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11/30/2020 1 LA TOXOPLASMOSE AR Drissa Coulibaly MA Abdoulaye Kassoum KonĂ© MR Karim TraorĂ©, MCA Doumbo Safiatou NiarĂ©, Pr Mahamadou Ali Thera DĂ©partement d’ EpidĂ©miologie des Affections Parasitaires/FacultĂ© de MĂ©decine et d’Odontostomatologie/UniversitĂ© des Sciences, des Techniques et des Technologies de Bamako FMOS 3 Ăšme annĂ©e AnnĂ©e scolaire 2019‐2020 27 octobre 2020 Objectifs pĂ©dagogiques ‱ Au terme de cette leçon l’étudiant en 3 Ăšme annĂ©e MĂ©decine doit ĂȘtre capable de: ‱ DĂ©finir la toxoplasmose ‱ DĂ©crire le cycle biologique de Toxoplasma gondii ‱ Indiquer deux (2) circonstances du diagnostic biologique de la toxoplasmose ‱ DĂ©crire 2 techniques de diagnostic biologique de la toxoplasmose ‱ InterprĂ©ter les rĂ©sultats du diagnostic immunologique d’une toxoplasmose ‱ Enoncer les principes thĂ©rapeutiques de la toxoplasmose congĂ©nitale et/ou associĂ©e au VIH‐SIDA 2 Plan du cours 1‐GĂ©nĂ©ralitĂ©s 1.1‐ DĂ©finition 1.2‐ Historique 1.3‐ IntĂ©rĂȘt 2‐EpidĂ©miologie 2‐1‐ Agent pathogĂšne 2.2‐ RĂ©servoir de parasite 2.3‐ HĂŽtes intermĂ©diaires 2.4‐ Modes de transmission 2.5‐ Cycle biologique 2.6‐ Facteurs favorisants 2.7‐RĂ©partition gĂ©ographique 3‐Physiopathologie 4‐Diagnostic biologique 4.1.‐Circonstances du diagnostic biologique 4.2‐ ElĂ©ments d’orientation 4.3‐ Diagnostic parasitologique 4.4‐ Diagnostic immunologique 5‐Principes thĂ©rapeutiques RĂ©sumĂ© Conclusion 3 1 2 3

Toxoplasmose 27Oct20 - fmos.usttb.edu.ml

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LA TOXOPLASMOSEAR Drissa Coulibaly

MA  Abdoulaye Kassoum KonĂ©MR Karim TraorĂ©,

MCA  Doumbo Safiatou NiarĂ©, Pr Mahamadou Ali Thera 

DĂ©partement d’ EpidĂ©miologie des Affections Parasitaires/FacultĂ© de MĂ©decine et d’Odontostomatologie/UniversitĂ© des Sciences, des 

Techniques et des Technologies de Bamako 

FMOS 3Ăšme annĂ©e 

AnnĂ©e scolaire 2019‐2020

27 octobre 2020

Objectifs pĂ©dagogiques

‱ Au terme de cette leçon l’étudiant en 3Ăšme annĂ©e MĂ©decine  doit ĂȘtre capable de:

‱ DĂ©finir la toxoplasmose‱ DĂ©crire le cycle biologique de Toxoplasma gondii‱ Indiquer deux (2) circonstances du diagnostic 

biologique de la toxoplasmose‱ DĂ©crire 2 techniques de diagnostic biologique de la 

toxoplasmose‱ InterprĂ©ter les rĂ©sultats du diagnostic immunologique 

d’une toxoplasmose  â€ą Enoncer les principes thĂ©rapeutiques de la 

toxoplasmose congĂ©nitale et/ou associĂ©e au VIH‐SIDA

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Plan du cours1‐GĂ©nĂ©ralitĂ©s

1.1‐ DĂ©finition1.2‐ Historique1.3‐ IntĂ©rĂȘt

2‐EpidĂ©miologie2‐1‐ Agent pathogĂšne2.2‐ RĂ©servoir de parasite2.3‐ HĂŽtes intermĂ©diaires2.4‐ Modes de transmission2.5‐ Cycle biologique2.6‐ Facteurs favorisants2.7‐RĂ©partition gĂ©ographique3‐Physiopathologie

4‐Diagnostic biologique4.1.‐Circonstances du 

diagnostic biologique

4.2‐ ElĂ©ments d’orientation

4.3‐ Diagnostic parasitologique

4.4‐ Diagnostic immunologique 

5‐Principes thĂ©rapeutiques

RésuméConclusion

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1‐GĂ©nĂ©ralitĂ©s (1)

1.1‐ DĂ©finition

La toxoplasmose est l’ensemble des manifestations cliniques et biologiques dues Ă  la prĂ©sence et Ă  la multiplication dans l’organisme humain d’un protozoaire apicomplexa, Toxoplasma gondii

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1‐GĂ©nĂ©ralitĂ©s (2)

1.2‐Historique‱En 1908, Nicole et Manceaux isolent le parasite chez un rongeur Ctenodactylus gondi Ă  l’Institut Pasteur de Tunis‱En 1923, Junka: dĂ©couvre le parasite dans les yeux d’un enfant Ă  l’autopsie,‱En 1937, Wolf et Cowen individualisent pour la premiĂšre fois la maladie aux USA, cliniquement et parasitologiquement,‱En 1948, Sabin et Feldman mettent au point le test sĂ©rologique sensible et spĂ©cifique Dye‐test,‱En 1970, 2 Ă©quipes de chercheurs (Frenkell et coll. et Hutchinson et coll.) dĂ©couvrent  les stades infestants (oocystes) Ă©liminĂ©s par les  chats et Ă©tablissent le cycle complet. 5

1‐GĂ©nĂ©ralitĂ©s (3)

1‐3 IntĂ©rĂȘt EpidĂ©miologique:‱Affection cosmopolite‱En France 1988 : sĂ©roprĂ©valence 50 Ă  60%, et l’incidence de la toxoplasmose congĂ©nitale est de 1 Ă  2 pour 1000 naissances,‱Au SĂ©nĂ©gal: Dakar 2002‐2006: sĂ©roprĂ©valence= 34,5%,‱Au Mali: 1984: Bamako: sĂ©roprĂ©valence 34%  chez les femmes en Ăąge de procrĂ©er  (Maiga Y et col 1984). 2013: KollĂ©: 27% chez les adultes (D. Ouologuem et al 2013);  0,8% (1–5 ans), 2,7% (6–10 ans), 11,3% (11–15 ans ), et 26,8% (>15 ans).

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1‐GĂ©nĂ©ralitĂ©s (4)

1‐2 IntĂ©rĂȘt (suite)

MĂ©dical: 

BĂ©nigne chez le jeune adolescent immunocompĂ©tent

GravitĂ© potentielle et lĂ©tale: sujets immunodĂ©primĂ©s, femmes enceintes non sĂ©ro‐converties (IgG) avant la grossesse,

Parasitose classante le VIH‐SIDA au stade III, 1Ăšre Infection Opportuniste Parasitaire (IOP) du SNC (15 Ă  30% des PVVIH)

ThĂ©rapeutique : cotrimoxazole +++ prĂ©vention des complications  (avortement prĂ©coce, malformations congĂ©nitales)

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2‐EpidĂ©miologie (1)

2.1‐Agent pathogĂšne

2.1.1‐Taxonomie :oPhylum:  ApicomplexaoClasse:  SporozoeaoSous‐classe:  CoccidiaoOrdre:  EucoccididaoGenre:  ToxoplasmaoEspĂšce:  Toxoplasma gondii

3 gĂ©notypes de virulence diffĂ©rente chez l’Homme 

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2‐Epidemiologie (2)

2.1.2‐MorphologieAu cours du cycle de son dĂ©veloppement  T. gondii se prĂ©sente sous 3 stades infectieux:  â€ą TachyzoĂŻtes, formes Ă  multiplication active (schizogonique ) intracellulaire = responsable de septicĂ©mie, de la maladie et de la contamination congĂ©nitale,‱ BradyzoĂŻtes (mĂ©tabolisme rĂ©duit) regroupĂ©s au sein des kystes tissulaires, forme de rĂ©sistance intra tissulaire, â€ą SporozoĂŻtes (stades mĂ©tacycliques infectants, rĂ©sultats de la multiplication sexuĂ©e sporogonique) au sein des ookystes chez l’HD, le chat (forme de rĂ©sistance et de dissĂ©mination dans le milieu extĂ©rieur).

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2‐EpidĂ©miologie (3)

TachyzoĂŻte :oForme d’un croissant 

oTaille:  6 Ă  8 Â”m de long sur 3 Ă  4 Â”m de large, Ă  l’extrĂ©mitĂ© antĂ©rieure effilĂ©e et l’extrĂ©mitĂ© postĂ©rieure arrondie, 

oLe parasite est dĂ©limitĂ© par une pellicule trimembranaire, l’extrĂ©mitĂ© antĂ©rieure porte le complexe apical composĂ© d’un conoĂŻde, de rhoptries, de micronĂšmes et de granules denses.

o PrĂ©sence des structures classiques des eucaryotes: noyau, rĂ©ticulum endoplasmique, appareil de Golgi, le mitochondries

oMultiplication:  scissiparitĂ©, schizogonie et par endodyogĂ©nie 10

2‐Epidemiologie (4)

Le kyste tissulaire: o Taille:  50 Ă  200”,o Forme: sphĂ©rique ou ovoĂŻde,o Localisation:  Tissus  limitĂ©es par une paroi parasitaire contient des formes vĂ©gĂ©tatives Ă  multiplication lente  appelĂ©es bradyzoĂŻtes,  

o Forme de rĂ©sistance et dissĂ©mination quand il est ingĂ©rĂ© par un autre hĂŽte.

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2‐Epidemiologie (5)

L’oocyste: oForme de dissĂ©mination et de rĂ©sistance du parasite dans le milieu extĂ©rieur, sol souillĂ© par les excrĂ©ments du chat, et une forme infestante du parasite, rĂ©sulte de la sporogonie qui a lieu dans l’intestin du chat et d’autres fĂ©lidĂ©s. 

oForme ovoĂŻde oTaille: mesure 5 Ă  20 Â”m de diamĂštre. oChaque oocyste contient deux sporocystes contenant 4 sporozoĂŻtes chacun

oLes sporozoĂŻtes sont contenus dans les oocystes sporulĂ©s protĂ©gĂ©s du milieu extĂ©rieur par une paroi trĂšs rĂ©sistante

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A. TachyzoĂŻtesB. kyste (muscle)C. kyste tissulaire (cerveau) D. Schizonte avec plusieurs tachyzoitesE. gamĂšte male F. oocyste non sporulĂ© (dĂ©jections de chats). G. oocyste sporulĂ© avec 2 sporocystes, chaque sporocyste Ă  4 sporozoĂŻtes

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2‐Epidemiologie (6)2.1.3‐Cycle Ă©volutif‱Cycle dixĂšne,  HĂŽte DĂ©finitif (HD), le chat HĂŽte intermĂ©diaire (HI)  oiseaux, les petits mammifĂšres et l’homme (impasse parasitaire). 

‱Deux cycles: un cycle sexuĂ© complet chez le chat et un cycle incomplet (asexuĂ©) chez l’HI

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2‐Epidemiologie (7)

2.1.3‐Cycle Ă©volutif

Cycle complet (phase entĂ©ro‐épithĂ©liale): chez le chat qui est Ă  la fois HD et HI, se contaminant en ingĂ©rant les oocystes contenus dans les excrĂ©ments des chats : il se produit un cycle asexuĂ© (schizogonie) et un cycle sexuĂ© (sporogonie) 

Cycle asexuĂ©: la paroi du kyste et de l’oocyste dissoute pendant la digestion, avec libĂ©ration soit des bradyzoĂŻtes, soit des sporozoĂŻtes qui pĂ©nĂštrent les cellules Ă©pithĂ©liales de l’intestin grĂȘle, suit une division schizogonique (asexuĂ©e) avec formation de mĂ©rozoĂŻtes et de schizontes. AprĂšs plusieurs schizogonies, survient la reproduction sexuĂ©e 15

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2‐EpidĂ©miologie (8)

Cycle sexuĂ©: (sporogonie): â€ą Survient dans l’épithĂ©lium de l’intestin, certains mĂ©rozoĂŻtes

vont se diffĂ©rencier en gamĂ©tocytes mĂąles et d’autres, en gamĂštocytes femelles, 

‱ Le gamĂ©tocyte male donne naissance Ă  de nombreux gamĂštes males mobiles grĂące Ă  2 flagelles: les microgamĂštes, 

‱ Le gamĂ©tocyte femelle se transforme en gamĂšte femelle de grande taille immobile: les macrogamĂštes, 

‱ La fĂ©condation donne un Ć“uf ou zygote qui s’entoure d’une coque Ă  double paroi d’oĂč son appellation oocyste qui tombe dans la lumiĂšre intestinale du chat et est Ă©liminĂ© dans les fĂšces. L’oocyste immature s’appelle sporonte et renferme une cellule.

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2‐EpidĂ©miologie (9)

Une phase extra‐ Ă©pithĂ©liale se dĂ©roule parallĂšlement Ă  la phase entĂ©ro‐épithĂ©liale:  aprĂšs ingestion des kystes les bradyzoĂŻtespĂ©nĂštrent la lamina propria de l’intestin du chat et s’y multiplient et se dissĂ©minent sous forme de kystes extra‐intestinaux

Le chat peut hĂ©berger Ă  la fois un cycle de dĂ©veloppement complet appelĂ© phase intestinale ou phase entĂ©ro‐épithĂ©liale et un cycle de dĂ©veloppement incomplet appelĂ© phase extra‐ Ă©pithĂ©liale

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2‐Epidemiologie (10)

Cycle incomplet: Chez l’HI: oiseaux, mammifĂšres, homme, qui s’infestent en ingĂ©rant les kystes (ou les oocystes), aprĂšs lyse du kyste (coque), les bradyzoĂŻtes (et les sporozoĂŻtes) libĂ©rĂ©s dans la lumiĂšre intestinale vont diffuser dans le sang et dans la lymphe et pĂ©nĂ©trer dans les cellules du systĂšme rĂ©ticulo‐endothĂ©lial

Multiplication brĂšve par scissiparitĂ© et endodyogĂ©nie dans les cellules et contamination d’autres cellules.Sous l’action des anticorps les formes vĂ©gĂ©tatives s’agglutinent en un amas serrĂ©, se multiplient lentement et Ă©laborent une membrane Ă©paisse et rĂ©sistante formant ainsi les kystes tissulairesCe cycle asexuĂ© peut se produire chez l’HI sans passage par l’HD et par ingestion de kystes contenu dans les muscles des animaux.  18

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Cycle biologique

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Cycle biologique (2) 

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NB: Dans le cycle biologique de T. gondii, l’Homme (Homo sapiens) est une impasse parasitaire

2‐EpidĂ©miologie (11)

2.2‐ RĂ©servoir de parasites:oPour les oocystes: chats (jusqu’à 20 millions par dĂ©fĂ©cation)

oPour les kystes tissulaires: les animaux Ă  sang chaud : les oiseaux, les rongeurs, animaux sauvages (Ă©cureuils, liĂšvre, rat), animaux domestiques (le chat, chien), le porc, canard, le bĂ©tail en particulier le mouton

2.3‐ HĂŽte rĂ©ceptif : tous les hommes sont rĂ©ceptifs, la primo‐infection laisse une immunitĂ© totale dĂ©finitive et protectrice.

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2‐EpidĂ©miologie (12)

2.4‐Modes de transmissionoContamination orale:‱ Ingestion d’oocystes â€ąeau ou aliments contaminĂ©s par dĂ©jection de chat(mode de contamination exceptionnelle) â€ą Ingestion de kystes (bradyzoĂŻtes)‱viande crue ou insuffisamment cuite (viande de mouton est principale source d’infestation‐kystes) 

oContamination transplacentaire de la mĂšre au fƓtus: â€ Passage des tachyzoĂŻtes prĂ©sents dans le sang et dans la lymphe Ă  travers le placenta dans la circulation sanguine du fƓtus 

‐ A la faveur d’anomalies placentaires minimes.

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2‐EpidĂ©miologie (13)

‱Autres modes de contamination rares:‐ Contamination par transfusion sanguine trĂšs rare‐ Contamination par transfusion d’extrait leucocytaires‐ Contamination accidentelle au laboratoire‐ Contamination par transplantation d’organes : transplantation cardiaque, de moelle osseuse (rĂ©activation des kystes par immunosuppresseurs)

‐ Autres modes de contamination: sperme, salive, le lait dans lesquels on retrouve les tachyzoĂŻtes

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2‐EpidĂ©miologie (14)2.5‐Facteurs favorisants

D’ordre gĂ©nĂ©ral facteurs climatiques: la tempĂ©rature et l’ humiditĂ© favorisent la sporulation des oocystes,

Habitues alimentaires: consommations de viande crue ou peu cuite ou de cruditĂ©s

PrĂ©sence de chat au domicile 

D’ordre individuel Le terrain: grossesse, immunodĂ©pression, corticothĂ©rapie, 

L’ hygiĂšne prĂ©caireMode vie: personne en contact avec le sol (jardiniers, Ă©leveurs, cultivateurs) et avec les animaux (Ă©leveurs, travailleurs des abattoirs) ainsi que les enfants

2.6‐ RĂ©partition gĂ©ographique: c’est une maladie cosmopolite24

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3‐Physiopathologie (1)

3 PHASESPhase parasitĂ©mique :multiplication active lymphatico‐sanguineAtteintes organes & nĂ©crose cellules du SREApparition des Ac vers le 7Ăš jour

Phase immunitaire :Destruction formes extra cellulaires par AcrĂ©action Ac‐Ag

Phase cliniqueToxoplasmose acquiseToxoplasmose congĂ©nitaleToxoplasme par rĂ©activation kyste (immunodĂ©primĂ©)

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3‐Physiopathologie (2)

‱Toxoplasma gondii se dĂ©veloppe dans les cellules du systĂšme phagocyte mononuclĂ©es (SPM) ou ou rĂ©ticulo‐histocytaire. â€ą lĂ©sions dans tous les tissus. Le sytĂšme nerveux central (SNC), les ganglions et les muscles sont principalement atteints‱La lĂ©sion primaire est un granulome toxoplasmique, dans certains cas, donne un foyer de nĂ©crose et peut se calcifier.‱Sur le plan pathogĂ©nique, la multiplication des toxoplasmes est trĂšs brĂšve dans les formes acquises. 

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3‐Physiopathologie (3)

‱Les parasites‐fils rĂ©sultant d’une multiplication asexuĂ©e  se trouvent en effet libĂ©rĂ©s par Ă©clatement de la cellule hĂŽte. Il en rĂ©sulte une trĂšs courte phase de vie libre avant que les toxoplasmes ne puissent pĂ©nĂ©trer dans une autre cellule. Durant cette phase, les parasites sont extrĂȘmement  sensibles Ă  l’action des anticorps circulants qui apparaissent  environ 7 Ă  10 jours aprĂšs l’infestation. PassĂ© ce dĂ©lai, la dissĂ©mination parasitaire est arrĂȘtĂ©e et seules persistent les formes kystiques.

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3‐Physiopathologie (3)

‱Une rĂ©ponse immunitaire se met en place dĂšs le premier contact

‱dĂ©finitive‱protectrice‱mais non stĂ©rilisante: bradyzoĂŻtes /kystes. La rupture pĂ©riodique de ces kystes et/ou la diffusion d’Ag parasitaires maintien de l’immunitĂ© anti‐toxoplasme

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4‐Diagnostic biologique (4)4.1‐Circonstances de diagnostic biologique

Les manifestations cliniques peuvent ĂȘtre: 

4.1‐1‐Toxoplasmose acquise

Forme bĂ©nigne: chez l’ immunocompĂ©tent trĂšs souvent asymptomatique

‱ FiĂšvre Ă  38‐38,5ÂșC‱ AdĂ©nopathies‱ AsthĂ©nie‱ Autres signes: exanthĂšme, splĂ©nomĂ©galie

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4‐Diagnostic biologique (5)4.1‐Circonstances de diagnostic biologique (suite)

Forme graves: â€ą chez le sujet immunodĂ©primĂ© (par un traitement immnunosuppresseur, une hĂ©mopathie, infection VIH‐SIDA)

‐ LĂ©sions graves cĂ©rĂ©brales: encĂ©phalite (cĂ©phalĂ©e, confusion, lĂ©thargie, ataxie, et coma)

‐ et rĂ©tiniennes

‱ chez le sujet immunocompĂ©tent: rapportĂ©es rĂ©cemment, avec en particulier des localisations oculaires, neurologiques voire dissĂ©minĂ©es comme chez les immunodĂ©primĂ©s, avec dĂ©cĂšs du patient  (souches de T. gondii mal adaptĂ©e) 

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4‐Diagnostic biologique (6)4.1‐Circonstances de diagnostic biologique (suite)

4.1.2‐Toxoplasmose congĂ©nitale (1)‱Transmission transplacentaire, le risque de contamination dĂ©pend du stade de la grossesse‐ 1er trimestre risque faible 5% Toxoplasmose congĂ©nitale grave‐ 3Ăšme trimestre risque > 50% â€ La toxoplasmose congĂ©nitale survient chez 40% des cas de toxoplasmose contractĂ©e  pendant la grossesse

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4‐Diagnostic biologique (7)4.1‐Circonstances de diagnostic biologique (suite)

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Toxoplasmose congénitale (suite)

4‐Diagnostic biologique (8)4.1‐Circonstances de diagnostic biologique (suite)

Toxoplasmose congĂ©nitale (suite) â€ąForme majeure: L’encĂ©phalo‐mĂ©ningo‐myĂ©litetoxoplasmique‐ Atteinte foetale prĂ©coce‐ Évolution sĂ©vĂšre : mort ou retard psychomoteur important

‱Formes viscĂ©rales â€ Contamination in utero plus tardive‐ Associe : ictĂšre nĂ©o‐natal, hĂ©pato‐splĂ©nomĂ©galie, hĂ©morragies

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4‐Diagnostic biologique (9)4.1‐Circonstances de diagnostic biologique (suite)

Toxoplasmose congĂ©nitale (suite)‱Formes attĂ©nuĂ©es‱ Contamination encore plus tardive‱ retard psychomoteur associĂ© ou non Ă  des troubles neurologiques et une choriorĂ©tinite pigmentaire 

‱ Les formes inapparentes‱ Les plus nombreuses : 80%des tableaux cliniques‱ Enfants cliniquement normaux Ă  la naissance‱ Infection diagnostiquĂ©e par des rĂ©actions sĂ©rologiques‱ Traitement prĂ©coce Ă©vite l’apparition de formes retardĂ©es

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4‐Diagnostic biologique (10)4.1‐Circonstances de diagnostic biologique (suite)

4.1.2‐Toxoplasmose congĂ©nitale (suite)‱Naissance avec des sĂ©quelles graves :‱ Neurologique: hydrocĂ©phalie, microcĂ©phalie, convulsions, retard psychomoteur

‱ Troubles oculaires (microphtalmie, choriorĂ©tinite)‱ IctĂšre nĂ©onatal, hĂ©pato‐splĂ©nopmĂ©galie, 

‱PrĂ©maturitĂ©

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4‐Diagnostic biologique (11)4.1‐Circonstances de diagnostic biologique (suite)

4.1.3‐Toxoplasmose oculaire

‱Souvent congĂ©nitale et due Ă  la prĂ©sence des kystes dans la rĂ©tine avec :‱ Atteinte du segment antĂ©rieur: uvĂ©ite‱ Atteinte du fond Ć“il et choriorĂ©tinite pigmentaire dans 80% 

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4‐Diagnostic biologique (12)4.2‐ElĂ©ments d'orientation

Toxoplasmose bĂ©nigne :‱hĂ©mogramme :‐ syndrome mononuclĂ©osique‐ parfois hyperĂ©osinophilie moins de 10 % des cas‐ VS accĂ©lĂ©rĂ©eToxoplasmose congĂ©nitale :‱ sang du cordon: â€ą Éosinophilie‐thrombopĂ©nie‱ gamma GT‱ LDH (dĂ©shydrogĂ©nase lactique)

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4‐Diagnostic biologique (13)4.3‐Diagnostic parasitologique

3.3.1‐Nature et conditions de prĂ©lĂšvement

‱Toxoplasmose congĂ©nitale: â€ą Liquide amniotique (18Ăšme semaine), â€ą Sang fƓtal (20 et 24Ăšme semaine), 

‱ Sang du cordon placenta

‱Toxoplasmose grave (immunodĂ©pression): â€ą Sang, â€ąMoelle osseuse, â€ą LCR, â€ą Liquide de lavage broncho‐ alvĂ©olaire, â€ą Biopsie d’organe (cerveau)

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4‐Diagnostic biologique (14)4.3‐Diagnostic parasitologique (suite)4.3.2‐Techniques: â€ąExamen direct de culot de centrifugation du LCR‱Examen d’un frottis colorĂ© au Giemsa‱Examen d’un frottis marquĂ© aux Ac monoclonaux Ă  l’IFI‱Culture: sur milieu cellulaires (fibroblastes, lignĂ©es de monocytes)‱ Inoculation Ă  l’animal (souris)‱PCR: Diagnostic de certitude (ADN parasitaire)

4.3.3‐ RĂ©sultats: mise en Ă©vidence des tachyzoĂŻtes intra ou extracellulaires, des kystes 

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4‐Diagnostic biologique (15)4.4‐Diagnostic immunologique

IntĂ©rĂȘt â€ą Permet le diagnostic de certitude, les techniques sont nombreuses et recherchent les anticorps anti‐toxoplasmiques

Techniques‱ Techniques: utilisant les antigĂšnes (Ag) figurĂ©s (Ag membranaires, rĂ©ponse tardive): â€ą Dye test â€ IFI â€ Agglutination directe

‱ ISAGA (test d’immunocapture‐agglutination‐Immuno‐sorbent agglutination assay) 

‱ Techniques utilisant les Ag solubles (Ag cytoplasmiques, rĂ©ponse rapide): â€ą Hemagglutination passive, 

‱ ELISA IgG et IgM

‱ Western blot des IgG

‱ Mesure de l’aviditĂ© des IgG41

4‐Diagnostic biologique (16)4.4‐Diagnostic immunologique (suite)

DĂ©tection des Ac spĂ©cifiques en fonction des diffĂ©rentes situations

Toxoplasmose acquise de la femme enceinte : Aspects lĂ©gaux

Obligatoire d’effectuer une sĂ©rologie lors de l’examen prĂ©nuptial et prĂ©natal, des sĂ©rologies mensuelles avec recherche d’IgG et d’IgM anti‐toxoplasmiques

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4‐Diagnostic biologique (17)4.4‐Diagnostic immunologique (suite)

Recherche d’IgG, d’IgM antitoxoplasmiquesLes techniques actuellement en vigueur recherchent sĂ©parĂ©ment ces anticorps.

‱ Recherche d’IgG‱ IFI‱ ELISA

‱ Recherche des IgM‱ IFI â€“IgM (test de Remington)

‱ ISAGA

‱ Recherche des IgA

Le dosage des IgA antitoxoplasmiques (ELISA DS, ISAGA) prĂ©sente un intĂ©rĂȘt particulier chez le nouveau‐nĂ©

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4‐Diagnostic biologique (18)4.4‐Diagnostic immunologique (suite)InterprĂ©tation

‱Sujet immunocompĂ©tent‱ SĂ©rologie marque le contact avec le parasite

‱ IgM apparaissent tĂŽt, 1 semaine aprĂšs contamination

‱ IgG apparaissent tard, (8Ăšme – 21Ăšme jour) ; plateau au 2Ăšme mois, persistent toute la vie

‱ Il s’agit de dĂ©terminer s’il s’agit d’une infection Ă©volutive ou d’une infection ancienne avec cicatrice immunologique.‱ SĂ©roconversion: 2 sĂ©rologies Ă  15‐20 jours d’intervalle (premier rĂ©sultat nĂ©gatif et second rĂ©sultat positif)

‱ Ou alors IgM++ avec  augmentation significative du titre IgGentre deux prĂ©lĂšvements. 

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4‐Diagnostic biologique (19)4.4‐Diagnostic immunologique (suite)InterprĂ©tation

‱Sujet immunodĂ©primé‹ SĂ©rologie non concluante si rĂ©activation d’une toxoplasmose ancienne‱ Recherche parasite et/efficacitĂ© traitement d’épreuve

‱ Greffe organe solide sur terrain sĂ©ropositif pour T. gondii;‱ IgG rĂ©activĂ© en post‐greffe et utile au diagnostic

‱ Primo‐infection (contamination par greffon)‱ SĂ©rologie contributive, mais retard apparition IgG du fait du traitement immunosuppresseur; combiner avec recherche parasite

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4‐Diagnostic biologique (20)4.4‐Diagnostic immunologique (suite)InterprĂ©tation‱Grossesse:‱ SĂ©rologie totalement nĂ©gative en IgG et IgM quelles que soient les techniques :‱ sujet non immunisé‹ des contrĂŽles mensuels doivent ĂȘtre effectuĂ©s jusqu’à terme, le jour de l’accouchement et 1 mois aprĂšs.

‱ La sĂ©rologie  est positive stable en IgG ( taux supĂ©rieur au seuil), nĂ©gative en IgM sur 2 prĂ©lĂšvements  consĂ©cutifs Ă  environ 1 mois d’écart :‐ toxoplasmose ancienne, sujet immunisĂ© (pas de contrĂŽle

ultĂ©rieur).‱ Dans les autres cas, le biologiste doit :

‱ d’une part, prouver une sĂ©roconversion,‱ d’autre part, dater avec le plus de prĂ©cision possible la contamination par rapport Ă  la conception. â€ą Mesure de l’aviditĂ© des IgG : mesure de l’intensitĂ© de la liaison antigĂšnes‐anticorps

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Toxoplasmose fƓtaleLe but  est de dĂ©pister in utero une Ă©ventuelle atteinte fƓtale

‱Trois investigations sont possibles

Etude Ă©chographique : mensuellement  recherche des signes Ă©vocateurs de toxoplasmose congĂ©nitale : dilatation ventriculaire, zones Ă©chogĂšnes intracrĂąniennes, Ă©paississement placentaire, augmentation de volume du foie ou ascite

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Analyse du liquide amniotique Ă  partir de 16 Ă  18 semaines d’amĂ©norrhĂ©e, rechercher le parasite par inoculation de culture cellulaire et/ou Ă  la souris,  couplĂ©e Ă  une dĂ©tection d’ADN toxoplasmique par PCR.

Analyse du sang fƓtal : Ă  partir de 22 Ă  24 semaines avec mise en Ă©vidence du parasite par culture cellulaire et/ou inoculation Ă  un animal,

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Toxoplasmose de l’immunodĂ©pression‱1‐Toxoplasmose cĂ©rĂ©brale‱ Imagerie est l’élĂ©ment diagnostic principal,‱ La sĂ©rologie est peu informative, 

‱ L’isolement du parasite Ă  partir du sang ou d’autres produits biologiques sur culture ou la recherche de 

T. gondii par amplification gĂ©nique permet de conforter un diagnostic de prĂ©somption.

‱2‐ Toxoplasmose pulmonaire‱ Recherche de toxoplasme se fait dans le liquide de lavage bronchiolo‐alvĂ©olaire.

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Toxoplasmose oculaire‱ Le fond d’Ɠil est capital, montre les lĂ©sions‱ Le dosage des anticorps dans l’humeur aqueuse et la comparaison de leur taux Ă  celui du sĂ©rum en tenant compte de la quantitĂ© en immunoglobulines de ces milieux biologiques, permettent le diagnostic.‱Une augmentation des anticorps tĂ©moigne d’une production locale en relation avec un foyer toxoplasmique oculaire.‱ La recherche de T. gondii dans l’humeur aqueuse par amplification gĂ©nique est d’un grand intĂ©rĂȘt.

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5‐Principes thĂ©rapeutiques (1)

But‐ Eliminer le parasite ou empĂȘcher la rĂ©activation des Kystes‐ PrĂ©venir ou traiter les complications 

‱ Les mĂ©dicaments‐ Rovamycine (Spiramycine)‐ Fansidar (pyrimĂ©thamine + sulfadoxizine)‐Malocide ‐Adiazine (pyrimĂ©thamine + sulfadiazine)

IndicationsToxoplasmose acquise avec asthĂ©nie et persistance des adĂ©nopathies

Rovamycine : 150 000 UI/kg/j pendant 1 mois

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5‐Principes thĂ©rapeutiques (2)

‱Toxoplasmose congĂ©nitale‱Pendant 1 mois Rovamycine : 150 000 Ă  300 000 UI/kg/j et Fansidar (500 mg de sulfadoxine et 25 mg de pyrimĂ©thamine associĂ©e Ă  l’acide folinique), avec surveillance de l’hĂ©mogramme tous les 15 jours.

‱Poursuivre le traitement avec soit le Fansidar ou l’association Malocide‐Adiazine, soit la Rovamycine.

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5‐Principes thĂ©rapeutiques (3)

Toxoplasmose de l’immunodĂ©primĂ©Association pyrimĂ©thamine ‐ sulfadiazine :  â€ąPyrimĂ©thamine‱ d’attaque 100 mg/j pendant 2 mois ou tant que persistent les signes. â€ą traitement d’entretien : 50 mg/j en prĂ©vention des rechutes (risque estimĂ© entre 50 et 80% aprĂšs le traitement d’attaque)

‱ Sulfadiazine‱ est utilisĂ©e Ă  la posologie de 6 mg/kg, rĂ©partie en 4 prises, soit :‱ dose d’attaque : 100 Ă  150 mg/kg per os‱ et dose d’entretien : 3 g/j

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5‐Principes thĂ©rapeutiques (4)

‱En cas d’intolĂ©rance, d’autres associations peuvent ĂȘtre utilisĂ©es :‐ L’association pyrimĂ©thamine‐clindamycine‐ l’association pyrimĂ©thamine‐clarithromycine

‐ L’adjonction d’acide folinique Ă  ces thĂ©rapeutiques Ă  effets hĂ©matotoxiques est gĂ©nĂ©ralement  admis

‐ Des corticoĂŻdes peuvent ĂȘtre utilisĂ©s, pour une durĂ©e limitĂ©e (7 Ă  15 jours), en cas d’ƓdĂšme cĂ©rĂ©bral

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5‐Principes thĂ©rapeutiques (5)

Toxoplasmose oculaire‱ Le 1er mois : 

1. Rovamycine : 300 000 UI/Kg/j chez l’enfant et 150 000 UI/Kg/j chez l’adulte,

2. Fansidar : 1 comprimĂ© par 20Kg tous les 10 Jours, en surveillant l’hĂ©mogramme 2 fois par mois, avec prise d’acide folinique (5mg/j chez l’enfant et 50 mg/j chez l’adulte) ;

3. CorticothĂ©rapie par voie gĂ©nĂ©rale.‱Par la suite,

‱ Fansidar : 1 comp/20Kg tous les 15 jours pendant 6 mois avec surveillance habituelle (hĂ©mogramme) et prescription de l’acide folinique.

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6‐PrĂ©vention (1)

‱Concerne que les femmes sĂ©ro‐nĂ©gatives au cours de la grossesse et les sujets porteurs de VIH dĂ©pourvus d’anticorps anti‐T. gondii.

‱Avant la grossesse‱ Avant toute grossesse, une sĂ©rologie positive est preuve d’une immunitĂ© acquise dĂ©finitivement rassurante. â€ąChez les femmes sĂ©rologiquement nĂ©gatives (moins de 50% des cas), de nouveaux contrĂŽles doivent ĂȘtre faits dĂšs le dĂ©but de la grossesse.

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6‐PrĂ©vention (2)

‱Pendant la grossesse sĂ©rologies ne concernent que:‱ les femmes qui n’ont jamais Ă©tĂ© contrĂŽlĂ©es â€ą et celles Ă  sĂ©rologies prĂ©cĂ©dentes nĂ©gatives. 

‱On peut obtenir 3 types de rĂ©sultats :‱ SĂ©rologies indiscutablement nĂ©gatives:  rĂ©pĂ©ter la sĂ©rologie et donner les conseils de prophylaxie‱ SĂ©rologie fortement positive avec prĂ©sence  d’IgMspĂ©cifiques et/ou ascension des titres d’anticorps IgG:  On cherche Ă  dater l’infection par rapport Ă  la conception‱ SĂ©rologies faiblement positives: soit Ă  une immunitĂ© acquise ancienne ou une toxoplasmose au dĂ©but. 

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6‐PrĂ©vention (3)‱A la naissanceChez le nouveau‐nĂ© cliniquement sain mais nĂ© de mĂšre contaminĂ©e :

‱ prescription systĂ©matique dĂšs la naissance de Rovamycine (300 000 UI/kg/j)

‱ examens cliniques et paracliniques pour distinguer le nouveau‐nĂ© indemne de toxoplasmose congĂ©nitale, de l’enfant atteint d’une forme infra‐clinique.‱ Si diagnostic confirmĂ©, traitement  au moins 1 an par Fansidarou par Malocide – Adiazine associĂ©s Ă  l'acide folique  permet d’éviter l’apparition d’une forme retardĂ©e.‱ La sĂ©rologie, le fond d’Ɠil et l’E.E.G. seront annuellement contrĂŽlĂ©es jusqu’à la pubertĂ©. En cas de rĂ©ascensionsĂ©rologique, reprendre le traitement.

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6‐PrĂ©vention (4)

‱Chez l’immunodĂ©primé‹ SĂ©rologie toxoplasmique nĂ©gative conseil hygiĂ©no‐diĂ©tĂ©tique.

‱ Chez les sujets Ă  sĂ©rologie toxoplasmique positive  Envisager une prophylaxie mĂ©dicamenteuse par le Bactrim par exemple.

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Résumé

La toxoplasmose est une parasitose cosmopolite bĂ©nignechez le sujet immunocompĂ©tent, la transmissiontransplacentaire expose le nouveau‐nĂ© aux complicationsgraves neurologiques et oculaires. Le dĂ©pistage prĂ©cocechez la femme enceinte permet d’éviter ces complications.La toxoplasmose est une infection opportuniste du SIDA etle pronostic vital est rĂ©servĂ© chez les sujetsimmunodĂ©primĂ©s. Le traitement correct et prĂ©coce donnede trĂšs bon rĂ©sultats.

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Conclusion

LiĂ©e Ă  nos habitudes alimentaires, la toxoplasmose est une anthropozoonose cosmopolite. Sa gravitĂ© chez la femme enceinte et le sujet immunodĂ©primĂ© montre l’importance des mesures prophylactiques systĂ©matique 

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Références

‱ O. Faye , A. Leye,  Y. Dieng, D. Richard‐Lenoble & S. Diallo .  La toxoplasmose Ă  Dakar.Sondage sĂ©roĂ©pidĂ©miologique chez 353 femmes en Ăąge de procrĂ©er.

‱ Maiga Y, SamakĂ© M, Marjolet M  [Toxoplasmosis in Bamako (Republic of Mali). Incidence of the disease in women of child‐bearing age]. Med Trop (Mars). 1984 Oct‐Dec;44(4):319‐22.

‱ Parasitoses et Mycoses des rĂ©gions tempĂ©rĂ©es et tropicales, ANOFEL, Editions Elsevier Masson, 2007

‱ Dinkorma T. Ouologuem , Abdoulaye A. DjimdĂ© , Nouhoum Diallo , Ogobara K. Doumbo , and David S. Roos: Toxoplasma gondiiSeroprevalence in Mali: Journal of Parasitology 99(2):371‐374. 2013

‱ CMIT â€“ Toxoplamose in E.PILLY: Vivactis Plus Ed 2010 : 421‐423.

‱ Toxoplasmose chez l’homme:  Diagnostic, prĂ©vention et traitement: supplĂ©ment au laborama numero 35. http://labo‐cordeliers.fr/fichiers/1908/7ba31472aed61a4168fd23f9a062c0f2/TOXOPLASMOSE.pdf

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