzomys (Oryzomys) albigu-

laris (68) Plocopsylla achilles

Oryzomys nilidus (73) Polygenis litargus

Oryzomys xanthaeolus ica (72) Craneopsylla wolffhuegeli Polygenis Iitargus Pulex irritans

Oryzomys xanthaeolus xanthaeolus (71)

Polygenis litargus Sigmodon (74)

Cleopsylla townsendi Neotyphloceras rosenbergi Plocopsylla heros Tetrapsyllus comis Trichopsylla (Pleochaetis)

equatoris Sigmodon peruanus (75)

Polygenis litargus Sigmodon simonsi (76)

Polygenis litargus Ehipidomys equatoris (78)

Polygenis litargus Thomasomys (77)

Cleopsylla townsendi Hoplopsyllus anden& Neotyphloceras rosenbergi Plocopsylla aehilles Plocopsylla hector Plocopsylla phobos Sphinctopsylla inca Sphinctopsylla tolmera

Phyllotis amicus (81) Neotyphloccras crassispina

crassispina Phyllotis arenarius (82)

Neotyphloceras crassispina crassispina

Phyllotis darwinii (79) Neotyphloceras crassispina

chilensis PlocopsylIa wolffsohni

Phylloiis fruticolus (80) Nosopsyllus londiniensis

Phyllotis xanthopygus (83) Plocopsylla achilles

(‘Hamster” (84) Rhopalopsyllus lugubris

ORDEN CARNIVORA Familia Canidae

Canis familiaris (2) Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Echidnophaga gallinacea Hectopsylla eskeyi Pulex irritans Tunga penetrans Xenopsylla cheopis

Cachuno (6) Rhopalopsyllus australis

tupinus Icticyon venaticus (5)

W81 SIPHONAPTERA . 459

Rhopalopsyllus australis tupinus W

Rhopalopsyllus lugubris Pseudalopex (7)

Ctenocephalides canis Pulex irritans

Pseudalopex culpaeus (8) Pulex irritans

Familia Mustelidae Xub-jamilia Mustelinae

Conepatus arequipae (15) Hectopsylla coniger

ikfustelafrenata aureoventris (16) Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Pulex irritans

Familia Felidae Felis (4)

Rhopalopsyllus lugubris Felis domestica (3)

Ctenocephalides canis Ctenocephalides felis Pulex irritans Tunga penetrans Xenopsylla cheopis

ORDEN AILTIODACTYLA Familia Suidae

Sus scroja (14) Ctenocephalides canis Echidnophaga gallinacea Pulex irritans Tunga penetrans Xenopsylla cheopis

Familia Camelidae Lama glamu (11)

Tunga penetrans Lama glama pacos (12)

Tunga penetrans Vicugna uicugna (13)

Tunga penetrans Familia Bovidae Sub-familia Caprinae Capra hircus (9)

Tunga penetrans Ovis aries (10)

Tunga penetrans

Nota: Los números entre paréntesis corresponden al orden de la lista.

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La Ingeniería Sanitaria dentro del Departamento de Salud.-El Departamento de Salud ha de tener una sección de ingeniería sanitaria que tendra a su cargo una serie de problemas relativos a la higiene ambiental. El ingeniero tiene una pre- paracion fundada en el conocimiento de los materiales, de las leyes de la mec8nica y de la estabilidad, que le permite hacer uso de la materia y de la energía que la naturaleza le suministra para levantar estructuras de toda clase y accionar má- quinas que ahorran el esfuerzo humano y permiten aumentar la producci6n y mejorar las condiciones de vida. El dominio de la ingenierfa es inmenso y se está extendiendo dfa a día. Es imposible a una mente humana, por brillantes que sean sus dotes, abarcar tan vasto campo. Cada vez m& se imponen los especialis- tas. La especialidad de Ingenierfa Sanitaria no existe todavía en nuestra Facul- tad, pero hay un buen curso que se dicta con ese nombre en la carrera de Ingeniero Civil, y no le es muy difkil a un egresado de nuestra casa de estudios completar sus conocimientos para llegar a ser un ingeniero sanitario bien preparado. Los estudios suplementarios que necesita el ingeniero sanitario comprenden, prin- cipalmente : Enfermedades transmisibles, Bacteriología y Parasitologfa, Qufmica, Estadfstica.-EMImo TOUIIN: Rev. Ing., 734, dbre. 1947.

Infecci6n e infestaci6n.-Guillermo Casis Sacre (Med., Mex., 16, eno. 10,1948), tras un estudio de la literatura existente sobre el significado preciso de los vocablos “infeccion” e “infestacion”, aboga por que se use sistemáticamente el termino “infecci6r.r” para todos los procesos patol6gicos provocados por virus, bacterias, hongos, protozoarios y helmintos, reservandose el término “infestación” para los procesos morbosos ocasionados por artrópodos, ya sea que estos radiquen en la piel, tejido subcutáneo, tracto genital o gastrointestinal o en cualquier otra parte del organismo donde se alojen. En la opinión del A. son muchas las razones que existen para considerar que los helmintos, las bacterias y los protozoarios se pare- cen entre si en cuanto al mecanismo de producir enfermedades y mucha la con- veniencia de uniformar el significado de estos vocablos entre los investigadores, cientlficos, escritores, parasitólogos, medicos y profesores de la materia en las escuelas de medicina, haciendo caso omiso de argumentaciones sutiles, susceptibles de ser discutidas.

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SIPHONAPTERA DE LA COSTA SUR-OCCIDENTAL DE AMÉRICA