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Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures F. Baret, B. de Solan ,Ph. Burger & A. Comar 1 INRA-EMMAH UMR1114 Avignon 2 Arvalis, Avignon 3 INRA- AGIR UMR1248, Auzeville

Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

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Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures. F. Baret, B. de Solan ,Ph. Burger & A. Comar. 1 INRA-EMMAH UMR1114 Avignon 2 Arvalis, Avignon 3 INRA- AGIR UMR1248, Auzeville. Importance du phénotypage au champ. - PowerPoint PPT Presentation

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Page 1: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

F. Baret, B. de Solan ,Ph. Burger & A. Comar1INRA-EMMAH UMR1114 Avignon2Arvalis, Avignon3INRA- AGIR UMR1248, Auzeville

Page 2: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Importance du phénotypage au champ

Paris 22 Nov. 2011 2

Les plantes cultivées en conditions artificielles sont différentes de celles cultivées au champ Sol (pots) Climat (serre) Compétition entre plantes (plantes isolées)

Le phénotypage au champ est nécessaire pour identifier des traits sans artefacts

Il fournit des informations pour une déclinaison variétale des règles de décision

Très nombreuses parcelles à caractériser (1000-2000) et suivi de la dynamique: les méthodes ‘destructrices’ ne conviennent pas.

Il est nécessaire de développer des méthodes de mesures1. Rapides2. Non destructives3. Peu coûteuses (en coût unitaire)

Page 3: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 3

Plan

Introduction

Mesures de caractéristiques foliaires

Systèmes de phénotypage au champ

Conclusion

Page 4: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 4

Plan

Introduction

Mesures de caractéristiques foliaires

Systèmes de phénotypage au champ

Conclusion

Page 5: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Principe: absorption spectrale

Paris 22 Nov. 2011 5

0.0001

0.0010

0.0100

0.1000

1.0000

10.0000

400 900 1400 1900 2400Wavelength (nm)

Abs

orpt

ion

(cm

²/g)

Brown pigmentsDry matterChlorophyll and carotenoidswater

Absorption par:-la chlorophylle-L’eau-La matière sèche-Les pigments bruns

Page 6: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Systèmes de mesure

Paris 22 Nov. 2011 6

Pince pour mesure des propriétés optiques des feuilles au champ

Minolta SPAD (N tester)

Spectro ASD

Spectro JAZOcean-Optics

Page 7: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Estimation de contenus

Paris 22 Nov. 2011 7

Cab, Cw, SLW PROSPECT Reflectance*

Transmittance*

ReflectanceTransmittance Mesures

optimisation

Contenu en eau (g.cm-2) Contenu en matière sèche (g.cm-2)

Page 8: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Les effets directionnels de surface

φs = 00°

8

Forte anisotropie de la feuilleEffets directionnels dus à l’état de surface de la feuille (rugosité/pilosité/état de la cuticule)Conséquences sur l’estimation des contenus biochimiquesParis 22 Nov. 2011

φs = 0°

φs = 90°

φs = 90°φs = 0°

Page 9: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Les effets de surface identifiés

Nervures Trychomes

Séparation des cellules

Hétérogénéité de la cuticule

Zoom

Images acquises au MEB sur du blé dur - x 150 - x 500 - x 15 000

Anisotropie: -Nervures - Séparation des cellules

« Rugosité »- trychome- hétérogénité

Paris 22 Nov. 2011 9

Page 10: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

La pince CANARD

• ρ et τ hémisphérique• optimisation de la configuration géométrique

• Inverser PROSPECT• Cab: chlorophylle• Cw : Contenu en eau• Cm : Matière sèche

• Calibrer des relations empiriques•pigments (Ca, Cb, Cc),•eau•matière sèche•azote•cellulose•(lignin) •phenols (stress)

•Caractériser la surface •Rugosité•État de la cuticule

Mesure de:

Pour:

10

(Chlorophyll and Nitrogen Absorption and Reflectance Device)

Page 11: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 11

Plan

Introduction

Mesures de caractéristiques foliaires

Systèmes de phénotypage au champ

Conclusion

Page 12: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

12/21

Transmittance et RéflectanceTransmittance=Structure Réflectance=Structure

+ Propriétés Optiques

Photographie numérique Spectro-Radiomètre

0.00.10.20.30.40.50.60.70.80.9

350 450 550 650 750 850 950 1050 1150longueurs d'ondes (nm)Paris 22 Nov. 2011

Page 13: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 13

Appareils photo + 2 flashs - 1 au nadir - 1 à 57°

Spectros: - 1 au nadir - 2 à 57° - 1 incident

Projet innovant AGIR-Emmah (2007-2008)Thèse Alexis Comar (2010-2012 – CIFRE Arvalis)ANR-Phénoblé (2011-2014)1. Système porté sur tracteur géométrie de mesure mieux contrôlée 2. Combinaison imagerie (VIS) et spectrométrie VIS-PIR3. Déclenchement et référencement automatique des mesures (GPS-RTK)4. Traitement automatisée des mesures (post-traitement)

Développement d’un système dédié au phénotypage

1-3 mvariable

spectrosGPS PCCameraFlash

Débit actuel: environ 100 µparcelles/heure

Page 14: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

SYSTEM AND EXPERIMENTAL SETUP• Irradiance probe• BF2 (diffuse estimation in PAR)

Reference board

CameraFlash

Control center

14

Spectro

GPS RTK Automatisation100 parcelles/h4 h/jourTraitement: 2 jours

Page 15: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

FV57

0.3 0.6 0.9 0.6 0.8 0.3 0.6 0.9

0.85

0.95

0.3

0.6

0.9

FV0

NDVI57

0.86

0.92

0.98

0.6

0.8

NDVI0

MCARI2_57

0.75

0.90

1.05

0.85 0.95

0.3

0.6

0.9

0.86 0.92 0.98 0.75 0.90 1.05

MCARI2_0

Fraction de vert (FV) photo

2 indices spectraux NDVI MCARI2

2 directions Verticale (0°) Inclinée (57°)

1 date 05/04/2011

6 génotypes x 3N x 2D

15

Sélection d’indices spectraux

Page 16: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Visée nadir: MCARI et FV

MCARI2 = f(FV)

6 dates avril à juin O : après flo + : avant flo

Relation linéaire R²=0.93 Bonne cohérence entre

2 mesures différentes Léger effet de l’épi

++

+

+

++

++

++

+

+

0.0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0

0.0

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

correl$dat[correl.sub, j, 2]

corre

l$da

t[cor

rel.s

ub, j

, 6]

++

++

+

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o

SoissonsBiensurCap HornHysunApacheIsildur

16

FV (photo)

MCA

RI2

(spe

ctro

)

Page 17: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Architecture :Combinaison visées 0° / 57°

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++ +

0.05 0.10 0.15 0.20 0.25

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

1.2

X

Y

+

+ +

++

+

+

+

+

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++

+ +

+

+

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+

+

+

+ +

++

+ +

SoissonsBiensurCap HornHysunApacheIsildur

17

-log(

MCA

RI2(

0°))

-log(MCARI2(57°))

Page 18: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Estimation de QN (données 2010)

En l’absence de calibration variétale, QN = f(Reflectances), par PLS

60 80 100 120 140 160

6080

100

120

140

160

ntot, 5 comps, validation

measured

pred

icte

d

0 100 200 300 400 500

-0.20

-0.15

-0.10

-0.05

0.00

0.05

0.10

nm

load

ing va

lue

Comp 1 (97.784 %)Comp 2 (1.782 %)Comp 3 (0.309 %)Comp 4 (0.086 %)Comp 5 (0.024 %)

Performances prédictives moyennes mais permet de définir des bandes spectrales les plus informatives : > 550, 680, 730, 760, 850, 950

18

Page 19: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 19

Possibilité de suivre la dynamiqueIndice sensible à la surface verte

Indice sensible à la chlorophylle

MCA

RI2

MTC

I

N0 N1 N2

N0 N1 N2

Page 20: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

• Estimation de l’azote absorbé, à 2 noeuds

QN

Indi

ce

Approche empirique

20Effet de structure

Page 21: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 21

Hysun Cap Horn

Visée verticale: sensibilité à la structure

Page 22: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 22

Utilisation des maquettes 3D pour interpréter les mesures

Page 23: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 23

0

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

0.8

0.9

1

0.00 1.00 2.00 3.00 4.00 5.00 6.00 7.00 8.00

Frac

tion

de tr

ous

GAI

Po_0° = f(GAI)

Var érectophile

Var planophile

0

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

0.8

0.9

1

0.00 1.00 2.00 3.00 4.00 5.00 6.00 7.00 8.00

Frac

tion

de tr

ous

GAI

Po_57° = f(GAI)

Var érectophile

Var planophile

Influence de l’architecture sur les mesures

L’architecture du couvert peut fortement biaiser l’estimation des variables d’intérêt

Page 24: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 24

Plan

Introduction

Mesures de caractéristiques foliaires

Systèmes de phénotypage au champ

Conclusion

Page 25: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 25

Améliorations prévues• Débit: 300-500 p/jour 1000 p/jour• Automatisme suivi fréquent de la dynamique (100°C.j)• Système actif (indépendant conditions d’éclairement avec flashs)

• Camera superspectrale (8-10 bandes)• Superposition de la représentation 3D • Barrière optique comptage tiges / épis• (Lidar) (distribution hauteur organes)

• Mesures de stress ?• Thermique• Fluorescence• PRI

• Automatisation du traitement

• Adaptation à d’autres espèces

Reconstruction 3Dincrémentale

Page 26: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Mesures de stress instantanés: Drones/ULM ?

Symptomes de stress ‘instantanés’ avec forte variabilité temporelle• Thermique• Fluorescence• PRI

Effets Directionnels (interaction avec la structure du couvert): correction à posteriori à partir des mesures PHENOMOBILE

26Paris 22 Nov. 2011

Page 27: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

Paris 22 Nov. 2011 27

Métriques ?Quelles métriques utiliser pour l’identification/quantification des traits?

Niveau 1: résultat ‘brut’• Indices spectraux• Caractéristiques de la dynamique (dates clé, pentes, intégrales)• Différence de niveau de stress

Niveau 2: variables de structure / propriétés optiques (et dynamique)• GAI• FIPAR• Structure• Comptage plante (précoce)• Comptage épis• Hauteur• Chlorophylle• Azote• Efficience de la photosynthèse• Conductance stomatique• Durée de vie des feuilles• Tallage

Niveau 3: variables fonctionnelles• Paramètres de modèles de fonctionnement / structure 4D

Page 28: Techniques et outils pour le phénotypage au champ des variétés de grandes cultures

28

MesureCapteur

Au champ

ParametresPhysiol.

(dep. Génét.)

1. Estimation de traits fonctionnelspar méthodes empiriques

Transf.Rad.

ModeleFonct.

ForcageClimat

SolPrat. Cult.

LAIChloro

2. Utilisation de modèles fonctionnels: Parametres Génétiques

StructureProp.

Optique

3. Amélioration de la cohérenceentre mesures et modèles

ParametresArchitecture(dep. Génét.)

Modele4D

4. Utilisation de modèles 4D

Mesures.détaillées

5. Ajustement des parametres de modèles 4D aux mesures détaillées

Stress

6. Couplage du modèle 4D au modèle de functionnement

Approche générale envisagée

LAI et Chlorophyllesont partagées par les 3 modèles: Forte cohérence nécessaire

Paris 22 Nov. 2011