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UNIVERSIDAD MAYOR DE SAN ANDRÉS FACULTAD DE AGRONOMÍA
CARRERA INGENIERIA AGRONÓMICA
TESIS DE GRADO
DIAGNOSTICO E IDENTIFICACION DE AGENTES FITOPATOGENOS CAUSANTES DE ENFERMEDADES EN EL DURAZNERO
EN LOS VALLES BAJOS DEL MUNICIPIO DE MOCOMOCO
Presentado por: SILVIA CRISTINA HUANCA LLUSCO
La Paz – Bolivia 2013
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CONTENIDO GENERAL
Índice...…...……………………………………………....………….…….………... i
Índice de cuadros…………………………………….…………………..……...... v
Índice de figuras…………………………………………………….…...………... vi
Anexos……………………………………………………………………………......viii
Resumen………………………………………………………...……….………..... ix
Summary…………………………………………..…………….………................ xi
Índice.
1. INTRODUCCION……………………………………………………………………….. 1
2.1. Objetivo General……………………………………………………………………… 3
2.2. Objetivos Específicos………………………………………………………………… 3
3. LITERATURA REVISADA……………………………………………………….……. 4
3.1. La producción del durazno a nivel Nacional……………………………………….. 4
3.2. Origen y Clasificación taxonómica del duraznero…………………………...……. 5
3.3. Descripción morfológica……………………………………………………………... 5
3.3.1. Fisiología………………………………………………………………………..…… 6
3.3.1.1. Iniciación floral………………………………………………………………..…... 7
3.3.1.2. Formación del fruto…………………………………………………………..…... 8
3.3.1.3. Crecimiento del fruto…………………………………………………………..… 8
3.3.1.4. Maduración y senescencia del fruto………………………………………….... 8
3.3.2. Variedades………………………………………………………………………..… 9
3.4. Enfermedad de las plantas……………………………………………………….…. 11
3.4.1. Síntoma…………………………….……………………………………………….. 12
3.4.2. Signo………………………………………..……………………………………….. 13
3.5. Importancia de las enfermedades………………………………...………………… 13
3.6. Causas de las enfermedades en planta …………………………………………… 13
3.6.1. Interacción planta-patógeno-ambiente en el proceso de las enfermedades 14
3.6.1.1. Patógeno………………………………………………………………………..… 14
3.6.1.2. Hospedante……………………………………………………………………….. 15
3.6.1.3. Condiciones Ambientales. ………………………………………….…………... 15
3.7. Enfermedades del duraznero……………………………………………………….. 16
3.7.1. Torque del Durazno……………………………………….……………………….. 16
3.7.2. Roya…………………………… …………………………………………………… 18
3.7.3. Mal de Munición………………………………………………………………..….. 19
3.7.4. Podredumbre parda (Monilia sp.)………………………………………………... 21
3.7.5. Oídio (Sphaerotheca pannosa)……………………………………………….…. 24
3.8. Diagnostico de enfermedad…………………………………………………..…..… 25
3.8.1. Diagnóstico a nivel de campo ……………………………………………….…… 26
3.8.2. Diagnostico de confirmación………………………………………………………. 26
3.9. Importancia del diagnostico ……………………………………………………..….. 26
3.10. Aislamiento e identificación de agentes fitopatógenos………………………… 26
3.10.1. Identificación………………………………………………………………………. 26
3.10.2. Aislamiento……………………………………………………………..…………. 27
3.10.3. Cámara húmeda……………………………………………………..…………… 27
3.11. Evaluación y cuantificación………………………………………………………… 28
3.11.1. Incidencia……………..…………………………………………………………… 28
3.11.2. Severidad……………………………………..…………………………………… 29
4. MATERIALES Y METODOLOGIA………………………………………………….... 29
4.1. Ubicación Geográfica……………………………………………………………..….. 29
4.2. Aspectos climáticos………………………………………………………………..…. 31
4.3. Descripción fisiográfica…………………………………………………………….… 32
4.4. Composición florística……………………………………………………………….. 33
4.5. Materiales…………………………………………………………………………….… 34
4.5.1. Materiales de campo………………………………………………………………... 34
4.5.2. Material de laboratorio…………………………………………………………….... 34
4.5.3. Materiales de gabinete……………………………………………………………... 34
4.6. Metodología……………………………………………………………………………. 34
4.6.1. Trabajo de campo………………………………………………………………..…. 35
4.6.1.1. Recopilación de Información…………………………………………………..… 35
4.6.1.2. Elección de Muestreo…………………………………………………………….. 35
4.6.1.3. Ubicación de las zonas de Muestreo………………………………………….... 36
4.6.1.4. Determinación del tamaño de la Muestra…………………………………….… 36
4.6.1.5. Marco Muestral………………………………………………………………….… 37
4.6.1.6. Diferenciación de variedades………………………………………………….… 38
1.6.1.7. Determinación del Nivel de Incidencia………………………………………..… 39
4.6.1.8. Determinación de Severidad………………………………………………….…. 40
4.6.2. Trabajo en Laboratorio……………………………………………………………… 40
4.6.2.1.Toma de Muestras……………………………………………………………….... 40
4.6.2.2. Identificación Microscópica y Macroscópica………………………………...…. 41
4.6.2.3. Metodología para el análisis del torque de durazno………………………...… 41
4.6.2.4. Metodología para el análisis de la roya……………………………………….... 42
4.6.2.5. Metodología para el análisis de Tiro de munición…………………………….. 43
4.6.2.6. Metodología para el análisis de Podredumbre parda……………………….… 44
4.6.2.7. Metodología para el análisis de oídium……………………………………….... 44
5. RESULTADOS Y DISCUSIONES………………………………………………….…. 45
5.1. Torque del Durazno………………………………………………………………….... 45
5.1.1. Zonas de distribución……………………………………………………………..… 45
5.1.2. Síntomas de la enfermedad……………………………………………………..…. 46
5.1.3. Análisis de laboratorio……………………………………………………………... 47
5.1.4. Incidencia y severidad para Torque de Durazno………………………………... 50
5.1.5. Análisis estadístico…………………………………………………………………. 53
5.2. Enfermedad de la Roya…………………………………………………………….… 57
5.2.1. Zonas de Distribución………………………………………………………………. 57
5.2.2. Síntomas de la enfermedad………………………………………………………... 57
5.2.3. Análisis de laboratorio………………………………………………………………. 58
5.2.4. Incidencia y severidad para Roya…………………………………………………. 60
5.2.5. Análisis estadístico………………………………………………………………….. 61
5.3. Enfermedad de Mal de Munición…………………………………………………….. 65
5.3.1 Distribución de la enfermedad.…………………………………………………….. 65
5.3.2. Síntomas de la Enfermedad…………………………………………………….…. 65
5.3.3. Análisis de Laboratorio……………………………………………………………... 66
5.3.4. Incidencia y severidad para Mal de Munición……………………………………. 67
5.3.5. Análisis Estadístico……………………………………………………………….… 69
5.6. Podredumbre Parda…………………………………………………………………... 72
5.7. Oídio…………………………………………………………………………………..… 73
6, CONCLUSIONES.…………………………………………………………….………… 75
7. RECOMENDACIONES...……………………………………………………………….. 76
8. BIBLIOGRAFIA………………………………………………………………………….. 79
Índice de Cuadros
Cuadro 1. Superficie, rendimiento y volumen de producción de durazno por
departamento para la gestión 2005…………………………………………………….
4
Cuadro 2. Detalle del tamaño de la muestra según el número de familias………. 38
Cuadro 3. Descripciones morfológicas para Taphrina deformans…………………. 49
Cuadro 4. Análisis de varianza para Incidencia del Torque en porcentaje……….. 53
Cuadro 5. Prueba de Duncan para Torque del Durazno en porcentajes………… 53
Cuadro 6. Análisis de varianza para Severidad del Torque en porcentajes……… 55
Cuadro 7. Prueba de Duncan para Severidad de Torque en porcentajes………… 55
Cuadro 8. Descripciones morfológicas para Transchelia sp………………………... 59
Cuadro 9. Análisis de varianza para incidencia de la Roya en porcentaje……….. 61
Cuadro 10. Prueba de Duncan para la Incidencia de la Roya en porcentajes……. 62
Cuadro 11. Análisis de varianza para la severidad de la Roya en porcentajes…... 63
Cuadro 12. Prueba de Duncan para la Severidad de la Roya en porcentajes……. 64
Cuadro 13. Análisis de varianza para incidencia de Munición en porcentajes….... 69
Cuadro 14. Prueba de Duncan para Incidencia de Munición………………….……. 69
Cuadro 15. Análisis de varianza para severidad de Munición en porcentaje……... 70
Cuadro 16. Prueba de Duncan para Severidad de Mal de Munición……………… 71
Cuadro 17. Descripciones morfológicas del hongo (Monilinia sp.)…………………. 73
Índice de figuras
Figura 1. Municipio de Mocomoco en la Provincia Camacho del Departamento
de La Paz…………………………………………………………………………………
30
Figura 2.Temperatura media mensual gestión (2009 - 2010)……………………... 31
Figura 3. Datos promedio de precipitación pluvial de la gestión (2009 - 2010)… 32
Figura 4. Diversidad fisiográfica en los Valles bajos del Municipio de
Mocomoco, Comunidad Usuraya……………………………………………………...
33
Figura 6. A). Deformaciones de torque de durazno vista del esteroscopio B).
Desarrollo de hifas ……………………………………………………………………...
46
Figura 7. A) Tejido contenidos ascosporas; B) Corte transversal del hoja con
desarrollo de hifas……………………………………………………….………………
48
Figura 8. Comportamiento de la enfermedad de Torque, durante la etapa
reproductiva del Durazno para los cuatro estratos…………………………………..
49
Figura 9. Transcurso de la enfermedad de Torque, durante la etapa
reproductiva del Durazno para los cuatro estratos…………………………………..
51
Figura 10. Promedio de Incidencias para Torque del durazno…………………… 53
Figura 11. Promedios para Severidad del Torque en porcentajes………….……. 55
Figura 12. Síntomas de Roya (Tranzschelia discolor), en hojas jóvenes……….. 58
Figura 13. Fase teleutosorica en roya (Tranzschelia discolor), A) Telios
agrupados B) Telios contenidos las Teliosporas……………………………………
58
Figura 14. Porcentaje de Incidencia para la Roya en la etapa reproductiva……. 59
Figura 15. Porcentaje de Severidad para la Roya en la etapa reproductiva del
durazno……………………………………………………………………………………
60
Figura 16. Promedio para la Incidencia de la Roya en porcentajes………………. 61
Figura 17. Promedios para la Severidad de la Roya en porcentajes…………….. 63
Figura 18. Síntomas de Tiro de Munición (A) Exudado gomoso sobre ramas(B)
Lesiones circulares necróticas desprendidas en el área foliar……………………..
64
Figura 19. Manchas circulares necróticas color café con anillos
Concéntricos de color rojo – purpura…………………………………….…………… 66
Figura 20. Incidencia para Munición en etapa reproductiva del duraznero……… 66
Figura 21. Severidad para Munición en etapa reproductiva del duraznero……… 67
Figura 22. Promedios de Incidencia para Munición en porcentajes……………... 69
Figura 23. Promedios de severidad para Munición en porcentaje…………..…… 70
Figura 24. A). Flores atizonadas (izquierda) (B). Frutos que presentan
podredumbres de color gris (centro) C) Desarrollo de Monilia (derecha)………....
71
ANEXOS
Anexo 1 Ubicación geográfica……………………………………………………….… 84
Anexo 2. Ciclo Reproductivo de los patógenos…………………………………….... 85
Anexo 3. Ciclo Fenológico del Durazno: etapa de floración y pos cosecha…….… 88
Anexo 4. Fotos de plagas en el Duraznero…………………………………………… 89
Anexo 5. Fotos de Síntomas de enfermedades……………………………………… 90
Anexo 6. Planilla de encuesta………………………………………………………….. 91
Anexo 7. Claves para Melocotón………………………………………………………. 94
Anexo 8. Tablas de Incidencias y severidad…………………………………………. 99
Anexo 9. Propuesta en el manejo integrado de las enfermedades………………. 105
RESUMEN
El presente trabajo fue realizado con base es una investigación científica sistemática
con el objeto de contar con una difusión que describiera las enfermedades fungosas
que atacan al cultivo del durazno durante el etapa productiva (iniciación floral –
maduración de fruto).
Realizando un diagnostico de las enfermedades más importantes en ocho comunidades
del municipio de Mocomoco del Departamento de La Paz Provincia Camacho durante la
temporada 2010/2011. Estas a su vez se las dividió en estratos. Al mismo tiempo se
determino los niveles de incidencia y severidad de las enfermedades identificadas;
para conocer el grado de importancia que se les debe brindar. La evaluación se realizo
en plantas en etapa productiva del cultivo de Durazno.
Se empleó el muestreo aleatorio estratificado. Los valores conseguidos fueron
expresados en porcentaje tanto para incidencia como para severidad, se normalizaron
de acuerdo a la transformación angular de Steel y Torrie para después ser sometidos a
un análisis de varianza y prueba Duncan, se hicieron comparaciones de medias entre
estratos y de los mismos se realizaron graficas los cuales dieron mejores
interpretaciones.
Las vías para confirmar la identidad y presencia de los agentes fitopatógenos, en una
primera instancia, fue tomar muestras vegetales con presencia de signos y síntomas de
enfermedad, estos fueron llevados a laboratorio para ser analizadas. En dicho estudio
se describieron sus estructuras morfológicas tales como forma y color de conidios,
forma de esporas, el aspecto de colonias, y otras, que dieron como resultado positivo,
para la identificación de las especies, mediante el uso de claves y descripciones
morfológicas. En una prueba más profunda se utilizaron otros medios como son la
cámara húmeda y aislamientos en medios de cultivo.
Entre los principales problemas que afectan al cultivo, se identificaron cinco
enfermedades causadas principalmente por hongos, debido a condiciones climáticas
que favorecen a la proliferación, que comúnmente se observan, tal es el caso del
Torque del Durazno (Taphrina deformans), Mal de Munición (Coryneum carpophilum),
Roya (Tranzschelia pruni-spinoseae), Oidium (Sphaeroteca panosa) y Pudrición café
(Monilia spp) las cuales atacan a diferentes órganos de la planta, ramas, hojas, flores y
frutos en sus diferentes etapas fenológicas provocando daños severos que afectan
significativamente la producción y calidad del durazno.
Los aspectos fundamentales que se tomaron para el planteamiento del diagnostico, nos
permitió describir, la importancia, sintomatología y distribución geográfica de las
enfermedades asociadas al cultivo de Durazno. Que a su vez, logramos ponderar el
grado de infestación de las enfermedades estudiadas, con la finalidad de optar
precisamente, con elementos necesarios para iniciar un programa del manejo
integrado.
SUMMARY
The present work was accomplished she is a scientific systematic investigation for the
purpose of counting on a diffusion with base that you described the fungi diseases that
attack the cultivation of the peach during the productive stage (floral initiation –
maturation of fruit ).
Realizing one I diagnose of the more important diseases in eight communities of
Mocomoco's municipality of the Department of La Paz Province Camacho during the
season 2010/2011. These in turn he shared in strata. At the same time himself I
determine the levels of incidence and severity of the identified diseases; In order to
know the grade of importance that they should be offered. The evaluation himself I
realize in plants in productive stage of Durazno's cultivation.
Stratified random sampling was used. The gotten moral values were expressed in
percentage so much for incidence as well as for severity, got back to normal according
to Steel's and Torrie's angular transformation stops after being submitted to an analysis
of variance and proof Duncan, comparisons of stockings between strata became and of
the same which sold off graphs themselves they gave better interpretations.
The roads to confirm the identity and the agents' presence fitopathogen, in a first
instance, it was taking vegetable samples with presence of signs and symptoms of
disease; these were taken to laboratory to be analyzed. They described their
morphologic structures in the aforementioned study cut like form and color of conidia,
form of spores, the aspect of colognes, and other ones, the fact that they gave like
positive result, for the identification of the sorts, by means of the use of keys and
morphologic descriptions. They used other means as they are the humid camera and
isolations in means of cultivation in a deeper proof.
It is the case of the Peach leaf curl between the main problems that affect the
cultivation, identified five diseases caused principally by mushrooms, due to climatic
conditions m that favor to the proliferation, that commonly they observe, such ( Taphrina
deformans ), Munición ( Coryneum carpophilum ), Roya ( Tranzschelia pruni spinoseae
), Oidium ( Sphaeroteca panosa ) and brown rot ( Monilia spp ) which attack different
organs of the plant, branches, sheets, flowers and fruits in his different stages provoking
harsh damages that production and quality of the peach affect significantly.
The fundamental points of view that they took for the proposal of the I diagnose, he
allowed us describing, importance, symptomatology and geographic distribution of the
associated to diseases peach's cultivation. Than in turn, we managed to ponder the
degree of infestation of the diseases studied, with the aim of choosing precisely, with
necessary elements to initiate a program of the integrated handling.
1. INTRODUCCIÓN La Producción de durazno es una actividad importante en la generación de ingresos y
empleo de pequeños productores principalmente en el área rural. Como fruta de clima
templado se produce principalmente en los valles mesotérmicos de los departamentos
de Cochabamba, Chuquisaca, Tarija, La Paz, Potosí y Santa Cruz.
Se estima que la producción de durazno en Bolivia es 35.036 tn que representa el
0,32% a nivel mundial, que comparado con el 2,3% de Chile, el 1,9% de Argentina y el
22,8% de China, es muy bajo esto demuestra que nuestro país no desarrolló una
producción intensiva a nivel comercial para exportación (Tantani, 2003).
Debido a que los rendimientos y porcentajes de calidad se muestran muy bajos, ya sea
por la escasa tenencia de tierra, condiciones climáticas adversas, desconocimiento de
otras tecnologías. Además la explotación de plantaciones viejas, falta de diversificación
de variedades en cuanto a la época de cosecha, falta de criterios para la renovación e
implementación de nuevos huertos, inapropiada práctica de control fitosanitario, escaso
manejo de las prácticas culturales, deficiente manejo de la post-cosecha y mercadeo;
que influyen en el sistema de producción.
Sin embargo, en los últimos 20 años la superficie cultivada ha crecido
considerablemente. Donde varios municipios tienen como principal actividad a la
producción de duraznos, acompañado de diversos factores que se encuentran
afectando a la producción, entre ellas, las enfermedades causadas principalmente por
hongos.
En el departamento de La Paz, los Municipios que se dedican a la producción de este
cultivo son: Sapahaqui, Luribay, Chuma y Mocomoco, gozando este último, de un gran
potencial agrícola, que aun no ha sido explotado. Así mismo esta región se caracteriza
por poseer varios de los pisos ecológicos, como son: Altiplano, Cabecera de Valle y
Valle.
La producción de durazno en el municipio de Mocomoco es comparado a una huerta
familiar, distribuido en parcelas, denominadas chacras con una superficie promedio de
2500 metros cuadrados; utilizan solamente tecnología tradicional en el manejo del
cultivo de durazno, no se realiza prácticas culturales, muy pocos son los que cuentan
con riego, por lo que, la mayoría espera la época de lluvia. Existe un gran potencial y
las condiciones necesarias, en cuanto a clima y suelo, para una producción óptima del
cultivo. El destino de la producción es para ser comercializada en un 90% y para su
autoconsumo en un 10%, practicándose también el trueque.
2. OBJETIVOS
2.1. Objetivo General ☺ Identificar las principales enfermedades en el duraznero producidos por
agentes fitopatógenos y ponderar el grado en que se manifiestan.
2.2. Objetivos Específicos
☺ Determinar el porcentaje de Incidencia y severidad de las enfermedades
durante el ciclo reproductivo de la planta.
☺ Analizar en laboratorio muestras vegetales, para confirmar la existencia de los
agentes fitopatógenos.
3. LITERATURA REVISADA 3.1. La producción del durazno a nivel Nacional El volumen de producción de durazno en los últimos 8 años ha tenido una tasa de
crecimiento del 5% año como promedio debido a la creciente demanda del durazno en
estado fresco y sus derivados en el mercado interno.
El rendimiento promedio de durazno para Bolivia es de 5.7 TM/ha, significando apenas
la cuarta parte si se compara con el rendimiento de otros países como argentina,
España, EE. UU. e Italia, que tienen un rendimiento de 24 TM/ha como promedio.
Por otro lado se expende durazno fresco de origen extranjero proveniente de Chile
(90%) y argentina el (10%) se calcula que la importación de fruta que ingresa al país
por esa vía es de 1.009,4 TM con un valor de 6 millones de Bs. (FDF Y AE Chile en
Bolivia, 2005).
Cuadro 1. Superficie, rendimiento y volumen de producción de durazno por departamento
para la gestión 2005.
Departamento Superficie
(ha) %
Rendimiento(Kg/ha)
% Volumen
(TM) %
Cochabamba 2530 39 6099 18 14430 41
Chuquisaca 1450 22 5579 16 8090 21
Tarija 900 14 6640 19 5976 16
La Paz 820 13 5299 15 4345 11
Potosí 500 8 5530 16 2765 7
Santa Cruz 270 4 5648 16 1525 4
Total 6470 100 5799 100 38131 100Fuente: Departamento de información y estadística UPCS-MAGDR 2005.
La mayor superficie cultivada de durazno en Bolivia, la posee el departamento de
Cochabamba con 2530 ha, de las cuales la producción alcanza un volumen de más de
15 mil TM con un rendimiento de 6099 kg/ha por las características que brinda el valle
aportando a la producción nacional con 40%. Por otro lado el departamento de Santa
Cruz, tiene una superficie cultivada de 270 ha, alcanzando una producción de 1500 TM
aportando a la producción nacional con apenas el 4% (UPCS-MAGDR 2005).
3.2. Origen y Clasificación taxonómica del duraznero El duraznero (Prunus pérsica) es originario de China donde se cultiva desde hace 3000
años, fueron traídos probablemente a Persia a través de las rutas comerciales por las
montañas, llego a ser conocido como fruta pérsica, de ahí el nombre pérsica; esto llevo
al error de que el duraznero fuera considerado originario de Persia (Ogawa
et.al, 1999).
Reino: Plantae
División: Magnoliophyta
Clase: Magnoliopsida
Orden: Rosales
Familia: Rosaceae
Género: Prunus
Especie: P. pérsica L. Batsch, (1801)
3.3. Descripción morfológica Según Fideghelli (1987), define que las raíces del duraznero presentan un color
anaranjado con lenticelas muy evidentes; con muchas ramificaciones, muy extendidas y
poco profundas. La zona explorada por las raíces ocupa una superficie mayor que la
zona de proyección de la copa; se considera que esta superficie es el doble, y es mayor
cuanto, menor sea el contenido hídrico del terreno. La profundidad del sistema radicular
depende fundamentalmente de la aireación del terreno, por lo que será mayor en los
suelos ligeros y bien drenados.
Los ramos del duraznero según las dimensiones y la distribución de la yemas de flor se
clasifican en ramos mixtos, chifonas, ramos de mayo y chupones. El ramo mixto lleva
yemas de flor y yema de madera, la chifona es más débil que el ramo mixto lleva yemas
en flor y termina en yemas de madera. El ramo de mayo es un ramo de pocos
centímetros de longitud con una yema apical de madera y varias yemas de flor, el
chupón es un ramo de muy vigoroso.
Las hojas son oblondas, lanceoladas, con una longitud aproximada de 140 -180 mm y
una anchura 40 - 50 mm; el limbo es liso, a veces ondulados a lo largo del nervio
central, los bordes son aserrados o doblemente dentados.
Las flores, pueden estar solitarias, reunidas o en grupos de tres o cuatro, son de dos
tipos: rosáceas y campanuláceas. Las primeras tienen los pétalos grandes, de color
rosa claro, abierto; las segundas tienen los pétalos más pequeños, de color rosa
intenso y no se abren completamente.
El fruto es una drupa (pericarpio membranoso, mesocarpio pulposo, endocarpio
leñoso), de forma más o menos globosa con una línea de sutura y una cavidad
alrededor del pedúnculo.
3.4. Fisiología Por lo tanto Coleto (1994), añade que el objetivo de toda planta frutal, desde un árbol
individual hasta una plantación comercial, es producir abundante fruta de buena
calidad, como resultado final del ciclo reproductor del árbol frutal; este proceso
comienza con la iniciación floral y termina con la recolección de la fruta.
3.4.1. Iniciación floral Coleto (1994), indica también que muchos estudios han demostrado que la iniciación
floral en árboles caducifolios se inicia entre el final de la primavera y el final del verano
del año anterior. La iniciación floral empieza después de que los nuevos brotes han
alcanzado cierto diámetro y tamaño, con una cantidad suficiente de hojas
completamente desarrolladas.
Una vez que las yemas florales han completado su desarrollo, las yemas entran en una
especie de “descanso fisiológico” y no se abrirán incluso si fueran sometidas a
condiciones favorables de temperatura, humedad y luz, lo mismo ocurrirá con las
yemas vegetativas en el mismo árbol que no se diferenciaron en yemas florales.
El inicio de este periodo de descanso fisiológico depende de la especie y el vigor de la
planta. La influencia del periodo de descanso se manifiesta lentamente y alcanza su
pico, para posteriormente disminuir. Esta inhibición fisiológica interna del crecimiento
ocurre solamente en las yemas y no así en las raíces.
Hartmann et.al, (1981) y Coleto, (1994), Manifiestan que curiosamente, las yemas
requieren suficiente cantidad de horas frío (vegetativo y flor) durante el invierno para
revertir el periodo de descanso. Si las horas frío son suficientes desaparecerá el
bloqueo en el crecimiento de las yemas; entonces, con el inicio de las temperaturas
calientes en la primavera junto a una adecuada humedad del suelo, las yemas
vegetativas y florales crecen rápida y vigorosamente.
Las bajas temperaturas reducen el nivel de los inhibidores del crecimiento, tal como el
ácido abscisico, e incrementan la cantidad de promotores del crecimiento, como el
ácido giberelico.
3.4.2. Formación del fruto Cuando las partes de la flor previamente formadas inician su desarrollo y las flores se
abren, se inicia un nuevo estadio crítico de desarrollo en la producción del cultivo. Las
flores tienen que polinizarse adecuadamente para que el fruto se establezca y
desarrolle.
3.4.3. Crecimiento del fruto Así mismo Hartmann et. al, (1981) y Coleto, (1994) indican que el crecimiento inicial de
los frutos resulta de la producción de nuevas células (división celular) por alrededor de
30 días. Desde ese momento hasta la madurez, el crecimiento del fruto consiste de la
elongación de las células existentes. En todos los tipos de frutales, el crecimiento
implica el alargamiento de tejidos recientemente formados en las flores junto a sus
estructuras asociadas.
A medida que los frutos crecen y aumentan de tamaño durante la estación de verano,
ellos dependen de los carbohidratos, proteínas y minerales almacenados en el árbol,
junto a la capacidad de absorción de agua y minerales de las raíces.
Adicionalmente, la capacidad fotosintética del área foliar del árbol frutal no solamente
debe proveer los carbohidratos para el desarrollo del fruto, sino también para reponer
las reservas de los nutrientes que fueron agotados al inicio del crecimiento del fruto,
periodo en el que la capacidad fotosintética de los árboles caducifolios es todavía
limitada.
3.4.4. Maduración y senescencia del fruto En ese entender Hartmann et. al, (1981), indican que los frutos se acercan al final de su
periodo de crecimiento, éstas registran cambios significativos en el producto final: Un
fruto debe mostrar un color atractivo, lo suficientemente suave como para ser palatable,
dulce y jugoso con una acumulación de otros componentes que le dan un aroma y
sabor característico.
Además, no todos los frutos maduran al mismo tiempo en un árbol, aquellos que están
en el estrato superior o en la parte externa del follaje maduran antes que los frutos que
se encuentran en el interior del follaje. Muchos frutos maduran en el árbol frutal, de
donde se los debe recoger, si no se los recoge, el mismo entra en un periodo de
senescencia y deterioro; sin embargo, otros frutos son cosechados del árbol y alcanzan
su estado de consumo fuera del mismo.
Se debe enfatizar, que los frutos en proceso de maduración son organismos vivos. Sus
células están respirando y al mismo tiempo están ocurriendo muchos cambios químicos
y físicos complejos (se dice que estos frutos son climatéricos).
La refrigeración prolonga la vida de la fruta debido a que las bajas temperaturas
reducen las tasas de respiración. Una teoría indica que durante la maduración de la
fruta aparecen nuevas enzimas que causan cambios característicos en la fruta.
Adicionalmente al proceso de maduración existen cambios hormonales (etileno,
giberelinas y otros) que hacen que la fruta responda a las señales de maduración según
(Coleto, 1994. y Hartmann et al., 1981).
3.5. Variedades Al respecto Seino H. (1993), menciona, que existen muchas variedades cultivadas en
Bolivia, la mayor parte introducidas de España, durante la época del coloniaje, este
grupo lo constituye los duraznos tardíos del grupo de los Ullincates.
Nuestras variedades están, perfectamente aclimatadas a tener su letargo a una
temperatura promedio de 2 – 3ºC y durante poco tiempo. Si estudiamos las distintas
variedades de durazno que podemos coleccionar entre las diversas zonas productoras
de durazno, veremos que existen grandes diferencias entre ellas desde el punto de
vista morfológico.
3.5.1. Ullincate
Este grupo de variedad pertenece a la familia europea en su estado original. En Bolivia
la variedad Ullincate se denomina originaria o “criolla”, solo las encontramos en las
zonas de comunicación deficiente.
El fruto es de tamaño mediano (120 - 150 gr) pero hay muchas variedades, desde unos
bastantes pequeños hasta otros que sobre pasan los 150 gr. Su forma es redonda o
cónica. La punta generalmente convexa, aunque también las encontramos planas. El
color del mesocarpio, es crema y anaranjado su constitución es elástica; aromática con
mucha glucosidad y acidez. El color del pericarpio es claro con mucha pigmentación
rojiza, aunque varía según la variedad.
El fruto de este grupo de variedades es de muy buena calidad poco jugoso, tiene
mucha resistencia para el transporte y larga duración. Se caracteriza por su calidad y
utilidad para las conservas. La mayoría de estas variedades son de maduración tardía,
algunas de maduración media y ninguna de maduración precoz, todas las variedades
de este grupo tiene muy buena fructificación (Seino, H. 1973).
3.5.2. Gumusio reyes
El árbol tiene crecimiento más elevado, a lo largo de los años, la copa toma forma
abierta y alcanza gran tamaño. Tiene floración universal con abundante polen. El fruto
es grande y llega a ser de 150 - 200 gr. La forma del fruto es redonda y la punta algo
cóncava. El aspecto externo es algo rojizo y crema. La glucosidad es de 20º. Es muy
aromático y tiene buen sabor. El tiempo de maduración es mediano pero algo
retardado. Esta variedad es fuerte para la enfermedad y de buena producción desde el
comienzo.
3.5.3. Saavedra
El árbol es de crecimiento elevado y a lo largo del tiempo va tomando la forma de copa
abierta. Tiene periodo rápido de crecimiento en los primeros años pero no alcanza gran
tamaño, la rama frutal es gruesa y da abundante fruto, es notable la formación del brote
compuesto. La flor es muy grande de tipo de floración universal y con abundante polen.
El fruto alcanza los 120 - 200 gr. Con una forma redonda y la punta algo convexa, el
color del mesocarpio es crema y tiene abundante jugo y glucosa. El tiempo de
maduración de esta variedad es tardío, desde fines de marzo hasta comienzo de abril.
3.6. Enfermedad de las plantas Según Herbas (1983), menciona que la enfermedad de las plantas es un proceso
fisiológico anormal y perjudicial causado por una continua irritación de un agente causal
primario, exhibido por la actividad celular anormal y expresada mediante condiciones
patológicas caracterizadas por los síntomas.
Por su parte Agrios (2007), manifiesta; las plantas presentan enfermedad cuando una o
varias de sus funciones son alteradas por organismos patógenos o por determinadas
condiciones del medio físico. Los procesos físicos específicos que caracterizan las
enfermedades, varían considerablemente según el agente causal y a veces según la
planta misma.
Así mismo Grogan (1981), hace referencia, como en los seres humanos, las
enfermedades que padecen las plantas son desórdenes fisiológicos causados por
problemas internos o por el ataque de algún microorganismo, como los hongos, las
bacterias y los virus.
También Patiño et. al, (1981), señalan en su libro Sanidad Vegetal, que no hay una
línea clara de demarcación entre lo que se considera una planta sana o normal y una
planta enferma, de ahí que se hace difícil definir lo que es enfermedad. Existen tantas
definiciones como autores han abordado el tema. Sin embargo, se puede consideran
que: “Plantas enfermas son aquellas cuyo desarrollo fisiológico y morfológico se ha
alterado desfavorablemente y en forma progresiva por un agente extraño, hasta tal
punto que se producen manifestaciones visibles de esa alteración”. Estas
manifestaciones, que son características de cada enfermedad, son los síntomas.
3.6.1. Síntoma Herbas (1983), define que los síntomas constituyen la expresión de la actividad
patogénica, son una evidencia de un estado patológico y otras veces son
consecuencias de heridas o lesiones causadas por agentes mecánicos o de otra índole.
Los síntomas generalmente son expresiones visibles que pueden percibirse con los
ojos; los síntomas también pueden detectarse mediante el tacto, por el sentido del
olfato y el sentido del gusto.
Roberts y Boothroyd, (1972). Describen las manifestaciones visibles de las
enfermedades se llaman síntomas. La planta enferma puede presentar varios, los
cuales van apareciendo en las diferentes etapas del desarrollo de la enfermedad, Los
síntomas visibles como las deformaciones, clorosis, arrugamientos, exudados
bacterianos etc. se llaman macroscópicos. Algunos síntomas solo pueden ser
observados en los tejidos diseccionados y se llaman microscópicos.
3.6.2. Signo
Son manifestaciones visibles de los agentes causales, se los denomina signos y
pueden estar constituidos por micelio, esporas, esclerocios o cuerpos fructíferos cuando
se trata de enfermedades causadas por hongos. (Roberts, 1972).
3.6.3 Importancia de las enfermedades
Según Agrios (2007), menciona que las enfermedades de las plantas son importantes
para el hombre, debido a que perjudican a las plantas y sus productos. Para los
millones de personas que habitan la tierra y cuya existencia depende de los productos
vegetales, las enfermedades de las plantas pueden marcar la diferencia entre una vida
normal y una acosada por el hambre, o incluso conducir a la muerte por inanición.
Por su parte Cadenas (2003), se refiere que las enfermedades de las plantas son uno
de los principales problemas que se tiene que afrontar en la agricultura porque reducen
las cosechas desmejoran la calidad del producto, limitan al mismo tiempo la
disponibilidad de alimento y materias primas para una serie de industrias.
En ese sentido Herbas (1983), considera la falta de alimentos que confronta la
humanidad; es debido entre otras causas al hecho de que la agricultura está sujeto a un
gran número de riesgos por las condiciones del suelo, del clima, de las plagas y
enfermedades, siendo estas dos últimas las que constituyen los mayores y
permanentes riesgos de la agricultura.
3.6.4. Interacción planta-patógeno-ambiente en el proceso de las enfermedades
Entendiendo que la enfermedad en una planta es el resultado de la interacción entre un
hospedante un patógeno y el ambiente que los rodea, es importante conocer el rol que
juega cada uno de ellos (Anculle, 2004).
3.6.4.1. Patógeno
Según Pscheldt (2003), indica como muchos de los organismos vivos que causan
enfermedades en las plantas se llaman patógenos. Estos patógenos son microscópicos
o son muy difíciles de ver o reconocer sin un microscopio. Los hongos bacterias virus
nematodos e incluso algunas plantas pueden ser patogénicos, capaces de causar
enfermedad. Los patógenos generalmente obtienen sus nutrientes esenciales, agua y
todo lo que necesitan para su reproducción de la planta huésped. A esto se le llama una
relación parasítica.
Al respecto Almodóvar (1996), indica, la palabra patógeno fue originalmente utilizada
para designar a las bacterias o microbios que causan enfermedades en el hombre y en
los animales. En fitopatología actualmente se emplea este término de modo general
para todos los agentes dotados de vida.
Indistintamente Herbas (1983), define que los agentes patógenos son microorganismos
que causan enfermedades. Porque tienen vida, llamados bióticos, agentes o causas.
Los agentes patógenos pueden ser hongos, bacterias, virus, micoplasmas o
nematodos. Cada uno tiene un ciclo de vida diferente, que incluye una fase infecciosa.
3.6.4.2. Hospedante
Un huésped susceptible tiene una composición genética que permite el desarrollo de
una enfermedad en particular. La defensa contra una enfermedad genética se llama
“resistencia a las enfermedades”. Esta resistencia puede ser, las características físicas
de la planta (hoja de cera superficies o difusa), las características químicas (enzimas
que matan los patógenos y la falta de enzimas) y los patrones de crecimiento
(capacidad para bloquear el tejido enfermo o daños que superan). (Almodóvar, 1996)
Las plantas también puede ser tolerantes, a pesar de ser infectados con una
enfermedad, pueden crecer y producir una buena cosecha o mantener una apariencia
aceptable. La planta crece, más la enfermedad y los síntomas no son evidentes o en un
nivel perjudicial.
3.6.4.3. Condiciones Ambientales
Ciertas condiciones ambientales deben existir para que los agentes patógenos puedan
causar la infección. Las condiciones específicas varían para diferentes patógenos. Alto
grado de humedad y temperatura específica, son necesarias para muchas
enfermedades causadas por hongos. Estas condiciones deben continuar por un período
crítico de tiempo, mientras que el patógeno está en contacto con el huésped para que la
infección ocurra. (Almodóvar, 1996).
La humedad, temperatura, viento, luz solar, la nutrición y la calidad del suelo entre las
plantas. Si uno de estos factores está fuera de balance para el cultivo de una planta
específica, la planta puede tener una mayor tendencia a enfermar. Las condiciones
ambientales también afectan el crecimiento y propagación de agentes patógenos de la
enfermedad. Seco o mojado, tendrá un conjunto de acompañamiento de las
enfermedades que se desarrollan en estas condiciones (Almodóvar, 1996).
3.7. Enfermedades del duraznero 3.7.1. Torque del Durazno 3.7.1.1. Síntomas Mientras Caporali y Weltzien (1974), describen como el nombre de la enfermedad
implica, enrollamiento de la hoja, se produce en el follaje. Las hojas infectadas se ven
muy deformadas y a menudo presentan una variedad de colores que van desde verde
amarillo a tonalidades de rojo y morado. El hongo provoca que en los márgenes de la
hoja, las células meristematicas se prolifere rápidamente al azar, hasta convertirse en
hojas arrugadas, fruncidos, y rizados.
A medida que estas hojas infectadas maduran, se van formando ascos desnudos
conteniendo ascosporas del patógeno, produciendo en la superficie colores marrones,
marchitándose; finalmente caen del árbol. Muchos frutos infectados caen
prematuramente y pasan desapercibidos, los que permanecen, en el extremo del tallo
toman una forma torcida, como una pequeña calabaza amarilla, mientras que otros
desarrollan de color rojizo, parecido a una verruga con deformidades purpuras en la
superficie de la fruta.
El torque de durazno conocido también, como abolladura carnosa, producida
principalmente en las hojas, es la manifestación externa de una serie de alteraciones
celulares, tales como hipertrofia de núcleos, transformación de cloroplastos en
amiloplastos, alargamiento de condriosomas enriquecimiento vacuolar en taninos,
espaciamiento de las membranas.
3.7.1.2. Ciclo de la enfermedad Por lo tanto Agrios (2007), define, el hongo inverna en forma de ascosporas o conidios
de pared gruesa sobre los arboles, quizás en las escamas de sus yemas. Las células
miceliales de Taphrina contienen un par de núcleos. Estas células forman un asca que
por lo común contiene ocho ascosporas uninucleadas. Estas ascosporas se propagan
por gemación dentro o fuera del asca y producen conidios (blastosporas).
Estos últimos pueden dividirse de nuevo y producir un micelio. Una vez que han
germinado los conidios, su núcleo se divide y los dos núcleos resultantes se desplazan
hacia el tubo germinal. Conforme el micelio se desarrolla, ambos núcleos se dividen y
producen las células binucleadas del micelio. Las células miceliales que se localizan
cerca de la superficie de la planta se separan y producen ascas.
En la primavera esas esporas son salpicadas por la lluvia o llevadas por el viento y son
transportadas hasta los tejidos jóvenes de la planta, germinan y penetran directamente
a través de la cutícula o estomas de las hojas y otros órganos en proceso de desarrollo,
el micelio binucleado se desarrolla entonces entre las células e invade notoriamente a
los tejidos, induciendo la división celular y elongación celular excesiva, que dan como
resultado el alargamiento y deformación de los órganos de la planta.
Más tarde las hifas del hongo se desarrollan fuera de la zona infectada y se sitúan entre
la cutícula y epidermis de la hoja, ahí se fragmentan en sus células componentes, las
cuales producen las ascas del hongo. Estas últimas se alargan, ejercen una cierta
presión sobre la cutícula del hospedante y finalmente salen a través de ella y se forma
una capa compacta de ascas desnudas. Las ascosporas son diseminadas por el viento
llevadas a otros tejidos y se parten para formar conidios.
La infección se produce principalmente después de que se han abierto las yemas.
Conforme maduran, los órganos de la planta se hacen resistentes a la infección por el
patógeno. La infección se ve favorecida por las bajas temperaturas y por la gran
humedad que prevalece en el periodo en que las yemas se hinchan y los vástagos y
hojas jóvenes se desarrollan, es decir, en el periodo durante el cual los nuevos tejidos
se hacen susceptibles a la enfermedad. 3.7.2. Roya Según Herbas (1981), el agente causal de esta enfermedades el hongo Tranzschelia
pruni-spinoseae, Este hongo pertenece a la División Basidiomycota, Clase
Pucciniomycetes, Orden Pucciniales, Familia Uropyxidaceae, Genero Tranzschelia.
3.7.2.1. Síntomas
Los síntomas casi siempre están acompañados del signo o señal de esta enfermedad,
consisten de áreas amarillas en el haz de las hojas y en la parte correspondiente al
envés de la hoja soros de color amarillo, cuando corresponde a la fase urodosorica y
de color pardo cuando corresponde a la fase teleutosorica del hongo causante de esta
enfermedad, las hojas afectadas caen prematuramente.
3.7.2.2. Ciclo de la enfermedad Según Menéndez, (2011) menciona que el hongo de tipo roya, con un ciclo vital
complejo, está formado por 5 fases que se desarrollan en dos huéspedes diferentes.
Estas fases son las siguientes:
Los espermogonios se desarrollan tanto en el haz como en el envés de la hoja,
formando un pequeño punteado negro. En éstos se encuentran los espermacios,
órganos reproductores masculinos, y las hifas receptoras, que recogen los anteriores,
originando los ecios cuando entran en contacto.
Los ecios se forman en el envés pero pronto comienzan a aparecer en el haz, formando
unos círculos de hasta 2.5 mm de diámetro; el peridio, capa protectora del ecio, tiene un
margen revoluto. Las esporas producidas en el interior del ecio son globoides, de 16 –
24 micras de diámetro; su pared presenta el ápice engrosado y está finamente
ornamentada con verrugas; su contenido es amarillento.
Los uredinios, originados por la germinación de una eciospora, se forman en el envés
de las hojas y forman al principio pequeños puntos pardos que pueden unirse al crecer.
Presentan paráfisis pardas y capitadas. Las esporas se forman sobre un pedicelo,
miden 20 – 40 x 12 – 20 micras, tienen forma elipsoidal, y su pared, engrosada en la
zona apical, tiene 3 o 4 poros ecuatoriales.
Los telios son anfígenos y aparecen más o menos agrupados, son pardo – negruzcos y
en su interior se forman las teliosporas. Éstas son bicelulares, de 35 – 43 x 19 – 24
micras, muy fuertemente constreñidas, de forman que se fracturan con facilidad; las dos
células son globoides, verrugosas, de color pardo oscuro, y están soportadas por un
pedicelo corto e hialino, no persistente.
La germinación de una de estas teliosporas origina un micelio especial, un promicelio,
en el que se desarrollan los basidios y basidiosporas. El agente causal de esta
enfermedad inverna en forma de teleutosporas en las hojas caídas
Por tanto Henríquez y Ramírez, (1977); se refieren a los daños que se ponen de
manifiesto como consecuencia del ataque del hongo sobre las hojas, raramente se
pueden ver afectados los frutos. La enfermedad se ve favorecida por la humedad
elevada y resulta más peligrosa en los años en que la primavera está caracterizada por
lluvias persistentes. Los daños son tanto mayores cuando más precoz es el ataque y
cuanto más severa es la defoliación .
3.7.3. Mal de Munición
Según Herbas (1981), el agente causal de esta enfermedad es el hongo imperfecto
coryneum carpophilum, este hongo forma conidios de forma oblonda cilíndrica,
pluritabicadas y contraídas a la altura de los tabiques. Los conidios se forman dentro
las cavidades llamados acervulos. La diseminación de los conidios es mediante el
viento y el agua de lluvia Esta enfermedad, también llamada Viruela, esta enfermedad
puede afectar a las ramas, las yemas latentes, las hojas y a los frutos.
3.7.3.1. Síntomas En las hojas consisten de manchas circulares bien delimitadas que miden de 1 a 3 mm,
al principio de color rojo y más tarde pardo, circundadas de un halo de color más
oscuro, estas manchas pueden ser aislados o confluentes y que se desprenden de las
hojas dejando unos agujeros que a veces tienen diámetros mayores a los tejidos que
han caído. Esta característica ha motivado a que esta enfermedad se conozca también
con el nombre de tiro de munición.
En la ramas se presentan manchas, a un principio son pequeñas algo deprimidas de
color castaño rojizo. Las yemas atacadas presentan un color castaño oscuro, luego se
tornan de color negro. Más tarde estas yemas mueren quedando adheridas a las
ramas. Las lesiones de las yemas casi siempre están acompañadas de un exudado
gomoso de aspecto lustroso.
En los frutos se observa dos tipos de manchas; manchas puntiagudas de color rojo que
más tarde se tornan castaño rojizas. Otras veces, las lesiones consisten de manchas
deprimidas de forma circular, de color grisáceo rosado que se extienden en profundidad
hasta 2 cm.
El signo o señal de esta enfermedad se manifiesta mediante puntos negros visibles al
ojo desnudo y ubicado en la parte central de las lesiones, corresponde a los órganos de
fructificación del hongo causante de esta enfermedad.
3.7.3.2. Ciclo de la enfermedad Este hongo puede pasar el invierno bajo la forma de conidios que permanecen alojados
en las axilas de las yemas y en las resquebrajaduras de la corteza o en los residuos de
las hojas desprendidas. También puede permanecer bajo la forma de micelio y de
acervulos en las ramas atacadas. (Herbas, 1981). 3.7.4. Podredumbre parda (Monilia sp.)
Manzanares (1993) y Mondito (2002), define que el organismo causal Monilia sp es un
hongo superior pertenece a la familia sclerotiniaceae, orden Heliotales, Subclase
Euascomycetidae, clase ascomycete. Produce dos tipos de esporas ascosporas de
origen sexual contenidas en ascas en cuerpos fruciferos denominados apotecios y
conidios en cadenas en esporodoquios, de origen asexual.
La podredumbre parda una de las principales enfermedades de todas las especies de
prunus cultivadas comercialmente en la mayor parte de las regiones del mundo, es
causada por tres hongos íntimamente relacionados Monilia frutícola, M. laxa, M.
fructigena (Ogawa, 1992).
La especies M. laxa y M fructigena,, de origen europeo consideradas del viejo mundo
presentan distribución mundial (Batra, 1991) pero M frutícola, de origen americano
(Muños et al., 2008). Ha desarrollado resistencia con una capacidad de adaptación y
variabilidad posiblemente explique para una mayor frecuencia de la fase sexual (Van
Leeuwen et al., 2002)
La identificación de estas especies es realizada con base en las características
morfológicas pues hay variación entre los aislados de una misma especie. Con técnicas
moleculares basadas en análisis de ADN (Martin et. al, 2000, Hughes et. al, 2000)
3.7.4.1. Síntomas Agrios (2007), describe los primeros síntomas de la enfermedad aparecen sobre las
inflorescencias. En los pétalos, estambres o pistilos aparecen manchas cafés que se
extienden con gran rapidez envolviendo a toda la flor y a su pedúnculo. Cuando el clima
es húmedo los órganos infectados son cubiertos por los conidios café grisáceo del
hongo, y más tarde se arrugan y secan, quedando una masa putrefacta colgando de las
ramitas durante algún tiempo. En las ramas madres de las flores infectadas se
desarrollan pequeños chancros elípticos, profundos de color café en torno al pedúnculo
de la flor, los cuales en ocasiones cubren al tallo y ocasionan el tizón.
También Brannen (2002), menciona que las infecciones de podredumbre en el primer
fruto aparece como manchas marrones suaves que se amplían rápidamente y están
cubiertos con masas pulverulentas de esporas de color marrón (llamados conidios)
frutos infectados se pudren con mucha rapidez, se reducen de forma arrugada (momia)
ya que se seca en el árbol tanto las frutas inmaduras y maduras infectadas con la
podredumbre parda tienden a permanecer en el árbol. En algunas áreas las infecciones
latentes de fruta puede ocurrir, que se activen a medida que la fruta madura.
Estas esporas de verano se desprenden con facilidad y son llevadas por el viento,
lluvia, insectos o según el desarrollo de la fruta. Los chancros se amplían, de estación a
estación y la esporulación puede continuar en chancros grandes para cuatro años o
más. En condiciones de lluvia, mechones de polvo (esporodoquios) de color café gris
esporas (conidios) son visibles en el exterior de flores infectadas, cascaras, las frutas
infectadas o superficies de la rama. Estos penachos se pueden producir en anillos
concéntricos en la superficie del fruto.
3.7.4.2. Ciclo de la enfermedad
Ogawa (1992), define las especies de Monilia pasan el invierno en frutos momificados,
pedúnculos, flores, ramitas y chancros. Los esporodoquios se desarrollan en flores y
ramitas marchitas en condiciones de frio y humedad durante el invierno y principios de
primavera. A veces los esporodoquios se pueden encontrar en podas situadas en el
suelo de la plantación donde los tejidos infectados están expuestos a la humedad
durante largos periodos. Los conidios se forman en los frutos momificados que yacen
enterrados en el suelo, producen varios apotecios las cuales forman ascas y
ascosporas.
Tanto los conidios como las ascosporas producen infecciones de las inflorescencias.
Los conidios son llevados por el viento el agua de lluvia o insectos, hacia los verticilios
florales.
Las ascosporas que salen con fuerza del asca forman una nube blanquesina sobre el
apotecio. Las corrientes de aire las llevan entonces hacia las flores. Los conidios y las
ascosporas germinan y producen la infección al cabo de unas cuantas horas.
El micelio del hongo, en particular cuando el clima es húmedo, produce hifas cortas que
se reúnen, ejercen presión hacia el exterior a nivel de la epidermis y forman numerosos
ramilletes conidiales sobre los verticilos florales podridos y arrugados a partir de las
cuales el hongo libera nuevas masas de conidios. Al mismo tiempo el micelio del hongo
avanza con gran rapidez hacia los tejidos del peciolo de las inflorescencias y de ahí al
espolón del fruto y hacia las ramas.
3.7.5. Oídio (Sphaerotheca pannosa)
El agente causal de esta enfermedad es el hongo ascomycete Sphaerotheca pannosa.
El estado conidial se conoce con el nombre de oídium leucoconium. Este hongo
pertenece al Orden Erysiphales. Las plantas atacadas por taphrina son más
susceptibles al ataque del oídium.
3.7.5.1. Síntomas En esta enfermedad se hacen más notorios con la presencia del signo o señal que
consiste de manchas blancas pulverulentas que corresponden al micelio superficial y a
las estructuras de reproducción del hongo causante de esta enfermedad.
Estas manchas se presentan con más frecuencia en las hojas de las ramitas más
tiernas o extremos de los bordes, que a veces están acompañadas de un ligero tinte
rosado.
El extremo terminal de estos brotes frecuentemente queda encorvado hacia abajo o
esta retorcida, las ultimas hojas están onduladas o ligeramente abarquilladas, todo esto,
a consecuencia del desarrollo desigual de los tejidos atacados con relación a los
normales. Los frutos cuando son atacados a tierna edad se quedan a veces pequeños y
endurecidos, no llegan a crecer ni alcanzar la madurez, otros algo más grandes se
resquebrajan.
Cuando los frutos próximos a la madurez son atacados, se puede advertir sobre su
superficie áreas notoriamente levantadas cubiertas de eflorescencia blanquecinas que
desmejoran el aspecto de estos (Herbas, 1981).
3.7.5.2. Ciclo de la enfermedad El micelio de este hongo es superficial, crece sobre la epidermis formando haustorios
que se introducen a las células de las plantas hospedantes. La fase sexual de este
hongo forma ascosporas dentro de ascas que a su vez están contenidas en aparatos
fructíferos llamados peritecios. La fase asexual forma conidios que se desarrollan sobre
hifas fértiles llamados conidióforos.
Este hongo permanece de un año para otro bajo la forma de ascosporas y, cuando
faltan estos, bajo la forma de micelio y a veces de conidio, cuando el invierno no es muy
riguroso. Se cree que los haustorios pueden constituir una forma de conservación del
hongo (Herbas 1981).
3.8. Diagnostico de enfermedad
French y Herbert (1982), señala que el diagnostico de enfermedades en las plantas
requiere de la ejecución de varios pasos consecutivos que pueden variar según las
circunstancias pero generalmente consiste en lo siguiente:
a) Observación de síntomas
b) Determinación de las circunstancias particulares de caso, condiciones climáticas,
historial de cultivos, aplicación de fertilizantes insecticidas, fungicidas.
c) Observación de señas de patógenos
d) Correlación de lo observado con bibliografía pertinente.
Por otro lado Agrios (1996), menciona que para diagnosticar la enfermedad de una
planta es conveniente determinar primero si esa enfermedad es ocasionada por un
patógeno o por algún factor ambiental.
3.8.1. Diagnostico a nivel de campo
Se puede realizar en condiciones precisas que permitan identificar el agente causal por
sus síntomas, signos, distribución en el campo u otros factores. En este caso, la
experiencia con el cultivo y sus enfermedades es fundamental.
3.8.2. Diagnóstico de confirmación
Cuando se presentan condiciones de campo que no permiten establecer la identidad de
los organismos causales, es necesario reunir información de campo y recolectar
muestras para análisis de laboratorio (Bustamante, 1986).
3.9. Importancia del diagnostico Al respecto Bustamante, (1986) indica que el diagnóstico es una etapa fundamental en
el ámbito de la fitoprotección. Para realizarlo se deben analizar las condiciones en que
se presenta el problema, en especial el manejo del cultivo y las interacciones planta-
agente causal-organismos benéficos-condiciones agroclimáticas, es decir, se requiere
de un análisis integral que conlleve a un acertado juicio sobre la etiología del problema
y los factores que lo favorecen.
3.10. Aislamiento e identificación de agentes fitopatógenos 3.10.1. Identificación Agrios (2007), define, la identificación de una especie que se encuentra en una planta
enferma implica que deben excluirse todas excepto una de las especies de hongo
conocido.
Las características más importantes de los hongos que se utilizan para su identificación
son sus esporas y cuerpos fructíferos o estructuras portadoras de las esporas y hasta
cierto grado, las características de su soma (plasmodio o micelio). Estos órganos se
examinan directamente en el microscopio compuesto después de haber sido retirados
de la planta a la que han infectado.
La forma, el color, tamaño y manera en que se disponen las esporas sobre los cuerpos
fructíferos, así como la forma, color, etc., de esas estructuras reproductoras, son
características suficientes para sugerir; la clase, orden, familia y género al que
pertenece un determinado hongo, y esto se logra mediante la consulta de claves
analíticas que se han publicado para la identificación de las especies de los hongos.
3.10.2. Aislamiento
Agrios (2007), explica que la mayoría de las enfermedades se diagnostican al
observarlas a simple vista o mediante el microscopio, lo cual hace innecesario el
aislamiento del patógeno.
Sin embargo hay muchas enfermedades en las que es imposible identificar al patógeno
que ya se encuentra con uno o más contaminantes, porque aun no ha producido sus
cuerpos fructíferos característicos y esporas, debido a que una misma enfermedad
puede deberse ya sea a uno o varios patógenos morfológicamente semejante o tal vez
a algún factor del ambiente.
3.10.3. Cámara húmeda French y Herbert (1993), manifiesta que el propósito de la cámara húmeda es el de
crear condiciones favorables de humedad para el desarrollo rápido de hongos o
bacterias que pueden estar involucradas en la producción de síntomas de enfermedad
pero cuya presencia no es conspicua en el momento de la primera observación. Como
los saprofitos pueden ser favorecidos por las condiciones creadas, debe procederse
con cautela al interpretar los resultados.
3.11. Evaluación y cuantificación Anculle (2004), expresa para la evaluación de enfermedades en plantas, tiene como
objetivo llegar a la cosecha con la menor cantidad de medidas represivas, con la mayor
producción y con el menor costo. Esto significa identificar y ubicar la presencia de la
enfermedad y cuantificarla.
3.11.1. Incidencia
Al respecto Agrios (2007), manifiesta que la evaluación de la incidencia es
relativamente rápida y fácil de llevar a cabo y es la medida que más se utiliza en los
estudios epifitiologicos para determinar la diseminación de una enfermedad en un
campo de cultivo región o país.
Según la FAO (1986), menciona que la determinación del grado de incidencia de una
enfermedad probablemente es el factor de mayor importancia en cualquier programa de
evaluación de perdidas justamente es el proceso que genera la información que
permitirá cuantificar el proceso de enfermedad.
Wallen y Jackson (1975), llegaron a la conclusión de que la incidencia es la relación
porcentual de plantas enfermas sobre el total de plantas (plantas enfermas + plantas
sanas) asimismo indica que la incidencia es una forma simple y rápida de cuantificar la
enfermedad.
3.11.2. Severidad
Wallen y Jackson (1975), definen que la severidad como la relación porcentual de la
superficie de tejido enfermo sobre la superficie total.
James (1983), menciona que mediante dicho relación se cuantifican diferentes
intensidades de la enfermedad y se estiman porcentajes de infección al mismo tiempo
la evaluación se puede efectuar en cada una de las hojas de las plantas con el objetivo
de correlacionar el nivel de la enfermedad con la disminución de rendimiento. La
severidad de una enfermedad está en función de la cantidad de tejido afectado así
mismo de la rapidez con que la infección se desarrolla y la frecuencia con que se repite
en cada planta vecina.
4. MATERIALES Y METODOLOGIA 4.1. Ubicación Geográfica.
El Municipio de Mocomoco, pertenece a la segunda sección de la provincia Camacho
del Departamento de La Paz; geográficamente se halla situado entre los paralelos
15°15’30’’ – 15°39’59’’ de latitud austral (15º21’47.91’’ L.S.) y entre los 68°52’30’’ –
69°52’35’’ longitud occidental (68º58’48.57’’ L.O.) del Meridiano de Greenwich (Este -
Oeste). A una altitud de 2900 msnm (PDM- 2009).
Figura 1. Departamento de La Paz, Provincia Camacho Municipio de Mocomoco
4.2. Aspectos climáticos La región presenta un clima frío durante todo el año, con variaciones extremas entre
el día y la noche, cuya temperatura media anual promedio es de aproximadamente
de 7.4 ºC, siendo la mínima promedio de -8 ºC y máxima extrema de 19.4 ºC. La
precipitación pluvial promedio en la zona de Mocomoco es de 650 mm. (Nov. -
Abril), que generalmente se concentra en los meses de octubre a marzo y el
periodo más seco se da en los meses de mayo hasta agosto; la precipitación fluctúa
entre 2.2 a 22.4 mm por mes y la humedad relativa ambiente es de
aproximadamente el 65% (SENAMHI, 2009).
Figura 2.
Fuente: Servicio Nacional Meteorológica e Hidrología
En la Figura 2, concretamente se muestra la temperatura promedio para la zona de
los valles, fluctúa de acuerdo a las estaciones; por la época de invierno a partir de
junio las temperaturas son bajas (19ºC), pero ya por el mes septiembre las
temperaturas tienen a incrementar, por la primavera llegando a los (22ºC). Estas se
mantendrán constantes, logrando un clima templado, durante todo el verano.
21,6 21,4 21,5 21,320,6
19,519
20,5
21,4 21,7 21,8 21,9
17
18
19
20
21
22
23
24
E F M A M J J A S O N D
Tem
pera
tura
ºC
Temperatura media mensual gestión 2009 Municipio de Mocomoco
Figura 3.
Fuente: Servicio Nacional Meteorológica e Hidrología
En la Figura 3, se muestra que la precipitación pluvial típica del Hemisferio Sur para
la zona de los valles, comienza con la época seca por el mes de mayo por lo que,
durante ese periodo disminuye la actividad agrícola, hasta el mes de septiembre,
que nuevamente comienza la época de lluvias, llegando a una precipitación de
259,44 mm para el mes de enero. Lo cual es muy favorable para los cultivos en
etapa de fructificación.
4.3. Descripción fisiográfica Mocomoco se encuentra ubicada entre la cordillera real y el lago Titicaca, presenta
formaciones fisiográficas tales como: montañas, colinas, laderas y terrazas
principalmente.
La diversidad fisiográfica es más diversa en los cantones Mocomoco e Italaque,
formado por una sucesión de cadenas montañosas, colinas que se extienden desde
las Comunidades ubicadas en las faldas o partes bajas del valle con pendientes
28,5 22,8 13,228,4
46,464,6
83,7
118,6
161,2
259,4
136,6
61,4
0
50
100
150
200
250
300
M J J A S O N D E F M A
Pres
ipita
cion
(m
m)
Precipitación pluvial datos promedio gestión 2009 Municipio de Mocomoco
que van desde 40 a 60 %, con altitudes desde los 2500 m.s.n.m hasta los 5000
m.s.n.m.
Los niveles altitudinales definen la diversidad de pisos ecológicos e indirectamente
influyen en los componentes que forman parte del paisaje (cobertura florística), es
así, que el municipio presenta una diferencia de altitudes desde el altiplano hasta el
valle fluctuando desde los 4999 m.s.n.m hasta los 2400 m.s.n.m. respectivamente.
(Plan Desarrollo Municipal 2009 – 2011). Figura 4.
Diversidad fisiográfica, Comunidad Usuraya
4.4. Composición florística Su cobertura vegetal se encuentra constituida por especies herbáceas, y
semiherbáceas y arbustos, eventualmente con árboles aislados o asociados con
arbustos (Plan Desarrollo Municipal 2009 – 2011). Nombre común Nombre científico Nombre común Nombre científico
Cipres Cupresus macrocarpa Chilliwa Festuca dolochophylla
Kiswara Budleja coriacea Layu Trifolium amabile
Eucalipto Eucaliptus globulus Añahuaya Adesmia miraflorencis
Queñua Polylepis sp, Koa Satureja sp
Aliso Alnus acuminata Huira huira Achyrocline alata
Mutu mutu Cassia tormentosa Sewenka Cortaderia sp.
Chillca Baccharis lanceolata. Caña hueca Arundo donax
Paja brava Stipa ichu Suncho Viguiera lanceolata
4.5. Materiales 4.5.1. Materiales de campo
Herramientas Equipos Insumos
Tijera De Podar Cámara Fotográfica Bolsas de Papel
Estilete GPS Bolsas de Polietileno
Machete Cintas de Colores
Picota Cinta adhesiva
4.5.2. Material de laboratorio
Instrumentos Equipos Reactivos y otros
Pinzas Microscopio Lactofenol
Bisturí Estereoscopio Alcohol
Aguja de Disección Cámara De Flujo Hipoclorito
Porta Y Cubreobjetos Lámpara Agua Destilada
Probetas Cámara Fotográfica Azul De Metileno
Pipetas Cámara de Incubación Papel Absorbente
Cajas Petri Papa Dextrosa Agar
Vasos Precipitados
4.5.3. Materiales de gabinete
Material
Hojas de encuesta
Planilla de registro
4.6. Metodología El presente trabajo realizado, comprendió una investigación sistemática donde se
llevo a cabo la identificación de fitopatógenos causantes de enfermedades en el
cultivo del durazno, mediante el diagnostico en campo y confirmación en
laboratorio; este estudio abarco; un trabajo de campo que consistió en realizar una
inspección frecuente de los árboles de durazno que presentaban síntomas y signos
de enfermedad. Cumpliendo un seguimiento, acorde con la etapa reproductiva de la
planta (Iniciación floral – maduración de frutos). Paralelamente se determino los
niveles de incidencia y severidad, en relación a las enfermedades establecidas.
Por otro lado; se realizo un trabajo de laboratorio, donde se practicó diferentes
procedimientos metodológicos que sugieren diferentes autores, con el fin de
alcanzar los objetivos que implica identificar el género y especie de los agentes
fitopatógenos extraídos; haciendo comparaciones mediante claves morfológicas,
etc.
4.6.1. Trabajo de campo 4.6.1.1. Recopilación de Información
Para dicho estudio, se hizo un recorrido en aquellas zonas productoras de durazno,
donde se recogió información de carácter general en base a encuestas, tales como:
características geográficas, ubicación de las comunidades, procesos productivos,
manejos culturales, características del cultivo, etc.
4.6.1.2. Elección de Muestreo
Para la elección del muestreo, primeramente se visito la zona de los valles, en el
cual se distinguió diferencias respecto a las características geográficas, como
también altitudinales y climaticas que han determinado una diversidad de especies
vegetales. Por lo tanto se decidió utilizar el muestreo al azar estratificado, según
Steel y Torrie (1998), asimismo se constato que está conformado por varias
comunidades.
Seguidamente se utilizo el muestreo al azar simple, para obtener un muestreo
dentro los estratos, para eso, se conto con una lista de productores, quienes
residen en las comunidades, de donde se eligieron de forma aleatoria nombres de
los propietarios de las huertas. Una vez seleccionadas las huertas, se utilizo
nuevamente el muestreo aleatorio, para la elección de las unidades muéstrales.
4.6.1.3. Ubicación de las zonas de Muestreo
Para la ubicación de las zonas de muestreo se considero una superficie ocupada
por ocho comunidades productoras de durazno; el cual se fue estratificando, de la
siguiente manera:
Estrato 1, conformada por las comunidades Camiraya y Putina, se caracteriza por
poseer un microclima templado húmedo con altas precipitaciones al inicio de la
primavera, cuenta con un mayor número de parcelas de cultivo de duraznos, en su
mayoría criollos, con una proporción mínima de otras variedades, su producción se
comercializa en Mocomoco y una parte es llevada a la ciudad de La Paz.
Estrato 2, presenta un clima muy favorable con características similares al estrato 1
se encuentra a una altura de 2500 msnm aproximadamente, se ve favorecida por
encontrarte próximo al rio Niñirapi, lo cual deriva un ambiente adecuado para la
agricultura, pero muchas de las familias no se hallan en sus hogares por falta de
accesos durante la época de lluvias, esto ocasiona un abandono de sus huertas
durante la época de fructificación, así mismo se menciona que estas comunidades
Chivita y Chacahuaya cuentan con un número considerable de parcelas de
duraznos.
Estrato 3, constituida por un mayor número de población en la comunidad Agial, a
diferencia de la comunidad Lujma que no cuenta con mucha población. Ambas
presentan condiciones orográficas muy accidentadas con altas pendientes
encontrándose a una altura aproximada de 2900 msnm. Considerando que
presenta un clima seco en invierno y templado en primavera. Y que no cuenta con
fuentes de agua por lo que sus huertas perecen durante la época seca, no
obstante, en algunas de estas comunidades la actividad más importante aparte de
la agricultura; es la actividad pecuaria.
Estrato 4, esta zona presenta un clima templado a frígido durante todo el año,
presenta una formación orográfica con leves pendientes, se encuentra a una altura
similar al estrato 3. Las particularidades que las comunidades Canahuaya y
Usuraya tienen, son que la mayoría de las familias combinan sus huertas con otros
cultivos, además de dedicarse a la crianza de ovinos y vacunos.
4.6.1.4. Determinación del tamaño de la Muestra
Ochoa (2008), presenta la siguiente ecuación para determinar el tamaño de la
muestra:
Donde:
n Tamaño de la muestra
p q Proporción de las caracteristicas consideradas p 50% y q 50%
Intervalo de confiabilidad (1,96)
e Margen de error (10%)
N La Población
Aplicando los datos para cada zona:
n1,96 50 50 62
10 62 1 1,96 50 50
n41297213804
n1 29
4.6.1.5. Marco Muestral
Cuadro 2.
Detalle del tamaño de la muestra según el Número de Familias por Estrato
Estrato Número de Familias Tamaño de la muestra
Estrato 1 43 29 Estrato 2 24 19 Estrato 3 47 31 Estrato 4 41 28 TOTAL 155 107
4.6.1.6. Diferenciación de variedades
La distribución de las variedades comprendidas en los estratos no es uniforme,
pero se considera que la mayoría, es de la variedad criolla, por presentar una
particularidad en la mayoría de las huertas, es decir, corresponden a plantaciones
no menor a 25 años aproximadamente, pertenecientes a la variedad criolla. Por otro
parte se diferencio realizando el siguiente procedimiento: en las huertas
seleccionadas; antes de realizar el muestreo, primero se identifico la variedad a la
que pertenece, en el caso de la variedad criolla, se anotó las características
morfológicas, y por información del propietario se las distinguió.
De la misma forma se procedió a diferenciar otras variedades que pertenecen a
estos estratos, hallando variedades como Gumusio reyes, Savedra y Apote. Pero
como se menciono anteriormente en la mayoría de los estratos, existen más
huertas con variedad criolla, otras variedades como ser Saavedra y Apote se
presentan, pero no se encuentran en todas los estratos, ni una suficiente cantidad
representativa para poder realizar muestreos, por lo que no se tomo en cuenta. Una
de las variedades que recientemente ha sido introducida es Gumusio Reyes, pero
se encuentra en etapa vegetativa, en período de adaptación, por tanto, tampoco se
lo tomo en cuenta.
4.6.1.7. Determinación del Nivel de Incidencia
El muestreo fue realizado en aquellos durazneros en etapa productiva, así mismo
fueron señalados con una cinta de color y un membrete, indicando un código que
fue registrado en planillas, con el propósito de volver a evaluar nuevamente el
mismo árbol, se tomo referencias de posicionamiento geográfico con GPS. La
identificación de las enfermedades se hizo mediante observación de síntomas y
signos del patógeno, descritos en bibliografía; como lo indican; Agrios (2007), J. M.
Ogawa, (1992), Herbas (1981). Caporali, etc.
Para determinar los niveles de incidencia de las enfermedades se tomaron
muestras a partir del mes de octubre hasta el mes de febrero del siguiente año;
periodo en que sucede la floración, formación de hojas y desarrollo de frutos. Este
procedimiento consistió; en delimitar imaginariamente tres estratos en el árbol,
utilizando el método extractivo por el cual se tomo un número de hojas de la copa
alta, de la parte media y de la base del árbol; de esta manera se obtuvo una mejor
distribución de las muestras.
Una vez obtenidas las muestras fueron colocadas en papel sabana y cerradas en
sobres individuales, con su respectiva información; luego fueron herborizadas,
para evitar su descomposición y conservar intactas las muestras.
La evaluación de esta variable fue mediante la relación que indica French y Herbert
(1982).
Incidencia = Nº de hojas afectadas por enfermedad
Nº de hojas totales
4.6.1.8. Determinación de Severidad
El medio que se utilizo para determinar el grado de severidad de las enfermedades,
fue con el empleo de las muestras obtenidas en el caso anterior, a diferencia de la
metodología utilizada, para este cálculo se recurrió al método milimétrico (que
consiste en el conteo directo de área foliar mediante el uso de papel milimétrico)
estos datos fueron transformaron en porcentajes en el programa Excel, usando la
siguiente relación de (French Y Herbert 1982).
Severidad = Área foliar afectada por la enfermedad
Área foliar total
4.6.2. Trabajo en Laboratorio 4.6.2.1. Toma de Muestras
El procedimiento consistió en la recolección de partes vegetales afectadas como
son; raíz, ramas, hojas, flores, y frutos donde los síntomas eran evidentes.
Toda muestra colectada debía presentar algún síntoma característico descrito
anteriormente de las enfermedades del cultivo, posteriormente estas muestras
(selladas en un sobre manilla y una bolsa de polietileno mas su respectiva
información) se trasladaron inmediatamente al laboratorio para su posterior análisis.
4.6.2.2. Identificación Microscópica y Macroscópica
Las muestras colectadas fueron analizados en el laboratorio del Instituto Nacional
de Innovación Agropecuaria y Forestal (INIAF) Departamental La Paz.
En el presente trabajo se identifico cinco enfermedades que afectan al cultivo de
Durazno, de los cuales tres mostraron mayor persistencia por los niveles de
incidencia; que se presentan en todos los estratos, se hace mención de estas
enfermedades: torque de durazno (Taphrina deformans), roya (Transchelia prunni),
Mal de Munición (Coryneum carpophilum). Las siguientes enfermedades también
presentes pero en menor magnitud se identificaron como podredumbre parda
(Monilniia sp.) y Oídium (Sphaerotheca pannosa).
4.6.2.3. Metodología para el análisis del torque de durazno
Para la identificación del agente causal Taphrina deformans se utilizaron los
siguientes métodos:
a) Observación directa al microscopio
Para este método, se realizo cortes transversales de tejido, usando la metodología
recomendado por (Herbas, 1986) para obtener secciones muy delgadas se trabajo
con el bisturí; obteniendo muestras representativas las cuales fueron colocadas
sobre un portaobjetos conteniendo una gota de lactofenol, cubriendo con el
cubreobjetos, para luego montarlas al microscopio para su observación.
También se observo mediante el estereoscopio el desarrollo de hifas las cuales con
ayuda de una pinza y una aguja histológica se colocaron en el portaobjeto más una
gota de agua destilada para ser observado en el microscopio.
b) Cámara Húmeda
French y Hebert, (1982) indica, si la muestra de tejido no presenta crecimiento del
patógeno proceder a colocarlas en cámara húmeda para estimular el crecimiento.
Para esto se preparo un ambiente adecuado, el cual requirió desinfección del tejido
vegetal sumergiendo en alcohol al 70% enjuagado con agua destilada para
finalmente colocarla en placas petri, y estás en el interior de un recipiente plástico
desinfectado, y en la base papel humedecido, todas fueron cerradas
asépticamente y depositadas en la cámara de incubación a una temperatura de
25ºC durante 72 horas. Para identificar al patógeno se trabajo con ayuda de
bibliografía publicada de por Caporali y Weltzien (1974), Agrios (2007) que
contenían descripciones, claves morfológicas, fotografías, graficas de aparatos
fructíferos, esporas, conidios, ciclos reproductivos de los patógenos, mediante los
cuales se realizaron comparaciones.
4.6.2.4. Metodología para el análisis de la roya
Para la identificación del agente causal Tranzschelia pruni-spinoseae se utilizo los
siguientes métodos:
a) Raspaduras directas para el microscopio
Se tomo muestras con signos del patógeno para realizar raspados superficiales de
las zonas afectadas removiendo las estructuras del hongo con ayuda de una aguja
de disección y un bisturí recomendado por French y Hebert (1983), dejando caer
sobre un portaobjetos que contiene una gota de lactofenol para luego cubrir con el
cubreobjetos, y montar al microscopio, posteriormente ser observado.
b) El uso de cinta adhesiva
Para esto se cortó un trozo de cinta y se pego en el envés de la hoja realizando una
leve presión; para luego retirarla y colocarlo directamente a un portaobjeto con una
gota de agua destilada, luego se monto al microscopio. Para identificar al patógeno
se trabajo con ayuda de bibliografía, publicada por Herbas (1982) y Agrios (2007)
descripciones microscópicas, y claves de hongo, mediante los cuales se realizaron
comparaciones.
4.6.2.5. Metodología para el análisis de Munición
Para la identificación del agente causal Coryneum Carpophilum se utilizaron los
siguientes métodos.
a) Observación directa en el microscopio De las muestras foliares que exhibían síntomas característicos de la enfermedad;
se realizaron cortes transversales de tejido, metodología recomendado por (Herbas,
1986) y obtener secciones muy delgadas con ayuda del bisturí; las cuales fueron
colocadas en el portaobjetos conteniendo una gota de lactofenol, se cubrió con el
cubreobjetos, luego se llevo al microscopio y se observo.
b) Cámara húmeda
Se tomaron muestras foliares con diferentes procesos de enfermedad y se cortaron
en trozos de 1 cm se desinfectaron con alcohol al 70% y se enjuago con agua
destilada, se preparo unos envases de plástico desinfectados y en su interior papel
humedecido, los trozos se acomodaron en placas petri y se las coloco en el interior
de los envases de plástico, estas se depositaron en la cámara de incubación a una
temperatura de 27ºC. Como indica French y Heber (1982). Para identificar al
patógeno se trabajo con ayuda de bibliografía, mediante los cuales se realizaron
comparaciones.
4.6.2.6. Metodología para el análisis de Podredumbre parda
Para la identificación del agente causal Monilia sp. Se utilizaron los siguientes
métodos:
a) Observación directa en el microscopio
Se utilizo un trozo de cinta adhesiva transparente la cual se pego en la parte del
fruto con presencia de enfermedad y se presiono un poco, se quito colocando en un
portaobjetos con una gota de lactofenol, y ser observo en el microscopio.
b) Aislamiento en medios de cultivo.
Se realizo el proceso de desinfección de las muestras, para el aislamiento en
medios de cultivos papa dextrosa agar (PDA), se sellaron las placas petri con papel
parafilm se rotularon en la parte superior con el número de la muestra y el número
de fruto recolectado, la fecha en que fue sembrada. Se incubaron las placas petri
en el laboratorio a una temperatura aproximada de 25 ºC para que desarrollara el
micelio del hongo. Al transcurrir cinco días después, se realizo la identificación de
los patógenos, mediante las características de estructuras reproductivas que
presentaron cada una de las colonias en las cajas petri.
4.6.2.7. Metodología para el análisis de oídium
Para la identificación del agente causal Sphaerotheca pannosa se utilizaron los
siguientes métodos:
a) Raspaduras directas para el microscopio
Se recolectaron muestras vegetales con presencia de micelios blancos en la
superficie, que en algunos casos las hojas se encontraban cubiertas por completo
en ambas caras, estas hojas se observaron en el estereoscopio, las cuales con
ayuda de un aguja de disección sumergidas en una gota de agua se obtuvo una
parte de estas estructuras que cubrían las hojas y se las coloco en un portaobjeto
con un gota de lactofenol, se monto al microscopio para su observación y se hizo
comparaciones mediante bibliografía.
5. RESULTADOS Y DISCUSIONES 5.1. Torque del Durazno 5.1.1. Zonas de distribución
El trabajo realizado en el Municipio de Mocomoco (Provincia Camacho), en la zona
de los valles; correspondientes a los estratos 1 (Putina, Camiraya), estrato 2
(Chivita, Chacahuaya), estrato 3 (Lujma, Agial) y estrato 4 (Usuraya, Canahuaya);
mediante el diagnostico se confirma que tienen problemas de Torque del Durazno,
dicha afirmación esta corroborada por el análisis de laboratorio correspondiente.
Durante el estudio, se identifico la enfermedad del Torque del Durazno producido
por el agente patógeno Taphrina deformans, por el agresivo ataque en las hojas,
que es evidente y característico de esta enfermedad, provocando en algunos casos
defoliación prematura, y pérdidas en la producción. Según Caporali y Weltzien,
(1974), este hongo está presente en cualquier huerto de durazno, a excepción de
la zona de los trópicos, ya que dicha enfermedad no se desarrolla en climas muy
cálidos.
Se atestiguo que la enfermedad del Torque en esta Provincia del departamento de
La Paz, es de origen endémico, según la aseveración de los agricultores del lugar;
puesto que afirman, que: “ha existido esta enfermedad desde que tenemos
memoria”, Ojeda (2010) y que sus padres también la conocían. Sin embargo no en
la magnitud como la vemos hoy en día.
5.1.2. Síntomas de la enfermedad
En una primera inspección realizada en el lugar, al inicio del mes de agosto, cuando
las plantas se hallaban en período de invernación casi completamente en ramas,
con una mínima actividad fisiológica. No hubo apreciación exacta de la presencia
del hongo. Pero muchas muestras fueron llevadas inmediatamente para el análisis
de laboratorio. Se distinguió una cubierta de masa pulverulenta blanca sobre las
ramas en la mayoría de los casos. Resultando ser este, una cubierta provocada por
la plaga escama de San José que usualmente inverna bajo esa apariencia.
Se tomo en cuenta los síntomas más evidentes en las yemas, follaje y frutos.
Examinando estos órganos, se observo signos del patógeno. Por lo que Agrios,
(1997), indica que el hongo de este patógeno inverna, formando ascosporas o
conidios con paredes gruesas sobre los arboles, en las escamas de sus yemas.
Permitiéndole sobrevivir a temperaturas adversas.
Figura 5. Sintomas de torque de durazno (taphrina deformans); A: Ascomas sin fructificación,
deformaciones, abombadas, retorcidas y colores verdes a rojo purpura. B: Hoja carbonizada con
ascosporas libres.
Al inicio de la primavera, con el desarrollo de las yemas foliares y la llegada de la
época de lluvia, se aprecio los primeros síntomas de esta enfermedad (ver figura 5
(A)), tales como es el engrosamiento distorsionado de forma encrespada, la
despigmentación que va del color verde claro al rojo vivo. Además, se pudo
evidenciar que las yemas apicales, comenzaron a desarrollar un crecimiento lateral
en forma de escoba de bruja, terminando su ciclo reproductivo con una forma
carbonizada, donde se forman las ascosporas (ver figura 5 (B)).
Todos estos síntomas, se los aprecio durante el transcurso en que sucede la
floración y fructificación. Sin embargo la mayor aparición fue cuando comenzaron a
formarse las hojas, etapa en que la planta se encuentra vulnerable; sobre todo
entre los meses de octubre a diciembre, pues, este hongo se perpetua con mayor
facilidad en brotes tiernos y hojas tiernas, no permitiendo terminar el desarrollo de la
hojas, disminuyendo así la capacidad fotosintética.
Para el mes de enero, etapa de crecimiento de los frutos, el ataque de la
enfermedad aun perduraba en el follaje pero en menor grado, debido a que una vez
infectadas las hojas, estas se marchitan y caen del árbol, el ciclo de vida del hongo
concluye. Por otro parte no se percibió síntomas de Torque del durazno en los
frutos.
Esta enfermedad del Torque, probablemente se suscita durante los meses fríos del
ciclo productivo, puesto que las temperaturas en dicha zona, tienden a disminuir.
Así mismo hace referencia Agrios (2007). La infección se ve favorecida por las
bajas temperaturas y por la gran humedad que prevalece en el periodo en que las
yemas se hinchan y hojas jóvenes se desarrollan, es decir, en el periodo durante el
cual los nuevos tejidos son susceptibles a la enfermedad.
5.1.3. Análisis de laboratorio
Siguiendo la metodología descrita en el acápite anterior, con la descripción
macroscópica se pudo apreciar pequeñas deformaciones de color rosado, que se
tornan de color rojizo; a esto le acompaña la deformación de tejidos, y una película
sutil blanquecina que cubre por completo la superficie externa de las hojas (ver
figura 6 (B)).
FiguraDesarr
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el límite en
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entre la cu
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hifas.
cion rojo
ntre ésta
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tejido.
utícula y
ón, para
as a ser
nidios y
Descripciones morfológicas para Taphrina deformans
Breitenbach, 1984 describe: Observación en laboratorio: Ascas desnudas en forma de empalizada
directamente sobre las malformaciones
coloreadas de rojo púrpura.
Ascas claviformes, truncadas en el ápice,
octospóricas, irregularmente biseriadas.
Sin paráfisis.
Esporas subglobosas anchamente
elipsoidales, lisas e hialinas.
Ascas desnudas conteniendo
ocho ascosporas truncadas en el
ápice.
Colores verde claro a rojo
purpura
Esporas elipsoidales e hialinas.
5.1.4. Incidencia y severidad para Torque de Durazno En las siguientes figuras, se presenta el comportamiento que tubo la enfermedad de
Torque del durazno en relación a la incidencia y severidad, en los estratos 1, 2, 3 y
4 durante el lapso transcurrido entre los meses de octubre, noviembre, diciembre y
enero.
Figura 8.
OCT NOV DIC ENEESTRATO 1 28,8 32,6 26,5 21,5ESTRATO 2 19,0 19,6 16,5 20,0ESTRATO 3 19,6 24,0 19,9 20,4ESTRATO 4 18,6 18,1 17,5 17,6
10,0
15,0
20,0
25,0
30,0
35,0
Porce
ntaje
de In
ciden
cia
Comportamiento del Torque de durazno durante el desarrollo reproductivo
En la figura 8 se observa, que el estrato 1; presentan una línea de tendencia con
distribución normal. Lo que demuestra que la enfermedad empezó levemente por el
mes de octubre, y comenzó a incrementar, en la etapa en que la época de lluvia se
hace abundante, consecuentemente, el frutal comienza a forman suficiente cantidad
de follaje, lo cual hace que exista condiciones de alimento y clima favorable para la
proliferación del hongo. Tiende a disminuir precisamente, cuando las hojas maduran
y se hacen resistentes (enero). Por lo que Agrios (2007), señala, a medida que las
hojas alcanzan la madurez, y se tornan consistentes y gruesas, el ataque del hongo
disminuye considerablemente. Además Una de las particulares que tiene el estrato
1, es poseer mayor producción de durazno, lo cual ha hecho que los agricultores
cultiven más y tengan mayor conocimiento acerca del manejo, esto ha permitido un
balance en el control de la enfermedad.
Para los estratos 2 y 3 el comportamiento es similar a partir de octubre a diciembre,
pero comienza a diferenciarse para el mes de enero, pues la línea de tendencia
tiende a subir, esto demuestra que el ataque del hongo no se redujo, como en el
caso del estrato 1, al contrario, incrementa, a esto se le atribuye la falta de manejo
que es indispensable en la producción del frutales, la falta de podas, el control
fitosanitario, además la importancia que tiene el aporte nutricional, que requiere las
plantas para llegar a cubrir con el desarrollo de las hojas y los frutos, que deben ser
constantes. Y si no existen estas condiciones precisas, es claro que ocurre una
predisposición por parte de las plantas.
Para el estrato 4 las características de clima templado a frígido, resultan ser un
factor preponderante en el desarrollo del hongo pues lo mantiene constante,
durante todo el ciclo reproductivo de la planta, esto implica que hongo está
presente, pero este no se expande. Tratándose de un terreno con carencias
hídricas, deficiente en materia orgánica y minerales, con suelos rocosos, es
admisible. Sin embargo, es evidente que el hongo ha mostrado adaptación a las
condiciones medio ambientales que presentan dicha zona, donde ha desarrollado
su ciclo sin dificultad estableciéndose en los cultivos de durazno durante toda la
gestión productiva. Figura 9.
En la Figura 9, se muestra que el comportamiento en el estrato 1 y 2 comenzó con
una dirección contraria a la incidencia, donde se observa notoriamente que para el
mes de octubre inicia con mayor severidad, y disminuye significativamente a
medida que pasa el tiempo, esto se debe a las condiciones de humedad que se
mostraron propicias, al inicio de la primavera, el cual fue originado por un anticipado
chubasco, lo cual provoco que el hongo se active y se desarrolle rápidamente en el
tejido vegetal.
Mientras que para los estratos 3 y 4 las condiciones de humedad se mostraron
endebles por lo que las lluvias tienden a llegar atrasadas y con intermitencias de
días secos lo cual no dio oportunidad para estimular el progreso del hongo.
Con respecto a los estratos 2 y 3, para el mes de enero muestra una línea de
tendencia contrario a la que se distingue en la figura 8, por cuanto tiende a reducir,
y con respecto a la incidencia resulta ser opuesto. Por lo que se puede mencionar a
las fluctuaciones de temperatura que suceden en la región, ocasionando en
fenómeno inesperado, en el que sube bruscamente las temperaturas, provocando
OCT NOV DIC ENEESTRATO 1 10,7 8,3 7,1 6,4ESTRATO 2 5,2 3,4 3,3 2,7ESTRATO 3 4,8 6,4 5,6 4,9ESTRATO 4 2,3 2,7 2,3 2,7
0,0
2,0
4,0
6,0
8,0
10,0
12,0Po
rcenta
je de
Sev
erida
d Comportamiento de Torque del durazno
durante el desarrollo reproductivo
que el hongo no continúe su desarrollo. Y según (DFID, 2012) menciona, si el
período de infección es interrumpido por el calor, pequeñas ampollas pueden
aparecer en las hojas, las cuales nunca llegan a desarrollar la etapa plateada de la
maduración de las esporas. En este caso, el crecimiento rápido de las hojas
interfiere con el crecimiento normal del hongo y el desarrollo de sus síntomas.
5.1.5. Análisis estadístico Cuadro 4.
Análisis de varianza para Incidencia de Torque del durazno en porcentaje
Variables Grados de libertad
Suma de cuadrados
Cuadrado medio F calculado Probabilidad
Estratos 3 18985 6328 11,79 <000,0** Error 1335 716024 536,348 Total 1339 1343750
** Altamente significativo
NS no significativo
Para aclarar mejor los resultados del Análisis de Varianza se realizó la prueba de
significancia de medias por el método Duncan, con un margen de error del 5%, el
mismo que se muestra a continuación en el Cuadro 5.
Cuadro 5. Prueba de Duncan para incidencia del Torque del Durazno en porcentajes
Estratos Promedio Duncan (5%) Estrato 1 27,36 A Estrato 3 20,34 B Estrato 2 18,78 B Estrato 4 17,80 B
De acuerdo al Cuadro 5, podemos apreciar que el estrato 1, es diferente a los
demás estratos, con un promedio de 27,36% de incidencia de la enfermedad
ocurrida por el Torque del durazno. Entre tanto los estratos 2, 3, y 4 presentan
promedios de Incidencia similares entre sí. Para una mejor interpretación de los
valores mostrados en la prueba de medias, se muestran los datos a continuación en
la siguiente figura.
Como
duraz
estrat
propa
por la
duraz
húme
tempe
Niñira
favora
produ
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el tejid
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variable;
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o que se
tinada a
pastoreo y la otra parte de suelo presenta erosión o corresponden a montañas
rocosas. Por lo que resulta dificultoso asignar terreno para la producción de
durazno, es decir, que las parcelas de duraznos están distanciadas, lo cual
favorece de alguna manera, a las plantas de durazno, ya que las esporas de los
hongos deben viajar grandes distancias para ocasionar una infección, reduciendo el
nivel de incidencia
Cuadro 6. Análisis de varianza para Severidad de Torque del durazno en porcentajes
Variables Grados de Libertad
Suma de Cuadrados
Cuadrado Medio
F Calculado Sig.
Estrato 3 6581 2193 49,62 <000,0**Error 1436 63480 44 Total 1440 105377
** Altamente significativo
NS no significativo
En el Cuadro 6, se muestra el Análisis de varianza para Severidad del Torque del
durazno, en el que se aprecian las diferencias significativas que existen entre los
estratos.
Cuadro 7. Prueba de Duncan para Severidad de Torque del durazno en porcentajes
Estratos Promedio Duncan (5%) Estrato 1 8,17 A Estrato 3 5,46 B Estrato 2 3,66 C Estrato 4 2,50 C
De acuerdo al Cuadro 7, podemos apreciar que el estrato 1 presenta un porcentaje
de severidad diferente a los demás estratos, y al mismo tiempo, el valor más alto
con un 8.17%; mientras el estrato 3 es diferente al estrato 1, además de ser
diferente a los estratos 2 y 4, sin embargo, estas últimas dos, son similares entre sí,
Para una mejor interpretación de los valores mostrados en la prueba de medias
para severidad de Torque del durazno, se muestran a continuación en la Figura 11.
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5.2. Roya 5.2.1. Importancia de la enfermedad y su Distribución
Durante el estudio se declaro la existencia de esta enfermedad como significativo
para el cultivo de durazno. Se distribuye sobre todo en los estratos 1, 2, 3 y 4,
manifestándose de forma similar al caso de Torque del durazno, considerando la
presencia de esta enfermedad producida por el organismo patógeno Tranzschelia
discolor Punni, que se caracteriza por ser un parasito obligado.
Se reconoce, que es un problema, sobre todo para el desarrollo fisiológico de la
planta, desde el punto de vista nutricional, ya que este se establece en las hojas
tiernas provocando la caída de las mismas.
5.2.2. Síntomas de la enfermedad
Los síntomas más evidentes producidos por la enfermedad de la Roya, se distinguió
a principios del mes de agosto; cuando las plantas se encontraban en estado de
reposo, momento en que se preparan, para dar inicio a sus actividades fisiológicas,
que conlleva el desarrollo de las yemas, (Anexo 4) para esta primera inspección, se
recorrió por las parcelas encontrando órganos foliares con presencia de pústulas
de una masa pulverulenta de color café en el envés de las hojas, las mismas que
debían haber caído de forma natural, pero algunas, aún permanecían en el árbol y
aquellas que se encontraban en el suelo también presentaban estos síntomas.
Estos fueron los primeros indicios para suponer que los órganos observados,
contenían una fuente de inoculo para asegurar una infección en la siguiente
gestión productiva.
Al inicio de la primavera, con el desarrollo de las hojas y la apertura floral, los
síntomas se mostraron mucho más evidentes sobre todo en aquellas hojas tiernas,
donde se observo pequeños puntos de color amarillo intenso en el haz de hojas
(figura 12) ubicándose en la parte interior del tronco del árbol. Por los siguientes
meses, dichas manchas se fueron extendiendo y fueron abarcando por completo las
hojas, llegando a distribuirse por toda el área foliar.
Figura 12. Síntomas de Roya (Tranzschelia discolor), en hojas jóvenes.
La persistencia de este hongo en el cultivo de durazno, produjo lesiones en las
hojas, quedando restos vegetales esparcidos por el suelo, llegando a ser
diseminados por la acción del viento y la lluvia. Según Henríquez y Ramírez (1977),
al igual que Rondón (1990) indican que cuando el ataque es severo origina una
cierta defoliación de la planta, haciendo que esta vaya decayendo.
5.2.3. Análisis de laboratorio
La metodología para aislar y cultivar este hongo de carácter obligado mostro ciertas
limitaciones propios, debido a la naturaleza de la especie y la inhabilidad de los
medios de cultivo para copiar con exactitud el hábitat que requiere (Bridge y
Spooner, 2001).
Por lo tanto las pruebas realizadas en laboratorio fueron reducidas a observaciones
directas a nivel microscópicas en las cuales se observaron primero los síntomas de
carácter general de la enfermedad. Para proceder, mediante la técnica de raspado,
se obtuvo una masa pulverulenta de color café, las cuales contenían teliosporas, las
mismas que fueron comparadas, con bibliografía.
Figura 13. Fase teleutosorica en roya (Tranzschelia discolor), A) Telios agrupados B) Telios
contenidos las Teliosporas
En la figura 13 se muestra esporas en la fase teleutosorica. Así mismo menciona
Herbas (1987) que la hoja presenta soros de color amarillo cuando corresponde a
la fase urodosorica y de color pardo cuando corresponde a la fase teleutosorica.
A continuación se detalla en el cuadro 8 las descripciones por el autor Menéndez,
(2011) el cual describe las estructuras morfológicas, que equivalen a las que se
observo en laboratorio de las muestras extraídas de la zona de estudio.
Cuadro 8. Descripciones morfológicas para Transchelia sp.
Menéndez, (2011) describe: Observación en laboratorio
Los telios son anfígenos y aparecen más
o menos agrupados, de color pardo y en
su interior se forman las teliosporas.
Éstas son bicelulares, las dos células
son globoides, verrugosas, de color
pardo oscuro, y están soportadas por un
pedicelo corto e hialino, no persistente.
Telios agrupados de color
café de forma ovoide, en su
interior contenidas las
esporas.
Las esporas presentan una
forma ovoide de color café
claro.
5.2.4. Incidencia y severidad para la Roya
En las siguientes figura 14 y 15 se aprecia el comportamiento de la enfermedad de
la roya; en el caso de incidencia y severidad, los cuales fueron medidos durante los
meses octubre, noviembre, diciembre y enero, estos datos se han registrado
conforme el ciclo reproductivo del cultivo de durazno.
Figura 14.
En la figura 14 se observa, que los porcentajes de incidencia que presentan los
estratos 1, 2, 3, y 4, con respecto al comportamiento de la roya presenta una
dirección ascendente. Es decir que para el mes de octubre, inicio con un porcentaje
de incidencia ligeramente, hasta alcanzar márgenes significativos.
Tratándose de un hongo de carácter obligado, primero requiere que se constituyan
los órganos vegetales y cuando las condiciones de humedad son óptimas, este
recién desarrolla. Su ciclo es recurrente conforme se desarrolla la planta, logrando
comprometer los órganos foliares, llega a su término con el desprendimiento de la
misma, finalmente cae al suelo. Pero no concluye ahí, queda como una fuente de
inoculo para continuar con la infección, y dándose las condiciones optimas como es
OCT NOV DIC ENEESTRATO 1 18,47 20,14 24,72 27,92ESTRATO 2 13,06 14,31 18,06 22,64ESTRATO 3 15,14 20,69 21,11 24,58ESTRATO 4 14,78 17,78 20,83 22,22
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Porce
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cia
Porcentaje de Incidencia para la Roya durante el ciclo reproductiva del cultivo de durazno
el caso, ya que precisamente los meses noviembre, diciembre y enero es donde las
precipitaciones incrementan, acelerando la proliferación.
Figura 15.
En la figura 15 se observa que los porcentajes de severidad para los estratos 1, 2, 3
y 4 muestran un comportamiento similar a la incidencia. Tomando como referencia
la línea de tendencia ascendente. Al igual, como se muestra en la figura 14.
Reflejando, que tanto la incidencia como la severidad están altamente relacionadas
con respecto a la progresión, producida por la roya.
5.2.5. Análisis estadístico Cuadro 9.
Análisis de varianza para incidencia de la Roya en porcentajes
Variables Grados de Libertad
Suma de Cuadrados
Cuadrado Medio F Calculado Sig.
Estrato 3 6472 2157 3,64 <.000** Error 1436 849031 591 Total 1440 1418775
** Altamente significativo
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OCT NOV DIC ENEESTRATO 1 4,52 4,53 5,54 7,68ESTRATO 2 2,70 3,82 3,47 5,30ESTRATO 3 3,91 4,54 5,53 7,32ESTRATO 4 2,01 3,32 4,21 5,86
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ciclo Reproductivo del cultivo de durazno
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en los demás estratos. Además los estratos 3 y 4 se ven favorecidos por la baja
densidad de plantas y por los vientos, que son producidos por encontrarse en
mayor altura, lo cual disminuye las posibilidades de infección.
Cuadro 11. Análisis de varianza para la severidad de la Roya en porcentajes
Variable Grados de Libertad
Suma de Cuadrados
Cuadrado Medio F Calculado Sig.
Estrato 3 947 315 6,20 <.000* Error 1436 73134 50 Total 1440 105065
** Altamente significativo
NS no significativo
En el Cuadro 11, se muestra el Análisis de varianza para severidad de la Roya, en
el que se observa diferencias altamente significativas; para aclarar mejor los
resultados del Análisis de Varianza se realizó la prueba de significancia de medias
por el método Duncan, con un margen de error del 5%, el mismo que se muestra a
continuación en el Cuadro 12.
Cuadro 12.
Prueba de Duncan para la Severidad de la Roya en porcentajes Estratos Promedio Duncan (5%) Estrato 1 5,56 A Estrato 3 5,32 A Estrato 4 3.85 B Estrato 2 3.81 B
De acuerdo al Cuadro 12, podemos apreciar que los estratos 1 y 3, presentan
valores similares de severidad en Roya para las plantas, sin embargo los estratos 2
y 4 también son similares entre sí, pero al mismo tiempo, diferentes a los estratos 1
y 2. Se detalla a continuación en la figura 17, una mejor interpretación de los
valores mostrados en la prueba de medias.
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pérdidas
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5.3.2. Síntomas de la Enfermedad
Al inicio de la primavera se observo la presencia de hojas con puntos rojos, estos se
fueron expandiendo, provocando grandes lesiones circulares con un centro
necrótico color café con márgenes de color rojo purpura, con el tiempo el centro de
las lesiones se fueron desprendiendo de las hojas causando el efecto conocido
como tiro de munición, las ramas mostraron lesiones necróticas que permanecían
en el árbol acompañadas de un exudado gomoso de aspecto lustroso (Figura 18).
En los frutos se observaron lesiones circulares hundidas de color café que luego se
tornaron negras por la esporulación del hongo, dejando una especie de heridas, en
frutos que continuaron su maduración.
Esta enfermedad se ha visto favorecida por la elevada humedad, que se produce
sobre todo en época lluvia y el aumento de temperatura en verano (diciembre,
enero). Se manifiesta en árboles enfermos con una falta de vigor y pérdida
progresiva de las hojas. Fideghelli (1987), menciona que este agente causal de la
enfermedad inverna en forma de teleutosporas permaneciendo en las hojas caídas.
Figura 18. Síntomas de Tiro de Munición (A) Exudado gomoso sobre ramas
(B) Lesiones circulares necróticas desprendidas en el área foliar .
5.3.3. Análisis de Laboratorio
Según las observaciones macroscópicas realizadas en laboratorio mediante las
técnicas descritas en el anterior capitulo, se confirmo los síntomas como son las
perforaciones concéntricas que caracterizan a esta enfermedad, de tal manera que
al presionarlas caen fácilmente quedando un orificio circular (ver figura 19).
Figura 19. Manchas circulares necróticas color café con anillos
Concéntricos de color rojo - purpura
Se identifico al agente causal de esta enfermedad como el hongo imperfecto
coryneum carpophilum, este hongo forma conidios de forma oblonda cilíndrica,
pluritabicadas y contraídas a la altura de los tabiques.
5.3.4. Incidencia y severidad para Mal de Munición
En las siguientes figuras se aprecia los promedios de incidencia y severidad para la
enfermedad Mal de Munición datos que han sido registradas durante los meses de
octubre, noviembre, diciembre y enero, que corresponden a los estratos 1, 2, 3 y 4.
Figura 20.
Como se muestra en la figura 20, los porcentajes de incidencia registrados en el
mes de octubre, en los cuatro estratos tienen promedios muy aproximados. En este
punto podemos indicar que el comportamiento respecto al desarrollo del patógeno
se dio con la misma intensidad. Al trascurrir el tiempo, con las lluvias continuas,
fueron favoreciendo el desarrollo del hongo. Por lo que los porcentajes de
incidencia, para los siguientes meses fueron incrementando; alcanzando hasta
mantener un porcentaje de incidencia constante que posteriormente disminuyo.
Donde ya no fue posible mas afectar al cultivo; por tratarse de los árboles
caducifolios, donde pronto termina su ciclo de productivo.
OCT NOV DIC ENEESTRATO 1 12,78 17,36 17,92 18,06ESTRATO 2 8,89 11,25 8,89 5,28ESTRATO 3 10,42 14,03 12,50 13,06ESTRATO 4 10,56 11,11 15,14 12,92
0,00
5,00
10,00
15,00
20,00Po
rcenta
je de
Incid
encia
Incidencia para Munición en etapa reproductiva del duraznero
Figura 21.
Como muestra en la figura 21 los promedios para el mes de octubre, indica que la
línea de tendencia para los estratos 1 y 3 sigue un comportamiento ascendente
hasta llegar a un punto alto, para luego bajar. Donde se observa que los mayores
niveles de severidad se encuentran entre los meses de noviembre y diciembre,
donde el clima se muestra favorable y la planta se encuentra en pleno desarrollo,
pero posteriormente la planta tiende adquirir resistencia por la constitución madura
en sus hojas, lo cual hace dificultoso que la infección continúe. Por tanto reduce el
impacto de severidad.
Para los estratos 2 y 4 al final del mes de enero la infección continúa prolongándose
por más tiempo siguiendo una línea ascendente. Esto debido a que existe una
diferencia con respecto a los estratos 1 y 3 en relación a la temporada de cosecha,
ya que las primeras cosechas se dan en los estratos 1 y 2 lo cual termina mucho
antes, a diferencia de los estratos 3 y 4 son los que obtienen mucho después por
OCT NOV DIC ENEESTRATO 1 2,82 3,53 4,15 2,80ESTRATO 2 1,11 1,31 1,12 0,61ESTRATO 3 1,76 2,38 2,84 2,94ESTRATO 4 1,13 1,21 1,52 1,79
0,00
1,00
2,00
3,00
4,00
5,00Po
rcenta
je de
Sev
erida
d
Severidad para Munición en etapa reproductiva del duraznero
tanto se prolonga la época de cosecha, entonces sucede lo mismo con los hongos
si existe alimento para ellos persistirá su permanencia.
5.3.5. Análisis Estadístico
Cuadro 13.
Análisis de varianza para incidencia de Munición en porcentajes
Variable Grados de Libertad
Suma de Cuadrados
Cuadrado Medio F Calculado Sig.
Estrato 3 11384,006 3794,669 9,349 <.000** Error 1436 582834,635 405,874 Total 1440 819531,250
** Altamente significativo
NS no significativo
En el Cuadro 13, se muestra el Análisis de varianza para la incidencia de Munición,
en el que se aprecian las diferencias altamente significativas que existen entre los
estratos.
Cuadro 14. Prueba de Duncan para Incidencia de Munición en porcentajes
Estratos Promedio Duncan (5%) Estrato 1 16.52 A Estrato 3 12,50 B Estrato 4 12,43 B Estrato 2 8,57 C
De acuerdo al cuadro 14, podemos apreciar que el estrato 1 es diferente a los
demás estratos, mientras que los estratos 3 y 4 son similares entre sí, pero
diferente del estrato 2, y diferente de la primera. Para una mejor interpretación de
los valores mostrados en la prueba de medias, se muestran a continuación en la
Figura 22.
En la
incide
con u
condic
así se
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Según
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** Altam
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adas en
5.4. Podredumbre Parda Esta enfermedad producida por Monilia sp, actualmente se está suscitando en esta
zona de forma paulatina, sobre todo en aquellas zonas donde existe un clima de
temperatura y humedad favorable. Después de haber realizado el estudio, se
puede aseverar, que la enfermedad está presente solo en algunas comunidades
que corresponden a los estratos 1 y 2, por tanto, la presencia de síntomas
confirmados con el análisis de laboratorio, pertenece a una pequeña población.
El cuanto al cuadro sintomatologico que presenta esta enfermedad, se encuentra
asociada con los síntomas que se aprecian a simple vista; por ejemplo, durante el
período en que la planta se encontraba en estado se reposo, se observo frutos
momificados arrugados de color negro colgados de sus ramas. Para la época de
floración, se distinguió flores atizonadas, al inicio del brote de las yemas florales.
Figura. 24 A). Flores atizonadas (izquierda) (B). Frutos que presentan podredumbres de color gris
(centro) C) Desarrollo de Monilia (derecha)
Esta enfermedad se mostro mucho más evidente cuando el fruto empezó a
madurar, coincidiendo con la época de lluvia y el aumento de temperaturas,
originando un ambiente propicio para el desarrollo de conidios que se encontraban
invernando en los frutos secos. La infección produjo pequeñas manchas circulares
de color café, que con el tiempo comenzó a podrirse, y se extendió rápidamente por
la humedad, formando ramilletes de conidios de color cenizo que brotan a través de
la cascara del fruto (figura 24).
Los procedimientos realizados en laboratorio, dieron marcha al desarrollo de las
estructuras morfológicas del hongo, además de brindar condiciones de temperatura
y humedad controlada. Fueron las que nos llevaron a obtener una caracterización
morfológica de las colonias obtenidas de las siembras en PDA, a los 10 días de
incubación, permitió diferenciar el desarrollo miceliar, colonias de color gris, con
crecimiento uniforme y continuo, márgenes en la colonia y abundante micelio aéreo
que corresponden a Monilia sp..
Cuadro 17. Descripciones morfológicas del hongo (Monilinia sp.)
Particularmente el incremento de monilia en los frutales podría atribuirse a causas
de índole meteorológicas, lluvia, temperatura y humedad; ya que la temperatura
óptima para el desarrollo de Monilia sp. es 25 ºC. A 20 ºC son suficientes de 3 a 5
horas de humedad para que tenga éxito la infección Mendoza (2006).
Aunque posiblemente podrían existir otros factores que hagan generado su
presencia en la zona. Por lo que cabe mencionar que varias de estas zonas
productoras de duraznos, en su interés de mejorar su producción han introducido
plantas con buenas características productivas y presumiblemente fueron estas las
que provocaron dicha infección, a pesar que la variedad que predomina en esta
región es criolla y es considerada resistente a ciertas enfermedades.
Según Barmett y Hunter (1998) Observación en laboratorio Color oscuro en la epidermis del fruto
consistencia ligeramente suave y
posteriormente momificados
Anillos concéntricos de crecimiento.
cadenas de conidios hialinos
limoniformes, unicelulares y de hifas
septadas, hialinas.
Presencia de Frutos momificados.
Cadenas de conidios con hifas
septadas
Colonias con crecimiento uniforme
con la formación de anillos
concéntricos color gris.
5.5. Oídio
Esta enfermedad no llegó a propagarse aun en otras zonas, pero se la encontró
en una comunidad con baja incidencia correspondiente al estrato 3. Debido a las
condiciones ambientales que posee y que favorecen al desarrollo del hongo, por lo
que Ploetz y Prakash, 1997 menciona este hongo requiere particularmente una
baja intensidad de luz, y humedad con temperaturas moderadas de 18 ºC para la
producción de conidios durante floración.
Este hongo Generalmente ataca la parte foliar, producido por Sphaerotheca
pannosa pertenece a la categoría de parásitos obligados debido a esto solo puede,
crecer y reproducirse sobre plantas vivas, por tanto raramente llegan a matar a sus
huéspedes, utilizan los nutrientes de las plantas para su desarrollo, provocando una
disminución en la actividad fotosintética de la planta reflejándose en la disminución
de su desarrollo productivo. Por lo que los daños producidos en las plantas no
disminuyen los rendimientos, al defoliar, amarillear y estimular la senescencia de
hojas en la planta.
Los síntomas característicos de esta enfermedad se los observo especialmente en
las hojas, después del inicio de las lluvias, las hojas infectadas llegaron a cubrirse
con un micelio blanco y harinoso, provocando que estas se enrollen como rizos.
Esta infección inicio, a partir del desarrollo temprano de los frutos, ya que este
hongo permanece en su estado latente hasta que el fruto llega a la fase climatérica.
Con el tiempo se observo que los frutos presentaban manchas blancas circulares
con endurecimientos, también se observo necrosis y agrietamiento de la epidermis.
En el trabajo de laboratorio se observaron, capas difusas de micelio blanco en la
parte inferior de las hojas y en la superficie de las hojas las áreas afectadas se
tornaron colores verde cloróticos. El desarrollo del micelio observado fue totalmente
superficial, las observaciones microscópicas mostraron el desarrollo de haustorios
en los tejidos epidérmicos, el cual utiliza para alimentarse dicho hongo.
6. CONCLUSIONES
Con los resultados obtenidos y discusiones expuestas se llego a las siguientes
conclusiones
1. Mediante el análisis de laboratorio se logró identificar, la presencia de cinco
enfermedades, particularmente las que mostraron mayor intensidad en los
estratos 1, 2, 3 y 4, son originadas por los hongos Taprhina deformans;
(Torque de durazno) Transchelia prunni (Roya), y Coryneum carpophilum
(Mal de Munición). Mientras que las siguientes con una presencia escasa y
baja ocurrencia, han sido identificadas como: Monilinia sp. (Podredumbre
parda) y Sphaeroteca pannosa (oídium).
2. Tras realizar comparaciones entre medias, para incidencia y severidad de la
enfermedad del Torque del durazno, se concluye que el estrato 1 presento
mayores porcentajes de incidencias y severidad en relación a los estratos 2,
3 y 4. por presentar características de temperatura y humedad favorables
para el desarrollo del hongo.
3. La enfermedad de la roya causada por Transchelia pruni bajo las condiciones
de humedad del estrato 1, presento mayor incidencia registrando el 28%
mientras que los estratos 2, 3 y 4 presentaron menores incidencias. Pero en
el sentido de adaptación por parte del hongo logro desarrollarse
perfectamente en los diferentes estratos.
4. Por otra parte la enfermedad Mal de Munición causada por coryneum
carpophilum, muestra que el mayor nivel de incidencia se registró en el
estrato 1, en contraste con los estratos 2, 3 y 4, sin embargo, se aprecia que
los valores obtenidos en ambos casos no sobrepasan los niveles que
perjudiquen al cultivo.
5. La enfermedad de podredumbre parda causada por Monilia sp se presento
solamente en el estrato 1 y 2. Limitándonos en el proceso de identificación
de Monilia, al género por presentar particularidades específicas. Aclarando
que dicha zona presenta optimas condiciones para el desarrollo del hongo.
6. La enfermedad oídium tuvo presencia únicamente en el estrato 3 por lo que
no es considerada de importancia, pero sin ignorar que pueden llegar a
superar estos niveles.
7. Por las enfermedades expuestas anteriormente, cabe expresar que resulta
ser un problema sobre todo las que presentan mayores índices de incidencia,
por ocasionar pérdidas económicas al momento de comercializar los frutos,
debido a la baja calidad del producto.
7. RECOMENDACIONES
1. Ha sido tan indispensable en el trabajo de investigación, el diagnostico, sobre
todo para tener un juicio acertado de las medidas de control. Por tanto se
recomienda establecer el mismo estudio referente al ataque de plagas del
cultivo de Durazno.
2. Se considera fundamental desarrollar nuevas investigaciones, para
determinar el tipo de especie de Monilia sp. que se encuentra asociada con
los daños causados por la enfermedad en los frutos.
3. Una vez conocida el problema en el tema fitosanitario, es preciso elaborar
estrategias locales, en el manejo y control de estas enfermedades,
considerando especialmente la fenología del cultivo y trabajar seriamente en
tratamiento preventivos de las enfermedades presenten en el cultivo del
Durazno.
4. Por otra parte se propone un conjunto de medidas, enmarcadas bajo el
enfoque de manejo integrado de plagas y enfermedades (MIPE) y se
recomienda estrategias de control considerando el menor impacto ambiental.
8. BIBLIOGRAFIA CITADA
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DEPARTMENT FOR INTERNATIONAL DEVELOPMENT DFID. The Gobal Plant
Clinic is generously supported by the UK.
Disponible http:/www.globalplantclinic.org.
ANEXOS
UbicaAnexo 1
ación Geo1 ográfica
Anexos 2.
Ciclo de la enfermedad producido por Oídio (Sphaerotheca pannosa
Anexo 3
Foto(Qua
Foto
Foto
o 1. Escamadraspidiot
o 3. Hormig
o 5. Pulgon
ma de San tus pernici
ga (Atta sp
nes (Mizus
Plaga
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s pérsicae)
Anexo 4as en el Du
FoSa
Foim
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4. uraznero
oto 2. Presan José en
oto 4. Rampregnadas
oto 6. Com
sencia visib la corteza
mas del durs de clavel
mplejo pulgo
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Foto
Foto
Foto
o 7. Síntom
o 9. Síntom
o 11. Fruto
Anexo
mas de tiro
mas de roy
o momificad
o 5. Fotos d
o de munic
a
do
de Síntoma
ción Fom
Fo
Fopo
as de enfe
oto 8. Frutunición
oto 10. Sín
oto12. Fruodredumbr
ermedades
to con sínto
ntomas de
uto con síntre morena
s
omas de T
oídium
tomas de
Tiro de
Anexo 6. Planilla de encuesta que se utilizo para recopilar
Información para la Zona en estudio.
Cuestionario Departamento: La Paz Provincia: Camacho Altitud: _____msnm Municipio: Mocomoco Comunidad: Fecha: Nombre del agricultor: Objetivo: Conocer zonas productoras de durazno, las cuales se ven afectadas por problemas fitosanitarios, con el fin de desarrollar estrategias de control en plagas y enfermedades.
PREGUNTAS
A: SUPERFICIES FRUTICOLAS 1. ¿Cuáles son las especies frutícolas existentes en la zona? 2. ¿Que cultivos frutales (durazno) tiene usted? 3. ¿Que superficie abarca su propiedad? 4. ¿Que superficie de su propiedad esta destinada a los frutales? 5. ¿En su propiedad los frutales esta asociado con otros cultivos? Si_____ No___
6. ¿Con que cultivos esta asociados sus frutales?
7. ¿Cuántos arboles de durazno tiene?
8. ¿Qué variedades de durazno tiene? 9. ¿Que distancia existe entre plantas de durazno?
Durazno
Chirimoya
Manzano
Tuna
Tumbo
Palta
Higo
Otros
B: PRACTICAS CULTURALES 1. ¿Qué prácticas culturales realiza en sus frutales? 2. ¿Con que frecuencia realiza estas prácticas en todo el
año?
3. ¿Cómo realiza el riego en sus frutales?
4. ¿Qué tipo de poda realiza? formación sanidad conservación renovación 5. ¿Qué tipo de fertilización aplica en sus frutales? Orgánico Químico ninguno 6. ¿Utiliza plaguicidas? Si ____ No____ ¿Cuáles? 7. ¿En que época cosecha los frutos? 8. ¿Cuánto es el rendimiento de su cosecha? C: PROBLEMAS FITOSANITARIO
1 ¿Que problemas fitosanitarios tiene sus frutales?
2 ¿En qué época del año se presenta estos problemas con más frecuencia? 3 ¿En que momento se dio cuenta que empezó estos problemas en sus frutales?
Remoción de suelo Abonado Riego Deshierbe
Poda Fumigación Otros Ninguno
4 ¿Conoce las enfermedades y plagas que presenta sus frutales? Si_____ no_____
5 ¿Qué enfermedades conoce que atacan a sus frutales?
6 Qué plagas conoce que atacan a sus frutales D: TECNOLOGIA APLICADA 1. ¿Qué conocimientos tradicionales y/o tecnológicos emplea en el cultivo de durazno? E: CAPACITACION TECNICA
1. ¿Hubo anteriormente algún tipo asistencia técnica en frutales?
Si_____ no_____
2. ¿Estaría de acuerdo en recibir asistencia técnica en frutales? Si_____ no_____
Anexo7. CLAVES PARA MELOCOTÓN Y NECTARINA
IDENTIFICACIÓN DE LA ENFERMEDAD 1bis. El crecimiento general y el vigor del árbol se reducen. El árbol enano o
debilitado. Follaje marchito o el color fuera de con enrojecimiento y la
defoliación temprana en el otoño. No hay síntomas obvios de otros en el
árbol (2). 1b.Obvio hoja, flor, fruto o infecciones, chancros, agallas o los patrones de
variegación de las hojas. (7) 2a. Decay es evidente en la raíz / área de la corona (3). 2b. Decay no es evidente en la raíz / área de la corona (4). 3a. Madera oscura y cubierta por la corteza viva en sus bordes. Corteza
fácilmente muda fuera de área de la corona o del sureste lado del tronco.
Raíces más grandes también pueden estar agotadas. LESIONES DE INVIERNO
3b. La madera es de color naranja en el cancro de color marrón de aspecto
acuoso y viscoso. Cancro, delimitados por un margen de infección, a
veces se extiende hacia el tronco o el área de la raíz. Aislados de
Phytophthora margen de la decadencia. Phytophthora podredumbre de la corona (Phytophthora spp.)
3c. Bark at corona y las raíces fácilmente pantanos de exponer el crecimiento de
hongos blancos densos con forma de distribución de los hinchas en
cambium. Cinta de zapatos como hilos-Negro (rizomorfos) puede ser
evidente en la superficie de setas y amarillo-marrón de corteza puede
aparecer en la base del árbol a finales de verano o principios del otoño.
Armillaria pudrición de la raíz (Armillaria mellea)
4 bis. Raíces fibrosas o mostrando falta brujas escoba. Lo más común en los
suelos de textura ligera. DAÑO NEMATODOS (Pratylenchus penetrans)
4b. Las raíces parecen normales (5). 5 bis. Corteza fácilmente lodazales bajar en área de la corona (3).
5b. Corteza desaparecidos en o por debajo de la línea del suelo. Mordiente a
veces visibles marcas en la madera. Callo formado en la corteza en el
borde de la madera desnuda. DAÑO ROEDORES 5c. Corteza normal en área de la corona (6). 5d. Corteza anormalmente espeso y esponjoso, de madera debajo ha
enfrentado seriamente . Ranuras, y la textura de sangría. Las hojas pueden tener ventosas hacia arriba , dando vuelta rojo púrpura, a
continuación, soltar. PRUNUS las picaduras del tallo (tomate Virus de la
mancha anular)
6a. Las hojas marchitas o que estén doradas por uno o varios andamios (
pabellón ). Resto del árbol se ve saludable. Dark rayas en la albura de
2-3 años y mayores de madera. Los síntomas reforzados por el estrés
hídrico, a mediados de verano. Verticilosis (Verticillium albo-atrum)
6b. Las marcas no es evidente. Otros síntomas por encima de tierra (7). 7 bis. Distintas lesiones o la distorsión de las hojas (8). 7b. Distintas lesiones o manchas en las frutas (11). 7c. Distintas lesiones en hojas y frutos acompañado por rama chancros (10). 7d. Chancros en las ramas o sucursales solamente. (13) 7e. tizón Flor (12). 7f. Pequeñas y grandes, verrugosa crecimientos que aparecen en la coronilla
o en las raíces. Agalla de la corona (Agrobacterium tumefaciens)
(Universidad Estatal de Ohio).
8 bis. Distintas lesiones o barrenos-visible en las hojas. (10) 8 ter. Las hojas son ahuecadas, hinchada, deformada o de alguna manera de
forma anormal (9). 8c. Distinto polvo blanco el crecimiento de hongos, en la superficie foliar .
Las hojas pueden caer prematuramente, no se alargan y se desarrollan
normalmente, mientras que en los brotes nuevos se pueden estrechar,
correa-como, y distorsionada. MILDIÚ POLVOROSO (pannosa
Sphaerotheca)
9a. Hojas hinchada y deformada a lo largo de vena central a principios de la
temporada, luego cambiando a rojo, dorado púrpura, y cayendo de los
árboles. Superior de la hoja de superficie convirtiéndose en polvo de color
gris de la esporulación de hongos. De vez en cuando en la fruta .
Durazno leaf curl (deformante Taphrina)
9b. Las hojas rizadas hacia adentro después de varios meses. El agua empapó
manchas de color rojo, necrótico y deserción deja dar una apariencia
andrajosa. Áreas localizadas o de la totalidad del dosel deshoja dejando follaje sólo en las puntas . Choke cerezo, el huésped alternativo, puede
ser visto cerca de la huerta. Todo el árbol puede mostrar síntomas de 2-3
años después de la infección inicial. X-ENFERMEDAD
9c. Las hojas de catación hacia arriba, girando amarillo, rojo, a continuación,
pasando de zonas localizadas de la cubierta. PRUNUS las picaduras del tallo (tomate Virus de la mancha anular)
10 bis. Lesiones pequeñas en color púrpura rodeada por un halo verde en las
hojas en la primavera. Las lesiones se necrosan y se caen las hojas
dando una apariencia andrajosa. Los síntomas asociados con
profundidad, depresiones negro en las frutas y gangrenando de ramitas
y ramas. En ocasiones, un desnudo de ramas o "piernas largas" condición como resultado de los brotes y las espuelas de muertos por
chancros. BACTERIANA cancro (Pseudomonas syringae y P.-prunorum
mors)
10 ter. Pequeño, de color marrón o negro lesiones angulares rodeado de un
halo de luz de color verde. Las lesiones más evidente en las puntas de las
hojas. Más tarde las lesiones abandono (shotholing). Pequeñas circular,
oscura, las lesiones empapadas en agua, a veces en las ramitas.
Pequeñas lesiones circulares en las grietas se unen en el desarrollo de la
fruta. Las variedades Sunhigh, Afterglow, Collins, Merrill 49'er, RedGlobe,
y Washington son muy susceptibles. BACTERIANA Spot (Xanthomonas
pruni)
10c. Las hojas desarrollan manchas cloróticas, las líneas y anillos a medida que
surjan. En casos severos áreas cloróticas se necrosan y se caen, dejando
las hojas de disparo escondido "o hecha jirones. Necrótica de la mancha anular .
11 bis. Blanco zonas pulverizadas sobre jóvenes melocotón o nectarina fruta.
Duro, de cuero oscuro en lesiones mayores frutos . MILDIÚ POLVOROSO (Sphaerotheca pannosa o clandestina Podosphaera)
11 ter. Pequeñas, circulares y oscuras manchas verdes a veces concentra
alrededor de pedúnculo de la fruta. Pequeñas roja lesiones en las ramas
pueden estar presentes también. Durazno ESQUIROL (carpophilum
Cladosporium)
11c. manchas pardas en las frutas suaves maduración que se expanden rápidamente y producir polvo masas tan de esporas. Infecciones de la
fruta puede avanzar en la madera causando chancros pequeños . La
fruta que es totalmente podrido se convierte en "momificado" .
Pequeñas (5-10 mm), café, hongos cuerpos fructíferos con forma de taza , podría formarse momias (que han pasado el invierno en el suelo) en
la primavera. PUTREFACCIÓN BROWN (Monilinia fructicola) o botrytis
(Botrytis cinerea)
11d. Síntomas similares a la podredumbre parda, pero la putrefacción aparece
ligeramente más oscura, la carne puede escapar de carne en
descomposición debajo. micelio del hongo visible puede ser blanca y
esponjosa, se parece a los bigotes como el hongo esporula.
PUTREFACCIÓN Rhizopus (Rhizopus spp.)
12 bis. Gummy aparición de flores arruinadas . masa pulverulenta de color gris
de las esporas se desarrollan en las zonas infectadas durante el
calentamiento condiciones de humedad. La infección puede seguir
extendiéndose por la maleza que causa gomosis. PUTREFACCIÓN BROWN (fructicola Monilinia)
12 ter. Flores doradas, y se secará durante el tiempo frío y húmedo. lesiones a
su vez Brown gris borroso de la esporulación de hongos. La enfermedad
no se transmite por la maleza. Botrytis (Botrytis cinerea)
12c.Blossoms marchita, seca, y girar a la brown.infection oscura puede
extenderse una o dos pulgadas dentro del espolón. No esporulación de
hongos o agua empapando en los tejidos infectados es evidente.
Congelación lesión flores favorece la infección. BLOSSOM BLAST
(Pseudomonas syringae)
13 bis. Perenne, chancros alargado rodeado de grandes, negro, anillos hinchada de engomado callo . Dolorosas asociadas con heridas,
talones de poda, de árboles de durazno barrenador, ramitas de espera a la
sombra, o las cicatrices de las hojas. leucostoma cancro (cincta
leucostoma y L. persoonii).
13 ter. Las marcas de la temporada de crecimiento actual. , Oscuro, ovalados
chancros pequeños al yemas, cicatrices de las hojas, o las bases de la temporada actual ramitas . Condición persiste sólo por un año con
síntomas más comunes en otoño y primavera. Más frecuente en las
regiones cálidas. Fusicoccum cancro (Phomopsis amygdali)
13c. Dolorosas procedentes de flores marchitas. (12)
ANEXO 8. Tabla 1. Incidencias para Torque del Durazno
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
1 20,83 33,33 20,83 12,50 37,50 12,50 16,67 12,50
2 33,33 12,50 45,83 41,67 20,83 20,83 0,00 29,17
3 37,50 0,00 37,50 33,33 9,00 4,17 25,00 16,67
4 16,67 25,00 20,83 29,17 29,17 6,25 20,83 4,17
5 20,83 8,33 37,50 16,67 16,67 20,83 25,00 37,50
6 16,67 29,17 20,83 0,00 29,17 25,00 8,33 25,00
7 41,67 16,67 16,67 33,33 20,83 16,67 16,67 20,83
8 37,50 20,83 25,00 25,00 33,33 16,67 25,00 20,83
9 25,00 41,67 29,17 0,00 25,00 12,50 33,33 25,00
10 12,50 12,50 29,17 20,83 16,67 20,83 20,83 33,33
11 25,00 4,17 20,83 29,17 8,33 12,50 0,00 16,67
12 58,33 8,33 45,83 12,50 33,33 29,17 4,17 25,00
13 41,67 29,17 16,67 16,67 20,83 33,33 0,00 12,50
14 37,50 8,33 37,50 20,83 16,67 4,17 25,00 12,50
15 8,33 0,00 25,00 29,17 20,83 20,83 8,33 12,50
16 33,33 4,17 16,67 33,33 29,17 29,17 33,33 37,50
17 33,33 0,00 37,50 4,17 29,17 4,17 20,83 33,33
18 54,17 12,50 25,00 12,50 29,17 4,17 20,83 29,17
19 66,67 54,17 33,33 50,00 16,67 20,83 0,00 0,00
20 45,83 54,17 41,67 20,83 4,17 29,17 4,17 45,83
21 20,83 0,00 29,17 25,00 37,50 12,50 29,17 12,50
22 16,67 12,50 45,83 12,50 8,33 33,33 0,00 25,00
23 0,00 41,67 12,50 50,00 41,67 0,00 37,50 12,50
24 25,00 25,00 29,17 20,83 41,67 8,33 29,17 0,00
25 29,17 0,00 37,50 0,00 25,00 41,67 20,83 16,67
26 58,33 25,00 37,50 8,33 29,17 16,67 0,00 20,83
27 20,83 20,83 25,00 16,67 58,33 16,67 33,33 16,67
28 12,50 29,17 33,33 16,67 33,33 20,83 25,00 8,33
29 70,83 25,00 29,17 4,17 12,50 25,00 29,17 4,17
30 33,33 20,83 25,00 8,33 29,17 8,33 12,50 8,33
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
31 37,50 16,67 8,33 0,00 16,67 0,00 20,83 25,00
32 33,33 8,33 16,67 8,33 41,67 25,00 20,83 16,67
33 37,50 45,83 4,17 4,17 16,67 4,17 25,00 16,67
34 33,33 29,17 29,17 8,33 8,33 12,50 37,50 16,67
35 20,83 33,33 0,00 25,00 16,67 0,00 4,17 0,00
36 41,67 50,00 33,33 8,33 12,50 29,17 4,17 29,17
37 29,17 12,50 20,83 8,33 8,33 25,00 16,67 25,00
38 29,17 8,33 37,50 33,33 33,33 50,00 25,00 8,33
39 8,33 0,00 41,67 8,33 25,00 16,67 12,50 33,33
40 29,17 8,33 20,83 0,00 33,33 20,83 8,33 8,33
41 4,17 12,50 20,83 25,00 37,50 16,67 25,00 0,00
42 20,83 16,67 20,83 41,67 29,17 29,17 4,17 4,17
43 8,33 4,17 37,50 25,00 16,67 33,33 16,67 29,17
44 54,17 0,00 50,00 29,17 50,00 0,00 12,50 16,67
45 37,50 0,00 29,17 25,00 12,50 8,33 4,17 25,00
46 29,17 25,00 12,50 16,67 25,00 20,83 37,50 16,67
47 29,17 16,67 16,67 20,83 37,50 41,67 25,00 20,83
48 37,50 29,17 8,33 12,50 33,33 29,17 16,67 0,00
49 29,17 16,67 20,83 37,50 4,17 29,17 29,17 16,67
50 16,67 29,17 0,00 37,50 41,67 12,50 4,17 0,00
51 37,50 58,33 20,83 20,83 29,17 8,33 8,33 12,50
52 37,50 29,17 4,17 33,33 25,00 33,33 12,50 37,50
53 25,00 8,33 33,33 8,33 25,00 25,00 29,17 8,33
54 20,83 16,67 41,67 29,17 12,50 33,33 20,83 4,17
55 25,00 0,00 25,00 12,50 12,50 0,00 16,67 29,17
56 33,33 0,00 0,00 20,83 20,83 16,67 29,17 16,67
57 12,50 0,00 25,00 33,33 20,83 20,83 4,17 25,00
58 16,67 8,33 33,33 25,00 29,17 20,83 12,50 16,67
59 8,33 16,67 16,67 20,83 16,67 29,17 25,00 4,17
60 12,50 0,00 16,67 16,67 29,17 0,00 0,00 0,00
Tabla 2. Severidad para Torque del Durazno
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
1 10,96 3,88 7,09 0,82 9,25 2,14 5,54 0,74
2 8,93 0,82 13,99 12,40 5,16 1,81 0,00 2,76
3 11,21 0,00 9,76 6,00 5,56 0,82 6,03 1,54
4 5,10 6,11 6,14 11,45 5,85 1,18 7,44 1,45
5 3,76 2,08 12,90 5,82 11,55 1,97 4,42 5,11
6 5,33 3,33 8,91 0,00 0,00 2,29 1,41 3,09
7 36,94 1,44 8,61 10,06 6,87 1,09 4,40 2,16
8 21,82 4,67 6,82 6,68 6,94 1,47 6,82 2,59
9 6,03 14,12 6,22 0,00 5,46 2,52 4,98 2,59
10 8,37 6,50 4,64 7,18 2,49 2,41 5,79 4,76
11 2,51 1,46 6,67 7,51 2,58 2,23 0,00 2,58
12 26,82 2,05 19,80 1,05 10,44 2,85 1,09 3,95
13 18,06 17,24 8,73 4,28 3,37 2,71 0,00 2,32
14 5,02 3,15 14,73 3,63 4,36 2,12 5,85 1,26
15 5,39 0,00 9,72 12,89 4,71 2,80 3,62 0,73
16 4,79 0,72 1,47 7,63 8,16 2,60 6,51 3,13
17 8,81 0,00 9,74 1,18 7,16 0,77 3,88 3,58
18 10,24 0,85 6,67 2,85 5,28 0,52 3,12 3,24
19 14,62 3,47 5,76 15,54 5,32 3,23 0,00 0,00
20 15,01 1,40 9,94 3,77 0,89 4,40 1,09 3,10
21 10,48 0,00 4,13 8,74 7,52 0,70 3,45 1,03
22 3,27 0,81 10,83 0,82 8,09 3,92 0,00 1,64
23 0,00 3,78 4,94 12,99 10,70 0,00 9,84 3,07
24 10,01 3,75 8,89 1,12 10,26 0,92 7,21 0,00
25 13,11 0,00 7,81 0,00 8,47 5,37 11,61 5,95
26 12,05 4,12 6,70 4,84 8,22 3,73 0,00 2,57
27 4,20 2,88 4,71 4,12 10,50 4,06 8,33 3,19
28 4,35 2,17 10,91 3,00 13,27 5,17 7,74 2,70
29 14,98 7,41 15,04 1,37 6,59 4,62 8,32 2,57
30 9,39 6,11 7,28 2,71 6,91 1,42 2,48 5,00
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
31 15,00 2,51 2,08 0,00 3,81 0,00 3,62 2,37
32 7,95 1,23 5,22 2,64 8,76 3,74 4,13 3,18
33 5,38 9,63 0,70 0,72 3,92 0,91 5,87 2,06
34 9,56 2,57 8,01 1,41 2,38 2,16 9,31 1,80
35 11,37 1,20 0,00 4,38 6,00 0,00 1,74 0,00
36 12,04 3,24 10,53 2,25 6,31 3,69 1,36 3,48
37 12,63 1,16 5,08 2,24 2,54 2,43 2,55 4,58
38 7,62 0,42 7,86 5,25 10,34 8,69 5,18 0,36
39 3,03 0,00 6,85 1,36 9,61 1,73 1,09 9,92
40 5,92 0,54 2,45 0,00 22,00 1,96 1,42 1,24
41 3,78 0,52 3,03 4,76 5,85 1,46 6,63 0,00
42 6,06 4,56 5,47 11,59 4,64 2,50 0,71 0,68
43 2,23 1,47 7,67 13,02 6,70 3,20 2,45 3,08
44 13,15 0,00 17,56 10,15 19,42 0,00 2,54 1,36
45 10,41 0,00 5,34 9,31 4,25 0,72 2,25 1,92
46 8,09 1,61 5,16 1,49 7,39 2,40 6,13 3,62
47 9,27 1,95 1,54 6,03 8,38 3,00 4,96 3,98
48 11,83 4,97 1,09 1,76 5,64 2,29 1,28 0,00
49 7,92 1,25 3,75 6,36 3,26 4,46 5,11 2,31
50 11,94 2,70 0,00 5,30 5,84 2,45 1,38 0,00
51 15,51 3,95 6,62 5,80 8,78 1,07 2,58 1,19
52 10,29 0,83 1,39 2,14 7,03 3,92 2,12 3,91
53 6,35 0,50 6,88 4,41 2,76 4,92 1,44 2,40
54 7,05 0,72 6,76 3,33 8,78 8,14 3,53 1,04
55 8,91 0,00 8,55 3,75 5,65 0,00 1,58 5,45
56 12,01 0,00 0,00 4,34 5,95 2,52 5,11 6,93
57 5,01 0,00 7,27 3,48 6,01 1,91 1,13 5,51
58 11,80 1,25 4,89 5,90 4,37 1,77 6,15 2,41
59 1,81 1,75 2,44 4,55 11,29 1,97 3,62 1,88
60 3,95 0,00 4,13 1,77 10,77 0,00 0,00 0,00
Tabla 3. Incidencia para Roya
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
1 20,83 0,00 12,50 37,50 25,00 8,33 29,17 4,17
2 25,00 16,67 20,83 25,00 12,50 12,50 37,50 12,50
3 12,50 8,33 16,67 0,00 25,00 8,33 16,67 37,50
4 16,67 0,00 37,50 25,00 33,33 16,67 12,50 20,83
5 0,00 0,00 37,50 8,33 37,50 20,83 8,33 12,50
6 0,00 16,67 16,67 4,17 25,00 16,67 8,33 37,50
7 41,67 12,50 25,00 8,33 16,67 4,17 4,17 16,67
8 8,33 16,67 8,33 25,00 16,67 29,17 12,50 0,00
9 4,17 8,33 0,00 66,67 4,17 4,17 12,50 0,00
10 29,17 12,50 20,83 33,33 20,83 20,83 4,17 12,50
11 16,67 0,00 25,00 16,67 8,33 25,00 4,17 29,17
12 0,00 8,33 16,67 8,33 16,67 4,17 12,50 4,17
13 25,00 0,00 50,00 8,33 25,00 16,67 8,33 8,33
14 20,83 0,00 16,67 4,17 12,50 10,00 0,00 12,50
15 20,83 12,50 8,33 8,33 0,00 4,17 4,17 33,33
16 8,33 33,33 12,50 33,33 16,67 16,67 16,67 25,00
17 25,00 37,50 25,00 33,33 58,33 29,17 16,67 8,33
18 33,33 0,00 0,00 0,00 45,83 25,00 4,17 20,83
19 12,50 8,33 20,83 20,83 29,17 16,67 29,17 8,33
20 33,33 12,50 0,00 16,67 29,17 8,33 12,50 25,00
21 16,67 0,00 8,33 29,17 20,83 20,83 16,67 12,50
22 37,50 16,67 0,00 0,00 20,83 16,67 45,83 0,00
23 29,17 16,67 20,83 33,33 20,83 20,83 0,00 29,17
24 25,00 0,00 12,50 0,00 29,17 25,00 33,33 12,50
25 37,50 0,00 45,83 54,17 20,83 12,50 12,50 25,00
26 0,00 29,17 33,33 0,00 16,67 12,50 25,00 25,00
27 29,17 8,33 0,00 8,33 12,50 20,83 16,67 25,00
28 33,33 8,33 33,33 37,50 12,50 0,00 16,67 20,83
29 16,67 20,83 25,00 20,83 0,00 16,67 8,33 20,83
30 12,50 0,00 16,67 8,33 16,67 29,17 16,67 4,17
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
31 25,00 4,17 20,83 25,00 54,17 45,83 0,00 29,17
32 29,17 0,00 50,00 25,00 20,83 25,00 0,00 45,83
33 41,67 0,00 25,00 33,33 37,50 20,83 0,00 29,17
34 33,33 8,33 16,67 0,00 12,50 37,50 4,17 0,00
35 20,83 0,00 16,67 20,83 20,83 29,17 33,33 0,00
36 29,17 0,00 41,67 4,17 16,67 8,33 50,00 20,83
37 0,00 25,00 4,17 70,83 33,33 16,67 0,00 4,17
38 0,00 0,00 0,00 25,00 20,83 16,67 16,67 29,17
39 45,83 20,83 8,33 20,83 8,33 16,67 4,17 33,33
40 0,00 0,00 25,00 4,17 33,33 25,00 25,00 4,17
41 25,00 0,00 37,50 33,33 33,33 25,00 29,17 16,67
42 50,00 0,00 29,17 8,33 45,83 8,33 20,83 25,00
43 33,33 0,00 58,33 25,00 50,00 29,17 20,83 50,00
44 33,33 54,17 25,00 20,83 12,50 12,50 0,00 12,50
45 4,17 20,83 12,50 12,50 20,83 8,33 20,83 0,00
46 29,17 16,67 12,50 45,83 25,00 0,00 12,50 29,17
47 29,17 12,50 54,17 20,83 29,17 41,67 20,83 25,00
48 25,00 4,17 20,83 4,17 4,17 33,33 20,83 8,33
49 50,00 25,00 79,17 20,83 41,67 20,83 16,67 0,00
50 50,00 0,00 33,33 70,83 12,50 25,00 37,50 4,17
51 33,33 8,33 16,67 20,83 20,83 45,83 45,83 29,17
52 37,50 20,83 33,33 33,33 25,00 4,17 20,83 37,50
53 16,67 4,17 12,50 45,83 20,83 20,83 25,00 20,83
54 16,67 29,17 8,33 16,67 41,67 25,00 20,83 16,67
55 8,33 16,67 12,50 45,83 16,67 37,50 33,33 16,67
56 41,67 25,00 50,00 25,00 25,00 62,50 25,00 25,00
57 29,17 20,83 20,83 16,67 20,83 12,50 25,00 62,50
58 0,00 0,00 25,00 16,67 58,33 29,17 12,50 12,50
59 20,83 20,83 12,50 20,83 45,83 0,00 12,50 0,00
60 29,17 16,67 29,17 54,17 8,33 8,33 29,17 12,50
Tabla 4. Severidad para Roya
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
1 11,72 0,00 0,82 8,08 3,91 1,74 2,77 0,26
2 8,11 0,78 2,99 11,53 3,54 2,90 6,26 1,80
3 6,57 0,07 4,62 0,00 6,45 1,42 1,60 4,97
4 8,51 0,00 3,72 5,11 13,98 1,46 5,69 1,23
5 0,00 0,00 4,86 1,78 8,46 3,37 4,69 1,43
6 0,00 0,90 1,79 1,79 3,36 4,58 2,72 5,95
7 10,66 2,61 5,92 0,60 1,61 3,42 1,09 2,25
8 2,70 4,81 1,39 7,37 6,16 2,07 8,59 0,00
9 1,00 2,88 0,00 17,99 3,09 0,41 2,74 0,00
10 9,36 1,18 3,34 1,50 2,36 1,94 5,62 1,16
11 3,65 0,00 4,08 2,15 4,37 3,96 1,05 3,21
12 0,00 0,38 1,06 0,77 5,96 2,19 4,92 0,39
13 5,54 0,00 14,29 2,72 2,69 1,53 0,50 0,52
14 8,94 0,00 4,65 0,39 1,97 1,90 0,00 0,41
15 4,47 4,38 0,74 0,85 0,00 0,59 1,22 3,21
16 3,00 5,18 1,65 7,30 0,95 1,46 2,17 3,21
17 5,69 9,47 2,35 6,33 9,87 4,63 2,89 0,79
18 8,44 0,00 0,00 0,00 6,10 4,21 0,39 1,94
19 5,69 1,09 3,85 8,89 9,01 3,83 6,46 0,72
20 10,72 0,72 0,00 3,34 4,48 0,78 1,13 2,59
21 5,49 0,00 0,99 5,40 2,33 7,85 2,48 1,44
22 8,27 12,09 0,00 0,00 1,19 1,33 9,33 0,00
23 11,44 7,08 3,29 21,66 7,63 5,19 0,00 10,26
24 4,80 0,00 1,83 0,00 8,58 6,84 13,14 0,82
25 7,95 0,00 6,57 4,48 4,80 3,43 6,63 2,87
26 0,00 8,14 7,06 0,00 3,82 1,72 3,06 6,68
27 10,11 2,24 0,00 7,79 2,77 4,73 2,89 4,99
28 8,43 1,09 6,38 2,88 5,53 0,00 7,20 6,68
29 6,09 5,37 3,28 2,37 0,00 3,40 1,45 3,24
30 1,15 0,00 1,32 12,55 5,20 3,67 4,79 0,30
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
31 6,22 1,04 3,06 2,01 9,49 12,67 0,00 3,23
32 6,29 0,00 7,53 4,00 7,12 9,56 0,00 7,70
33 14,16 0,00 8,84 7,03 9,63 1,25 0,00 2,83
34 10,48 0,79 4,51 0,00 1,38 2,41 0,69 0,00
35 3,50 0,00 2,41 2,26 1,65 14,40 3,99 0,00
36 10,72 0,00 4,50 1,33 4,81 0,82 6,97 3,36
37 0,00 7,21 1,36 6,86 8,24 4,03 0,00 1,35
38 0,00 0,00 0,00 3,94 5,37 1,22 4,18 3,76
39 6,98 4,79 2,02 1,76 1,01 7,03 2,70 4,17
40 0,00 0,00 2,84 1,22 9,12 4,63 5,85 1,39
41 8,60 0,00 4,73 5,73 10,92 2,67 14,52 0,47
42 14,59 0,00 8,12 1,09 10,60 4,69 11,53 3,69
43 10,39 0,00 12,99 3,68 9,80 12,03 8,67 10,04
44 5,40 10,06 4,05 2,43 5,34 3,91 0,00 1,12
45 1,15 7,62 0,76 2,09 7,23 1,79 3,22 0,00
46 15,24 0,61 2,48 7,03 5,57 0,00 4,56 7,93
47 11,75 0,85 7,50 6,51 9,90 15,45 5,28 8,40
48 2,40 2,72 3,69 1,22 5,40 9,71 1,42 1,46
49 12,18 5,56 21,77 1,81 2,96 2,45 1,90 0,00
50 12,53 0,00 6,93 19,97 4,78 7,19 3,12 2,45
51 5,41 0,85 3,62 9,71 4,62 8,22 9,40 8,04
52 7,82 0,61 6,97 7,90 10,61 1,04 8,48 8,09
53 5,25 0,76 0,89 4,91 9,66 5,09 12,62 1,30
54 9,44 5,80 0,81 4,73 13,20 6,67 0,06 0,56
55 4,75 6,39 1,42 7,42 11,59 1,41 4,89 1,15
56 15,81 10,92 18,77 2,46 9,31 19,19 11,50 5,23
57 5,45 11,29 9,13 6,16 6,47 6,41 8,74 6,39
58 0,00 0,00 7,85 2,45 13,88 22,63 3,34 7,31
59 15,20 6,18 2,44 6,18 20,54 0,00 5,09 0,00
60 9,56 4,79 3,24 13,22 4,55 7,75 8,85 4,42
Tabla 5. Incidencia para Tiro de Munición
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
1 16,67 0,00 0,00 12,50 20,83 8,33 20,83 0,00
2 0,00 16,67 20,83 16,67 12,50 4,17 25,00 20,83
3 16,67 12,50 16,67 0,00 16,67 8,33 4,17 16,67
4 0,00 16,67 8,33 16,67 4,17 12,50 12,50 20,83
5 0,00 0,00 25,00 8,33 25,00 16,67 4,17 20,83
6 20,83 8,33 25,00 0,00 0,00 12,50 0,00 29,17
7 0,00 0,00 37,50 20,83 4,17 12,50 8,33 33,33
8 12,50 0,00 20,83 16,67 16,67 20,83 33,33 0,00
9 20,83 0,00 0,00 20,83 8,33 0,00 8,33 0,00
10 33,33 8,33 8,33 12,50 16,67 12,50 0,00 0,00
11 16,67 0,00 16,67 25,00 16,67 4,17 8,33 16,67
12 25,00 0,00 4,17 8,33 0,00 12,50 0,00 0,00
13 20,83 0,00 4,17 12,50 8,33 16,67 0,00 4,17
14 0,00 25,00 0,00 4,17 8,33 0,00 0,00 4,17
15 0,00 0,00 12,50 4,17 8,33 0,00 20,83 8,33
16 0,00 0,00 0,00 0,00 29,17 0,00 25,00 20,83
17 33,33 0,00 20,83 0,00 29,17 8,33 8,33 20,83
18 25,00 0,00 0,00 0,00 20,83 0,00 16,67 4,17
19 25,00 20,83 16,67 29,17 25,00 4,17 0,00 12,50
20 37,50 16,67 0,00 33,33 16,67 16,67 20,83 8,33
21 16,67 37,50 29,17 0,00 8,33 25,00 33,33 0,00
22 20,83 0,00 0,00 0,00 12,50 20,83 20,83 0,00
23 4,17 0,00 16,67 37,50 12,50 12,50 12,50 8,33
24 25,00 0,00 20,83 0,00 25,00 16,67 8,33 4,17
25 12,50 12,50 33,33 45,83 4,17 8,33 8,33 12,50
26 0,00 0,00 41,67 25,00 0,00 12,50 0,00 20,83
27 8,33 0,00 0,00 0,00 8,33 8,33 12,50 8,33
28 20,83 37,50 25,00 16,67 0,00 12,50 12,50 12,50
29 0,00 25,00 33,33 0,00 20,83 12,50 4,17 12,50
30 25,00 0,00 29,17 0,00 12,50 8,33 12,50 20,83
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
31 25,00 8,33 50,00 12,50 25,00 0,00 0,00 12,50
32 20,83 0,00 33,33 25,00 12,50 0,00 16,67 20,83
33 20,83 0,00 0,00 8,33 0,00 12,50 50,00 0,00
34 20,83 16,67 8,33 16,67 45,83 41,67 0,00 37,50
35 37,50 0,00 41,67 0,00 20,83 33,33 12,50 4,17
36 0,00 12,50 50,00 12,50 16,67 29,17 16,67 12,50
37 0,00 12,50 0,00 4,17 29,17 0,00 0,00 0,00
38 0,00 8,33 0,00 8,33 12,50 16,67 20,83 25,00
39 12,50 0,00 4,17 0,00 12,50 20,83 8,33 0,00
40 33,33 0,00 0,00 16,67 12,50 20,83 0,00 0,00
41 0,00 8,33 50,00 8,33 12,50 0,00 4,17 12,50
42 37,50 16,67 0,00 0,00 20,83 25,00 0,00 4,17
43 16,67 0,00 16,67 0,00 0,00 12,50 4,17 33,33
44 29,17 41,67 0,00 0,00 4,17 25,00 0,00 33,33
45 29,17 0,00 0,00 29,17 4,17 20,83 12,50 0,00
46 41,67 0,00 16,67 8,33 12,50 16,67 16,67 12,50
47 8,33 0,00 58,33 0,00 12,50 37,50 16,67 0,00
48 41,67 0,00 0,00 0,00 16,67 0,00 16,67 0,00
49 29,17 0,00 0,00 0,00 29,17 16,67 20,83 0,00
50 29,17 0,00 0,00 8,33 4,17 20,83 0,00 4,17
51 0,00 0,00 29,17 20,83 0,00 20,83 41,67 12,50
52 29,17 20,83 25,00 20,83 20,83 25,00 0,00 16,67
53 25,00 0,00 12,50 0,00 25,00 0,00 0,00 8,33
54 0,00 8,33 16,67 0,00 12,50 0,00 8,33 8,33
55 0,00 0,00 25,00 0,00 20,83 0,00 4,17 20,83
56 8,33 0,00 12,50 8,33 16,67 33,33 12,50 12,50
57 0,00 0,00 12,50 25,00 20,83 8,33 0,00 12,50
58 0,00 0,00 33,33 8,33 8,33 16,67 8,33 12,50
59 0,00 0,00 45,83 8,33 8,33 8,33 16,67 50,00
60 20,83 0,00 20,83 20,83 8,33 0,00 12,50 12,50
Tabla 6. Severidad para Tiro de Munición
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
1 6,47 0,00 0,00 3,71 3,22 0,71 2,23 0,00
2 0,00 1,41 1,03 1,41 4,01 0,42 1,17 2,15
3 3,66 0,58 8,41 0,00 2,55 0,88 2,44 1,21
4 0,00 0,88 3,11 1,57 1,45 0,42 4,52 1,34
5 0,00 0,00 5,17 1,39 2,58 2,81 0,68 2,58
6 4,54 1,08 2,87 0,00 0,00 0,52 0,00 1,95
7 0,00 0,00 5,46 2,68 1,71 1,63 3,11 2,81
8 3,47 0,00 2,31 1,13 1,89 1,27 3,29 0,00
9 3,28 0,00 0,00 2,44 2,48 0,00 1,75 0,00
10 7,86 1,42 2,35 1,84 4,55 1,46 0,00 0,00
11 1,96 0,00 4,48 2,81 2,38 1,67 0,05 5,16
12 5,46 0,00 1,67 2,13 0,00 0,59 0,00 0,00
13 6,33 0,00 2,86 1,47 1,03 1,15 0,00 2,76
14 0,00 2,10 0,00 1,39 1,16 0,00 0,00 0,14
15 0,00 0,00 1,97 1,80 2,90 0,00 1,56 0,15
16 0,00 0,00 0,00 0,00 4,21 0,00 1,62 1,22
17 8,52 0,00 1,41 0,00 1,43 0,93 2,08 2,51
18 3,03 0,00 0,00 0,00 3,31 0,00 1,51 1,86
19 6,24 0,86 20,34 3,38 0,98 1,82 0,00 0,83
20 7,65 1,09 0,00 6,06 3,15 1,09 1,56 1,63
21 3,18 3,85 2,72 0,00 0,98 1,51 5,44 0,00
22 2,46 0,00 0,00 0,00 2,44 1,07 3,64 0,00
23 4,60 0,00 1,38 4,27 0,91 0,72 1,39 4,90
24 7,70 0,00 1,52 0,00 9,07 0,59 2,13 1,25
25 4,04 3,28 2,76 6,38 1,56 0,72 1,87 1,16
26 0,00 0,00 2,94 1,87 0,00 0,09 0,00 1,28
27 2,84 0,00 0,00 0,00 4,83 0,96 4,33 1,84
28 4,65 2,40 1,77 2,97 0,00 0,85 0,80 0,37
29 0,00 2,91 2,38 0,00 4,61 2,65 2,19 1,58
30 11,51 0,00 2,24 0,00 3,87 0,41 1,58 2,49
c1 c2 c3 c4 c5 c6 c7 c8
31 6,85 0,45 13,86 0,77 3,13 0,00 0,00 6,96
32 2,19 0,00 1,59 3,01 2,21 0,00 2,55 3,20
33 9,18 0,00 0,00 1,19 0,00 1,09 8,21 0,00
34 7,12 1,10 1,47 1,59 3,50 2,43 0,00 5,46
35 9,53 0,00 8,83 0,00 3,95 1,85 2,39 0,85
36 0,00 1,04 3,34 2,62 3,24 2,16 2,23 1,28
37 0,00 0,42 0,00 1,46 5,22 0,00 0,00 0,00
38 0,00 0,04 0,00 1,77 0,79 1,47 2,12 1,25
39 4,01 0,00 4,67 0,00 3,05 1,09 0,76 0,00
40 6,13 0,00 0,00 3,13 7,17 1,05 0,00 0,00
41 0,00 1,45 15,52 2,17 5,72 0,00 1,15 0,84
42 6,70 0,85 0,00 0,00 6,12 1,62 0,00 2,15
43 4,62 0,00 4,41 0,00 0,00 1,12 0,42 3,92
44 9,37 4,56 0,00 0,00 17,84 2,06 0,00 2,66
45 5,24 0,00 0,00 5,85 1,22 0,96 2,33 0,00
46 5,81 0,00 1,64 1,53 4,30 1,09 1,46 3,96
47 1,77 0,00 4,98 0,00 2,00 1,61 4,09 0,00
48 10,14 0,00 0,00 0,00 1,61 0,00 2,18 0,00
49 4,40 0,00 0,00 0,00 2,17 1,09 3,15 0,00
50 2,89 0,00 0,00 1,82 1,00 0,75 0,00 2,15
51 0,00 0,00 3,94 3,03 0,00 1,59 3,62 4,46
52 3,25 1,09 2,84 2,41 3,47 2,17 0,00 3,49
53 4,47 0,00 1,17 0,00 4,75 0,00 0,00 1,21
54 0,00 0,73 3,16 0,00 3,09 0,00 1,44 0,12
55 0,00 0,00 5,51 0,00 5,30 0,00 4,29 0,48
56 3,73 0,00 0,93 0,58 7,87 1,64 1,46 2,42
57 0,00 0,00 4,31 1,76 7,17 0,82 0,00 7,15
58 0,00 0,00 6,15 0,59 1,98 1,09 2,43 2,29
59 0,00 0,00 5,23 1,46 11,77 0,71 2,19 8,98
60 2,76 0,00 4,94 3,44 2,92 0,00 2,59 4,29
ANEXO 9. Propuesta en el manejo integrado de las enfermedades
que afectan hojas, flores y frutos
Las enfermedades antes descritas son las de mayor incidencia, ocasionando
elevadas pérdidas económicas al momento de comercializar los frutos, debido
a la baja calidad del producto comercial ofrecido al consumidor y a la industria.
Por otra parte, al considerar los agroquímicos aplicados, utilizadas por los
productores, se contribuye a deteriorar la calidad del fruto y causa
contaminación del medio ambiente.
Tomando en cuenta esta situación, se proponen un conjunto de medidas
fitosanitarias enmarcadas bajo el enfoque de Manejo Integrado de Plagas
(MIP), y se recomiendan las estrategias de control considerando el menor
impacto ambiental, a saber:
a.- En las plantaciones de duraznero se deben recolectar todos los frutos
dañados, los cuales serán quemados y enterrados fuera de la plantación, a fin
de evitar focos de perpetuación y diseminación de los patógenos causantes de
las enfermedades.
b.- Cuando se realiza el desfoliado de las plantas, es necesario eliminar los
frutos fuera de época, secos o momificados que permanezcan adheridos a las
ramas, cortar las ramitas secas o con exudado de goma, quemar y enterrar ese
material lejos de la plantación y aplicar un cicatrizante en la superficie de corte
(pintura de caucho más fungicida a base de cobre.
c.- Como las heridas ocasionadas por la poda facilitan el ataque de hongos, las
tijeras u otras herramientas usadas en esa práctica, deben ser desinfectadas
con solución de cloro 5% y la herida debe ser cicatrizada como se indicó
anteriormente.
d.- Al planificar tratamientos químicos con productos sistémicos y de contacto
mezclados con adherente, es imprescindible que el productor reconozca la
enfermedad que está controlando y su fluctuación en el tiempo (monitoreo),
para seleccionar correctamente el tipo de producto y momento de aplicación.
También es importante recordar que el uso indiscriminado de fungicidas
sistémicos induce la aparición de poblaciones resistentes de hongos.
e.- Sólo deben aplicarse productos químicos en áreas con árboles afectados y
no en toda la unidad de producción, para evitar daños a los polinizadores y
enemigos naturales (entomopatógenos)
