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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
Evaluación del perfil hepático en matrices porcinas F1 a distinto número de partos.
Trabajo de Grado presentado como requisito para obtener el Título de Médico Veterinario Zootecnista
Autor: Moreira Loor José Enrique. Tutor: PhD. Aragón Vásquez Eduardo Fabián.
Quito, Marzo del 2018.
ii
© DERECHOS DE AUTOR.
Yo JOSÉ ENRIQUE MOREIRA LOOR en calidad de autor y titular de los
derechos morales y patrimoniales del trabajo de titulación “EVALUACIÓN
DEL PERFIL HEPÁTICO EN MATRICES PORCINAS F1 A DISTINTO
NÚMERO DE PARTOS”, modalidad presencial, de conformidad con el
Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS
CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN, concedo a favor de
la Universidad Central del Ecuador una licencia gratuita, intransferible y
no exclusiva para el uso no comercial de la obra, con fines estrictamente
académicos. Conservo a mi favor todos los derechos de autor sobre la
obra, establecidos en la normativa citada.
Así mismo, autorizo a la Universidad Central del Ecuador para que realice
la digitalización y publicación de este trabajo de investigación en el
repositorio virtual, de conformidad a lo dispuesto en el Art. 144 de la Ley
Orgánica de Educación Superior.
El autor declara que la obra objeto de la presente autorización es original
en su forma de expresión y no infringe el derecho de autor de terceros,
asumiendo la responsabilidad por cualquier reclamación que pudiera
presentarse por esta causa y liberando a la Universidad de toda
responsabilidad.
José Enrique Moreira Loor.
CC. 1311857252
iii
APROBACIÓN DEL TUTOR
DEL TRABAJO DE TITULACIÓN
Yo Eduardo Aragón Vásquez en mi calidad de tutor del trabajo de
titulación, modalidad presencial, elaborado por JOSÉ ENRIQUE
MOREIRA LOOR; cuyo título es: “EVALUACIÓN DEL PERFIL
HEPÁTICO EN MATRICES PORCINAS F1 A DISTINTO NÚMERO DE
PARTOS”, previo a la obtención del Grado de Médico Veterinario y
Zootecnista; considero que el mismo reúne los requisitos y méritos
necesarios en el campo metodológico y epistemológico, para ser
sometido a la evaluación por parte del tribunal examinador que se
designe, por lo que lo APRUEBO, a fin de que el trabajo sea habilitado
para continuar con el proceso de titulación determinado por la Universidad
Central del Ecuador.
En la ciudad de Quito, a los 21 días del mes de Febrero de 2017.
___________________________________ PhD. Eduardo Fabián Aragón Vásquez DOCENTE-TUTOR CC. 1709773434
iv
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL
El tribunal constituido por: la Dra. Nadia López, Dr. Edison Encalada, y la
Dra. Martha Naranjo.
Luego de receptar la presentación oral del trabajo de titulación previo a la
obtención del título de Médico Veterinario y Zootecnista, presentado por el
señor José Enrique Moreira Loor.
Con el título “Evaluación del perfil hepático en matrices porcinas F1 a
distinto número de partos”.
Emite el siguiente veredicto: ______________________________
Fecha: ________________________ Para constancia de lo actuado firman:
Nombre y Apellido Calificación Firma
Presidente Dra. Nadia López _______ _______________
Vocal 1 Dr. Edison Encalada _______ _______________
Vocal 2 Dra. Martha Naranjo _______ _______________
v
DEDICATORIA.
A mis padres, Carlos y Pilar, piezas claves para lograr este sueño, que
gracias a su apoyo incondicional me respaldaron durante este largo
camino.
De manera especial dedico éste trabajo a mi hermanita querida Liseth,
quién se nos adelantó en ésta vida, partiendo dolorosamente de este
mundo, y que desde el cielo estoy seguro me seguirá bendiciendo.
A mis abuelos, tíos, y primos, que a la distancia, estuvieron conmigo en
este proceso; y junto a amigos, forman parte de este logro alcanzado.
A esta grandiosa facultad, quién me dio la oportunidad de formarme como
profesional, conocer y amar esta noble carrera.
José Moreira Loor.
vi
AGRADECIMIENTOS.
Gracias a Dios, por permitirme vivir, y conocer lo hermosa que es la vida y
lo justa que puede llegar a ser. A la vida por haberme permitido conseguir
esta meta anhelada.
A mis padres, que me forjaron valores, y me brindaron su apoyo en todo
momento, gracias a ustedes se cumplió con un sueño.
A mi estimada amiga Shirley, por ser una excelente persona, gracias por
acompañarme en los momentos más difíciles y dolorosos en ésta etapa
de mi vida, por su siempre aliento para alcanzar éste logro, y por el
valioso apoyo brindado.
A mis amigos, Xavier por su amistad, su inmensa bondad, sus consejos y
su aliento motivacional para continuar con el proyecto, a Nicole por
brindarme su ayuda y por transmitirme conocimientos del laboratorio.
A la granja porcina LUTQUIM. S.A, por abrirme las puertas de su
empresa, y así realizar el presente trabajo, a su gerente, José Mendoza,
gracias por su respaldo, acogida, su calidez y su bondad; gracias al
personal de la granja a Alexandra, a Ramón, a Jesús por prestarme su
incondicional ayuda en las prácticas del presente trabajo.
Gracias también a mis profesores de la facultad, en especial; al Dr.
Eduardo Aragón por su, amistad, su ayuda logística, orientación, por su
apoyo incondicional; a las Dras. Nadia López, Ana Burgos y Dra. Pamela
Martínez por el tiempo brindado para orientarme, aconsejarme,
compartirme conocimientos, y despejar dudas en el presente trabajo.
Hasta hoy, no ha sido sencillo todo este proceso, pero gracias a sus
aportes de amor, bondad, motivación y apoyo, lo difícil de haber
alcanzado ésta meta, se ha notado menos. A todos ustedes; mil gracias
por todo.
vii
INDICE GENERAL.
DERECHOS DE AUTOR ........................................................................... ii
APROBACIÓN DEL TUTOR DEL TRABAJO DE TITUTACIÓN ............... iii
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL / TRIBUNAL .................. iv
DEDICATORIA .......................................................................................... v
AGRADECIMIENTOS .............................................................................. vi
INDICE DE CONTENIDO ......................................................................... vii
LISTA DE CUADROS …........………………………………………………….x
LISTA DE FIGURAS ................................................................................ xi
LISTA DE ANEXOS .................................................................................. xii
RESUMEN .............................................................................................. xiii
ABSTRACT .............................................................................................. xv
CAPITULO I. ............................................................................................. 1
INTRODUCCIÓN ...................................................................................... 1
OBJETIVOS. .............................................................................................. 2
OBJETIVO GENERAL. .................................................................... 2
OBJETIVOS ESPECIFICOS. ........................................................... 2
HIPOTESIS. ............................................................................................... 2
H01. ................................................................................................. 2
Hi1. .................................................................................................. 2
H02. ................................................................................................. 2
Hi2. .................................................................................................. 2
CAPÍTULO II. ............................................................................................. 3
MARCO TEORICO. ................................................................................... 3
1. Antecedentes. .......................................................................................................... 3
2. Aspectos reproductivos y función hepática en la cerda. ............................. 4
2.1. Lactancia............................................................................................................ 4
2.2. Alteraciones de hígado. ................................................................................. 7
viii
2.3. Perfil hepático en cerdos. ............................................................................. 8
2.3.1. Alanino amino transferasa (ALT). ................................................... 8
2.3.2. Gama glutamil transferasa (GGT). ................................................. 9
2.3.3. Proteinas Totales. ................................................................................ 9
2.3.3.1. Albumina. ................................................................................... 9
2.3.3.2. Globulinas. ................................................................................ 9
2.3.4. Nitrógeno Ureico (BUN). ................................................................. 10
CAPÍTULO III. .......................................................................................... 11
MATERIALES. .......................................................................................... 11
Reactivos. ...................................................................................... 11
Equipo. ........................................................................................... 11
Insumos. ........................................................................................ 11
METODOLOGÍA. ...................................................................................... 11
Tipo de investigación. .................................................................... 11
Población objeto de estudio. .......................................................... 11
Ubicación del estudio. .................................................................... 12
Unidades de muestreo. .................................................................. 12
Factores en estudio. ...................................................................... 12
Variable independiente. ....................................................... 12
Variables dependientes. ...................................................... 13
Análisis estadístico. ....................................................................... 13
METODOS ESPECIFICOS DEL EXPERIMENTO. .................................. 14
1. Registro del peso de la camada en las cerdas. .......................................... 14
2. Recolección y almacenamiento de muestras. ............................................. 14
3. Transporte de muestras hasta el laboratorio. .............................................. 15
4. Procesamiento de Muestras. ............................................................................ 15
ALT. ............................................................................................... 15
Proteínas Totales. .......................................................................... 16
Albumina. ....................................................................................... 16
Globulinas. ..................................................................................... 17
BUN. .............................................................................................. 17
GGT. .............................................................................................. 17
ix
CAPÍTULO IV. .......................................................................................... 19
Resultados y Discusión. ........................................................................... 19
1. Perfil hepático en relación al número de partos. ....................................... 21
1.1. ALT frente al número de partos en la cerda. ....................................... 22
1.2. GGT frente al número de partos en la cerda. ...................................... 23
1.3. Proteínas Totales frente al número de partos en la cerda. ............. 23
1.4. Albumina frente al número de partos en la cerda. ............................. 24
1.5. Globulinas frente al número de partos en la cerda. ........................... 25
1.6. BUN frente al número de partos en la cerda. ...................................... 26
2. Perfil hepático en relación al peso de la camada. ..................................... 28
2.1. ALT, GGT, frente al peso de la camada al destete. .......................... 29
2.2. Proteínas Totales frente al peso de la camada al destete. ............. 31
2.3. Albumina, Globulinas frente al peso de la cama al destete. ........... 32
2.4. BUN frente al peso de la camada al destete. ...................................... 33
CAPÍTULO V. ........................................................................................... 35
Conclusiones. ........................................................................................... 35
Recomendaciones. ................................................................................... 35
BIBLIOGRAFÍA. ...................................................................................... 36
x
LISTA DE CUADROS.
CUADRO Pág.
Cuadro N° 1. Valores referenciales para enzimas y metabolitos hepáticos
en cerdos ...………..…........…………………………………………………..10
Cuadro N° 2. Variable independiente ...................................................... 12
Cuadro N°3. Variable dependiente .......................................................... 13
Cuadro N°4. Resultados del perfil hepático de las cerdas en estudio .... 19
Cuadro N°5. Valores promedios para cada enzima y metabolito analizado
................................................................................................................. 20
Cuadro N°6. Correlaciones perfil hepático en relación al número de
partos. ..................................................................................................... 21
Cuadro N°7. Pesos de la camada de cada cerda ................................... 28
Cuadro N°8. Correlaciones entre perfil hepático y el peso promedio de la
camada. ................................................................................................... 29
xi
LISTA DE FIGURAS.
FIGURA Pág.
Figura N°1. Dispersograma, ALT frente al número de partos en las cerdas
. ................................................................................................................ 22
Figura N°2. Dispersograma GGT frente al número de partos en las cerdas
................................................................................................................. 23
Figura N°3. Dispersograma PT frente al número de partos en las cerdas.
................................................................................................................. 24
Figura N°4. Dispersograma Albumina frente al número de partos en las
cerdas. ..................................................................................................... 25
Figura N°5. Dispersograma Globulinas frente al número de partos en las
cerdas.. ................................................................................................... 26
Figura N°6. Dispersograma BUN frente al número de partos en las
cerdas. .................................................................................................... 27
Figura N°7. Dispersograma Correlación ALT frente al Peso de la
Camada.. .................................................................................................. 30
Figura N°8. Dispersograma Correlación GGT frente al Peso de la
camada..................................................................................................... 30
Figura N°9. Dispersograma Correlación PT frente al peso de la camada...
................................................................................................................. 31
Figura N°10. Dispersograma Correlación Albumina frente al peso de la
camada..................................................................................................... 32
Figura N°11. Dispersograma Correlación Globulinas frente al peso de la
camada..................................................................................................... 33
Figura N°12. Dispersograma, Correlación BUN frente al peso de la
camada..................................................................................................... 34
xii
LISTA DE ANEXOS.
ANEXO Pág.
Anexo N°1. Registro del peso del lechón al destete. ............................... 45
Anexo N°2. Toma de muestra sanguínea en cerdas. .............................. 45
Anexo N°3. Obtención de suero sanguíneo.. ......................................... 46
Anexo N°4. Procesamiento de las muestras.. ......................................... 46
Anexo N°5. Resultados de perfil hepático.. ............................................. 47
xiii
TEMA: “Evaluación del perfil hepático en matrices porcinas F1 a distinto
número de partos”.
Autor: José Enrique Moreira Loor.
Tutor: PhD. Eduardo Aragón Vásquez.
RESUMEN
El presente estudio se lo realizó con el objetivo de determinar la
existencia o ausencia de asociación entre el número de partos en las
cerdas, el peso promedio de la camada al destete y la integridad del tejido
hepático, mediante la medición en suero sanguíneo, y posterior análisis
de datos, de las enzimas, Alanino-amino transferasa (ALT) y Gama-
glutamil tranferasa (GGT), además de las Proteinas Totales (PT),
Albumina, Globulinas y BUN. Para el estudio se utilizaron 20 cerdas,
divididas en 5 grupos; conformados de 4 animales cada uno, de 0, 1,2, 3 y
4 partos, las muestras sanguíneas se las obtuvieron el día de destete (28
días), en el cual también se registró los pesos de los lechones. En el
procesamiento de las muestras y análisis de correlación se determinó la
falta de asociación entre las enzimas ALT y GGT, (r= -0,231 y 0,052,
respectivamente; P= > 0,05 para ambos casos), en tanto que las
Proteínas Totales (PT) en relación al número de partos, se evidenció la
falta de relación (r= 0,086; P= >0,05), las fracciones de PT, albumina y
globulinas, tampoco presentaron asociación con el número de partos (r= -
0,34 y -0,064; P= >0,05). Por último, no hubo relación entre el BUN con el
número de partos (r= 0,012; P= > 0,05).
Bajo el mismo procedimiento se determinó la falta de asociación entre
ALT, GGT y el peso promedio de la camada (r= -0.05 y -0,091,
respectivamente; P= >0,05, en ambos casos), de igual forma se evidenció
la nula asociación con los valores de PT (r= 0,498; P=< 0,05), sus
fracciones, albumina y globulinas, también evidenciaron la inexistencia de
asociación (r= 0,231 y 0,384, respectivamente; P= > 0,05 en ambos).
xiv
Finalmente, se comprobó la falta de relación entre el BUN y el peso
promedio de la camada (r= -0,329; P= > 0,05).
Palabras claves: Parto, Camada, ALT, GGT, Proteínas Totales,
Albumina, Globulinas, BUN.
xv
TITLE: “Evaluation of the hepatic profile in porcine F1 matrices at different
number of births”.
Author: José Enrique Moreira Loor.
Tutor: PhD. Eduardo Aragón Vásquez.
ABSTRACT
The present study was carried out with the objective of determining the
existence or absence of association between the number of births in the
sows, the average weight of the litter at weaning and the integrity of the
liver tissue, by measurement in blood serum, and later analysis of data, of
the enzymes, Alanino-amino transferase (ALT) and Gama-
glutamyltransferase (GGT), in addition to the Total Proteins (PT), Albumin,
Globulins and BUN. For the study 20 sows were used, divided into 5
groups; conformed of 4 animals each, of 0, 1,2, 3 and 4 births, the blood
samples were obtained on the day of weaning (28 days), in which the
weights of the piglets were also recorded. In the processing of the
samples and correlation analysis, the lack of association between the ALT
and GGT enzymes was determined (r = -0.231 and 0.052, respectively, P
=> 0.05 for both cases), while the Total Proteins (PT) in relation to the
number of births, the lack of relationship was evidenced (r = 0.086, P =>
0.05), the fractions of PT, albumin and globulins, did not show an
association with the number of deliveries (r = - 0.34 and -0.064; P =>
0.05). Finally, there was no relationship between the BUN and the number
of births (r = 0.012, P => 0.05).
Under the same procedure the lack of association between ALT, GGT,
and the average litter weight (r = -0.05 and -0.091, respectively; P => 0.05
in both cases) was determined, similarly evidenced the no association with
PT values (r = 0.498; P = <0.05), their fractions, albumin and globulins,
also showed no association (r = 0.231 and 0.384, respectively; P => 0.05
xvi
in both). Finally, the lack of correlation between BUN and the average litter
weight was found (r = -0.329, P => 0.05).
Key words: Labor, Litter, ALT, GGT, Total Proteins, Albumin, Globulins,
BUN.
1
CAPÍTULO I.
INTRODUCCIÓN.
Durante las últimas décadas se ha tenido grandes avances, con gran
rapidez, en cuestiones científicas y practicas sobre la producción porcina
(Troillet, 2005).
Actualmente la producción porcina moderna a nivel global, se orienta
mucho al aspecto de la mejora genética de sus cerdas reproductoras, lo
que ha llevado consigo, al incremento del promedio del número de
lechones al parto, siendo para el año 2000 un promedio de 11,5 lechones
a 13,3 lechones para el año 2012 (Martínez, 2013). Considerando que las
actuales líneas genéticas, son una evolución de las cerdas de hace varias
décadas, se hace necesario adaptarse a los constantes avances en
temas de alimentación, instalaciones, condiciones de sanidad, y manejo
que se le debe dar a la cerda en su etapa reproductiva (Palomo, 2009).
Sin embargo, hasta el día de hoy no se han realizados estudios
inherentes a los potenciales cambios que puede sufrir el tejido hepático a
consecuencia del número de partos y/o peso de la camada en esta
especie.
En términos generales, es conocido que durante la gestación, parto, y
lactancia, se producen cambios, estructurales, fisiológicos y metabólicos
en cualquier especie animal.
El hígado es el órgano interno más grande del cuerpo, y el segundo más
grande del organismo, después de la piel. En la función hepática puede
verse implicado, el reajuste de las moléculas que son utilizadas por todos
los tejidos el cerdo, dependiendo de sus necesidades fisiológicas del
momento, éste órgano es muy versátil, ya que está implicado en
funciones tanto endocrinas como exocrinas, además de cumplir funciones
metabólicas, y ser un órgano de depósito y almacenamiento de muchas
2
sustancias del organismo (Tang, Ruan, & Yin, 2013). Dentro de la
importancia que tiene este órgano, en relación al desempeño reproductivo
de la cerda, cabe destacar que este órgano, participa en la síntesis de
azucares, proteínas y lípidos de la leche para la lactancia del lechón,
además de la síntesis de globulinas (a excepción de las ɣ globulinas), del
calostro (Contreras, 1998).
Por lo expuesto anteriormente, el objetivo de este trabajo fue a través de
parámetros hepáticos, determinar si existe relación entre la integridad del
tejido hepático y el número de parto.
OBJETIVOS
OBJETIVO GENERAL:
Determinar los valores séricos de metabolitos y enzimas hepáticas,
en matrices porcinas F1 a distinto número de partos.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS:
Determinar la asociación o no entre el número de partos y los
valores de metabolitos y enzimas del perfil hepático.
Evaluar la asociación entre, el peso de la camada con la
funcionalidad del tejido hepático en cerdas.
HIPOTESIS
H01: El número de partos en las cerdas no influye en los valores
del perfil hepático.
Hi1: El número de partos en las cerdas influye en los valores del
perfil hepático.
H02: El peso de la camada al destete no influye en los valores del
perfil hepático.
Hi2: El peso de la camada al destete influye en los valores del
perfil hepático.
3
CAPITULO II.
MARCO TEÓRICO.
1. Antecedentes.
El cerdo (Sus scrofa) fue domesticado hace miles de años, siendo
considerado desde entonces como una fuente de alimento para el
hombre, el cual aprovecha de los productos y subproductos que brinda la
especie. Actualmente la carne de cerdo es la de mayor consumo y de
mayor demanda a nivel mundial; seguida por la carne de pollo y la carne
de res. La producción mundial de porcinos se concentra en China,
seguida en orden de importancia, por la Unión Europea, Estados Unidos y
Brasil (Cumbe, 2014).
Si bien es cierto; Ecuador no es un país que caracteriza por ser un gran
productor porcino, el país viene adquiriendo un ritmo de crecimiento muy
dinámico, incrementando su producción y consumo anual, siendo el
consumo per cápita para el año 2013, de 10Kg/persona/año, finalmente
hay que mencionar que el sector porcino del país aporta con el 2% del
PIB agro-pecuario (Espinoza, 2016).
Es menester citar los avances y limitaciones que este sector presenta en
la actualidad; en cuanto a los avances del sector se debe mencionar la
importante evolución en cuanto a los parámetros reproductivos, dada por
la mejora de la genética de esta especie, dando como resultado bajo
ciertas condiciones, la obtención de más de 27 lechones destetados por
cerda al año; los parámetros productivos también presenta una evolución
favorable, ya que se observa una mejora en cuanto a los índices de
4
conversión alimenticia, y los márgenes de rentabilidad a partir de la venta
de mayor número de cerdos (Jacho, 2016).
Así mismo; se destacan las alianzas que se han venido dando entre
importantes entidades como ASPE(Asociación de Porcicultores del
Ecuador), MAE (Ministerio del Ambiente), y AGROCALIDAD; los cuales
trabajan en conjunto para establecer protocolos y fomentar las Buenas
Practicas Pecuarias (BPP), el tema de sanidad también se ha venido
fomentando con la creación del proyecto de control y erradicación de
Peste Porcina, además se cuenta con vigilancia permanente para
enfermedades como influenza porcina, Aujezky, síndrome respiratorio
disgenésico porcino, y enfermedades bacterianas (Espinoza, 2016).
Lamentablemente, estos avances se ven opacados, por la falta de
transferencia de tecnología ya que, tradicionalmente los países
sudamericanos, han dependido de la tecnología elaborada en países del
primer mundo. El tema ambiental, es otro que carece de la importancia
que merece. En cuanto a investigaciones en el país, las investigaciones
son escazas, especialmente en lo relacionado a situaciones de cambios
fisiológicos que presenta la cerda en sus diferentes etapas reproductivas.
2. Aspectos reproductivos y función hepática en la cerda.
2.1. Lactancia.
El número de partos al año, es un gran indicador de productividad en la
cerda, lo cual está ligada a la lactancia; en sistemas intensivos de
confinamiento, la lactancia en cerdas, dura de 7 a 21 días, este
acortamiento del periodo normal de lactancia tiene como objetivo de tener
mayor número de partos al año (PCA), sin embargo esta práctica tiene
desventajas económicas, por concepto de manejo y alimentación de los
lechones al destete (INTA, 2010).
5
La lactogenesis, entendiéndose a la misma como, el inicio de la lactación,
el cual implica la diferenciación del tejido mamario, para iniciar la fase
secretora, se la puede dividir en dos fases: la fase uno, la cual se asocia
con la formación de calostro, el cual es rico en inmunoglobulinas, y la fase
dos, asociada a la síntesis de lactoalbumina y lactosa, fase que en las
cerdas se produce inmediatamente antes o durante el mismo parto
(Pérez, 2009).
En medicina veterinaria, la galactopoyesis o lactopoyesis, está mejor
comprendida en los bovinos, y pequeños rumiantes, no obstante, en otras
especies, como la porcina, el hígado interviene con varios procesos, para
la síntesis de leche. En el hígado se cumplen varios procesos
metabólicos, como la gluconeogénesis, el metabolismo de glucosa y
glucógeno, la oxidación de ácidos grasos, y la síntesis de globulina
(exceptuando las ɣ globulinas) (Nuñez & Bouda, 2007). Elementos que
participan en la síntesis láctea.
La leche de la cerda es rica en grasa y baja en proteínas, siendo la
proporción de energía/ proteína de 9,2 a 10,4 g de proteína/MJ de energía
bruta; por lo cual se considera que la leche de la cerda está diseñada
para la supervivencia de los lechones, a través de la deposición de grasa
corporal en el lechón, lo cual favorece a la mantención de la temperatura
corporal, y almacenamiento de reservas de grasa, además esta baja
proporción de proteínas para los lechones, actúa como mecanismo de
defensa, en ciertas enfermedades, como las diarreas, las cuales tienen
alto contenido de proteínas; ya que el exceso de proteínas es convertido
en urea, el cual actúa como diurético, lo que aceleraría la deshidratación
del lechón (Morillo et.al, 2013)
La producción de leche también está regulado por dos hormonas
básicamente; la prolactina y la hormona del crecimiento, para el
mantenimiento de la galactopoyesis, la prolactina juega un papel
primordial en el cual esta hormona actúa a nivel del epitelio mamario de
forma directa o a través de factores de transcripción, similares a la
6
hormona de crecimiento, que actúa de forma directa en la glándula o por
medio de la producción de IGF-1 (Factor de Crecimiento Insulínico) local,
o producida en el hígado (Sepúlveda, 2013).
La producción de calostro y leche en las cerdas, se produce como en
vacas lecheras y en todos los mamíferos, los nutrientes de la sangre son
sintetizados por células epiteliales de los alveolos mamarios, en
componentes de la leche, para luego ser transportados a la luz alveolar,
teniendo como particularidad, que la glándula mamaria de las cerdas no
contiene cisternas, por lo cual la leche sólo se almacena en los alveolos y
conductos lácteos (Eliasson & Isberg, 2011).
Es importante citar que el calostro, en especies con gestación epitelio –
corial, como la cerda, se hace obligatoria la toma por parte de las crías,
debido a que en la gestación el traspaso de anticuerpos maternales es
insuficiente para los recién nacidos. El calostro además de constituirse
como una gran fuente de energía, también constituye una fuente de
inmunoglobulinas y proteínas para el lechón (Falceto, et. al, 2012).
Entre los requerimientos para la producción de leche se los puede divide
en dos grupos de factores, los extrínsecos, en los cuales están las
construcciones, manejo y la dieta, y dentro de los factores intrínsecos
destacan la genética, el tamaño corporal, la ingestión de alimentos, el
metabolismo y su regulación, y de la fisiología del hígado, el tracto
digestivo y la glándula mamaria. Este último órgano, necesita para la
producción de leche de, agua, glucosa, acetato, aminoácidos, ácidos
grasos de cadena larga, y 3 hidroxibutirato, éste último elemento se lo
obtiene de la conversión del butirato por absorción del intestino y el paso
a través del hígado; mientras que el acetato y los aminoácidos son
absorbidos directamente del intestino (Recabarren, 2000).
La glucosa es utilizada para la síntesis de lactosa, y el incremento en su
requerimiento se asocia con la gluconeogénesis a partir de propionato,
lactato, aminoacidos y glicerol en el tejido hepático, y la mayor ingestión
en la dieta; lo cual indica el incremento en la producción de glucosa a
7
partir de reservas corporales de proteínas con independencia a la dieta
(Pérez, 2009).
Los ácidos grasos de cadena larga, proveen la mayor parte de energía
necesaria para la producción de leche en la glándula mamaria, hecho que
requiere una mayor movilización de ácidos grasos de las reservas
corporales; esto se evidencia al final de la gestación, en la cual se
incrementa la tasa de lipolisis del tejido graso, considerando que este
hecho no sólo se produce en hembras bovinas sino también en diferentes
especies (Pérez, 2009).
Para la síntesis de proteínas se requiere un adecuado suministro de
aminoácidos y un gran aporte de energía, siendo después del transporte
ionico en la célula, el proceso que más demanda de energía requiere
(Boinaz, 2012).
Los aminoácidos provenientes de la circulación sanguínea, atraviesan la
membrana de la célula (lactocito), por mecanismos específicos para los
aminoácidos, dentro de la célula son covalentemente unidos a los
ribosomas del retículo endoplasmástico rugoso, para así formar las
proteínas que son secretadas en la leche (caseína, alfa y beta albuminas.)
(Troncoso, 2014).
2.2. Alteraciones del hígado.
La infiltración grasa del hígado, que eventualmente podría darse en este
periodo, produce alteraciones en su estructura, como la hipertrofia de los
hepatocitos, la presencia de quistes grasos o lipogranulomas, compresión
de los sinusoides hepáticos, daño mitocondrial y disminución del retículo
endoplasmatico rugoso. Las alteraciones en su funcionalidad, provocan
la disminución de la capacidad de síntesis de albuminas
(hipoalbuminemia), y colesterol (hipocolesteremia), y contrariamente se
aumenta la secreción de bilirrubina (hiperbilirrubinemia) (Wittmer &
Riquelme, 1983).
8
A todo esto se suma la disminución de las otras sustancias sintetizadas
en el hígado, y el aumento de las concentraciones en la sangre de
enzimas hepáticas (Wittmer & Riquelme, 1983).
Es importante citar que, en caso de hígado graso leve y moderado en
cerdas durante el periparto, no presenta signos clínicos, pero esta
condición suele asociarse a otros problemas de salud y producción
(Bülent, et. al, 2006)
2.3. Perfil hepático en cerdos.
El hígado es un órgano muy versátil, involucrado en funciones tanto
endocrinas, como exocrinas, este órgano está involucrado en actividades
metabólicas y actúa como órgano de depósito y almacenamiento (Tang,
2013). Un examen de la función hepática debe estar dirigido al
diagnóstico de la enfermedad en sospecha, esos exámenes son orientdos
en diversas circunstancias, entre las que se menciona; en caso de
sospecha de desórdenes secundarios del hígado, tales como la presencia
de lípidos infiltrativos y degenerativos, que pueden llevar a otras
patologías relacionadas al metabolismo (IICA, 1989).
Dentro de las pruebas que ayudan al diagnóstico de alteraciones
hepáticas están las pruebas en suero sanguíneo, en las cuales se mide
las concentraciones de varias enzimas, y diversas sustancias sintetizadas
en el hígado tales como, ALT, AST, GGT, ALP, albumina, creatinina,
nitrógeno ureico (BUN), colesterol, entre otras (Washabau, 2014). Para el
presente estudio se citan las principales características de los elementos
a medirse.
2.3.1. Alanino amino transferasa (ALT).
Tanto Aspartato amino transferasa (AST), como la ALT, en caso de daño
hepático, permean hacia la circulación sanguínea, pero la ALT es más
específica en caso de inflamación del hígado. Aumentos elevados leves y
moderados de estas enzimas no son específicos y pueden estar causada
por una amplia gama de enfermedades hepáticas (Reinoso, 2013).
9
Es importante considerar que la actividad de la ALT, en cerdos, equinos y
aves es muy baja, y un aumento de esta enzima, podría obedecer a
traumatismos del órgano, enfermedades infecciosas, como hepatitis viral,
o la acción de ciertos fármacos como corticosteroides o anticonvulsivos
(Latimer, et. al, 2005).
2.3.2. Gama glutamil transferasa (GGT).
Es un marcador enzimático sérico muy valioso para enfermedades
hepáticas que conlleve una colestasis, es importante mencionar que
además de su actividad hepática, hay otras isoenzimas que se localizan
también en intestino, páncreas y riñones (Dos Anjos, et.al, 2007). Es
menester tener en cuenta que la actividad de ésta enzima también se
eleva en casos de inducción del epitelio biliar, o del hepatocito (Duncan,
2005).
2.3.3. Proteínas Totales.
Las proteínas totales suelen medirse como proteínas séricas, y su
concentración varía de acuerdo a la especie animal, dentro de estas
tenemos a las Albuminas y Globulinas (Dos Anjos, et.al, 2007).
2.3.3.1. Albumina.
La vida media de la albumina es de 7 a 10 días en el suero, por tanto en
enfermedades hepáticas agudas habrá normoglubinemia, entre las
causas que disminuyen su concentración están la insuficiencia hepática
crónica o atrofia hepática, caquexia, inflamación, mala absorción,
hemorragias y proteinuria (Latimer, et. al, 2005).
2.3.3.2. Globulinas.
Para calcular la concentración de globulinas se lo puede hacer
únicamente restando de la cantidad de proteínas totales (g/dL), la
cantidad de albuminas en g/dL (Latimer, et. al, 2005).
10
Dentro de las α globulinas, se encuentran dos fracciones, la α1 y α2, la
mayorías de estas son sintetizadas en el hígado, su descenso, se
produce en hepatopatías, malnutrición y síndrome nefrótico, su
incremento de concentración se da por inflamación aguda, generalmente
durante la gestación y lactancia existe un incremento normal de las
globulinas y una disminución de albuminas, debido al consumo
metabólico alto de proteínas en esta etapa (Dos Anjos, et.al, 2007).
2.3.4. Nitrógeno Ureico (BUN).
El nitrógeno ureico es el producto del catabolismo de proteínas, por lo
cual en disfunciones hepáticas y puentes portosistemicos se pueden
encontrar valores séricos muy bajos (Nuñez & Bouda, 2007).
Finalmente, de acuerdo a la literatura, se encuentran valores
referenciales, cuyos valores varían dependiendo de la raza, estado
fisiológico, y/o el sistema de crianza.
Cuadro N° 1. Valores Referenciales para enzimas y metabolitos hepáticos
en cerdos.
ALT (U/l) 31-58
GGT (U/l) 10-60
PT (g/dL) 7,9-8,9
ALB (g/dL) 2,9-4,3
GLOB (U/l) 85-150
BUN (mg/dL) 8,2 – 24,6
Fuente: (Jackson & Cockcroft, 2002); (Dos Anjos et.al 2007).
11
CAPÍTULO III.
MATERIALES.
Reactivos.
- Reactivos para ALT, GGT, Proteínas Totales, Albuminas, BUN
Labtest®.
Equipo.
- Analizador de bioquímica sanguínea veterinaria EMP 166Vet.
Insumos.
- Tubos tapa roja 10 ml sin anticuagulante.
- Agujas calibre 18 y jeringuillas estériles.
- Gradilla.
- Torundas de algodón.
- Caja térmica.
- Geles refrigerantes.
METODOLOGÍA.
Tipo de investigación
El presente estudio fue de tipo, observacional, prospectivo, analítico.
Población objeto de estudio
Los animales para este estudio, fueron cerdas destinadas a reproducción
de la granja Porcícola LUTQUIM S.A.
12
Ubicación del estudio.
La granja porcina implicada en el estudio se localizó en la parroquia rural
de la ciudad de Guayaquil, Juan Gómez Rendón – Posorja, de la
provincia del Guayas, con las siguientes coordenadas, 2°21′59.25″S
80°18′16.54″O a una altitud de 6 msnm (Google Earth).
Unidades de muestreo.
Al considerarse una población homogénea, debido a las condiciones de
manejo, alimentación, sanidad, que la granja presenta; y tomando en
cuenta la parte económica del estudio, se utilizaran 20 animales, los
cuales fueron divididos en 5 grupos de 4 unidades experimentales cada
uno, dependiendo el número de partos, que estas tengan. Adicionalmente
se consideró que en caso, de que un animal para muestreo se encuentre
clínicamente enfermo, se lo reemplazaría por otro animal aparentemente
sano; comprobando las constantes fisiológicas, y con una anamnesis para
cada cerda.
Factores en estudio.
Cuadro N°2 Variable independiente
Concepto Indicadores Ítems Técnica
Número de
partos Parto/cerda.
Parámetros
reproductivos.
Registro
13
Cuadro N°3 Variable dependiente.
Concepto Categoría Indicadore
s Ítems
Método.
Técnica
Proteína
Total Proteína g/dL
Suero
sanguíneo
Método de
Biuret.
Colorimétrico
Albumina. Proteína g/dL Suero
sanguíneo
Verde
Bromocresol
Colorimétrico
.
Globulina
s
Proteínas g/dL Suero
sanguíneo
Por
diferencia
(PT- ALb=
Glob)
BUN
Metabolit
o mg/dL Suero
sanguíneo
Ureasa
Labtest.
Colorimétrico
ALT Enzima UI/L
Suero
Sanguíneo
.
Test cinético
UV
GGT Enzima. UI/L Suero
sanguíneo
Szasz
Modificada.
Análisis estadístico
14
Tras obtener los resultados de laboratorio y con la finalidad de, determinar
la existencia o no de asociación entre, el número de lactancias y el perfil
hepático, se realizó un estudio de correlación de Pearson mediante el
programa estadístico SPSS versión 24.
Del mismo modo se lo realizó, para el peso promedio de la camada de la
cerda con la funcionalidad del tejido hepático.
MÉTODOS ESPECÍFICOS DEL EXPERIMENTO.
1. Registro del peso de la camada en las cerdas.
Se lo realizó directamente en la libreta de apuntes, el día del destete en la
granja (28 días); posteriormente se realizó un promedio del peso de la
camada, en cada cerda. Ver Cuadro N° 7.
2. Recolección y almacenamiento de muestras
Para la toma de muestras sanguíneas, se dividió a las cerdas de estudio
en 5 grupos; su posterior procesamiento, y lectura de resultados fueron
realizados de la siguiente manera:
o Primer grupo: cerdas con 0 números de partos; en edad de
primer servicio (7-8 meses).
o Segundo grupo: cerdas al destete, primer parto.
o Tercer grupo: cerdas al destete, segundo parto.
o Cuarto grupo: cerdas al destete, tercer parto.
o Quinto grupo: cerdas al destete, cuarto parto.
Con el animal de pie y previamente sujetado por el hocico con una
cuerda o acial, y el cuello estirado, se procedió a:
Colocarse del lado derecho del animal.
Identificar la depresión, localizada en dirección craneal al manubrio
del esternón, lateral a la línea media, con dirección a la oreja.
Se desinfectó el área, se colocó la aguja sobre la piel, en un ángulo
entre 60º o 90°, se introdujo la aguja lentamente, hacia arriba,
15
finalmente se retrajo lentamente hasta encontrar el vaso (vena
yugular externa) (Casas, 2013). Ver Anexo 2.
Se rotuló las muestras procurando no usar tintas o cintas, que se
desprendan por acción de la humedad (Convenio ICA, 2009).
Una vez recogida la muestra, se la depositó en un tubo sin
anticoagulante (tapa roja), se la dejó coagular hasta la retracción
del coágulo en posición de 30°, esto en un lapso de 30 minutos a
una hora (Gallo, 2014).
Posteriormente se centrifugó la muestra a 3000rpm por 10 minutos;
se transfirió el suero a otro recipiente y finalmente se lo analizó.
(Núñez & Bouda, 2007). Ver Anexo 3.
Para el almacenamiento de suero, las muestras se conservaron a
una temperatura de 4°C (Gallo, 2014).
3. Transporte de muestras hasta el laboratorio.
Para el transporte de las muestras se utilizó una caja térmica para
luego ser refrigeradas para futuros análisis (Gallo, 2014), hasta la
llegada al laboratorio (Clínica Veterinaria “San José del Condado”).
4. Procesamiento de muestras.
Para cada enzima y metabolito analizado, se procedió de acuerdo a
los protocolos, y métodos establecidos por los Kits de reactivos
Labtest®.
ALT.
En un tubo de ensayo se añadió 400ul de reactivo 1 más 100ul de
reactivo 2.
Se colocó a baño María por 5 minutos.
Se añadió 50 ul de la muestra, y se procedió a leer.
16
Proteínas Totales.
Se procedió de la siguiente forma con los tubos (blanco, standard y
muestra) y los reactivos:
Blanco Standard Muestra
Reactivo 1 500 µl 500 µl 500 µl
Reactivo
standard
10 µl
Muestra 10 µl
Se colocó a Baño María por 10 minutos
Con el resultado obtenido se aplicó la siguiente fórmula citada por
Labtest®:
Albumina.
Se procedió a añadir los reactivos a los tubos, blanco, standard y muestra
de la siguiente forma:
Blanco Standard Muestra
Reactivo 1 500 µl 500 µl 500 µl
Reactivo
standard
5 µl
Muestra 5 µl
17
Se dejó 5 minutos a medio ambiente y se procede a leer
Con el resultado obtenido se aplicó la formula elaborada por el
laboratorio Labtest®.
Globulinas.
En éste caso se lo obtuvo por simple diferencia por medio de la siguiente
fórmula:
(Pérez, 2017).
BUN.
También se procedió a añadir los reactivos a los tubos, blanco, standard,
muestra de la siguiente forma:
Blanco Standard Muestra
Reactivo A 500 µl 500 µl 500 µl
Reactivo
standard
5 µl
Muestra 5 µl
Se colocaron los tubos a baño María por 5 minutos.
Se procede a la lectura, y con los datos obtenidos se aplicó la
siguiente fórmula del mismo laboratorio:
GGT. Ver Anexo 4.
Se procedió a añadir los reactivos a los tubos, blanco, standard, muestra
de la siguiente forma:
Blanco Standard Muestra
Reactivo A 400 µl 400 µl 400 µl
18
Reactivo
standard
100 µl 100 µl 100 µl
Muestra
Se colocaron los tubos a Baño María por 2 minutos.
Luego en los mismos tubos se procedió a:
Blanco Standard Muestra
Reactivo A
Reactivo
standard
25 µl
Muestra 25 µl
Se colocan los tubos a Baño María por 10 minutos.
Luego en los mismos tubos se añadió:
Blanco Standard Muestra
Ácido acético
5%
1000 µl 1000 µl 1000 µl
Muestra 25 µl
Se procedió a homogenizar los tubos.
Luego se leyeron en orden y con los resultados obtenidos se aplica
la siguiente formula elaborada por laboratorio Labtest®:
19
CAPÍTULO IV.
Resultados y Discusión.
Tras la toma de muestras sanguíneas de 20 cerdas, y mediante el análisis
del suero sanguíneo en el laboratorio, se procede con el análisis
estadístico, con la finalidad de determinar la existencia o no, de la relación
entre el número de partos de la cerda, y la integridad del tejido hepático
mediante el análisis de perfil hepático. El presente capítulo se lo divide en
dos partes; de acuerdo a los objetivos planteados.
Previamente se analizó los resultados obtenidos para cada enzima y
metabolito, analizándolos desde las medias aritmeticas a cada parámetro
evaluado.
Cuadro N°4. Resultados del perfil hepático de las cerdas en estudio.
Código Cerda N°Parto
ALT (U/l) GGT(U/l) PT(gr/dL) ALB(gr/dL) GLOB(gr/dL) BUN(mg/dL)
61 0 45,4 96,07 21,78 3,45 18,33 26,58
106 0 51,3 69,21 15,6 3,38 12,22 33,27
117 0 42,9 151,5 20,62 0,85 19,77 44
120 0 28,3 177,68 23,5 2,91 20,59 31,87
30 1 35,1 96,07 20,16 1,79 18,37 33,29
100 1 37,8 110,53 18,51 2,95 15,56 37,8
23 1 33,4 118,8 15,83 2,28 13,55 33,4
9 1 36,7 411,15 16,86 2,52 14,34 37,15
27 2 31,3 78,51 19,66 3,34 16,32 40,3
36 2 42,4 74,38 15,07 3,29 11,78 55,92
99 2 33 100,2 16,09 3,06 13,03 45,67
57 2 60,3 371,9 27,3 3,12 24,18 26,58
102 3 37,1 65,08 15,17 3,06 12,11 35,29
20 3 38,6 127,06 13,26 2,79 10,47 49,96
17 3 17,9 148,76 25,12 2,32 22,8 23,64
34 3 27,8 69,02 16,72 2,67 14,05 28,38
11 4 54,8 128,09 17,85 6,18 11,67 24,15
15 4 31,6 370,86 16,95 2,5 14,45 31,86
68 4 23,5 98,14 36,49 2,51 33,98 41,37
86 4 36,1 158,05 21,59 2,89 18,7 41,93
20
Cuadro N° 5. Valores promedios para cada enzima y metabolito
analizado. .
ALT
De acuerdo a los valores promedios obtenidos, para los diferentes
metabolitos y enzimas, se observó que los valores de ALT, no presentan
alteraciones con respecto a los valores referenciales citados en el
(Cuadro N°1).
GGT
Los valores obtenidos de GGT, presentaron valores elevados (Cuadro
N°1), este hecho se lo atribuyó en parte por el estado fisiológico de las
cerdas (lactancia), puesto que Sánchez, (2009), cita que valores de ésta
enzima se ve incrementada durante la lactancia, ya que en la leche y el
calostro existe gran actividad de la GGT.
Es importante considerar la posibilidad de que las cerdas experimentales
estén cursando un proceso de infiltración grasa, que implique colestasis
en el órgano ya que el mismo autor menciona que en estos casos los
valores para GGT aumentan a más de dos veces su valor normal, por lo
cual no se descartaría estas alteraciones.
Número
de parto
ALT (U/I) GGT (U/I) PT(gr/dL) ALB
(gr/dL)
GLOB
(gr/dL)
BUN
(mg/dL)
0 41,975 123,615 20,375 2,648 17,728 33,93
1 35,75 184,138 17,84 2,385 15,455 35,41
2 41,75 156,248 16,94 3,203 16,328 42,118
3 30,35 102,48 17,568 2,71 14,856 34,318
4 36,5 188,79 23,22 3,52 19,7 34,828
Promedio
General
37,265 151,054 19,189 2,893 16,813 36,120
21
PT, Albumina, Globulinas.
Los valores altos obtenidos para las Proteínas Totales, asociado al
incremento de los valores de globulinas, dio un indicio de la presencia de
procesos inflamatorios del hígado en las cerdas, tal como indica la
literatura. En cuanto a la Albumina, en las medias obtenidas, solo dos de
los grupos presentan leves descensos del valor referencial.
BUN.
Se debe citar que los valores para BUN, presentó un leve incremento de
sus valores normales, analizándolo desde las medias obtenidas, lo que
podría estar asociado al catabolismo, y/o procesos inflamatorios
anteriormente citados por Sánchez (2009).
Finalmente se debe recalcar por lo expuesto por (Bülent, et.al 2006), el
cual menciona que, en casos de hígado graso leve y moderado en el
periparto, no se presentan signos clínicos pero que la condición suele
asociarse a otros problemas de salud y producción.
1. Perfil hepático en relación al número de partos.
Cuadro N° 6. Correlaciones perfil hepático en relación al número de
partos.
Enzimas y
metabolitos
PRUEBA DE
CORRELACIÓN
VALOR DE
CORRELACIÓN
VALOR DE
SIGNIFICANCIA
PEARSON SPEARMAN
ALT X -0,231 0,327
GGT X 0,052 0,827
PROTEINAS
TOTALES*
X 0,086 0,717
ALBUMINA X -0,034 0,888
GLOBULINAS* X -0,064 0,789
22
UREA (BUN) X 0,012 0,961
Los valores de las enzimas y metabolitos marcados con * fueron transformados a
base logaritmo 10.
1.1. ALT frente al número de partos en la cerda.
El estudio de correlación entre ALT y el número de partos en las cerdas
arrojó un valor de r=-0,231 (p>0.05), lo cual indica que no existió relación
entre las variables. Tomando en cuenta que los valores obtenidos para
ésta enzima, analizándolos desde las medias aritméticas que se
encontraron dentro de los rangos normales, se confirma la nula relación
de ésta, con el número de partos, ya que cambios en los valores de ALT
se limitan a que las causas en su incremento está dada entre otras, por,
situaciones de hipoxia, intoxicaciones con Cu, hepatitis crónicas,
tratamientos con corticoides, paracetamol o fenobarbital (Fraile, 2014).
Figura N° 1 Dispersograma, ALT frente al número de partos.
23
1.2. GGT frente al número de partos en la cerda.
El valor obtenido para la correlación de Spearman para GGT y el número
de partos es de r= 0.052, y (p>0,05) lo cual nos indica que no existe una
relación significativa entre las variables. Dada la escasa información
respecto a investigaciones de la presente enzima en referencia al estado
reproductivo de la cerda, y basándonos en la literatura existente, se
recalca las posibles causas para las alteraciones encontradas en la
concentración de GGT, entre ellas, el aumento de su concentración
durante la lactancia, infiltración grasa (Sánchez, 2009).
Figura N°2 Dispersograma GGT frente al número de partos en las cerdas.
1.3. Proteínas Totales frente al número de partos en la cerda.
Mediante la prueba de correlación de Pearson nos indica que no existe
una asociación entre las dos variables ya que el valor obtenido fue de r=
0,086 y (p>0,05); este resultado, se puede asociar con lo descrito por
24
Kozlov (2009), en cuyo estudio en cerdas gestantes pudo demostrar un
descenso del valor para proteínas en la sangre en 20% de las cerdas en
estudio; adicionalmente lo expuesto por Ferrero, Saballo, Márquez y
López (2004), discrepa con el presente estudio, ya que en cuya
investigación los resultados indican que los valores de proteínas se
encontraron estables y dentro del rango normal, una semana después del
parto. El presente estudio arrojó valores elevados para Proteínas Totales,
lo cual fue atribuido a los valores obtenidos para globulinas.
Figura N° 3 Dispersograma Proteínas Totales frente al número de partos.
1.4. Albumina frente al número de partos.
La albumina es sintetizada exclusivamente en el hígado, y es
indispensable durante la lactancia, por lo cual se hace necesario su
evaluación.
El valor obtenido en la evaluación de este parámetro fue de r = -0,34 y
(p>0,05) para la correlación de Spearman, lo cual es obvio pensar ya que
al ser la Albumina sérica una fracción de las Proteínas Totales, el
descenso de niveles de albumina solo es apreciable durante la gestación
25
e inicio de la lactancia, como lo indican varios autores entre ellos Flórez,
Álvarez y Gutiérrez (1999) además de Kozlov (2009), basado en lo
anterior; pasado este tiempo los valores de albumina se restablecen.
Figura N° 4 Dispersograma Albumina frente al número de partos.
1.5. Globulinas frente al número de partos en las cerdas.
La otra fracción que forma parte de las proteínas totales, las globulinas,
para la prueba de correlación dio un resultado de r= -0,064, y (p>0,05) lo
cual nos indica la falta de una asociación entre las variables estudiadas; lo
cual es corroborado con los resultados de otros estudios como el descrito
por Koncurat, Riesco, y Garro (2003) en el cual los cambios apreciables
en cuanto a los valores de globulinas en suero sanguíneo, se apreció en
cerdas de 91 días de preñez. Además este fenómeno se relaciona con la
curva de lactancia en las cerdas, en la cual se ha descrito que el
incremento en la producción de leche se da día a día hasta llegar a la
segunda semana de lactancia, también dependiendo del número de
lechones al parto (Their & Hurley, 2016). Por lo cual se debe tener en
cuenta el momento de la toma de la muestra sanguínea del presente
26
estudio (28 días, día del destete). Los valores elevados para esta variable,
se lo asocia a los valores elevados de Proteínas, por lo cual para
determinar la causa especifica de su alteración, se debería realizar la
separación de las fracciones de globulinas en el campo electromagnético
(Ferraro.et al, 2004).
Figura N° 5 Dispersograma Globulinas frente al Número de Partos.
1.6. BUN frente al número de partos.
Tras el análisis de correlación para BUN se obtuvo el valor de r= 0,012, y
(p>0,05) valor que indica la falta de asociación entre las variables, por lo
cual, al estar este metabolito íntimamente relacionado con el
metabolismo de las proteínas, y al observarse en los análisis anteriores
que los valores se encuentran elevados, se atribuye a la concomitancia
que existe con los valores de proteínas, lo cual discrepa con el estudio de
Verhemeyen, Maes y Mateusen (2007), en el cual indica que el estado
reproductivo en las cerdas de estudio no influyó en los valores de BUN.
Finalmente es importante citar lo expuesto por Kozlov, (2009) en el cual
27
menciona que en su estudio el valor más alto de BUN en la sangre lo
registró al día 80 de gestación en cerdas.
Figura N° 6 Dispersograma BUN frente al número de partos.
28
28
2. Perfil hepático en relación al peso de la camada.
Cuadro N° 7 Pesos de la camada de cada cerda.
Código Cerda
Número parto Peso del lechón en Kg
Promedio (Kg)
30 1p 6,02 9,05 7,9 8,6 9,15 8,33 7,15 7,11 4,15 4,59 3,84 6,902 100 1p 5,66 3,9 7,1 7,55 7,28 5,08 6,99 7,42 7,33 7,25 7,59 6,649
23 1p 8,59 7,7 6,9 5,86 7,87 6,02 6,1 7,4 7,054 9 1p 9,6 8 8,5 9,36 7,5 7,12 8,52 9,35 7,67 4,55 5,57 7,795
27 2p 6,92 8,7 7,1 7,07 8,06 9,5 7,93 6,75 7,753 36 2P 7,04 10,8 6 5,16 7,48 9,28 6,8 5,54 7,268 99 2P 8,67 9,11 5,2 5,59 8,62 10,1 9,2 6,53 8,92 9,71 5,97 7,959 57 2p 10,7 8,55 12 10,2 8,16 5,86 7,6 6,31 7,87 7,16 8,17 7,24 6,65 8,203
102 3p 7,06 7,99 7,7 6,66 10,3 9,6 8,73 9,62 8,62 7,33 8,35 5,06 8,082 20 3P 9,81 9,7 4 9,27 6,5 7,88 6,87 6,25 6,17 5,51 6,63 5,56 7,014 17 3p 9,07 8,86 7,8 7,61 7,84 8,91 8,95 7,6 9,55 8,2 9,36 11 7,85 8,662 34 3p 6,54 9,03 5,4 8,09 7,12 9,09 9,09 7,08 8,73 7,797
11 4p 5,35 12,2 11 8,49 9,19 10,1 9,69 10,05 5,13 9,77 9,104 15 4p 6,44 8,73 6,8 6,66 6,92 6,87 7,42 5,2 6,81 6,867 68 4p 8,51 13,4 9,2 8,52 8,91 9,18 10,2 9,2 9,4 10,4 9,691 86 4p 7,38 4 8,5 6,42 4,35 5,53 6,32 5,3 5,969
29
Cuadro N° 8 Correlaciones entre perfil hepático y el peso promedio de la
camada.
Enzimas y
metabolitos
PRUEBA DE
CORRELACIÓN
VALOR DE
CORRELACIÓN
VALOR DE
SIGNIFICANCIA
PEARSON SPEARMAN
ALT X -0,050 0,854
GGT X -0,091 0,737
PROTEINAS
TOTALES*
X 0,498 0,049
ALBUMINA X 0,231 0,389
GLOBULINAS* X 0,384 0,142
UREA (BUN) X -0,329 0,214
Los valores de las enzimas y metabolitos marcados con * fueron transformados a
base logaritmo 10.0
2.1. ALT, GGT frente al peso de la camada al destete.
Tras la obtención de resultados y con la finalidad de comprobar si existe
alguna relación entre los valores del perfil hepático y el peso de la
camada se procedió con el análisis estadístico, el cual demostró que no
existe relación con los valores de la enzima, ALT, ya que el resultado fue
de r= -0,05 (P> 0,05), mientras que la GGT, en relación al peso de la
camada, se obtuvo el valor de r= -0,091 (p>0,05) (ver gráfico N° 7 y 8),
éste resultado discrepa con lo obtenido por Zdravko, Mrljak, Sušic, y
Pompe (2006), los cuales indica que éstos valores, disminuyen
considerablemente al inicio la lactancia, como consecuencia del aumento
del metabolismo, más el aumento en el requerimiento de energía durante
la lactancia; asociado al tamaño y peso de la camada, por lo cual es
importante considerar que en el presente estudio, la toma de la muestra
se lo realizó al día del destete, por ende los valores enzimáticos se
estabilizan en este tiempo.
30
Figura N° 7, Dispersograma Correlación ALT frente al peso de la
camada.
Figura N° 8 Dispersograma Correlación GGT frente al peso de la camada.
31
2.2. Proteínas Totales frente al peso de la camada al destete.
En tanto los valores de PT (Proteínas Totales) en el análisis estadístico,
dio como resultado un valor de r= 0,498 y (p=<0.05) el cual indica que no
existe una correlación entre las variables estudiadas, (ver gráfico N° 9),
éste hecho se atribuye a que, durante los primeros 4 días de lactancia se
incrementa la movilización de varios nutrientes como ácidos grasos y
aminoácidos, éstos últimos posiblemente provenientes del musculo, (Bell,
1995). Sin embargo se ha demostrado que en cerdas lactantes la máxima
producción láctea se alcanza al día 17, y puede extenderse unos días
más en cerdas con nivel de producción más bajo (Theil & Hurley, 2016),
por lo tanto éste último hecho indica que los valores de proteínas totales
varían más, de acuerdo con el tiempo de lactancia de las cerdas,
asociado a su vez con lo expuesto por Leiden, Vecchionacce, Verde,
González y Díaz (2001), el cual indica que el peso de la camada varía con
el número de partos que la cerda tenga, siendo menor en el primer parto.
Figura N° 9 Dispersograma Correlación PT frente al peso de la camada.
32
2.3. Albuminas, Globulinas frente al peso de la camada al destete.
Los valores de globulinas y albuminas también demuestran la falta de
correlación con el peso de la camada (r= 0,231 y 0,384, respectivamente)
y (p=>0,05, para ambos). (Ver gráfico N° 10 y 11) Los valores de
albumina tuvieron un comportamiento similar a lo expuesto con los de
proteínas totales en el estudio expuesto por Ferraro, Saballo y Márquez
(2004), los cuales indica que no hubo diferencia significativa en estos
valores a la semana después del parto.
Figura N° 10 Dispersograma Correlación Albumina frente al peso de la
camada.
33
Figura N°11 Dispersograma Correlación Globulinas frente al peso de la camada.
En éste mismo estudio, determinó que no hubo una diferencia
significativa para globulinas una semana después de parto,
encontrándose valores por encima de valores referenciales; lo cual se le
atribuye a lo expuesto por Cabrera, Campbell, Moeser y Odle (2012),
mismos expresan que la mayoría de Inmunoglobulinas destinadas al
calostro (IgG, IgM y el 40% de IgA) provienen de la sangre materna.
2.4. Nitrógeno ureico (BUN) frente al peso de la camada al
destete.
Finalmente el análisis estadístico para BUN nos dio un valor de r= -0,329
y (p>0,05), dicho valor nos indica la falta de correlación entre este
metabolito y el peso de la camada; este valor discrepa con lo expuesto
por Ferraro, (2004), el cual indica que en su estudio; los valores del
metabolito presentaron una diferencia significativa una semana posparto,
presentándose valores dentro de los rangos referenciales; sin embargo el
presente estudio presentó algunos valores por encima de los rangos
34
referenciales, (10 – 30 mg /dl) (Jackson & Cockcroft, 2002), lo cual puede
atribuirse al catabolismos de proteínas en la dieta durante este periodo.
Figura N° 12 Dispersograma, Correlación BUN frente al peso de la
camada.
35
CAPITULO V.
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES.
Conclusiones.
Se evidenció la falta de asociación entre el número de partos de las
cerdas con los valores de las enzimas y metabolitos hepáticos.
No hubo asociación entre el peso de la camada al destete con el
perfil hepático en las cerdas, sin importar el número de parto.
Recomendaciones.
En base a los resultados encontrados en el presente estudio y al
ver que hasta el 4to parto no se afecta la funcionalidad hepática, se
podría recomendar que las hembras porcinas pueden extender su
número de partos. No obstante, se recomienda evaluar otros
órganos y sistemas implicados en la reproducción.
Evaluar el perfil hepático y sus posibles asociaciones con
parámetros zootécnicos en hembras porcinas con más de 4 partos
e incluir estudios más detallados como, análisis histológico de
hígado.
36
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45
ANEXOS.
(Anexo1) Registro del peso del lechón al destete.
(Anexo 2.) Toma de muestra sanguínea en cerdas.
46
(Anexo 3.) Obtención de suero sanguíneo.
(Anexo. 4). Procesamiento de las muestras en el laboratorio.
47
(Anexo. 5) Resultados de perfil hepático.
