AMEBAS DE VIDA LIBRE

Ethel Vania Mallqui Brito.

emallquib@usmp.pe

Parasitología

Índice

• 1.- Amebas de vida libre.

• 1.1.- Naegleria fowleri.

• 1.2.- Acanthamoeba sp.

• 1.3.- Balamuthia mandrillaris.

• 2.- Epidemiología.

• 3. Control.

AMEBAS DE VIDA LIBRE (AVL) Amebas que viven libremente en el aire, aire

acondicionado, suelo, ambientes húmedos, en

cuerpos de agua dulce o salada; aguas

contaminadas y estancadas.

En forma natural se desarrollan como protozoarios

de vida libre; ocasionalmente llegan al hombre o

animales actuando como endoparásitos, se les

denomina «anfizoicos».

La patología humana se produce principalmente a

nivel del SNC.

La enfermedad ha sido descrita en hospederos

inmunocomprometidos e inmunocompetentes.

En Latinoamérica se han reportado pocos casos, en

estas últimas décadas su reporte va en aumento y

aún su verdadera prevalencia es desconocida.

Tres géneros AVL son reconocidas de importancia para el ser humano: 1. Naegleria N. fowleri, causa la meningoencefalitis amebiana primaria (MAP). 2. Acanthamoeba A. castellani, causa la encefalitis granulomatosa amebiana (EGA); queratitis amebiana y lesiones granulomatosas en piel, pulmones entre otros órganos. 3. Balamuthia B. mandrillaris, causa EGA y lesiones granulomatosas, principalmente, en piel y pulmones. Sappinia spp, de escasa importancia para el ser humano, encontrada en

animales.

Trofozoito de N. fowleri. Tomado

de Peters W, Gilles M. op.cit

Tofozoito de Acanthamoeba

culbertsoni. Tomado de Peters W,

Gilles M. op.cit.

Trofozoíto de B.

mandrillaris en cultivo.

Naegleria fowleri Estadios: trofozoíto y quiste.

Ameboflagelado termófilo, proliferan temperaturas 40

- 45ºC.

Los Trofozoítos miden 10 – 35µ, presentando dos

formas:

1. Ameboide: lobopodios, se dividen por fisión

binaria.

2. Flagelar: con dos flagelos anteriores

carentes de división y alimentación.

Un núcleo con nucléolo central, cromatina nuclear en

forma halo, citoplasma granular y vacuolado.,en cultivo

son muy activos y pleomórficos.

Los Quistes, pared delgada, un solo núcleo, mide

entre 8 -10µ resistente a la desecación. No forma

quistes en tejidos humanos.

Trofozoíto

Quiste

Ciclo biológico de Naegleria fowleri

Clase: Heterolobosea

Orden: Schyzopyrenida

Género: Naegleria

Patología y Sintomatología

Puerta entrada cavidad nasal,

trofozoítos o quistes pasan al SNC por

neuroepitelio olfatorio.

Periodo de incubación de 1-4 o 7–15

días, dependiendo del inóculo y la

virulencia de la cepa.

Cuadro clínico de inicio súbito, rápido

y fulminante.

La muerte a los 4-5 días de inicio de la

enfermedad.

El diagnóstico generalmente es

postmorten.

Sintomatología:

Cefalea frontal, bitemporal intensa.

Fiebre > a 40ºC.

Náusea, vómito y signo de irritación meníngea.

Rigidez de nuca.

Encefalitis.

Fotofobia.

Edema cerebral.

Convulsiones.

Hipertensión intracraneal.

Letargia, confusión y coma.

Paro cardiorrespiratorio y edema pulmonar.

Histopatología:

Los hallazgos patológicos incluyen meningoencefalitis difusa y leptomeningitis

purulenta que puede abarcar hasta médula espinal.

Hemorragias y edema corticales y necrosis de los bulbos olfatorios.

Se identifican trofozoítos en tejido, principalmente en zonas perivasculares, en

exudados purulentos de meninges, espacio subaracnoideo y LCR.

N. fowleri. Trofozoítos en cerebro.

SJ Upton, Kansas University. N. fowleri. Inmunofluorescencia

directa. CDC./ GS Visvesvara.

Diagnóstico:

Antecedentes, edad y cuadro clínico.

Observación en fresco de LCR recién extraído – trofozoítos móviles «gold

estándar», eritrocitos, leucocitosis, albúmina elevada, baja glucosa y ausencia

bacterias.

Flagelación de trofozoítos en agua destilada, solución salina o MPAS (Page’s

amoeba saline).

Biopsia y tinción (Tricrómica).

Cultivo en agar NN al 3% con E. coli a 37 ºC.

Pruebas serológicas e inoculaciones a ratones.

Inmunofluorescencia directa.

IFI con anticuerpos monoclonales.

PCR. Estandarizado hace años en laboratorios de referencia en EEUU.

(Visvesvara GS, CDC).

Acanthamoeba sp. Vía entrada e invasión al SNC es hematógena.

Foco primario en piel o tracto respiratorio.

Curso clínico insidioso, prolongado e igualmente fatal.

Patógeno oportunista.

Se desconoce el periodo de incubación.

Infecciones oculares en individuos portadores de lentes

de contacto.

Las más frecuentes son: A. castellani, A. culberstoni

A. polyphaga y A. astromyxis .

Trofozoítos miden ~ 20µ, pleomórficos, vacuola

contráctil, presentan acantopodios; núcleo con

nucléolo grande, prominente y central.

Quistes ~ 18µ, un solo núcleo, doble pared:

ectoquística arrugada y endoquística poligonal, poros

a intervalos.

Trofozoíto y quiste pueden encontrarse en tejidos.

Trofozoíto

Quiste

Ciclo biológico de Acanthamoeba sp.

Clase: Lobosea

Orden: Hartmannellida

Género: Acanthamoeba.

Patología y Sintomatología

Vías de entrada trofozoítos: piel, aparato

respiratorio bajo, nasal, cornea.

SNC: Encefalitis granulomatosa subaguda y

crónica. Células inflamatorias que conforman un

granuloma.

Piel: dermatitis, ulceraciones granulomatosas.

Cornea: queratitis A. castellanii en ~ 94% de los

casos como agente etiológico de la queratitis de

origen amibiano.

Periodo incubación aprox. 10 días.

Alteraciones estado mental.

Sintomatología neurológicos.

Aumento de citocinas proinflamatorias.

Serin-proteasas alteran la integridad de la barrera

hematoencefálica.

Inducción de apoptosis.

Lesiones cutáneas por Acanthamoeba sp. en

paciente infectado por HIV. Original de H. A.

Kessler.

Acanthamoeba sp.

Trofozoítos de Acanthamoeba

sp. De cultivo. CDC

Trofozoíto de Acanthamoeba

sp. Tinción hematoxilina –

Eosina. CDC

Acanthamoeba sp.

Quistes de Acanthamoeba sp.

De cultivo. CDC

Quiste de Acanthamoeba sp.

Tinción hematoxilina – Eosina.

CDC

Balamuthia mandrillaris

Aislada como patógenos en humanos en

1993 del cerebro de mono.

Los trofozoítos y quistes son similares a

Acanthamoeba.

Trofozoítos: 15-60µ, con un núcleo grande

con nucleolo central, presencia de una zona

clara que los distingue de las otras amebas

de vida libre.

Quistes: 10-30µ, un solo núcleo, pared

compuesta por tres capas, la interior

ondulada, la media, fibrilar, y la exterior

delgada e irregular, con protrusiones.

Trofozoíto en tejido cerebral.

DPDx/CDC.

Quiste. Tinción de H-E que muestra

la presencia de esférula de 30 µ.

Balamuthia mandrillaris Ciclo biológico

Clase: Lobosea

Orden: Leptomyxa

Género: Balamuthia.

EGA muy similar por Acanthamoeba.

Se adquiere usualmente vía nasal, oral, piel.

de quistes o trofozoítos.

SNC vía hematógena o neuroepitelio olfatorio.

Se ha detectado en pacientes sometidos a

transplantes.

Los estudios patológicos en SNC se ha

estudiado en casos fatales.

Curso rápido y fatal 2 y 12 semanas.

La identificación pre-mortem de B. mandrillaris

no es sencilla.

Se ha demostrado que no es posible

recomendar aún un esquema de tratamiento

único.

.

Balamuthia mandrillaris

Trofozoítos de cultivo - CDC

Balamuthia mandrillaris

Quiste de B. mandrillaris tinción

Hematoxilina – Eosina. Imagen

de la Universitad de Kentucky

Hospital, Lexington, Kentucky.

Quistes de B. mandrillaris tinción

Hematoxilina – Eosina. Hospital

Texas.

CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS

DE AMEBAS DE VIDA LIBRE

Características del LCR

Epidemiología AÑO AUTOR AVL

1979 Arce y Asato. Acanthamoeba sp.

1996 Narvaez (4 casos). Acanthamoeba sp

1996 - 2005 Hospital Nacional Dos de Mayo (4 casos). Acanthamoeba sp

Instituto de Medicina Tropical UNMSM Acanthamoeba sp

Hasta 1996 10 casos. Acanthamoeba sp

2000 1 caso. Acanthamoeba sp

2002 3 casos. Acanthamoeba sp

1995 - 2006 Instituto Nacional de Salud (3 casos). Acanthamoeba sp.

1999 Hospital Cayetano Heredia (15 casos). Acanthamoeba sp.

2002 Suarez y col. (31 muestras 11+) 35,5%. Acanthamoeba sp

2007 Náquira (aguas superficiales). Naegleria sp.

2008 Garaycochea y col. (83 muestras 40+) 31,3% Acanthamoeba sp

Prevención Es difícil establecer medidas de prevención por la amplia distribución de las

AVL en el ambiente.

Descontaminación de agua de piscinas con cloro, asociado al no buceo en

áreas sospechosas.

Inspecciones periódicas de los estanques de agua caliente, filtro de agua,

sistemas de cañerías, filtros para purificar el suministro de agua potable.

Limpieza adecuada de lentes de contacto.

Recuperación:

Terapia.

Estado inmunológico.

Dosis infectiva.

Virulencia de la cepa.

Diagnóstico.

Iniciar terapia.

Fuentes de información Fuentes bibliográficas

Botero, D y Restrepo, M. 2012. Parasitosis Humanas. Texto y Atlas. Quinta

edición. Colombia.

Córdova, E., Neira, M., Liu, M., Vásquez, L., Martínez, E., Ayaqui, R., y Ruelas,

N. 2009. Parasitología Humana. Arequipa-Perú. Ediciones Independencia.

Segunda edición.

Fuentes hemerográficas

• David Oddó B. Infecciones por amebas de vida libre. Comentarios históricos,

taxonomía y nomenclatura, protozoología y cuadros anátomo-clínicos. Rev Chil

Infect 2006; 23 (3): 200-214.

• Mónica Liliana Peralta Rodríguez et al. Amibas de vida libre en seres humanos.

2009.Salud Uninorte. Barranquilla (Col.) 25 (2): 280-292

Fuentes electrónicas

• http://www.scielo.org.co/pdf/inf/v13n2/v13n2a05.pdf

• http://amebasdevidalibre.blogspot.com/

• http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/amibas-vida-

libre.html.