Skrip Si325

5/19/2018 Skrip Si325

1/78

i

EFEKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK BUAH MAHKOTA DEWA

(Phaleria macrocarpa[Scheff.] Boerl)SEBAGAI BAHAN ALTERNATIF

STERILISASI SALURAN AKAR GIGI TERHADAP BAKTERI MIX

SALURAN AKAR GIGI

PUTU RIA ARTAYANTI

NPM :10.8.03.81.41.1.5.006

FAKULTAS KEDOKTERAN GIGI

UNIVERSITAS MAHASARASWATI DENPASAR

DENPASAR

2014

5/19/2018 Skrip Si325

2/78

ii

EFEKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK BUAH MAHKOTA DEWA

(Phaleria macrocarpa [Scheff.] Boerl) SEBAGAI BAHAN ALTERNATIF

STERILISASI SALURAN AKAR GIGI TERHADAP BAKTERI MIX

SALURAN AKAR GIGI

Skripsi ini dibuat sebagai salah satu syarat untuk mendapatkan gelar Sarjana

Kedokteran Gigi pada Fakultas Kedokteran Gigi

Universitas Mahasaraswati Denpasar

Oleh :Putu Ria Artayanti

NPM :10.8.03.81.41.1.5.006

Menyetujui

Dosen Pembimbing

Pembimbing I Pembimbing II

drg. P.A. Mahendri Kusumawati, M.Kes., FISIDdrg. Putu Rusmiany, M.Biomed

NIP. 19590512 198903 2001 NPK. 826795206

5/19/2018 Skrip Si325

3/78

iii

Tim Penguji skripsi Sarjana Kedokteran Gigi Fakultas Kedokteran Gigi

Universitas Mahasaraswati Denpasar telah meneliti dan mengetahui cara pembuatanskripsi dengan judul : EFEKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK BUAH

MAHKOTA DEWA (Phaleria macrocarpa [Scheff.] Boerl) SEBAGAI BAHAN

ALTERNATIF STERILISASI SALURAN AKAR GIGI TERHADAP BAKTERIMIX SALURAN AKAR GIGIyang telah dipertanggung jawabkan oleh calon sarjana

yang bersangkutan pada tanggal 24 Februari 2014.

Maka atas nama Tim Penguji skripsi Sarjana Kedokteran Gigi Fakultas

Kedokteran Gigi Universitas Mahasaraswati Denpasar dapat mengesahkan.

Denpasar, 24 Februari 2014

Tim Penguji Skripsi

FKG Universitas Mahasaraswati Denpasar

Ketua,

drg. P.A. Mahendri Kusumawati, M.Kes., FISID

NIP. 19590512 198903 2001

Anggota : Tanda Tangan :

1.

drg. Putu Rusmiany, M.Biomed 1

NPK. 826795206

2. drg. Dewa Made Wedagama, Sp. KG 2

NPK. 826395207

Mengesahkan,

Dekan Fakultas Kedokteran Gigi

Universitas Mahasaraswati Denpasar

drg. P.A. Mahendri Kusumawati, M.Kes., FISIDNIP. 19590512 198903 2001

5/19/2018 Skrip Si325

4/78

iv

KATA PENGANTAR

Dengan memanjatkan puji syukur kepada Tuhan Yang Maha Esa, karena atas

berkat rahmat-Nya penulis dapat menyelesaikan skripsi yang berjudul

EFEKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK BUAH MAHKOTA DEWA (Phaleria

macrocarpa [Scheff.]Boerl) SEBAGAI BAHAN ALTERNATIF STERILISASI

SALURAN AKAR GIGI TERHADAP BAKTERI MIX SALURAN AKAR GIGI

ini tepat pada waktunya.

Skripsi ini disusun untuk memenuhi kewajiban penulis sebagai salah satu

syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kedokteran Gigi (SKG) pada Fakultas

Kedokteran Gigi Universitas Mahasaraswati Denpasar.

Keberhasilan penyusunan skripsi ini tidak terlepas dari bantuan banyak pihak.

Untuk itu penulis menyampaikan rasa terima kasih yang setulus-tulusnya kepada :

1. drg. P.A. Mahendri Kusumawati, M.Kes., FISID selaku dosen pembimbing I

serta selaku Dekan Fakultas Kedokteran Gigi Universitas Mahasaraswati

Denpasar. Atas segala upaya dan bantuan beliau dalam mengarahkan,

membimbing dan memberikan petunjuk kepada penulis sehingga skripsi ini

dapat terselesaikan dengan baik.

2. drg. Putu Rusmiany, M.Biomed selaku dosen pembimbing II yang telah

memberikan bantuan dalam membimbing sehingga skripsi ini terselesaikan.

3. drg. Dewa Made Wedagama, Sp. KGselaku dosen penguji yang telah bersedia

menguji serta memberikan koreksi dan masukan kepada penulis.

4. Bapak dan ibu tercinta, Made Artawan dan Nyoman Artini. Adik-adikku Rusti

Ramayanti dan Hari Kirtana Dasa, serta keluarga tercinta atas doa, dukungan

dan bantuan finansialnya sehingga penyusunan skripsi ini dapat berjalan

lancar.

5/19/2018 Skrip Si325

5/78

v

5. Teman-teman seperjuangan skripsi Lab Endodonsia : Iga, Gung Surya, dan

Fitri. Giska, Riscapy, Silvia, Ika, Ardy, Yudha, teman-teman Cranter, teman-

teman di Kesadaran Krishna, ibu Amy, Kak Anggi, serta seluruh Civitas

Akademik Fakultas Kedokteran Gigi Universitas Mahasaraswati Denpasar

dan pihak yang tidak bisa penulis sebutkan satu-persatu, atas bantuan dan

motivasinya baik secara langsung maupun tidak langsung selama penyusunan

skripsi ini hingga selesai.

Penulis menyadari sepenuhnya bahwa skripsi ini masih jauh dari

sempurna.Oleh karena itu, penulis mengharapkan saran dan kritik yang bersifat

membangun untuk kesempurnaan laporan skripsi ini.

Penulis berharap semoga laporan skripsi ini dapat bermanfaat, khususnya bagimahasiswa Fakultas Kedokteran Gigi, umumnya bagi masyarakat dan bidang

pelayanan kesehatan.

Denpasar, 24 Februari 2014

Penulis

5/19/2018 Skrip Si325

6/78

vi

Efektivitas Antibakteri Ekstrak Buah Mahkota Dewa (Phaleri a macrocarpa

[Scheff.]Boer l) Sebagai Bahan Alternatif Sterilisasi Saluran Akar Gigi

Terhadap Bakteri Mix Saluran Akar Gigi

Abstrak

Bakteri mix saluran akar gigi adalah sejumlah bakteri yang terdapat di dalam

saluran akar gigi yang dapat menyebabkan infeksi saluran akar. Perlunya sterilisasi

saluran akar dengan suatu bahan medikamenadalah untuk mengurangi atau

menghilangkan bakteri mix saluran akar gigi. Tetapi bahan medikamen juga diketahuiberpotensi menimbulkan efek samping yang berbahaya karena material ini

merupakan agen terapeutik atau kimia yang aktif dan toksik, sehingga perludikembangkan bahan medikamen alternatif yang berasal dari bahan alami.Buah mahkota

dewa (Phaleria macrocarpa [Scheff.]Boerl)merupakan salah satu alternatif yang dapatdipilih sebagai bahan medikamen saluran akar karena terdapat kandungan senyawa

yang berkhasiat sebagai bahan antibakteri, yaitu minyak atsiri, saponin, tannin,

flavonoid, fenol, glikosida dan triterpenoid.Tujuan penelitian ini adalah untukmengetahui apakah ekstrak buah mahkota dewa memiliki efektivitas antibakteri

sebagai bahan alternatif sterilisasi saluran akar gigi terhadap bakteri mix saluran akargigi. Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental dengan rancangan post test

only control group design. Sampel yang digunakan adalah bakteri mix saluran akar

gigi yang diperoleh dengan menggunakan paper poin steril nomer 45 yang dimasukanke dalam saluran akar gigi dengan diagnosa nekrosis pulpa.Penelitian ini dimulai

dengan ekstraksi buah mahkota dewa dengan pelarut metanol 96% kemudian skrining

fitokimia, pembiakan spesimen dan selanjutnya uji efektivitas antibakteri yang

dilakukan dengan metode dilusi (pengenceran ganda) dengan konsentrasi 7%, 8%,12,5%.Hasil dari penelitian ini menunjukan bahwa konsentrasi 7%, 8%, 12,5%

ekstrak buah mahkota dewa memiliki efektivitas antibakteri sebagai bahan alternatifsterilisasi saluran akar gigi terhadap bakteri mix saluran akar gigi.

Kata Kunci : Ekstrak buah mahkota dewa, sterilisasi saluran akar gigi, bakteri mix

saluran akar gigi.

5/19/2018 Skrip Si325

7/78

vii

DAFTAR ISI

Halaman Judul ............................................................................................. i

Halaman Persetujuan Pembimbing ............................................................. ii

Halaman Persetujuan Penguji dan Pengesahan Dekan ............................... iii

KATA PENGANTAR ................................................................................ iv

ABSTRAK ................................................................................................. vi

DAFTAR ISI ............................................................................................... vii

DAFTAR TABEL ...................................................................................... x

DAFTAR GAMBAR ................................................................................. xi

DAFTAR SINGKATAN ........................................................................... xii

BAB 1 PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang ................................................................................... 1

1.2 Rumusan Masalah .............................................................................. 3

1.3 Tujuan Penelitian ............................................................................... 4

1.4 Manfaat Penelitian ............................................................................. 4

BAB II TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Mikroorganisme Saluran Akar ........................................................ 5

2.2 Sterilisasi Saluran Akar .................................................................... 8

2.3 Penggunaan Medikamen Pada Perawatan Saluran Akar .................. 9

2.4 Mahkota Dewa (Phaleria macrocarpa [Scheff.] Boerl)................... 9

2.5 Nilai Farmakologis Buah Mahkota Dewa ........................................ 12

2.6 Peran Tanaman Mahkota Dewa Sebagai Antibakteri ...................... 14

BAB III KERANGKA KONSEP PENELITIAN

3.1 Kerangka Konsep ............................................................................. 16

3.2 Hipotesis Penelitian .......................................................................... 16

5/19/2018 Skrip Si325

8/78

viii

BAB IV METODE PENELITIAN

4.1 Rancangan Penelitian ....................................................................... 17

4.2 Sampel Penelitian ............................................................................. 18

4.3 Besar Sampel .................................................................................... 18

4.4 Identifikasi Variabel ......................................................................... 19

4.5 Definisi Operasional ......................................................................... 20

4.6 Bahan dan Alat Penelitian ................................................................ 21

4.6.1 Alat dan Bahan Pembuatan Ekstrak Buah Mahkota Dewa .... 21

4.6.2 Alat dan Bahan Uji Identifikasi Fitokimia ............................. 22

4.6.3 Alat dan Bahan Uji Efektivitas Ekstrak Buah Mahkota

Dewa (Phaleria macrocarpa[Scheff.]Boerl) Terhadap BakteriMix Saluran Akar Gigi .................................................................... 23

4.7Tempat dan Waktu Penelitian .............................................................. 24

4.7.1 Tempat Penelitian ............................................................................. 24

4.7.2 Waktu Penelitian ............................................................................... 24

4.8 Alur Penelitian ................................................................................. 25

4.9 Prosedur Penelitian ........................................................................... 26

4.9.1 Pembuatan Ekstrak Buah Mahkota Dewa ............................... 26

4.9.2 Skrining Fitokimia Ekstrak Buah Mahkota Dewa .................. 27

4.9.3 Pembiakan Spesimen ....................................................................... 29

4.9.4 Penentuan MIC dan MBC Bahan Coba ................................. 29

4.10 Analisis Data ................................................................................... 31

BAB V HASIL PENELITIAN

5.1 Ekstraksi Buah Mahkota Dewa ........................................................ 32

5.2 Uji Identifikasi Fitokimia ................................................................ 33

5.2.1 Pemeriksaan Minyak Atsiri .................................................... 33

5.2.2 Pemeriksaan Flavonoid .................................................................... 33

5.2.3 Pemeriksaan Saponin ....................................................................... 34

5.2.4 Pemeriksaan Alkaloid ...................................................................... 35

5/19/2018 Skrip Si325

9/78

ix

5.2.5 Pemeriksaan Fenol ................................................................. 36

5.2.6 Pemeriksaan Tannin ......................................................................... 37

5.2.7 Pemeriksaan Steroid dan Triterpenoid ................................... 37

5.2.8 Pemeriksaan Glikosida ..................................................................... 38

5.3 Uji Efektivitas Antibakteri ............................................................... 39

BAB VI PEMBAHASAN......................................................................... 44

BAB VII SIMPULAN dan SARAN

7.1 Simpulan .......................................................................................... 49

7.2 Saran ................................................................................................ 49

DAFTAR PUSTAKA............................................................................... 50

LAMPIRAN

5/19/2018 Skrip Si325

10/78

x

DAFTAR TABEL

Tabel 2.1 Jenis Bakteri Yang Paling Banyak Ditemukan Pada Infeksi

Saluran Akar............................................................................ 7

Tabel 5.1 Perhitungan jumlah bakteri untuk bahan coba ekstrak buah

Mahkota Dewa ....................................................................... 42

5/19/2018 Skrip Si325

11/78

xi

DAFTAR GAMBAR

Gambar 2.1 Buah Mahkota Dewa ........................................................... 11

Gambar 5.1 Ekstrak Kental Buah Mahkota Dewa ................................... 32

Gambar 5.2 Larutan Flavonoid ................................................................ 34

Gambar 5.3 Larutan Saponin ................................................................... 35

Gambar 5.4 Larutan Alkaloid .................................................................. 36

Gambar 5.5 Larutan Fenol ....................................................................... 36

Gmabra 5.6 Larutan Tannin ..................................................................... 37

Gambar 5.7 Larutan Triterpenoid ............................................................ 38

Gambar 5.8 Larutan Glikosida ................................................................ 39Gambar 5.9 Suspensi Bakteri Mix Saluran Akar Gigi Setelah Berkontak

Dengan Bahan Coba Pada Berbagai Konsentrasi ................ 40

Gambar 5.10 Hasil Biakan Mulai Tampak Jernih Bila Dibandingkan

Dengan Kontrol Positif ............................................................................. 40

Gambar 5.11 Hasil Pengujian Antibakteri Ekstrak Buah Mahkota Dewa

7%, 8%, 12,5% Pada MediaBlood Agar............................. 41

5/19/2018 Skrip Si325

12/78

xii

DAFTAR SINGKATAN

CFU Colony Forming Unit

KHM Konsentrasi Hambat Minimum

KBM Konsentrasi Bunuh Minimum

MIC Minimum Inhibitory Concentration

MBC Minimum Bactericidal Concentration

TSB trypic soy broth

5/19/2018 Skrip Si325

13/78

1

BAB I

PENDAHULUAN

1.1Latar Belakang

Dewasa ini, kesehatan gigi dan mulut pada masyarakat perlu

diperhatikan.Angka kesakitan gigi di Indonesia cenderung meningkat dari tahun ke

tahun. Kurangnya kesadaran masyarakat dan perekonomian yang kurang menentu,

secara tidak langsung akan mempengaruhi tingkat kesehatan masyarakat pada

umumnya, serta mempengaruhi kesehatan gigi pada khususnya. Perawatan gigi yang

kurang baik dapat menyebabkan masalah kesehatan gigi.Masalah kesehatan gigi yang

umum terjadi di Indonesia adalah karies gigi.Karies gigi adalah sebuah penyakit

infeksi yang merusak struktur gigi.Penyakit ini menyebabkan gigi berlubang, nyeri

dan infeksi.Jika infeksi karena karies sudah mencapai syaraf gigi maka perawatan

yang dilakukan adalah perawatan saluran akar (root canal treatment).Perawatan

saluran akar adalah tindakan yang dilakukan untuk mempertahankan gigi.Perawatan

saluran akar terdiri dari preparasi, sterilisasi, dan pengisian.Dari ketiga tahap

perawatan saluran akar tersebut, penulis akan membahas mengenai sterilisasi saluran

akar.

Tujuan utama perawatan saluran akar ialah menghilangkan bakteri yang invasi

di dalam saluran akar dan menciptakan lingkungan yang asepsis sehingga bakteri

tidak dapat bertahan hidup.Tetapi mengingat bentuk anatomi pulpa yang kompleks,

terkadang bakteri masih dapat dijumpai di dalam tubulus dentin walaupun sudah

5/19/2018 Skrip Si325

14/78

2

dilakukan pembersihan melalui preparasi saluran akar biomekanikal dan dengan

larutan irigasi (Amalia, 2012).Pada penelitian awal ditemukan beberapa spesies

diantaranyastreptococci, micrococci, dan sejumlah kecil bakteri anaerob pada infeksi

saluran akar maupun penyakit periradikular.Bakteri anaerob meliputi 90% dari

bakteri penyebab infeksi saluran akar. Berdasarkan temuan tersebut, ternyata

penyebab infeksi saluran akar tidak hanya satu macam bakteri tetapi berbagai macam

bakteri yang terlibat termasuk organisme anaerob seperti Porphyromonas,

Bacterioides gingivalis, Phorphyromonas bacterioides endodontalis, dan Prevotella

bacterioides buccae yang dinamakanBacterioidesspesies (Agustin W, 2005). Bakteri

mix saluran akar gigi adalah sejumlah bakteri (aerob dan anaerob) yang terdapat di

dalam saluran akar gigi, diperoleh dengan menggunakan paper poin steril nomer 45

yang dimasukan ke dalam saluran akar gigi dengan diagnosa nekrosis pulpa.

Perlunya sterilisasi saluran akar adalah untuk memusnahkan atau mengurangi

jumlah mikroorganisme secara nyata.Sterilisasi saluran akar dilengkapi dengan

medikamen saluran akar (Grossman, 1995).Pemberian medikamen saluran akar

bertujuan untuk memperoleh aktivitas antimikroba di saluran akar, menetralkan sisa-

sisa debris di saluran akar, mengontrol dan mencegah nyeri (Agustina,

2011).Diketahui juga bahwa medikamen saluran akar berpotensi menimbulkan efek

samping yang berbahaya karena material ini adalah suatu agen terapeutik atau kimia

yang aktif dan toksik (Walton dan Torabinejad, 2002). Dengan kelemahan yang

dimiliki dari bahan medikamen saluran akar, perlu dikembangkan bahan alami

5/19/2018 Skrip Si325

15/78

3

dengan kadar toksisitas rendah tetapi memiliki daya antibakteri yang baik sebagai

bahan medikamen saluran akar.

Bahan alami khususnya tumbuh-tumbuhan merupakan keanekaragaman

hayati yang masih sangat sedikit menjadi subjek penelitian ilmiah di

Indonesia.Tanaman obat Indonesia telah diketahui sebagai sumber yang potensial

sebagai agen antibakteria (Beatrice, 2010).Bahan alami yang mungkin bisa

dimanfaatkan sebagai bahan alternatif medikamen saluran akar adalah buah mahkota

dewa (Phaleria macrocarpa[Scheff.]Boerl).Mahkota dewa merupakan tanaman obat

tradisional yang sudah dikenal dan saat ini semakin diminati masyarakat.Pemanfaatan

tanaman mahkota dewa ini secara tradisional adalah sebagai tanaman yang sejak lama

dikenal dapat memiliki khasiat untuk mengobati luka, diabetes, lever, flu, alergi,

sesak nafas, desentri, penyakit kulit, jantung, ginjal, dan kanker.Efek terapeutik buah

mahkota dewa erat hubungannya dengan senyawa kimia yang terkandung di

dalamnya.Telah diketahui bahwa biji mahkota dewa bersifat toksik sedangkan daging

buahnya tidak.Potensi penghambatan daging buah mahkota dewa lebih besar jika

dibandingkan dengan akar, kulit batang, maupun daunnya (Kere, 2011).Komposisi

aktif buah mahkota dewa adalah tanin, flavonoid, saponin dan alkaloid (Wijoyo,

2012).

Dari uraian tersebut timbul pemikiran untuk meneliti efektifitas antibakteri

ekstrak buah mahkota dewa (Phaleria macrocarpa [Scheff.]Boerl) sebagai bahan

alternatif sterilisasi saluran akar gigi terhadap bakteri mix saluran akar gigi.

5/19/2018 Skrip Si325

16/78

4

1.2Perumusan Masalah

Berdasarkan uraian latar belakang diatas, maka permasalahan yang timbul

adalah :

Apakah ekstrak buah mahkota dewa (Phaleria macrocarpa

[Scheff.]Boerl)memiliki efektifitas antibakteri sebagai bahan alternatif sterilisasi

saluran akar dengan mengetahui konsentrasi minimal yang dapat menghambat dan

membunuh bakteri mix saluran akar gigi?

1.3

Tujuan Penelitian

Tujuan dari penelitian ini adalah :

Untuk mengetahui apakah ekstrak buah mahkota dewa (Phaleria macrocarpa

[Scheff.]Boerl) memiliki efektifitas antibakteri sebagai bahan alternatif sterilisasi

saluran akar dengan mengetahui konsentrasi minimal yang dapat menghambat dan

membunuh bakteri mix.

1.4Manfaat Penelitian

Hasil dari penelitian ini diharapkan dapat memberikan manfaat sebagai

berikut :

a. Dengan penelitian ini, diharapkan potensi pendayagunaan tanaman obat

berkhasiat yang ada di Indonesia dapat dikembangkan.

b.

Dapat diketahui efektifitas antibakteri ekstrak buah mahkota dewa sebagai

bahan alternatif sterilisasi saluran akar gigi.

5/19/2018 Skrip Si325

17/78

5

c. Meningkatkan pengembangan material kedokteran gigi yang berasal dari alam

mengingat kelemahan bahan kimia dari material yang aktif dan toksik pada

jaringan.

5/19/2018 Skrip Si325

18/78

6

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Mikroorganisme Saluran Akar

Sebagian besar patosis jaringan pulpa dan periradikuler secara langsung atau

tidak langsung terkait dengan mikroorganisme. Pengetahuan mengenai bakteri yang

terkait dengan patosis jaringan pulpa sangat penting agar proses penyakitnya dapat

lebih dipahami dan perawatannya dapat lebih tepat. Untuk menginvasi dan

menginfeksi pulpa, mikroba bisa melalui berbagai cara. Sumber utama bakteri dalam

pulpa adalah dari karies (Walton dan Torabinejad, 2002). Karies merupakan suatu

penyakit pada jaringan keras gigi yang ditandai oleh rusaknya enamel, dentin dan

sementum oleh aktivitas metabolisme plak dental yang ada dalam suatu karbohidrat

yang diragikan. Proses terjadinya karies ditandai dengan demineralisasi jaringan

keras gigi yang diikuti dengan kerusakan bahan organiknya (Siregar, 2011).

Ketika pulpa terpajan oleh karies, banyak sekali spesies oportunitis dari flora

rongga mulut yang menginvasi dan berkoloni di jaringan yang nekrosis. Pulpa yang

nekrosis akan dengan cepat terinvasi dan terkolonisasi oleh bakteri (Walton dan

Torabinejad, 2002). Pada sebagian besar kasus, dijumpai organisme gram positif dan

gram negatif, pada sedikit kasus dijumpai jamur.Organisme-organisme ini sering

ditemukan dalam berbagai kombinasi daripada sebagai suatu spesies tunggal.Anaerob

yang harus ada (anaerob obligat) sering dihubungkan dengan gigi yang mempunyai

lesi periapikal (Grossman, 1995).

5/19/2018 Skrip Si325

19/78

7

Dari sekitar 500 spesies bakteri yang dikenal sebagai flora normal rongga

mulut hanya relatif sedikit saja kelompok yang dapat diisolasi dari ruang pulpa yang

terinfeksi.Yang dominan adalah bakteri anaerob obligat, dengan sedikit bakteri

anaerob fakultatif, dan jarang sekali ditemukan yang aerob.Contohnya, pada suatu

penelitian memeriksa gigi utuh yang saluran akarnya terinfeksi, lebih dari 90%

bakterinya adalah anaerob obligat (Walton dan Torabinejad, 2002).

Baik mikroorganisme aerob dan anaerob dapat ditemukan pada saluran

akar.Sebagian besar mikroorganisme yang diisolasi dari gigi utuh nonvital adalah

anaerob, terutama dari genera bakteroid, peptokokus, peptostrepkokus, fusiform,

basili, dan korinebakterium(Grossman, 1995).

Bakteri anaerob gram negatif sering sekali diisolasi dari gigi dengan infeksi

saluran akar, oleh karena itu endotoksin bakteri mungkin menyebabkan iritasi

jaringan periapikal dan berperan penting dalam patogenesis lesi inflamasi dan pulpa

(Kere, 2011). Contoh bakteri anaerob gram negatif terdapat pada saluran akar

diantaranya adalah Bacteroides,Prevotella,Porphyromonas, Fusobacterium, dan

Veillonella sedangkan contoh bakteri anaerob gram positif yang terdapat pada saluran

akar adalah Actinomyces, Propionibacterium, Peptostreptococcus, dan Eubacterium

(Walton dan Torabinejad, 2002).

5/19/2018 Skrip Si325

20/78

8

Tabel 2.1 Jenis bakteri yang paling banyak ditemukan pada infeksi saluran akar

Genus Frekuensi isolasi (%)

Bacteroides 70

Prevotella 60

Lactobacillus 51

Oral streptococci 41

Clostridium 36

Fusobacterium 33

Propionibacterium 29

Corynebacterium 25

Bifidobacterium 21

Eubacteria 20

Capnocytophaga 17

Actinomyces 16

Leuconostoc 13

Porphyromonas 10

Candida 10

Veilonella 9

Gamella 8

Staphylococcus 7

Aerococcus 5

Saccharomyces 3

5/19/2018 Skrip Si325

21/78

9

Enterococcus 3

(Lamont dkk. 2006 cit Widrayani 2013)

2.2 Sterilisasi Saluran Akar

Sterilisasi adalah proses pemusnahan semua mikroorganisme. Disinfeksi

adalah menghilangkan organisme vegetatif yang menyebabkan penyakit (Tarigan,

2006).Sterilisasi saluran akar bertujuan untuk mengurangi atau menghilangkan flora

mikrobial di dalam saluran akar. Menurut studi Byston dan Sundqvist tahun 1985,

apabila tidak dilakukan sterilisasi saluran akar pada setiap kali melakukan perawatan

maka jumlah mikroorganisme akan meningkat jumlahnya. Perlunya sterilisasi saluran

akar adalah untuk memusnahkan atau mengurangi jumlah mikroorganisme secara

nyata.Sterilisasi saluran akar dilengkapi dengan medikamen saluran akar.Medikamen

saluran akar adalah suatu tahap yang penting pada perawatan saluran akar (Grossman,

1995).

Aplikasi bahan sterilisasi saluran akar antar kunjungan dapat membantu untuk

menghilangkan bakteri yang mampu bertahan setelah dilakukan preparasi

biomekanis.Delgado dkk. (2010 cit. Dewi 2011) menyatakan bahwa, meskipun

preparasi biomekanik merupakan prosedur yang efektif untuk mengurangi

mikroorganisme namun prosedur ini tidak dapat menghilangkan bakteri secara

sempurna pada saluran akar lateral dan aksesori sehingga sterilisasi intrakanal antar

kunjungan direkomendasikan untuk pengurangan bakteri lebih lanjut dalam sistem

saluran akar.

5/19/2018 Skrip Si325

22/78

10

2.3Penggunaan Medikamen Pada Perawatan Saluran Akar

Penggunaan bahan medikamen dalam perawatan endodontik merupakan salah

satu langkah yang penting.Suatu bahan medikamen saluran akar yang ideal

diharapkan mampu megeliminasi bakteri dalam saluran akar yang tidak tereliminasi

pada prosedur eliminasi, mampu mengurangi rasa sakit maupun inflamasi

periradikular, mampu mengeliminasi eksudat apikal, serta mencegah resopsi akar dan

infeksi ulang (Kere, 2011).

Mengingat pentingnya melakukan sterilisasi saluran akar sebelum melakukan

pengisian saluran akar, dibutuhkan suatu medikamen atau obat-obatan intrasaluran.

Sebelum mempertimbangkan suatu medikamen yang akan digunakan terlebih dahulu

menentukan jenis mikroorganisme apa yang akan dimusnahkan (Grossman, 1995).

Medikamen saluran akar dikelompokkan atas golongan fenol (eugenol, CMCP

(camphorated monochlorophenol), cresatin, kresol), aldehid (formokresol,

glutaraldehid), halida (sodium hipoklorit, iodin-kalium iodida), steroid, Ca(OH)2,

antibiotik dan kombinasi. Namun yang paling sering digunakan adalah Ca(OH)2,

CMCP dan formokresol. Bahan medikamen ini juga diketahui berpotensi

menimbulkan efek samping yang berbahaya karena material ini merupakan agen

terapeutik atau kimia yang aktif dan toksik (Amalia, 2012).

2.4 Mahkota Dewa (Phaleria macrocarpa [Scheff.] Boerl)

Salah satu tumbuhan obat Indonesia yang sangat populer saat ini adalah

mahkota dewa (Phaleria macrocarpa[Scheff.]Boerl).Bertahun-tahun yang lalu, tidak

5/19/2018 Skrip Si325

23/78

11

banyak orang yang mengenal tanaman mahkota dewa sebagai tanaman yang

berkhasiat. Tanaman yang mempunyai nama latin Phaleria macrocarpa karena

buahnya yang besar ini, hanya dianggap sebagai sarang ular, apalagi tanaman ini

termasuk tanaman perdu dan buahnya pun sangat pahit. Habitat asli tanaman mahkota

dewa di Papua sehingga disebut juga Phaleria papuana.Tidak diketahui bagaimana

caranya, tetapi, di keraton Mangkunegara Solo dan keraton Yogyakarta tanaman

mahkota dewa ternyata sudah dikenal sebagai tanaman yang berkhasiat untuk

keperluan pengobatan (Suryani dan Stepriyani, 2007).

Menurut Soeksmanto, Hapsari dan Simanjuntak (2007) bahwa tanaman ini

mempunyai 1200 spesies yang tersebar dalam 67 negara. Penampilan tanaman ini

sangat menarik, terutama saat buahnya mulai tua dengan warna merah marun,

sehingga banyak dipelihara sebagai tanaman hias.Daun mahkota dewa, sering direbus

untuk menyembuhkan penyakit lemah syahwat, disentri, alergi dan tumor.

Mahkota dewa bisa ditemukan ditanam di pekarangan sebagai tanaman hias

atau dikebun-kebun sebagai tanaman peneduh. Perdu menahun ini tumbuh tegak

dengan tinggi 1-2,5 m. Batangnya bulat, permukannya kasar, warnanya cokelat,

berkayu dan bergetah, percabangan simpodial. Daun tunggal, letaknya berhadapan,

bertangkai pendek, bentuknya lanset atau lonjong, ujung dan pangkalnya runcing, tepi

rata (Manganti, 2011).

5/19/2018 Skrip Si325

24/78

12

Gambar 2.1 Buah Mahkota Dewa

Berdasarkan taksonominya, tanaman mahkota dewa dapat diklasifikasikan

sebagai berikut:

Divisi :Spermatopyta

Subdivisi :Angiospermae

Kelas :Dicotyledonae

Bangsa :Thymelaeaceae

Suku :Thymelaeceae

Marga :Phaleria

Spesies :Phaleria macrocarpa [Scheff.]BoerlatauPhaleria papuana

5/19/2018 Skrip Si325

25/78

13

Karena ukuran buah yang relatif besar, para ahli botani memberi sebutan macrocarpa

(macro=besar) (Beatrice, 2010).

2.5 Nilai Farmakologis Mahkota Dewa

Kandungan kimia mahkota dewa adalah alkaloid, saponin, flavonoid, dan

polifenol, terutama dibagian daunnya (Sutanto, 2013).Perbedaan kandungan senyawa

kimia yang ada menunjukkan perbedaan aktivitas farmakologisnya.Telah diketahui

bahwa biji mahkota dewa bersifat toksik sedangkan buahnya tidak, dengan potensi

penghambatan yang lebih besar dibandingkan daunnya.Buah mahkota dewa terdiri

dari golongan saponin, alkaloid, tanin, flavonoid, fenol, lignan, minyak atsiri.Pada

kilitnya mengandung alkaloid, saponin, dan flavonoid (Beatrice, 2010). Ekstrak

daging buahnya berkhasiat sebagai antihistamin, antialergi, bersifat sitotosik terhadap

sel kanker Rahim, juga menurunkan kadar gula darah, antioksidan, menurunkan kadar

asam urat (Wijoyo, 2012).

Menurut Harmanto. (2001 cit. Rosyami 2008) buah mahkota dewa

mengandung alkaloid, saponin, flavonoid, dan polifenol dan ekstrak daunnya dapat

memberikan efek antihistamin (Siswono, 2001). Daging buah mahkota dewa

mempunyai efek hipoglikemik (dapat menurunkan kadar gula dalam darah).

Berdasarkan hasil penelitian dapat ditunjukkan bahwa daging buah mahkota dewa

menghasilkan efek antihipoglikemik dengan dosis 241,35 mg/kg berat badan (Primsa.

2002 cit. Rosyami 2008).

5/19/2018 Skrip Si325

26/78

14

Saponin (fitonutrien), sering disebut deterjen alam, senyawa ini juga

bersifat antibakteri dan antivirus. Meningkatkan sistem kekebalan tubuh,

meningkatkan daya tahan, mengurangi kadar gula darah, mengurangi penggumpalan

darah. Saponin dapat menghambat kerja enzim proteolitik pada sistem pencernaan

manusia (Beatrice, 2010).

Alkaloid, merupakan senyawa organik yang berfungsi sebagai detoksifikasi,

menetralisir racun di dalam tubuh.Mekanisme kerja antimikroba dari alkaloid

dihubungkan dengan kemampuan alkaloid untuk berikatan dengan DNA sel, sehingga

mengganggu fungsi sel diikuti dengan pecahnya sel dan diakhiri dengan kematian sel

(Kere, 2011).

Flavonoid termasuk senyawa fenolik alam yang potensial sebagai antioksidan

dan mempunyai bioaktifitas sebagai obat (Rohyami, 2008). Flavonoid beperan

sebagai antibakteri dengan cara membentuk senyawa kompleks terhadap protein

ekstraseluler yang mengganggu integritas membran bakteri. Kandungan polifenol

berfungsi sebagai antihistamin.Minyak atsiri juga bersifat antibakteri karena efeknya

dapat mengganggu pembentukan membran atau dinding sel sehingga tidak terbentuk

atau pembentukannya tidak sempurna (Siregar, 2011).

Tanin dapat merusak membran sel bakteri, mengkerutkan dinding sel atau

membran sel sehingga mengganggu permeabilitas sel itu sendiri.Akibat terganggunya

permeabilitas, sel tidak dapat melakukan aktivitas hidup sehingga pertumbuhannya

5/19/2018 Skrip Si325

27/78

15

terhambat bahkan mati. Selain itu tanin juga mempunyai daya antibakteri dengan cara

mempresipitasi protein (Masduki. 1966 cit. Siregar 2011).

2.6 Peran Tanaman Mahkota Dewa Sebagai Antibakteri

Acuan pustaka yang ada telah menyebutkan bahwa tanaman marga Phaleria

umumnya memiliki aktifitas antibakteri (Beatrice, 2010). Berbagai penelitian juga

telah dilakukan di Indonesia mengenai efek antibakteri dari mahkota dewa, antara

lain pada penelitian Lusiana Beatrice, tahun 2010, bahwa ekstrak etanol buah

mahkota dewa memiliki daya antibakteri serta mampu menghambat pertumbuhan

Enterococcus faecalis, efek antibakteri dinilai dari nilai MBC (Minimum Bactericidal

Concentration). yang terdapat pada ekstrak etanol buah mahkota dewa pada

konsentrasi 12,5%.

Pada penelitian Carolina Monica Kere, tahun 2011, ekstrak etanol buah

mahkota dewa memiliki efek antibakteri terhadap bakteri Fusobacterium nucleatum

dengan nilai KHM (kadar hambat minimum) dan KBM (kadar bunuh minimum)

3,125 %. Ekstrak etanol buah mahkota dewa juga memiliki daya antibakteri yang

menghambat pertumbuhan Streptococcus mutans. Efek antibakteri dinilai dari nilai

KHM dan KBM yang terdapat pada ekstrak etanol buah mahkota dewa pada

konsentrasi 6,25% dengan jumlah koloni 0 CFU (Colony Forming Unit) /ml (Siregar,

2011).

5/19/2018 Skrip Si325

28/78

16

Pada penelitian lainnya mengenai mahkota dewa, bahwa infusa daun mahkota

dewa juga memiliki daya antibakteri terhadap Staphylococcus aureusdengan KHM

3,125 gram% dan KBM 6,25 gram% (Suryani dan Stepriyani, 2007).

5/19/2018 Skrip Si325

29/78

17

BAB III

KERANGKA KONSEP PENELITIAN

3.1 Kerangka Konsep

3.2 Hipotesis Penelitian

Dari skema kerangka konsep di atas maka hipotesis pada penelitian ini adalah

ekstrak buah mahkota dewa memiliki efektivitas antibakteri terhadap bakteri mix

saluran akar gigi, sehingga dapat menghambat dan membunuh bakteri mix saluran

akar gigi.

Ekstrak Buah Mahkota Dewa

7%, 8%, 12,5%

Bakteri Mix Saluran Akar

Gigi

-

Suhu- Media

- Waktu

- pH

Sterilisasi saluran akar gigi

5/19/2018 Skrip Si325

30/78

18

BAB IV

METODE PENELITIAN

4.1 Rancangan Penelitian

Rancangan penelitian ini bersifat eksperimental denganPosttest Only Control

Group Design.

K O0

P1 O1

P2 O2

P3 O3

Keterangan :

P : Populasi

S : Sampel

Ra : Rendom alokasi

K : Suspensi bakteri dengan kekeruhan setara 108CFU/ml yang

diinkubasi 24 jam (kontrol positif).

P1: Perlakuan dengan ekstrak buah mahkota dewa dengan konsentrasi

7%

P S Ra

5/19/2018 Skrip Si325

31/78

19


8%


12,5%

O0: Pengamatan hasil pada kelompok K

O1: Pengamatan hasil pada kelompok P1



4.2 Sampel Penelitian

Sampel yang digunakan dalam penelitian ini adalah bakteri mix saluran akar

gigi yang diperoleh dengan menggunakan paper poin steril nomer 45 yang dimasukan

ke dalam saluran akar gigi dengan diagnosa nekrosis pulpa tanpa ada kelainan

periapikal pada gigi akar tunggal dan belum pernah dilakukan perawatan saluran

akar.

4.3 Besar Sampel

Penelitian ini menggunakan bakteri, sehingga penentuan besar sampel

ditetapkan sesuai dengan penetapan baku uji bakteri yaitu menggunakan 108

bakteri.

5/19/2018 Skrip Si325

32/78

20

Untuk mendapatkan data yang valid dilakukan pengulangan sesuai rumus

Federer (1999) :

(n - 1) (t - 1) 15

(n - 1) (4 - 1) = 15

(n - 1) (3) = 15

n1 = 15 : 3

n = 5 + 1

= 6

Keterangan :

n : banyaknya ulangan

t : banyaknya perlakuan

Berdasarkan perhitungan dengan rumus diatas, maka diperoleh n = 6 dan t= 4,

maka jumlah sampel keseluruhan adalah 24 sampel.

4.4 Identifikasi Variabel

a. Variabel tergantung : Jumlah bakteri mix saluran akar gigi

b. Variabel bebas : Ekstrak buah mahkota dewa 7%, 8%,

12,5%

5/19/2018 Skrip Si325

33/78

21

c. Variabel kendali : Waktu inkubasi dan Suhu 37C.

4.5 Definisi Operasional

a. Ekstrak buah mahkota dewa adalah ekstrak yang diperoleh dengan melakukan

ekstraksi buah mahkota dewa berwarna merah sebanyak 1600 gram yang

dipetik dari pohon mahkota dewa yang ditanam di desa Sembung, kecamatan

Mengwi, kabupaten Badung, dibersihkan, lalu diiris halus dan dikeringkan.

Setelah kering, diblender sampai menjadi serbuk halus sebanyak 540 gram

dengan pelarut metanol kemudian diuapkan dengan evaporator sehingga

diperoleh ekstrak cair buah mahkota dewa. Pada penelitian ini digunakan

ekstrak 7%, 8%, 12,5%.

b. Bakteri mix saluran akar gigi adalah sejumlah bakteri yang terdapat di dalam

saluran akar gigi yang dapat menyebabkan infeksi saluran akar. Bakteri mix

saluran akar ini diperoleh dengan menggunakan paper poin steril nomer 45

yang dimasukan ke dalam saluran akar gigi dengan diagnosa nekrosis pulpa.

c. Suhu adalah ukuran panas atau dinginnya suatu benda. Suhu yang digunakan

untuk menumbuhkan bakteri mix saluran akar gigi yaitu 37C. Digunakan

suhu 37C karena bakteri mix diambil pada saluran akar gigi pasien dan suhu

normal pada tubuh manusia adalah 37C.

d.

Waktu inkubasi adalah waktu yang digunakan untuk mengamati pertumbuhan

atau pembiakan bakteri mix saluran akar gigi yaitu 18-24 jam.

5/19/2018 Skrip Si325

34/78

22

4.6 Bahan dan Alat Penelitian

4.6.1 Alat dan Bahan Pembuatan Ekstrak Buah Mahkota Dewa

A. Alat

a. Botol timbang

b. Rotary evaporator (eyela n-1200)

c. Pisau

d. Ayakan 40 mesh (retsch)

e.

Neraca analitik (adam)

f. Oven (binder)

g. Moisture analyzer (shimadzu)

h. Batang pengaduk

i. Spatula

j. Alat-alat gelas

k. Kertas saring bebas abu (whatmaan ashless)

l. Vacum gas (gast)

m. Penyaring buchner

B. Bahan

a.

Simplisia buah mahkota dewa

b. Metanol

c. N-heksana

d. Kloroform

5/19/2018 Skrip Si325

35/78

23

4.6.2 Alat dan Bahan Uji Identifikasi Fitokimia

A. Alat

a. Tabung reaksi

b. Rak tabung reaksi

c. Penjepit tabung

d. Pipet tetes

e. Gelas ukur

f.

Tabung spiritus

g. Cawan penguap

B. Bahan

a. Akuades

b. Metanol 10 ml

c.

Etanol

d. Kloroform

e. Asam asetat anhidrat

f. Asam sulfat

g. HCL 2N

h. FeCl3

5/19/2018 Skrip Si325

36/78

24

4.6.3 Alat dan Bahan Uji Efektifitas Ekstrak Buah Mahkota Dewa

Terhadap Bakteri Mix Saluran Akar Gigi

A. Alat

a. Cawan petri

b. Micropipet

c. Lampu Bunsen

d. Inkubator

e. Timer

f. Tabung eppendorf1,8 mm

g. Tabung glass

B. Bahan

a.Blood agar20 ml

b. Glukosa boilon

c. TSB (trypic soy broth)

d. Paper point yang berisi bakteri mix saluran akar gigi

e. Ekstrak buah mahkota dewa

f. metanol 96%

g. Masker

k. Handscoon

5/19/2018 Skrip Si325

37/78

25

4.7 Tempat dan Waktu Penelitian

4.7.1 Tempat Penelitian

a. Pembuatan ekstrak buah mahkota dewa dan uji identifikasi fitokimia

Laboratorium Fitokimia dan Farmakognosi Farmasi Universitas Udayana

b. Pengujian efektivitas antibakteri

Laboratorium Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Universitas Udayana

c. Pengambilan bakteri mix saluran akar gigi

Rumah Sakit Gigi dan Mulut Universitas Mahasaraswati Denpasar

4.7.2 Waktu Penelitian

Waktu penelitian adalah 1 bulan

5/19/2018 Skrip Si325

38/78

26

4.8 Alur Penelitian

Fitokimia

Ekstrak Buah Mahkota

Dewa

Konsentrasi 7% Konsentrasi 8% Konsentrasi 12,5%

Pengambilan

Bakteri mix saluran

Pengambilan

Bakteri mix saluran

Pengambilan

Bakteri mix saluran

Inkubasi

Data

Analisis Data

Hasil

5/19/2018 Skrip Si325

39/78

27

4.9 Prosedur Penelitian

4.9.1 Pembuatan Ekstrak Buah Mahkota Dewa

Buah mahkota dewa yang segar dan berwarna merah sebanyak 1600 gram

yang dipetik dari pohon mahkota dewa yang ditanam di desa Sembung, kecamatan

Mengwi, kabupaten Badung, dibersihkan dari kotoran, dicuci bersih, ditimbang, lalu

diiris halus dan dikeringkan.

Sampel yang telah kering kemudian diblender sampai menjadi serbuk.Serbuk

buah mahkota dewa dihaluskan hingga diperoleh serbuk berukuran 80 mesh.

Sebanyak 540 gram serbuk buah mahkota dewa dimaserasi menggunakan 2,5 liter n-

heksana pada suhu kamar selama 1 hari. Disaring (diperoleh ekstrak cair n-heksana),

kemudian ampas dikeringkan pada suhu kamar selama 1 hari. Ampas yang telah

dikeringkan diremaserasi dengan 2,5 liter kloroform pada suhu kamar selama 1 hari.

Disaring (diperoleh ekstrak cair kloroform), kemudian ampas dikeringkan pada suhu

kamar selama 1 hari. Ampas yang telah dikeringkan diremaserasi dengan 2,5 liter

metanol. Disaring (diperoleh ekstrak cair metanol). Ekstrak cair yang diperoleh pada

tahap ekstraksi didiamkan 1 hari dan dilanjutkan ketahap pengentalan ekstrak

menggunakan rotary evaporator (80 rpm, 45C, 0,62 bar).

5/19/2018 Skrip Si325

40/78

28

4.9.2 Skrining Fitokimia Ekstrak Buah Mahkota Dewa

Skrining fitokimia terhadap ekstrak buah mahkota dewa meliputi pemeriksaan

minyak atsiri, tannin, alkaloid, steroid, terpenoid, saponin, fenol, glikosida, dan

flavonoid.

a. Pembuatan larutan untuk skrining fitokimia dilakukan dengan melarutkan

500 mg ekstrak dalam 10 ml metanol.

b. Pemeriksaan minyak atsiri

Ekstrak yang diperoleh ditambah dengan etanol, bila berbau

enak/aromatik larutan alkoholik tersebut diuapkan kembali hingga

kering.Bila residu tetap berbau aromatik, menunjukan ekstrak positif

mengandung atsiri.

c. Pemeriksaan flavonoid

Reaksi Pew : Sebanyak 1 ml larutan ekstrak uji diuapkan, dibasahkan

sisanya dengan aseton P, ditambahkan sedikit serbuk halus asam borat P

dan serbuk halus asam oksalat P, dipanaskan hati-hati di atas tangas air

dan dihindari pemanasan berlebihan. Sisa yang diperoleh dicampur

dengan 10 ml eter P. diamati dengan sinar UV366, larutan berflouresensi

kuning intensif, menunjukan adanya flavonoid.

d.

Pemeriksaan saponin

Sebanyak 2 ml larutan ekstrak uji dalam tabung reaksi ditambahkan

dengan 10 ml aquades kemudian dikocok vertikal selama 10

detik.Pembentukan busa setinggi 1-10 cm yang stabil selama tidak kurang

5/19/2018 Skrip Si325

41/78

29

dari 10 menit, menunjukan adanya saponin.Pada penambahan 1 tetes HCL

2N, busa tidak hilang.

e.

Pemeriksaan alkaloid

Sebanyak 2 ml larutan ekstrak uji diuapkan diatas cawan porselin hingga

didapat residu.Residu kemudian dilarutkan dengan 5 ml HCL 2N.Larutan

yang didapat kemudian dibagi ke dalam 5 tabung reaksi.Tabung pertama

ditambahkan dengan asam encer yang berfungsi sebagai blanko.Tabung

kedua ditambahkan pereaksi Dragendorf sebanyak 3 tetes.Tabung ketiga

ditambahkan pereaksi Mayer sebanyak 3 tetes.Tabung keempat

ditambahkan pereaksi Wagner sebanyak 3 tetes.Tabung kelima

ditambahkan pereaksi Bouchardat sebanyak 3 tetes.Terbentuknya endapan

jingga pada tabung kedua dan endapan kuning pada tabung ketiga

menunjukan adanya alkaloid.

f.

Pemeriksaan fenol

Sebanyak 2 ml larutan uji ditambahkan 3 tetes FeCl3 10%.Terbentuk

warna hitam pekat menunjukan adanya fenol.

g. Pemeriksaan tannin

Sebanyak 2 ml larutan uji ditambahkan 2 tetes larutan FeCl 3

2%.Terbentuk warna biru kehitaman menunjukan adanya tannin.

h. Pemeriksaan steroid dan triterpenoid

Dilakukan dengan reaksi Liebarmann-Burchard.Sebanyak 2 ml larutan uji

diuapkan dalam cawan penguap. Residu dilarutkan dengan 0,5 ml

5/19/2018 Skrip Si325

42/78

30

kloroform, kemudian ditambahkan 0,5 ml asam asetat anhidrat.

Selanjutnya ditambahkan 2 ml asam sulfat pekat melalui dinding

tabung.Terbentuknya cincin kecoklatan atau violet pada perbatasan larutan

menunjukan adanya triterpenoid, sedangkan bila muncul cincin biru

kehijauan menunjukan adanya steroid.

i. Pemeriksaan glikosida

Sebanyak 2 ml larutan uji 2 ml asam asetat anhidrat, dilanjutkan dengan

penambahan asam sulfat pekat.Terbentuk larutan berwarna hijau kebiruan

menunjukan adanya glikosida.

4.9.3 Pembiakan spesimen

Paper point yang berisi bakteri mix saluran akar gigi dilarutkan ke dalam

larutan TSB, diinkubasi pada suhu 37C selama 18-24 jam. Kekeruhan yang terjadi

setelah diinkubasi disetarakan dengan 108CFU/ml (0,5Mc Farland). Sebanyak 0,1 ml

dimasukan dalam masing-masing seri konsentrasi.

4.9.4 Penentuan MIC dan MBC Bahan Coba

Bahan coba ekstrak buah mahkota dewa yang dipakai terdiri dari konsentrasi

7%, 8%, 12,5%. Dari masing-masing konsentrasi tersebut diambil sebanyak 5 ml lalu

dimasukan ke dalam tabung reaksi kemudian diberi label sesuai konsentrasinya.

Selanjutnya diambil 0,1 ml suspensi bakteri yang telah dipersiapkan sebelumnya

dengan menggunakan mikropipet lalu dimasukan ke dalam masing-masing tabung

bahan coba yang telah diberi label kemudian homogenkan. Tiap konsentrasi

5/19/2018 Skrip Si325

43/78

31

dilakukan 6 kali pengulangan. Tabung-tabung tersebut diinkubasi pada suhu 37C

selama 18-24 jam. Diamati kekeruhan yang terjadi dengan membandingkan tabung-

tabung tersebut dengan kontrol untuk menentukan nilai MIC (Minimum Inhibitory

Concentration) dan MBC dari masing-masing bahan coba. Tabung dengan kekeruhan

yang mulai tampak jernih untuk setiap kelompok perlakuan yang merupakan MIC

dan MBC diambil 1ose (10) untuk setiap konsentrasi lalu digoreskan pada media

blood agar, dilakukan 6 kali pengulangan pada tiap konsentrasi, setelah itu diinkubasi

dengan suhu 37C selama 18-24 jam.

Dilakukan perhitungan jumlah koloni bakteri dengan prinsip 1 sel bakteri

hidup dibiakan pada media padat akan tumbuh menjadi 1 koloni bakteri.

Perhitungannya adalah bentuk koloni melebar dianggap berasal dari 1 koloni,

bentuknya 2 koloni bersinggungan dianggap sebagai 2 koloni.Satuan yang dipakai

adalah CFU/ml cairan (suspensi).

Setelah dihitung jumlah koloni bakteri pada masing-masing tetesan, kemudian

dibuat jumlah rata-ratanya dan dikalikan dengan faktor pengenceran dan faktor

pengali. Oleh karena itu, karena pada penelitian konsentrasi yang dilakukan

perhitungan jumlah koloni bakteri merupakan konsentrasi awal (sebelum dilakukan

dilusi) maka faktor pengenceran x 1, selain itu karena pada penetesan suspensi bahan

coba dan bakteri pada media padat sebanyak 50l, maka hasil perhitungan harus

dikali dengan faktor pengali 20 untuk mendapatkan hasil sesuai satuan standard

(CFU/ml).

5/19/2018 Skrip Si325

44/78

32

4.10 Analisis Data

Pada data hasil penelitian tersebut tidak dilakukan uji secara statistik karena

bakteri mati seluruhnya (0 CFU/ml), artinya tidak dijumpai pertumbuhan bakteri

dalam media perbenihan atau bakteri yang berkontak dengan bahan coba 100%

mengalami kematian.

5/19/2018 Skrip Si325

45/78

33

BAB V

HASIL PENELITIAN

5.1 Ekstraksi Buah Mahkota Dewa

Dalam penelitian ini didapatkan ekstrak kental buah mahkota dewa.Kemudian

dilakukan pengenceran dengan menggunakan akuades sehingga didapatkan ekstrak

buah mahkota dewa berwarna kecoklatan.Disimpan di dalam botol kaca yang ditutup

plastik bening dan disimpan di lemari pendingin dengan suhu 2-8C.

Gambar 5.1 : Ekstrak kental buah mahkota dewa

5.2 Uji Identifikasi Fitokimia

5/19/2018 Skrip Si325

46/78

34

Uji ini dilakukan bertujuan untuk mengetahui apakah di dalam ekstrak buah

mahkota dewa terkandung zat yang mengandung antibakteri.Sampel uji dalam

penelitian ini adalah ekstrak kental buah mahkota dewa yang belum di

encerkan.Pembuatan larutan dilakukan dengan melarutkan 500 mg ekstrak dalam 10

ml metanol.Zat antibakteri yang di uji identifikasi fitokimia adalah minyak atsiri,

flavonoid, saponin, tanin, alkaloid, fenol, glikosida, steroid dan triterpenoid.

5.2.1 Pemeriksaan Minyak Atsiri

Ekstrak yang diperoleh ditambah dengan etanol, bila berbau enak/aromatik

larutan alkoholik tersebut diuapkan kembali hingga kering.Bila residu tetap berbau

aromatik, menunjukan ekstrak positif mengandung atsiri.

Hasil :terjadi bau aromatik (positif mengandung minyak atsiri).

5.2.2 Pemeriksaan Flavonoid

Reaksi Pew : Sebanyak 1 ml larutan ekstrak uji diuapkan, dibasahkan sisanya

dengan aseton P, ditambahkan sedikit serbuk halus asam borat P dan serbuk halus

asam oksalat P, dipanaskan hati-hati di atas tangas air dan dihindari pemanasan

berlebihan. Sisa yang diperoleh dicampur dengan 10 ml eter P. diamati dengan sinar

UV366, larutan berflouresensi kuning intensif, menunjukan adanya flavonoid.

Hasil : terbentuk warna kuning intensif (positif mengandung flavonoid).

5/19/2018 Skrip Si325

47/78

35

Gambar 5.2 : Larutan Flavonoid

5.2.3 Pemeriksaan saponin

Sebanyak 2 ml larutan ekstrak uji dalam tabung reaksi ditambahkan dengan

10 ml aquades kemudian dikocok vertikal selama 10 detik.Pembentukan busa

setinggi 1-10 cm yang stabil selama tidak kurang dari 10 menit, menunjukan adanya

saponin.Pada penambahan 1 tetes HCL 2N, busa tidak hilang.

Hasil : terbentuk busa yang stabil (positif mengandung saponin).

5/19/2018 Skrip Si325

48/78

36

Gambar 5.3 : Larutan Saponin

5.2.4 Pemeriksaan Alkaloid

Sebanyak 2 ml larutan ekstrak uji diuapkan diatas cawan porselin hingga

didapat residu.Residu kemudian dilarutkan dengan 5 ml HCL 2N.Larutan yang

didapat kemudian dibagi ke dalam 5 tabung reaksi.Tabung pertama ditambahkan

dengan asam encer yang berfungsi sebagai blanko.Tabung kedua ditambahkan

pereaksi Dragendorf sebanyak 3 tetes.Tabung ketiga ditambahkan pereaksi Mayer

sebanyak 3 tetes.Tabung keempat ditambahkan pereaksi Wagner sebanyak 3

tetes.Tabung kelima ditambahkan pereaksi Bouchardat sebanyak 3

tetes.Terbentuknya endapan jingga pada tabung kedua dan endapan kuning pada

tabung ketiga menunjukan adanya alkaloid.

Hasil : tidak terbentuk endapan (negatif alkaloid).

5/19/2018 Skrip Si325

49/78

37

Gambar 5.4 : larutan alkaloid

5.2.5 Pemeriksaan fenol

Sebanyak 2 ml larutan uji ditambahkan 3 tetes FeCl3 10%.Terbentuk warna

hitam pekat menunjukan adanya fenol.

Hasil : terbentuk warna hitam pekat (positif mengandung fenol).

Gambar 5.5 : Larutan Fenol

5/19/2018 Skrip Si325

50/78

38

5.2.6 Pemeriksaan tanin

Sebanyak 2 ml larutan uji ditambahkan 2 tetes larutan FeCl3 2%.Terbentuk

warna biru kehitaman menunjukan adanya tanin.

Hasil : terbentuk warna biru kehitaman (positif mengandung tanin).

Gambar 5.6 : larutan tannin

5.2.7 Pemeriksaan steroid dan triterpenoid

Dilakukan dengan reaksi Liebarmann-Burchard.Sebanyak 2 ml larutan uji

diuapkan dalam cawan penguap. Residu dilarutkan dengan 0,5 ml kloroform,

kemudian ditambahkan 0,5 ml asam asetat anhidrat. Selanjutnya ditambahkan 2 ml

asam sulfat pekat melalui dinding tabung.Terbentuknya cincin kecoklatan atau violet

pada perbatasan larutan menunjukan adanya triterpenoid, sedangkan bila muncul

cincin biru kehijauan menunjukan adanya steroid.

5/19/2018 Skrip Si325

51/78

39

Hasil : tidak terbentuk cincin berwarna biru kehijauan (negatif mengandung

steroid), dan terbentuk cincin coklat (positif mengandung triterpenoid).

Gambar 5.7 : larutan triterpenoid

5.2.8 Pemeriksaan Glikosida

Sebanyak 2 ml larutan uji 2 ml asam asetat anhidrat, dilanjutkan dengan

penambahan asam sulfat pekat.Terbentuk larutan berwarna hijau kebiruan

menunjukan adanya glikosida.

Hasil : terbentuk warna hijau kebiruan (positif mengandung glikosida).

5/19/2018 Skrip Si325

52/78

40

Gambar 5.8 : larutan glikosida

5.3 Uji Efektivitas Antibakteri

Pengujian daya antibakteri dilakukan dengan mengamati perubahan

kekeruhan pada tiap konsentrasi bahan coba (7%, 8%, 12,5%). Metode yang

digunakan adalah metode pengenceran ganda (dilusi) untuk mengetahui MIC dan

MBC bahan coba.Perubahan yang terjadi ditandai dengan hasil biakan mulai tampak

jernih bila dibandingkan dengan kontrol positif (suspensi bakteri dengan kekeruhan

setara 108CFU/ml yang diinkubasi 24 jam).Kontrol negatif digunakan untuk

mengetahui tingkat kejernihan konsentrasi ekstrak + suspensi bakteri setelah

diinkubasi 24 jam.

5/19/2018 Skrip Si325

53/78

41

Gambar 5.9 : suspensi bakteri mix saluran akar gigi setelah berkontak dengan

bahan coba pada berbagai konsentrasi.

Gambar 5.10 : hasil biakan mulai tampak jernih bila dibandingkan dengan

kontrol positif.

Selanjutnya dilakukan penghitungan jumlah koloni bakteri menggunakan

media blood agaryang bertujuan untuk membuktikan bahwa tingkat kekeruhan pada

5/19/2018 Skrip Si325

54/78

42

setiap konsentrasi menunjukkan kemampuan bahan coba membunuh bakteri sebesar

99% - 100%, yang disebut dengan MBC. Hasil jumlah koloni pada setiap konsentrasi

juga dibandingkan dengan jumlah koloni yang terdapat pada kontrol positif.

Gambar 5.11 : Hasil pengujian antibakteri ekstrak buah mahkota dewa 7%, 8%,

12,5% pada media blood agar.

Dari hasil pengujian antibakteri ekstrak buah mahkota dewa, pada konsentrasi

7%, 8%, 12,5 % senilai 0 CFU/ml, dimana tidak terlihat adanya pertumbuhan bakteri

dalam media perbenihan yang ditandai dengan tidak terbentuknya lagi koloni bakteri

pada media blood agar, seperti terbentuknya koloni bakteri pada kontrol positif. Jadi

bakteri mix saluran akar gigi mengalami kematian.

5/19/2018 Skrip Si325

55/78

43

Tabel 5.1 Perhitungan jumlah bakteri untuk bahan coba ekstrak buah mahkota dewa

NO PARAMATER HASIL UJI

1 Hasil Hitung Bakteri

a. Konsentrasi 7%

- Ulangan 1

- Ulangan 2

- Ulangan 3

- Ulangan 4

- Ulangan 5

- Ulangan 6

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

2 b. Konsentrasi 8%

- Ulangan 1

- Ulangan 2

- Ulangan 3

- Ulangan 4

- Ulangan 5

- Ulangan 6

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

5/19/2018 Skrip Si325

56/78

44

Keterangan : dari tabel terlihat bahwa pada konsentrasi 7%, 8%, 12,5%

setelah dilakukan 6 kali pengulangan pada tiap konsentrasi hasil nya 0 CFU/ml =

steril atau tidak dijumpai pertumbuhan bakteri. Nilai minimum yang ditunjukkan

pada bahan coba adalah konsentrasi 7% yaitu 0 CFU/ml.

Data hasil penelitian ini tidak dapat dilakukan uji secara statistik karena nilai

perhitungan koloni bakteri adalah 0 yang artinya tidak dijumpai pertumbuhan bakteri

dalam media perbenihan atau bakteri yang berkontak dengan bahan coba 100%

mengalami kematian.

3 c. Konsentrasi 12,5%

- Ulangan 1

- Ulangan 2

- Ulangan 3

- Ulangan 4

- Ulangan 5

- Ulangan 6

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

0 CFU/ml (steril)

5/19/2018 Skrip Si325

57/78

45

BAB VI

PEMBAHASAN

Penelitian mengenai ekstrak buah mahkota dewa terhadap bakteri mix saluran

akar gigi adalah untuk membuktikan bahwa ekstrak buah mahkota dewa memiliki

efek antibakteri dalam hal menghambat pertumbuhan bakteri mix saluran akar gigi.

Penelitian ini diawali dengan pembuatan ekstrak buah mahkota dewa dengan

konsentrasi 7%, 8%, 12,5%. Penggunaan konsentrasi ekstrak buah mahkota dewa

tersebut dikarenakan pada penelitian Lusiana Beatrice, tahun 2010, menggunakan

konsentrasi 100%, 50%, 25%, 12,5% dan 6,25%. Dari hasil penelitian terbukti bahwa

bahan coba ekstrak etanol buah mahkota dewa memiliki efek antibakteri terhadap

bakteri E.faecalisdilihat dari konsentrasi MIC dan MBC bahan tersebut yaitu pada

konsentrasi 12,5%. Sedangkan pada konsentrasi 6,25% yang telah dilakukan

pengenceran akan semakin mengurangi daya hambat terhadap pertumbuhan bakteri

dilihat dari terbentuknya koloni bakteri 56x2x109 CFU/ml. Akan tetapi,

kemungkinan masih adanya konsentrasi lain diantara 6,25% - 12,5% yang dapat

membunuh E.faecalis. padapenelitian ini menggunakan konsentrasi diantara 6,25% -

12,5%, yaitu 7%, 8%, 12,5% dilakukan pada bakteri mix saluran akar gigi.

Buah mahkota dewa yang dipergunakan sebanyak 1600 gram karena

diperkirakan akan dapat menghasilkan ekstrak kental buah mahkota dewa yang cukup

untuk melakukan pengujian antibakteri terhadap bakteri mix saluran akar gigi.

Ekstraksi buah mahkota dewa dilakukan dengan menggunakan pelarut

5/19/2018 Skrip Si325

58/78

46

metanol.Metode ekstraksi yang dipilih adalah maserasi, karena pelaksanaannya

sederhana serta untuk mengurangi kemungkinan terjadinya penguraian zat aktif yang

terkandung dalam buah mahkota dewa oleh pengaruh suhu, karena dalam maserasi

tidak ada proses pemanasan. Tujuan maserasi adalah untuk memberi kesempatan

pada simplisia berdifusi ke dalam pelarut (Beatrice, 2010)

Berdasarkan penelitian dan acuan pustaka yang ada telah menyebutkan bahwa

tanaman marga Phaleria umumnya memiliki aktifitas antibakteri.Senyawa aktif

mahkota dewa yang berkhasiat sebagai antibakteri adalah saponin, alkaloid,

flavonoid, tannin, fenol, dan minyak atsiri.Untuk membuktikan bahwa adanya

senyawa aktif tersebut di dalam buah mahkota dewa, maka dilakukan uji identifikasi

fitokimia terhadap ekstrak kental buah mahkota dewa.

Hasil uji identifikasi fitokimia menunjukan bahwa senyawa saponin,

flavonoid, Minyak atsiri, Fenol, tanin yang positif terdapat pada ekstrak buah

mahkota dewa, sedangkan alkaloid negatif.Saponin (fitonutrien), sering disebut

deterjen alam, senyawa ini juga bersifat antibakteri dan antivirus (Beatrice,

2010).Fenol diketahui memiliki aktivitas antimikroba yang bersifat bakterisida

namun tidak bersifat sporisida.Dengan mendenaturasi protein dan merusak membran

sel bakteri serta aktif pada pH asam (Pratiwi. 2008 cit. Widya 2013). Flavonoid

beperan sebagai antibakteri dengan cara membentuk senyawa kompleks terhadap

protein ekstraseluler yang mengganggu integritas membran bakteri. Minyak atsiri

bersifat antibakteri karena efeknya dapat mengganggu pembentukan membran atau

dinding sel sehingga tidak terbentuk atau pembentukannya tidak sempurna (Siregar,

5/19/2018 Skrip Si325

59/78

47

2011). Selain itu tanin juga mempunyai daya antibakteri dengan cara mempresipitasi

protein (Masduki. 1966 cit. Siregar 2011).

Pada uji identifikasi fitokimia buah mahkota dewa tersebut juga ditemukan

hasil positif pada glikosida dan triterpenoid, sedangkan negatif pada steroid.Glikosida

merupakan gugus aminoglikosida yang bersifat antibiotik. Senyawa ini akan berdifusi

pada dinding sel bakteri dan proses ini berlangsung lama dan terus menerus dalam

suasana aerob. Setelah masuk ke dalam sel, kemudian diteruskan pada ribosom yang

menghasilkan protein, sehingga akan menimbulkan gangguan pada proses sintesa

protein dan selanjutnya akan menyebabkan terjadinya pemecahan ikatan protein sel

bakteri (Hayati, 2009). Senyawa steroid dan triterpenoid menghambat pertumbuhan

bakteri dengan mekanisme penghambatan terhadap sintesis protein karena

terakumulasi dan menyebabkan perubahan komponen-komponen penyusun sel

bakteri.Senyawa terpenoid mudah larut dalam lipid, sifat inilah yang mengakibatkan

senyawa ini mudah menembus dinding sel bakteri gram positif dan negatif (Ferawaty

dkk. 2012 citAzmi 2013).

Uji aktivitas antibakteri pada dasarnya dapat dilakukan melalui dua cara, yaitu

metode difusi cakram dan metode dilusi. Pada metode difusi cakram, penilaian

aktivitas antibakteri dilihat dari pengukuran zona inhibisi yang dipengaruhi kelarutan

dan difusi bahan yang diuji sehingga kurang efektif dalam menginhibisi

mikroorganisme. Sedangkan metode dilusi oleh Fereira et al., 2002 telah dilakukan

untuk mengamati aktivitas antibakteri, karena bahan coba langsung berkontak dengan

mikroorganisme dan langsung diperoleh nilai MIC dengan mengamati perubahan

5/19/2018 Skrip Si325

60/78

48

kekeruhan suspensi setelah diinkubasi 37C selama 24 jam dan MBC dari bahan coba

dengan perhitungan jumlah bakteri pada media blood agar sehingga hasil penelitian

akan lebih representatif (Kere, 2011).

Efek antibakteri bahan coba dilihat dari besar nilai MIC dan MBC bahan coba

terhadap pertumbuhan bakteri dengan jumlah bakteri harus sama untuk setiap

perlakuan sesuai dengan standar 0,5Mc Farland. Suspensi standar 0,5Mc Farland

adalah suspensi yang menunjukkan konsentrasi kekeruhan bakteri sama dengan 108

CFU/ml (Siregar, 2011). Maka suspensi bakteri dibuat terlebih dahulu kemudian

disesuaikan kekeruhannya dengan 0,5Mc Farland. Setelah dilakukan pengujian nilai

MIC dan MBC dalam berbagai konsentrasi, tidak dijumpai adanya pertumbuhan

bakteri (steril atau 0 CFU/ml) pada konsentrasi 7%, 8%, dan 12,5%, yang artinya

pada konsentrasi tersebut memberikan daya antibakteri. Nilai minimum yang

ditunjukkan pada bahan coba adalah konsentrasi 7% yaitu 0 CFU/ml, maka

ditentukan sebagai nilai MIC dan MBC.

Berdasarkan penelitian-penelitian sebelumnya dan acuan pustaka yang ada

menyebutkan bahwa buah mahkota dewa memiliki kandungan saponin, alkaloid,

flavonoid, tannin, fenol, dan minyak atsiri.Dari hasil uji fitokimia didapatkan negatif

pada alkaloid dan steroid.Tetapi pada uji identifikasi fitokimia buah mahkota dewa

tersebut juga ditemukan hasil positif pada glikosida dan triterpenoid. Jadi pada

penelitian ini ekstrak buah mahkota dewa dengan konsentrasi 7% efektif sebagai

antibakteri pada bakteri mix saluran akar gigi, walaupun tidak terdapat dua

kandungan buah mahkota dewa yaitu alkaloid dan steroid. Glikosida dan triterpenoid

5/19/2018 Skrip Si325

61/78

49

merupakan antibakteri. Glikosida bekerja pada dinding sel bakteri dan proses sintesa

protein yang menyebabkan terjadinya pemecahan ikatan protein sel bakteri,

sedangkan triterpenoid bekerja padapenghambatan sintesis protein dan mudah larut

dalam lipidyang mengakibatkan triterpenoid mudah menembus dinding sel bakteri

gram positif dan negatif. Ditemukannya dua kandungan zat pada penelitian ini

dibandingkan dengan penelitian sebelumnya, sehingga dengan konsentrasi yang lebih

rendah pun dapat menghambat pertumbuhan bakteri.

Penelitian lainnya mengenai mahkota dewa, pada penelitian Lusiana Beatrice,

tahun 2010, yang menguji daya antibakteri ekstrak etanol buah mahkota dewa

terhadapEnterococcus faecalisterdapat MIC dan MBC berada pada konsentrasi yaitu

12,5%. Ekstrak etanol buah mahkota dewa juga memiliki daya antibakteri yang

menghambat pertumbuhan Streptococcus mutans. Efek antibakteri dinilai dari nilai

KHM dan KBM yang terdapat pada ekstrak etanol buah mahkota dewa pada

konsentrasi 6,25% dengan jumlah koloni 0 CFU/ml (Siregar, 2011). Penelitian lain

tentang infusa daun mahkota dewa juga memiliki daya antibakteri terhadap

Staphylococcus aureusdengan KHM 3,125 gram% dan KBM 6,25 gram% (Suryani

dan Stepriyani, 2007). Maka dari itu dapat menjadi pertimbangan pengembangan

ekstrak mahkota dewa tersebut sebagai bahan alternatif sterilisasi saluran akar gigi.

5/19/2018 Skrip Si325

62/78

50

BAB VII

SIMPULAN DAN SARAN

7.1 SIMPULAN

Dari penelitian eksperimental yang telah dilakukan, maka dapat disimpulkan

bahwa ekstrak buah mahkota dewa memiliki daya antibakteri serta mampu

menghambat dan membunuh pertumbuhan bakteri mix saluran akar gigi. Konsentrasi

7%, 8%, 12,5% ekstrak buah mahkota dewa memiliki efektivitas antibakteri sebagai

bahan alternatif sterilisasi saluran akar gigi terhadap bakteri mix saluran akar gigi.

7.2 SARAN

Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut untuk menyempurnakan penelitian ini,

yaitu :

1. Hendaknya dapat dilakukan penelitian ekstrak buah mahkota dewa dengan

konsentrasi dibawah 7% untuk mengetahui nilai MBC.

2. Hendaknya dapat dilakukan perbandingan ekstrak buah mahkota dewa

dengan Ca(OH)2bahan medikamen yang paling sering digunakan.

3.

Hendaknya dapat dilakukan perbandingan ekstrak buah mahkota dewa

dengan ekstrak dari bahan alami lainnya.

5/19/2018 Skrip Si325

63/78

51

DAFTAR PUSTAKA

Agustin, D. W. 2005, Perbedaan khasiat antibakteri bahan irigasi antara hydrogen

peroksida 3% dan infusum daun sirih 20% terhadap bakteri mix, Majalah

Kedokteran Gigi. (Dent. J.), Vol. 38. No. 1. Hal 45-47.

Agustina, N. 2011, Efek Antibakteri Ekstrak Etanol Aloe Vera Terhadap

Enterococcus Faecalis Secara in Vitro, Skripsi, Universitas Sumatera Utara,

Medan.

Amalia, S. 2012, Efek Antibakteri Ekstrak Etanol Pegagan (Centella asiatica (L.)

Urban) sebagai Alternatif Medikamen Saluran Akar terhadap Porphyromonas

gingivalis (Secara In-Vitro), Skripsi, Universitas Sumatera Utara, Medan.

Aswal, D., Beatrice, L. 2010, Efek Antibakteri Ekstrak Buah Mahkota DewaTerhadap Enterococcus faecalis Sebagai Medikamen Saluran Akar. Dentika

Dental Journal, Vol. 15. No. 1. Hal 32-36.

Azmi, N. 2013, Skrining Fitokimia dan Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Serta

Fraksi-Fraksi Bunga Belimbing Wuluh (Averrhoa bilimbi L.) terhadap BakteriStaphylococcus aureus dan Klebsiella pneumonia, Skripsi, Universitas

Sumatera Utara, Medan.

Beatrice, L. 2010, Daya Antibakteri Ekstrak Buah Mahkota Dewa (Phaleria

Macrocarpa.Scheff ( Boerl.)) Terhadap Enterococcus Faecalis Sebagai Bahan

Medikamen Saluran Akar Secara In Vitro, Skripsi, Universitas Sumatera Utara,

Medan.

Dewi, S. 2011, Pengaruh Bahan Sterilisasi Kalsium Hidroksida Dengan SegmenPencampur Berbeda Terhadap Perubahan Kekerasan Mikro Dentin Pada Tiga

Saluran Akar Yang Berbeda, Tesis, Universitas Gadjah Mada, Yogyakarta.

Grossman, L. I., Oliet, S., dan Rio, C. E. D. 1995, Ilmu Endodontik Dalam Praktek,

Ed ke-11, Jakarta, EGC. Hal 248-263.

Hayati, K. 2009, Efek Antibakteri Ekstrak Lidah Buaya (Aloe vera) Terhadap

Staphylococcus aureus yang Diisolasi dari Denture Stomatitis (Penelitian In

Vitro), Skripsi, Universitas Sumatera Utara, Medan.

Kere, M. 2011, Daya atibakteri ekstrak etanol buah mahkota dewa (Phaleria

Macrocarpa [Scheff.]Boerl.)terhadap Fusobacterium nucleatum sebagai bahan

medikamen saluran akar secara in vitro, Skripsi, Universitas Sumatera Utara,

Medan.

Manganti, I. 2011, 37 Resep Ampuh Tanaman Obat Untuk Menurunkan Kolesterol

Dan Mengobati Asam Urat, Araska, Hal 110.

5/19/2018 Skrip Si325

64/78

52

Rohyami Y. 2008, Penentuan Kandungan Flavonoid dari Ekstrak Metanol

DagingBuah Mahkota Dewa.Jurnal Logika, Vol. 5. No.1. Hal 1-16.

Siregar, B. 2011, Daya Antibakteri Ekstrak Buah Mahkota Dewa (Phaleriamacrocarpa [Scheff.]Boerl) terhadap Pertumbuhan Streptococcus mutans (in

vitro), Skripsi, Universitas Sumatera Utara, Medan.

Soeksmanto, A. 2006, Pengaruh Ekstrak Butanol Buah Tua Mahkota Dewa (Phaleria

macrocarpa) terhadap Jaringan Ginjal Mencit (Mus musculus).J Biodiversitas,

Vol. 7.No. 3. Hal 278-281.

Soeksmanto, A., Hapsari, Y., Simanjuntak, P. 2007, Kandungan Antioksidan padaBeberapa Bagian Tanaman Mahkota Dewa, Phaleria macrocarpa (Scheff)

Boerl.(Thymelaceae).J Biodiversitas, Vol. 8. No. 2. Hal 92-95.

Suryani, L., Stepriyani, S. 2007, Daya Antibakteri Infusa Daun Mahkota Dewa

(Phaleria macrocarpa) terhadap Staphylococcus aureus dan Eschericia

coli.Jurnal Mutiara Medika, Vol. 5. No. 1. Hal 23-28.

Sutanto, T. 2013, Asam Urat Deteksi Pencegahan Pengobatan, Yogyakarta, Buku

Pintar, Hal 95-96.

Tarigan, R. 2006,Perawatan Pulpa Gigi (Endodonti), Ed ke-2, Jakarta, EGC. Hal 23-

85.

Walton, R. dan Torabinejad, M. 2008, Prinsip dan Praktik Ilmu Endodonsia, Ed. Ke-

3, Jakarta, EGC. Hal 315-326.

Widya, RD. 2013, Aktifitas Antimikroba Ekstrak Biji Teratai (Nymphaea pubescens

L) terhadap Bakteri Aeromonas hydrophila, Streptococcus Agalactiae dan

Jamur Saprolegnia sp, Skripsi, Universitas Sumatera Utara, Medan.

Widrayani, B. 2013, Efektifitas Antibakteri Bahan Sterilisasi Saluran Akar Gigi

Ekstrak Lidah Buaya (Aloe Vera) 12,5% Lebih Tinggi Daripada CHKM,

Skripsi, Universitas Mahasaraswati, Bali.

Wijoyo, M. 2012, Cara Tuntas Menyembuhkan Diabetes Dengan Herbal, Jakarta,

Pustaka Agro Indonesia, Hal 90-93.

5/19/2018 Skrip Si325

65/78

53

LAMPIRAN

5/19/2018 Skrip Si325

66/78

54

(Serbuk Halus Ekstrak Mahkota Dewa) (Penyaringan Ekstrak Mahkota Dewa)

(Rotary Evaporator) (Hasil Pembiakan Bakteri Mix)

5/19/2018 Skrip Si325

67/78

55

(pencampuran ekstrak + suspensi bakteri

pada tabung reaksi)

(Penggoresan bahan coba pada media blood agar)

5/19/2018 Skrip Si325

68/78

56

5/19/2018 Skrip Si325

69/78

57

5/19/2018 Skrip Si325

70/78

58

5/19/2018 Skrip Si325

71/78

59

5/19/2018 Skrip Si325

72/78

60

5/19/2018 Skrip Si325

73/78

61

5/19/2018 Skrip Si325

74/78

62

5/19/2018 Skrip Si325

75/78

63

5/19/2018 Skrip Si325

76/78

64

5/19/2018 Skrip Si325

77/78

65

5/19/2018 Skrip Si325

78/78

66

Documents

Skrip Si325