108
21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un bio tehnoloģijas katedra ML 1 Molekulārās metodes Molekulārās metodes mikrobioloģijā mikrobioloģijā Teorija Teorija 1 1 . . Genomiskās DNS Genomiskās DNS izdalīšana izdalīšana 2012./2013. mācību gada 2. semestris Māris Lazdiņš

Molekulārās metodes mikrobioloģijā

  • Upload
    jorryn

  • View
    122

  • Download
    0

Embed Size (px)

DESCRIPTION

Molekulārās metodes mikrobioloģijā. Teorija 1 . Genomiskās DNS izdalīšana. 20 12 ./20 13 . mācību gada 2 . semestris. Māris Lazdiņš. Lielmolekulāras DNS izdalīšana. 1. Bioloģiskā materiāla iegūšana. 2. Audu dezintegrēšana - parasti mehāniska. - PowerPoint PPT Presentation

Citation preview

Page 1: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

1

Molekulārās metodes Molekulārās metodes mikrobioloģijāmikrobioloģijā

Teorija Teorija 11..

Genomiskās DNS izdalīšanaGenomiskās DNS izdalīšana

2012./2013. mācību gada 2. semestris

Māris Lazdiņš

Page 2: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

2

Lielmolekulāras DNS izdalīšanaLielmolekulāras DNS izdalīšana

1. Bioloģiskā materiāla iegūšana.

2. Audu dezintegrēšana - parasti mehāniska.

3. Šūnu noārdīšana (lizēšana) - mehāniska, ķīmiska.

4. DNS attīrīšana no citiem savienojumiem.

5. DNS izgulsnēšana un šķīdināšana.

6. DNS papildus attīrīšana.

Page 3: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

3

Cik daudz materiāla vajag ?Cik daudz materiāla vajag ?

Vienā diploīdā cilvēka šūnā -

6,6 pg (6,6x10-12g) DNS

Vienā E. coli šūnā -

5,0 fg (5,0x10-15g) DNS

Lai iegūtu 50 g DNS, vajadzētu:

~107 cilvēka šūnu (apmēram, 1 - 2 ml asiņu)

~1010 E. coli šūnu (apmēram, 2 ml tipiskas

E. coli naktskultūras, kas

atbilst ~ 6 mg mitro nogulšņu)

Page 4: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

4

Cik daudz materiāla vajag ?Cik daudz materiāla vajag ?

Reālais DNS iznākums parasti mazāks, piemēram:

~2 mg DNS no 1 g zīdītājdzīvnieku audiem,

10 - 40 g DNS no 1 g augu materiāla,

5 - 20 g DNS no 1 ml baktēriju kultūras

~20 g DNS no 1 ml cilvēka asiņu.

Page 5: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

5

Bioloģiskā materiāla iegūšanaBioloģiskā materiāla iegūšana

• Der jebkuras šūnas un audi, kuros atrodas DNS.

- zīdītāju eritrocīti un trombocīti ir bez kodoliem.

• Jāraugās, lai materiāls būtu tīrs, bez citu organismu vai DNS piesārņojuma.

• No piesārņojuma jāuzmanās arī DNS izdalīšanas laikā,

- reaģenti nedrīkst būtu piesārņoti ar

mikroorganismiem vai citu DNS.

Page 6: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

6

Audu Audu homogenizēšana homogenizēšana

vai vai dezintegrēšana.dezintegrēšana.

Page 7: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

7

Audu homogenizēšana vai Audu homogenizēšana vai dezintegrēšana.dezintegrēšana.

Blīvas daudzšūnu struktūras sadala pēc iespējas mazākos gabalos, lai uzlabotu lizējošo šķīdumu piekļuvi materiālam un palielinātu to iedarbības virsmu.

Nav nepieciešama materiāliem atsevišķu šūnu formā:

- baktēriju, raugu kultūras,

- eikariotu šūnu kultūras,

- asinis,

- sperma, amniocīti.

Page 8: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

8

Audu homogenizēšana vai Audu homogenizēšana vai dezintegrēšana.dezintegrēšana.

Strādājot ar audiem,

- īpaši ar augu materiālu,

homogenizācija ir nepieciešama.

Izmanto - gaļas mašīnas,

- dzirnavas;

Page 9: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

9

Audu homogenizēšana vai Audu homogenizēšana vai dezintegrēšana.dezintegrēšana.

Sasaldē un homogenizē

- piestā,

- speciālos vibrohomogenizātoros,

- koloidālajās lodīšu dzirnavās.

Var iesaldētus audus homogenizēt ar āmuru.

Page 10: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

10

Audu homogenizēšana vai Audu homogenizēšana vai dezintegrēšana.dezintegrēšana.

Daži materiālu veidi viegli sagraujami beržot piestā.

Materiālu parasti iesaldē ar šķidru slāpekli un

saberž smalkā pulverī.

Efektivitāti palielina pievienotas:

- kvarca smiltis,

- stikla pulveris,

- alumīnija oksīda pulveris.

Page 11: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

11

Nažu dzirnavasNažu dzirnavas..

Materiāls tiek samalts ar rotējošiem nažiem.

Lieto audu gabalu homogenizēšani.

Page 12: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

12

Dounča homogenizatorsDounča homogenizators..

(Dounce homogenizer)

Materiāls tiek saberzts starp cilindru un virzuli.

Lieto mīksto audu gabalu homogenizēšani.

Page 13: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

13

Potera homogenizatorsPotera homogenizators..

(Potter [Elvehjem ] homogenizer)

Materiāls tiek saberzts starp cilindru un virzuli.

Lieto mīksto audu gabalu homogenizēšani.

Page 14: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

14

Lodīšu dzirnavas.Lodīšu dzirnavas.

Materiāls tiek samalts ar lodītēm vibrējošā kapsulā.

Materiālu parasti iesaldē.

Lieto audu gabalu

homogenizēšani.

Page 15: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

15

Ultraskaņas dezintegrēšana Ultraskaņas dezintegrēšana (sonikācija).(sonikācija).

Straujās svārstības vidē veiksmīgi iedarbojas uz šūnām un audu gabaliņiem,

radot spēcīgu nobīdes deformāciju.

Jāuzmanās no pārmērīgas parauga sasilšanas un putošanās - veic ledus vannā.

Šūnu un audu suspensijā, notiek arī DNS fragmentācija.

Page 16: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

16

Ultraskaņas dezintegrēšana Ultraskaņas dezintegrēšana (sonikācija).(sonikācija).

Page 17: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

17

FreFrennča presse.ča presse.

(French Press )

Šūnas ar lielu spiedienu tiek dzītas cauri ļoti smalkai sprauslai.

Pielieto mikroorganismiem ar šūnapvalku (baktērijas, aļģes, raugi)

Page 18: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

18

Homogenizēšana ar stikla daļiņām.

Materiālu vorteksē kopā ar stikla daļiņām.

Lieto audu kultūru, baktēriju suspensijām.

Page 19: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

19

DNSDNS kvanti-tēšanakvanti-tēšana

Page 20: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

20

DNS koncentrācijas noteikšanaDNS koncentrācijas noteikšana

Izdalītajai un attīrītajai DNS vēlams noteikt koncentrāciju.

To dara spektrofotometriski,

nosakot absorbciju pie 260 nm.

1 OD vienība atbilst ~50 g/ml divpavedienu DNS.

(l=1cm)

Page 21: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

21

DNS DNS tīrībastīrības pārbaude pārbaude

DNS preparāta tīrību var pārbaudīt mērot absorbciju pie 280 nm.

Tīrai DNS - OD260/OD280 = 1,8 (1,75)

Proteīnu piemaisījumi vai fenola paliekas šo vērtību samazina.

RNS - palielina. (tīrai RNS - OD260/OD280 = 2.0).

Page 22: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

22

DNS DNS tīrībastīrības pārbaude pārbaude

Aminoskābju

aromātiskās

sānu grupas

Peptīdsaites

Page 23: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

23

DNS DNS tīrībastīrības pārbaude pārbaude

Ja paraugā ir proteīnu, RNS u.c. piemaisījumi - kvantitēšana pēc OD260 var izrādīties visai neprecīza.

Ja DNS preparātā ir neliels proteīnu piejaukums, var mērīt arī absorbciju pie 230 nm.

OD260/OD230 < 1.5 norāda uz proteīnu (peptīdsaite) un citu organisku vai neorganisku vielu piesārņojumu paraugā. (normāli vērtībai jābūt 2.0 - 3.0)

Page 24: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

24

DNS kvalitātes pārbaudeDNS kvalitātes pārbaude

DNS preparātu analizē elektroforētiski -

pārbauda, kāds ir raksturīgais DNS fragmentu lielums, salīdzinot ar DNS fragmentu garuma standartiem.

Parastā agarozes elektroforēzē var atdalīt DNS fragmentus līdz 16 000 bp.

Page 25: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

25

DNS kvalitātes pārbaudeDNS kvalitātes pārbaude

Arī lielākie DNS fragmenti migrē kopā ar 16 kb zonu.

Garākus fragmentus (līdz 10 Mb) var izšķirt ar pulsējošā lauka gelelektroforēzi (PFGE).

Page 26: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

26

DNS kvalitātes pārbaudeDNS kvalitātes pārbaude

Liela izmēra dpDNS fragmenti

(> 16 000 bp)

RNS

Page 27: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

27

DNS kvalitātes pārbaudeDNS kvalitātes pārbaude

Daļēji hidrolizēta DNS

Stipri hidrolizēta DNS

Page 28: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

28

Page 29: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

29

Lizēšanas buferos parasti ietver:

Tris - HCl 10 - 100 mM pH 6,5 - 8,0

Savienojums bufersistēmu veidošanai, lai uzturētu noteiktu pH.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 30: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

30

TrisTris-bāze-bāze

LD50 / orāli / žurkai = 5 900 mg/kg

kairina ādu, gļotādas Xi

Sintētiska viela (~1940) ar bāziskām īpašībām

(pH ~ 10,5)

Tris(hidroksimetil)aminometāns;Trometamīns; Trizma u.c.

2-Amino-2-(hidroksimetil)--1,3-propāndiols

C4H11NO3

(HOCH2)3CNH2

Page 31: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

31

TrisTris-bāze-bāze

Plaši izmanto bufersistēmu pagatavošanai, (1955)

pH 6,5 - 8,5

titrējot ar dažādām skābēm,

visbiežāk HCl => Tris - HCl Bieži lietotās pH vērtības: 6,7 7,0 7,5 8,0

Gatavo 2M izejas šķīdumu ar vajadzīgo pH

2-Amino-2-(hidroksimetil)--1,3-propāndiols

H+

Page 32: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

32

TrisTris-bāze-bāze

Elektroforēzei bieži izmanto:

Tris - borāta (borskābe)

Tris - acetāta (etiķskābe)

Tris - glicīna

Tris - alanīna (aminoskābes) bufersistēmas.

2-Amino-2-(hidroksimetil)--1,3-propāndiols

Page 33: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

33

Lizēšanas buferos tāpat kā daudzos citos šķīdumos darbam ar nukleīnskābēm parasti ietver:

EDTA 10 - 100 mM koncentrācijā.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 34: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

34

EDTAEDTAEDTA - Etilēndiamīn-N,N,N',N'-tetraetiķskābe

Etilendiamīn-tetraetiķskābe

C10H16N2O8

Page 35: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

35

EDTAEDTA

Etilendiamīn-tetraetiķskābe LD50 / orāli / žurkai = 2 200 mg/kg

Sintētiska viela (~1935) ar maz izteiktām skābes īpašībām.

EDTA skābes formai maza šķīdība ūdenī (~0,5g/l), tādēļ parasti lieto tās sāļus ar vienvērtīgajiem katjoniem.

Visbiežāk izmanto dinātrija sāli (Na2EDTA), kura ūdenī šķīst daudz labāk.

Page 36: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

36

EDTAEDTAEDTA Savienojums labi saista divvērtīgo metālu

jonus (Ca++, Mg++), kuri nepieciešami nukleāžu un citu hidrolītisko

enzīmu aktivitātei.

Pievieno arī asins paraugiem uzglabāšanas laikā kā pretrecēšanas līdzekli, jo tas saista asins recēšanai nepieciešamos Ca++ jonus (EDTA vakutaineri).

Page 37: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

37

EDTAEDTA

Laboratorijas vajadzībām gatavo 0,5M izejas šķīdumu.

Lai viela pilnībā izšķīstu, ar NaOH šķīdumu titrē līdz pH 8,0

Darba šķīdumos EDTA koncentrācija parasti

1 - 100 mM

Page 38: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

38

EDTAEDTAPlašāks pielietojums -

kā ūdens mīkstinātājs un dažādu daudzvērtīgo metālu jonu helators rūpnieciskajos un ūdens attīrīšanas procesos;

EDTA sāļi arī kā pārtikas piede-

va - stabilizators (E385; E386);

Medicīnā kā pretinde saindējo-

ties ar smago metālu sāļiem.

Page 39: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

39

Lizēšanas vai ķīmiskās noārdīšanas procesu pamatā veic ar jonisko deterģentu palīdzību.

Bieži tiek izmantots ~ 0,5% SDS

(beigu koncentrācija darba šķīdumā).

! ! !! ! ! Pievieno, kad šūnas labi izjauktas lizēšanas buferī.Pievieno, kad šūnas labi izjauktas lizēšanas buferī.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 40: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

40

SDSSDS

Nātrija laurilsulfāts SLS (sadzīves ķīmijā)

Nātrija dodecilsulfāts NaC12H25SO4

LD50 / orāli / žurkai = 1 288 mg/kg

kairina ādu, gļotādas Xi

Page 41: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

41

Pussintētiska viela, ko pamatā iegūst no eļļas palmu augļu un kokosriekstu eļļas (bagātas ar laurilskābi).

Ūdens šķīdumiem bāziskas īpašības (pH 9-10).

SDS Spēcīgs joniskais deterģents, veido smalki koloidālas sistēmas ar ūdenī nešķīstošām

un hidrofobām vielām.

SDSSDS

Page 42: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

42

SDSSDS

Pielietojums:

- Audu un šūnu ķīmiska noārdīšana (P., nukleīnskābju izdalīšana),

- Proteīnu denaturēšana

gelelektroforēzē,

(~1 SDS molekula uz 2 aminoskābju atlikumiem)

Page 43: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

43

SDSSDS

SDS Gatavo 10% izejas šķīdumu ūdenī.

Uzglabā istabas temperatūrā, lai SDS nekristalizētos un šķīdums "nesasaltu".

SDS kā deterģents plaši tiek lietots arī sadzīves ķīmijā:

- šampūni,

- tehniskie mazgāšanas līdzekļi,

- šķidrās ziepes.

Page 44: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

44

Lizēšanas gaitā nereti tiek izmantota materiāla apstrāde ar :

Proteināzi K Proteolītisks enzīms.

Aktivitāti iespējams divkāršot paaugstinot temperatūru

no 37°C => 50° - 60°C

virs 65°C sākas strauja enzīma denaturācija.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 45: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

45

Proteināze K

Optimālais pH: 7.5 - 12.0

Aktivitātei netraucē denaturējoši aģenti:

- SDS 0,5 - 1,0 %,

- urīnviela 1 - 4 M.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

EC 3.4.21.64

Page 46: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

46

Proteināzes K

Aktivitātei netraucē :

- jonu helatori (EDTA)

(enzīmam vēlami Ca+ joni, bet tā stabilitātei, ne aktivitātei);

- tripsīna un himotripsīna inhibitori.

Enzīmu iespējams izmantot apstākļos, kad

vairums šūnas enzīmu (nukleāžu) zaudējuši aktivitāti.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 47: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

47

Proteināzi K iegūst no sēnes Tritirachium album līnijas Limber.

Endoproteāze. Serīna proteāze. EC 3.4.21.64

Peptīdsaiti šķeļ karboksil grupas pusē no alifātiskajām, aromātiskajām vai hidrofobajām aminoskābēm.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 48: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

48

Proteināzi K Parasti izmantotā beigu koncentrācija darba šķīdumos:

0,05 - 1,0 mg/ml

Izejas šķīdumu koncentrācija 20 mg/ml vai 10 mg/ml,

Šķīdina ūdenī vai uzglabāšanas buferī:

20mM Tris-HCl (pH 7.4),

1mM CaCl2

50 % glicerols

Fasē un uzglabā mazos tilpumos - 20o C

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 49: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

49

Proteināze K tiek izmantota arī šūnu struktūru noārdīšanai, lai labāk

izdalītu to sastāvdaļas, piemēram, mitohondrijus.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 50: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

50

Apstrādi ar Proteināzi K var papildināt vai aizstāt ar joniskā deterģenta CTAB klātbūtni.

Tas ne tikai denaturē proteīnus, bet arī ar tā palīdzību iespējams izgulsnēt nukleīnskābes.

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

Page 51: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

51

CTABCTAB Cetiltrimetilamonija bromīds (Heksadecil-trimetil-amonija

bromīds) cetyltrimethylammonium bromide,

hexadecyltrimethylammonium bromide, CTAB C19H42BrN

Spēcīgs joniskais deterģents, veido smalki koloīdas sistēmas ar ūdenī nešķīstošām un hidrofobām vielām.

Page 52: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

52

CTABCTAB

Cetiltrimetilamonija bromīds C19H42BrN

Plaši izmanto arī kā antiseptisko līdzeklis pret baktērijām un sēnēm.

LD50 / orāli / žurkai = 410 mg/kg

kairina ādu, gļotādas, acis Xi Xn

izteikti toksisks ūdenī dzīvojošiem

organismiem

Page 53: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

53

CTABCTAB

Cetiltrimetilamonija bromīds C19H42BrN

DNS salīdzinoši labi šķīst CTAB šķīdumos ar lielu sāļu koncentrāciju, šādos šķīdumos labi šķīst arī polifenoli un polisaharīdi.

(parasti izmanto NaCl koncentrācijas > 0,8 M).

Samazinot sāļu koncentrāciju, DNS šķīdība CTAB klātienē samazinās, taču polifenolu un polisaharīdu šķīdību tas praktiski neietekmē.

Page 54: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

54

CTABCTAB

DNS nogulsnes šķīdina lielas koncentrācijas (1,2 M) NaCl šķīdumā, atšķaidot izgulsnētās CTAB paliekas un novēršot savienojuma spējas izgulsnēt DNS, kad vēlāk sāļu koncentrācija atkal tiks samazināta.

Samazinot sāļu koncentrāciju (NaCl konc. < 0,5 M), piemēram, pievienojot precipitācijas šķīdumu ar 40 mM NaCl koncentrāciju, DNS tiek izgulsnēta, bet daudzus enzīmus inhibējošie polisaharīdi un polifenoli paliek šķīdumā.

Page 55: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

55

CTABCTAB

CTAB mazāk efektīvi izgulsnē RNS, tādēļ ar šo metodi iegūtajiem DNS paraugiem parasti ir mazāk RNS piemaisījumu.

DNS izdalīšana ar CTAB palīdzību īpaši izdevīga apstrādājot augu valsts paraugus, kuriem raksturīgs liels polifenolu un polisaharīdu saturs.

Page 56: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

56

CTABCTAB

CTAB izmantošana DNS izdalīšanai tika ieviesta ~ 1980. gadā.

Dažkārt CTAB lizējošiem šķīdumiem papildus pievieno arī β-merkaptoetanolu un/vai polivinilpirolidonu, taču tas ievērojami saīsina pagatavoto šķīdumu derīguma laiku (derīgs 2-3 dienas).

Murray, M.G. and Thompson, W.F. (1980). Rapid isolation of high molecular weight

plant DNA. Nucleic Acids Research 8, 4321–4325.

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC324241/

Page 57: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

57

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana Lizēšanas buferī dažreiz lieto arī:

N-Lauroilsarkozīnu (sarkozilu), parasti tā nātrija sāls veidāSodium lauroyl sarcosinate, sarkosyl

Lurilskābes un sarkozīna (N-metilglicīna) veidots amīds.

C15H29NO3 vai

C15H28NNaO3

Page 58: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

58

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana

N-Lauroilsarkozīns (sarkozils) vai tā nātrija sālsSodium lauroyl sarcosinate, sarkosyl

Aktīvs deterģents, ja tā koncentrācija lielāka par 1%, traucē proteināzes K darbību.

Mazās koncentrācijās tiek izmantots arī kā transkripcijas iniciācijas inhibitors.

Tiek izmantots dažādos mazgāšanas līdzekļos un šampūnos.

C15H29NO3 vai

C15H28NNaO3

Page 59: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

59

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana Lizēšanas buferī dažreiz lieto arī:

Guanidīna hlorīdu (Guanidīna hidrohlorīdu)

Guanidinium chloride GuHCl

"Haotropā" viela, kas veicina NS saistību ar silikātiem (diatomaceous earth).

CH6ClN3

Ļoti spēcīgs proteīnus denaturējošsaģents.

Page 60: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

60

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana Lizēšanas buferī dažreiz lieto arī:

Guanidīna tiocianātu Guanidinium thiocyanate GITC

"Haotropā" viela, kas veicina NS saistību ar silikātiem.

C2H6N4S

Tāpat ļoti spēcīgs proteīnusdenaturējošs aģents.

Page 61: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

61

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana Baktēriju lizēšanai iesaka izmantot

- lizocīmu (lysozyme; muramidase )EC 3.2.1.17

vai

- stafolizīnu (stapholysin; lysostaphin )

- ahromopeptidāzi (achromopeptidase)

u. c. enzīmus,

kuri katalizē baktēriju šūnapvalkus veidojošo lielmolekulāro savienojumu hidrolīzi.

Page 62: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

62

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana Lizocīms (lizozīms) (lysozyme; muramidase ) EC 3.2.1.17

Veicina īsto baktēriju šūnapvalku sastāvā ietilpstošo peptidoglikānu (mureīnu) noārdīšanos, katalizējot hidrolīzi glikozīdiskajai saitei starp N-acetilmuramskābi un N-acetilglikozamīnu.

N-acetilglikozamīns N-acetilmuramskābe

(NAG) (NAM)

Page 63: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

63

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana Lizocīms (lizozīms) (lysozyme; muramidase ) EC 3.2.1.17

Dzīvnieku nespecifiskās imūnsistēmas sastāvdaļa, izdalās siekalās, pienā, sviedros, gremošanas traktā.

Lielā daudzumā atrodams putnu olu baltumā, izmanto arī pārtikā kā konservantu E 1105

Page 64: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

64

Šūnu lizēšanaŠūnu lizēšana Rauga šūnu hitīna apvalku noārdīšanu veicina citi enzīmi, piemēram,

Zimoliāze (zymolyase) - EC 3.2.1.39,

ko iegūst no Arthrobacter luteus

vai

Gluzulāzi (glusulase) no vīngkiemežu Helix pomatia

zarnu ekstrakta, kas ir glikuronidāzes,

glikuron-sulfatāzes un celulāzes maisījums u.c.

Page 65: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

65

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

Lieto ar buferšķīdumu (ūdeni) piesātinātu fenolu;

Fenola:hloroforma:izoamilspirta maisījumu; (25:24:1)

Hloroformu.

Tās visas ir vielas ar hidrofobām īpašībām, ar kurām var labi denaturēt proteīnus un ekstraģēt hidrofobus piemaisījumus, piemēram, hēma gredzenus u.c.

Ūdens un organisko fāzi ņem tilpuma attiecībās 1:1

Page 66: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

66

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

Tās visas ir vielas ar hidrofobām īpašībām, ar kurām var labi denaturēt proteīnus un ekstraģēt hidrofobus piemaisījumus.

Page 67: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

67

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

Vorteksējot izveido abu fāzu emulsiju, lai palielinātu fāzu saskares virsmu.

Centrifugējot fāzes atdalās, starp tām paliek denaturētu piemaisījumu slānis (šūnapvalku polisaharīdi, proteīni u.c.).

DNS atrodas ūdens fāzē, to atsūc un pārnes uz jaunu stobriņu.

Ūdens fāze

Denaturētiepiemaisījumi

Organiskā fāze

Page 68: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

68

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

!!! Fenola reakcijai jābūt viegli sārmainai vai neitrālai.

Ja reakcija ir skāba, DNS sāk šķīst organiskajā fāzē, kā rezultātā var rasties lieli DNS zudumi.

Fenolam ir tendence oksidēties par benzoskābi, kura paskābina organisko fāzi.

Vēlams fenolu līdzsvarot ar nedaudz sārmainu Tris buferšķīdumu un pievienot kādu antioksidantu (piemēram, oksihinolīnu.)

Page 69: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

69

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

Fenola sagatavošana.

Pārdestilētu fenolu izkausē 50-60 oC ūdens vannā.

Pievieno tādu pašu tilpumu 1M Tris-Cl pH 8,0 un abas fāzes sajauc, maisot uz magnētiskā maisītāja (~15 min).Šajā procesā organiskās fāzes tilpums palielināsies.

Ļauj fāzēm atdalīties maisījumu nostādinot.

Novāc ūdens/buferšķīduma fāzi.

Page 70: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

70

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

Fenola sagatavošana.

Pievieno tādu pašu tilpumu 0,1 M Tris-Cl pH 8,0 un abas fāzes sajauc, maisot uz magnētiskā maisītāja (~15 min).

Ļauj fāzēm atdalīties maisījumu nostādinot.

Pārbauda ūdens fāzes pH.Ja pH < 8,0 atkārto fenola līdzsvarošanu ar 1M Tris-Cl pH 8,0.

Page 71: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

71

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

Fenola sagatavošana.

Kad buferšķīduma pH vairs nav būtiski samazinājies, pievieno oksihinolīnu (tā beigu koncentrācija organiskajā fāzē 0,1%) un, ja nepieciešams, vēl

citus komponentus (hloroformu, izoamilspirtu).

Iegūto maisījumu uzglabā zem 0,1 M (vai citas koncentrācijas) Tris-Cl pH 8,0.

Page 72: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

72

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

Hloroformu izmanto:

lai denaturētu proteīnus un ekstraģētu hidrofobus savienojumus;

maisījumā ar fenolu, arī lai palielinātu organiskās fāzes blīvumu.

Page 73: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

73

Organiskā ekstrakcija.Organiskā ekstrakcija.

Izoamilspirtu izmanto:

lai palielinātu organiskā maisījuma virsmas spraigumu, kas novērš:

- putošanos apstrādes gaitā;- uzlabo ūdens un organiskās fāzes atdalīšanas iespējas.

Page 74: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

74

DNS izgulsnēšanaDNS izgulsnēšana

Lai atbrīvotos no dažādiem:

- neorganiskiem sāļiem,

- deterģentiem,

- fenola/hloroforma paliekām,

- mazmolekulārajiem org. savienojumiem;

un palielinātu DNS koncentrāciju,

veic DNS izgulsnēšanu no šķīduma.

Page 75: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

75

DNS izgulsnēšanaDNS izgulsnēšana

Izmanto lielmolekulāro NS īpatnību -

to šķīdība jūtami samazinās

50 - 60 % spirtu šķīdumos,

īpaši monovalento katjonu

(Na+, K+, Li+) klātbūtnē.

Page 76: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

76

DNS izgulsnēšanaDNS izgulsnēšana

Li+ jonu klātbūtnē labāk izgulsnējas RNS molekulas.

Šo īpašību dažās metodēs izmanto, lai DNS paraugus atbrīvotu no lieliem RNS piemaisījumiem.

Izgulsnēšanai lieto 96o vai 100o etanolu tilpuma attiecībās 2:1 vai (pirmais skaitlis - spirta tilpums)

Izopropanolu tilpuma attiecībās 0,6:1 - 1:1

Page 77: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

77

DNS izgulsnēšanaDNS izgulsnēšana

Var arī izgulsnēt tikai ar lielām ( virs 1M) monovalento katjonu (Na+, K+, Li+) koncentrācijām,

visbiežāk lieto NaCl.

taču šajā gadījumā grūtāk DNS atbrīvot no sāļu paliekām.

NaCl un LiCl parasti sagatavot 5M izejas šķīdumu veidā.

Page 78: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

78

DNS izgulsnēšanaDNS izgulsnēšana

DNS efektīvāk izgulsnējas no koncentrētiem DNS šķīdumiem, kuros DNS pavedieni viegli sastop viens otru, saķeras kopā un veido lielus precipitātus.

Optimālā gadījumā visa genomiskā DNS saķeras vienā lielā kamolā, kuru var izcelt no šķīduma ar stikla āķīti vai piesūcot pipetes uzgalim.

Page 79: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

79

DNS izgulsnēšanaDNS izgulsnēšana

Lai DNS veiksmīgi izgulsnētu no ļoti atšķaidītiem šķīdumiem, dažkārt papildus pievieno:

- attīrītu RNS,

- glikogēnu u.c.

Page 80: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

80

DNS savākšanaDNS savākšana

Ja veidojas daudzi sīki DNS precipitātu fragmenti vai tos vispār nevar saskatīt, paraugs jācentrifugē.

Bieži pēc genomiskās DNS sablīvēšanas,

īpaši ja DNS ir daudz,

rodas problēmas ar tās izšķīdināšanu.

Labi izšķīst tikai īsie DNS fragmenti.

Page 81: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

81

DNS attīrīšanaDNS attīrīšana

Lai atbrīvotos no palikušām

- neorganisko sāļu,

- izopropanola,

- fenola paliekām,

veic DNS nogulšņu mazgāšanu ar 700 (800) etanolu.

Šādā etanola koncentrācijā DNS nešķīst,

bet neorganiskie sāļi un citi mazmolekulārie savienojumi daļēji saglabā šķīdību.

Page 82: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

82

DNS attīrīšanaDNS attīrīšana

DNS pārnes stobriņā ar 700 (70%) etanolu,

maisa invertējot (vai vorteksējot),

pārnes uz nākošo stobriņu.

Pēc tam atsūc etanola paliekas, var nedaudz pažāvēt (10-15 min.) telpas apstākļos.

Page 83: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

83

DNS attīrīšanaDNS attīrīšana

Sablīvētu, kārtīgi izkaltētu genomisko DNS vairs

nevar izšķīdināt pat vārot !!!

DNS šķīdina dest. ūdenī vai

TE buferī.

TE 10 mM Tris-HCl, pH 7,5;

1 mM EDTA

Page 84: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

84

DNS šķīdināšanaDNS šķīdināšana

DNS šķīšanas ātrums atkarīgs no fragmentu garuma, sablīvētības pakāpes un lielmolekulāru piemaisījumu daudzuma.

Pareizi izdalīta genomiskā DNS pilnībā izšķīst tikai pēc 12 - 24 stundām.

Genomiskās DNS šķīdumu iesaka glabāt 4oC

Page 85: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

85

DNS uzglabāšanaDNS uzglabāšana

Iesaldēšana un atkausēšana rada DNS fragmentāciju.

Izdalīto DNS var fasēt mazos tilpumos,

lai novērstu atkārtotu iesaldēšanu un atkausēšanu.

Page 86: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

86

DNS papildus attīrīšanaDNS papildus attīrīšana

Ja grib atbrīvoties no RNS piemaisījumiem DNS preparātā,

to var darīt ar RN-āžu (ribonukleāžu) palīdzību.

No RN-āzes savukārt atbrīvojas ar atkārtotu fenola (gloroforma) ekstrakciju un DNS pārgulsnēšanu.

Page 87: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

87

RibonukleāzesRibonukleāzes

- enzīmi, kas katalizē RNS molekulu hidrolīzi.

Dažas RN-āzes šķeļ RNS molekulas pēc noteikta nukleotīda un tiek lietotas aptuvenas RNS nukleotīdu secības noteikšanai,

tomēr pārsvarā šķelšana ir nespecifiska vai vairāk saistīta ar RNS telpiskajām struktūrām.

Page 88: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

88

RibonukleāzesRibonukleāzes

RNāze A (pankreātiskā) EC 3.1.27.5

Iegūst no liellopu aizkuņģa dziedzera.

Endoribonukleāze, kas pazīst pirimidīna nukleotīdus un šķeļot veido fragmentus ar fosfātgrupu 3' galā un hidroksilgrupu 5' galā.

Izmanto DNS preparātu atbrīvošanai no RNS piemaisījumiem.

Page 89: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

89

RibonukleāzesRibonukleāzes

RNāze A

Vēlams lietot molekulārās bioloģijas tīrības klases enzīmu,

kurš speciāli attīrīts no DN-āzēm un svešas DNS piemaisījumiem.

RN-āze A ir termoizturīga, šo īpašību izmanto, lai to atbrīvotu no, parasti, termo nestabilajām DN-āzēm.

Page 90: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

90

RibonukleāzesRibonukleāzes

RNāze A

Izejas šķīdumu gatavo ūdunī vai TE buferī ar koncentrāciju 10 vai 1 mg/ml.

Pēc izšķīdināšanas 10 - 30 min. tur vārošā ūdens vannā.

Fasē nelielos tilpumos un glabā -20oC.

Darba šķīdumos parasti lieto koncentrācijas

50 - 5 µg/ml.

Page 91: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

91

DNS attīrīšanaDNS attīrīšana

Papildus attīrīšanai var lietot

jonapmaiņas vai

gelfiltrācijas hromatogrāfijas kolonnas.

Var lietot ultracentrifugāciju CsCl2 gradientā vai pārgulsnēšanu ar PEG (polietilēnglikolu).

Page 92: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

92

......

Page 93: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

93

Diferenciālā šūnu lizēšana.

Pielieto, lai:

1. no asins paraugiem iegūtu tikai kodolainās šūnas;

2. no šūnām iegūtu tikai genomisko DNS (kodolus).

3. īpašos gadījumos (piemēram spermatozoīdu DNS atdalīšanai no somatisko šūnu DNS u.c.).

Page 94: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

94

Diferenciālā šūnu lizēšana.

1.1.

Tikai nelielai asins šūnu daļai ir kodoli.

Lielā eritrocītu un trombocītu masa,

asins plazmas proteīni,

hemoglobīns u.c. savienojumi

rada tikai papildus piesārņojumu.

Page 95: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

95

Diferenciālā šūnu lizēšana.

1.1.

Izmantojot bezkodolu šūnu palielinātu jūtību pret osmotisko šoku,

tās var noārdīt pirmās un savākt tikai kodolaino šūnu nogulsnes.

Asinīm pievieno vismaz 1 tilpumu (parasti vairāk) mazas sāļu koncentrācijas buferšķīdumu, lai radītu hemolīzi.

Page 96: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

96

Diferenciālā šūnu lizēšana.

1.1.

Plaši tiek izmantots TE buferis.

Pēc centrifugēšanas nogulsnes mazgā

(atkārtoti resuspendē) TE buferī.

Šo procedūru atkārto līdz nogulsnes vairs tikai viegli sārtas. (dažkārt izmanto vienkārši H2O)

Tad tās resuspendē nelielā tilpumā līzes bufera un izdala DNS.

Page 97: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

97

Diferenciālā šūnu lizēšana.

1.1.

Kodolainās šūnas no asinīm var sakoncentrēt arī ar centrifugācijas palīdzību.

Plazma

Kodolaino šūnu slānis

Eritrocīti

Tālākai apstrādei savāc kodolaino šūnu slāni.

Page 98: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

98

Diferenciālā šūnu lizēšana.

Pielieto, lai:

1. no asins paraugiem iegūtu tikai kodolainās šūnas;

2. no šūnām iegūtu tikai genomisko DNS (kodolus).

3. īpašos gadījumos (piemēram spermatozoīdu DNS atdalīšanai no somatisko šūnu DNS u.c.).

Page 99: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

99

Diferenciālā šūnu lizēšana.

2.2.

Izmanto, lai iegūtu tikai kodolā esošo DNS.

Šūnas ārējā, vienā slānī esošā membrāna, noārdās vieglāk nekā organellas aptverošais divkāršais membrānu slānis.

Izmantojot šo parādību var lizēt šūnu, nebojājot organellu (kodolu, mitohondriju u.c.) membrānas.

Page 100: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

100

Diferenciālā šūnu lizēšana.

2.2.

Pēc tam organellas atdala, lietojot diferenciālo centrifugāciju.

Lielos un blīvos šūnu kodolus var viegli sedimentēt ar neliellu RCP. (~500g).

Šādos apstākļos mitohondriji netiek izgulsnēti.

Tālāk tiek apstrādāti tikai šūnu kodoli.

Page 101: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

101

Diferenciālā šūnu lizēšana.

2.2.

Selektīvai ārējo membrānu lizēšanai lieto nejoniskos deterģentus, kuru iedarbība nav tik agresīva.

Bieži tiek izmantots Tritons X-100

alpha-[4-(1,1,3,3-tetramethyl butyl) phenyl]-omega-hydroxypoly (oxy-1,2-ethanediyl)

Page 102: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

102

Diferenciālā šūnu lizēšana.

2.2.

Rezultātā atbrīvojas no

- citoplazmatiskajiem iedzimtības faktoriem,

- citoplazmatiskajiem proteīniem un citiem savienojumiem.

Page 103: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

103

DNS izdalīšana.DNS izdalīšana.

Patreiz tiek piedāvāts liels skaits komerciālo komplektu DNS izdalīšanai un attīrīšanai.

http://www.thermoscientificbio.com/fermentas/

http://www.fermentas.com

Page 104: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

104

DNS izdalīšana.DNS izdalīšana.

Izveidotas arī automātiskas un pusautomātiskas iekārts, kuras pielieto rutīnas medicīniskās analīzēs vai tieslietu medicīnā.

"-" lielas izmaksas un neliels DNS iznākums.

"+" standartizēta procedūra ar labu atkārtojamību.

Page 105: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

105

DNS izdalīšanaDNS izdalīšana

Iepriekš aprakstītās metodes ļauj iegūt vidēja izmēra genomisko DNS,

kas piemērota bakteriofāgu un kosmīdu bibliotēku veidošanai, PCR veikšanai,

nav piemērota izteikti lielmolekulāras DNS iegūšanai.

Page 106: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

106

DNS izdalīšanaDNS izdalīšana

Jebkuras manipulācijas ar DNS -

- fenola ekstrakcija,

- precipitācija,

- šķīdināšana

rada DNS mehānisku fragmentāciju.

Page 107: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

107

DNS izdalīšanaDNS izdalīšana

Lai to novērstu,

visas manipulācijas veic ar agarozes gabaliņos ieslēgtu

DNS (paraugu).

Pēc PFGE vēlamā garuma DNS fragmenti tiek izdalīti no gela un iekonstruēti atbilstošā vektorā

Page 108: Molekulārās metodes mikrobioloģijā

21.09.2012 LU Mikrobioloģijas un biotehnoloģijas katedra ML

108

......